WO2012039097A1 - 細胞分析装置 - Google Patents

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WO2012039097A1
WO2012039097A1 PCT/JP2011/004868 JP2011004868W WO2012039097A1 WO 2012039097 A1 WO2012039097 A1 WO 2012039097A1 JP 2011004868 W JP2011004868 W JP 2011004868W WO 2012039097 A1 WO2012039097 A1 WO 2012039097A1
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dispersion
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sample
cell
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俊宏 大谷
海老 龍一郎
功規 田島
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シスメックス株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a cell analyzer, and more particularly to a cell analyzer that analyzes cells contained in a biological sample collected from a living body.
  • a cervical epithelial cell contained in a sample collected from the subject's cervix is measured with a flow cytometer to There is known a cell analyzer for screening cells or atypical cells (see, for example, Patent Document 1).
  • the cell analysis device described in Patent Document 1 includes a cell dispersion portion for forcibly dispersing aggregated cells contained in a biological sample in a biological container, and cells in a measurement sample subjected to dispersion processing by the cell dispersion portion.
  • the system includes a flow cytometer to be measured, and a data processor for analyzing measurement data obtained by the flow cytometer to determine whether cells in a measurement sample are cancerous or not.
  • a cell analyzer disperses cells aggregated in a biological sample by a first dispersion process and a second dispersion process different from the first dispersion process.
  • the detection unit that detects feature information reflecting the characteristics of the cells contained in the biological sample on which the first dispersion process and the second dispersion process have been performed, and the biological sample is included in the biological sample based on the detection result by the detection unit And an analysis unit for analyzing cells.
  • a cell dispersion unit that performs a second dispersion process different from the first dispersion process and the first dispersion process on a biological sample, the first dispersion process, and the first dispersion process (2)
  • a plurality of dispersions of different types are provided by providing a detection unit that detects characteristic information of predetermined cells included in the biological sample for which the dispersion processing has been performed, and an analysis unit that analyzes the predetermined cells based on the detection result Since processing can be performed on a biological sample, cells can be dispersed effectively even when the degree of cell aggregation in the biological sample is high.
  • the aggregated cells can be sufficiently dispersed into single cells, so that highly accurate cell detection can be performed.
  • highly accurate cell analysis can be performed based on the highly accurate detection result.
  • the cell dispersion unit includes a first dispersion unit that executes the first dispersion process, and a second dispersion unit that executes the second dispersion process.
  • a first dispersion unit that executes the first dispersion process
  • a second dispersion unit that executes the second dispersion process.
  • a detection unit for detecting a cell contained in a biological sample and a measurement provided on a detection unit from a biological sample based on a detection result by the auxiliary detection unit.
  • a sample preparation unit for preparing a sample, and the cell dispersion unit is configured to execute at least one of the first dispersion process and the second dispersion process before detection by the sub-detection unit. According to this structure, by preparing the measurement sample based on the detection result of the auxiliary detection unit, it is possible to prepare a measurement sample suitable for detection by the detection unit.
  • the cell analysis device preferably further comprises a staining solution addition unit for adding a staining solution for staining cells to a biological sample, and the staining solution addition unit is provided after the first dispersion treatment and the second dispersion treatment.
  • a staining solution addition unit for adding a staining solution for staining cells to a biological sample
  • the staining solution addition unit is provided after the first dispersion treatment and the second dispersion treatment.
  • the first dispersion process is a shear force application process for applying a shear force to the aggregated cells
  • the second dispersion process is an ultrasonic dispersion process for dispersing the aggregated cells using ultrasonic waves. It is.
  • the relatively large aggregated cells can be effectively dispersed by the shearing force application process, and the relatively small aggregated cells can be effectively dispersed by the ultrasonic dispersion process. Therefore, staining for individual cells dispersed by the shearing treatment and the ultrasonic dispersion can be performed more reliably.
  • one of the first dispersion treatment and the second dispersion treatment is a shear force application treatment for applying a shear force to the aggregated cells.
  • the first dispersion portion includes a sample storage portion for storing a biological sample, a rotor, and a pipe for containing the rotor, and the opening at the tip of the pipe is perforated.
  • the member is attached, the side wall of the pipe is provided with an opening, and the first dispersion part is provided on the perforated member by rotating the rotor with the rotor and the pipe inserted in the sample storage part while circulating the biological sample between the hole and the opening of the side wall of the pipe, the aggregated cells contained in the biological sample are dispersed.
  • one of the first dispersion treatment and the second dispersion treatment is an ultrasonic dispersion treatment in which aggregated cells are dispersed using ultrasonic waves.
  • cavitation bubble generation and rupture
  • the aggregated cells can be dispersed. Since the bubbles generated by the ultrasonic waves are fine, uniform dispersion effects with less bias can be obtained, and it is also possible to suppress an increase in damage to cells involved in the dispersion treatment.
  • the ultrasonic dispersion treatment of one of the first dispersion treatment and the second dispersion treatment has a smaller amount of biological material than the amount of the biological sample on which the other of the first dispersion treatment and the second dispersion treatment is performed. It is configured to be performed on a sample.
  • the ultrasonic dispersion processing can be performed on a small amount of biological sample, so that the ultrasonic dispersion apparatus can be miniaturized. By miniaturizing the ultrasonic dispersion apparatus, it is possible to reduce the generation of noise and the like caused by the generation of ultrasonic waves.
  • by performing ultrasonic dispersion processing on a small amount of biological sample it is easy to apply ultrasonic vibration uniformly to the entire biological sample, so that a high dispersion effect can be easily obtained.
  • the first dispersion process is a shear force application process for applying a shear force to the aggregated cells
  • the second dispersion process uses the ultrasonic waves for the aggregated cells.
  • the dispersion processing is ultrasonic dispersion processing
  • the cell dispersion unit is configured to execute the second dispersion processing after the execution of the first dispersion processing.
  • the cell dispersion unit includes a first dispersion unit that performs the first dispersion process and a second dispersion unit that performs the second dispersion process, and the first dispersion unit accommodates the biological sample.
  • the first dispersion process is performed on the biological sample stored in the sample storage unit, and the cell analyzer performs the first dispersion process on the biological sample in the sample storage unit on which the first dispersion process has been performed.
  • the sample dispensing unit dispenses only the amount of biological sample necessary for detection by the detection unit to the sample container, and only the biological sample dispensed to the sample container.
  • the second distributed processing can be performed efficiently.
  • the second dispersion unit includes a liquid storage unit for storing a liquid to which ultrasonic waves are applied, and the container transfer unit holds the sample container. Configured to immerse the sample container in the liquid contained in the liquid storage unit while holding the sample container containing the biological sample dispensed by the sample dispensing unit. ing.
  • the second dispersion process (ultrasonic dispersion process) can be performed while the biological sample is stored in the sample container without suctioning or discharging the biological sample from the sample container. .
  • one of the first dispersion treatment and the second dispersion treatment is a dispersion addition treatment in which a dispersion is added to a biological sample to disperse aggregated cells.
  • aggregated cells can be chemically dispersed into single cells by the addition of the dispersion.
  • the dispersion is a surfactant. According to this structure, it is possible to effectively disperse the aggregated cells by the addition of the surfactant.
  • the detection unit applies a flow cell for passing the biological sample, a light source unit for applying light to the biological sample passing the flow cell, and the light source applies light to the biological sample. And a light receiving unit for receiving light generated thereby.
  • the detection by flow cytometry can be performed on the individual cells effectively dispersed by the first dispersion processing and the second dispersion processing. It can be improved.
  • the cell is an epithelial cell
  • the analysis unit is configured to analyze whether or not the detected epithelial cell is atypical.
  • FIG. 11 It is a longitudinal cross-sectional view of the 1st dispersion
  • the cell analyzer 1 a measurement sample containing cells collected from a patient is flowed to a flow cell, and the measurement sample flowing through the flow cell is irradiated with laser light. Then, light (forward scattered light, side fluorescence, etc.) from the measurement sample is detected and the light signal is analyzed to determine whether the cells contain cancer cells. More specifically, the cell analysis device 1 according to the first embodiment analyzes epithelial cells of the cervix and is used to screen cervical cancer.
  • the cell analysis device 1 performs a cell dispersion process, a staining process, etc. on a biological sample collected from the cervix of a subject to prepare a measurement sample, and a laser beam is applied to the measurement sample.
  • a data processing device 4 that analyzes the measurement result of the measurement device 2 and the like.
  • the measurement apparatus 2 includes a main detection unit 21, a signal processing unit 22, a measurement control unit 23, and an I / O interface 24.
  • the measurement apparatus 2 further includes a sub-detection unit 31, a signal processing unit 32, a preparation control unit 33, and a preparation device unit 35 for automatically performing component adjustment on a biological sample.
  • the main detection unit 21 has a function of detecting the number and size of cells to be measured (epithelial cells of the cervix) and their nuclei from the measurement sample.
  • the flow cytometer 10 shown in FIG. 5 and FIG. 6 is adopted as the main detection unit 21.
  • the signal processing unit 22 includes a signal processing circuit that performs necessary signal processing on the output signal from the main detection unit 21.
  • the measurement control unit 23 also includes a microprocessor 25 and a storage unit 26.
  • the storage unit 26 includes a ROM that stores control programs and data of the main detection unit 21 and the like, a RAM, and the like.
  • the microprocessor 25 of the measurement control unit 23 is connected to the data processing device 4 and a later-described microprocessor 36 of the preparation control unit 33 via the I / O interface 24. Thereby, it is possible to transmit and receive various data between the data processor 4 and the microprocessor 36 of the preparation control unit 33.
  • the sub-detection unit 31 has a function of detecting the number of cells to be measured included in the biological sample.
  • a flow cytometer 10 substantially the same as that shown in FIGS. 5 and 6 is adopted for the sub-detection unit 31 as well.
  • the signal processing unit 32 includes a signal processing circuit that performs necessary signal processing on the output signal from the sub-detection unit 31.
  • the preparation control unit 33 includes a microprocessor 36, a storage unit 37, a sensor driver 38, and a drive unit driver 39.
  • the storage unit 37 includes a ROM, which stores a control program for controlling the secondary detection unit 31, the preparation device unit 35, and the like, a RAM, and the like.
  • the preparation device unit 35 includes a sample setting unit 50, a first dispersion unit 51, a sample pipette unit 52, a discrimination / replacement unit 53, a container transfer unit 54, a second dispersion unit 55, a liquid removal unit 56, and the like.
  • a reaction unit 57, a first reagent adding unit 58a, a second reagent adding unit 58b, a sample suction unit 59, and a container cleaning unit 66 are mainly included.
  • the sample setting unit 50 is for setting a plurality of biological containers 6 containing a mixed solution of a preservation solution mainly containing methanol and a biological sample.
  • the sample setting unit 50 has a function of sequentially transporting the set biological container 6 to the suction position of the biological sample by the sample pipette unit 52.
  • the first dispersion unit 51 has a function of performing on the biological sample a first dispersion process for dispersing aggregated cells contained in the biological sample.
  • the first dispersion process is a shear force application process in which the aggregated cells are dispersed by applying a shear force.
  • the first dispersion unit 51 includes a sample storage unit 51a capable of storing a biological sample, and is configured to mechanically apply shear force to aggregated cells in the biological sample supplied to the sample storage unit 51a. There is. The configuration of the first distribution unit 51 will be described in detail later.
  • the sample pipette unit 52 has a function of transferring the biological sample in the biological container 6 to the first dispersion unit 51, and a function of transferring the biological sample in the first dispersion unit 51 to the discrimination / substitution unit 53 and the sub-detection unit 31. And the function of supplying the concentrate concentrated in the discrimination / substitution unit 53 to the measurement sample container 7.
  • the sample pipette unit 52 is positioned at the sample storage unit 51a of the first dispersion unit 51, the discrimination / replacement unit 53, the sample loading unit 31a of the sub detection unit 31, and the sample delivery unit 52b. It is configured to be movable to the upper position of the sample container 7 and the like.
  • the sample pipette unit 52 also has a pipette 52a for aspirating and discharging a biological sample, and quantifies the biological sample by a sample quantitative unit (not shown) (having a quantitative cylinder, a motor for driving a piston in the quantitative cylinder, etc.) It is configured to be able to supply a predetermined amount of biological sample to the above-described portions.
  • the discrimination / substitution unit 53 has a function of receiving the mixed solution of the biological sample and the preservation solution after the first dispersion processing by the first dispersion unit 51, and replacing the preservation solution containing methanol as a main component with a diluting solution. Further, the discrimination / substitution unit 53 has a function of discriminating between the measurement target cell contained in the biological sample and the other cells (red blood cells, white blood cells, bacteria, etc.). Further, the discrimination / substitution unit 53 has a function of concentrating cells to be measured (epithelial cells) contained in a biological sample in order to obtain the number of cell measurements necessary for measurement by the main detection unit 21. Two discrimination / replacement units 53 are provided for the purpose of processing efficiency. In addition, since it is possible to employ
  • the container transfer unit 54 holds the measurement sample container 7 set in the reaction unit 57 by the user with the scissors-like holding unit 54 a, and transfers the sample delivery unit 52 b, the second dispersion unit 55, and the liquid removal unit 56. It has a function of transferring the measurement sample container 7 to the reaction unit 57.
  • the container transfer unit 54 is configured to move the gripping unit 54 a along a circumferential trajectory C around a predetermined rotation center. Moreover, the container transfer part 54 is comprised so that it can move the holding part 54a to an up-down direction.
  • the sample delivery unit 52b, the second dispersion unit 55, the liquid removing unit 56, and the reaction unit 57 are disposed on the circumferential locus C. Thus, the measurement sample container 7 set in the reaction unit 57 by the user can be gripped by the gripping unit 54 a of the container transfer unit 54 and transferred to each unit on the circumferential trajectory C.
  • the second dispersion unit 55 has a function of performing a second dispersion process different from the first dispersion process on the biological sample on which the first dispersion process is performed by the first dispersion unit 51.
  • the second dispersion process is an ultrasonic dispersion process in which aggregated cells are dispersed using ultrasonic waves. Specifically, in the second dispersion unit 55, the first dispersion process by the first dispersion unit 51 is executed, and the biological sample concentrated (in the concentration of the measurement target cell is increased) in the discrimination / substitution unit 53 is exceeded. It is configured to apply sonic vibration.
  • the second dispersion process (ultrasonic dispersion process) is configured to be performed on a smaller amount of biological sample than the amount of the biological sample on which the first dispersion process is performed. ing. Thereby, the second dispersion unit 55 disperses the aggregated cells remaining after the first dispersion process into single cells.
  • the cell dispersion unit of the cell analyzer 1 is configured by the first dispersion unit 51 that executes the first dispersion process and the second dispersion unit 55 that executes the second dispersion process. ing. The configuration of the second dispersion unit 55 will be described in detail later.
  • the liquid removing unit 56 has a function of removing (draining) the liquid adhering to the outer surface of the measurement sample container 7 after the second dispersion processing by the second dispersion unit 55.
  • the second dispersion process is performed in a state where the measurement sample container 7 is immersed in the liquid 113 (see FIG. 15) as described later.
  • the liquid removing unit 56 removes water droplets adhering to the outer surface of the measurement sample container 7 by supplying an air flow to the outer surface of the measurement sample container 7 in a state where the measurement sample container 7 is set in the installation port 56a. Is configured as. Thereby, when the measurement sample container 7 is set to each part such as the reaction part 57, the liquid is prevented from adhering to each part.
  • the reaction unit 57 has a function of promoting the reaction between the biological sample in the measurement sample container 7 and the reagent added by the first reagent adding unit 58a and the second reagent adding unit 58b.
  • the reaction unit 57 includes a circular rotary table 57 a configured to be rotatable by a drive unit (not shown). At the outer peripheral edge of the rotary table 57a, a plurality of holders 57b capable of setting the measurement sample container 7 are provided. The measurement sample container 7 is set by the user in the holder 57b.
  • the locus of the holding part 57b due to the rotation of the rotary table 57a and the circumferential locus C of the holding part 54a of the container transfer part 54 intersect at a predetermined position, and the container transfer part 54 is a measurement sample container at this intersection position.
  • 7 is configured to be able to be set in the holding portion 57b.
  • the reaction unit 57 has a function of promoting the reaction between the biological sample and the reagent by heating the measurement sample container 7 set in the holding unit 57b to a predetermined temperature.
