WO2011052550A1 - ApoE-containing HDL中コレステロールの測定方法 - Google Patents

ApoE-containing HDL中コレステロールの測定方法 Download PDF

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WO2011052550A1
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hdl
apoe
cholesterol
reaction rate
deficient
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PCT/JP2010/068883
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Inventor
康樹 伊藤
仁志 千葉
Original Assignee
デンカ生研株式会社
国立大学法人北海道大学
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Publication date
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/60—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving cholesterol

Definitions

  • the present invention relates to a method for fractional quantification of cholesterol (-C) in high density lipoprotein (HDL).
  • HDL receives cholesterol from tissues including the arteriosclerotic wall, it is related to the removal action of cholesterol accumulated in cells and is a risk prevention factor for various arteriosclerosis including coronary arteriosclerosis. Levels are known to be useful guidelines for predicting the onset of arteriosclerotic diseases.
  • HDL is a complex of a protein called apoprotein and a lipid component such as phospholipid, cholesterol, and neutral fat.
  • ApoE-containing due to the difference in the content ratio of one of its components, apolipoprotein E (ApoE) It can be classified into sub-fractions of HDL and ApoE-deficient HDL.
  • ApoE-containing HDL has a strong ability to withdraw cholesterol and has an antiplatelet action, and is attracting attention as a super-good lipoprotein among HDL.
  • CETP inhibitors are known to increase mainly HDL, especially ApoE-containing HDL.
  • Methods for measuring cholesterol in HDL include, for example, separating HDL from other lipoproteins by ultracentrifugation and then subjecting it to cholesterol measurement, or measuring the color intensity by staining lipids after separation by electrophoresis The method of doing is known. However, these methods are troublesome in operation and have problems such as being unable to process a large number of specimens, and are rarely used on a daily basis.
  • a precipitant is added to a sample to aggregate lipoproteins other than HDL, which is removed by centrifugation, and cholesterol in the supernatant containing only the separated HDL is measured.
  • This method is known to have different reactivity to HDL subfractions depending on the type of precipitant used.
  • ApoE-containing HDL is measured as HDL without aggregation.
  • the method for separating and quantifying HDL using this precipitating agent is simpler than ultracentrifugation and electrophoresis, but it involves the operation of adding a precipitating agent to separate it. It is not satisfactory and requires a relatively large amount of specimen.
  • HDL-C HDL cholesterol
  • ApoE-deficient HDL cholesterol ApoE-deficient HDL
  • ApoE-containing HDL-cholesterol ApoE-containing HDL-C
  • the object of the present invention is to quantitate cholesterol in HDL subfractions of total HDL-C and ApoE-containing HDL-C and ApoE-deficient HDL-C separately or simultaneously without requiring complicated fraction separation operation. Is to provide a method.
  • the present invention is capable of separately quantifying HDL subfractions of ApoE-containing HDL-C and ApoE-deficient HDL-C in a test sample, and can further measure a plurality of them simultaneously.
  • a method for quantifying HDL-C is provided.
  • the present invention is as follows.
  • a surfactant with an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of less than 0.7 is added, and cholesterol esterase and cholesterol oxidase are allowed to act to quantify the generated hydrogen peroxide.
  • a surfactant having an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of 1.3 or more is added, and cholesterol esterase and cholesterol oxidase are allowed to act to quantify the generated hydrogen peroxide.
  • the HDL according to any one of [1] to [8], comprising a first step of eliminating cholesterol in lipoproteins other than HDL in the test sample, and then a second step of quantifying cholesterol in HDL.
  • Method for quantifying medium cholesterol comprising a first step of eliminating cholesterol in lipoproteins other than HDL in the test sample, and then a second step of quantifying cholesterol in HDL.
  • a surfactant having an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of less than 0.7 is added, and only ApoE-deficient HDL is reacted, so that cholesterol esterase, cholesterol oxidase, catalase
  • a surfactant having an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of less than 0.7 is added to the test sample, and cholesterol-derived hydrogen peroxide in ApoE-deficient HDL is added.
  • cholesterol-derived hydrogen peroxide in ApoE-deficient HDL is detected at the beginning of the second step.
  • the ratio of ApoE-containing HDL / ApoE-deficient HDL reaction rate is 0.7 or more and less than 1.3.
  • ApoE-containing HDL that detects cholesterol-derived hydrogen peroxide in ApoE-containing HDL by adding a surfactant or a surfactant with an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of 1.3 or more A method of quantifying medium cholesterol and total HDL cholesterol at once.
  • a surfactant having an ApoE-containingEHDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of 0.7 or more and less than 1.3, or an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of less than 0.7 Using a surfactant and a surfactant with an ApoE-containing HDL reaction rate ratio / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of 1.3 or higher as appropriate, the test sample is treated enzymatically and the amount of hydrogen peroxide generated is quantified.
  • cholesterol in ApoE-containing HDL and cholesterol in subfraction HDL of ApoE-deficient HDL can be separately quantified.
  • cholesterol in subfraction HDL and cholesterol in total HDL can be quantified simultaneously.
  • FIG. 2 is a graph showing the ratio of ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate in the HDL subfraction measured by the method of Example 1 of the present invention (continuation of FIG. 2-1).
  • FIG. 2 is a graph showing the ratio of ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate in the HDL subfraction measured by the method of Example 1 of the present invention (continuation of FIG. 2-2).
  • FIG. 2 is a graph showing the ratio of ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate in the HDL subfraction measured by the method of Example 1 of the present invention (continuation of FIG. 2-3). It is a figure which shows the reactivity with respect to the various lipoprotein measured by the method of Example 2 of this invention. It is a figure which shows the correlation with the method of Example 3 of this invention, and PT-DS-Mg precipitation method. It is a figure which shows the correlation with the method of Example 4 of this invention, and the polyethyleneglycol precipitation method.
  • the present invention is a method for quantifying ApoE-containing HDL-C and ApoE-deficient HDL-C in a test sample.
  • cholesterol contained in lipoprotein there are ester type cholesterol (cholesterol ester) and free type cholesterol.
  • cholesterol ester As cholesterol contained in lipoprotein, there are ester type cholesterol (cholesterol ester) and free type cholesterol.
  • cholesterol ester As cholesterol contained in lipoprotein, there are ester type cholesterol (cholesterol ester) and free type cholesterol.
  • cholesterol ester As cholesterol contained in lipoprotein, there are ester type cholesterol (cholesterol ester) and free type cholesterol.
  • cholesterol ester cholesterol ester
  • free type cholesterol cholesterol
  • Lipoprotein is roughly divided into VLDL, LDL and HDL fractions.
  • HDL can be classified into ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL subfractions based on the difference in the content ratio of ApoE.
  • ApoE-containing HDL indicates that HDL contains ApoE
  • ApoE-deficient HDL indicates that it does not contain ApoE.
  • the reason why HDL is divided into ApoE-containing AHDL and ApoE-deficient HDL is that these lipoproteins have different mechanisms of action against arteriosclerosis, and therefore it was necessary to measure them separately.
  • ApoE-containing HDL has a strong ability to withdraw cholesterol, has an antiplatelet effect, and acts as a good HDL.
  • CETP inhibitors that increase HDL-C as a therapeutic agent for dyslipidemia are known to increase ApoE-containing HDL mainly.
  • HDL in which ApoE is present or contained in a large amount is sometimes referred to as ApoE-rich HDL, which is also included in ApoE-containing HDL.
  • HDL can be classified into HDL2 and HDL3 according to the difference in density, and there are ApoE-containing HDL2 and ApoE-containing HDL3 with different ApoE contents for each.
  • large HDL with a large particle size lacks apolipoprotein A1 (ApoA1) which is usually present and there are many ApoEs, which are also included in ApoE-containing HDL.
  • ApoA1 apolipoprotein A1
  • the diameter of the lipoprotein particle size varies depending on the reporter, but VLDL is 30 nm to 80 nm (30 nm to 75 nm), LDL is 22 nm to 28 nm (19 nm to 30 nm), and HDL is 7 to 10 nm in diameter. Specific gravity is 1.006 or less for VLDL, 1.019 to 1.063 for LDL, and 1.063 to 1.21 for HDL.
  • test sample to be subjected to measurement in the method of the present invention may be any sample as long as it may contain lipoproteins such as HDL, LDL, VLDL and CM, for example, serum, plasma, etc.
  • lipoproteins such as HDL, LDL, VLDL and CM
  • body fluid and its dilution can be mentioned, However, It is not limited to these.
  • the method of the present invention is usually performed using an automatic analyzer. Although the number of steps of the method of the present invention is not limited, it is preferably performed by two steps, a first step and a second step.
  • lipoproteins other than HDL such as CM, VLDL, and LDL
  • sub-fraction HDL other than sub-fraction LDL to be measured among sub-fraction LDL of ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL
  • cholesterol esterase is reacted with a specimen sample, and the resulting cholesterol is reacted in the presence of a cholesterol-reactive enzyme such as cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase to lead out of the reaction system.
  • the reaction may be caused in the presence of a specific surfactant reactive to the lipoprotein to be introduced outside the reaction system.
