WO2007099145A1 - G-csf-flüssigformulierung - Google Patents

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WO2007099145A1
WO2007099145A1 PCT/EP2007/051947 EP2007051947W WO2007099145A1 WO 2007099145 A1 WO2007099145 A1 WO 2007099145A1 EP 2007051947 W EP2007051947 W EP 2007051947W WO 2007099145 A1 WO2007099145 A1 WO 2007099145A1
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WO
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csf
formulation
polysorbate
formulation according
acetate
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PCT/EP2007/051947
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English (en)
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Michael Mack
Ulrich Kurt Blaschke
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Bioceuticals Arzneimittel Ag
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Publication date
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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/19—Cytokines; Lymphokines; Interferons
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    • A—HUMAN NECESSITIES
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    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012—Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0019—Injectable compositions; Intramuscular, intravenous, arterial, subcutaneous administration; Compositions to be administered through the skin in an invasive manner
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Definitions

  • the present invention relates to storage-stable liquid formulations of G-CSF and to processes for their preparation. More particularly, the invention relates to liquid formulations containing G-CSF as the active ingredient, acetate as a buffer, polysorbate 20 or polysorbate 80 as a surfactant, and optionally pharmaceutically acceptable excipients, which formulations have a pH of between 4.1 and 4.4.
  • G-CSF granulocyte colony stimulating factor
  • G-CSF Differentiation of hematopoietic progenitor cells and the activation of neutrophils. Because of these properties, G-CSF has found application in various medical fields, such as: B. the reconstitution of normal blood cell populations after chemotherapy or radiation, or to stimulate the immune response to infectious pathogens. Thus, G-CSF is used in the clinic mainly in the fight against tumors and in particular for the treatment of neutropenia as a result of chemotherapy and is also used in bone marrow transplants and in the treatment of infectious diseases use.
  • G-CSF Recombinant production of G-CSF was first described in the patent literature in 1987, in WO-A-87/01132.
  • the product Neupogen ® (pre-filled syringes) consists of the following components according to the list of medicinal products RED LIST 2005: G-CSF at a concentration of 600 ⁇ g / ml or 960 ⁇ g / ml, sodium acetate, sorbitol, polysorbate 80 and water.
  • G-CSF at a concentration of 600 ⁇ g / ml or 960 ⁇ g / ml
  • sodium acetate sodium acetate
  • sorbitol polysorbate 80 and water.
  • EP-A-0 373 679 describes formulations of G-CSF in which the protein is stabilized by the presence of an acid, an acidic pH and a low conductivity of the formulation.
  • DE-A-37 23 781 relates generally to the use of G-CSF in combination with a pharmaceutically acceptable surfactant, saccharide, protein or pharmaceutically acceptable high molecular weight compound.
  • WO-A-94/14465 describes the use of maltose, cellobiose, gentiobiose, isomaltose, raffinose, sucrose and other sugars for stabilizing preparations containing G-CSF.
  • WO-A-94/14466 discloses formulations containing G-CSF which contain a quantity of surfactant less than the amount of G-CSF used and a buffer substance.
  • WO-A-93/03744 describes G-CSF containing formulations containing a preservative which is chlorobutanol, benzyl alcohol or benzalkonium.
  • EP-A-0 988 861 discloses G-CSF-containing formulations containing as buffer substance HEPES, TES or tricine.
  • WO-A 1-2005 / 042024 discloses pharmaceutical preparations of G-CSF having a pH above 4.0 which contain an acid and are free of surfactants.
  • Object of the present invention is to produce a G-CSF preparation that can be stored in liquid form for a long time and without stabilizing additives such as HSA, amino acids or preservatives.
  • a storage-stable G-CSF liquid formulation is to be provided which avoids as far as possible any risk for the compatibility of the formulation.
  • liquid G-CSF compositions which contain acetate as buffer substance and polysorbate 20 and / or polysorbate 80 as surfactant and have a pH between 4.1 and 4.4, even in the absence of HSA, amino acids or polymeric stabilizers can be stored in liquid form for a long time stable, without causing significant loss of stability.
  • the invention thus relates to a storage-stable aqueous liquid formulation of G-CSF, which in addition to recombinant human G-CSF as the active ingredient acetate buffer and polysorbate 20 (polyoxyethylene sorbitan monolaurate, also referred to as Tween 20) or polysorbate 80 (polyoxyethylene sorbitan monooleate also referred to as Tween 80) or a mixture thereof as a surfactant and having a pH of between 4.1 and 4.4.
  • polysorbate 20 polyoxyethylene sorbitan monolaurate
  • Tween 80 polyoxyethylene sorbitan monooleate also referred to as Tween 80
  • the surfactant is polysorbate 20.
  • the surfactant is usually in a concentration in the range of 0.0005% (w / v) to 0.05% (w / v), preferably in the range of 0.001% (w / v) to 0.01%, more preferably in Range from 0.002% (w / v) to 0.008%, and most preferably in the range of 0.004% (w / v) to 0.006% (w / v), based on the total volume of the solution.
  • the formulations according to the invention contain the surfactant polysorbate 20 and / or 80 in a concentration of 0.004% (w / v), 0.005% (w / v) or 0.006% (w / v).
  • the concentration of the buffer substance acetate is advantageously chosen so that both the pH stabilizing effect and a sufficient buffer capacity are achieved at the pH according to the invention between 4.1 and 4.4, while keeping the ion concentration and thus the conductivity as low as possible is to avoid aggregate formation.
  • acetate is in a concentration in the range of 0.5 to 150 mmol / l, preferably in the range of 1 to 100 mmol / l, more preferably in the range of 2 to 50 mmol / l and most preferably in 5 to 20 mmol / 1 included.
  • the concentration of the acetate is 10 mmol / l.
  • the buffer substance acetate can be used both in the form of the free acid and in the form of the salt.
  • the salts used are in particular the physiologically tolerated salts, for example alkali metal or ammonium salts, preferably the sodium salt.
  • the pH of the formulation is in the range of above 4.0 to 4.5, especially between 4.1 and 4.4, preferably between 4.1 and 4.3 and between 4.15 and 4.35, especially preferably between 4.2 and 4.3, or between 4.25 and 4.35, also more preferably between 4.25 and 4.3, and most preferably about 4.25 and about 4.3, respectively.
  • the pH of the composition may also be adjusted, with the aid of other acids or bases, to the pH in the range of from 4.0 to 4.5, from 4.1 to 4.4, from 4.1 to 4.3, from 4.15 to 4.35, from 4.2 to 4.3, or from 4.25 to 4.35, from 4.25 to 4.3, and from about 4.25 or about 4.3, respectively .
