WO2013000864A1 - Verfahren zur fermentativen produktion von natürlichem l-cystein - Google Patents

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WO2013000864A1
WO2013000864A1 PCT/EP2012/062236 EP2012062236W WO2013000864A1 WO 2013000864 A1 WO2013000864 A1 WO 2013000864A1 EP 2012062236 W EP2012062236 W EP 2012062236W WO 2013000864 A1 WO2013000864 A1 WO 2013000864A1
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cysteine
fermentation medium
factor
fermentation
cell
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PCT/EP2012/062236
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Anneliese Reutter-Maier
Markus Brunner
Tobias Dassler
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Wacker Chemie Ag
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/12—Methionine; Cysteine; Cystine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/14—Nitrogen or oxygen as hetero atom and at least one other diverse hetero ring atom in the same ring

Definitions

  • the invention relates to a process for the fermentative production of natural L-cysteine.
  • the amino acid L-cysteine is used, for example, as a food additive (especially in the baking industry), as a starting material in cosmetics, and as a starting material for the preparation of active pharmaceutical ingredients ⁇ in particular N-acetyl cysteine and S-carboxymethyl cysteine) and is therefore of economic importance.
  • L-cysteine occupies a key position in sulfur metabolism in all organisms and is used in the synthesis of proteins, glutathione, biotin, lipoic acid, methionine and other sulfur-containing metabolites.
  • L-cysteine serves as a precursor for the biosynthesis of coenzyme A. The biosynthesis of L-cysteine has been reported in bacteria, especially in
  • Bacterial host organisms include strains of the genus Corynebacterium and members of the family Enterobacteriaceae, such as Escherichia coli or Pantoea ananatis used.
  • O-acetyl-L-serine is formed from L-serine and acetyl-CoA. Therefore, the supply of L-serine in sufficient quantity is of great importance for L-cysteine production. This can be achieved by introducing a serA allele for a 3 ⁇
  • Phosphoglycerate dehydrogenase with a reduced feedback inhibitory effect coded by L-serine can be achieved.
  • the formation of 3-hydroxypyruvate, a precursor of L-serine is largely decoupled from the L-serine level of the cell. Examples of such SerA enzymes are described in EP0620853,
  • L-cysteine yield in the fermentation can be increased by attenuating or destroying genes which code for L-cysteine-degrading enzymes, such as, for example, the tryptophanase TnaA or the cystathionine- ⁇ - Lyases MalY or MetC (EP1571223).
  • L-cysteine-degrading enzymes such as, for example, the tryptophanase TnaA or the cystathionine- ⁇ - Lyases MalY or MetC (EP1571223).
  • Increasing the transport of L-cysteine out of the cell is another way to increase the product yield in the medium. This can be achieved by overexpression of so-called efflux genes.
  • efflux genes encode membrane bound Proteins that mediate the export of L-cysteine from the cell.
  • efflux genes for L-cysteine export have been described ⁇ US5972663A, US2004038352A2, US2005221453,
  • L-cysteine is continuously withdrawn from the intracellular reaction equilibrium with the result that the level of this amino acid in the cell is kept low and thus the feedback inhibition of sensitive enzymes by L-cysteine is omitted:
  • L-cysteine The oxidation of two molecules of L-cysteine produces the disulfide L-cystine. This reaction is reversible, which means that L-cystine can be converted back into L-cysteine by reduction. Is L-cystine removed after separation from the cells (eg with a decanter) by electrolysis back to L- Cysteine reduced, so this chemical reaction requires that such L-cysteine must not be declared as natural according to flavor regulation.
  • Natural flavors are chemically defined substances with flavoring properties that occur naturally and have been detected in nature appropriate physical, enzymatic or microbiological processes derived from plant, animal or microbiological source materials used as such or prepared for human consumption by means of one or more conventional food preparation processes (including microbiological processes such as fermentation, see Annex II).
  • EP1389427A1 discloses a medium for the fermentative production of L-cysteine, L Cystine and thiazolidine in which the iron concentration is reported as 14.9 mg / l (74 mg / l ferric sulfate heptahydrate).
  • US2010 / 0093045A1 discloses a medium for the production of
  • EP2133429A1 mentions a culture medium for the production of L-cysteine, L-cystine, its derivatives or a mixture thereof containing only 0.34 mg / l iron (1.7 mg / l ferric sulfate heptahydrate).
  • this medium is not for use in the fermentation, but for cultivation in tubes (volume of medium 2 ml) .
  • tubes volume of medium 2 ml.
  • very low cell densities about 0.5 to 2 g This is based on the yields of L-cysteine in shake flasks or tubes of 0.25 g / l (US2003 / 0077766A1), 0.3 g / l (EP2133429A1) and 1.2 g / 1 ⁇ US2010 / 0093045A1).
  • L-cystine in the precipitate can be found in the culture supernatant soluble L-cysteine, but also L-cystine in dissolved form and thiazolidine ⁇ ÜS6218168B1, US5972663A, CA2386539A2).
  • This thiazolidine (2-methyl-thiazolidine-2-dicarboxylic acid) is the condensation product of L-cysteine and pyruvate formed in a purely chemical reaction.
  • the purification of the target product L-cysteine from the culture supernatant would be considerably simpler in such a process, since the L-cystine present as precipitate can be separated together with the cells by a simple separation step and the soluble L-cysteine can be isolated by ion exchange adsorption.
  • the object of the present invention is to provide a process for the production of natural L-cysteine in a production fermenter, in which a microorganism strain is cultivated in a fermentation medium, the end product predominantly being in the form of soluble L-cysteine in the Culture medium is present.
  • the object is achieved by a method which is characterized in that, by means of an iron concentration of not more than 8 mg / l in the medium, the proportion of the compounds prepared is L-cysteine, L-cystine and thiazolidine in the fermenter culture.
  • the iron concentration in the fermentation medium is preferably not more than 4 mg / l, more preferably not more than 2 mg / l of iron. It has been found that at these low iron concentrations, there is a much more homogenous product spectrum in the fermenter culture, since predominantly soluble L-cysteine and precipitated L-cystine, but no thiazolidine are formed as products.
  • the iron concentration should be 0.2 mg / 1 It should be noted that this will have a negative effect on the amount and proportion of L-cysteine present at the end of the fermentation.
  • a surprising finding was that in a medium with these low iron concentrations, the L-cysteine content of the total cysteine can be increased and at the end of the fermentation is at least 65%. This finding is particularly surprising because fermentation media, which are described for the production of amino acids, especially of L-cysteine and its derivatives, with enterobacteria, contain at least 14.9 mg / 1 iron (US6218168B1).
  • a further advantage of the present invention is that, unlike known methods (EP1389427), in the method according to the invention it is not necessary to add reducing agents such as vitamin C, vitamin E or formic acid and its salts for the stabilization of L-cysteine during the process ,
  • the cysteine-forming phase of the fermentation process according to the invention begins with the time from the first L TM
  • Cysteine can be detected in the culture broth and persists until the end of the cultivation. Typically, this phase begins 2 hours after the inoculation of the production fermenter.
  • Preferred microorganism strains are representatives of the family Enterobacteriaceae, more preferably representatives of the genera Escherichia or Pantoea, very particularly preferred are strains of the species E. coli or p. ananatis.
  • strains are again preferred which either have an altered serine O-acetyltransferase, which has a feedback inhibition by L-cysteine which is reduced by at least a factor of 2 compared with the corresponding wild-type enzyme or which by overexpression of an efflux gene have a cysteine export from the cell increased by at least a factor of 2 compared to a wild-type cell.
  • Particularly preferred microorganism strains are those which possess both a serine O-acetyltransferase which has a feedback inhibition by L-cysteine which is reduced by at least a factor of 2 compared with the corresponding wild-type enzyme, as well as by overexpression of an efflux gene have at least a factor of 2 increased cysteine export from the cell compared to a wild-type cell.
  • Such strains are known for example from US6218168B1 and
  • strains which additionally have an altered 3-phosphoglycerate dehydrogenase with a feedback inhibition by L-serine which is reduced by at least a factor of 2 compared with the corresponding wild-type enzyme (US Pat. No. 7,824,460B2) and in which at least one L Cysteine-degrading enzyme is attenuated so much that in the cell only a maximum of 50% of this enzyme activity compared to a wild-type cell is present.
