WO2005116184A1 - 生体試料操作装置 - Google Patents

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WO2005116184A1
WO2005116184A1 PCT/JP2004/007170 JP2004007170W WO2005116184A1 WO 2005116184 A1 WO2005116184 A1 WO 2005116184A1 JP 2004007170 W JP2004007170 W JP 2004007170W WO 2005116184 A1 WO2005116184 A1 WO 2005116184A1
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probe
fluid
cavity
cell
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PCT/JP2004/007170
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Inventor
Toshihiko Nagamura
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Yunisoku Corporation
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Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M35/00Means for application of stress for stimulating the growth of microorganisms or the generation of fermentation or metabolic products; Means for electroporation or cell fusion
    • C12M35/02Electrical or electromagnetic means, e.g. for electroporation or for cell fusion

Definitions

  • the present invention relates to a biological sample operation device for injecting or dropping a drug solution containing a gene, a protein, an enzyme, or the like into a biological sample such as a cell, and particularly relates to a biological sample operation device using a cantilever.
  • FIG. 8 is a diagram showing an example of a conventional biological sample operation device.
  • a biological sample manipulation device 80 is provided on a scanning probe microscope (not shown) and has a cantilever 82 with a sharply shaped probe 81 protruding at the tip, and is attached to the tip of the cantilever 82.
  • a needle-like material 83 made of a carbon nanotube or the like.
  • the gene or the like is immobilized on the tip of the needle 83 and the gene or the like is transferred into the cell 84 by scanning the cantilever 82 and inserting the needle 83 into the cell 84. And maintain it in this state for gene expression.
  • This microfabrication apparatus comprises a cantilever portion that is cantilevered, and a protruding portion protruding from the tip of the cantilever portion. Micro holes communicating from the outside to the outside of the protrusion are formed through the protrusion.
  • the inside of the cavity of the protruding portion is filled with a fluid such as indium, gallium, or an alloy of indium and gallium.
  • Patent Document 1 Japanese Patent Application Publication Number JP-A-2003-325161
  • Patent document 2 Japanese patent application publication number JP 2004-34277A
  • the present invention has been made in view of such a problem, and enables a fluid such as a drug solution in which a gene or the like is dissolved to be injected or dropped into a biological sample. It is an object to provide means for minimizing damage to a sample.
  • a biological sample operating device is a biological sample operating device for injecting a biologically active substance or a substance that excites a chemical reaction into a biological sample.
  • a probe protruding from the tip of the portion and having a cavity therein, a fine hole formed through the probe from the cavity to the outside of the probe, and a filler filled in the cavity.
  • a fluid injecting means for injecting the fluid out of the micropores and injecting the fluid into a biological sample.
  • a small amount of fluid filled in the cavity of the probe can be discharged from the micropores by the fluid injection means and can be poured into the biological sample.
  • the present invention provides the fluid injection means, wherein the first electrode provided in contact with the fluid; the second electrode provided in contact with the biological sample; A pulse power supply for applying a pulse voltage between the two electrodes.
  • the binding force acting between the particles constituting the fluid is cut off, and the fluid that has lost cohesion flows out of the micropores.
  • pulsed biological samples When a voltage is applied, a hole is opened in the surface of the biological sample due to transient dielectric breakdown, and the fluid is taken into the biological sample through the hole by electrophoresis.
  • these holes are very small and can be repaired immediately by the self-repair function of the biological sample, so that the biological sample can be seriously damaged. This makes it possible to inject a fluid into the biological sample while minimizing damage to the biological sample.
  • the present invention provides a biological sample operating device for dropping a physiologically active substance or a substance that excites a chemical reaction onto a biological sample, wherein the base has a cantilever-supported beam and a distal end of the beam.
  • a probe 10 protruding and provided with a cavity therein, a micropore formed through the probe from the cavity to the outside of the probe, and a fluid filled in the cavity.
  • a minute amount of fluid filled in the cavity of the probe is discharged from the fine hole by the fluid outflow means. It can be drained and dropped onto a biological sample.
  • the fluid outflow means includes a pair of electrodes provided in contact with the fluid, and a pulse power supply for applying a pulse voltage between the electrodes. is there. According to the present invention, by applying the noise voltage to the fluid, the binding force acting between the particles constituting the fluid can be cut and discharged from the micropores.
  • the beam, the probe, and the fine hole constitute a probe of a scanning probe microscope. According to the present invention, after a biological sample is manipulated, a drug solution or the like is surely injected or dropped into the biological sample. Also, the degree of breakage of the biological sample due to application of the noise voltage is checked. can do.
  • the present invention includes an operation observation means for observing the operation of the biological sample and a change of the biological sample after the operation.
  • an operation observation means for observing the operation of the biological sample and a change of the biological sample after the operation.