  • Suitable acids are, for example, hydrochloric acid, phosphoric acid, citric acid and sodium or potassium hydrogen phosphate.
  • Suitable bases are, for example, alkali metal hydroxides and alkaline earth metal hydroxides, alkali metal carbonates, alkali metal acetates, alkali metal citrates and dialkali hydrogen phosphates, for example sodium hydroxide, sodium acetate, sodium carbonate, sodium citrate, disodium and dipotassium hydrogen phosphate and ammonia.
  • the pH is adjusted with NaOH.
  • the formulation according to the invention therefore also contains, in one embodiment, sodium ions as a consequence of the adjustment of the pH with NaOH.
  • the formulation further contains as a pharmaceutically acceptable additive a polyol, in particular a sugar alcohol, which is particularly preferably mannitol or sorbitol.
  • a polyol in particular a sugar alcohol, which is particularly preferably mannitol or sorbitol.
  • These additives are particularly useful as isotonizing agents to render the compositions of the invention isotonic with the patient's blood.
  • the concentration of the polyol is usually up to 10.0% (w / v) based on the total volume of the composition. Preferably, the concentration is up to 8.0% (w / v), more preferably up to 6.0% (w / v). Most preferably, sorbitol or mannitol is contained at a concentration of 5.0% (w / v).
  • the concentration of G-CSF depends on the respective desired active substance concentration in the pre-filled syringe in which the liquid formulation according to the invention is stored and finally applied.
  • the commercial product Neupogen ® (ROTE LISTE 2005, nr. 51038) is, for example, in the following concentrations available: 300 ⁇ g / 0.5 ml; 480 ⁇ g / 0.5 ml and 300 ⁇ g / 1.0 ml.
  • 10 ⁇ g of protein corresponds to approximately 1.0 million internally. Units (IE).
  • the activity of the recombinant G-CSF is somewhat higher, here 10 ⁇ g of protein corresponds to an activity of 1.28 million IU.
  • Typical G-CSF concentrations in the context of the present invention are between 0.01 to 3.0 mg / ml, preferably between 0.1 and 2.5 mg / ml, particularly preferably in the range between 0.5 and 2.0 mg / ml and most preferably between 0.6 and 1.5 mg / ml.
  • concentrations of 0.6 mg / ml and 0.96 mg / ml are preferred embodiments.
  • the efficacy of the used G-CSF is generally about 1.0 ⁇ 0.6 x 10 8 units / mg.
  • the concentration of active ingredient may also be higher, u.U. 5 mg / ml and higher.
  • compositions according to the invention may contain further customary, in particular physiologically compatible stabilizers and / or auxiliaries and additives.
  • physiologically compatible stabilizers for example, other surfactants, isotonizing agents, reducing agents, antioxidants, complexing agents, cosolvents, diluents and chaotropic agents.
  • the formulation does not contain any polymeric stabilizers.
  • So z. B. be dispensed with polyalkylene glycols such as polyethylene glycol, hydroxyethyl starch, dextrans, cyclodextrins, but also on proteins such as HSA and other plasma proteins or gelatin.
  • the solvent used is preferably pure water for injection purposes. However, other suitable and customary for pharmaceutical preparations solvents can be used. However, solvents such as glycerol, polyethylene glycol and propylene glycol are preferably dispensed with. Also dispensed with is the use of buffer substances such as tartrate, succinate, HEPES, TES and tricine.
  • amino acid stabilizers is omitted if possible.
  • the components of the formulation can be obtained from common sources, e.g. B. from Sigma or Merck.
  • the recombinant G-CSF can be prepared and purified according to protocols in the art.
  • the G-CSF is biologically active G-CSF capable of promoting differentiation and proliferation of hematopoietic progenitor cells and activating mature cells of the hematopoietic system.
  • the G-CSF formulation is thus suitable for the treatment of indications in which the administration of G-CSF is advantageous.
  • biologically active human G-CSF also includes mutants and modifications of G-CSF whose amino acid sequence is altered from the wild-type sequence, but which have a similar biological activity to wild-type G-CSF, e.g. , As described in WO 01/87925 and EP 0 456 200.
  • G-CSF in the context of the present invention are also G-CSF conjugates in which the protein is in conjugated form, for.
  • polymers such as polyalkylene glycols, especially with polyethylene glycol as so-called.
  • the G-CSF may be glycosylated or non-glycosylated. While the recombinant protein produced in E. coli has no carbohydrate structures and is expressed with an N-terminal methionine residue, the G-CSF produced in eukaryotic cells such as CHO cells is usually glycosylated.
  • the G-CSF contained in the liquid formulation is human Met-G-CSF produced in E. coli cells.
  • E. co / z 'cells various expression systems are commercially available.
  • the expression of human G-CSF under the control of an inducible promoter for example an IPTG-inducible promoter, is suitable.
  • an inducible promoter for example an IPTG-inducible promoter
  • the fermentation of the host cells can also be carried out according to standard protocols as described in the patent and scientific literature, such as the subsequent purification, including the harvest of the so-called inclusion bodies containing the overexpressed in E. coli G-CSF, the Digestion of these inclusion bodies, solubilization, refolding and chromatographic purification, for which appropriate protocols are found both in the patent literature and in standard works of protein chemistry and in laboratory manuals.
  • EP-A-0 719 860 describes the isolation and purification of G-CSF, including solubilization and refolding.
  • General techniques for the solubilization and renaturation of denatured proteins have been described in EP-A-0 512 097, EP-A-0 364 926, EP-A-219 874 and WO 01/87925 and can also be taken from the scientific literature and standard works of protein chemistry.
  • the refolded protein is then purified by chromatographic methods, ie it is separated from other proteins and other contaminants present after solubilization and renaturation.
  • chromatographic purification deals u.a. WO 87/01132 A1, already mentioned above, in which the production of G-CSF in E. coli host cells was described for the first time.
  • a cation exchange chromatography is carried out using a CM-cellulose column.
  • the G-CSF is purified following solubilization and oxidation by Dowex to remove the solubilizing agent, followed by anion exchange chromatography and cation exchange chromatography. Also in EP 0 719 860 A1, CM-Sepharose is used for cation exchange chromatography.
  • WO 03/051922 A1 describes a purification process for G-CSF in which a metal affinity chromatography is carried out, more precisely, an immobilized metal affinity chromatography (IMAC). Following metal affinity chromatography, cation exchange chromatography and / or gel filtration may take place in WO 03/051922.