  • Preferred variants of serine O-acetyltransferase have in comparison to the corresponding wild-type enzyme a feedback inhibition by L-cysteine reduced by at least the factor 5, particularly preferably by at least the factor 10, very particularly preferably by at least the factor 50.
  • the efflux gene is preferably from the group ydeD
  • a homologous gene is meant that the sequence of this gene is at least 80% identical to the DNA sequence of the corresponding E. coli gene.
  • an efflux gene preferably leads to a cysteine export from the cell which is increased by at least the factor 5, particularly preferably by at least the factor 10, particularly preferably by at least the factor 20, compared to a wild-type cell.
  • Preferred variants of the 3-phosphoglycerate dehydrogenase have in comparison to the corresponding wild-type enzyme on at least a factor of 5, more preferably at least a factor of 10, most preferably at least a factor of 50 reduced feedback inhibition by L-serine.
  • the L-cysteine degrading enzyme preferably originates from the group tryptophanase (TnaA) and cystathionine ⁇ -lyase (MalY, MetC).
  • strains in which at least one of these enzymes is completely inactivated are particularly preferred.
  • a production fermenter is preferably to be understood as meaning a fermenter having a nominal volume of 1 m 3 .
  • a fermenter with a nominal volume of 5 m 3 is particularly preferred, most preferably used with a nominal volume ⁇ 50 m 3 .
  • the cultivation of the cells in L-cysteine production is carried out under aerobic growth conditions, ie in the presence of oxygen.
  • the oxygen content during the production phase of L-cysteine ⁇ fermentation should be in 30 to 1% 0 2 saturation, preferably at 10 to 1%, particularly preferably at 5 to 1%.
  • the carbon source used are preferably sugars, sugar alcohols, organic acids or sugar-containing plant hydrolysates.
  • glucose, fructose, lactose, glycerol or mixtures containing two or more of these compounds are particularly preferably used as the carbon source.
  • the carbon source of the culture is preferably metered in such that the content of the carbon source in the fermenter does not exceed 10 g / l during the cysteine production phase. Preference is given to a maximum concentration of 2 g / l, more preferably of 0.5 g / l, most preferably of 0.1 g / l.
  • the SSF source used in the process according to the invention is preferably ammonia, ammonium salts or protein hydrolysates.
  • ammonia is used as a correction agent for pH stabilization, this N source is regularly replenished during the fermentation.
  • salts of the elements phosphorus, chlorine, sodium, magnesium, nitrogen, potassium, calcium, iron, and in trace ⁇ i. in ⁇ concentrations) salts of the elements molybdenum, boron, cobalt, manganese, zinc and nickel can be added.
  • the iron concentration of the medium is below 8 mg / l, preferably below 4 mg / l, more preferably below 2 mg / l.
  • An iron concentration of 0.2 mg / l should not be undercut.
  • organic acids e.g., acetate, citrate
  • amino acids e.g., isoleucine
  • vitamins e.g., Bl, B6
  • yeast extract for example, yeast extract, corn steep liquor, soybean meal or malt extract
  • the incubation temperature for mesophilic microorganisms is preferably 15-45 ° C., more preferably 30-37 ° C.
  • the pH of the fermentation medium during the fermentation is preferably in the pH range from 5.0 to 8.5, particularly preferred is a pH of 7.0.
  • a source of sulfur must be fed during the fermentation.
  • Sulfates or thiosulfates are preferably used here.
  • the thiosulfate concentration of the medium should be below 5 g / l, preferably below 3 g / l, more preferably below 1 g / l, most preferably below 0.5 g / l, but 0, 1 g / 1 not lower.
  • Microorganisms which are fermented by the process described secrete L-cysteine in a batch or fed-batch process after a growth phase in a period of 2 to 30 hours and compounds derived therefrom in high efficiency into the culture medium.
  • the plasmid pACYC184 / cysEX-GAPDH ⁇ ORF306 also contains the cysEX allele, which codes for a serine O-acetyltransferase with a reduced feedback inhibition by L-cysteine and the Effluxgen ydeD
  • Selection for plasmid-bearing cells was on LB agar plates containing 15 mg / l tetracycline.
  • the desired transformants i. Cells which have taken up the plasmid pACYC184 / cysEX-GAPDH ORF306, and used in the fermentation, as described in Example 2.
  • Example 1 To detect cysteine production, the microorganisms described in Example 1 were cultivated in fermenters in fed batch mode with continuous glucose and thiosulfate feeding. Bioreactors with a nominal volume of 5 m 3 were used as production fermenters. The inoculation material for the production fermenters was provided in a two-stage pre-culture tour.
  • the fermentation medium ⁇ 200 1) contains 20 g / 1 glucose, 10 g / 1 tryptone (Difco), 5 g / 1 yeast extract ⁇ Difco), 5 g / 1 (NH 4 ) 2 S0 4 , 1.5 g / 1 KH 2 P0 4 , 0.5 g / 1 NaCl, 0.3 g / 1 MgSO 4 ⁇ 7 H 2 O, 0.015 g / 1 CaCl 2 ⁇ 2 H 2 O, 0.002 g / 1 FeS0 4 ⁇ 7 H 2 Q, 1 g / 1 Na 3 citrate ⁇ 2 H 2 O, 0.005 g / 1 vitamin B1, 1 ml / 1 trace element solution (consisting of 0.15 g / 1 Na 2 Mo
  • the pH in the pre-fermenter was adjusted to 7.0 with a 25% NH 4 OH solution prior to inoculation. During the fermentation, the pH was maintained at a value of 7.0 by automatic correction with 25% NH 4 OH.
  • the cultures were stirred at 200 rpm and initially with 0.5 vvm one on a
  • the cultivation was carried out at a temperature of 30 ° C and a pressure of 50 kPa for 15 hours. After this incubation, the optical density at 600 nm ⁇ OD 60 o) was between 18 and 20.
  • the fermentation was carried out in fermenters with a nominal volume of 5 m 3 .
  • the fermentation medium (2300 l) contains 15 g / l glucose, 10 g / l tryptone (Difco), 5 g / l yeast extract
  • the fermentation was carried out at a temperature of 30 ° C and a pressure of 50-60 kPa.
  • a sulfur source in the form of a sterile 60% sodium thiosulfate x 5 H 2 0 - stock solution was carried out.
  • the feeding rate was adjusted so that the thiosulfate concentration in the medium never exceeded 5 g / l.
  • a continuous addition of a 56% glucose solution took place.
  • the feeding rate was adjusted so that the glucose concentration in the fermenter no longer exceeded 10 g / l.
  • the glucose determination was carried out with a glucose analyzer from YSI (Yellow
  • the fermentation time was 24 hours. Thereafter, cell densities of 40 to 45 g / 1 dry biomass were determined in all fermenters.
  • L-cystine dissolved in the culture supernatant is likewise detected as L-cysteine in the ninhydrin test of Gaitonde after reduction with dithiothreitol (DTT) in dilute solution at pH 8.0.
  • DTT dithiothreitol
  • the precipitated L-cystine first had to be dissolved in 8% hydrochloric acid before it could be quantified in the same way.
  • DTNB Dithiobis-2-nitrobenzoic acid
  • Table 1 Content of L-cysteine and. L-cysteine derivatives in the culture broth of E. coli after 24 h as a function of the iron concentration in the medium
  • Table 2 Content of L-cysteine and L-cysteine derivatives in the culture broth of P.ananatis after 24 h as a function of the iron concentration in the medium

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Abstract

Verfahren zur fermentativen Herstellung von natürlichem L-Cystein in einem Produktionsfermenter bei dem ein Mikroorganismenstamm in einem Fermentationsmedium kultiviert wird, dadurch gekennzeichnet, dass durch eine Eisenkonzentration von maximal 8 mg/1 im Fermentationsmedium der Anteil der hergestellten Verbindungen L-Cystein, L-Cystin und Thiazolidin im Fermentationsmedium gezielt kontrolliert wird.

Description

Verfahren zur fermentativen Produktion von natürlichem L-
Cystein
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur fermentativen Produk-- tion von natürlichem L-Cystein.
Die Aminosäure L-Cystein wird beispielsweise als Lebensmittel - Zusatzstoff (insbesondere in der Backmittelindustrie) , als Einsatzstoff in der Kosmetik, sowie als Ausgangsprodukt für die Herstellung von Pharmawirkstoffen {insbesondere N-Acetyl- Cystein und S-Carboxy- Methyl-Cystein) verwendet und ist somit von wirtschaftlicher Bedeutung.