  • Each of the first reagent adding unit 58a and the second reagent adding unit 58b has a function of supplying a reagent into the measurement sample container 7 set in the holding unit 57b of the reaction unit 57 (rotation table 57a).
  • the first reagent adding portion 58a (the second reagent adding portion 58b) is disposed at a position near the peripheral portion of the rotary table 57a, and the first reagent adding position P1 above the measurement sample container 7 set on the rotary table 57a It has the supply part 58c (58d) which can move to the second reagent addition position P2).
  • the reagent added by the first reagent adding unit 58a is an RNase for treating RNA to cells
  • the reagent added by the second reagent adding unit 58b is for PI staining. It is a staining solution.
  • the RNA treatment is a treatment for degrading RNA in cells, and this treatment makes it possible to measure only the DNA of the cell nucleus.
  • PI staining is performed with propidium iodide (PI), a fluorescent staining solution containing a dye. In PI staining, the nucleus in the cell is selectively stained, so that the fluorescence from the nucleus can be detected.
  • addition of reagents RNase and staining solution
  • the sample suction unit 59 has a function of sucking the measurement sample in the measurement sample container 7 set on the reaction unit 57 (rotary table 57a) and transferring the measurement sample to the main detection unit 21 (see FIG. 2).
  • the sample suction unit 59 is installed at a position near the periphery of the rotary table 57a, and has a pipette 59a movable to a suction position P3 above the measurement sample container 7 set on the rotary table 57a.
  • the sample suction unit 59 is connected to a later-described flow cell 13 (see FIGS.
  • the biological sample is aspirated by the sample aspirating portion 59 without intervention of other processes after the processing by the first reagent adding portion 58a and the second reagent adding portion 58b. . Therefore, the detection by the main detection unit 21 is performed immediately after the completion of the processing by the first reagent adding unit 58a and the second reagent adding unit 58b.
  • the container washing unit 66 has a function of washing the inside of the measurement sample container 7 after the measurement sample is supplied to the main detection unit 21 by the sample suction unit 59.
  • the container washing unit 66 is configured to wash the inside of the measurement sample container 7 by discharging the washing liquid into the measurement sample container 7 held by the holding part 57b of the rotary table 57a. Thereby, when the same measurement sample container 7 is used in the subsequent measurement processing, it becomes possible to suppress contamination with other biological samples.
  • the microprocessor 36 of the preparation control unit 33 is connected to the microprocessor 25 of the measurement control unit 23 via the I / O interface 24.
  • various data can be transmitted and received to and from the microprocessor 25 of the measurement control unit 23.
  • the microprocessor 36 of the preparation control unit 33 controls the respective units of the preparation device unit 35 (the sample setting unit 50, the first dispersion unit 51, the sample pipette unit 52, discrimination / replacement via the sensor driver 38 or the drive unit driver 39). Connection with sensors of the unit 53, container transfer unit 54, second dispersion unit 55, liquid removal unit 56, reaction unit 57, first reagent adding unit 58a, second reagent adding unit 58b and sample suction unit 59) and drive motor It is done. Thereby, the microprocessor 36 executes a control program based on the detection signal from the sensor to control the operation of the drive motor.
  • the data processing device 4 in the first embodiment is, for example, a personal computer such as a notebook PC (may be a desktop type) and is mainly composed of a processing main body 41, a display unit 42 and an input unit 43. Is configured.
  • the processing main body 41 includes a CPU 41a, a ROM 41b, a RAM 41c, a hard disk 41d, a reading device 41e, an image output interface 41f, and an input / output interface 41g. These units are communicably connected by an internal bus It is done.
  • An operation program 44 is installed which performs reception and analysis processing of the measurement result performed in step S. 2 and display of the processed analysis result.
  • the operation program 44 operates on an operating system.
  • An input unit 43 including a keyboard and a mouse is connected to the input / output interface 41g.
  • the input / output interface 41g is also connected to the I / O interface 24 (see FIG. 2) of the measuring device 2 (see FIG. 2). Thereby, it is possible to transmit and receive data between the measuring device 2 and the data processing device 4.
  • the lens system 11 of the flow cytometer 10 has a function of condensing the laser light from the semiconductor laser 12 as a light source on the measurement sample flowing through the flow cell 13 which passes the biological sample.
  • the condenser lens 14 has a function of condensing forward scattered light of cells in the measurement sample on a scattered light detector composed of the photodiode 15.
  • the lens system 11 includes, in order from the semiconductor laser 12 side (left side in FIG. 6), the collimator lens 11a, the cylinder lens system (plano-convex cylinder lens 11b + bi-concave cylinder lens 11c), and It comprises a condenser lens system (condenser lens 11 d + condenser lens 11 e).
  • the side condensing lens 16 has a function of condensing the side scattered light and the side fluorescence of the cell to be measured and the nucleus in the cell on the dichroic mirror 17.
  • the dichroic mirror 17 is configured to reflect side scattered light to the photomultiplier (photomultiplier tube) 18 and to transmit side fluorescence to the photomultiplier (photoelectron multiplier tube) 19. . These lights reflect the characteristics of cells and nuclei in the measurement sample.
  • the photodiode 15 and the photomultipliers 18 and 19 convert the received light signal into an electric signal, and respectively forward scatter light signal (FSC), side scatter light signal (SSC) and side fluorescence signal ( Output SFL).
  • FSC forward scatter light signal
  • SSC side scatter light signal
  • Output SFL side fluorescence signal
  • These output signals are amplified by a preamplifier (not shown) and sent to the signal processing unit 22 (see FIG. 2) of the measuring device 2.
  • the respective signals FSC, SSC, SFL processed by the signal processing unit 22 of the measuring device 2 are respectively transmitted from the I / O interface 24 to the data processing device 4 by the microprocessor 25.
  • the CPU 41a of the data processing apparatus 4 executes the operation program 44 to acquire feature parameters such as forward scattered light intensity and side fluorescence intensity based on the respective signals FSC, SSC and SFL, and use these feature parameters as Based on it, create frequency distribution data to analyze cells and nuclei. Then, the CPU 41a performs discrimination processing of particles in the measurement sample based on the frequency distribution data, and whether or not the measurement target cell (epithelial cell) is abnormal, specifically, cancerous cell (atypical cell) It is determined whether or not
  • the sub-detection unit 31 adopts the flow cytometer 10 having substantially the same configuration as the main detection unit 21 as described above, the detailed description will be omitted. Since the sub-detection unit 31 preliminarily measures the concentration of the measurement target cell before the main measurement by the main detection unit 21, the sub-detection unit 31 measures the signal for counting the number of the cells. It is sufficient if it can be output (if it is possible to obtain forward scattered light signal (FSC)).
  • FSC forward scattered light signal
  • the first dispersion unit 51 includes a perforated member 60, a rotor 70, and a motor 80 that rotationally drives the rotor 70.
  • a pipe 90 having a function of guiding the flow of a biological sample is disposed outside the rotor 70, and a perforated member 60 is attached to an opening at the tip of the pipe 90.
  • the perforated member 60 is made of stainless steel in consideration of chemical resistance and strength, etc., so as to close the lower end of the cylindrical portion 61 and the cylindrical portion 61.
  • a bottom portion 62 which is provided and has four holes 63 is integrally formed.
  • the perforated member 60 is attached to the opening at the tip of the pipe 90.
  • the bottom 62 is circular in plan view, and has four holes 63 penetrating from the upper surface (inner surface) to the lower surface (outer surface). These holes 63 have a size that allows aggregated cells (about 100 ⁇ m to about 500 ⁇ m in size) to pass through.
  • the bottom portion 62 On the upper surface of the bottom portion 62, four protrusions 64 extending in the direction (radial direction) orthogonal to the rotational direction (the arrow R direction) of the rotor 70 in plan view and projecting in the rotor 70 side (upward) It is formed. Further, on the upper surface of the bottom portion 62, four liquid retaining portions 65 formed of concave portions bounded by the convex portions 64 are formed. As shown in FIG. 11, the thickness of the bottom portion 62 (convex portion 64) is t1 (about 1 mm), and the liquid holding portion 65 has a depth of t2 (about 0.5 mm).
  • the four holes 63 of the bottom 62 are disposed in the four liquid holding parts 65 respectively.
  • the hole 63 has an elongated shape with a width W (about 0.5 mm) and a length L (about 3.25 mm).
  • the hole 63 is formed to extend in the direction orthogonal to the arrow R direction (the rotation direction of the rotor 70). More specifically, the hole 63 is adjacent to the protrusion 64 at the end on the rotation direction (the direction of the arrow R) of the rotor 70 and is parallel to the protrusion 64 in the fan-shaped liquid retention portion 65. It is arranged to extend.
  • the hole 63 is formed to extend from the radially inner end of the fan-shaped liquid retaining portion 65 to the radially outer end.
  • the rotor 70 is made of stainless steel in consideration of chemical resistance, strength and the like as the bottom portion 62, and is disposed inside the pipe 90. As shown in FIGS. 12 and 13, the rotor 70 has a spiral groove 71 formed on the outer periphery thereof. The groove 71 is formed at a lead angle ⁇ (about 40 degrees). In addition, when the rotor 70 rotates in the direction of arrow R (see FIG. 10), the groove 71 sends the biological sample in the downward direction (direction of arrow Z2) in which the perforated member 60 is disposed by the rotation of the groove 71. It is provided.
  • the rotor 70 when the rotor 70 is rotated about the axis (the direction of the arrow R) by the motor 80, it is possible to supply the biological sample toward the lower bottom portion 62 (apply a lower propulsive force to the biological sample). Is configured as. Further, the lower end surface 72 of the rotor 70 is formed flat.
  • the lower end surface 72 of the rotor 70 and the upper surface (upper surface of the convex portion 64) of the bottom portion 62 of the perforated member 60 attached to the lower end of the pipe 90 are separated by a predetermined distance CL1.
  • This interval CL1 has a size that can not pass through aggregated cells (100 ⁇ m or more) and single cells (60 ⁇ m on average). Therefore, the interval CL1 is set in the range of 30 to 80 ⁇ m so as to be approximately equal to the size (average 60 ⁇ m) of the epithelial cells (single cells) of the cervix to be measured. In the first embodiment, this interval CL1 is about 50 ⁇ m. In FIG. 14, the space CL1 is exaggerated for the purpose of explanation.
  • the first dispersing unit 51 is configured to disperse the aggregated cells between the convex portion 64 of the perforated member 60 and the lower end surface 72 of the rotor 70 by rotating the rotor 70 by the motor 80. ing.
  • the reason that the distance CL1 is set to 30 to 80 ⁇ m is that if it is less than 30 ⁇ m, the cells may be broken, and if it exceeds 80 ⁇ m, the dispersing power given to the agglutinated cells may decrease. .
  • the upper end portion 73 of the rotor 70 is connected to the output shaft 80 a of the motor 80 via the rotation shaft 74.
  • the driving force (rotational force) of the motor 80 is transmitted to the rotor 70.
  • the motor 80 is attached to the upper surface of the support member 81.
  • a cylindrical body 82 is attached to the lower portion of the support member 81 so as to extend downward.
  • a rotating shaft 74 is rotatably supported.
  • the pipe 90 is formed of a stainless steel circular pipe having an inner diameter capable of accommodating the rotor 70 therein.
  • the upper end of the pipe 90 is connected to the cylindrical body 82 in which the rotating shaft 74 is inserted.
  • the rotor 70 attached to the rotation shaft 74 is disposed so as to surround the side and the lower side by the pipe 90 and the perforated member 60.
  • the outer periphery of the groove 70 of the rotor 70 and the inner peripheral surface of the pipe 90 are slightly separated by an interval CL2 (about 0.3 mm).
  • two elongated openings 92 are formed slightly above the position where the rotor 70 is disposed.
  • the two openings 92 are formed at positions facing each other about the core of the pipe 90.
  • the biological sample outside the pipe 90 is introduced into the pipe 90 by the opening 92 with the opening 92 as an inlet, and the rotor 70 lowers the inside of the pipe 90 from the inlet (arrow Z2 as shown in FIG. Direction).
  • the biological sample flows out to the outside of the pipe 90 with the hole 63 of the lower end perforated member 60 as the outflow port, and flows into the opening 92 (inflow port) again.
  • the second dispersion unit 55 applies ultrasonic vibration to the biological sample in the measurement sample container 7 through the liquid storage unit 111 that stores the liquid 113 such as water and the liquid 113. And an ultrasonic transducer 112.
  • the liquid storage portion 111 has a recess 114 for storing the liquid 113 at the center, and is formed in a substantially cylindrical shape. Further, at the opening of the upper end portion of the concave portion 114, a lid 115 in which a circular hole of a size capable of inserting the measurement sample container 7 is formed is provided. The lid 115 is configured to prevent the liquid 113 from scattering to the outside due to the ultrasonic vibration.
  • the ultrasonic transducer 112 has a cylindrical shape and is disposed below the liquid storage unit 111. As this ultrasonic transducer 112, for example, a known one used for cleaning of parts can be used.
  • the inner diameter D1 of the cylindrical liquid storage portion 111 is larger than the outer diameter D2 of the columnar ultrasonic transducer 112 by about several mm (for example, about 5 mm to 6 mm).
  • Ultrasonic vibration is efficiently transmitted to the liquid 113 by making the size of the region of the liquid 113 to which the ultrasonic wave is applied (the inner diameter D1 of the liquid storage portion 111) larger than the outer diameter D2 of the ultrasonic transducer 112. It is possible.
  • the liquid circulation hole 116, the upper outflow hole 117, and the overflow flow passage (hole) 118 are provided in order from the lower side in the peripheral wall of the substantially cylindrical liquid storage portion 111, and these liquid circulation holes 116, the upper portion The outflow hole 117 and the overflow channel 118 communicate with the outside of the liquid storage unit 111, respectively.
  • the liquid passage hole 116 is formed at a position near the bottom of the recess 114, and is provided to supply and discharge the liquid 113 to the liquid storage portion 111 (recess 114).
  • the liquid passage hole 116 is in communication with the liquid supply source 116 a and the liquid chamber 120 connected to the suction source 116 b via a flow path switching valve 119.
  • the flow path switching valve 119 causes the liquid supply source 116a and the liquid flow hole 116 (recess 114) to communicate with each other, and the liquid 113 is supplied from the liquid supply source 116a to the recess 114.
  • the flow channel switching valve 119 causes the liquid chamber 120 and the liquid flow hole 116 (recess 114) to communicate with each other, and the suction source 116b sucks the liquid 113 in the recess 114 to the liquid chamber 120.
  • the suction source 116b sucks the liquid 113 in the recess 114 to the liquid chamber 120.
  • the liquid sucked by the suction source 116b is discharged out of the apparatus.
  • the upper outflow hole 117 communicates with the liquid chamber 120 and has a function of discharging the liquid 113 in the recess 114. Therefore, the depth (upper limit position) d of the water surface of the liquid 113 in the recess 114 is determined by the upper outflow hole 117.
  • the node of the ultrasonic wave generated by the ultrasonic transducer 112 is positioned deep on the water surface of the liquid 113 contained in the recess 114.
  • the height d (the height position from the bottom of the recess 114 at the lower end of the upper outflow hole 117) is set.
  • the liquid flow hole 116 supplies a predetermined amount of liquid 113 into the recess 114.
  • the suction source 116b is driven for a predetermined time by the preparation control unit 33, and the excess liquid 113 in the recess 114 is discharged (sucked) into the liquid chamber 120 from the upper outflow hole 117.
  • the flow passage between the liquid chamber 120 and the liquid supply source 116 a is shut off by the flow passage switching valve 119.
  • the liquid 113 is specified from the upper outflow hole 117.
  • the “predetermined time” for sucking the liquid 113 can be a time calculated by adding several seconds to the time calculated from the amount of the supplied liquid 113 and the suction capacity of the suction source 116 b. Even if suction is performed for a longer time than the calculated time, the liquid 113 below the upper outflow hole 117 will not be discharged, so there is no problem in the adjustment of the liquid level position.
  • the measurement sample container 7 is dipped in the liquid 113 of the liquid storage unit 111 in a state of being held by the holding unit 54 a of the container transfer unit 54.
  • the descent position of the container transfer unit 54 is set so that the liquid level in the measurement sample container 7 is located below the liquid level of the liquid 113.