  • guiding cholesterol of lipoproteins out of the reaction system means that HDL-C or subfractions in which cholesterol contained in lipoproteins such as CM, VLDL and LDL and subfraction HDL other than the measurement target are the measurement targets. This refers to eliminating or aggregating cholesterol contained in the lipoprotein or inhibiting it from reacting in a later step so as not to affect the determination of HDL-C.
  • “Elimination” means that lipoprotein cholesterol in the sample is decomposed so that the decomposition product is not detected in the next step.
  • Examples of a method for eliminating lipoprotein cholesterol include a method in which hydrogen peroxide generated by the action of cholesterol esterase and cholesterol oxidase is decomposed into water and oxygen using catalase.
  • the hydrogen donor and the generated hydrogen peroxide may be reacted with peroxidase to convert to colorless quinone, but is not limited thereto.
  • cholesterol esterase is reacted with a sample in the presence of a surfactant having reactivity with the measurement target, and the resulting cholesterol is reacted in the presence of a cholesterol-reactive enzyme such as cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase.
  • the measurement target can be enzymatically quantified by converting the hydrogen peroxide produced into a quinone dye and measuring the quinone dye.
  • the sub-fraction HDL of ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL of the present invention can be fractionated as follows. For example, as shown in a reference example described later, by subjecting a sample containing HDL to ultracentrifugation using potassium bromide, total lipoproteins are separated, and then lipoproteins other than HDL are aggregated with polyethylene glycol. HDL can be separated and then fractionated by gradient elution with sodium chloride using heparin affinity chromatography to separate the ApoE-deficient HDL fraction and the ApoE-containing HDL fraction.
  • HDL sub-fractions of ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL of various surfactants By using the fractionated ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL subfraction fractions, HDL sub-fractions of ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL of various surfactants, respectively.
  • the reactivity to can be investigated.
  • the reactivity of a surfactant to lipoprotein can be evaluated by using the degree of cholesterol reaction as an index when cholesterol esterase and cholesterol oxidase are allowed to act on lipoprotein in the presence of the surfactant. it can.
  • the reactivity of the surfactant with respect to lipoprotein can be measured by adding various surfactants to the second reagent and performing the measurement by the method shown in Example 1 below. .
  • the degree of reactivity of a surfactant may be expressed as a reaction rate and a ratio of the reaction rate.
  • the reaction amount of the surfactant to ApoE-containing HDL and the reaction amount of the surfactant to ApoE-deficient HDL were measured, and the ratio to the total cholesterol amount in each sample (hereinafter referred to as “ApoE-containing”).
  • HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio From this, it is possible to calculate the ratio of ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient ⁇ ⁇ ⁇ HDL reaction rate.
  • ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio is 0.7 or more and less than 1.3
  • ApoE Surfactant with strong reactivity to -containing HDL and weak reactivity to ApoE-deficient HDL is 1.3 or more
  • ApoE-deficient HDL has strong reactivity to ApoE Can be classified as a surfactant with low reactivity to -containing HDL (ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio is less than 0.7).
  • Surfactant classification is shown in FIGS. 2-1 to 2-4.
  • an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of 0.7 or more and less than 1.3
  • An activator preferably a surfactant having an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of 0.8 or more and less than 1.2.
  • sodium alkylbenzene sulfonate is used as an anionic surfactant, polyoxyethylene monolaurate, lauryl alcohol alkoxylate, polyoxyethylene laurylamine, a molecular weight of less than 1700 is used as a nonionic surfactant.
  • Polyoxyethylene polyoxypropylene block polymer, polyoxyethylene nonylphenyl ether having an HLB of 13.0 or more and less than 14.5, and amphoteric surfactants include alkyldimethylaminoacetic acid betaine and alkylcarboxymethylhydroxyethylimidazolium betaine.
  • a specific surfactant as an anionic surfactant, New Rex Soft 60-N, New Rex Powder F, New Rex Paste H (made by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.), Neo-Perex No. 1-F, Neoperex G-65, Emar NC-35 (above, manufactured by Kao Corporation), etc.
  • Nonionic surfactants such as Adecatol LB70, Adecatol LB-103, Adecatol LB-93 (Asahi Denka Co., Ltd.), Dispa Nord K-3, Nonion L-4, Nonion MN-811, Nonion NS-210, Nonion NS-212, Naimine L-202, Pronon 102, Pronon 204 (manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.), Nonipole 85, Nonipole 95, Nonipole 100, Nonipol 120 (manufactured by Sanyo Kasei Co., Ltd.), etc., as examples of amphoteric surfactants, Amphitol 24B (manufactured by Kao Corporation), Nissan Anon BF, Nissan Anon GLM-R-LV, Nissan Anon LG ( Above manufactured by NOF Corporation), and the like.
  • Adecatol LB70 Adecatol LB-103
  • surfactant with high reactivity to ApoE-containing HDL and low reactivity to ApoE-deficient HDL surfactant with ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of 1.3 or more, preferably ApoE-containing HDL
  • a surfactant having a reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of 1.4 or more can be mentioned.
  • HLB 5-6 for example, 5.7 polyoxyethylene nonylphenyl ether is raised, and specific examples include Nonion NS-202S (trade name: manufactured by NOF Corporation).
  • surfactant with high reactivity to ApoE-deficient ⁇ ⁇ HDL and low reactivity to ApoE-containing HDL surfactant with an ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of less than 0.7, preferably ApoE-containing HDL
  • a surfactant having a reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio of less than 0.65 can be mentioned.
  • anionic surfactants include polyoxyethylene alkyl ether sodium sulfate, polyoxyethylene alkyl ether sulfate triethanolamine, fatty acid amide ether sulfate sodium salt, lauryl alcohol with a cloudy temperature of 75 ° C or higher.
  • surfactants include anionic surfactants such as EMAL 20CM, EMAL 20T, defendol WZ (above Kao), Sunamide C-3, Sunamide CF-10 (above Nippon Oil & Fats), Adeka Coal CS-141E, Adeka Coal PS-440E (manufactured by Asahi Denka Co., Ltd.) etc.
  • Nonionic surfactants such as Nonion HS-215, Nonion NS-215, Nonion HS-220, Nonion NS-220, Nonion NS-230 Nimin T2-210 (manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.), Emulgen 1118S-70, Emulgen 120, Emulgen LS-114 (manufactured by Kao Corporation), Adekatol LB-1220, Adekatol LB-1520, (manufactured by Asahi Denka) Is mentioned.
  • the method of the present invention is used to separately quantitate HDL sub-fractions of ApoE-containing HDL-C and ApoE-deficient HDL-C, and to measure more than one simultaneously explain.
  • the method of the present invention can be performed in two steps of the first step and the second step, and the following reaction may be caused in the first step and the second step.
  • CM, VLDL, LDL Lipoproteins other than HDL
  • ApoE-containing HDL and / or ApoE-deficient HDL cholesterol is measured in the second step.
  • the surfactant having reactivity with ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL can be used in both the first step and the second step.
  • the concentration in the first step is preferably 0.05 g / L to 2.0 g / L, more preferably 0.1 g / L to 1.0 g / L.
  • the concentration in the second step is preferably 0.15 g / L to 6.0 g / L, more preferably 0.3 g / L to 3.0 g / L.
  • the lipoproteins such as CM, VLDL, and LDL other than HDL are deleted in the first step, and ApoE -Increasing the specificity of measurement of containing HDL and / or ApoE-deficient HDL cholesterol.
  • Examples of methods for eliminating lipoproteins other than HDL include a method using catalase and a method for forming colorless quinone.
  • Cholesterol esterase and cholesterol oxidase are allowed to act on the test sample in the absence of a surfactant that acts on HDL, and the resulting hydrogen peroxide derived from lipoproteins other than HDL is removed.
  • ester-type cholesterol in lipoprotein is hydrolyzed to produce free cholesterol and fatty acid.
  • the resulting free cholesterol and free cholesterol originally present in the lipoprotein are oxidized by the action of cholesterol oxidase to produce cholestenone and hydrogen peroxide.
  • Lipoprotein can be eliminated by removing the generated hydrogen peroxide.
  • DAOS N-ethyl-N- (2-hydroxysulfopropyl) -3,5-
  • DAOS N-ethyl-N- (2-hydroxysulfopropyl) -3,5-
  • DAOS N-ethyl-N- (2-hydroxysulfopropyl) -3,5-
  • Examples thereof include a method of converting hydrogen peroxide into colorless quinone by reacting with a phenolic or aniline-based hydrogen donor compound that reacts with hydrogen peroxide to produce colorless quinone, such as dimethyoxyaniline). It is not limited to.
  • cholesterol in lipoproteins other than HDL is largely eliminated in the first step, and in the HDL subfraction of HDL or ApoE-containingpoHDL and / or ApoE-deficient HDL by the reaction in the second step. Only the cholesterol is specifically quantified.
  • the first step may be performed in the absence of a surfactant that acts on HDL.
  • a surfactant that acts on HDL.
  • cholesterol in HDL hardly reacts, and only cholesterol in other lipoproteins such as LDL, VLDL, and CM reacts and is erased.
  • the cholesterol in the HDL subfraction of HDL or ApoE-containing poHDL and / or ApoE-deficient HDL is selectively quantified in the next second step.