L-Cystein nimmt in allen Organismen eine Schlüsselposition im Schwefelmetabolismus ein und wird in der Synthese von Proteinen, Glutathion, Biotin, Liponsäure, Methionin und anderen schwefelhaltigen Metaboliten verwendet. Zudem dient L-Cystein als Vorläufer für die Biosynthese von Coenzym A. Die Biosynthese von L-Cystein wurde in Bakterien, insbesondere in
Enterobakterien, detailliert untersucht und ist ausführlich in Kredich {1996, Biosynthesis of cysteine, p. 514-527. In F. C. Neidhardt, R . Curtiss III, J. L. Ingraham, E. C. C. Lin, K. B. Low, B. Magasanik, . S. Reznikoff, M. Riley, M. Schaechter, and H. E. ümbarger {ed.), Escherichia coli and Salmonella.- cellular and molecular biology, 2nd ed. ASM Press, Washington, D . C . ) besch iebe .
Neben der klassischen Gewinnung von L-Cystein mittels Extraktion aus keratinhaltigem Material wie Haaren, Borsten, Hör- nern, Hufen und Federn oder mittels Biotransformation durch enzymatische Umsetzung von Vorstufen wurde vor einigen Jahren auch ein Verfahren zur fermentativen Herstellung von L-Cystein entwickelt. Der Stand der Technik bezüglich der fermentativen Gewinnung von L-Cystein mit Mikroorganismen ist ausführlich z.B. in US6218168B1, US5972663A, US2004038352A2 , CA2386539A2, EP1769080, und EP2138585 beschrieben. Als bakterielle Wirtsorganismen werden dabei u.a. Stämme der Gattung Corynebakterium sowie Vertreter aus der Familie der Enterobacteriaceae, wie z.B. Escherichia coli oder Pantoea ananatis verwendet.
Neben der klassischen Vorgehensweise, um durch Mutation und Selektion zu verbesserten L-Cystein~Produzenten zu gelangen, wurden auch gezielt genetische Veränderungen an den Stämmen vorgenommen, um eine effektive L-Cystein-Überproduktion zu erreichen. So führte das Einbringen eines cysE-Allels, das für eine Se rin-O-Acetyl-Transferase mit einer verminderten Feedback- Hemmung durch L-Cystein kodiert, zu einer Steigerung der Cys- tein-Produktion (US6218168B1) . Durch ein feedback-resistentes CysE-Enzym wird die Bildung von O-Acetyl-L-Serin, der direkten Vorstufe von L-Cystein, weitgehend vom L-Cystein-Spiegel der Zelle entkoppelt.
O-Acetyl-L-Serin wird aus L-Serin und Acetyl-CoA gebildet. Daher ist die Bereitstellung von L-Serin in ausreichender Menge für die L-Cystein-Produktion von großer Bedeutung. Dies kann durch das Einbringen eines serA-Allels, das für eine 3~
Phosphoglycerat-Dehydrogenase mit einer verminderten Feedback- Hemmbarkeit durch L-Serin kodiert, erreicht werden. Dadurch wird die Bildung von 3-Hydroxypyruvat , einer Vorstufe von L- Serin, weitgehend vom L-Serin-Spiegel der Zelle entkoppelt. Beispiele für derartige SerA-Enzyme sind in EP0620853,
US7582460B2, und ΞΡ0931833 beschrieben.
Darüber hinaus ist bekannt, dass die L-Cystein~Ausbeute in der Fermentation dadurch erhöht werden kann, dass Gene abgeschwächt oder zerstört werden, die für L-Cystein- abbauende Enzyme kodieren, wie z.B. die Tryptophanase TnaA oder die Cysta- thionine-ß-Lyasen MalY oder MetC (EP1571223) . Die Steigerung des Transports von L-Cystein aus der Zelle ist eine weitere Möglichkeit, um die Produkt-Ausbeute im Medium zu erhöhen. Dies kann durch Überexpression sogenannter Efflux- Gene erreicht werden. Diese Gene kodieren für membrangebundene Proteine, die den Export von L-Cystein aus der Zelle vermitteln. Verschiedene Effluxgene für den L-Cystein-Export wurden beschrieben {US5972663A, US2004038352A2 , US2005221453 ,
WO2004113373) .
Der Export von L-Cystein aus der Zelle in das Kulturmedium hat folgende Vorteile:
1) L-Cystein wird kontinuierlich aus dem intrazellulären Reaktionsgleichgewicht entzogen mit der Folge, dass der Spiegel dieser Aminosäure in der Zelle niedrig gehalten wird und somit die Feedback-Inhibiton von sensitiven Enzymen durch L-Cystein unterbleibt:
{1) L-Cystein (intrazellulär) L-Cystein (Medium)
2) Das in das Medium ausgeschiedene L-Cystein wird in Gegen- wart von Sauerstoff, der während der Kultivierung in das
Medium eingebracht wird, zum Disulfid L-Cystin oxidiert (US5972663A) :
(2) 2 L-Cystein + 1/2 02 ^ L-Cystin + H20
Da die Löslichkeit von L-Cystin in wässriger Lösung bei ei- nem neutralen pH-Wert v.a. im Vergleich zu L-Cystein nur sehr gering ist, fällt das Disulfid schon bei einer niedrigen Konzentration aus und bildet einen weißen Niederschlag:
(3) L-Cystin (gelöst) !=► L-Cystin (Niederschlag)
Durch die Präzipitation von L-Cystin wird der Spiegel des im Medium gelösten Produkts abgesenkt, wodurch auch jeweils das Reaktionsgleichgewicht von (1) und (2) auf die Produkt- seite gezogen wird.
3) Der technische Aufwand für die Reinigung des Produkts ist bedeutend geringer, wenn die Aminosäure direkt aus dem Kul- turmedium gewonnen werden kann, als wenn das Produkt intrazellulär akkumuliert und zuerst ein Zellaufschluss erfolgen rauss .
Bei der Oxidation von zwei Molekülen L-Cystein entsteht das Disulfid L-Cystin. Diese Reaktion ist reversibel, was bedeutet, dass L-Cystin durch Reduktion wieder in L-Cystein überführt werden kann. Wird L-Cystin nach Abtrennung von den Zellen (z.B. mit einem Dekanter) mittels Elektrolyse wieder zu L- Cystein reduziert, so bedingt diese chemische Umsetzung, dass solches L-Cystein nicht als natürlich nach Aromenverordnung deklariert werden darf.
Nach der EU Aromenverordnung (1334/2008 Artikel 22 der Verord- nung zur Neuordnung lebensmittelrechtlicher Kennzeichnungsvorschriften) sind natürliche Aromen wie folgt definiert: „Natürliche" Aromastoffe sind chemisch definierte Stoffe mit Aromaeigenschaften, die natürlich vorkommen und in der Natur nachgewiesen wurden. Sie werden durch geeignete physikalische, en- zymatische oder mikrobiologische Verfahren aus pflanzlichen, tierischen oder mikrobiologischen Ausgangsstoffen gewonnen, die als solche verwendet oder mittels eines oder mehrerer herkömmlicher Lebensmittelzubereitungsverfahren (einschließlich mikrobiologischer Prozesse wie Fermentieren, siehe Anhang II) für den menschlichen Verzehr aufbereitet werden.
In diesem Sinne wird der Begriff „natürlich" auch in vorliegender Anmeldung benutzt. Es besteht ein großes Interesse am Einsatz natürlicher Rohstoffe bei der Aromenherstellung. Bisher existierte allerdings kein Verfahren zur fermentativen Herstellung von natürlichem Cystein.
Es gibt eine Reihe von Verbindungen, welche die Oxidation von SH-Gruppen katalysieren können; so ist bekannt, dass Schwermetallsalze wie Eisen- oder Zinksalze essentielle Zusätze bei Fermentationen sind und dass diese Komponenten die Oxidation von Cystein zu Cystin effektiv katalysieren können
(US2008190854A2) .
In US6218168B1 wird beschrieben, dass das Fermentationsmedium zur Produktion von L-Cystein und seinen Derivaten eine Eisen- konzentration von 15 mg/1 (75 mg/1 Eisensulfat-Heptahydrat} enthält. EP1389427A1 offenbart ein Medium zur fermentativen Produktion von L-Cystein, L-Cystin und Thiazolidin, in der die Eisenkonzentration mit 14,9 mg/1 (74 mg/1 Eisensulfat- Heptahydrat) angegeben ist.