  • the liquid level in the measurement sample container 7 is preferably positioned about 1 mm to 2 mm below the liquid level of the liquid 113 in the recess 114.
  • the ultrasonic vibration has a large vibration amplitude in the range of ⁇ / 2 ( ⁇ is the wavelength of ultrasonic vibration) between the nodes. Therefore, in the state where the measurement sample container 7 is inserted from above the recess 114, the liquid in the measurement sample container 7 is disposed so as to be located within the range of ⁇ / 2, which is effective for the liquid in the measurement sample container 7 It is possible to transmit ultrasonic waves.
  • the ⁇ / 2 is about 28.8 mm at about 25 kHz, about 18.8 mm at about 40 kHz, and about 10 mm at about 75 kHz.
  • the liquid level in the measurement sample container 7 (ie, the amount of liquid in the measurement sample container 7) is ⁇ / 2. It should be within the height range.
  • the measurement sample container 7 by increasing (concentrating) the concentration of the measurement target cells in the biological sample by the discrimination / substitution unit 53, the measurement sample container 7 while securing the number of cells necessary for measurement by the main detection unit 21. It is possible to reduce the amount of biological sample contained therein. As a result, since the liquid level in the measurement sample container 7 can be set to the height range of ⁇ / 2, ultrasonic waves can be effectively transmitted to the liquid in the measurement sample container 7 .
  • the frequency of the ultrasonic vibration generated by the ultrasonic transducer 112 is not particularly limited, the amount of liquid contained in the measurement sample container 7 and the ultrasonic vibration during the second dispersion process, and the ultrasonic vibration Is preferably 20 kHz or more, and more preferably 20 kHz to 75 kHz, from the viewpoint of efficient transmission and the like.
  • the overflow channel 118 is provided to prevent the liquid 113 from overflowing from the recess 114 even if the liquid 113 is excessively supplied from the liquid supply source 116 a for some reason.
  • the overflow channel 118 is provided in the vicinity of the upper end portion of the liquid storage portion 111 (recessed portion 114) and communicates with the liquid chamber 120. Even when the liquid 113 is excessively supplied to the upper outlet hole 117 or the measurement sample container 7 is excessively inserted into the recess 114, the liquid 113 does not overflow from the overflow channel 118 to the liquid chamber 120. Exhausted.
  • the measurement sample container 7 can be made of a metal such as a synthetic resin or stainless steel, but is preferably made of a material having an acoustic impedance similar to that of the liquid 113 contained in the recess 114. .
  • the measurement sample container 7 is preferably made of polypropylene or polyethylene.
  • the inner circumferential surface of the measurement sample container 7 is preferably a surface having a certain degree of roughness from the viewpoint of improving the dispersion effect of the aggregated cells.
  • the inner peripheral surface of the measurement sample container 7 preferably has a surface roughness of, for example, about 1 ⁇ m to 30 ⁇ m.
  • FIG. 1 The operation control of the main detection unit 21 and the signal processing unit 22 of the measurement device 2 is executed by the measurement control unit 23 (microprocessor 25), and the sub detection unit 31, the signal processing unit 32, and the preparation device unit of the measurement device 2
  • the operation control of 35 is executed by the preparation control unit 33 (microprocessor 36).
  • Control of the data processing device 4 is executed by the processing main body 41 (CPU 41a).
  • the analysis by the cell analyzer 1 first, pretreatment such as adding N-acetyl-L-cysteine (NAC) as a dispersion liquid to a biological sample is performed by the user. Thereafter, the user sets the biological container 6 containing the biological sample and the preservation solution containing alcohol as a main component in the sample setting unit 50 (see FIG. 3), and the analysis by the cell analyzer 1 is started.
  • pretreatment such as adding N-acetyl-L-cysteine (NAC) as a dispersion liquid to a biological sample is performed by the user.
  • NAC N-acetyl-L-cysteine
  • dispersion processing (first dispersion processing) of the aggregated cells in the biological sample is performed by the first dispersion section 51 in step S1 of FIG.
  • the mixed solution in the biological container 6 containing the biological sample and the preservation solution containing alcohol as the main component is aspirated by the sample pipette unit 52 in the sample setting unit 50. Ru.
  • the sample pipette unit 52 moves to the upper side of the sample storage unit 51 a of the first dispersion unit 51 to supply the mixed solution into the sample storage unit 51 a. Thereafter, the liquid mixture in the sample storage unit 51 a is dispersed by the first dispersion unit 51.
  • the first distribution processing is performed by the first distribution unit 51 as follows.
  • the motor 80 when the motor 80 (see FIG. 8) is rotationally driven by the preparation control unit 33 (see FIG. 2), the motor 80 is coupled to the rotary shaft 74 and the tip of the rotary shaft 74 by the rotation of the motor 80.
  • the rotor 70 rotates around the axis in the direction of the arrow R.
  • the biological sample in the groove 71 is sent toward the lower bottom 62 (between the lower end surface 72 of the rotor 70 and the bottom 62) by the rotation of the groove 71 on the outer periphery of the rotor 70.
  • the rotation speed of the motor 80 is about 10000 rpm, and rotation (dispersion of cells) is continuously performed for about 60 seconds.
  • the biological sample sent to the bottom portion 62 flows into the liquid holding portion (concave portion) 65 (see FIG. 9) divided by the convex portion 64 and temporarily stored (held as liquid) in the liquid holding portion 65.
  • the lower end surface 72 of the rotor 70 rotating in the direction of arrow R exists above (in the direction of arrow Z1) the biological sample that has flowed into the liquid holding section 65. It moves in the R direction.
  • the flow of the biological sample in the arrow R direction in the liquid holding portion 65 is blocked by the wall surface of the convex portion 64 (see FIG. 11) that divides the liquid holding portion 65.
  • the flow of the biological sample in the arrow R direction is along the flow of the biological sample which is going to flow downward (outside) from the hole 63 formed at the end on the arrow R direction and the wall surface of the convex part 64. To move upward and divide into the flow of the biological sample which is going to get over the convex part 64.
  • the flow of the biological sample which is going to flow downward (outside) from the hole 63 flows out (jets) to the outside of the bottom 62 and the inside of the pipe 90 through the opening 92 of the peripheral wall of the pipe 90 by the rotation of the rotor 70 Drawn into.
  • a circulating flow is formed that circulates from the inlet (opening 92) to the inside of the pipe 90, the outlet (hole 63), the outside of the pipe 90, and the inlet (opening 92).
  • the flow trying to climb over the convex portion 64 passes between the lower end surface 72 of the rotor 70 and the upper surface of the convex portion 64.
  • the distance CL1 between the lower end surface 72 and the bottom 62 of the rotor 70 is a distance (about 50 ⁇ m) where aggregated cells can not pass through. For this reason, a shear force is applied to the agglutinated cells contained in the flow which is about to get over the convex portion 64 between the rotor 70 (lower end surface 72) which is rotated and the convex portion 64 fixedly installed. Aggregated cells are dispersed into single cells.
  • the agglutinated cells are dispersed one after another, and by circulating the circulation flow for a predetermined time (about 60 seconds), the agglutinated cells in the biological sample are dispersed into single cells.
  • the preparation control unit 33 activates the sample pipette unit 52 (see FIG. 3) in step S2, and the mixed solution containing the dispersed biological sample is the sample taking unit 31a of the sub-detection unit 31. Supplied to Thereby, the mixed solution containing the dispersed biological sample is sent to the flow cell 13 (see FIG. 5) of the sub-detection unit 31. Then, using the sub-detection unit 31, pre-measurement of the biological sample (detection of the number of measurement target cells included in the mixed solution) is performed by flow cytometry. As a result of the pre-measurement, before the main measurement performed by the measuring device 2 for cancer determination, concentration information reflecting the concentration of the measurement target cell (epithelial cell) contained in the mixed solution (biological sample and storage solution) is obtained.
  • the preparation control unit 33 discharges the mixed solution (biological sample and storage solution) from the sub-detection unit 31. Then, based on the obtained concentration information, the concentration of the measurement target cell (epithelial cell) in the mixed solution (biological sample and storage solution) is calculated. Furthermore, based on the calculated concentration, the suction amount of the mixed solution (biological sample and storage solution) for determining the measurement sample used for the main measurement is determined.
  • the significant cells based on the concentration of the measurement target cells in the biological sample used for pre-measurement (the number of measurement target cells per unit volume) and the number of significant cells necessary for cancer cell detection in this measurement, the significant cells
  • the collection material (liquid volume) of the mixed liquid (biological sample and storage liquid) necessary to perform the main measurement is calculated to the extent that the number is secured.
  • step S3 a discrimination / replacement process is performed on the liquid mixture (biological sample and storage liquid) of the calculated collection material (liquid volume). That is, as shown in FIG. 3, the sample pipette unit 52 is operated by the preparation control unit 33, and the mixed solution (biological sample and storage solution) is aspirated from the sample storage unit 51a of the first dispersion unit 51 by the calculated suction amount. Be done. By supplying the aspirated mixed solution to the discrimination / substitution unit 53, the discrimination / substitution process is started.
  • the discrimination / substitution unit 53 substitutes the preservation solution containing alcohol as a main component with a diluent, and discriminates the cell to be measured from other cells and contaminants. Further, in the process of discrimination, the liquid containing the cells to be measured is concentrated, and the concentration of the cells to be measured is increased. As a result, it is possible to obtain a concentrate in which the cells to be measured are concentrated so as to contain the significant number of cells necessary for cancer cell detection.
  • the second dispersion unit 55 performs dispersion processing (second dispersion processing) of the aggregated cells in the concentrated solution.
  • the concentrated solution in which the cells to be measured are concentrated is aspirated from the discrimination / replacement unit 53 by the sample pipette unit 52.
  • the container transfer unit 54 grips and takes out the measurement sample container 7 set in the holding unit 57 b of the reaction unit 57 and positions it in the sample delivery unit 52 b.
  • the sample pipette unit 52 moves above the measurement sample container 7 positioned above the sample delivery unit 52 b (above the sample delivery unit 52 b), and supplies the concentrate to the measurement sample container 7.
  • the measurement sample container 7 containing the concentrate is transferred by the container transfer unit 54 to the second dispersion unit 55, and the second dispersion process is performed.
  • the container transfer unit 54 inserts a part (lower part) of the measurement sample container 7 into the liquid storage unit 111 (recessed portion 114) of the second dispersion unit 55, It is dipped in the liquid 113 in the recess 114.
  • Ultrasonic vibration is applied by the ultrasonic transducer 112 to the concentrate in the measurement sample container 7 held in a state of being dipped in the liquid 113 in the recess 114 by the container transfer unit 54, and ultrasonic vibration is generated. It is transmitted to the concentrate through the liquid 113 and the measurement sample container 7.
  • the ultrasonic vibration generates cavitation (fine bubble generation and bubble rupture) in the concentrate, and the clumped impact (pressure fluctuation) disperses aggregated cells.
  • the agglutinated cells remaining after the first dispersion treatment in the concentrate in the measurement sample container 7 are dispersed into single cells.
  • step S5 the removal of the RNA in the concentrated solution is performed by the addition and heating of the reagent (RNase).
  • the measurement sample container 7 set on the rotary table 57a is moved to the first reagent addition position P1, and from the supply part 58c of the first reagent addition part 58a to the concentrated liquid in the measurement sample container 7 A quantitative reagent (RNase) is added.
  • the liquid in the measurement sample container 7 is heated by the reaction unit 57 at a predetermined temperature (about 37 ° C.) for about 10 minutes, whereby the RNA removal process is performed.
  • the measurement sample container 7 is moved to the second reagent addition position P2 by the rotary table 57a for about 10 minutes until the reaction is completed.
  • step S6 the staining process of the DNA of the cells to be measured in the measurement sample container 7 is performed by addition of a reagent (staining solution) and heating.
  • a reagent staining solution
  • the measurement sample container 7 is moved to the second reagent addition position P2 by the rotary table 57a, so that the measurement sample container 7 is supplied from the supply unit 58d of the second reagent addition unit 58b in synchronization with this.
  • a predetermined amount of reagent (staining solution) is added to the inside.
  • the liquid in the measurement sample container 7 is heated by the reaction unit 57 at a predetermined temperature (about 37 ° C.) for about 1 minute, whereby the DNA staining process is performed.
  • the measurement sample container 7 is moved to the suction position P3 of the sample suction portion 59 by the rotary table 57a during about 1 minute until the reaction (staining) is completed.
  • step S7 the staining-processed measurement sample is sent to the flow cell 13 of the main detection unit 21, and the main measurement is performed on the cells in the measurement sample.
  • the measurement sample container 7 is moved to the suction position P3 of the sample suction unit 59 by the rotary table 57a, so the pipette 59a of the sample suction unit 59 is moved to the suction position P3 in synchronization with this. Ru.
  • the measurement sample is aspirated by the pipette 59a of the sample aspiration unit 59 without intervention of other processes. Then, the aspirated measurement sample is transferred from the sample aspiration unit 59 to the flow cell 13 (see FIG.
  • the measurement control unit 23 (see FIG. 2) of the measuring device 2.
  • the obtained measurement data is transmitted from the measurement control unit 23 of the measurement device 2 to the data processing device 4 in step S8.
  • the processing main body 41 of the data processing device 4 always determines whether measurement data has been received from the measurement device 2 or not.
  • the processing main body 41 of the data processing device 4 performs discrimination processing of particles in the measurement sample based on the measurement data, and cells to be measured in the measurement sample ( It is determined whether or not the epithelial cells are abnormal, that is, whether or not they are cancerous cells (atypical cells). Thus, the measurement process ends.
  • the cell dispersion unit includes the first dispersion unit 51 that executes the first dispersion process, and the second dispersion unit 55 that executes the second dispersion process that is different from the first dispersion process. And a main detection unit 21 for detecting characteristic information of predetermined cells included in the biological sample on which the first dispersion process and the second dispersion process are performed, and a data processing apparatus 4 for analyzing the predetermined cells based on the detection result.
  • CPU 41a By providing (CPU 41a), a plurality of different types of dispersion processes can be performed on the biological sample, so that the cells are effectively dispersed even when the degree of cell aggregation in the biological sample is high. be able to.
  • the aggregated cells can be sufficiently dispersed into single cells, so that highly accurate cell detection can be performed.
  • highly accurate cell analysis can be performed based on the highly accurate detection result.
  • the amount of the biological sample supplied to the discrimination / replacement unit 53 is adjusted by the sample pipette unit 52 based on the detection result by the sub-detection unit 31, and the first dispersion processing is performed.
  • the measurement sample concentration of the measurement target cells in the biological sample
  • the auxiliary detection unit 31 so as to include the significant number of cells necessary for detecting atypical cells.
  • the sub-detection unit 31 can perform detection in a state where aggregated cells are dispersed to some extent. As a result, the accuracy of detection by the sub-detection unit 31 can be improved.
  • the addition of the staining solution by the second reagent adding unit 58b is configured to be performed after the first dispersion process and the second dispersion process.
  • the staining by the staining solution can be performed reliably.
  • the biological sample is processed by the first reagent adding unit 58a and the second reagent adding unit 58b after the first dispersion processing and the second dispersion processing, and the first reagent addition unit is processed.
  • the detection by the main detection unit 21 is performed without intervention of another processing.
  • a cell can be detected immediately after the process by a reagent is completed. As a result, cell detection can be performed promptly before the cells to be detected are destroyed.
  • the first dispersion process is a shear force application process for applying a shear force to the aggregated cells.
  • the second dispersion process is an ultrasonic wave dispersion process in which cells aggregated using ultrasonic waves are dispersed.
  • ultrasonic waves can generate cavitation (bubble generation and rupture) in the biological sample to disperse aggregated cells. Since the bubbles generated by the ultrasonic waves are fine, uniform dispersion effects with less bias can be obtained, and it is also possible to suppress an increase in damage to cells involved in the dispersion treatment.
  • the second dispersion process (ultrasonic dispersion process) is performed on a smaller amount of biological sample than the amount of the biological sample on which the first dispersion process is performed.
  • ultrasonic dispersion processing can be performed on a small amount of biological sample, so that the second dispersion unit 55 can be miniaturized.
  • miniaturizing the second dispersion portion 55 it is possible to reduce the generation of noise and the like caused by the generation of ultrasonic waves.