  • IMAC immobilized metal affinity chromatography
  • WO 01/04154 Al a process for the purification of G-CSF is described in which first a hydrophobic interaction chromatography and then a hydroxyapatite chromatography are performed. Following hydroxyapatite chromatography, cation exchange chromatography is performed.
  • the purity of the G-CSF that is formulated in the formulation of the invention should be at least 95%, preferably at least 97%, and most preferably at least 99%, and most preferably over 99%.
  • the purity can be checked by means of HPLC analyzes. Suitable here are rp-SEC and IEX analyzes. Appropriate materials and protocols for performing rpHPLC or SEC-HPLC can be found by one skilled in the art from suppliers such as Vydac (http://www.vydac.com) or TOSOH Bioscience (http://www.tosohbiosep.de).
  • G-CSF is used in a purity of more than 99%, preferably more than 99.5%, in the preparations according to the invention.
  • the effectiveness of the G-CSF used should preferably not be below 50,000 IU / ⁇ g, particularly suitable is a G-CSF with an activity of at least about 80,000 IU / ⁇ g, most suitable a G-CSF with an activity of about 100,000 IU / ⁇ g or above.
  • Met-G-CSF The determination of the yield of Met-G-CSF is also described in Herman et al. (1996) Pharm. Biotechnol. 9: 303-328. The exact proportion of Met-G-CSF is determined by integration of the peak area and conversion using the extinction coefficient.
  • the G-CSF can be analyzed for its amount and activity. Qualitative analysis can be done by SDS-P AGE analysis followed by Coomassie Brilliant Blue staining or rpHPLC. As standard for the analyzes, a commercially available G-CSF preparation can be used. In addition, a Peptide Map or a
  • the activity of the purified G-CSF can be determined by various biological test methods, as described, for example, in Shirafuji et al. (1989) Exp. Hematol. 17 (2): 116-119; Oh-Eda et al. (1990) J. Biol. Chem. 265 (20): 11432-11435; Mare et al. (1992) Blood 79 (11): 2849- 2854 and Oshima et al. (2000) Biochem. Biophys. Res. Commun. 267 (3): 924-927.
  • the biological activity of the obtained recombinant G-CSF may be determined by bioassay and with a standard, commercially available G-CSF (Neupogen ®) are compared.
  • the mouse cell line NFS-60 can be used, which is G-CSF-responsive.
  • this cell line is cultivated in RPMI 1640 medium (Bachern, Heidelberg) containing 1.5 g / l sodium bicarbonate, 4.5 g / l glucose, 10 mM Hepes and 1.0 mM sodium pyruvate and containing 2 mM glutamine, 10% FCS, 0.05 mM 2-mercaptoethanol and 60 ng / ml G-CSF.
  • the cells are washed twice with medium without G-CSF, seeded at a concentration of 2 x 10 4 cells per well in 96-well plates, and stained for three days at 37 ° C and 4.5% CO 2
  • the preparation of the formulation is also carried out by conventional methods in the art.
  • the buffer and surfactant components and optionally the other pharmaceutically acceptable excipients are first dissolved in the appropriate amounts in the aqueous solvent, usually sterile water. If necessary, adjust the pH with acetate solution or with other acids or bases such as those exemplified above. After a usual sterilization step, for example filtration through a sterile filter, G-CSF is added at the desired concentration. However, it is also readily possible to introduce G-CSF in an aqueous solution and then adjust the pH to the desired value using acetate and or suitable acids or bases, preferably NaOH.
  • the finished liquid formulation is filled into a suitable container in which it is stored until the application.
  • the container is in particular pre-filled syringes, vials or ampoules.
  • compositions according to the invention can be used in the various forms of application.
  • the formulations according to the invention are suitable as injection or infusion solutions, in particular for intravenous, intramuscular or subcutaneous administration.
  • the compositions may also be used to prepare other forms of administration, for example, transfersomes, liposomes or hydrogels.
  • the liquid formulation according to the invention not only has the advantages that it dispenses with potentially immunogenic compounds and overall contains the lowest possible number of ingredients, but also does not require lyophilization at any stage of the preparation. This saves on the costs associated with lyophilization and risks mechanical problems, eg. B. if the lyophilisate can not be reconstituted in a complete or sufficient manner, avoided.
  • Storage of the G-CSF liquid formulation at 25 ° C is still 80% or more of the starting concentration.
  • the residual level of G-CSF activity after three months storage at 25 ° C is still at least 85%, more preferably at least 90% and most preferably at least 95% of the starting activity.
  • the activity of the G-CSF can be determined by means of conventional activity tests, as already described for G-CSF in the prior art.
  • liquid formulation is understood to mean that the formulation of G-CSF is lyophilized together with the other substances contained in the formulation at no stage in the production process, ie neither before nor during or after mixing of the substances and the formulation is intended for intravenous or subcutaneous administration as an injection or infusion solution.
  • the formulation contains next to
  • Active substance G-CSF a surfactant selected from polysorbate 20, polysorbate 80 or a mixture thereof, acetate, sorbitol, sodium ions and water has no other ingredients and has a pH between 4.2 and 4.3 or between 4.25 and 4.35, especially between 4.25 and 4.3.
  • a surfactant selected from polysorbate 20, polysorbate 80 or a mixture thereof, acetate, sorbitol, sodium ions and water has no other ingredients and has a pH between 4.2 and 4.3 or between 4.25 and 4.35, especially between 4.25 and 4.3.
  • Particularly preferred is the use of polysorbate 20 as the sole surfactant in the formulation.
  • G-CSF-containing compositions were prepared by first dissolving the buffering agent acetate in the form of the sodium salt together with polysorbate 20 or polysorbate 80 and sorbitol in distilled and sterile water and then adjusting the pH to the desired value between 4.2 and 4.3 has been set.
  • Non-glycosylated recombinant human G-CSF (filgrastim, Met-G-CSF) was added at the desired concentration.
  • the preparation and filling of the formulation were carried out in pre-filled syringes under nitrogen.
  • the formulations of the present invention were stored at different temperatures for various periods of time along with corresponding pH 4.0 formulations, which are prior art and were used as a comparative formulation.
  • Figure 1 shows SEC analyzes and Figure 2 IEX analysis, each with up to 6 months-to storage at 30 0 C and 40 0 C.
  • the formulations according to the invention showed comparable results to the comparative formulation, which only differed from the tested formulations according to the invention by a more acidic pH, namely pH 4.0.