In US2010/0093045A1 wird ein Medium zur Produktion von L-
Cystein beschrieben, das nur 2 mg/1 Eisen (10 mg/1 Eisensulfat-Heptahydrat) enthält. Dieses Medium wird allerdings nur für den Einsatz in Schüttelkolben im LabormaSstab (Medienvolu- men 20 ml) und nicht für die Fermentation in einem Produkti- onsfermenter verwendet. EP2133429A1 erwähnt ein Kulturmedium für die Produktion von L-Cystein, L-Cystin, seinen Derivaten oder einer Mischung daraus, das nur 0,34 mg/1 Eisen (1,7 mg/1 Eisensulfat-Heptahydrat} enthält. Auch dieses Medium ist nicht für einen Einsatz in der Fermentation, sondern für Anzuchten in Röhrchen (Medienvolumen 2 ml) beschrieben. Üblicherweise werden unter diesen Kultivierungsbedingungen (batch-Kultur, schlechte SauerstoffVersorgung, keine pH-Regulierung) nur sehr niedrige Zelldichten (ca. 0,5 bis 2 g/1 Biotrockenmasse) und geringe Produktausbeuten erreicht. Dies wird anhand der in Schüttelkolben oder Röhrchen erzielten L-Cystein~Ausbeuten von 0,25 g/1 (US2003/0077766A1) , 0,3 g/1 (EP2133429A1) bzw. 1,2 g/1 {US2010/0093045A1) deutlich.
In Produktionsfermentern werden jedoch hohe Zelldichten angestrebt, um infolge der biomassespezifischen Produktbildungsra¬ ten entsprechend hohe volumetrische Ausbeuten zu erzielen, die erst ein wirtschaftliches Verfahren im industriellen Maßstab ermöglichen. Die Qualität eines industriellen Prozesses zur mikrobiologischen Stoffproduktion wird in der Regel anhand der Produktivität beurteilt. Diese Größe beschreibt die gebildete Gesamtproduktmenge pro Liter Medium pro Fermentationszeit. Ein Nachteil bei den beschriebenen Verfahren zur fermentativen L-Cystein~ roduktion ist, dass die Aminosäure in der Kulturbrühe in verschiedenen Formen vorliegt. Neben dem präzipitierten L-Cystin im Niederschlag findet man im Kulturüberstand lösliches L-Cystein, aber auch L-Cystin in gelöster Form und Thiazolidin {ÜS6218168B1 , US5972663A, CA2386539A2) . Dieses Thiazolidin (2 -Methyl-thiazolidin-2 , -dicarbonsäure) stellt das Kondensationsprodukt aus L-Cystein und Pyruvat dar, das in einer rein chemischen Reaktion gebildet wird.
Unter dem Begriff „Gesamtcystein" werden im Rahmen dieser Er- findung L-Cystein und die daraus abgeleiteten Verbindungen L- Cystin und Thiazolidin, die während der Fermentation gebildet werden und im Kulturüberstand sowie im Niederschlag akkumulie¬ ren, zusammengefasst . Bei den bekannten Verfahren variiert am Ende der Fermentation die Zusammensetzung des Gesamtcysteins : der Anteil des präzipitierten L-Cystins beträgt zwischen 40-66% {US5972663A,
CA2386539A2) , die restlichen 34-60% liegen im Kulturüberstand in Form von löslichen Produkten - überwiegend als L-Cystein und Thiazolidin - vor. Diese Produktheterogenität erschwert die Gewinnung und Reinigung des Zielprodukts natürliches L- Cystein aus der Kulturbrühe. Daher wäre ein Verfahren wünschenswert, bei dem als Endprodukt vorwiegend lösliches L-Cystein anfällt. Außerdem sollte möglichst kein Thiazolidin gebildet werden. Die Reinigung des Zielprodukts L-Cystein aus dem Kulturüberstand wäre bei so einem Prozess erheblich einfacher, denn das als Präzipitat vor- liegende L-Cystin kann zusammen mit den Zellen durch einen einfachen Separatorschritt abgetrennt werden und das lösliche L-Cystein über lonentauscheradsorption isoliert werden.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es, ein Verfahren für die Herstellung von natürlichem L-Cystein in einem Produkti- onsfermenter zur Verfügung zu stellen, bei dem ein Mikroorga- nismenstamm in einem Fermentationsmedium kultiviert wird wobei das Endprodukt überwiegend in Form von löslichem L-Cystein im Kulturmedium vorliegt.
Die Aufgabe wird gelöst durch ein Verfahren, das dadurch gekennzeichnet ist, dass durch eine Eisenkonzentration von maximal 8 mg/1 im Medium der Anteil der hergestellten Verbindungen L-Cystein, L-Cystin und Thiazolidin in der Fermenterkultur ge- zielt kontrolliert wird.
Die Eisenkonzentration im Fermentationsmedium liegt bevorzugt bei maximal 4 mg/1, besonders bevorzugt bei maximal 2 mg/1 Eisen. Es wurde gefunden, dass bei diesen geringen Eisenkonzent- rationen ein deutlich homogeneres Produktspektrum in der Fer- menterkultur vorliegt, da überwiegend lösliches L-Cystein und präzipitiertes L-Cystin, aber kein Thiazolidin als Produkte gebildet werden. Die Eisenkonzentration sollte 0,2 mg/1 aller- dings nicht unterschreiten, da sich dies negativ auf die Menge und den Anteil des am Ende der Fermentation vorliegenden L- Cysteins auswirkt. Ein überraschender Befund war, dass in einem Medium mit diesen geringen Eisenkonzentrationen der L-Cystein-Anteil am Ge- samtcystein gesteigert werden kann und am Ende der Fermentation bei mindestens 65 % liegt. Dieser Befund ist besonders deshalb erstaunlich, da Fermentationsmedien, die zur Produktion von Aminosäuren, speziell von L-Cystein und seinen Derivaten, mit Enterobakterien beschrieben sind, mindestens 14,9 mg/1 Eisen enthalten (US6218168B1) .
Ein weiterer Vorteil der vorliegenden Erfindung ist, dass es im Unterschied zu bekannten Verfahren (EP1389427) bei dem erfindungsgemäßen Verfahren nicht notwendig ist, reduzierende Agenzien wie Vitamin C, Vitamin E oder Ameisensäure und deren Salze, zur Stabilisierung von L-Cystein während des Prozesses zuzugeben.
Die Cystein-Bildungsphase des erfindungsgemäßen Fermentations- verfahrens beginnt mit dem Zeitpunkt, ab dem erstmals L™
Cystein in der Kulturbrühe nachgewiesen werden kann und dauert bis zum Ende der Kultivierung an. Typischerweise beginnt diese Phase 2 Stunden nach der Inokulation des Produktionsfermen- ters .
Im Unterschied zu im Stand der Technik beschriebenen Verfahren (US2003/0077766A1, EP2133429A1, US2010/0093045A1) werden mit dem e findungsgemäßen Fermentationsverfahren Zelldichten von mindestens 20 g/1, bevorzugt von mindestens 30 g/1, besonders bevorzugt von mindestens 40 g/1 Biotrockenmasse und volumetri- sche Produktausbeuten von mindestens 10 g/1 Cystein erzielt. Als Mikroorganismen für das erfindungsgemäße Verfahren können alle im Stand der Technik beschriebenen Cystein-produzierenden Stämme eingesetzt werden. Derartige Stämme sind beispielsweise offenbart in US6218168B1, US5972663A, US200403S352A2 ,
CA2386539A2, US2009053778A2 und EP2138585A1.
Als Mikroorganismenstamm bevorzugt sind Vertreter aus der Familie der Enterobacteriaceae, besonders bevorzugt Vertreter der Gattungen Escherichia oder Pantoea, ganz besonders bevorzugt sind Stämme der Spezies E. coli oder p. ananatis .