  • ultrasonic dispersion processing on a small amount of biological sample, it is easy to apply ultrasonic vibration uniformly to the entire biological sample, so that a high dispersion effect can be easily obtained.
  • the first dispersion process is a shear force application process
  • the second dispersion process is an ultrasonic dispersion process.
  • the second dispersion process is performed. It is configured to be run. By configuring in this way, even when the degree of aggregation of cells is high, it is possible to forcibly disperse the aggregated cells by shear force, so that aggregated cells can be dispersed efficiently. Then, since relatively small aggregated cells remaining after the execution of the shear force application process can be dispersed by the ultrasonic dispersion process, the efficient dispersion process can be performed.
  • the main detection unit 21 controls the flow cell 13 for passing the biological sample, the semiconductor laser 12 for emitting light to the biological sample passing through the flow cell 13, and the semiconductor laser 12 It includes a photodiode 15, which receives light generated by irradiating the sample with light, and photomultipliers 18 and 19.
  • the main detection unit 21 is configured to detect an epithelial cell contained in a biological sample, and the data processing device 4 (CPU 41a) detects a detected epithelial cell as a cancer cell. It is configured to analyze whether it is (atypical cells) or not. By configuring in this way, by performing a plurality of different types of dispersed processing on a biological sample, it is possible to perform high-accuracy cell detection regardless of the degree of aggregation of epithelial cells in the biological sample ( The cell analysis apparatus 1 of heterotypic epithelial cells can be obtained.
  • the sample pipette unit 52 is configured to dispense the biological sample in the sample storage unit 51a on which the first dispersion process has been performed into the measurement sample container 7, and the container The transfer unit 54 is configured to transfer the measurement sample container 7 containing the biological sample dispensed by the sample pipette unit 52 to the second dispersion unit 55.
  • the container transfer unit 54 is accommodated in the liquid storage unit 111 while holding the measurement sample container 7 that accommodates the biological sample dispensed by the sample pipette unit 52.
  • the measurement sample container 7 is configured to be immersed in the liquid 113.
  • the second dispersion process (ultrasonic dispersion process) is performed with the biological sample being accommodated in the measurement sample container 7 without suctioning or discharging the biological sample from the measurement sample container 7. It can be performed.
  • it is possible to shorten the time required for the second dispersion process because the process of suctioning and discharging the biological sample is unnecessary, and thus the damage to the cells to be measured increases until detection by the main detection unit 21 is performed. It can be suppressed.
  • FIG. 1 the first dispersion unit 51 that executes a first dispersion process, which is a shearing force application process, and the second dispersion unit 55 that performs a second dispersion process that is an ultrasonic dispersion process are provided.
  • a third dispersion unit 205 is further provided to execute the dispersion addition process.
  • the configuration other than the third dispersion unit 205 is the same as that of the first embodiment, and thus the description thereof is omitted.
  • the measurement apparatus 203 of the cell analysis device 201 executes a third dispersion unit 205 that executes the third dispersion process. Is provided.
  • the third dispersing unit 205 is different from the first dispersing process and the second dispersing process on the biological sample on which the first dispersing process by the first dispersing unit 51 and the second dispersing process by the second dispersing unit 55 are performed. It has a function to execute the third distributed processing.
  • the third dispersion process is a dispersion addition process in which a dispersion is added to a biological sample to disperse aggregated cells.
  • the second dispersion process by the second dispersion unit 55 is executed, the addition of the reagent (RNase) by the first reagent addition unit 58a, and the reagent (staining by the second reagent addition unit 58b) After the addition of the solution is performed, immediately before the sample is sent to the main detection unit 21, the addition of the dispersion liquid is performed in the measurement sample container 7.
  • the reagent RNase
  • the third dispersion portion 205 is installed at a position near the peripheral portion of the rotary table 57a of the reaction unit 57, and is dispersed above the measurement sample container 7 set on the rotary table 57a. It has the dispersion liquid supply part 205a which can move to the liquid addition position P4. Thus, when the measurement sample container 7 is transported to the dispersion addition position P4 by the rotary table 57a, it is possible to add a predetermined amount of dispersion from the dispersion supply part 205a into the measurement sample container 7. There is.
  • the dispersion is a surfactant.
  • the measurement sample container 7 When the measurement sample container 7 is transported to the second reagent addition position P2 by the rotation table 57a, a predetermined amount of reagent (staining liquid) is added from the supply unit 58d into the measurement sample container 7, and the staining process is completed.
  • the measurement sample container 7 is transferred to the dispersion addition position P4 by the table 57a.
  • the measurement sample container 7 is moved to the suction position P3, and the measurement sample is sucked by the pipette 59a of the sample suction unit 59.
  • the aspirated measurement sample is transferred from the sample aspiration unit 59 to the flow cell 13 (see FIG. 5) of the main detection unit 21 (see FIG. 2), and the main measurement is performed on the cells in the measurement sample.
  • the remaining structure of the second embodiment is similar to that of the aforementioned first embodiment.
  • a dispersion addition process is performed in which a surfactant is added as a dispersion to a biological sample to disperse aggregated cells. It will be. By such constitution, it is possible to chemically disperse aggregated cells into single cells by addition of surfactant.
  • the main detection unit 21 since the measurement sample is transferred to the main detection unit 21 immediately after the addition of the surfactant as the dispersion liquid, the main detection unit 21 detects the cells before the cells are broken by the surfactant. It can be carried out.
  • this invention is not limited to this.
  • the present invention may be applied to a cell analysis device that analyzes cells other than cervical epithelial cells.
  • the first dispersion portion performing the shearing force application processing and the second dispersion portion performing the ultrasonic dispersion processing are provided, and in the second embodiment, the dispersion liquid addition processing is performed.
  • distribution part to perform was shown, this invention is not limited to this.
  • any two of the shear force application process, the ultrasonic dispersion process, and the dispersion liquid addition process may be performed.
  • the configuration may be such that shear force application processing and dispersion liquid addition processing are performed.
  • it may be configured to perform a dispersion process different from the shearing force application process, the ultrasonic dispersion process, and the dispersion liquid addition process. Also, four or more different distributed processes may be performed.
  • the ultrasonic dispersion process is performed by the second dispersion unit after the shear force application process by the first dispersion unit is performed.
  • the shearing force application process may be performed after the ultrasonic dispersion process is performed.
  • the first dispersion process (shearing process) and the second dispersion process (ultrasonic dispersion process) may be performed simultaneously.
  • the sample container 51a As a configuration for simultaneously executing the shearing force application process and the ultrasonic dispersion process, for example, while executing the shearing force application process on the biological sample in the sample container 51a of the first dispersion unit 51, the sample container 51a
  • the configuration may be such that ultrasonic vibration is applied to the inner biological sample.
  • the first dispersion process (shear force application process), the second dispersion process (ultrasonic dispersion process), and the third dispersion process (dispersion liquid addition process) are performed on the biological sample.
  • the places where the treatment is performed are different from each other, these treatments may be performed at the same place on the biological sample.
  • the dispersion liquid may be supplied into the sample storage unit 51a while the biological sample in the sample storage unit 51a of the first dispersion unit 51 is being subjected to a shearing force application process, or the second dispersion unit