  • the concentration of cholesterol esterase in the reaction solution in the first step is preferably about 0.2 to 1.0 U / ml, and the concentration of cholesterol oxidase is preferably about 0.1 to 0.7 U unit / ml. Further, the concentration of catalase is preferably about 40 to 100 U / ml, and the concentration of peroxidase is preferably about 0.4 to 1.0 U / ml. The concentration of the compound that reacts with hydrogen peroxide to produce colorless quinone is preferably about 0.4 to 0.8 mmol / l.
  • the reaction in the first step is preferably carried out in a buffer solution having a pH of 5 to 8.
  • a buffer solution having a pH of 5 to 8.
  • phosphate, glycine, Tris and Good buffers are preferable.
  • Bis-Tris, PIPES, MOPSO, BES, HEPES and POPSO, which are good buffers, are preferable, and the concentration of the buffer is preferably about 10 to 500 mM.
  • a divalent metal ion may be included in the reaction solution in order to increase the elimination efficiency of lipoproteins other than HDL.
  • the divalent metal ion copper ion, iron ion and magnesium ion can be preferably used, but magnesium ion is particularly preferable.
  • the concentration of the divalent metal ion is preferably about 5 to 200 mM.
  • lipoprotein hydrolase can be optionally added to the reaction solution in the first step. It is preferable to add this enzyme because cholesterol in VLDL is particularly easily reacted.
  • concentration of this enzyme in the reaction solution is preferably about 5.0 to 10.0 U / ml.
  • the reaction temperature in the first step is suitably about 25 to 40 ° C, most preferably 37 ° C.
  • the reaction time may be about 2 to 10 minutes.
  • the ApoE-deficient HDL-C value was calculated by subtracting the ApoE-deficient HDL-C value calculated using a surfactant having a strong reactivity to ApoE-deficient HDL and a weak reactivity to ApoE-containing HDL. The amount of containing HDL-C can be quantified.
  • a surfactant having a strong reactivity to ApoE-deficient HDL and a weak reactivity to ApoE-containing HDL is added to the first reagent used in the first step of eliminating lipoproteins other than HDL, and further, the ApoE-
  • a surfactant that reacts to both containing HDL and ApoE-deficient HDL, or a surfactant that is highly reactive to ApoE-containing HDL and weakly reactive to ApoE-deficient HDL to the second reagent used in the second step ApoE-containing HDL-C can be measured accurately.
  • At least ApoE-deficient HDL-C may be deleted in the first step.
  • Cholesterol in lipoproteins such as CM, VLDL, and LDL may be erased in the first step, and lipoproteins such as CM, VLDL, and LDL do not react in both the first and second steps and are erased to the end. It may remain without being.
  • the surfactant concentration used in the first step is a surfactant that reacts with both ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL used in the second step, or It is necessary to use it at a concentration lower than the surfactant concentration in the second step so that the action of the surfactant having a strong reactivity to ApoE-containing HDL and a weak reactivity to ApoE-deficient HDL is not inhibited.
  • the surfactant concentration ratio (in the first reagent) used in the first step / surfactant concentration ratio (in the second reagent) used in the second step is preferably less than 0.2. More preferably, it is less.
  • a surfactant having a strong reactivity with ApoE-deficient HDL and a weak reactivity with ApoE-containing HDL is added, and in the absence of catalase, it is allowed to act together with cholesterol esterase and cholesterol oxidase.
  • a surfactant that reacts with both ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL or a surfactant that is highly reactive with ApoE-containing HDL and weakly reactive with ApoE-deficient HDL, it can be performed in one measurement. Measurements of both ApoE-containing HDL-C and total HDL-C can be obtained.
  • ApoE-deficient HDL is decomposed by a surfactant having a strong reactivity to ApoE-deficient HDL and a weak reactivity to ApoE-containing ⁇ HDL, and it becomes a reaction intermediate by the action of cholesterol esterase and cholesterol oxidase.
  • Some ApoE-deficient HDL-derived hydrogen peroxide is generated.
  • this hydrogen peroxide instantaneously forms a quinone dye in the presence of peroxidase, 4-aminoantipyrine, and a trunner reagent present in the second reagent, resulting in a change in absorbance of the reaction solution.
  • this change in absorbance is due to a reaction based on ApoE-deficient HDL-C, this amount of change in absorbance corresponds to the amount of ApoE-deficient HDL-C. This change in absorbance is detected at the beginning of the second step.
  • ApoE-containing HDL is a surfactant that reacts with both ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL present in the second reagent in the second step, or ApoE-containing HDL has a strong reactivity to ApoE-containing HDL.
  • the total amount of change in absorbance in the second step corresponds to the amount of both ApoE-deficient HDL-C and ApoE-containing HDL-C. That is, the total absorbance change amount in the second step corresponds to the total HDL-C amount.
  • These changes in absorbance can be measured by an automatic analyzer. By changing the analysis conditions at this time, it is possible to simultaneously measure ApoE-deficient HDL-C, ApoE-containing HDL-C, and total HDL-C in one measurement. The quantitative value of the item can be obtained.
  • one measurement condition in the multi-item analysis of the automatic analyzer is that of the total HDL-C based on the total absorbance change amount in the second step. This is a condition for performing quantification.
  • the other measurement conditions are that ApoE-containing HDL-C depends on the amount of change in absorbance between the two points after the addition of the second reagent in the second step (after the sudden change in absorbance immediately after the addition of the second reagent and the final reaction point). This is a condition for performing quantitative determination.
  • the enzymatic determination method of cholesterol in the present invention itself is well known in this field.
  • hydrogen peroxide is generated from cholesterol ester and free cholesterol by the action of cholesterol esterase and cholesterol oxidase as in the first step.
  • This can be done by quantifying hydrogen peroxide.
  • the quantification of hydrogen peroxide can be carried out, for example, by reacting with a compound that forms quinone dye by reacting with hydrogen peroxide in the presence of peroxidase, and measuring the amount of quinone dye produced by absorbance measurement or the like. it can.
  • the quinone dye can be formed by using, for example, hydrogen peroxide, 4-aminoantipyrine, and a phenol or aniline hydrogen donor.
  • N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -3,5-dimethoxyaniline (HDAOS), N-ethyl-N-sulfopropyl-3-methoxyaniline are used as aniline-based hydrogen donor compounds.
  • ADPS N-ethyl-N-sulfopropylaniline
  • APS N-ethyl-N-sulfopropylaniline
  • DAPS N-ethyl-N-sulfopropyl-3,5-dimethoxyaniline
  • HDAPS N-sulfopropyl-3,5-dimethoxyaniline
  • ALOS N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) + 3,5-dimethoxyaniline
  • ALOS N-ethyl-N- (2- Droxy-3-sulfopropyl) -3
  • the concentration of the compound that forms the quinone dye is not particularly limited, but for example, 4-aminoantipyrine is preferably 0.1 to 2.0 mM, more preferably 0.5 to 1.5 mM, and phenolic or aniline based on the entire reaction mixture. For hydrogen donor compounds, 0.5-2.0 mmol / L is preferred.
  • the concentration of peroxidase is not particularly limited, but is preferably 0.4 to 5 U / ml with respect to the entire reaction mixture.
  • the preferred reaction conditions (reaction temperature, reaction time, buffer solution, pH) in the second step are the same as the preferred reaction conditions in the first step.
  • Reference Example 1 Fractionation of ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL The following operation was performed to recover the fraction of ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL from serum samples.
  • HDL was retained on a heparin-immobilized column, and HDL was separated into ApoE-deficient HDL and ApoE-containing HDL using 30 to 200 mmol / L sodium chloride. Total cholesterol, ApoA1, and ApoE were measured on the fraction after separation. The results are shown in FIG.
  • Example 1 Reactivity of various surfactants to ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL For the purpose of confirming the reactivity of various surfactants to ApoE-containing HDL and ApoE-deficient HDL subfractions, A reagent having the composition was prepared. In the second reagent, 100 kinds of surfactants were used respectively.
  • First reagent BES buffer pH7.0 100 mmol / l HDAOS 0.7 mmol / l Cholesterol esterase 0.8 U / ml Cholesterol oxidase 0.5 U / ml Catalase 80 U / ml
  • Second reagent BES buffer pH7.0 100 mmol / l 4-Aminoantipyrine 4.0 mmol / l Peroxidase 2.4 U / ml Sodium azide 0.1%
  • Various surfactants 1.0% 150 ⁇ l of the first reagent is mixed with 2 ⁇ l of the ApoE-deficient HDL (fractions 25, 26, 27) and ApoE-containing HDL (fractions 44, 45, 46) purified by the method of Reference Example 1 and incubated at 37 ° C.
  • the reaction (first step)
  • the amount of cholesterol was calculated from the measured absorbance, and the ApoE-containing HDL reaction rate and the ApoE-deficient HDL reaction rate were determined by calculating the ratio to the total cholesterol amount in each sample. Furthermore, the ratio of ApoE-containing HDL reaction / ApoE-deficient HDL reaction was calculated.