Von diesen Mikroorganismenstämmen sind wiederum Stämme bevorzugt, die entweder eine veränderte Serin-O-Acetyl-Transferase besitzen, die im Vergleich zu dem entsprechenden Wildtypenzym eine um mindestens den Faktor 2 verminderte Feedback-Hemmung durch L-Cystein aufweist, oder die durch Überexpression eines Effluxgens einen um mindestens den Faktor 2 erhöhten Cystein- Export aus der Zelle im Vergleich zu einer Wildtypzelle auf- weisen. Besonders bevorzugte Mikroorgani menstämme sind solche, die sowohl eine Serin-O-Acetyl-Transferase besitzen, die im Vergleich zu dem entsprechenden Wildtypenzym eine um mindestens den Faktor 2 verminderte Feedback-Hemmung durch L- Cystein aufweist, als auch durch Überexpression eines Efflux- gens einen um mindestens den Faktor 2 erhöhten Cystein-Export aus der Zelle im Vergleich zu einer Wildtypzelle aufweisen. Derartige Stämme sind beispielsweise aus US6218168B1 und
US5972663A bekannt. Ganz besonders bevorzugte Stämme sind solche, die zusätzlich eine veränderte 3 -Phosphoglycerat-Dehydro- genäse mit einer im Vergleich zu dem entsprechenden Wildtypenzym um mindestens den Faktor 2 verminderten Feedback- Hemmung durch L- Serin besitzen (US7582460B2) und bei denen mindestens ein L-Cystein-abbauendes Enzym soweit abgeschwächt ist, dass in der Zelle nur noch maximal 50 % dieser Enzym- Aktivität im Vergleich zu einer Wildtypzelle vorhanden ist.
Bevorzugte Varianten der Serin-O-Acetyl-Transferase weisen im Vergleich zu dem entsprechenden Wildtypenzym eine um mindestens den Faktor 5, besonders bevorzugt um mindestens den Faktor 10, ganz besonders bevorzugt um mindestens den Faktor 50 verminderte Feedback-Hemmung durch L-Cystein auf.
Das Effluxgen stammt vorzugsweise aus der Gruppe ydeD
(US5972663A) , yfiK (US2004038352A2) , cydDC {WO2004113373 ) , bcr (US2005221453) und emrAB (US2005221453 ) von E. coli oder dem entsprechend homologen Gen aus einem anderen Mikroorganismus . Unter einem homologen Gen ist zu verstehen, daß die Sequenz dieses Gens zu mindestens 80 % mit der DNA-Sequenz des ent- sprechenden E. coli-Gens übereinstimmt.
Die Überexpression eines Effluxgens führt im Vergleich zu einer Wildtypzelle bevorzugt zu einem um mindestens den Faktor 5, besonders bevorzugt um mindestens den Faktor 10, besonders bevorzugt um mindestens den Faktor 20 erhöhten Cystein-Export aus der Zelle.
Bevorzugte Varianten der 3-Phosphoglycerat-Dehydrogenase weisen im Vergleich zu dem entsprechenden Wildtypenzym eine um mindestens den Faktor 5, besonders bevorzugt um mindestens den Faktor 10, ganz besonders bevorzugt um mindestens den Faktor 50 verminderte Feedback-Hemmung durch L-Serin auf.
Das L-Cystein-abbauende Enzym stammt vorzugsweise aus der Gruppe Tryptophanase (TnaA) und Cystathionine-ß -Lyase (MalY, MetC) .
Besonders bevorzugt sind solche Stämme, in denen mindestens eines dieser Enzyme soweit abgeschwächt ist, dass in der Zelle nur noch maximal 10 % der Enzym-Aktivität im Vergleich zu einem Wildtypstamm vorhanden ist. Ganz besonders bevorzugt sind Stämme, in denen mindestens eines dieser Enzyme völlig inaktiviert ist.
Unter einem Produktionsfermenter ist im Sinn der vorliegenden Erfindung vorzugsweise ein Fermenter mit einem Nennvolumen ^ 1 m3 zu verstehen. Besonders bevorzugt wird ein Fermenter mit einem Nennvolumen ä 5 m3, ganz besonders bevorzugt mit einem Nennvolumen ^ 50 m3 verwendet.
Die Kultivierung der Zellen bei der L-Cystein-Produktion wird unter aeroben Wachstumsbedingungen durchgeführt, d.h. in Gegenwart von Sauerstoff. Der Sauerstoff -Gehalt während der Produktionsphase der L-Cystein~Fermentation sollte bei 30 bis 1% 02-Sättigung, bevorzugt bei 10 bis 1%, besonders bevorzugt bei 5 bis 1% liegen.
Als Kohlenstoffquelle dienen vorzugsweise Zucker, Zuckeralko- hole, organische Säuren oder zuckerhaltige Pflanzenhydrolysa- te. Besonders bevorzugt werden im erfindungsgemäßen Verfahren als Kohlenstoffquelle Glukose, Fruktose, Laktose, Glycerin o- der Gemische, die zwei oder mehr dieser Verbindungen enthalten, eingesetzt.
Bevorzugt wird die Kohlenstoffquelle der Kultur so zudosiert, dass der Gehalt der Kohlenstoffquelle im Fermenter während der Cystein-Produktionsphase 10 g/1 nicht übersteigt. Bevorzugt ist eine maximale Konzentration von 2 g/1, besonders bevorzugt von 0,5 g/1, ganz besonders bevorzugt von 0,1 g/1.
Als SSF-Quelle werden im erfindungsgemäßen Verfahren vorzugsweise Ammoniak, Ammoniumsalze oder Proteinhydrolysate verwendet. Bei Verwendung von Ammoniak als Korrekturmittel zur pH- Statisierung wird während der Fermentation regelmäßig diese N- Quelle nachdosiert.
Als weitere Medienzusätze können Salze der Elemente Phosphor, Chlor, Natrium, Magnesium, Stickstoff, Kalium, Calcium, Eisen und in Spuren {d.h. in μΜ Konzentrationen) Salze der Elemente Molybdän, Bor, Kobalt, Mangan, Zink und Nickel zugesetzt werden. Erfindungsgemäß ist es wichtig, dass für die L-Cystein- Fermentation die Eisenkonzentration des Mediums unter 8 mg/1, bevorzugt unter 4 mg/1, besonders bevorzugt unter 2 mg/1 liegt. Eine Eisenkonzentration von 0,2 mg/1 sollte nicht unterschritten werden.
Des Weiteren können organische Säuren (z.B. Acetat, Citrat) , Aminosäuren (z.B. Isoleucin) und Vitamine (z.B. Bl, B6) dem Medium zugesetzt werden.
Als komplexe Nährstoffquellen können z.B. Hefeextrakt, Mais- quellwasser, Sojamehl oder Malzextrakt zum Einsatz kommen. Die Inkubationstemperatur für mesophile Mikroorganismen wie z.B. E. coli oder P. ananatis beträgt vorzugsweise 15 - 45 °C, besonders bevorzugt 30 - 37 °C.
Der pH-Wert des Fermentationsmediums liegt während der Fermentation bevorzugt im pH-Bereich von 5,0 bis 8,5, besonders bevorzugt ist ein pH-Wert von 7,0. Für die Herstellung von L-Cystein und L-Cystein-Derivaten muss während der Fermentation eine Schwe elquelle zugefüttert werden. Bevorzugt kommen dabei Sulfate oder Thiosulfate zum Einsatz. Für die L~Cystein- Fermentation sollte die Thiosulfat- Konzentration des Mediums unter 5 g/1, bevorzugt unter 3 g/1, besonders bevorzugt unter 1 g/1, ganz besonders bevorzugt unter 0,5 g/1 liegen, jedoch 0,1 g/1 nicht unterschreiten.
Mikroorgan smen, die nach dem beschriebenen Verfahren fermentiert werden, sezernieren in einem Batch- oder Fedbatch- Prozess nach einer Anwachsphase in einem Zeitraum von 2 bis 30 Stunden L-Cystein und davon abgeleitete Verbindungen in hoher Effizienz in das Kulturmedium.
Zur weiteren Aufreinigung des Zielprodukts können folgende Schritte durchgeführt werden:
- Separatorschritt zur Abtrennung der Zellen und des als Präzipitat vorliegenden L-Cystins
- Isolierung des L-Cysteins durch Ionentauscheradsorption
- Fällungskristallisation
Derartige Verfahren sind aus dem Stand der Technik bekannt.
Die folgenden Beispiele dienen der weiteren Erläuterung der Erfindung .