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Abstract

Die vorliegende Erfindung betrifft lagerstabile Flüssigformulierungen von G-CSF und Verfahren zu deren Herstellung. Insbesondere betrifft die Erfindung Flüssigformulierungen, die G-CSF als Wirkstoff, Acetat als Puffersubstanz, Polysorbat 20 oder Polysorbat 80 als Tensid und optional pharmazeutisch annehmbare Hilfsstoffe enthalten, wobei die Formulierungen einen pH-Wert zwischen 4,1 und 4,4 aufweisen.

Description

G-CSF-Flüssigformulierung
Die vorliegende Erfindung betrifft lagerstabile Flüssigformulierungen von G-CSF und Verfahren zu deren Herstellung. Insbesondere betrifft die Erfindung Flüssigformulierungen, die G-CSF als Wirkstoff, Acetat als Puffersubstanz, Polysorbat 20 oder Polysorbat 80 als Tensid und optional pharmazeutisch annehmbare Hilfsstoffe enthalten, wobei die Formulierungen einen pH-Wert zwischen 4,1 und 4,4 aufweisen.
G-CSF (granulocyte colony stimulating factor) ist ein natürlich vorkommender Wachstumsfaktor, der zur Familie der Cytokine im weiteren Sinne und hier zur Gruppe der Kolonie-stimulierenden Faktoren gehört. G-CSF spielt eine entscheidende Rolle bei der Hämatopoese und fördert die Proliferation und
Differenzierung von hämatopoetischen Vorläuferzellen und die Aktivierung von Neutrophilen. Aufgrund dieser Eigenschaften hat G-CSF Anwendung in verschiedenen medizinischen Bereichen gefunden, wie z. B. der Rekonstitution normaler Blutzellpopulationen nach der Chemotherapie oder Bestrahlung, oder zur Stimulation der Immunantwort gegenüber infektiösen Pathogenen. So wird G-CSF in der Klinik hauptsächlich bei der Tumorbekämpfung und insbesondere zur Behandlung von Neutropenie als Folge von Chemotherapie eingesetzt und findet ferner auch bei Knochenmarkstransplantationen und bei der Behandlung von Infektionskrankheiten Verwendung.
Die rekombinante Herstellung von G-CSF wurde in der Patentliteratur erstmals 1987 beschrieben, in WO-A-87/01132. Das erste kommerzielle G-CSF-Präparat auf der Basis von rekombinantem G-CSF wurde in Deutschland 1991 zugelassen und wird unter dem Handelsnamen Neupogen® von der Firma Amgen hergestellt und vertrieben.
Das Produkt Neupogen® (Fertigspritzen) besteht laut dem Arzneimittelverzeichnis ROTE LISTE 2005 aus folgenden Bestandteilen: G-CSF in einer Konzentration von 600 μg/ml oder 960 μg/ml, Natriumacetat, Sorbitol, Polysorbat 80 und Wasser. Im Stand der Technik beschäftigen sich auch diverse Patentdokumente mit pharmazeutischen Zubereitungen von G-CSF. In EP-A-O 373 679 werden Formulierungen von G-CSF beschrieben, in denen das Protein durch die Anwesenheit einer Säure, einen sauren pH- Wert und eine niedrige Leitfähigkeit der Formulierung stabilisiert wird.
DE-A-37 23 781 betrifft allgemein die Verwendung von G-CSF in Kombination mit einem pharmazeutisch verträglichen grenzflächenaktiven Mittel, Saccharid, Protein oder einer pharmazeutisch verträglichen hochmolekularen Verbindung.
In WO-A-94/14465 wird die Verwendung von Maltose, Cellobiose, Gentiobiose, Isomaltose, Raffinose, Saccharose und weiterer Zucker zur Stabilisierung G-CSF- haltiger Zubereitungen beschrieben.
In WO-A-94/ 14466 werden G-CSF enthaltende Zubereitungen offenbart, die eine Tensidmenge, die kleiner ist als die eingesetzte Menge an G-CSF, und eine Puffersubstanz enthalten.
WO-A-93/03744 beschreibt G-CSF-haltige Formulierungen, die ein Konservierungsmittel enthalten, bei dem es sich um Chlorbutanol, Benzylalkohol oder Benzalkonium handelt.
EP-A-O 988 861 offenbart G-CSF-haltige Formulierungen, die als Puffersubstanz HEPES, TES oder Tricin enthalten.
WO-A 1-2005/042024 offenbart pharmazeutische Zubereitungen von G-CSF mit einem pH- Wert von über 4,0, die eine Säure enthalten und frei von Tensiden sind.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es, eine G-CSF-Zubereitung herzustellen, die in flüssiger Form über längere Zeit gelagert werden kann und die ohne stabilisierende Zusatzstoffe wie HSA, Aminosäuren oder Konservierungsmittel auskommt. Auf diese Weise soll eine lagerstabile G-CSF-Flüssigformulierung bereitgestellt werden, die möglichst jedes Risiko für die Verträglichkeit der Formulierung vermeidet.
Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß gelöst durch den Gegenstand des Anspruchs 1. Bevorzugte Ausführungsformen sind in den Unteransprüchen definiert.
Es wurde gefunden, dass flüssige G-CSF-Zusammensetzungen, die Acetat als Puffersubstanz und Polysorbat 20 und/oder Polysorbat 80 als Tensid enthalten und einen pH- Wert zwischen 4,1 und 4,4 aufweisen, auch bei Abwesenheit von HSA, Aminosäuren oder polymeren Stabilisierungsmitteln in flüssiger Form über längere Zeit stabil gelagert werden können, ohne dass es zu signifikanten Stabilitätsverlusten kommt.
Die Erfindung betrifft somit eine lagerstabile wässrige Flüssigformulierung von G- CSF, die neben rekombinantem humanen G-CSF als Wirkstoff Acetat als Puffer und Polysorbat 20 (Polyoxyethylen-sorbitan-monolaurat, auch als Tween 20 bezeichnet) oder Polysorbat 80 (Polyoxyethylen-sorbitan-monooleat, auch als Tween 80 bezeichnet) oder ein Gemisch davon als Tensid umfasst und einen pH- Wert zwischen 4,1 und 4,4 aufweist.
In einer bevorzugten Ausführungsform handelt es sich bei dem Tensid um Polysorbat 20.
Es wurde aber auch gefunden, dass andere Polyoxyethylensorbitanalkylester ebenfalls für den Einsatz als Detergens in den Formulierungen der vorliegenden Erfindung geeignet sind. Das Tensid ist üblicherweise in einer Konzentration im Bereich von 0,0005 % (w/v) bis 0,05 % (w/v), bevorzugt im Bereich von 0,001 % (w/v) bis 0,01 %, besonders bevorzugt im Bereich von 0,002 % (w/v) bis 0,008 % und am meisten bevorzugt im Bereich von 0,004 % (w/v) bis 0,006 % (w/v), bezogen auf das Gesamtvolumen der Lösung, enthalten. In der Regel enthalten die erfindungsgemäßen Formulierungen das Tensid Polysorbat 20 und/oder 80 in einer Konzentration von 0,004 % (w/v), 0,005 % (w/v) oder 0,006 % (w/v).