  • the surfactant used was ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate ratio, ApoE-containing HDL reaction rate / ApoE-deficient HDL reaction rate
  • fractions 25, 26, and 27 in Reference Example 1 were selected as ApoE-deficient HDL. This is because ApoE was hardly measured, and the total amount of cholesterol was large, and it was considered appropriate for obtaining the reaction rate.
  • fractions 44, 45 and 46 were selected as ApoE-containing HDL. This is because ApoE was the most suitable for obtaining the response rate. In either case, it is considered that the same result can be obtained even if the selected fraction is slightly changed.
  • FIG. 3 shows the result of calculating the amount of cholesterol from the measured absorbance and comparing it with the amount of cholesterol in each sample.
  • cholesterol in HDL is mostly quantified, but cholesterol in other lipoproteins is hardly or not quantified. It can be seen that cholesterol in HDL can be selectively quantified without being affected by lipoproteins.
  • Example 3 Correlation with Other Methods in ApoE-deficient HDL-C Concentration Measurement
  • a reagent was prepared in which the surfactant of the second reagent in Example 1 was Adecatol LB-1220.
  • the PT-DS-Mg precipitation method was used as a comparative control method for measuring ApoE-deficient HDL, and compared with the value obtained by the method of the present invention.
  • the operation of the PT-DS-Mg precipitation method was as follows. 200 ⁇ L of 3 g / L sodium phosphotungstate-1.8 g / L dextran sulfate sodium-0.1 mol / l magnesium chloride mixed solution was added to 200 ⁇ L of the sample, and after mixing, left at room temperature for 10 minutes. Thereafter, the mixture was centrifuged at 2000 g for 15 minutes, and 300 ⁇ L of the supernatant was recovered. The total cholesterol in the fraction after collection was measured, and the ApoE-deficienteficiHDL-C concentration was calculated.
  • the method of the present invention was measured by the same operation as in Example 1.
  • results of the method of the present invention are the results of PT-DS-Mg precipitation (A Rapid and Simple Quantification of Human Apolipoprotein E-Rich High-Density Lipoproteins in Serum: BIOCHEMICAL MEDICINE AND METABOLIC BIOLOGY 47,31-37 1992).
  • Example 4 Correlation with ApoE-containing HDL-C + ApoE-deficient HDL-C Concentration with Other Methods
  • a reagent was prepared in which the surfactant of the second reagent in Example 1 was Adecatol LB-103.
  • a polyethylene glycol precipitation method was used as a comparative control method for measuring all HDL subfractions including ApoE-containing HDL and compared with the values obtained by the method of the present invention.
  • the operation of the polyethylene glycol precipitation method was as follows. 200 ⁇ L of a 13% polyethylene glycol solution (average molecular weight 6000) was added to 200 ⁇ L of the sample, mixed, and allowed to stand at room temperature for 10 minutes. Thereafter, the mixture was centrifuged at 2000 g for 15 minutes, and 300 ⁇ L of the supernatant was collected. The total cholesterol in the fraction after collection was measured, and the concentration of ApoE-containing HDL-C + ApoE-deficient HDL-C was calculated.
  • the method of the present invention was measured by the same operation as in Example 1.
  • the correlation between the method of the present invention and the polyethylene glycol precipitation method is shown in FIG.
  • the results of the method of the present invention showed a good correlation with the polyethylene glycol precipitation method, which is a total HDL subfraction measurement method including ApoE-containing HDL.

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Abstract

　全HDL-C並びにApoE-containing HDL-C及びApoE-deficient HDL-CのHDL亜分画中のコレステロールを別々に又は同時に定量する方法の提供。　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤及びApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上の界面活性剤からなる群から選択される界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-containing HDLのコレステロールをApoE-deficient HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量する方法。

Description

ApoE-containing HDL中コレステロールの測定方法
　本発明は、高密度リポ蛋白（HDL）中のコレステロール（-C）の亜分画分別定量方法に関する。
　HDLは、動脈硬化壁を含めた各組織からコレステロールを受け取るので細胞内に蓄積したコレステロールの除去作用に関係し、冠動脈硬化症をはじめとする各種動脈硬化症の危険予防因子であり、その血中レベルは動脈硬化性疾患の発症予知に有用な指針となることが知られている。
　HDLはアポタンパクとよばれるタンパク質と、リン脂質、コレステロール、中性脂肪といった脂質成分の複合体であるが、その成分の一つであるアポリポタンパク質Ｅ（ApoE）の含量比率の違いからApoE-containing HDLとApoE-deficient HDLの亜分画に分類することができる。ApoE-containing HDLは、コレステロール引き抜き能が強く、抗血小板作用もあり、HDLの中でも超善玉リポ蛋白として注目されている。最近では、スタチンに次ぐ脂質異常症治療薬として、HDL-Cを上昇させるCETP阻害薬に期待が寄せられている。CETP阻害薬はHDLのうち特にApoE-containing HDLを主に増加させることが知られている。
　HDL中のコレステロールの測定方法としては、例えば超遠心分離によってHDLを他のリポ蛋白と分離した後、コレステロール測定に供する方法や、電気泳動によって分離した後に脂質の染色を行なってその発色強度を測定する方法等が知られている。しかしながら、これらの方法は、いずれも操作が煩雑であり、多数の検体を処理できない等の問題があり、日常的にはほとんど用いられていない。
　HDL中のコレステロールの測定方法として、検体に沈殿剤を加えてHDL以外のリポ蛋白質を凝集させ、これを遠心分離によって取り除き、分離されたHDLのみを含む上清中のコレステロールを測定する方法がある。この方法では使用する沈殿剤の種類によってHDLの亜分画に対する反応性が異なることが知られており、リンタングステン酸－マグネシウムやデキストラン硫酸－マグネシウム、ヘパリン－カルシウムを沈殿剤として用いた方法ではApoE-containing HDLはVLDL、LDL等のリポタンパクと共に凝集し、遠心分離により沈殿分画として取り除かれるため、HDL分画として測定できない。一方、ヘパリン－マンガンやポリエチレングリコール（PEG）を用いた方法ではApoE-containing HDLは凝集せずHDLとして測定される。いずれにしろこの沈殿剤を使用してHDLを分離し定量する方法は、超遠心法や電気泳動法に比較して簡便であるものの、沈殿剤を加えて分離する操作を含むため、簡便性で満足できるものでなく、また、比較的多量の検体量を必要とする。
　近年ではHDL-Cを定量する簡便な方法として、沈殿剤を用いた前処理操作なく、自動分析装置でHDL-Cを定量する方法が知られており、コレステロールエステラーゼやコレステロールオキシダーゼ酵素を化学修飾し、シクロデキストリン等の包接化合物存在下においてHDL中のコレステロールを特異的に捕える方法（特許文献１を参照）やHDL以外のリポ蛋白と凝集体や複合体を形成させ、その後にHDL中のコレステロールを酵素的反応で捕える方法（特許文献２及び３を参照）、HDLに特異的に作用するHLBが１３～１４の界面活性剤を用いる方法（特許文献４を参照）等が知られている。