  • the dispersion liquid may be supplied into the measurement sample container 7 while performing ultrasonic dispersion on the biological sample in the measurement sample container 7 at 55.
  • the dispersion liquid may be supplied into the sample storage unit 51a while performing the shearing force application process and the ultrasonic dispersion process on the biological sample in the sample storage unit 51a of the first dispersion unit 51.
  • the shearing force application process and the dispersion liquid addition process, the ultrasonic dispersion process and the dispersion liquid addition process, the shearing force application process, the ultrasonic dispersion process and the dispersion liquid addition process can be performed simultaneously.
  • the dispersion addition processing by the third dispersion unit may be performed immediately before the addition (staining processing) of the staining liquid, or the dispersion addition processing may be performed simultaneously with the addition of the staining liquid.
  • dispersant addition processing may be performed before addition of the reagent (RNase) by the first reagent addition unit.
  • the dispersion liquid addition process may be performed before the first dispersion process by the first dispersion unit or before the discrimination / substitution process by the discrimination / substitution unit after the first dispersion process.
  • the added dispersion is replaced with the diluent by the discrimination / substitution unit, it is possible to reduce the influence of the dispersing agent on the stainability of the cells to be measured by the staining solution.
  • pretreatment such as addition of NAC as a dispersion is performed by the user before the start of analysis by the cell analyzer, but in the present invention, this pretreatment is dispersed
  • this pretreatment is dispersed
  • this invention is not limited to this.
  • an enzyme agent or a mucus removing agent may be used as a dispersion.
  • the first dispersion process is performed before the discrimination / replacement process
  • the second dispersion process is performed after the discrimination / replacement process.
  • the present invention is not limited to this. Absent.
  • both the first distributed processing and the second distributed processing may be performed before the discrimination / replacement processing or after the discrimination / replacement processing.
  • the second dispersion process (ultrasonic dispersion process) is applied to the biological sample (the biological sample after concentration by the discrimination / substitution portion) in a smaller amount than the first dispersion process (shear force application process).
  • the second dispersion process may be performed on the same amount of biological sample as the first dispersion process.
  • the measurement sample is aspirated by the sample aspiration unit immediately after the staining process is completed without the intervention of other processes, and the measurement (the main measurement) is performed by the main detection unit.
  • the present invention is not limited to this.
  • another process may be performed and then the measurement (main measurement) by the main detection unit may be performed.
  • the main detection unit including the flow cytometer including the flow cell, the semiconductor laser (light source unit), and the photodiode and the photomultiplier (light receiving unit) is provided.
  • the present invention is not limited to this.
  • a detector other than the flow cytometer may be provided.
  • the various dimensions (the intervals CL1 and CL2, the thickness t1 of the bottom portion (convex portion), the depth t2 of the liquid holding portion, etc.) and the like in the above embodiment are merely illustrative, and the present invention is not limited thereto. .
  • the dimensions of each part may be changed according to the amount of biological sample to be subjected to dispersion treatment at one time and the type of cells to be subjected to dispersion treatment.
  • the shear force application process is performed as the first dispersion process
  • the ultrasonic dispersion process is performed as the second dispersion process.
  • the dispersion liquid is used instead of the shear force application process or the ultrasonic dispersion process.
  • An addition treatment may be performed.

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Abstract

生体試料中の細胞の凝集度合いが高い場合にも精度の高い細胞分析を行うことが可能な細胞分析装置を提供する。この細胞分析装置1は、生体試料に含まれる凝集した細胞を第1分散処理および第1分散処理とは異なる第2分散処理により分散させる細胞分散部と、第1分散処理および第2分散処理が実行された前記生体試料に含まれる前記細胞の特徴を反映した特徴情報を検出する主検出部21と、主検出部21による検出結果に基づいて、前記生体試料に含まれる前記細胞を分析するデータ処理装置4とを備える。

Description

細胞分析装置
 本発明は、細胞分析装置に関し、特に、生体から採取された生体試料に含まれる細胞を分析する細胞分析装置に関する。
 従来、生体から採取された生体試料に含まれる細胞を分析する細胞分析装置として、被験者の子宮頸部から採取された試料に含まれる子宮頸部の上皮細胞をフローサイトメータで測定して、癌細胞または異型細胞のスクリーニングを行う細胞分析装置が知られている(例えば、特許文献1参照)。
 上記特許文献1に記載の細胞分析装置は、生体容器内の生体試料に含まれる凝集細胞を強制的に分散させる細胞分散部と、細胞分散部による分散処理が行われた測定試料中の細胞を測定するフローサイトメータと、フローサイトメータで得られた測定データを分析して測定試料中の細胞が癌化しているか否かを判定するデータ処理装置などを備えている。
米国特許出願公開第2011/0014685号公報
 上記特許文献1に記載の細胞分析装置によれば、測定試料中の細胞が癌化しているか否かを判定することが可能である一方、生体試料中の細胞の凝集度合いが高い場合には凝集細胞の分散が不十分となり、高精度な分析の妨げとなる場合がある。このため、生体試料中の細胞の凝集度合いが高い場合にも精度の高い細胞分析を行えることが望まれている。
 かかる事情に鑑み、本発明の1つの目的は、生体試料中の細胞の凝集度合いが高い場合にも精度の高い細胞分析を行うことが可能な細胞分析装置を提供することである。
課題を解決するための手段および発明の効果
 上記目的を達成するために、この発明の一の局面による細胞分析装置は、生体試料に含まれる凝集した細胞を第1分散処理および第1分散処理とは異なる第2分散処理により分散させる細胞分散部と、第1分散処理および第2分散処理が実行された生体試料に含まれる細胞の特徴を反映した特徴情報を検出する検出部と、検出部による検出結果に基づいて、生体試料に含まれる細胞を分析する分析部とを備える。
 この発明の一の局面による細胞分析装置では、上記のように、第1分散処理および第1分散処理とは異なる第2分散処理を生体試料に実行する細胞分散部と、第1分散処理および第2分散処理が実行された生体試料に含まれる所定の細胞の特徴情報を検出する検出部と、検出結果に基づいて所定の細胞を分析する分析部とを設けることによって、種類の異なる複数の分散処理を生体試料に実行することができるので、生体試料中の細胞の凝集度合いが高い場合であっても効果的に細胞の分散を行うことができる。これにより、細胞の凝集度合いが高い場合であっても、凝集した細胞を十分に単一の細胞に分散することができるので、精度の高い細胞検出を行うことができる。この結果、細胞の凝集度合いが高い場合であっても、高精度な検出結果に基づいて精度の高い細胞分析を行うことができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、細胞分散部は、第1分散処理を実行する第1分散部と、第2分散処理を実行する第2分散部とを含む。このように構成すれば、第1分散部と第2分散部とをそれぞれ設けることによって、互いに異なる第1分散処理と第2分散処理とを実行する構成を容易に得ることができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、生体試料に含まれる細胞を検出する副検出部と、副検出部による検出結果に基づいて、生体試料から、検出部による検出に供される測定試料を調製する試料調製部と、を備え、細胞分散部は、第1分散処理および第2分散処理の少なくとも一方を、副検出部による検出前に実行するように構成されている。このように構成すれば、副検出部の検出結果に基づいて測定試料の調製を行うことにより、検出部による検出に適した測定試料を調製することができる。この際、第1分散処理および第2分散処理の少なくとも一方が副検出部による検出前に実行されるので、ある程度凝集細胞が分散された状態で副検出部による検出を行うことができる。この結果、副検出部による検出の精度を向上させることができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、細胞を染色する染色液を生体試料に添加する染色液添加部をさらに備え、染色液添加部は、第1分散処理および第2分散処理の後に、染色液を生体試料に添加するように構成されている。このように構成すれば、第1分散処理および第2分散処理により凝集細胞が十分に単一の細胞に分散された後に細胞の染色を行うことができるので、分散された個々の細胞に対して染色液による染色を確実に行うことができる。
 この場合において、好ましくは、第1分散処理は、凝集した細胞にせん断力を付与するせん断力付与処理であり、第2分散処理は、凝集した細胞を超音波を用いて分散する超音波分散処理である。このように構成すれば、せん断力付与処理によって、比較的大きな凝集細胞の分散を効果的に行うことができ、超音波分散処理によって、比較的小さい凝集細胞の分散を効果的に行うことができるので、せん断力付与処理および超音波分散処理により分散された個々の細胞に対する染色をより確実に行うことができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、第1分散処理および第2分散処理の一方は、凝集した細胞にせん断力を付与するせん断力付与処理である。このように構成すれば、凝集した細胞をせん断力によって強制的に分散させることができるので、比較的大量の生体試料に対しても、効率よく凝集細胞の分散を行うことができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、第1分散部は、生体試料を収容する試料収容部と、ローターと、ローターを収容するパイプとを備え、パイプの先端の開口には有孔部材が取り付けられ、パイプの側壁には開口部が設けられ、第1分散部は、ローターおよびパイプが試料収容部に挿入されている状態でローターを回転させることによって、有孔部材に設けられた孔部とパイプの側壁の開口部との間で生体試料を循環させながら生体試料に含まれる凝集した細胞を分散する。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、第1分散処理および第2分散処理の一方は、凝集した細胞を超音波を用いて分散する超音波分散処理である。このように構成すれば、超音波により生体試料中にキャビテーション(気泡の発生および破裂)を発生させ、凝集した細胞を分散することができる。超音波により発生する気泡は微細であるので、偏りの少ない均一な分散効果を得ることができ、分散処理に伴う細胞に対するダメージが増大するのも抑制することができる。
 この場合において、好ましくは、第1分散処理および第2分散処理の一方の超音波分散処理は、第1分散処理および第2分散処理の他方が実行される生体試料の量よりも少ない量の生体試料に対して実行されるように構成されている。このように構成すれば、少ない量の生体試料に対して超音波分散処理を行うことができるので、超音波分散装置を小型化することができる。超音波分散装置の小型化によって、超音波の発生に起因する騒音の発生等を低減することができる。また、少ない量の生体試料に対して超音波分散処理を行うことによって、生体試料全体に均一に超音波振動を付与しやすいので、容易に、高い分散効果を得ることができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、第1分散処理は、凝集した細胞にせん断力を付与するせん断力付与処理であり、第2分散処理は、凝集した細胞を超音波を用いて分散する超音波分散処理であり、細胞分散部は、第1分散処理の実行後、第2分散処理を実行するように構成されている。このように構成すれば、細胞の凝集度合いが高い場合にも、まず、凝集した細胞をせん断力によって強制的に分散させることができるので、効率よく凝集細胞の分散を行うことができる。そして、せん断力付与処理の実行後に残存する凝集細胞を超音波分散処理によって分散させることができるので、効率的な分散処理を行うことができる。
 この場合において、好ましくは、細胞分散部は、第1分散処理を実行する第1分散部と、第2分散処理を実行する第2分散部とを含み、第1分散部は、生体試料を収容する試料収容部を備え、当該試料収容部に収容された生体試料に対して第1分散処理を実行し、細胞分析装置は、第1分散処理が実行された試料収容部内の生体試料を、試料容器に分注する試料分注部と、当該試料分注部により分注された生体試料を収容する試料容器を、第2分散部に移送する容器移送部とを備える。このように構成すれば、第1分散処理の実行後、試料分注部によって検出部による検出に必要な量の生体試料だけを試料容器に分注し、試料容器に分注された生体試料だけに効率よく第2分散処理を実行することができる。
 上記試料分注部および容器移送部を備える構成において、好ましくは、第2分散部は、超音波が付与される液体を収容するための液体収容部を備え、容器移送部は、試料容器を把持して移送するように構成され、試料分注部により分注された生体試料を収容する試料容器を把持した状態で、液体収容部に収容された液体内に試料容器を浸漬するように構成されている。このように構成すれば、試料容器からの生体試料の吸引や吐出を行うことなく、試料容器に生体試料が収容されたままの状態で第2分散処理(超音波分散処理)を行うことができる。これにより、生体試料の吸引および吐出工程が不要となり第2分散処理に要する時間を短縮することができるので、検出部による検出が行われるまでに測定対象細胞に加わるダメージが増大するのを抑制することができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、第1分散処理および第2分散処理の一方は、分散液を生体試料に添加して凝集した細胞を分散する分散液添加処理である。このように構成すれば、分散液の添加によって凝集細胞を化学的に分散させ、単一の細胞にすることができる。
 この場合において、好ましくは、分散液は、界面活性剤である。このように構成すれば、界面活性剤の添加により効果的に凝集細胞の分散を行うことができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、検出部は、生体試料を通過させるフローセルと、フローセルを通過する生体試料に光を照射する光源部と、光源部が生体試料に光を照射することによって生じる光を受光する受光部とを含む。このように構成すれば、第1分散処理および第2分散処理によって効果的に分散された個々の細胞に対してフローサイトメトリー法による検出を行うことができるので、フローサイトメトリー法による検出精度を向上させることができる。
 上記一の局面による細胞分析装置において、好ましくは、細胞は、上皮細胞であり、分析部は、検出した上皮細胞が異型であるか否かを分析するように構成されている。このように構成すれば、種類の異なる複数の分散処理を生体試料に実行することにより、生体試料中の上皮細胞の凝集度合いによらず精度の高い細胞検出を行うことが可能な癌細胞(異型上皮細胞)の分析装置を得ることができる。