Die Konzentration der Puffersubstanz Acetat wird vorteilhaft so gewählt, dass bei dem erfindungsgemäßen pH- Wert zwischen 4,1 und 4,4 sowohl die pH- stabilisierende Wirkung als auch eine ausreichende Pufferkapazität erzielt werden, gleichzeitig aber die Ionenkonzentration und damit die Leitfähigkeit möglichst gering gehalten wird, um Aggregatbildung zu vermeiden. Üblicherweise ist Acetat in einer Konzentration im Bereich von 0,5 bis 150 mmol/1, vorzugsweise im Bereich von 1 bis 100 mmol/1, besonders bevorzugt im Bereich von 2 bis 50 mmol/1 und am meisten bevorzugt zwischen 5 und 20 mmol/1 enthalten. In der Regel beträgt die Konzentration des Acetats 10 mmol/1.
Die Puffersubstanz Acetat kann sowohl in Form der freien Säure als auch in Form des Salzes eingesetzt werden. Als Salze werden insbesondere die physiologisch verträglichen Salze eingesetzt, beispielsweise Alkali- oder Ammoniumsalze, bevorzugt das Natriumsalz.
Der pH- Wert der Formulierung liegt im Bereich von über 4,0 bis 4,5, insbesondere zwischen 4,1 und 4,4, bevorzugt zwischen 4,1 und 4,3 bzw. zwischen 4,15 und 4,35, besonders bevorzugt zwischen 4,2 und 4,3 bzw. zwischen 4,25 und 4,35, ebenfalls besonders bevorzugt zwischen 4,25 und 4,3 und am meisten bevorzugt bei etwa 4,25 bzw. etwa 4,3. Falls gewünscht kann der pH- Wert der Zusammensetzung auch noch mit Hilfe anderer Säuren oder Basen auf den pH im Bereich von über 4,0 bis 4,5, von 4,1 bis 4,4, von 4,1 bis 4,3, von 4,15 bis 4,35, von 4,2 bis 4,3 bzw. von 4,25 bis 4,35, von 4,25 bis 4,3 bzw. von etwa 4,25 oder etwa 4,3 eingestellt werden. Geeignete Säuren sind beispielsweise Salzsäure, Phosphorsäure, Zitronensäure und Natrium- oder Kaliumhydrogenphosphat. Geeignete Basen sind beispielsweise Alkali- und Erdalkalihydroxide, Alkalicarbonate, Alkaliacetate, Alkalicitrate und Dialkalihydrogenphosphate, beispielsweise Natriumhydroxid, Natriumacetat, Natriumcarbonat, Natriumeitrat, Dinatrium- und Dikaliumhydrogenphosphat sowie Ammoniak.
Bevorzugt wird der pH mit NaOH eingestellt. Die erfindungsgemäße Formulierung enthält daher in einer Ausführungsform weiterhin Natrium-Ionen als Folge der Einstellung des pH- Wertes mit NaOH.
In einer Ausführungsform enthält die Formulierung des weiteren als pharmazeutisch annehmbaren Zusatzstoff ein Polyol, insbesondere einen Zuckeralkohol, bei dem es sich besonders bevorzugt um Mannitol oder Sorbitol handelt. Diese Zusatzstoffe eignen sich besonders gut als isotonisierende Mittel, um die erfindungsgemäßen Zusammensetzungen mit dem Blut des Patienten isotonisch zu machen.
Die Konzentration des Polyols beträgt üblicherweise bis zu 10,0 % (w/v), bezogen auf das Gesamtvolumen der Zusammensetzung. Bevorzugt beträgt die Konzentration bis zu 8,0 % (w/v), besonders bevorzugt bis zu 6,0 % (w/v). Besonders bevorzugt ist Sorbitol oder Mannitol in einer Konzentration von 5,0 % (w/v) enthalten.
Die Konzentration an G-CSF richtet sich nach der jeweils erwünschten Wirkstoffkonzentration in der Fertigspritze, in der die erfindungsgemäße Flüssigformulierung gelagert und schließlich appliziert wird. Das Handelsprodukt Neupogen® (ROTE LISTE 2005, Nr. 51 038) ist bspw. in folgenden Konzentrationen erhältlich: 300 μg/0,5 ml; 480 μg/0,5 ml und 300 μg/1,0 ml. Dabei entsprechen 10 μg Protein in etwa 1,0 Mio. Intern. Einheiten (IE). Im Fall des Handelsprodukts Granocyte (ROTE LISTE Nr. 51 036) ist die Aktivität des rekombinanten G-CSF etwas höher, hier entsprechen 10 μg Protein einer Aktivität von 1,28 Mio. IE.
Typische G-CSF-Konzentrationen liegen im Rahmen der vorliegenden Erfindung zwischen 0,01 bis 3,0 mg/ml, bevorzugt zwischen 0,1 und 2,5 mg/ml, besonders bevorzugt im Bereich zwischen 0,5 und 2,0 mg/ml und am meisten bevorzugt zwischen 0,6 und 1,5 mg/ml. Die Konzentrationen 0,6 mg/ml und 0,96 mg/ml stellen bevorzugte Ausführungsformen dar. Dabei beträgt die Wirksamkeit des eingesetzten G-CSF in der Regel etwa 1,0 ± 0,6 x 108 Einheiten/mg.
In höher konzentrierten Ausgangslösungen, oft als Bulk-Lösung bezeichnet, kann die Konzentration an Wirkstoff auch höher liegen, u.U. 5 mg/ml und höher.
Die erfindungsgemäßen Zusammensetzungen können weitere übliche, insbesondere physiologisch verträgliche Stabilisierungsmittel und/oder Hilfs- und Zusatzstoffe enthalten. Beispielsweise weitere Tenside, isotonierende Mittel, Reduktionsmittel, Antioxidantien, Komplexbildner, Cosolventien, Verdünnungsmittel und chaotrope Agenzien.
Allerdings wird bevorzugt, dass die Formulierung keine polymeren Stabilisierungsmittel enthält. So soll z. B. auf Polyalkylenglykole wie Polyethylenglykol, Hydroxyethylstärke, Dextrane, Cyclodextrine, aber auch auf Proteine wie HSA und andere Plasmaproteine oder Gelatine verzichtet werden.