特開平7-301636号公報 特開平8-131197号公報 特開平8-201393号公報 国際公開第WO98/26090号
　以上に述べた方法はHDLコレステロール（HDL-C）を測定できるものの、HDL亜分画に対する反応性が異なり、HDLを亜分画に分けて考えた場合、ApoE-deficient HDLコレステロール（ApoE-deficient HDL-C）及びApoE-containing HDLコレステロール（ApoE-containing HDL-C）をそれぞれ部分的にも、又はほとんど測定できず、ApoE-deficient HDL-C及びApoE-containing HDL-Cを分別して定量できないという問題があった。
　本発明の目的は、煩雑な分画分離操作を必要とせず、全HDL-C並びにApoE-containing HDL-C及びApoE-deficient HDL-CのHDL亜分画中のコレステロールを別々に又は同時に定量する方法を提供することである。
　本願発明者らは、鋭意研究の結果、ApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLの各HDL亜分画に対する作用の強さ（反応性）が異なる界面活性剤が存在することを見出した。これらの反応性の異なる界面活性剤を使い分けることによりApoE-containing HDL-C及びApoE-deficient HDL-Cを分別して別々に測定することができ、さらに全HDL-C（ApoE-containing HDL-C及びApoE-deficient HDL-C）も測定することができる。また、２つの試薬を用いる汎用自動分析装置を用いて２工程で測定を行なう場合、第１工程で用いる第１試薬中、及び第２工程で用いる第２試薬中においてこれらの界面活性剤を組み合わせて使用することにより、ApoE-containing HDL-C、ApoE-deficient HDL-C及び全HDL-Cをそれぞれ単独で測定することができ、さらにいずれか複数を同時に測定できることを見出し本発明を完成した。
　このように、本発明は、被検試料中のApoE-containing HDL-C及びApoE-deficient HDL-CのHDL亜分画を単独で分別定量でき、さらに複数を同時に測定することができる、亜分画HDL-Cの定量方法を提供する。
　すなわち、本発明は以下のとおりである。
[１]　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤及びApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上の界面活性剤からなる群から選択される界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-containing HDLのコレステロール及び／又はApoE-deficient HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量する方法。
[２]　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-containing HDL中のコレステロールを含む全HDL中のコレステロールを酵素的に定量する全HDL中のコレステロールの定量方法。
[３]　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-deficient HDL中のコレステロールのみを酵素的に定量するApoE-deficient HDL中のコレステロールの定量方法。
[４]　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-containing HDL中のコレステロールのみを酵素的に定量するApoE-containing HDL中のコレステロールの定量方法。
[５]　[２]に記載の方法で得られたApoE-containing HDL中のコレステロールを含むHDL中のコレステロール値から、[３]の方法で得られたApoE-deficient HDL中のコレステロールを減ずることにより、ApoE-containing HDL中のコレステロールを算出する、ApoE-containing HDL中のコレステロール定量方法。
[６]　ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤がディスパノールK3である、[１]又は[２]のHDL中のコレステロールの定量方法。
[７]　ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤がアデカトール　LB-1220である、[１]又は[３]のHDL中のコレステロールの定量方法。
[８]　ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤がノニオンNS-202Sである、[１]又は[４]のHDL中のコレステロールの定量方法。
[９]　被検試料中のHDL以外のリポ蛋白中コレステロールを消去する第１工程と、次いでHDL中のコレステロールを定量する第２工程とを含む、[１]から[８]のいずれかのHDL中コレステロールの定量方法。
[１０]　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤を加え、ApoE-deficient HDLのみを反応させ、コレステロールエステラーゼ、コレステロールオキシダーゼ、カタラーゼの作用により、ApoE-deficient HDL中のコレステロールを反応系外に導く第１工程と、次いでApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤、又はApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤を加え、被検試料中の残りのHDLを反応させ、ApoE-containing HDL中のコレステロールを定量する第２工程とを含むApoE-containing HDL中コレステロールの定量方法。
[１１]　第１工程において被検試料中にApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤を加え、ApoE-deficient HDL中のコレステロール由来の過酸化水素を生成し、ApoE-deficient HDL中のコレステロール由来の過酸化水素を第２工程の初期に検出し、同時に第２工程においてApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤又はApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤を加え、ApoE-containing HDL中のコレステロール由来の過酸化水素を検出する、ApoE-containing HDL中コレステロール及び全HDL中コレステロールを一度に定量する方法。
　本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2009-245476号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
　本発明の方法により、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤及びApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤を適宜用いて、被検試料を酵素的に処理し、発生した過酸化水素を定量することにより、ApoE-containing HDL中のコレステロールとApoE-deficient HDLの亜分画HDL中のコレステロールを分別定量することができる。また、亜分画HDL中のコレステロールと全HDL中のコレステロールを同時に定量することができる。
本発明の参考例１の方法により分離したApoE-deficient HDL及びApoE-containing HDLフラクションの状態を示す図である。 本発明の実施例１の方法により測定したHDL亜分画におけるApoE-containing HDL反応率/ApoE-deficient HDL反応率比を示す図である。 本発明の実施例１の方法により測定したHDL亜分画におけるApoE-containing HDL反応率/ApoE-deficient HDL反応率比を示す図である（図２－１の続き）。 本発明の実施例１の方法により測定したHDL亜分画におけるApoE-containing HDL反応率/ApoE-deficient HDL反応率比を示す図である（図２－２の続き）。 本発明の実施例１の方法により測定したHDL亜分画におけるApoE-containing HDL反応率/ApoE-deficient HDL反応率比を示す図である（図２－３の続き）。 本発明の実施例２の方法により測定した各種リポ蛋白に対する反応性を示す図である。 本発明の実施例３の方法とPT-DS-Mg沈殿法との相関を示す図である。 本発明の実施例４の方法とポリエチレングリコール沈殿法との相関を示す図である。
　以下、本発明について詳細に説明する。
　本発明は被検試料中のApoE-containing HDL-C及びApoE-deficient HDL-Cを定量する方法である。
　リポ蛋白中に含まれるコレステロールとしては、エステル型コレステロール（コレステロールエステル）及び遊離型コレステロールがある。本明細書において、単に「コレステロール」という場合には、これらの両者を包含する。
　リポ蛋白は大きくVLDL、LDL及びHDLの分画に分けられる。このうち、HDLはApoEの含量比率の違いからApoE-containing HDLとApoE-deficient HDLの亜分画に分類することができる。通常、ApoE-containing HDLはHDL中にApoEを含有したものを示し、ApoE-deficient HDLはApoEを含有しないものを示す。HDLをApoE-containing HDLとApoE-deficient HDLに分けているのは、これらのリポ蛋白では動脈硬化に対する作用機序が異なるので、分別測定する必要があったからである。すなわち、ApoE-containing HDLはコレステロール引き抜き能が強く、抗血小板作用もあり、HDLの中でも善玉として作用している。また、脂質異常症治療薬としてHDL-Cを上昇させるCETP阻害薬でも主にApoE-containing HDLが上昇することが知られている。
　また、ApoEが存在するか又は含有量が多いHDLをApoE-rich HDLと呼ぶことがあるが、これもApoE-containing HDLに含まれる。
　HDL内部に存在するApoE含有量の分布は連続しているので、リポ蛋白中のApoE含有比により、明確にApoE-containing HDLとApoE-deficient HDLを区別することは容易ではないが、後述のように例えばApoE含有量を指標にクロマトグラフィー等によりHDLを分画した場合、特定のApoE含量を定め、その値によりApoE-containing HDLとApoE-deficient HDLを区別すればよい。
　また、HDLは密度の違いによってHDL２とHDL３に分類することができ、それぞれについてApoE含有量の違う、ApoE-containing HDL２及びApoE-containing HDL３が存在する。また粒子サイズの大きい大型のHDLには通常存在するアポリポタンパクＡ１（ApoA1）が欠損しており、ApoEが多数存在するものがあるが、これもApoE-containing HDLに含まれる。リポ蛋白粒子サイズの直径は、報告者により異なるがVLDLが30nm～80nm（30nm～75nm）で、LDLが22nm～28nm(19nm～30nm)、HDLが直径７～10nmである。比重は、VLDLが1.006以下、LDLが1.019～1.063、HDLが1.063～1.21である。
　本発明の方法において測定に供される被検試料としては、HDL、LDL、VLDL及びCM等のリポ蛋白を含む可能性のある試料であればいずれのものでもよく、例えば、血清、血漿等の体液やその希釈物を挙げることができるがこれらに限定されるものではない。
　本発明の方法は通常、自動分析装置を用いて行われる。本発明の方法の工程数は限定されないが、好ましくは第１工程と第２工程の２つの工程により行われる。