本発明の第1実施形態による細胞分析装置の全体構成を示した斜視図である。 図1に示した細胞分析装置の測定装置の構成を示したブロック図である。 図2に示した測定装置の各部の平面的な配置を示した模式図である。 図1に示した細胞分析装置のデータ処理装置の構成を示したブロック図である。 図2に示した測定装置の主検出部を構成するフローサイトメータを示した模式図である。 図5に示したフローサイトメータの光学系を示した模式図である。 図3に示した測定装置の第1分散部の全体構成を示した斜視図である。 図7に示した第1分散部の縦断面図である。 図7に示した第1分散部の有孔部材を示した斜視図である。 図9に示した有孔部材の上面図である。 図10の500-500線に沿った有孔部材の断面図である。 図7に示した第1分散部のローターを示した側面図である。 図12に示したローターの下面図である。 図7に示した第1分散部の動作を説明するための模式図である。 図3に示した測定装置の第2分散部の全体構成を模式的に示した断面図である。 本発明の第1実施形態による細胞分析装置の分析動作を説明するためのフローチャートである。 本発明の第2実施形態による細胞分析装置における測定装置の各部の平面的な配置を示した模式図である。
 以下、本発明を具体化した実施形態を図面に基づいて説明する。
(第1実施形態)
 まず、図1~図15を参照して、本発明の第1実施形態による細胞分析装置1の構成について説明する。
 細胞分析装置1では、患者から採取した細胞を含む測定試料をフローセルに流し、フローセルを流れる測定試料にレーザ光を照射する。そして、測定試料からの光(前方散乱光、側方蛍光など)を検出してその光信号を分析することにより、細胞に癌細胞が含まれているか否かを判断する。より具体的には、第1実施形態による細胞分析装置1は、子宮頸部の上皮細胞を分析対象としており、子宮頸癌をスクリーニングするのに用いられる。
 図1に示すように、細胞分析装置1は、被検者の子宮頸部から採取された生体試料に細胞分散処理や染色処理などを行って測定試料を調製し、測定試料に対してレーザ光による光学的な測定を行う測定装置2と、測定装置2での測定結果の分析などを行うデータ処理装置4とを備えている。
 図2に示すように、測定装置2は、主検出部21と、信号処理部22と、測定制御部23と、I/Oインタフェース24とを備えている。また、測定装置2は、副検出部31と、信号処理部32と、調製制御部33と、生体試料に対する成分調整を自動的に行うための調製デバイス部35とを備えている。
 主検出部21は、測定試料から測定対象細胞(子宮頸部の上皮細胞)やその核の数およびサイズなどを検出する機能を有する。第1実施形態では、主検出部21には、図5および図6に示すフローサイトメータ10が採用されている。
 信号処理部22は、主検出部21からの出力信号に対して必要な信号処理を行う信号処理回路からなる。また、測定制御部23は、マイクロプロセッサ25と記憶部26とを含んでいる。記憶部26は、主検出部21などの制御プログラムやデータを格納するROM、および、RAMなどからなる。
 測定制御部23のマイクロプロセッサ25は、I/Oインタフェース24を介して、データ処理装置4と調製制御部33の後述するマイクロプロセッサ36とに接続されている。これにより、データ処理装置4および調製制御部33のマイクロプロセッサ36との間で各種データを送受信することが可能である。
 副検出部31は、生体試料に含まれる測定対象細胞の細胞数を検出する機能を有する。第1実施形態では、この副検出部31についても、図5および図6に示すものとほぼ同様のフローサイトメータ10が採用されている。信号処理部32は、副検出部31からの出力信号に対して必要な信号処理を行う信号処理回路からなる。調製制御部33は、マイクロプロセッサ36と、記憶部37と、センサドライバ38と、駆動部ドライバ39とを含んでいる。また、記憶部37は、副検出部31や調製デバイス部35などを制御するための制御プログラムなどを格納するROM、および、RAMなどからなる。
 調製デバイス部35は、検体セット部50と、第1分散部51と、検体ピペット部52と、弁別・置換部53と、容器移送部54と、第2分散部55と、液体除去部56と、反応部57と、第1試薬添加部58aと、第2試薬添加部58bと、試料吸引部59と、容器洗浄部66とから主に構成されている。
 図3に示すように、検体セット部50は、メタノールを主成分とする保存液と生体試料との混合液を収容する複数の生体容器6をセットするためのものである。検体セット部50は、セットされた生体容器6を検体ピペット部52による生体試料の吸引位置まで順次搬送する機能を有する。
 また、第1分散部51は、生体試料に含まれる凝集細胞を分散させるための第1分散処理を生体試料に実行する機能を有する。第1実施形態では、この第1分散処理は、凝集細胞にせん断力を付与して分散するせん断力付与処理である。第1分散部51は、生体試料を収容可能な試料収容部51aを含み、試料収容部51aに供給された生体試料中の凝集細胞に対して機械的にせん断力を付与するように構成されている。なお、第1分散部51の構成については、後に詳細に説明する。
 また、検体ピペット部52は、生体容器6内の生体試料を第1分散部51に移送する機能、第1分散部51内の生体試料を弁別・置換部53および副検出部31に移送する機能、並びに、弁別・置換部53において濃縮された濃縮液を測定試料容器7に供給する機能を有する。具体的には、検体ピペット部52は、第1分散部51の試料収容部51a、弁別・置換部53、副検出部31の試料取込部31a、および、試料受け渡し部52bに位置づけられた測定試料容器7などの上方位置へ移動可能に構成されている。また、検体ピペット部52は、生体試料の吸引および吐出を行うピペット52aを有し、図示しない検体定量部(定量シリンダ、定量シリンダ内のピストンを駆動するモータ等からなる)により生体試料を定量して所定量の生体試料を上記した各部に供給することが可能なように構成されている。
 弁別・置換部53は、第1分散部51による第1分散処理後の生体試料と保存液との混合液を受け入れ、メタノールを主成分とする保存液を希釈液に置換する機能を有する。また、弁別・置換部53は、生体試料中に含まれる測定対象細胞とそれ以外の細胞(赤血球、白血球、細菌など)とを弁別する機能を有する。また、弁別・置換部53は、主検出部21による測定に必要な細胞測定数を得るために生体試料に含有される測定対象細胞(上皮細胞)の濃縮を行う機能を有する。弁別・置換部53は、処理の効率化のために2つ設けられている。なお、弁別・置換部53には、たとえば上記米国特許出願公開第2011/0014685号公報に開示された公知の構成を採用することが可能であるので、弁別・置換部53の具体的な構成についての説明は省略する。
 容器移送部54は、反応部57にユーザによってセットされた測定試料容器7をはさみ状の把持部54aにより把持して、試料受け渡し部52bと、第2分散部55と、液体除去部56と、反応部57とに測定試料容器7を移送する機能を有する。容器移送部54は、所定の回動中心周りの円周状軌跡Cに沿って把持部54aを移動させるように構成されている。また、容器移送部54は、把持部54aを上下方向に移動させることが可能に構成されている。なお、試料受け渡し部52bと、第2分散部55と、液体除去部56と、反応部57とは、この円周状軌跡C上に配置されている。これにより、反応部57にユーザによってセットされた測定試料容器7を容器移送部54の把持部54aにより把持して円周状軌跡C上の各部に移送することが可能である。
 第2分散部55は、第1分散部51による第1分散処理が実行された生体試料に対して、第1分散処理とは異なる第2分散処理を実行する機能を有する。第1実施形態では、この第2分散処理は、超音波を用いて凝集した細胞を分散する超音波分散処理である。具体的には、第2分散部55は、第1分散部51による第1分散処理が実行され、弁別・置換部53において濃縮された(測定対象細胞の濃度が高められた)生体試料に超音波振動を付与するように構成されている。この際、第1実施形態では、第2分散処理(超音波分散処理)は、第1分散処理が実行される生体試料の量よりも少ない量の生体試料に対して実行されるように構成されている。これにより、第2分散部55は、第1分散処理の後に残存する凝集細胞を単一細胞に分散させる。このように、第1実施形態では、第1分散処理を実行する第1分散部51と、第2分散処理を実行する第2分散部55とにより、細胞分析装置1の細胞分散部が構成されている。なお、第2分散部55の構成については、後に詳細に説明する。
 液体除去部56は、第2分散部55による第2分散処理の後、測定試料容器7の外表面に付着した液分を除去(水切り)する機能を有する。第2分散処理は、後述するように、測定試料容器7が液体113中に漬けられた状態(図15参照)で実行される。液体除去部56は、設置口56aに測定試料容器7がセットされた状態で測定試料容器7の外表面に空気流を供給することにより、測定試料容器7の外表面に付着した水滴を除去するように構成されている。これにより、測定試料容器7が反応部57などの各部にセットされたときに、液体が各部に付着するのが防止される。
 反応部57は、測定試料容器7内の生体試料と第1試薬添加部58aおよび第2試薬添加部58bにより添加される試薬との反応を促進させる機能を有する。反応部57は、図示しない駆動部により回転可能に構成された円形の回転テーブル57aを備えている。回転テーブル57aの外周縁部には、測定試料容器7をセット可能な複数の保持部57bが設けられている。この保持部57bにユーザによって測定試料容器7がセットされる。また、回転テーブル57aの回転による保持部57bの軌跡と容器移送部54の把持部54aの円周状軌跡Cとは所定位置で交差しており、この交差位置で容器移送部54が測定試料容器7を保持部57bにセットすることが可能なように構成されている。また、反応部57は、保持部57bにセットされた測定試料容器7を所定温度に加温して、生体試料と試薬との反応を促進させる機能を有する。
 第1試薬添加部58aおよび第2試薬添加部58bは、それぞれ、反応部57(回転テーブル57a)の保持部57bにセットされた測定試料容器7内に試薬を供給する機能を有する。第1試薬添加部58a(第2試薬添加部58b)は、回転テーブル57aの周縁部近傍の位置に設置され、回転テーブル57aにセットされた測定試料容器7の上方の第1試薬添加位置P1(第2試薬添加位置P2)まで移動可能な供給部58c(58d)を有する。これにより、回転テーブル57aにより第1試薬添加位置P1(第2試薬添加位置P2)に測定試料容器7が搬送されたときに、測定試料容器7内に供給部58c(58d)から所定量の試薬を添加することが可能となっている。
 第1実施形態では、第1試薬添加部58aにより添加される試薬は、細胞にRNA処理を行うためのRNaseであり、第2試薬添加部58bにより添加される試薬は、PI染色を行うための染色液である。RNA処理とは、細胞中のRNAを分解するための処理であり、この処理により細胞核のDNAのみを測定することが可能となる。PI染色は、色素を含む蛍光染色液であるヨウ化プロピジウム(PI)により行われる。PI染色では細胞内の核に選択的に染色が施されることにより、核からの蛍光が検出可能となる。第1実施形態では、第1分散処理および第2分散処理が実行された後に、試薬(RNaseおよび染色液)の添加が行われるように構成されている。
 試料吸引部59は、反応部57(回転テーブル57a)にセットされた測定試料容器7内の測定試料を吸引して、主検出部21(図2参照)に測定試料を移送する機能を有する。試料吸引部59は、回転テーブル57aの周縁部近傍の位置に設置され、回転テーブル57aにセットされた測定試料容器7の上方の吸引位置P3まで移動可能なピペット59aを有する。これにより、回転テーブル57aにより吸引位置P3に測定試料容器7が搬送されたときに、測定試料容器7内の測定試料を吸引することが可能となっている。試料吸引部59は、図示しない流路を介して主検出部21の後述するフローセル13(図5および図6参照)に接続されており、ピペット59aにより吸引した測定試料を主検出部21のフローセル13に供給することが可能なように構成されている。なお、第1実施形態では、後述するように、生体試料は、第1試薬添加部58aおよび第2試薬添加部58bによる処理の後に他の処理を介在させることなく試料吸引部59によって吸引される。したがって、第1試薬添加部58aおよび第2試薬添加部58bによる処理の完了直後に、主検出部21による検出が実行されるように構成されている。
 容器洗浄部66は、試料吸引部59により測定試料が主検出部21に供給された後の測定試料容器7の内部を洗浄する機能を有する。容器洗浄部66は、回転テーブル57aの保持部57bに保持された測定試料容器7内に洗浄液を吐出することにより、測定試料容器7の内部を洗浄するように構成されている。これにより、その後の測定処理において同じ測定試料容器7を用いた場合に、他の生体試料とのコンタミネーションを抑制することが可能となる。
 図2に示すように、調製制御部33のマイクロプロセッサ36は、I/Oインタフェース24を介して測定制御部23のマイクロプロセッサ25に接続されている。これにより、測定制御部23のマイクロプロセッサ25との間で各種データを送受信することが可能である。
 また、調製制御部33のマイクロプロセッサ36は、センサドライバ38または駆動部ドライバ39を介して、調製デバイス部35の各部(検体セット部50、第1分散部51、検体ピペット部52、弁別・置換部53、容器移送部54、第2分散部55、液体除去部56、反応部57、第1試薬添加部58a、第2試薬添加部58bおよび試料吸引部59)のセンサ類や駆動モータと接続されている。これにより、マイクロプロセッサ36は、センサからの検知信号に基づいて制御プログラムを実行し、駆動モータの動作を制御する。
 図4に示すように、第1実施形態におけるデータ処理装置4は、例えばノートPC(デスクトップ型でもよい)などのパーソナルコンピュータからなり、処理本体41と、表示部42と、入力部43とから主に構成されている。
 処理本体41は、CPU41aと、ROM41bと、RAM41cと、ハードディスク41dと、読出装置41eと、画像出力インタフェース41fと、入出力インタフェース41gとを備えており、これらの各部は内部バスによって通信可能に接続されている。
 ハードディスク41dには、オペレーティングシステムおよびアプリケーションプログラムなど各種プログラムの他、測定制御部23(図2参照)および調製制御部33(図2参照)への動作命令の送信、測定装置2(図1参照)で行った測定結果の受信および分析処理、並びに、処理した分析結果の表示などを行う操作プログラム44がインストールされている。この操作プログラム44は、オペレーティングシステム上で動作する。
 入出力インタフェース41gには、キーボードおよびマウスからなる入力部43が接続されている。また、入出力インタフェース41gは、測定装置2(図2参照)のI/Oインタフェース24(図2参照)とも接続されている。これにより、測定装置2とデータ処理装置4との間でデータの送受信を行うことが可能である。
 次に、測定装置2の主検出部21を構成するフローサイトメータ10について説明する。図5に示すように、フローサイトメータ10のレンズ系11は、光源である半導体レーザ12からのレーザ光を、生体試料を通過させるフローセル13を流れる測定試料に集光する機能を有する。集光レンズ14は、測定試料中の細胞の前方散乱光をフォトダイオード15からなる散乱光検出器に集光する機能を有する。
 レンズ系11は、具体的には、図6に示すように、半導体レーザ12側(図6の左側)から順に、コリメータレンズ11a、シリンダレンズ系(平凸シリンダレンズ11b+両凹シリンダレンズ11c)およびコンデンサレンズ系(コンデンサレンズ11d+コンデンサレンズ11e)から構成されている。
 図5に示すように、側方用の集光レンズ16は、測定対象細胞およびこの細胞中の核の側方散乱光と側方蛍光とをダイクロイックミラー17に集光する機能を有する。ダイクロイックミラー17は、側方散乱光をフォトマルチプライヤ(光電子増倍管)18へ反射させるとともに、側方蛍光をフォトマルチプライヤ(光電子増倍管)19の方へ透過させるように構成されている。これらの光は、測定試料中の細胞や核の特徴を反映したものとなっている。
 そして、フォトダイオード15、フォトマルチプライヤ18および19は、受光した光信号を電気信号に変換して、それぞれ、前方散乱光信号(FSC)、側方散乱光信号(SSC)および側方蛍光信号(SFL)を出力する。これらの出力信号は図示しないプリアンプにより増幅され、測定装置2の信号処理部22(図2参照)に送られる。測定装置2の信号処理部22で処理された各信号FSC、SSC、SFLは、それぞれ、マイクロプロセッサ25によってI/Oインタフェース24からデータ処理装置4に送信される。
 データ処理装置4のCPU41aは、操作プログラム44を実行することにより、各信号FSC、SSC、SFLに基づいて、前方散乱光強度、側方蛍光強度等の特徴パラメータを取得し、これらの特徴パラメータに基づいて、細胞や核を分析するための頻度分布データを作成する。そして、CPU41aは、この頻度分布データに基づいて、測定試料中の粒子の弁別処理を行い、測定対象細胞(上皮細胞)が異常であるか否か、具体的には癌化した細胞(異型細胞)であるか否かを判定する。
 また、副検出部31は、上記のように主検出部21とほぼ同じ構成のフローサイトメータ10を採用しているので、詳細な説明を省略する。なお、副検出部31は、主検出部21による本測定の前に測定対象細胞の濃度測定を予備的に行うものであるので、副検出部31では、その細胞数を計数するための信号を出力できれば足りる(前方散乱光信号(FSC)を取得できれば足りる)。
 次に、第1分散部51の具体的な構成を説明する。図7および図8に示すように、第1分散部51は、有孔部材60と、ローター70と、このローター70を回転駆動させるモータ80とを備えている。ローター70の外側には、生体試料の流れをガイドする機能を有するパイプ90が配置されており、パイプ90の先端の開口に有孔部材60が取り付けられている。これらを試料収容部51a(図14参照)内に挿入してローター70を回転させることにより、試料収容部51a内の生体試料に含まれる凝集細胞が単一細胞に分散される。
 図9~図11に示すように、有孔部材60は、耐薬品性や強度などを考慮してステンレスで作製されており、円筒形状の筒部61と、筒部61の下端を塞ぐように設けられ、4つの孔部63を有する底部62とが一体的に形成されている。有孔部材60は、パイプ90の先端の開口に取り付けられている。図10および図11に示すように、底部62は、平面的に見て円形に形成されており、上面(内表面)から下面(外表面)まで貫通する4つの孔部63を有する。これらの孔部63は、凝集細胞(大きさ約100μm以上約500μm以下)が通過可能な大きさを有する。
 底部62の上面には、平面的に見て、ローター70の回転方向(矢印R方向)と直交する方向(半径方向)に延びるとともに、ローター70側(上方)に突出する4つの凸部64が形成されている。また、底部62の上面には、これらの凸部64を境界とする凹部からなる4つの保液部65が形成されている。図11に示すように、この底部62(凸部64)の厚さはt1(約1mm)であり、保液部65は、t2(約0.5mm)の深さを有する。
 図10に示すように、底部62の4つの孔部63は、4つの保液部65内にそれぞれ配置されている。また、孔部63は、幅W(約0.5mm)および長さL(約3.25mm)の細長形状を有する。また、孔部63は、矢印R方向(ローター70の回転方向)と直交する方向に延びるように形成されている。より具体的には、孔部63は、扇形状の保液部65の内部において、ローター70の回転方向(矢印R方向)側の端部に凸部64と隣接して凸部64と平行に延びるように配置されている。また、孔部63は、扇形状の保液部65の半径方向内側の端部から半径方向外側の端部まで延びるように形成されている。
 図8に示すように、ローター70は、底部62と同じく耐薬品性や強度などを考慮してステンレスで作製されており、パイプ90の内部に配置されている。ローター70は、図12および図13に示すように、外周に螺旋状の溝71が形成されている。溝71は、リード角α(約40度)で形成されている。また、溝71は、ローター70が矢印R方向(図10参照)に回転した場合に、溝71の回転によって有孔部材60の配置された下方向(矢印Z2方向)に生体試料を送るように設けられている。これにより、ローター70がモータ80により軸周り(矢印R方向)に回転されるとき、生体試料を下方の底部62に向けて供給する(生体試料に下方の推進力を付与する)ことが可能なように構成されている。また、ローター70の下端面72は、平坦に形成されている。
 図14に示すように、ローター70の下端面72と、パイプ90の下端に取り付けられた有孔部材60の底部62の上面(凸部64の上面)とは、所定の間隔CL1を隔てて離間するように構成されている。この間隔CL1は、凝集細胞(100μm以上)は通過不能で、かつ、単一細胞(平均60μm)は通過可能な大きさを有する。したがって、間隔CL1は、測定対象とする子宮頸部の上皮細胞(単一細胞)の大きさ(平均60μm)と略等しくなるように30~80μmの範囲で設定されている。第1実施形態では、この間隔CL1は約50μmである。なお、図14では説明のために間隔CL1を誇張して図示している。
 ここで、凝集細胞は100μmを超える大きさとなるため、間隔CL1を約50μmとすることにより、凝集細胞に対して効果的にせん断力を与えることが可能である。このように、第1分散部51は、モータ80によりローター70を回転させることにより、有孔部材60の凸部64とローター70の下端面72との間で凝集細胞を分散するように構成されている。なお、間隔CL1を30~80μmに設定したのは、30μm未満であれば、細胞が破砕されることがあり、80μmを超えると凝集細胞に与える分散力が低下してしまうことがあるためである。