  • a biological sample to be operated can be easily selected from a plurality of arranged biological samples, and the biological sample can be more accurately operated while being observed by the operation observation means. Can be. It is also possible to observe internal changes that occur in the biological sample after the operation.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing biological sample handling apparatuses 1, 30, 40, 50, and 60 according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a partially enlarged cross-sectional view showing the vicinity of a cell 2 in FIG.
  • FIG. 3 is a schematic perspective view showing a configuration of a cantilever 9 according to the first embodiment.
  • FIG. 4 is a schematic perspective view showing a configuration of a cantilever 31 according to a second embodiment.
  • FIG. 5 is a schematic perspective view showing a configuration of a cantilever 41 according to a third embodiment.
  • FIG. 6 is a schematic perspective view showing a configuration of a cantilever 51 according to a fourth embodiment.
  • FIG. 7 is a schematic perspective view showing a configuration of a cantilever 61 according to a fifth embodiment.
  • FIG. 8 is a schematic side view showing a biological sample operating device 80 according to a conventional example.
  • FIG. 9 is a separate sheet explaining the reference numerals used in each figure.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing a biological sample operation device 1 according to the present embodiment.
  • a biological sample operation device 1 is an atomic force microscope (hereinafter, “AFM”) for operating a cell (biological sample) 2 to be operated and observing a change in the surface of the cell 2. 3, a pulse power supply 4 for applying a pulse voltage to the AFM 3, a control unit 5 for controlling the operation of the AFM 3 and the pulse power supply 4, and a computer 6 as an input / output unit of the control unit 5.
  • an optical microscope (operation observing means) 7 for observing cell operation and internal changes of the cell 2 after the operation.
  • the cell 2 is described as an example of a biological sample.
  • a biological macromolecule such as a tissue fragment of a living organism or a protein 'enzyme may be used.
  • the AFM 3 is a kind of scanning probe microscope, and is used for observing the surface shape of the cell 2 and operating the cell 2. As shown in FIG. 1, the AFM 3 includes a running stage 8 on which the cells 2 are placed, and a force lever 9 for scanning the surface of the cells 2 on the running stage 8.
  • FIG. 2 is a partially enlarged cross-sectional view in which the vicinity of the cell 2 in FIG. 1 is enlarged.
  • the scanning stage 8 includes a stage main body 10 having a piezoelectric element actuator (not shown) built therein, a glass plate 11 disposed on the top of the stage main body 10, and a glass plate 11. And a transparent conductive thin film (second electrode) 12 attached to the upper surface of the substrate.
  • the scanning stage 8 is a state in which the cell 2 is placed on the conductive thin film 12 and the piezoelectric element The cell 2 can be moved in the XYZ axis direction by applying a voltage to the cell to expand and contract. As shown in FIG.
  • a gap 13 is formed in the stage main body 10 so as to penetrate the stage main body 10 in the vertical direction, and the optical microscope 7 is disposed below the gap 13.
  • the state of manipulating the cells 2 and changes occurring in the cells 2 can be observed with the optical microscope 7 through the glass plate 11 and the conductive thin film 12.
  • FIG. 3 is a schematic perspective view showing the configuration of the cantilever 9.
  • the cantilever 9 has a beam portion 15 whose base end is cantilevered by a holder 14, and a probe provided with a cavity 16 projecting from the distal end of the beam portion 15. 17, a mask 18 applied to the inner wall surface of the probe 17, a chemical solution 19 filled in the cavity 16, and a conductive thin film disposed from the surface of the beam portion 15 to the inner wall surface of the probe 17. (First electrode) 20 and a fine hole 21 formed through the probe 17 from the cavity 16 to the outside of the probe 17.
  • the probe 17 detects the surface shape of the cell 2 by coming very close to the surface thereof. As shown in FIG. 3, the probe 17 has a quadrangular pyramid shape, and a quadrangular pyramid-shaped cavity 16 is formed from the bottom side to the vertex side of the quadrangular pyramid. Also, the mask 18 reduces the surface tension of the chemical solution 19 so that the chemical solution 19 can easily flow out of the micropores 21 to the outside. In the present embodiment, gold is applied to the inner wall surface of the probe 17 to form a thin film. In the present invention, the mask 18 has an arbitrary configuration, and its components, film thickness, and the like can be appropriately changed in design.
  • the chemical solution 19 is a solution obtained by dissolving a nucleic acid substance such as DNA or a protein substance such as an antigen, an enzyme or formone (hereinafter referred to as “bioactive substance”) in a buffer solution. Have the property.
  • the chemical solution 19 is searched through the fine holes 21 because the opening diameter of the micropores 21 is very small and the particles constituting the chemical solution 19 are connected to each other by the action of atomic force or the like. It is held inside the probe 17 without flowing out of the needle 17.