Beispiel 1: Erzeugung von Cystein-Produktionsstämmen
Es wurden die Wildtyp-Stämme E. coli W3110 (ATCC 27325} und P. ananatis (ATCC 11530) jeweils mit dem Plasmid pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306 {offenbart in Beispiel 2 von
US59726S3A) mittels Elektroporation wie in US5972663A beschrieben transformiert. Das Plasmid pACYC184/cysEX-GAPDH~ ORF306 enthält neben dem Replikationsursprung und einem Tetra- cyclin-Resistenzgen auch noch das cysEX-Allel, das für eine Serin-O-Acetyl-Transferase mit einer verminderten Feedback- Hemmung durch L-Cystein kodiert sowie das Effluxgen ydeD
(ORF306) , dessen Expression durch den konstitutiven GAPDH- Promotor gesteuert wird.
Die Selektion auf Plasmid- tragende Zellen erfolgte auf LB- Agarplatten, die 15 mg/1 Tetracyclin enthielten.
Nach einer erneuten Plasmidisolierung mittels dem QIAprep Spin Plasmid Kit (Qiagen GmbH) und einer Restriktionsanalyse wurden die gewünschten Transformanden, d.h. Zellen, die das Plasmid pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306 aufgenommen haben, isoliert und in der Fermentation eingesetzt, wie dies in Beispiel 2 beschrieben ist.
Beispiel 2 : Kultivierung der Cystein-Produktionsstämme bei un- terschiedlicher Versorgung mit Eisensulfat-Heptahydrat
Zum Nachweis der Cystein-Produktion wurden die in Beispiel 1 beschriebenen Mikroorganismen in Fermentern im Fed-Batch- odus mit kontinuierlicher Glukose- und Thiosulfat-Fütterung kultiviert. Als Produktionsfermenter dienten Bioreaktoren mit einem Nennvolumen von 5 m3. Das Animpfmaterial für die Produktions - fermenter wurde in einer zweistufigen Vorkulturführung bereitgestellt .
Vorkultur 1 {Schüttelkolben) :
Je 400 ml LB-Medium mit 15 mg/1 Tetracyclin wurden in zehn Er- lenmeyerkolben (2000 ml) mit dem jeweiligen Stamm {E, coli 3110 pACYC18 /cysEX-GAPDH-ORF306 bzw. P. ananatis
pACYC184/cysEX-GAPDH-ORF306) beimpft und für sieben Stunden auf einem Schüttler {150 rpm, 30°C) inkubiert.
Vorkultur 2 {Vorfermenter ) :
Anschließend wurde die Vorkultur 1 aus zehn Erlenmeyerkolben vereinigt. 4 1 Vorkultur 1 wurden in eine sterile Impfflasche überführt und vollständig in den Vorfermenter mit einem Nennvolumen von 500 1 gepumpt. Das Fermentationsmedium {200 1) enthält 20 g/1 Glukose, 10 g/1 Trypton (Difco) , 5 g/1 Hefeextrakt {Difco) , 5 g/1 (NH4)2S04, 1,5 g/1 KH2P04, 0,5 g/1 NaCl, 0,3 g/1 MgS04 x 7 H20, 0,015 g/1 CaCl2 x 2 H20, 0,002 g/1 FeS04 x 7 H2Q, 1 g/1 Na3Citrat x 2 H20, 0,005 g/1 Vitamin Bl, 1 ml/1 Spurenelementlösung (bestehend aus 0,15 g/1 Na2Mo04 x 2H20, 2,5 g/1 H3B03, 0,7 g/1 CoCl2 x 6 H20, 0,25 g/1 CuS04 x 5 H20, 1,6 g/1 MnCl2 x 4 H20, 0,3 g/1 ZnS04 x 7 H20} und 15 mg/1 Tetracyc- lin.
Der pH-Wert im Vorfermenter wurde vor der Inokulation mit einer 25% NH4OH-Lösung auf 7,0 eingestellt. Während der Fermentation wurde der pH-Wert durch automatische Korrektur mit 25% NH4OH auf einem Wert von 7,0 gehalten. Die Kulturen wurden mit 200 rpm gerührt und zu Beginn mit 0,5 vvm einer über einen
Sterilfilter entkeimten Druckluft begast. Unter diesen Startbedingungen war die Sauerstoff-Sonde vor der Inokulation auf 100% Sättigung kalibriert worden. Der Soll-Wert für die 02- Sättigung während der Fermentation wurde auf 30 + 1%, einge- stellt. Nach Absinken der 02-Sättigung unter den Soll-Wert wurde eine Regula ionskaskade gestartet, um die 02-Sättigung wieder an den Soll-Wert heranzuführen. Dabei wurde die Gaszufuhr kontinuierlich auf max. 2 vvm erhöht.
Die Kultivierung wurde bei einer Temperatur von 30°C und einem Druck von 50 kPa für 15 h durchgeführt. Nach dieser Inkubation lag die optische Dichte bei 600 nm {OD60o) zwischen 18 und 20.
Hauptkultur (Produktionsfermenter) :
Die Fermentation wurde in Fermentern mit einem Nennvolumen von 5 m3 durchgeführt. Das Fermentationsmedium (2300 1) enthält 15 g/1 Glukose, 10 g/1 Trypton (Difco) , 5 g/1 Hefeextrakt
(Difco), 5 g/1 (NH4)2S04, 1,5 g/1 KH2P04, 0,5 g/1 NaCl, 0,3 g/1 MgS04 x 7 H20, 0,015 g/1 CaCl2 x 2 H20, 1 g/1 Na3Citrat x 2 H20 und 1 ml Spurenelementlösung (siehe oben), 0,005 g/1 Vitamin Bl und 15 mg/1 Tetracyclin. Je nach Versuchsansatz wurde das
Medium mit 75 mg/1, 40 mg/1, 20 mg/1, 10 mg/1, 3 mg/1 oder 0,5 mg/1 FeS04 x 7 H20 supplementiert . Der pH-Wert im Produktions·~ fermenter wurde vor der Inokulation durch Zupumpen einer 25% NH4OH-Lösung auf 7,0 eingestellt. Während der Fermentation wurde der pH-Wert durch automatische Korrektur mit 25% NH4OH auf einem Wert von 7,0 gehalten. Zum Animpfen wurden 200 1 der Vorkultur 2 in den Fermenterkessel gepumpt. Das Anfangsvolumen betrug somit etwa 2500 1. Die Kulturen wurden zu Beginn mit
120 rpm gerührt und mit 1,5 vvm einer über einen Sterilfilter entkeimten Druckluft begast. Unter diesen Startbedingungen war die Sauerstoff-Sonde vor der Inokulation auf 100% Sättigung kalibriert worden. Der Soll-Wert für die 02-Sättigung während der Fermentation wurde auf 30 ± 1%, eingestellt. Nach Absinken der 02-Sättigung unter den Soll-Wert wurde eine Regulations- kaskade gestartet, um die 02-Sättigung wieder an den Soll-Wert heranzuführen. Dabei wurde zunächst die Gaszufuhr kontinuierlich erhöht (auf max. 2 vvm) und anschließend die Rüh ge- schwindigkeit (auf max. 300 rpm) kontinuierlich gesteigert.
Die Fermentation wurde bei einer Temperatur von 30°C und einem Druck von 50-60 kPa durchgeführt. Nach 2 h Fermentationszeit erfolgte die kontinuierliche Zufütterung einer Schwefelquelle in Form einer sterilen 60 % Natrium-Thiosulfat x 5 H20 - Stammlösung. Die Fütterungsrate wurde so eingestellt, dass die Thiosulfatkonzentration im Medium zu keiner Zeit 5 g/1 überstieg. Sobald der Glukose-Gehalt im Fermenter von anfänglich 15 g/1 auf ca. 2 g/1 abgesunken war, erfolgte eine kontinuierliche Zudosierung einer 56% Glukose-Lösung . Die Fütterungsrate wurde so eingestellt, dass die Glukosekonaentration im Fermenter 10 g/1 fortan nicht mehr überstieg. Die Glukose-Bestimmung wurde mit einem Glukoseanalysator der Firma YSI (Yellow
Springs, Ohio, USA) durchgeführt.
Die Fermentationsdauer betrug 24 Stunden. Danach wurden in al- len Fermentern Zelldichten von 40 bis 45 g/1 Biotrockenmasse bestimmt .