Als Lösungsmittel wird bevorzugt reines Wasser für Injektionszwecke verwendet. Aber auch andere für pharmazeutische Zubereitungen geeignete und übliche Lösungsmittel können eingesetzt werden. Allerdings wird auf Lösungsmittel wie Glycerol, Polyethylenglykol und Propylenglykol vorzugsweise verzichtet. Ebenfalls verzichtet wird auf den Einsatz von Puffersubstanzen wie Tartrat, Succinat, HEPES, TES und Tricin.
Auch auf Aminosäurestabilisatoren wird möglichst verzichtet.
Insgesamt ist es bevorzugt, die Anzahl der verschiedenen Hilfsstoffe in der Formulierung möglichst gering zu halten. Dementsprechend werden auch andere Zucker als Mannitol und Sorbitol möglichst vermieden, und auch bei den in der Formulierung enthaltenen Puffersubstanzen handelt es sich vorzugsweise ausschließlich um Acetat.
Die Komponenten der Formulierung können von üblichen Quellen bezogen werden, z. B. von der Firma Sigma oder der Firma Merck.
Das rekombinante G-CSF kann nach Protokollen im Stand der Technik hergestellt und gereinigt werden.
Bei dem G-CSF handelt es sich um biologisch aktives G-CSF, das in der Lage ist, die Differenzierung und Proliferation von hämatopoetischen Vorläuferzellen zu fördern und die Aktivierung von reifen Zellen des hämatopoetischen Systems zu bewirken. Die G-CSF-Formulierung eignet sich somit zur Behandlung von Indikationen, bei denen die Verabreichung von G-CSF vorteilhaft ist. Es versteht sich, dass der Begriff "biologisch aktives humanes G-CSF" auch Mutanten und Modifikationen von G-CSF einschließt, deren Aminosäuresequenz gegenüber der Wildtypsequenz verändert ist, die aber eine ähnliche biologische Aktivität wie das Wildtyp-G-CSF aufweisen, wie z. B. die in WO 01/87925 und EP 0 456 200 beschriebenen. G-CSF im Sinne der vorliegenden Erfindung sind auch G-CSF-Konjugate, in denen das Protein in konjugierter Form z. B. mit Polymeren wie etwa Polyalkylenglykolen, insbesondere mit Polyethylenglykol als sog. PEGyliertes G-CSF oder PEG-G-CSF, oder Hydroxyalkylstärken, insbesondere mit Hydroxyethylstärke, vorliegt. Das G-CSF kann glykosyliert oder nicht-glykosyliert sein. Während das in E. coli hergestellte rekombinante Protein keine Kohlenhydratstrukturen aufweist und mit einem N- terminalen Methioninrest exprimiert wird, ist das in eukaryontischen Zellen, wie bspw. CHO-Zellen, hergestellte G-CSF in der Regel glykosyliert.
Bevorzugt handelt es sich bei dem in der Flüssigformulierung enthaltenden G-CSF um humanes Met-G-CSF, hergestellt in E. co/z-Zellen. Für die Expression in E. co/z'-Zellen sind verschiedene Expressionssysteme kommerziell erhältlich. Geeignet ist beispielsweise die Expression von humanem G-CSF unter der Kontrolle eines induzierbaren Promotors, beispielsweise eines IPTG-induzierbaren Promotors, siehe z. B. Sambrook and Rüssel, Molecular Cloning - A Laboratory Manual, 3. Auflage 2001, Coldspring Harbour Laboratory Press, Coldspring Harbour, NY, Kapitel 15, oder gängige Herstellerprotokolle, z. B. von Promega oder Stratagene.
Die Fermentation der Wirtszellen kann ebenso nach Standardprotokollen, wie sie in der Patent- und wissenschaftlichen Literatur beschrieben sind, erfolgen, wie die anschließende Aufreinigung, einschließlich der Ernte der so genannten Inclusion Bodies, die das in E. coli überexprimierte G-CSF enthalten, dem Aufschluss dieser Einschlusskörper, der Solubilisierung, Rückfaltung und chromatographischen Reinigung, für die sich geeignete Protokolle sowohl in der Patentliteratur als auch in Standardwerken der Proteinchemie sowie in Laborhandbüchern finden.
Zum Beispiel ist in EP-A-O 719 860 die Isolierung und Aufreinigung von G-CSF, einschließlich der Solubilisierung und Rückfaltung beschrieben. Allgemeine Techniken zur Solubilisierung und Renaturierung von denaturierten Proteinen sind in EP-A-O 512 097, EP-A-O 364 926, EP-A-O 219 874 und WO 01/87925 beschrieben worden und können außerdem der wissenschaftlichen Literatur und Standardwerken der Proteinchemie entnommen werden. Das rückgefaltete Protein wird anschließend mittels chromatographischer Methoden gereinigt, d.h. es wird von anderen Proteinen und sonstigen Verunreinigungen, die nach der Solubilisierung und Renaturierung enthalten sind, getrennt.
Mit der chromatographischen Aufreinigung beschäftigt sich u.a. die bereits oben erwähnte WO 87/01132 Al, in der erstmals die Herstellung von G-CSF in E. coli- Wirtszellen beschrieben wurde. Im Rahmen der Reinigung des rekombinanten G- CSF wird in WO 87/01132 Al in Beispiel 7 eine Kationenaustauschchromatographie unter Verwendung einer CM-Cellulose-Säule durchgeführt.
In EP 0 719 860 Al wird das G-CSF im Anschluss an die Solubilisierung und Oxidation mittels Dowex zur Entfernung des Solubilisierungsmittels, gefolgt von einer Anionenaustauschchromatographie und einer Kationenaustauschchromato- graphie gereinigt. Auch in EP 0 719 860 Al wird für die Kationenaustausch- Chromatographie CM-Sepharose verwendet.
In WO 03/051922 Al wird ein Reinigungsverfahren für G-CSF beschrieben, bei dem eine Metallaffinitätschromatographie durchgeführt wird, genauer gesagt, eine Chromatographie an immobilisiertem Metall (immobilized metal affinity chromatography, IMAC). Im Anschluss an die Metallaffinitätschromatographie kann in WO 03/051922 eine Kationenaustauschchromatographie und/oder eine Gelfiltration stattfinden.
In WO 01/04154 Al ist ein Verfahren zur Reinigung von G-CSF beschrieben, bei dem zunächst eine hydrophobe Interaktionschromatographie und darauf folgend eine Hydroxyapatit-Chromatographie durchgeführt werden. Im Anschluss an die Hydroxyapatit-Chromatographie erfolgt eine Kationenaustauschchromatographie.