　例えば、第1工程では、CM、VLDL、LDL等のHDL以外のリポ蛋白及びApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLの亜分画LDLのうち測定対象である亜分画LDL以外の亜分画HDLを反応系外へ導く。すなわち、コレステロールエステラーゼを被検体試料と反応させ、生じたコレステロールをコレステロールオキシダーゼ又はコレステロールデヒドロゲナーゼ等のコレステロール反応酵素の存在下で反応させ反応系外へ導く。この際、反応系外で導こうとするリポ蛋白に反応性を有する特定の界面活性剤の存在下で反応を起こさせてもよい。
　ここで、リポ蛋白のコレステロールを反応系外に導くとは、CM、VLDL及びLDL並びに測定対象以外の亜分画HDLなどのリポ蛋白に含まれるコレステロールが測定対象であるHDL-C又は亜分画HDL-Cの定量に影響を及ぼさないように、上記リポ蛋白に含まれるコレステロールを消去、凝集させたり、後の工程で反応しないよう阻害すること等をいう。
　消去とは被検体試料中のリポ蛋白コレステロールを分解し、その分解物が次の工程において検出されないようにすることを意味する。リポ蛋白コレステロールを消去するための方法としては、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ発生した過酸化水素を、カタラーゼを用いて水と酸素に分解する方法が挙げられる。また、ペルオキシダーゼを用いて水素供与体と発生した過酸化水素を反応させ無色キノンに転化してもよいが、これらに限定されるものではない。
　第２工程では、測定対象に反応性を有する界面活性剤の存在下でコレステロールエステラーゼを被検体試料と反応させ、生じたコレステロールをコレステロールオキシダーゼ又はコレステロールデヒドロゲナーゼ等のコレステロール反応酵素の存在下で反応させ発生した過酸化水素をキノン色素に転化させキノン色素を測定することにより測定対象を酵素的に定量することができる。
　本発明のApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLの亜分画HDLは以下のようにして分画することができる。例えば、後記の参考例に示すように、HDLを含む試料を臭化カリウムを用いた超遠心分離に供することにより全リポ蛋白を分離し、次いでポリエチレングリコールによりHDL以外のリポ蛋白を凝集させることによりHDLを分離し、次いでヘパリン親和性クロマトグラフィーを用いて塩化ナトリウムを用いたグラジエント溶出により分画し、ApoE-deficient HDLフラクション及びApoE-containing HDLフラクションを分離することができる。
　このようにして分取したApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDL 亜分画フラクションを用いることにより、種々の界面活性剤のApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLのぞれぞれのHDL亜分画に対する反応性を調べることができる。ここで、界面活性剤のリポ蛋白への反応性は、該界面活性剤の存在下でリポ蛋白にコレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させた場合に、コレステロールの反応する程度を指標に評価することができる。具体的には、例えば、後記の実施例１に示す方法で、第２試薬に種々の界面活性剤を含ませ測定を行うことによりその界面活性剤のリポ蛋白に対する反応性を測定することができる。
　上記の分取したHDL亜分画を用いて、上記の方法で各種界面活性剤の反応性を分析、検討することができる。本明細書において、界面活性剤を反応性の大きさを反応率及びその反応率の比として表すことがある。具体的には、ApoE-containing HDLに対する界面活性剤の反応量とApoE-deficient HDLに対する界面活性剤の反応量を測定し、それぞれの試料中の総コレステロール量との比（以下、「ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比」と言う）を求めればよい。それより、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比を算出することができる。
　このようにして、界面活性剤を、ApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDL両方に反応する界面活性剤（ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上、1.3未満）、ApoE-containing HDLに対する反応性が強くApoE-deficient HDLに対する反応性が弱い界面活性剤（ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上）、ApoE-deficient HDLに対する反応性が強くApoE-containing HDLに対する反応性が弱い界面活性剤（ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満）に分類することができる。界面活性剤の分類を図２－１から図２－４に示す。
　上記ApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLの両方に反応する（両方に反応性が強い）界面活性剤として、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上、1.3未満の界面活性剤、好ましくはApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.8以上、1.2未満の界面活性剤が挙げられる。このような界面活性剤として、陰イオン界面活性剤としてはアルキルベンゼンスルホン酸ナトリウムが、非イオン界面活性剤としてはポリオキシエチレンモノラウレート、ラウリルアルコールアルコキシレート、ポリオキシエチレンラウリルアミン、分子量1700未満のポリオキシエチレンポリオキシプロピレンブロックポリマー、HLB13.0以上14.5未満のポリオキシエチレンノニルフェニルエーテルが、両性界面活性剤としてはアルキルジメチルアミノ酢酸ベタイン、アルキルカルボキシメチルヒドロキシエチルイミダゾリウムベタインが挙げられる。具体的な界面活性剤の例として、陰イオン界面活性剤としては、ニューレックスソフト60-N、ニューレックスパウダーF、ニューレックスペーストH（以上日本油脂社製）、ネオペレックスNo.1-F、ネオペレックス　G-65、エマール　NC-35（以上、花王社製）等が、非イオン界面活性剤の例として、アデカトールLB70、アデカトール　LB-103、アデカトール　LB-93（以上旭電化社製）、ディスパノールK-3、ノニオンL-4、ノニオンMN-811、ノニオンNS-210、ノニオンNS-212、ナイミーンL-202、プロノン102、プロノン204（以上日本油脂社製）、ノニポール８５、ノニポール９５、ノニポール１００、ノニポール１２０（以上三洋化成社製）等が、両性界面活性剤の例としてアンヒトール24B（花王社製）、ニッサンアノンBF、ニッサンアノンGLM-R-LV、ニッサンアノンLG（以上日本油脂社製）等が挙げられる。
　ApoE-containing HDLに対する反応性が強くApoE-deficient HDLに対する反応性が弱い界面活性剤としてApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上の界面活性剤、好ましくはApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.4以上の界面活性剤が挙げられる。例えば、HLB５～６、例えば5.7のポリオキシエチレンノニルフェニルエーテルが上げられ、具体的にはノニオンNS-202S（商品名：日本油脂株式会社製）が挙げられる。
　ApoE-deficient HDLに対する反応性が強くApoE-containing HDLに対する反応性が弱い界面活性剤としてApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満の界面活性剤、好ましくはApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.65未満の界面活性剤が挙げられる。このような界面活性剤として、陰イオン界面活性剤としては、ポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸ナトリウム、ポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸トリエタノールアミン、脂肪酸アミドエーテル硫酸エステルナトリウム塩、曇天が75℃以上のラウリルアルコールアルコキシレート、高級アルコール系エーテル、芳香族リン酸エステル、脂肪族リン酸エステル、HLB15以上17.5未満のポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル及びポリオキシエチレンノニルフェニルエーテルが挙げられる。具体的な界面活性剤の例として、陰イオン界面活性剤としては、エマール　20CM、エマール　20T、レベノールWZ（以上花王社製）、サンアミドC-3、サンアミドCF-10（以上日本油脂社製）、アデカコールCS-141E、アデカコールPS-440E（以上旭電化社製）等が、非イオン界面活性剤としてはノニオンHS-215、ノニオンNS-215、ノニオン　HS-220、ノニオンNS-220、ノニオン　NS-230、ナイミーン　T2-210（以上日本油脂社製）、エマルゲン　1118S-70、エマルゲン　120、エマルゲン　LS-114（以上花王社製）、アデカトール　LB-1220、アデカトール　LB-1520、（以上旭電化社製）等が挙げられる。
　以下、上記の界面活性剤を用いて、本発明の方法により、ApoE-containing HDL-C及びApoE-deficient HDL-CのHDL亜分画を単独で分別定量し、さらに複数を同時に測定する方法について説明する。
　上記のように、本発明の方法は、第１工程及び第２工程の２工程で行うことができ、第１工程及び第２工程で以下の反応を起こさせればよい。
（１）第１工程でHDL以外のリポ蛋白（CM、VLDL、LDL）を消去し、第２工程でApoE-containing HDL及び／又はApoE-deficient HDLコレステロールを測定する。
（２）第１工程でApoE-containing HDL又はApoE-deficient HDLを消去し、第２工程で残ったApoE-containing HDL又はApoE-deficient HDLコレステロールを測定する。この際、HDL以外のリポ蛋白（CM、VLDL、LDL）は第１工程において消去してもしなくてもよい。
　本発明の方法において、上記のApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLに反応性を有する界面活性剤は第１工程及び第２工程いずれにおいても用いることができる。この場合、第１工程中の濃度として0.05ｇ／L～2.0ｇ／Lが好ましく、0.1ｇ／L～1.0ｇ／Lがより好ましい。第２工程中の濃度としては0.15ｇ／L～6.0ｇ／Lが好ましく、0.3ｇ／L～3.0ｇ／Lがより好ましい。
　さらに、上記のApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLに反応性を有する界面活性剤を第２工程で用いる場合、第１工程でHDL以外のCM、VLDL、LDL等のリポ蛋白を消去し、ApoE-containing HDL及び／又はApoE-deficient HDLコレステロールの測定の特異性を上げることができる。
　HDL以外のリポ蛋白を消去する方法として、カタラーゼを用いる方法、及び無色キノンを形成する方法を挙げることができる。HDLに作用する界面活性剤の非存在下において、被検試料にコレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、生じたHDL以外のリポ蛋白由来の過酸化水素を除去する。コレステロールエステラーゼの作用により、リポ蛋白中のエステル型コレステロールが加水分解されて遊離型コレステロールと脂肪酸が生じる。次いで、この生じた遊離型コレステロールと元々リポ蛋白中に存在する遊離型コレステロールがコレステロールオキシダーゼの作用で酸化されてコレステノンと過酸化水素が生じる。この生じた過酸化水素を除去することによりリポ蛋白を消去することができる。過酸化水素を除去する方法としては、カタラーゼを作用させて水と酸素に分解する方法、及びペルオキシダーゼの作用により、例えばDAOS（N-エチル-N-（2-ヒドロキシスルホプロピル）-3,5-ジメチオキシアニリン）のような、過酸化水素と反応して無色キノンを生じるフェノール系又はアニリン系水素供与体化合物と反応させて過酸化水素を無色キノンに転化する方法等を挙げることができるがこれらに限定されるものではない。