Am Ende der Fermentation wurden Proben entnommen und der Gehalt von L~Cystein und den davon abgeleiteten Derivaten im Kulturüberstand (L-Cystin und Thiazolidin) und im Niederschlag (L-Cystin) jeweils getrennt voneinander bestimmt (s. Tabellen 1 und 2) . Zu diesem Zweck wurde prinzipiell der colorimetri- sche Ninhydrin-Test von Gaitonde verwendet (Gaitonde, M. K. (1967), Biochem. J. 104, 627-633). Dabei ist zu beachten, dass unter den stark sauren Reaktionsbedingungen des Tests nicht nur freies L-Cystein, sondern auch das im Thiazolidin gebundene L-Cystein mit erfasst und quantifiziert wird. Im Kultur~ überstand gelöstes L-Cystin wird im Ninhydrin-Test von Gaiton- de nach Reduktion mit Dithiothreitol (DTT) in verdünnter Lösung bei pH 8,0 ebenfalls als L-Cystein nachgewiesen. Das im Niederschlag befindliche L-Cystin musste zuerst in 8% Salzsäure aufgelöst werden, bevor es auf dieselbe Art quantifiziert werden konnte .
Zur differentiellen Quantifizierung der im Kulturüberstand gelösten Komponenten L-Cystein, L-Cystin und Thiazolidin wurden zusätzlich zwei weitere Testmethoden angewandt: Die Quantifizierung von freiem L-Cystein erfolgte durch den von Sang-Han Lee et al . (1995, Biochemical and Biophysical Research Commu- nications 213, 837ff) beschriebenen Test mittels 5,5'-
Dithiobis-2~nitrobenzoesäure (DTNB) , womit freie SH-Gruppen spezifisch nachgewiesen werden können. Die Differenzierung von L-Cystein und den Derivaten L-Cystin und Thiazolidin erfolgte mittels einer HPLC-Methode , wie in Daßler et al . {2000,
Molecular Microbiology 36, llOlff) beschrieben.
Tabelle 1 : Gehalt von L-Cystein und. L-Cystein-Derivaten in der Kulturbrühe von E. coli nach 24 h in Abhängigkeit von der Eisenkonzentration im Medium
Figure imgf000016_0001
1 : L-Cystein im Überstand (DTNB-Test)
2 : gelöstes L-Cystin im Überstand (HPLC)
3: Thiazolidin im Überstand (HPLC)
4 : L-Cystin im Niederschlag 5: Anteil von L-Cystein am Gesamtcystein
Tabelle 2 : Gehalt von L-Cystein und L-Cystein-Derivaten in der Kulturbrühe von P. ananatis nach 24 h in Abhängigkeit von der Eisenkonzentration im Medium
Figure imgf000017_0001
L-Cystein im überstand (DTNB-Test)
gelöstes L-Cystin im Uberstand (HPLC)
Thiazolidin im Überstand (HPLC)
L-Cystin im Niederschlag
Anteil von L-Cystein am Gesamtcystein

Claims

Patentansprüche
Verfahren zur fermentativen Herstellung von natürlichem L-Cystein in einem Produktionsfermenter bei dem ein Mik- roorganismenstamm in einem Fermentationsmedium kultiviert wird, dadurch gekennzeichnet, dass durch eine Eisenkonzentration von maximal 8 mg/1 im Fermentationsmedium der Anteil der hergestellten Verbindungen L-Cystein, L-Cystin und Thiazolidin im Fermentationsmedium gezielt kontrolliert wird.
Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die Eisenkonzentration im Fermentationsmedium bei maximal 4 mg/1, bevorzugt bei maximal 2 mg/1 Eisen liegt.
Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Eisenkonzentration im Fermentationsmedium 0,2 mg/1 nicht unterschreitet.
Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass keine reduzierenden Agenzien wie Vitamin C, Vitamin E oder Ameisensäure und deren Salze zuge¬ geben werden.
Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch ge¬ kennzeichnet, dass als Mikroorganismenstam ein Vertreter aus der Familie der Enterobacteriaceae, bevorzugt ein Vertreter der Gattungen Escherichia oder Pantoea, besonders bevorzugt ein Stamm der Spezies E. coli oder P. ana- natis eingesetzt wird.
Verfahren gemäß Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass der Mikroorganismen tamm entweder eine veränderte Serin- O-Acetyl -Transferase besitzt, die im Vergleich zu dem entsprechenden Wildtypenzym eine um mindestens einen Faktor 2 verminderte Feedback-Hemmung durch L-Cystein aufweist, oder die durch Überexpression eines Effluxgens einen um mindestens den Faktor 2 erhöhten Cystein-Export aus der Zelle im Vergleich zu einer Wildtypzelle aufweist .
. Verfahren gemäß Anspruch 6 , dadurch gekennzeichnet, dass der Mikroorganismenstamm sowohl eine veränderte Serin-O- Acetyl- ransferase besitzt, die im Vergleich zu dem entsprechenden Wildtypenzym eine um mindestens einen Faktor 2 verminderte Feedback-Hemmung durch L-Cystein aufweist, als auch durch Überexpression eines Effluxgens einen um mindestens den Faktor 2 erhöhten Cystein-Export aus der Zelle im Vergleich zu einer Wildtypzelle aufweist.
. Verfahren gemäß Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, dass der Mikroorganismenstamm zusätzlich eine veränderte 3- Phosphoglycerat-Dehydrogenase mit einer im Vergleich zu dem entsprechenden Wildtypenzym um mindestens den Faktor 2 verminderten Feedback-Hemmung durch L-Serin besitzt und bei dem mindestens ein L-Cy tein-abbauendes Enzym soweit abgeschwächt ist, dass in der Zelle nur noch maximal 50 % dieser Enzym-Aktivität im Vergleich zu einer Wildtypzelle vorhanden ist.
. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 8, dadurch gekennzeichnet, dass die Kultivierung der Zellen in einem Fermenter mit einem Nennvolumen ^ 1 m3 bevorzugt in einem Fermenter mit einem Nennvolumen ^ 5 m3, ganz besonders bevorzugt mit einem Nennvolumen ^ 50 m3 durchgeführt wird.
0. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 9 , dadurch gekennzeichnet, dass im Fermentationsmedium eine Thiosul- fat-Konzentration unter 5 g/1, bevorzugt unter 3 g/1, besonders bevorzugt unter 1 g/1, ganz besonders bevorzugt unter 0,5 g/1 vorliegt, eine Konzentration von 0,1 g/1 jedoch nicht unterschritten wird.
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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WO2021197632A1 (de) 2020-04-03 2021-10-07 Wacker Chemie Ag Biokatalysator als kernkomponente eines enzymkatalysierten redoxsystems zur biokatalytischen reduktion von cystin
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Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE102012216527A1 (de) * 2012-09-17 2014-03-20 Wacker Chemie Ag Verfahren zur fermentativen Produktion von L-Cystein und Derivaten dieser Aminosäure
DE102013218232A1 (de) * 2013-09-11 2015-03-12 Wacker Chemie Ag Verfahren zur fermentativen Herstellung von Gamma-Glutamyl-cystein und Derivaten dieses Dipeptids
US10172380B2 (en) 2014-03-31 2019-01-08 Impossible Foods Inc. Ground meat replicas
EP3558031A1 (de) * 2016-12-22 2019-10-30 DSM IP Assets B.V. Enzymatische reduktion von cystin
AU2018251872B2 (en) * 2017-04-13 2024-01-04 Mgpi Processing, Inc. L-cysteine-treated proteins with altered functionalities and preparation thereof
KR20190092951A (ko) 2018-01-31 2019-08-08 씨제이제일제당 (주) 연속식 크로마토그래피 공정을 이용한 천연 l-시스테인 결정의 제조 방법
KR20190092950A (ko) 2018-01-31 2019-08-08 씨제이제일제당 (주) 연속식 크로마토그래피 공정을 이용한 천연 l-시스테인 염산염 수화물 결정의 제조 방법

Citations (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0620853A1 (de) 1991-12-12 1994-10-26 Wacker Chemie Gmbh Materialien und verfahren zur biosynthese von serinen und serinverwandten produkten.