 図8に示すように、ローター70の上端部73は、回転軸74を介してモータ80の出力軸80aに連結されている。これにより、モータ80の駆動力(回転力)がローター70に伝達される。モータ80は、支持部材81の上面に取り付けられている。支持部材81の下部には、下方に延びるように筒体82が取り付けられている。この筒体82の内部において、回転軸74が回転可能に支持されている。
 パイプ90は、ローター70を内部に収容可能な内径を有するステンレス製の円形パイプからなる。パイプ90の上端は、回転軸74が挿入された筒体82に連結されている。回転軸74に取り付けられたローター70は、パイプ90と有孔部材60とにより、側方と下方とを取り囲まれるように配置されている。なお、図14に示すように、ローター70の溝71が形成された外周とパイプ90の内周面とは、僅かに間隔CL2(約0.3mm)を隔てて離間している。
 パイプ90の側壁には、ローター70が配置される位置よりもやや上方の位置に長孔形状の開口部92(図7および図14参照)が2つ形成されている。この2つの開口部92は、パイプ90の芯を中心として対向する位置に形成されている。図14に示すように、この開口部92により、パイプ90の外部の生体試料は、開口部92を流入口としてパイプ90内に導入され、ローター70により流入口からパイプ90内部を下方(矢印Z2方向)に移動する。そして、生体試料は、下端の有孔部材60の孔部63を流出口としてパイプ90の外側に流出し、再度開口部92(流入口)へ流入する。これにより、流入口(開口部92)からパイプ90の内側、流出口(孔部63)、パイプ90の外側、流入口(開口部92)へと生体試料内の細胞が循環する循環流が形成されるように構成されている。
 次に、第2分散部55の具体的な構成を説明する。図15に示すように、第2分散部55は、水などの液体113を収容する液体収容部111と、液体113を介して測定試料容器7内の生体試料に対して超音波振動を付与する超音波振動子112とを含んでいる。
 液体収容部111は、中央に液体113を収容する凹部114を有し、略円筒形状に形成されている。また、凹部114の上端部の開口には、測定試料容器7を挿入可能な大きさの円孔が形成された蓋115が設けられている。この蓋115により、超音波振動に伴う液体113の外部への飛散を防止するように構成されている。
 超音波振動子112は、円柱形状を有し、液体収容部111の下部に配置されている。この超音波振動子112としては、たとえば部品の洗浄などに用いられる公知のものを利用することができる。なお、筒状の液体収容部111の内径D1は、円柱状の超音波振動子112の外径D2よりも数mm程度(たとえば、5mm~6mm程度)大きくされている。超音波が付与される液体113の領域の大きさ(液体収容部111の内径D1)を超音波振動子112の外径D2よりも大きくすることにより、超音波振動を効率よく液体113に伝達することが可能である。
 略円筒形状の液体収容部111の周壁には、下方から順に液体流通孔116と、上部流出孔117と、オーバーフロー流路(孔)118とが設けられており、これらの液体流通孔116、上部流出孔117およびオーバーフロー流路118は、それぞれ液体収容部111の外部に連通している。
 液体流通孔116は、凹部114の底面付近の位置に形成され、液体収容部111(凹部114)への液体113の供給および排出を行うために設けられている。液体流通孔116は、液体供給源116aと、吸引源116bに接続された液体チャンバ120とに流路切り替えバルブ119を介して連通している。液体113の供給時には、流路切り替えバルブ119により液体供給源116aと液体流通孔116(凹部114)とを連通させ、液体供給源116aから凹部114に液体113を供給させる。一方、液体113の排出時には、流路切り替えバルブ119により液体チャンバ120と液体流通孔116(凹部114)とを連通させ、吸引源116bにより凹部114内の液体113を液体チャンバ120まで吸引させる。液体チャンバ120では、吸引源116bにより吸引した液体が装置外へ排出される。
 上部流出孔117は、液体チャンバ120と連通しており、凹部114内の液体113を排出する機能を有する。したがって、この上部流出孔117により、凹部114における液体113の水面の深さ(上限位置)dが決定される。第1実施形態では、超音波振動を効果的に発生させるために、超音波振動子112により発生する超音波の節が、凹部114内に収容される液体113の水面に位置になるように深さd(上部流出孔117の下端の凹部114の底面からの高さ位置)が設定されている。
 そこで、第1実施形態では、測定試料容器7を液体収容部111内に所定量だけ挿入して液体113内に漬けた状態で、液体流通孔116から所定量の液体113を凹部114内に供給した後、調製制御部33により吸引源116bを所定時間駆動させて、上部流出孔117から凹部114内の余分の液体113を液体チャンバ120に排出(吸引)するように構成されている。なお、液体チャンバ120と液体供給源116aとの間の流路は流路切り替えバルブ119により遮断される。この結果、上部流出孔117の高さ位置が超音波振動子112により発生する超音波の節の位置(深さd)となるように設定されているので、上部流出孔117から液体113を所定時間吸引することによって、液体113の水面の位置が超音波の節の位置(深さd)になるように調節される。なお、液体113を吸引する「所定時間」は、供給した液体113の量と吸引源116bの吸引能力から算出される時間に数秒程度の時間を足した時間とすることができる。なお、算出される時間よりも長めに吸引したとしても、上部流出孔117よりも下方の液体113が排出されてしまうことはないので、液面位置の調整には支障はない。
 第2分散部55による第2分散処理において、測定試料容器7は、容器移送部54の把持部54aに把持された状態で、液体収容部111の液体113中に漬けられる。この際、測定試料容器7内の液面が液体113の液面よりも下方に位置するように、容器移送部54(把持部54a)の下降位置が設定されている。測定試料容器7内の液面が液体113の液面よりも上方に位置する場合には、測定試料容器7内の液体に効果的に超音波を伝達させることができず、その結果、生体試料中の凝集細胞の分散効率が向上しにくい。第1実施形態では、測定試料容器7内の液面が、凹部114内の液体113の液面よりも1mm~2mm程度下方に位置するのが好ましい。
 ここで、図15に示すように、超音波振動は、節と節の間のλ/2(λは超音波振動の波長)の範囲で振動振幅が大きくなる。したがって、測定試料容器7を凹部114の上方から挿入した状態で、測定試料容器7内の液体がλ/2の範囲内に位置するように配置することにより、測定試料容器7内の液体に効果的に超音波を伝達させることが可能となる。このλ/2は、超音波振動が約25kHzで約28.8mm、約40kHzで約18.8mm、約75kHzで約10mmとなる。したがって、測定試料容器7内の液体に効果的に超音波を伝達させるためには、測定試料容器7内の液面高さ(すなわち、測定試料容器7内の液体の量)がλ/2の高さ範囲内となるようにする必要がある。第1実施形態では、弁別・置換部53により生体試料中の測定対象細胞の濃度を上昇させる(濃縮する)ことによって、主検出部21による測定に必要な細胞数を確保しながら測定試料容器7内に収容する生体試料の量を少なくすることが可能である。この結果、測定試料容器7内の液面高さをλ/2の高さ範囲内とすることができるので、測定試料容器7内の液体に効果的に超音波を伝達させることが可能となる。なお、超音波振動子112により発生される超音波振動の振動数は、特に限定されるものではないが、第2分散処理に際して測定試料容器7内に収容されている液量と、超音波振動の効率的な伝達などの観点から、20kHz以上であるのが好ましく、さらに、20kHz~75kHzであることが好ましい。
 オーバーフロー流路118は、何らかの理由で液体供給源116aから液体113が過剰に供給された場合にも、液体113が凹部114から溢れることがないようにするためのものである。オーバーフロー流路118は、液体収容部111(凹部114)の上端部近傍に設けられ、液体チャンバ120に連通している。液体113が上部流出孔117を超えるまで過剰に供給された場合や測定試料容器7が凹部114内に過剰に挿入された場合にも、液体113が溢れることなくオーバーフロー流路118から液体チャンバ120に排出される。
 なお、測定試料容器7は、合成樹脂やステンレスなどの金属により作成することができるが、凹部114内に収容される液体113の音響インピーダンスと同程度の音響インピーダンスを有する材料により作成するのが好ましい。たとえば、凹部114内に水を収容する場合、測定試料容器7は、ポリプロピレンまたはポリエチレンで作成するのが好ましい。超音波振動子112と生体試料との間に介在し、振動を伝達する液体113の特性(音響インピーダンス)および測定試料容器7の特性を同程度にすることにより、超音波振動を生体試料に効率よく伝達することが可能となる。
 また、測定試料容器7の内周面は、凝集細胞の分散効果を向上させるという観点から、ある程度の粗さを有する面とすることが好ましい。具体的には、測定試料容器7の内周面は、表面粗さがたとえば1μm~30μm程度にするのが好ましい。
 次に、図2、図3、図5、図8、図9、図11および図14~図16を参照して、第1実施形態による細胞分析装置1の分析動作について説明する。なお、測定装置2の主検出部21および信号処理部22の動作制御は、測定制御部23(マイクロプロセッサ25)により実行され、測定装置2の副検出部31、信号処理部32および調製デバイス部35の動作制御は、調製制御部33(マイクロプロセッサ36)により実行される。データ処理装置4の制御は、処理本体41(CPU41a)により実行される。
 図16に示すように、細胞分析装置1による分析に際して、まず、ユーザにより分散液としてN-アセチル-L-システイン(NAC)を生体試料に添加するなどの前処理が行われる。その後、生体試料と、アルコールを主成分とする保存液とが収容された生体容器6がユーザにより検体セット部50(図3参照)にセットされ、細胞分析装置1による分析が開始される。
 分析が開始されると、図16のステップS1において、第1分散部51により生体試料中の凝集細胞の分散処理(第1分散処理)が行われる。具体的には、図3に示すように、生体試料と、アルコールを主成分とする保存液とが収容された生体容器6内の混合液が、検体セット部50において検体ピペット部52によって吸引される。そして、検体ピペット部52が第1分散部51の試料収容部51aの上方に移動して、試料収容部51a内に混合液を供給する。その後、試料収容部51a内の混合液が第1分散部51で分散される。
 この第1分散処理は、第1分散部51により、次のようにして行なわれる。
 図14に示すように、まず、調製制御部33(図2参照)によりモータ80(図8参照)を回転駆動させると、このモータ80の回転によって回転軸74と回転軸74の先端に連結されたローター70とが軸周りに矢印R方向に回転する。このとき、ローター70の外周の溝71の回転により、溝71内の生体試料が下方の底部62(ローター70の下端面72と底部62との間)に向けて送られる。第1実施形態では、モータ80の回転数は約10000rpmであり、回転(細胞の分散)は約60秒間継続して行われる。
 底部62に送られた生体試料は、凸部64によって分割された保液部(凹部)65(図9参照)に流れ込み、保液部65内に一時的に貯留(保液)される。この際、保液部65内に流れ込んだ生体試料の上方(矢印Z1方向)には、矢印R方向に回転するローター70の下端面72が存在するため、生体試料は保液部65内で矢印R方向に移動される。保液部65内における生体試料の矢印R方向の流れは、保液部65を分割する凸部64(図11参照)の壁面により遮られる。これにより、矢印R方向の生体試料の流れは、矢印R方向側の端部に形成された孔部63から下方(外部)に流出しようとする生体試料の流れと、凸部64の壁面に沿って上方に移動して凸部64を乗り越えようとする生体試料の流れとに分かれる。
 孔部63から下方(外部)に流出しようとする生体試料の流れは、底部62の外部に流出(噴出)するとともに、ローター70の回転によりパイプ90の周壁の開口部92を介してパイプ90内部に引き込まれる。この結果、流入口(開口部92)からパイプ90内側、流出口(孔部63)、パイプ90外側、流入口(開口部92)へと循環する循環流が形成される。
 一方、凸部64を乗り越えようとする流れは、ローター70の下端面72と凸部64の上面との間を通過する。ここで、ローター70の下端面72と底部62との間隔CL1は、凝集細胞が通過不可能な間隔(約50μm)である。このため、凸部64を乗り越えようとする流れに含まれる凝集細胞には回転されているローター70(下端面72)と固定的に設置された凸部64との間でせん断力が付与され、凝集細胞が単一細胞に分散される。なお、間隔CL1は単一細胞が通過可能な大きさであるので、凸部64を乗り越えようとする流れに含まれる単一細胞(および分散された単一細胞)は、流れに乗って凸部64を乗り越える。このようにして凝集細胞は次々と分散され、所定時間(約60秒間)にわたって循環流を循環させることによって、生体試料中の凝集細胞が単一細胞に分散される。
 第1分散処理が終了すると、ステップS2において、調製制御部33により検体ピペット部52(図3参照)が作動され、分散済みの生体試料を含む混合液が副検出部31の試料取込部31aに供給される。これにより、副検出部31のフローセル13(図5参照)に分散済みの生体試料を含む混合液が送液される。そして、この副検出部31を用いて、フローサイトメトリー法によって生体試料のプレ測定(混合液に含まれる測定対象細胞の数の検出)が行われる。プレ測定の結果、癌判定ために測定装置2が行う本測定の前に、混合液(生体試料および保存液)に含まれる測定対象細胞(上皮細胞)の濃度を反映した濃度情報が得られる。
 プレ測定が行われると、調製制御部33により、混合液(生体試料および保存液)が副検出部31から排出される。そして、得られた濃度情報に基づいて混合液(生体試料および保存液)中の測定対象細胞(上皮細胞)の濃度が算出される。さらに、算出された濃度に基づいて、本測定に用いる測定試料を調製するための、混合液(生体試料および保存液)の吸引量が決定される。すなわち、プレ測定に用いた生体試料中の測定対象細胞の濃度(単位体積あたりの測定対象細胞の数)と、本測定における癌細胞検出のために必要な有意細胞数とに基づき、この有意細胞数が確保される程度に本測定を行うために必要な混合液(生体試料および保存液)の採取料(液量)が演算される。
 次に、ステップS3において、演算された採取料(液量)の混合液(生体試料および保存液)について弁別・置換処理が実行される。すなわち、図3に示すように、調製制御部33により検体ピペット部52が作動され、演算された吸引量だけ第1分散部51の試料収容部51aから混合液(生体試料および保存液)が吸引される。吸引された混合液が弁別・置換部53に供給されることにより、弁別・置換処理が開始される。
 この弁別・置換処理において、弁別・置換部53により、アルコールを主成分とする保存液が希釈液に置換されるとともに、測定対象細胞とその他の細胞や夾雑物とが弁別される。また、弁別の過程で測定対象細胞を含む液体が濃縮され、測定対象細胞の濃度が上昇する。この結果、癌細胞検出のために必要な有意細胞数を含むように測定対象細胞が濃縮された濃縮液が得られる。
 次に、ステップS4において、第2分散部55により濃縮液中の凝集細胞の分散処理(第2分散処理)が行われる。具体的には、図3に示すように、測定対象細胞が濃縮された濃縮液が、弁別・置換部53から検体ピペット部52によって吸引される。これに並行して、容器移送部54が反応部57の保持部57bにセットされた測定試料容器7を把持して取り出し、試料受け渡し部52bに位置づける。そして、検体ピペット部52が試料受け渡し部52bに位置づけられた測定試料容器7の上方(試料受け渡し部52bの上方)に移動して、測定試料容器7に濃縮液を供給する。その後、濃縮液を収容する測定試料容器7が容器移送部54により第2分散部55に移送され、第2分散処理が実行される。
 第2分散処理では、図15に示すように、まず、容器移送部54が第2分散部55の液体収容部111(凹部114)内に測定試料容器7の一部(下部)を挿入し、凹部114内の液体113中に漬ける。容器移送部54により凹部114内の液体113中に漬けられた状態で保持された測定試料容器7内の濃縮液に対して、超音波振動子112により超音波振動が付与され、超音波振動が液体113および測定試料容器7を介して濃縮液に伝達される。この超音波振動が濃縮液中にキャビテーション(微細な気泡の発生と気泡の破裂)を発生させ、キャビテーションに伴う衝撃(圧力変動)により、凝集した細胞を分散させる。これにより、測定試料容器7内の濃縮液中の、第1分散処理後に残存していた凝集細胞(測定対象細胞)が単一細胞に分散される。
 なお、第2分散処理が完了すると、図3に示すように、容器移送部54が測定試料容器7を把持した状態のまま、液体除去部56の設置口56aに測定試料容器7の一部(下部)をセットする。液体除去部56では、測定試料容器7の外表面に空気流が供給されることにより、測定試料容器7の外表面に付着した水滴が除去される。その後、容器移送部54により測定試料容器7が反応部57(回転テーブル57a)の保持部57bにセットされる。
 反応部57に測定試料容器7がセットされると、ステップS5において、試薬(RNase)の添加および加温により、濃縮液中のRNA除去処理が行われる。具体的には、回転テーブル57aにセットされた測定試料容器7が第1試薬添加位置P1まで移動され、第1試薬添加部58aの供給部58cから測定試料容器7内の濃縮液に対して所定量の試薬(RNase)が添加される。その後、反応部57により測定試料容器7内の液体が所定温度(約37℃)で約10分間加温されることにより、RNA除去処理が実行される。なお、試薬(RNase)の添加後、反応が完了するまでの約10分間の間に、回転テーブル57aにより測定試料容器7が第2試薬添加位置P2まで移動される。
 RNA除去処理の後、ステップS6において、試薬(染色液)の添加および加温により、測定試料容器7内の測定対象細胞のDNAの染色処理が行われる。RNA除去処理が完了した時点で、回転テーブル57aにより測定試料容器7が第2試薬添加位置P2まで移動されるため、これに同期して第2試薬添加部58bの供給部58dから測定試料容器7内に所定量の試薬(染色液)が添加される。その後、反応部57により測定試料容器7内の液体が所定温度(約37℃)で約1分間加温されることにより、DNA染色処理が実行される。なお、染色液の添加後、反応(染色)が完了するまでの約1分間の間に、回転テーブル57aにより測定試料容器7が試料吸引部59の吸引位置P3まで移動される。
 次に、ステップS7において、染色処理済みの測定試料が主検出部21のフローセル13に送られるとともに、測定試料中の細胞に対する本測定が行われる。染色処理が完了した時点で、回転テーブル57aにより測定試料容器7が試料吸引部59の吸引位置P3まで移動されるため、これに同期して試料吸引部59のピペット59aが吸引位置P3まで移動される。これにより、染色処理が完了した直後に他の処理が介在することなく試料吸引部59のピペット59aにより測定試料が吸引される。そして、吸引された測定試料が試料吸引部59から主検出部21のフローセル13(図5参照)に移送されるとともに、測定装置2の測定制御部23(図2参照)により測定試料中の細胞に対する本測定が行われる。測定試料が主検出部21に送られた後に、容器洗浄部66によって測定試料容器7の内部が洗浄され、洗浄された測定試料容器7はその後の測定処理に用いられる。
 本測定後、ステップS8において、得られた測定データが測定装置2の測定制御部23からデータ処理装置4に送信される。データ処理装置4の処理本体41は、測定装置2から測定データを受信したか否かを常時判定している。測定装置2から測定データを受信すると、ステップS9において、データ処理装置4の処理本体41により、その測定データに基づいて測定試料中の粒子の弁別処理が行われ、測定試料中の測定対象細胞(上皮細胞)が異常であるか否か、すなわち、癌化した細胞(異型細胞)であるか否かなどが判定される。以上により、測定処理が終了する。