　上記の方法により、第１工程において、HDL以外のリポ蛋白中のコレステロールが大部分消去され、第２工程での反応によりHDL又はApoE-containing HDL及び／又はApoE-deficient HDLのHDL亜分画中のコレステロールのみが特異的に定量される。
　上記第１工程においては、HDLに作用する界面活性剤の非存在下において行なえばよい。こうすることにより、HDL中のコレステロールはほとんど反応せず、LDL、VLDL、CM等の他のリポ蛋白中のコレステロールのみが反応して消去される。この結果、次の第２工程においてHDL又はApoE-containing HDL及び／又はApoE-deficient HDLのHDL亜分画中のコレステロールが選択的に定量される。
　第１工程の反応液中のコレステロールエステラーゼの濃度は0.2～1.0U/ml程度が好ましく、また、コレステロールオキシダーゼの濃度は0.1～0.7U単位/ml程度が好ましい。さらに、カタラーゼの濃度は40～100U/ml程度が好ましく、ペルオキシダーゼの濃度は0.4～1.0U/ml程度が好ましい。また、過酸化水素と反応して無色キノンを生じる化合物の濃度は0.4～0.8mmol/l程度が好ましい。
　第１工程の反応は、pH５～８の緩衝液中で行なうことが好ましく、緩衝液としてはリン酸、グリシン、トリス及びグッドの緩衝液が好ましい。特にグッドの緩衝液であるBis-Tris、PIPES、MOPSO、BES、HEPES及びPOPSOが好ましく、緩衝液の濃度は10～500mM程度が好ましい。
　第１工程で、HDL以外のリポ蛋白の消去効率を高めるために、反応液中に２価の金属イオンを含ませてもよい。２価の金属イオンとしては銅イオン、鉄イオン及びマグネシウムイオンを好ましく使用することができるが、特にマグネシウムイオンが好ましい。２価の金属イオンの濃度は５～200mM程度が好ましい。
　さらに、第１工程の反応液中には、任意的に、リポ蛋白加水分解酵素を加えることもできる。この酵素を加えることにより、特にVLDL中のコレステロールが反応し易くなるので好ましい。この酵素の反応液中の濃度は、5.0～10.0U/ml程度が好ましい。
　第１工程の反応温度は25℃～40℃程度が適当であり、37℃が最も好ましい。また、反応時間は２～10分間程度でよい。
　第2工程においてするために、前記ApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDL両方に反応する界面活性剤を用いた場合、全HDL-C測定値が得られる。この全HDL-C測定値から、前記ApoE-deficient HDLに対する反応性が強くApoE-containing HDLに対する反応性が弱い界面活性剤を用いて算出されたApoE-deficient HDL-C値を減ずることによりApoE-containing HDL-Cを定量することができる。
　また、前記ApoE-deficient HDLに対する反応性が強くApoE-containing HDLに対する反応性が弱い界面活性剤を、前記HDL以外のリポ蛋白を消去する第１工程で用いる第１試薬に加え、さらに前記ApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDL両方に反応する界面活性剤、又はApoE-containing HDLに対する反応性が強くApoE-deficient HDLに対する反応性が弱い界面活性剤を第２工程で用いる第２試薬に加えることにより、ApoE-containing HDL-Cを正確に測定することができる。
　この場合、第１工程において少なくともApoE-deficient HDL-Cが消去されれば良い。CM、VLDL、LDL等のリポ蛋白中コレステロールを第１工程で消去しても良いし、CM、VLDL、LDL等のリポ蛋白は第１工程及び第２工程いずれにおいても反応せず、最後まで消去されずに残存していてもよい。
　第１工程でApoE-deficient HDL-Cを消去する場合、第１工程で用いる界面活性剤濃度は、第２工程で用いられるApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDL両方に反応する界面活性剤、又はApoE-containing HDLに対する反応性が強くApoE-deficient HDLに対する反応性が弱い界面活性剤の作用が阻害されないよう、第２工程の界面活性剤濃度より低い濃度で用いる必要がある。
　具体的には、第１工程で用いる（第１試薬中の）界面活性剤濃度／第２工程で用いる（第２試薬中の）界面活性剤濃度比が、0.2未満であることが好ましく、0.1未満であることがより好ましい。
　さらに、第１工程において前記ApoE-deficient HDLに対する反応性が強くApoE-containing HDLに対する反応性が弱い界面活性剤を加え、カタラーゼの非存在下でコレステロールエステラーゼ、コレステロールオキシダーゼとともに作用させ、第２工程において前記ApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDL両方に反応する界面活性剤、又はApoE-containing HDLに対する反応性が強くApoE-deficient HDLに対する反応性が弱い界面活性剤を加えることにより、１回の測定でApoE-containing HDL-C及び全HDL-Cの両方の測定値を求めることができる。
　この場合、第１工程ではApoE-deficient HDLが、ApoE-deficient HDLに対する反応性が強くApoE-containing HDLに対する反応性が弱い界面活性剤によって分解され、コレステロールエステラーゼ、コレステロールオキシダーゼの作用により反応中間体であるApoE-deficient HDL由来の過酸化水素が発生する。続く第２工程において、この過酸化水素は第２試薬中に存在するペルオキシダーゼ、４-アミノアンチピリン、トリンダー試薬の存在下で瞬時にキノン色素を形成し、反応液の吸光度変化が生じる。この吸光度変化はApoE-deficient HDL-Cに基づく反応によるものであるので、この吸光度変化量はApoE-deficient HDL-Cの量に対応する。この吸光度変化は第２工程の初期に検出される。一方、ApoE-containing HDLは、第２工程において第２試薬中に存在するApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLの両方に反応する界面活性剤、又はApoE-containing HDLに対する反応性が強くApoE-deficient HDLに対する反応性が弱い界面活性剤並びにコレステロールエステラーゼ、コレステロールオキシダーゼの作用により、ApoE-deficient HDL由来の過酸化水素の発生に遅れて過酸化水素を発生し、ペルオキシダーゼ、４-アミノアンチピリン、トリンダー試薬の存在下でキノン色素を形成する。このキノン色素の形成によっても反応液の吸光度変化が生じ、この吸光度変化はApoE-containing HDL -Cに基づく反応によるものであるので、この吸光度変化量はApoE-containing HDL -Cの量に対応する。このApoE-containing HDL由来の過酸化水素は、ApoE-deficient HDL由来の過酸化水素に遅れて測定される。従って、第２工程における全体の吸光度変化量はApoE-deficient HDL-C及びApoE-containing HDL-Cの両方の量に対応する。すなわち、第２工程における全体の吸光度変化量は全HDL-C量に対応する。これらの吸光度変化は自動分析装置により測定することができ、このときの分析条件を変えることにより、一度の測定で同時にApoE-deficient HDL-C、ApoE-containing HDL-C及び全HDL-Cという多項目の定量値を得ることができる。
　本発明の方法を種々の測定条件を設定できる自動分析装置を用いて行なう場合の自動分析装置の多項目分析における１つの測定条件は、第２工程における総吸光度変化量により、全HDL-Cの定量を行なうための条件である。また、他の測定条件は第２工程において第２試薬添加後の２点（第２試薬添加直後の急激な吸光度変化の後と反応最終点）間の吸光度変化量により、ApoE-containing HDL-Cの定量を行なうための条件である。
　本発明におけるコレステロールの酵素的な定量方法自体はこの分野において周知であり、例えば第１工程と同様、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼの作用によりコレステロールエステル及び遊離型コレステロールから過酸化水素を発生させ、発生した過酸化水素を定量することにより行なうことができる。過酸化水素の定量は、例えば、ペルオキシダーゼの存在下で、過酸化水素と反応してキノン色素を形成する化合物と反応させ、生じたキノン色素の量を吸光度測定等により測定することにより行なうことができる。キノン色素は、例えば過酸化水素と４－アミノアンチピリン及びフェノール系若しくはアニリン系水素供与体を用いることにより形成させることができる。
　水素供与体化合物のうちアニリン系水素供与体化合物として、N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）‐3，5‐ジメトキシアニリン（HDAOS）、N-エチル-N-スルホプロピル-3‐メトキシアニリン（ADPS）、N-エチル-N-スルホプロピルアニリン（ALPS）、N-エチル-N-スルホプロピル-3，5‐ジメトキシアニリン（DAPS）、N‐スルホプロピル‐3，5‐ジメトキシアニリン（HDAPS）、N-エチル-N-スルホプロピル‐3，5‐ジメチルアニリン（MAPS）、N-エチル-N-スルホプロピル-3‐メチルアニリン（TOPS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）‐3‐メトキシアニリン（ADOS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）アニリン（ALOS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）-3，5‐ジメトキシアニリン（DAOS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）-3，5‐ジメチルアニリン（MAOS）、N-エチル-N‐（2‐ヒドロキシ‐3‐スルホプロピル）‐3‐メチルアニリン（TOOS）及びN‐スルホプロピルアニリン（HALPS）等が挙げられる。
　キノン色素を生成する化合物の濃度は、特に限定されないが、反応混合物全体に対し、例えば４－アミノアンチピリンでは、好ましくは0.1～2.0mM、さらに好ましくは0.5～1.5mMであり、フェノール系又はアニリン系水素供与体化合物では、0.5～2.0mmol/Lが好ましい。また、ペルオキシダーゼの濃度は、特に限定されないが、反応混合物全体に対し、0.4～5U/mlが好ましい。なお、第２工程の好ましい反応条件（反応温度、反応時間、緩衝液、pH）は、第１工程の好ましい反応条件と同じである。
　なお、第１工程において、生じた過酸化水素をカタラーゼで分解する場合には、第２工程ではこのカタラーゼを阻害する必要があるので、第２工程において例えばアジ化ナトリウムのようなカタラーゼ阻害剤を用いてカタラーゼを阻害する。
　以下、本発明を実施例に基づき、より具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。なお、下記例において、「％」は特に断りがない限り「重量％」を示す。
参考例１　ApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLの分画
　血清試料よりApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLの分画を回収するため以下の操作を行った。
　健常者の血清18mLに臭化カリウム5.7687gを加えd=1.225にし、超遠心（65000rpm、13時間50分）により全リポ蛋白を分離した。2mmol/L PBS pH7.4 NaCl 30mmol/Lにて24時間透析し臭化カリウム除去後、検体2.0ｍLに対し、20％ポリエチレングリコール（平均分子量6000）溶液を2.0ml加えHDLを除くリポ蛋白（CM、VLDL、LDL等）を凝集させ、0.25μmのフィルターを用いて凝集分画をトラップし、HDLを回収した。その後、ヘパリン固定化カラムにてHDLを保持させ、30～200mmol／L塩化ナトリウムを用いてHDLをApoE-deficient HDLとApoE-containing HDLに分離した。分離後の分画に対し、総コレステロール、ApoA1、ApoEの測定を行った。結果を図１に示す。