EP0931833A2 (de) 1998-01-12 1999-07-28 Ajinomoto Co., Inc. Methode zur Herstellung von L-Serin mittels Fermentation
US5972663A (en) 1997-06-19 1999-10-26 Consortium Fur Elektrochemische Industrie Gmbh Microorganisms and processes for the fermentative preparation of L-cysteine, L-cystine, N-acetylserine or thiazolidine derivatives
US6218168B1 (en) 1995-10-26 2001-04-17 CONSORTIUM FüR ELEKTROCHEMISCHE INUDSTRIE GMBH Process for preparing O-acetylserine, L-cysteine and L-cysteine-related products
CA2386539A1 (en) 1999-10-14 2001-04-19 Thomas Maier Method for production of l-cysteine or l-cysteine derivatives by fermentation
EP1234874A1 (de) * 2001-02-09 2002-08-28 Ajinomoto Co., Ltd. L-cystein herstellendes Bakterium und Verfahren zur Herstellung von L-cystein
EP1389427A1 (de) 2002-08-16 2004-02-18 Degussa AG Schwefelhaltige Tierfutterzusätze
US20040038352A1 (en) 2002-07-19 2004-02-26 Consortium Fur Elektrochemische Industrie Gmbh Method for fermentative production of amino acids and amino acid derivatives of the phosphoglycerate family
US20040113373A1 (en) 2002-12-10 2004-06-17 Kuipers Erwin Reinder Device for sealing a gap between car door and car wall in an elevator car
WO2004113373A1 (en) 2003-06-21 2004-12-29 University Of Sheffield Overexpression of the cyddc transporter
EP1571223A2 (de) 2004-03-04 2005-09-07 Ajinomoto Co., Inc. Verfahren zur Herstellung von L-Cystein, und L-Cystein-produzierender Mikroorganismus
US20050221453A1 (en) 2004-03-31 2005-10-06 Ajinomoto Co., Inc L-cysteine producing microorganism and method for producing L-cysteine
WO2006088231A1 (en) * 2005-02-18 2006-08-24 Ajinomoto Co., Inc. A method for producing a non-aromatic l-amino acid using a bacterium of the enterobacteriaceae family having expression of the csra gene attenuated
EP1769080A1 (de) 2004-07-20 2007-04-04 Basf Aktiengesellschaft Mikroorganismen zur herstellung von schwefelhaltigen verbindungen
US20080190854A1 (en) 2007-02-14 2008-08-14 Wacker Chemie Ag Process For Purifying L-Cysteine
US7582460B2 (en) 2003-07-10 2009-09-01 Wacker Chemie Ag 3-phosphoglycerate dehydrogenase variants whose inhibition by L-serine is reduced, and genes encoding them
EP2133429A1 (de) 2008-03-06 2009-12-16 Ajinomoto Co., Inc. L-Zystein-produzierendes Bakterium und Verfahren zur Herstellung von L-Zystein
EP2138585A1 (de) 2008-03-06 2009-12-30 Ajinomoto Co., Inc. L-Zystein-produzierendes Bakterium und Verfahren zur Herstellung von L-Zystein
EP2246420A1 (de) * 2008-02-21 2010-11-03 Ajinomoto Co., Inc. L-cystein-produzierendes bakterium und verfahren zur herstellung von l-cystein
WO2011065469A1 (ja) * 2009-11-30 2011-06-03 味の素株式会社 Ｌ－システイン生産菌及びｌ－システインの製造法

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS637790A (ja) * 1986-06-30 1988-01-13 Mitsui Toatsu Chem Inc 酵素によるｌ−システインの製造方法
JP2010022215A (ja) * 2008-07-15 2010-02-04 Ajinomoto Co Inc Ｌ−システインの製造方法
JP5662167B2 (ja) * 2009-02-09 2015-01-28 協和発酵バイオ株式会社 Ｌ−アミノ酸の製造法

Patent Citations (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0620853A1 (de) 1991-12-12 1994-10-26 Wacker Chemie Gmbh Materialien und verfahren zur biosynthese von serinen und serinverwandten produkten.
US6218168B1 (en) 1995-10-26 2001-04-17 CONSORTIUM FüR ELEKTROCHEMISCHE INUDSTRIE GMBH Process for preparing O-acetylserine, L-cysteine and L-cysteine-related products
US5972663A (en) 1997-06-19 1999-10-26 Consortium Fur Elektrochemische Industrie Gmbh Microorganisms and processes for the fermentative preparation of L-cysteine, L-cystine, N-acetylserine or thiazolidine derivatives
EP0931833A2 (de) 1998-01-12 1999-07-28 Ajinomoto Co., Inc. Methode zur Herstellung von L-Serin mittels Fermentation
CA2386539A1 (en) 1999-10-14 2001-04-19 Thomas Maier Method for production of l-cysteine or l-cysteine derivatives by fermentation
EP1234874A1 (de) * 2001-02-09 2002-08-28 Ajinomoto Co., Ltd. L-cystein herstellendes Bakterium und Verfahren zur Herstellung von L-cystein
US20030077766A1 (en) 2001-02-09 2003-04-24 Ajinomoto Co. Inc. L-cysteine producing bacterium and method for producing L-cysteine
US20040038352A1 (en) 2002-07-19 2004-02-26 Consortium Fur Elektrochemische Industrie Gmbh Method for fermentative production of amino acids and amino acid derivatives of the phosphoglycerate family
EP1389427A1 (de) 2002-08-16 2004-02-18 Degussa AG Schwefelhaltige Tierfutterzusätze
US20040113373A1 (en) 2002-12-10 2004-06-17 Kuipers Erwin Reinder Device for sealing a gap between car door and car wall in an elevator car
WO2004113373A1 (en) 2003-06-21 2004-12-29 University Of Sheffield Overexpression of the cyddc transporter
US7582460B2 (en) 2003-07-10 2009-09-01 Wacker Chemie Ag 3-phosphoglycerate dehydrogenase variants whose inhibition by L-serine is reduced, and genes encoding them
EP1571223A2 (de) 2004-03-04 2005-09-07 Ajinomoto Co., Inc. Verfahren zur Herstellung von L-Cystein, und L-Cystein-produzierender Mikroorganismus
US20100093045A1 (en) 2004-03-04 2010-04-15 Hiroshi Takagi L-cysteine producing microorganism and a method for producing l-cysteine
US20050221453A1 (en) 2004-03-31 2005-10-06 Ajinomoto Co., Inc L-cysteine producing microorganism and method for producing L-cysteine
EP1769080A1 (de) 2004-07-20 2007-04-04 Basf Aktiengesellschaft Mikroorganismen zur herstellung von schwefelhaltigen verbindungen
US20090053778A1 (en) 2004-07-20 2009-02-26 France Telecom Microorganisms for producing sulfur-containing compounds
WO2006088231A1 (en) * 2005-02-18 2006-08-24 Ajinomoto Co., Inc. A method for producing a non-aromatic l-amino acid using a bacterium of the enterobacteriaceae family having expression of the csra gene attenuated
US20080190854A1 (en) 2007-02-14 2008-08-14 Wacker Chemie Ag Process For Purifying L-Cysteine
EP2246420A1 (de) * 2008-02-21 2010-11-03 Ajinomoto Co., Inc. L-cystein-produzierendes bakterium und verfahren zur herstellung von l-cystein
EP2133429A1 (de) 2008-03-06 2009-12-16 Ajinomoto Co., Inc. L-Zystein-produzierendes Bakterium und Verfahren zur Herstellung von L-Zystein
EP2138585A1 (de) 2008-03-06 2009-12-30 Ajinomoto Co., Inc. L-Zystein-produzierendes Bakterium und Verfahren zur Herstellung von L-Zystein
WO2011065469A1 (ja) * 2009-11-30 2011-06-03 味の素株式会社 Ｌ－システイン生産菌及びｌ－システインの製造法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DASSLER ET AL., MOLECULAR MICROBIOLOGY, vol. 36, 2000, pages 1101FF
GAITONDE, M. K., BIOCHEM. J., vol. 104, 1967, pages 627 - 633
KREDICH: "Escherichia coli and Salmonella: cellular and molecular biology", 1996, ASM PRESS, article "Biosynthesis of cysteine", pages: 514 - 527
SANG-HAN LEE ET AL., BIOCHEMICAL AND BIOPHYSICAL RESEARCH COMMUNICATIONS, vol. 213, 1995, pages 837FF

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2021197632A1 (de) 2020-04-03 2021-10-07 Wacker Chemie Ag Biokatalysator als kernkomponente eines enzymkatalysierten redoxsystems zur biokatalytischen reduktion von cystin
WO2023165684A1 (de) * 2022-03-01 2023-09-07 Wacker Chemie Ag Verbesserte cystein produzierende stämme

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