Die Reinheit des G-CSF, das in die erfindungsgemäße Formulierung formuliert wird, sollte mindestens 95%, bevorzugt mindestens 97% und besonders bevorzugt mindestens 99% und am meisten bevorzugt über 99% betragen. Dabei kann die Reinheit mittels HPLC-Analysen überprüft werden. Geeignet sind hier rp-SEC- und IEX- Analysen. Geeignete Materialien und Protokolle zur Durchführung der rpHPLC oder der SEC-HPLC kann der Fachmann den Produktinformationen von Anbietern wie Vydac (http://www.vydac.com) oder TOSOH Bioscience (http://www.tosohbiosep.de) entnehmen.
In der Regel wird G-CSF in einer Reinheit von über 99%, bevorzugt über 99,5% in den erfindungsgemäßen Zubereitungen eingesetzt.
Die Wirksamkeit des eingesetzten G-CSF sollte möglichst nicht unter 50.000 IE/μg betragen, besonders geeignet ist ein G-CSF mit einer Aktivität von mindestens etwa 80.000 IE/μg, am meisten geeignet ein G-CSF mit einer Aktivität von etwa 100.000 IE/μg oder darüber.
Die Bestimmung der Ausbeute an Met-G-CSF ist auch beschrieben in Herman et al. (1996) Pharm. Biotechnol. 9: 303-328. Der genaue Anteil an Met-G-CSF wird dabei durch Integration der Peakfläche und Umrechnung anhand des Extinktionskoeffizienten ermittelt.
Nach der Aufreinigung kann das G-CSF hinsichtlich seiner Menge und seiner Aktivität analysiert werden. Eine qualitative Analyse kann über eine SDS-P AGE- Analyse mit anschließender Coomassie-Brilliant-Blue-Färbung oder eine rpHPLC erfolgen. Als Standard für die Analysen kann ein kommerziell erhältliches G-CSF- Präparat verwendet werden. Zusätzlich kann eine Peptide Map bzw. eine
Massenspektroskopie durchgeführt werden. Die Aktivität des aufgereinigten G-CSF kann mit verschiedenen biologischen Testverfahren bestimmt werden, wie sie beispielsweise in Shirafuji et al. (1989) Exp. Hematol. 17(2): 116-119; Oh-Eda et al. (1990) J. Biol. Chem. 265(20): 11432-11435; Stute et al. (1992) Blood 79(11): 2849- 2854 und Oshima et al. (2000) Biochem. Biophys. Res. Commun. 267(3): 924-927 beschrieben sind.
Sämtliche Chromatographien werden im Übrigen nach den Empfehlungen und Protokollen der Anbieter der Matrices bzw. der Säulen durchgeführt (z. B. bezüglich der Fließgeschwindigkeit, der zum Waschen bzw. für die Elution eingesetzten Säulenvolumen, der Durchmesser und Betthöhen der Säulen etc.).
Die biologische Aktivität des erhaltenen rekombinanten G-CSF kann durch einen Bioassay bestimmt und mit der eines Standards, kommerziell erhältlichem G-CSF (Neupogen®), verglichen werden. Dazu kann die Mauszelllinie NFS-60 verwendet werden, die G-CSF-responsiv ist. Dazu wird diese Zelllinie in RPMI 1640-Medium (Firma Bachern, Heidelberg) kultiviert, das 1,5 g/l Natriumbicarbonat, 4,5 g/l Glucose, 10 mM Hepes und 1,0 mM Natriumpyruvat enthält und mit 2 mM Glutamin, 10% FCS, 0,05 mM 2-Mercaptoethanol und 60 ng/ml G-CSF supplementiert worden ist.
Für den Aktivitätstest werden die Zellen zweimal mit Medium ohne G-CSF gewaschen, in einer Konzentration von 2 x 104 Zellen pro Napf in 96-Napf-Platten ausgesät und für drei Tage bei 37°C und 4,5% CO2 mit verschiedenen
Konzentrationen des gereinigten G-CSF und des Standards inkubiert. Danach werden sie mit XTT-Reagenz angefärbt und die Absorption bei 450 nm in einem Mikrotiterplattenlesegerät gemessen. Es ist erwünscht, dass die Zellen, die mit dem erhaltenen G-CSF behandelt wurden, genauso gut wachsen wie die Zellen, die mit dem Standard (z. B. das Handelsprodukt Neupogen®) behandelt wurden, da dann von einer gleichen biologischen Aktivität der beiden G-CSF-Proben ausgegangen werden kann. Die Herstellung der Formulierung erfolgt ebenfalls nach im Stand der Technik üblichen Methoden.
Üblicherweise werden die Puffer- und Tensidkomponenten und ggf. die weiteren pharmazeutisch verträglichen Hilfsstoffe zunächst in den geeigneten Mengen in dem wässrigen Lösungsmittel, gewöhnlich sterilem Wasser, gelöst. Falls erforderlich wird der pH- Wert mit Acetatlösung oder mit anderen Säuren oder Basen, wie den oben beispielhaft genannten, eingestellt. Nach einem üblichen Sterilisierungsschritt, beispielsweise Filtration durch ein Sterilfilter, wird G-CSF in der gewünschten Konzentration zugegeben. Es ist aber auch ohne weiteres möglich, G-CSF in einer wässrigen Lösung vorzulegen und den pH anschließend mit Acetat und oder geeigneten Säuren oder Basen, bevorzugt NaOH, auf den gewünschten Wert einzustellen.
Schließlich wird die fertige Flüssigformulierung in ein geeignetes Behältnis abgefüllt, in dem sie bis zur Applikation gelagert wird. Bei dem Behältnis handelt es sich insbesondere um Fertigspritzen, Durchstichflaschen oder Ampullen.
Die erfindungsmäßen Zusammensetzungen können in den verschiedenen Applikationsformen eingesetzt werden. Beispielsweise eignen sich die erfindungsgemäßen Formulierungen als Injektions- oder Infusionslösungen, insbesondere zur intravenösen, intramuskulären oder subkutanen Verabreichung. Die Zusammensetzungen können aber auch zur Herstellung weiterer Applikationsformen verwendet werden, beispielsweise von Transfersomen, Liposomen oder Hydrogelen.