　図１に示すようにHDLピークのうち前半溶出部分にはApoA1が存在するもののApoEは存在せずApoE-deficient HDLが溶出されている。一方ピークの後半部分にはApoEのピークが観察された。このことから、本例によりHDLをApoE-deficient HDLとApoE-containing HDLに分離することができた。
実施例１　各種界面活性剤のApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLに対する反応性
　各種界面活性剤のApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDL亜分画に対する反応性を確認することを目的として、下記の組成を有する試薬を調製した。第２試薬においては、それぞれ１００種類の界面活性剤を用いた。
第１試薬
BES緩衝液　　　　　　　　　　　　　　pH7.0 100 mmol/l
ＨＤＡＯＳ　　　　　　　　　　　　　　0.7 mmol/l
コレステロールエステラーゼ　　　　　　0.8 U/ml
コレステロールオキシダーゼ　　　　　　0.5 U/ml
カタラーゼ　　　　　　　　　　　　　　80 U/ml
塩化マグネシウム　　　　　　　　　　　10 mmol/l
第２試薬
BES緩衝液　　　　　　　　　　　　　　pH7.0 100 mmol/l
４－アミノアンチピリン　　　　　　　　4.0 mmol/l
ペルオキシダーゼ　　　　　　　　　　　2.4 U/ml
アジ化ナトリウム　　　　　　　　　　　0.1%
各種界面活性剤　　　　　　　　　　　　1.0%
　参考例１の方法にて精製したApoE-deficient HDL（フラクション25,26,27）及びApoE-containing HDL（フラクション44,45,46）試料２μｌに第１試薬150μｌを混和し、37℃で５分間反応させた後に（第１工程）、第２試薬50μｌを37℃で５分間反応させ、主波長／副波長＝600nm/700nmにおける吸光度を測定した（第２工程）。測定された吸光度からコレステロール量を算出し、それぞれの試料中の総コレステロール量との比を計算することによりApoE-containing HDL反応率とApoE-deficient HDL反応率を求めた。さらにApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比を算出した。
　図２－１から図２－４に示されるように、用いた界面活性剤をApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比により、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満で両方の亜分画を測定する群、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満となりApoE-deficient HDLを測定する群、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上となりApoE-containing HDLを測定する群に分類することができた。これらの界面活性剤を適宜用いることによりApoE-containing HDL及びApoE-deficient HDLのHDL亜分画又は全分画を測定できる。
　なお、本実施例ではApoE-deficient HDLとして参考例１におけるフラクション25,26,27を選択した。これはApoEがほとんど測定されず、かつ総コレステロール量が多く反応率を求めるのに適当と考えたからである。また、ApoE-containing HDLとしてフラクション44,45,46を選択した。これはApoEが最も多く反応率を求めるのに適当と考えたからである。いずれも選択するフラクションを多少前後させたとしても同様の結果が得られるものと考えられる。
実施例２　HDL中のコレステロールの定量
　実施例１における第2試薬の界面活性剤をディスパノールK-3とした試薬を調製した。HPLCにて分画したVLDL、LDL、HDLを含むフラクションを試料とし、試料２μｌに第１試薬150μｌを混和し、37℃で５分間反応させた後に、第２試薬50μｌを37℃で５分間反応させ、主波長／副波長＝600nm/700nmにおける吸光度を測定した。測定された吸光度からコレステロール量を算出し、それぞれの試料中のコレステロール量と比較した結果を図３に示す。
　図３に示されるように、上記方法によれば、HDL中のコレステロールは大部分定量されるが、それ以外のリポ蛋白中のコレステロールはほとんど又は全く定量されず、本発明の方法により、他のリポ蛋白の影響を受けずにHDL中のコレステロールを選択的に定量できることがわかる。
実施例３　ApoE-deficient HDL-C濃度測定における他法との相関性
　実施例１における第2試薬の界面活性剤をアデカトールLB-1220とした試薬を調製した。
　またApoE-deficient HDLを測定する比較対照法としてPT-DS-Mg沈殿法を用いて、本発明法によって得られる値と比較した。PT-DS-Mg沈殿法の操作は以下のとおりであった。検体200μLに3g/Lリンタングステン酸ナトリウム-1.8g/Lデキストラン硫酸ナトリウム-0.1mol/l塩化マグネシウム混合溶液を200μL添加し、混合後、室温にて10分間静置した。その後2000gで15分間遠心分離し、上清を300μL回収した。回収後の分画の総コレステロールを測定し、ApoE-deficient HDL-C濃度を算出した。本発明法は実施例１と同様の操作にて測定した。
　本発明法とPT-DS-Mg沈殿法との相関を図４に示す。図４に示されるように、本発明法による結果は、ApoE-deficient HDL測定法であるPT-DS-Mg沈殿法（A Rapid and Simple Quantification of Human Apolipoprotein E-Rich High-Density Lipoproteins in Serum: BIOCHEMICAL MEDICINE AND METABOLIC BIOLOGY 47,31-37 1992）と良好な相関性を示した。
実施例４　ApoE-containing HDL-C + ApoE-deficient HDL-C濃度の測定における他法との相関性
　実施例１における第２試薬の界面活性剤をアデカトールLB-103とした試薬を調製した。
またApoE-containing HDLを含む全HDL亜分画を測定する比較対照法としてポリエチレングリコール沈殿法を用いて、本発明法によって得られる値と比較した。ポリエチレングリコール沈殿法の操作は以下のとおりであった。検体200μLに13%ポリエチレングリコール溶液（平均分子量6000）を200μL添加し、混合後、室温にて10分間静置した。その後2000ｇで15分間遠心分離し、上清を300μL回収した。回収後の分画の総コレステロールを測定し、ApoE-containing HDL-C + ApoE-deficient HDL-C濃度を算出した。本発明法は実施例１と同様の操作にて測定した。本発明法とポリエチレングリコール沈殿法との相関を図５に示す。図５に示されるように、本発明法による結果は、ApoE-containing HDL含めた全HDL亜分画測定法であるポリエチレングリコール沈殿法と良好な相関性を示した。
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。

Claims (11)

  1. 　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤及びApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上の界面活性剤からなる群から選択される界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-containing HDLのコレステロール及び／又はApoE-deficient HDL中のコレステロールを酵素的に分別定量する方法。
  2. 　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-containing HDL中のコレステロールを含む全HDL中のコレステロールを酵素的に定量する全HDL中のコレステロールの定量方法。
  3. 　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-deficient HDL中のコレステロールのみを酵素的に定量するApoE-deficient HDL中のコレステロールの定量方法。
  4. 　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤を加え、コレステロールエステラーゼ及びコレステロールオキシダーゼを作用させ、発生した過酸化水素を定量することによりApoE-containing HDL中のコレステロールのみを酵素的に定量するApoE-containing HDL中のコレステロールの定量方法。
  5. 　請求項２に記載の方法で得られたApoE-containing HDL中のコレステロールを含むHDL中のコレステロール値から、請求項３に記載の方法で得られたApoE-deficient HDL中のコレステロールを減ずることにより、ApoE-containing HDL中のコレステロールを算出する、ApoE-containing HDL中のコレステロール定量方法。
  6. 　ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤がディスパノールK3である、請求項１又は２に記載のHDL中のコレステロールの定量方法。
  7. 　ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤がアデカトール　LB-1220である、請求項１又は３に記載のHDL中のコレステロールの定量方法。
  8. 　ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤がノニオンNS-202Sである、請求項１又は４に記載のHDL中のコレステロールの定量方法。
  9. 　被検試料中のHDL以外のリポ蛋白中コレステロールを消去する第１工程と、次いでHDL中のコレステロールを定量する第２工程とを含む、請求項１から８のいずれか１項に記載のHDL中コレステロールの定量方法。
  10. 　被検試料中に、ApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤を加え、ApoE-deficient HDLのみを反応させ、コレステロールエステラーゼ、コレステロールオキシダーゼ、カタラーゼの作用により、ApoE-deficient HDL中のコレステロールを反応系外に導く第１工程と、次いでApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤、又はApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤を加え、被検試料中の残りのHDLを反応させ、ApoE-containing HDL中のコレステロールを定量する第２工程とを含むApoE-containing HDL中コレステロールの定量方法。
  11. 　第１工程において被検試料中にApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7未満である界面活性剤を加え、ApoE-deficient HDL中のコレステロール由来の過酸化水素を生成し、ApoE-deficient HDL中のコレステロール由来の過酸化水素を第２工程の初期に検出し、同時に第２工程においてApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が0.7以上1.3未満である界面活性剤又はApoE-containing HDL反応率／ApoE-deficient HDL反応率比が1.3以上である界面活性剤を加え、ApoE-containing HDL中のコレステロール由来の過酸化水素を検出する、ApoE-containing HDL中コレステロール及び全HDL中コレステロールを一度に定量する方法。
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