 第1実施形態では、上記のように、第1分散処理を実行する第1分散部51と、第1分散処理とは異なる第2分散処理を実行する第2分散部55とからなる細胞分散部と、第1分散処理および第2分散処理が実行された生体試料に含まれる所定の細胞の特徴情報を検出する主検出部21と、検出結果に基づいて所定の細胞を分析するデータ処理装置4(CPU41a)とを設けることによって、種類の異なる複数の分散処理を生体試料に実行することができるので、生体試料中の細胞の凝集度合いが高い場合であっても効果的に細胞の分散を行うことができる。これにより、細胞の凝集度合いが高い場合であっても、凝集した細胞を十分に単一の細胞に分散することができるので、精度の高い細胞検出を行うことができる。この結果、細胞の凝集度合いが高い場合であっても、高精度な検出結果に基づいて精度の高い細胞分析を行うことができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、副検出部31による検出結果に基づいて、検体ピペット部52により弁別・置換部53に供給される生体試料の量が調整され、第1分散処理が、副検出部31による検出前に実行されるように構成されている。このように構成することによって、副検出部31の検出結果に基づいて異型細胞検出のために必要な有意細胞数を含むように測定試料の調製(生体試料中の測定対象細胞の濃縮)を行うことにより、主検出部21による検出に適した測定試料を調製することができる。この際、第1分散処理が副検出部31による検出前に実行されるので、ある程度凝集細胞が分散された状態で副検出部31による検出を行うことができる。この結果、副検出部31による検出の精度を向上させることができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、第2試薬添加部58bによる染色液の添加が、第1分散処理および第2分散処理の後に実行されるように構成されている。このように構成することによって、第1分散処理および第2分散処理により凝集細胞が十分に単一の細胞に分散された後に細胞の染色を行うことができるので、分散された個々の細胞に対して染色液による染色を確実に行うことができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、生体試料は、第1分散処理および第2分散処理の後に第1試薬添加部58aおよび第2試薬添加部58bにより処理され、第1試薬添加部58aおよび第2試薬添加部58bによる処理の後に他の処理を介在させることなく主検出部21による検出が実行されるように構成されている。このように構成することによって、染色液の添加を含む試薬による処理を、第1分散処理および第2分散処理によって凝集細胞が分散された後の単一の細胞に対して実行することができる。そして、試薬による処理と検出部による検出との間に他の処理が介在することがないので、試薬による処理が完了した直後に細胞の検出を行うことができる。この結果、検出対象の細胞が壊れる前に速やかに細胞検出を行うことができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、第1分散処理は、凝集した細胞にせん断力を付与するせん断力付与処理である。このように構成することによって、凝集細胞をせん断力によって強制的に分散させることができるので、比較的大量の生体試料に対しても、効率よく凝集細胞の分散を行うことができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、第2分散処理は、超音波を用いて凝集した細胞を分散する超音波分散処理である。このように構成することによって、超音波により生体試料中にキャビテーション(気泡の発生および破裂)を発生させ、凝集した細胞を分散することができる。超音波により発生する気泡は微細であるので、偏りの少ない均一な分散効果を得ることができ、分散処理に伴う細胞に対するダメージが増大するのも抑制することができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、第2分散処理(超音波分散処理)は、第1分散処理が実行される生体試料の量よりも少ない量の生体試料に対して実行されるように構成されている。このように構成することによって、少ない量の生体試料に対して超音波分散処理を行うことができるので、第2分散部55を小型化することができる。第2分散部55の小型化によって、超音波の発生に起因する騒音の発生等を低減することができる。また、少ない量の生体試料に対して超音波分散処理を行うことによって、生体試料全体に均一に超音波振動を付与しやすいので、容易に、高い分散効果を得ることができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、第1分散処理はせん断力付与処理であり、第2分散処理は超音波分散処理であり、第1分散処理の実行後、第2分散処理が実行されるように構成されている。このように構成することによって、細胞の凝集度合いが高い場合にも、まず、凝集した細胞をせん断力によって強制的に分散させることができるので、効率よく凝集細胞の分散を行うことができる。そして、せん断力付与処理の実行後に残存する比較的小さな凝集細胞を超音波分散処理によって分散させることができるので、効率的な分散処理を行うことができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、主検出部21は、生体試料を通過させるフローセル13と、フローセル13を通過する生体試料に光を照射する半導体レーザ12と、半導体レーザ12が生体試料に光を照射することによって生じる光を受光するフォトダイオード15、フォトマルチプライヤ18および19とを含む。このように構成することによって、第1分散処理および第2分散処理によって効果的に分散された個々の細胞に対してフローサイトメトリー法による検出を行うことができるので、フローサイトメトリー法による検出精度を向上させることができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、主検出部21は、生体試料に含まれる上皮細胞を検出するように構成され、データ処理装置4(CPU41a)は、検出した上皮細胞が癌細胞(異型細胞)であるか否かを分析するように構成されている。このように構成することによって、種類の異なる複数の分散処理を生体試料に実行することにより、生体試料中の上皮細胞の凝集度合いによらず精度の高い細胞検出を行うことが可能な癌細胞(異型上皮細胞)の細胞分析装置1を得ることができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、検体ピペット部52は、第1分散処理が実行された試料収容部51a内の生体試料を測定試料容器7に分注するように構成され、容器移送部54は、検体ピペット部52により分注された生体試料を収容する測定試料容器7を第2分散部55に移送するように構成されている。このように構成することによって、第1分散処理の実行後、検体ピペット部52によって主検出部21による検出に必要な量の生体試料だけを測定試料容器7に分注し、測定試料容器7に分注された生体試料だけに効率よく第2分散処理を実行することができる。
 また、第1実施形態では、上記のように、容器移送部54は、検体ピペット部52により分注された生体試料を収容する測定試料容器7を把持した状態で、液体収容部111に収容された液体113内に測定試料容器7を浸漬するように構成されている。このように構成することによって、測定試料容器7からの生体試料の吸引や吐出を行うことなく、測定試料容器7に生体試料が収容されたままの状態で第2分散処理(超音波分散処理)を行うことができる。これにより、生体試料の吸引および吐出工程が不要となり第2分散処理に要する時間を短縮することができるので、主検出部21による検出が行われるまでに測定対象細胞に加わるダメージが増大するのを抑制することができる。
(第2実施形態)
 次に、図2、図5および図17を参照して、本発明の第2実施形態について説明する。この第2実施形態は、せん断力付与処理である第1分散処理を実行する第1分散部51および超音波分散処理である第2分散処理を実行する第2分散部55を設けた上記第1実施形態に加えて、さらに分散液添加処理を実行する第3分散部205が設けられている。なお、第3分散部205以外の構成は上記第1実施形態と同様であるので、説明を省略する。
 図17に示すように、第2実施形態による細胞分析装置201の測定装置203には、第1分散部51、第2分散部55に加えて、第3分散処理を実行する第3分散部205が設けられている。
 第3分散部205は、第1分散部51による第1分散処理および第2分散部55による第2分散処理が実行された生体試料に対して、第1分散処理および第2分散処理とは異なる第3分散処理を実行する機能を有する。第2実施形態では、この第3分散処理は、分散液を生体試料に添加して凝集した細胞を分散する分散液添加処理である。具体的には、第3分散部205は、第2分散部55による第2分散処理が実行され、第1試薬添加部58aによる試薬(RNase)の添加および第2試薬添加部58bによる試薬(染色液)の添加が実行された後、試料を主検出部21に送る直前に、測定試料容器7内に分散液の添加を行うように構成されている。
 具体的には、第2実施形態では、第3分散部205は、反応部57の回転テーブル57aの周縁部近傍の位置に設置され、回転テーブル57aにセットされた測定試料容器7の上方の分散液添加位置P4まで移動可能な分散液供給部205aを有する。これにより、回転テーブル57aにより分散液添加位置P4に測定試料容器7が搬送されたときに、測定試料容器7内に分散液供給部205aから所定量の分散液を添加することが可能となっている。第2実施形態では、分散液は、界面活性剤である。第1分散処理および第2分散処理に加えて分散液の添加を行うことによって凝集細胞を化学的に分散させ、分散効果の更なる向上を図ることが可能である。
 なお、回転テーブル57aにより第2試薬添加位置P2に測定試料容器7が搬送され、供給部58dから測定試料容器7内に所定量の試薬(染色液)が添加され、染色処理が完了すると、回転テーブル57aにより測定試料容器7が分散液添加位置P4まで移送される。そして、第3分散部205による分散液添加処理の直後に、測定試料容器7が吸引位置P3まで移動されるとともに、試料吸引部59のピペット59aにより測定試料が吸引される。そして、吸引された測定試料が試料吸引部59から主検出部21(図2参照)のフローセル13(図5参照)に移送されるとともに、測定試料中の細胞に対する本測定が行われる。
 なお、第2実施形態のその他の構成は、上記第1実施形態と同様である。
 第2実施形態では、上記のように、第1分散処理および第2分散処理に加えて、分散液として界面活性剤を生体試料に添加して、凝集した細胞を分散する分散液添加処理が行われる。このように構成することによって、界面活性剤の添加により凝集細胞を化学的に分散させ、単一の細胞にすることができる。また、第2実施形態では、分散液として界面活性剤を添加した直後に測定試料が主検出部21に移送されるので、界面活性剤によって細胞が壊れる前に主検出部21によって細胞の検出を行うことができる。
 なお、第2実施形態のその他の効果は、上記第1実施形態と同様である。
 なお、今回開示された実施形態は、すべての点で例示であって制限的なものではないと考えられるべきである。本発明の範囲は、上記した実施形態の説明ではなく特許請求の範囲によって示され、さらに特許請求の範囲と均等の意味および範囲内でのすべての変更が含まれる。
 たとえば、上記第1および第2実施形態では、子宮頸部の上皮細胞を分析する細胞分析装置1(201)に本発明を適用した例を示したが、本発明はこれに限られない。子宮頸部の上皮細胞以外の細胞の分析を行う細胞分析装置に本発明を適用してもよい。
 また、上記第1実施形態では、せん断力付与処理を行う第1分散部と超音波分散処理を行う第2分散部とを設けた例を示し、上記第2実施形態では、分散液添加処理を行う第3分散部をさらに設けた例を示したが、本発明はこれに限られない。本発明では、せん断力付与処理、超音波分散処理および分散液添加処理のうち、いずれか2つが実行されるように構成してもよい。たとえば、せん断力付与処理と分散液添加処理とが実行される構成であってもよい。また、せん断力付与処理、超音波分散処理および分散液添加処理とは異なる分散処理を行うように構成してもよい。また、4つ以上の異なる分散処理を実行してもよい。
 また、上記第1および第2実施形態では、第1分散部によるせん断力付与処理を実行した後に、第2分散部による超音波分散処理を実行した例を示したが、本発明はこれに限られない。本発明では、超音波分散処理を実行した後にせん断力付与処理を実行してもよい。また、第1分散処理(せん断力付与処理)と第2分散処理(超音波分散処理)とが同時に実行されてもよい。せん断力付与処理と超音波分散処理とを同時に実行する構成としては、例えば、第1分散部51の試料収容部51a内の生体試料に対してせん断力付与処理を実行しながら、試料収容部51a内の生体試料に対して超音波振動を付与する構成であってもよい。
 また、上記第1および第2実施形態では、第1分散処理(せん断力付与処理)、第2分散処理(超音波分散処理)、及び、第3分散処理(分散液添加処理)を生体試料に対して行う場所が互いに異なっているが、これらの処理を生体試料に対して同じ場所で行ってもよい。例えば、第1分散部51の試料収容部51a内の生体試料に対してせん断力付与処理を行っている間に、分散液を試料収容部51a内に供給してもよいし、第2分散部55において測定試料容器7内の生体試料に対して超音波分散処理を行っている間に、測定試料容器7内に分散液を供給してもよい。また、第1分散部51の試料収容部51a内の生体試料に対してせん断力付与処理および超音波分散処理を行っている間に、分散液を試料収容部51a内に供給してもよい。このように構成すれば、せん断力付与処理と分散液添加処理、超音波分散処理と分散液添加処理、せん断力付与処理と超音波分散処理と分散液添加処理とを同時に行うことができる。
 同様に、上記第2実施形態では、染色液の添加後に第3分散部による分散液添加処理を実行した例を示したが、本発明はこれに限られない。本発明では、染色液の添加(染色処理)の直前に第3分散部による分散液添加処理を実行してもよく、または、染色液の添加と同時に分散液添加処理を実行してもよい。また、第1試薬添加部による試薬(RNase)の添加前に分散剤添加処理を行ってもよい。この他、たとえば第1分散部による第1分散処理の前、または、第1分散処理後の弁別・置換部による弁別・置換処理の前に分散液添加処理を行ってもよい。この場合、添加された分散液が弁別・置換部によって希釈液に置換されるため、分散剤が染色液による測定対象細胞の染色性に与える影響を低減することができる。
 なお、上記第1実施形態では、細胞分析装置による分析開始前に、ユーザにより分散液としてNACを添加するなどの前処理が行われる例を示したが、本発明では、この前処理を分散液添加処理として、細胞分析装置が実行するように構成してもよい。
 また、上記第2実施形態では、分散液として界面活性剤を添加する例を示したが、本発明はこれに限られない。たとえば、分散液として、酵素剤または粘液除去剤などを用いてもよい。
 また、上記第1実施形態では、第1分散処理を弁別・置換処理の前に実行し、第2分散処理を弁別・置換処理の後に実行した例を示したが、本発明はこれに限られない。本発明では、第1分散処理および第2分散処理の両方を弁別・置換処理の前、または、弁別・置換処理の後に実行してもよい。
 また、上記第1実施形態では、第1分散処理(せん断力付与処理)よりも少ない量の生体試料(弁別・置換部による濃縮後の生体試料)に対して第2分散処理(超音波分散処理)が実行されるように構成した例を示したが、本発明はこれに限られない。本発明では、第1分散処理と同じ量の生体試料に対して第2分散処理が実行されるようにしてもよい。
 また、上記第1実施形態では、染色処理が完了した直後に他の処理が介在することなく試料吸引部により測定試料が吸引され、主検出部による測定(本測定)が行われるように構成した例を示したが、本発明はこれに限られない。本発明では、染色処理が完了した後、他の処理を実行してから主検出部による測定(本測定)を行ってもよい。ただし、主検出部による検出精度を向上させる観点から、染色処理の完了後は、可及的速やかに主検出部による測定(本測定)を行うのが好ましい。
 また、上記第1実施形態では、フローセルと、半導体レーザ(光源部)と、フォトダイオードおよびフォトマルチプライヤ(受光部)とを備えたフローサイトメータからなる主検出部を設けた例を示したが、本発明はこれに限られない。本発明では、フローサイトメータ以外の検出部を設けてもよい。
 なお、上記実施形態における各種の寸法(間隔CL1、CL2、底部(凸部)の厚さt1、保液部の深さt2など)などはあくまでも例示に過ぎず、本発明はこれに限られない。各部の寸法は、一度に分散処理を行う生体試料の量や、分散処理の対象となる細胞の種類に応じて変更すればよい。
 また、上記第1実施形態では、第1分散処理としてせん断力付与処理を行い、第2分散処理として超音波分散処理を行っているが、せん断力付与処理または超音波分散処理に代えて分散液添加処理を行ってもよい。
 1、201 細胞分析装置
 4 データ処理装置
 7 測定試料容器
 12 半導体レーザ
 13 フローセル
 15 フォトダイオード
 18、19 フォトマルチプライヤ
 21 主検出部
 31 副検出部
 51 第1分散部
 51a 試料収容部
 52 検体ピペット部
 53 弁別・置換部
 54 容器移送部
 55 第2分散部
 58a 第1試薬添加部
 58b 第2試薬添加部
 111 液体収容部
 205 第3分散部

Claims (16)

  1.  生体試料に含まれる凝集した細胞を第1分散処理および前記第1分散処理とは異なる第2分散処理により分散させる細胞分散部と、
     前記第1分散処理および前記第2分散処理が実行された前記生体試料に含まれる前記細胞の特徴を反映した特徴情報を検出する検出部と、
     前記検出部による検出結果に基づいて、前記生体試料に含まれる前記細胞を分析する分析部と、を備える、細胞分析装置。
  2.  前記細胞分散部は、前記第1分散処理を実行する第1分散部と、前記第2分散処理を実行する第2分散部とを含む、請求項1に記載の細胞分散装置。
  3.  前記生体試料に含まれる前記細胞を検出する副検出部と、
     前記副検出部による検出結果に基づいて、前記生体試料から、前記検出部による検出に供される測定試料を調製する試料調製部と、を備え、
     前記細胞分散部は、前記第1分散処理および前記第2分散処理の少なくとも一方を、前記副検出部による検出前に実行するように構成されている、請求項1に記載の細胞分析装置。
  4.  前記細胞を染色する染色液を前記生体試料に添加する染色液添加部を備え、
     前記染色液添加部は、前記第1分散処理および前記第2分散処理の後に、前記染色液を前記生体試料に添加するように構成されている、請求項1に記載の細胞分析装置。
  5.  前記第1分散処理は、凝集した前記細胞にせん断力を付与するせん断力付与処理であり、
     前記第2分散処理は、凝集した前記細胞を超音波を用いて分散する超音波分散処理である、請求項4に記載の細胞分析装置。
  6.  前記第1分散処理および前記第2分散処理の一方は、凝集した前記細胞にせん断力を付与するせん断力付与処理である、請求項1に記載の細胞分析装置。
  7.  前記第1分散部は、前記生体試料を収容する試料収容部と、ローターと、前記ローターを収容するパイプとを備え、
     前記パイプの先端の開口には有孔部材が取り付けられ、前記パイプの側壁には開口部が設けられ、
     前記第1分散部は、前記ローターおよび前記パイプが前記試料収容部に挿入されている状態で前記ローターを回転させることによって、前記有孔部材に設けられた孔部と前記パイプの側壁の開口部との間で前記生体試料を循環させながら前記生体試料に含まれる凝集した前記細胞を分散する、請求項6に記載の細胞分析装置。
  8.  前記第1分散処理および前記第2分散処理の一方は、凝集した前記細胞を超音波を用いて分散する超音波分散処理である、請求項1に記載の細胞分析装置。
  9.  前記第1分散処理および前記第2分散処理の一方の前記超音波分散処理は、前記第1分散処理および前記第2分散処理の他方が実行される前記生体試料の量よりも少ない量の前記生体試料に対して実行されるように構成されている、請求項8に記載の細胞分析装置。
  10.  前記第1分散処理は、凝集した前記細胞にせん断力を付与するせん断力付与処理であり、
     前記第2分散処理は、凝集した前記細胞を超音波を用いて分散する超音波分散処理であり、
     前記細胞分散部は、前記第1分散処理の実行後、前記第2分散処理を実行するように構成されている、請求項1に記載の細胞分析装置。
  11.  前記細胞分散部は、前記第1分散処理を実行する第1分散部と、前記第2分散処理を実行する第2分散部とを含み、
     前記第1分散部は、前記生体試料を収容する試料収容部を備え、当該試料収容部に収容された前記生体試料に対して前記第1分散処理を実行し、
     当該細胞分析装置は、
     前記第1分散処理が実行された前記試料収容部内の前記生体試料を、試料容器に分注する試料分注部と、
     当該試料分注部により分注された前記生体試料を収容する前記試料容器を、前記第2分散部に移送する容器移送部と、を備える、請求項10に記載の細胞分析装置。
  12.  前記第2分散部は、超音波が付与される液体を収容するための液体収容部を備え、
     前記容器移送部は、前記試料容器を把持して移送するように構成され、前記試料分注部により分注された前記生体試料を収容する前記試料容器を把持した状態で、前記液体収容部に収容された液体内に前記試料容器を浸漬するように構成されている、請求項11に記載の細胞分析装置。
  13.  前記第1分散処理および前記第2分散処理の一方は、分散液を前記生体試料に添加して凝集した前記細胞を分散する分散液添加処理である、請求項1に記載の細胞分析装置。
  14.  前記分散液は、界面活性剤である、請求項13に記載の細胞分析装置。
  15.  前記検出部は、前記生体試料を通過させるフローセルと、前記フローセルを通過する前記生体試料に光を照射する光源部と、前記光源部が前記生体試料に光を照射することによって生じる光を受光する受光部と、を含む、請求項1に記載の細胞分析装置。
  16.  前記細胞は、上皮細胞であり、
     前記分析部は、上皮細胞が異型であるか否かを分析するように構成されている、請求項1~15のいずれか1項に記載の細胞分析装置。
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