Die erfindungsgemäße Flüssigformulierung bietet nicht nur die Vorteile, dass sie auf potentiell immunogene Verbindungen verzichtet und insgesamt eine möglichst geringe Anzahl von Inhaltsstoffen enthält, sondern sie erfordert auch in keiner Phase der Herstellung eine Lyophilisierung. Hierdurch werden zum einen die mit einer Lyophilisierung verbundenen Kosten eingespart, zum anderen werden die Risiken mechanischer Probleme, z. B. wenn sich das Lyophilisat nicht in vollständiger oder ausreichender Weise rekonstituieren lässt, vermieden.
Unter dem Begriff "lagerstabil" wird im Rahmen der vorliegenden Erfindung verstanden, dass der Gehalt an aktiven G-CSF-Molekülen nach dreimonatiger
Lagerung der G-CSF-Flüssigformulierung bei 25°C immer noch 80% oder mehr der Ausgangskonzentration beträgt. Vorzugsweise beträgt der Restgehalt an G-CSF- Aktivität nach dreimonatiger Lagerung bei 25°C noch mindestens 85%, bevorzugter mindestens 90% und am meisten bevorzugt mindestens 95% der Ausgangsaktivität. Die Aktivität des G-CSF kann mittels üblicher Aktivitätstests, wie sie bereits für G- CSF im Stand der Technik beschrieben sind, bestimmt werden.
Unter dem Begriff "Flüssigformulierung" wird im Rahmen der vorliegenden Erfindung verstanden, dass die Formulierung von G-CSF zusammen mit den anderen in der Formulierung enthaltenen Stoffen in keiner Phase des Herstellungsprozesses, also weder vor noch während oder nach dem Mischen der Stoffe, lyophilisiert wird und die Formulierung für die intravenöse oder subkutane Applikation als Injektionsoder Infusionslösung bestimmt ist.
In einer bevorzugten Ausführungsform enthält die Formulierung neben dem
Wirkstoff G-CSF, einem Tensid ausgewählt aus Polysorbat 20, Polysorbat 80 oder einem Gemisch davon, Acetat, Sorbitol, Natrium-Ionen und Wasser keine weiteren Inhaltsstoffe und weist einen pH-Wert zwischen 4,2 und 4,3 oder zwischen 4,25 und 4,35, insbesondere zwischen 4,25 und 4,3 auf. Besonders bevorzugt ist der Einsatz von Polysorbat 20 als einziges Tensid in der Formulierung.
Beispiele
Die folgenden Beispiele sollen die Erfindung erläutern, ohne sie einzuschränken. G-CSF-haltige Zusammensetzungen wurden hergestellt, indem die Puffersubstanz Acetat in Form des Natriumsalzes zusammen mit Polysorbat 20 oder Polysorbat 80 und Sorbitol zunächst in destilliertem und sterilem Wasser gelöst wurden und anschließend der pH-Wert mit NaOH auf den gewünschten Wert zwischen 4,2 und 4,3 eingestellt wurde. Nicht-glykosyliertes rekominantes humanes G-CSF (Filgrastim, Met-G-CSF) wurde in der gewünschten Konzentration zugegeben. Vorzugsweise erfolgten die Herstellung und Abfüllung der Formulierung in Fertigspritzen unter Stickstoffbegasung.
Die konkreten Formulierungen der hergestellten erfindungsgemäßen Zusammensetzungen und deren pH- Werte sind in den nachfolgenden Tabellen angegeben. Bei Einsatz von Polysorbat 80 anstelle von Polysorbat 20 zeigten sich vergleichbare Ergebnisse. Gleiches gilt für die Verwendung von Mannitol anstelle von Sorbitol.
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zur pH-Wert-Einstellung Die erfindungsgemäßen Formulierungen wurden zusammen mit entsprechenden Formulierungen mit einem pH- Wert von 4,0, die den Stand der Technik darstellen und als Vergleichsformulierung dienten, bei verschiedenen Temperaturen über verschiedene Zeiträume gelagert.
Einige Daten der Langzeitstabilitätsanalysen sind in den beigefügten Abbildungen dargestellt (G-CSF-Konzentration jeweils 0,6 mg/ml). Abbildung 1 zeigt SEC- Analysen und Abbildung 2 IEX- Analysen, jeweils bei bis zu 6-monatiger Lagerung bei 300C bzw. 400C.
Insgesamt zeigten die erfindungsgemäßen Formulierungen vergleichbare Ergebnisse wie die Vergleichsformulierung, die sich lediglich durch einen saureren pH- Wert, nämlich pH 4,0, von den getesteten Formulierungen gemäß der Erfindung unterschied.

Claims

Patentansprüche
1. Flüssigformulierung von G-CSF, enthaltend G-CSF als Wirkstoff, Acetat als Puffer, Polysorbat 20 und/oder Polysorbat 80 als Tensid und optional pharmazeutisch annehmbare Hilfsstoffe, wobei die Formulierung einen pH- Wert zwischen 4,1 und 4,4 aufweist.
2. Flüssigformulierung nach Anspruch 1 mit einem pH- Wert im Bereich von 4,1 bis 4,3.
3. Flüssigformulierung nach Anspruch 1 oder 2 mit einem pH-Wert im Bereich von 4,2 bis 4,3.
4. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche mit einem pH-
Wert von 4,25.
5. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, wobei die Konzentration des Acetat-Puffers zwischen 2 und 50 mmol/1 beträgt.
6. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, wobei die Konzentration des Acetat-Puffers 10 mmol/1 beträgt.
7. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, wobei die Formulierung als pharmazeutisch annehmbaren Hilfsstoff Sorbitol und/oder
Mannitol enthält.
8. Formulierung nach Anspruch 7, wobei die Formulierung Sorbitol enthält.
9. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, wobei die
Formulierung kein Konservierungsmittel enthält.
10. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, wobei die Formulierung keine Aminosäuren enthält.
11. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, wobei die
Formulierung auf polymere Stabilisierungsmittel verzichtet.
12. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, wobei der pH mit NaOH eingestellt wurde.
13. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, enthaltend Natrium-Ionen.
14. Formulierung nach einem der vorangehenden Ansprüche, enthaltend G- CSF, Polysorbat 20 und/oder Polysorbat 80, Sorbitol, Acetat und Natrium und darüber hinaus keine weiteren Inhaltsstoffe.
15. Formulierung nach einem der Ansprüche 1 bis 13, wobei es sich bei dem Tensid ausschließlich um Polysorbat 20 handelt.
16. Verfahren zur Herstellung einer Flüssigformulierung von G-CSF nach einem der vorangehenden Ansprüche, umfassend das Mischen des G-CSF-Proteins mit einer Lösung umfassend Acetat als Puffer, Polysorbat 20 und/oder Polysorbat 80 als Tensid und optional pharmazeutisch annehmbare Hilfsstoffe.
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