  • the chemical solution 19 may be one that excites a chemical reaction by dropping a small amount onto the cell 2 in addition to the present embodiment. Further, the fine holes 21 serve as an outlet for allowing the chemical solution 19 filled in the cavity 16 to flow out of the probe 17.
  • the micropores 21 are ultrafine pores having a circular cross section and an opening diameter of 20 to 500 nm.
  • the micropores 21 are formed from the top of the cavity 16 toward the top of the probe 17 as shown in FIG. Therefore, the tip of the probe 17 is missing, and the tip of the tip is a fine hole. It is composed of 21 cross sections, and the shape is scanned by bringing this cross section extremely close to the surface of the cell 2.
  • the outflow of the chemical solution 19 can be adjusted by changing the size of the cross section of the fine holes 21.
  • the conductive thin film 20 is for applying a pulse voltage to the drug solution 19 and the cells 2. As shown in FIGS.
  • the conductive thin film 20 is stuck on the upper surface of the beam portion 15 along the longitudinal direction, and the tip portion is bent downward and along the inner wall surface of the probe 17. It is stuck. Therefore, when the liquid medicine 19 is filled in the cavity 16, the tip of the conductive thin film 20 is in contact with the liquid medicine 19.
  • the pulse power supply 4 applies a pulse voltage to the drug solution 19 and the cells 2.
  • the pulse power supply 4 is connected to the conductive thin film 20 of the cantilever 9 and the conductive thin film 12 of the scanning stage 8 as shown in FIGS. 1 and 2, respectively. And a pulse voltage is applied between them.
  • the chemical solution 19 has conductivity
  • the cell membrane 22 and the cell solution 23 constituting the cell 2 also have conductivity, so that the chemical solution 19 is provided between the conductive thin film 20 and the conductive thin film 12. Means that current flows.
  • the bonding force acting between the respective particles constituting the drug solution 19 is cut off by receiving an electric shock, and the drug solution 19 that has lost cohesive force passes through the micropores 21 to the outside of the probe 17.
  • Leaks to The outflow amount of the chemical solution 19 can be adjusted by controlling the magnitude of the pulse voltage.
  • a fine breakdown hole 24 is opened in the cell membrane 22 due to transient insulation breakdown, and the drug solution 19 which is electrophoresed by the pulse voltage passes through the breakdown hole 24 of the cell membrane 22 to reach the cell. It is taken in 2. Since the destruction hole 24 formed in the cell membrane 22 is very fine, it is immediately closed by the self-repairing function of the cell 2, so that the cell 2 does not receive large damage.
  • the drug solution 19 filled in the cavity 16 is injected into the cell 2.
  • the force for injecting the drug solution 19 flowing out from the micropores 21 into the cells 2 is not limited to this.
  • the drug solution 19 that has flowed out can also be dropped on the cells 2.
  • a pair of electrodes are provided in contact with the chemical solution 19 and a pulse voltage is applied between the electrodes, the dielectric breakdown does not occur in the cell 2 and the discharged chemical solution does not occur. 19 is dropped on the cell 2 without being taken into the cell 2.
  • a method of applying a mechanical shock using a pulse laser can also be used.
  • the control section 5 controls operations of the AFM 3 and the noise power supply 4.
  • the control unit 5 scans the traveling stage 8 in the horizontal direction, that is, the XY axis direction, and during this time, controls the atomic force acting between the probe 17 of the cantilever 9 and the cell 2 to be constant. It controls running in the Z-axis direction, that is, in the vertical direction. At this time, a feedback amount in the Z-axis direction corresponding to the position of the traveling stage 8 in the XY-axis direction is detected as an output voltage of the control unit 5, and this is displayed on a screen via an arithmetic unit (not shown) of the computer 6. By outputting as a two-dimensional image, the shape of the surface of the cell 2 can be measured with high precision.
  • the scanning force on the surface of the cell 2 by moving the running stage 8 with the position of the cantilever 9 fixed on the contrary, the position of the running stage 8 is fixed and the cantilever is fixed. It is also possible to scan the surface of the cell 2 by moving the bar 9.
  • the operation of the cantilever 9 may be controlled by the control unit 5.
  • the control unit 5 also controls the operation of the pulse power supply 4, and scans the scanning stage 8 to observe the surface of the cell 2, and when the cantilever 9 reaches a desired position, generates a voltage pulse.
  • the drug solution 19 can be injected or dropped into the cell 2 by applying the voltage.
  • the drug solution 19 may be injected or dropped into only the selected arbitrary cells 2.
  • the surface shape of the cell 2 is observed with the AFM3 to check whether the drug solution 19 has been reliably injected into the cell 2 or to determine whether or not the pulse voltage is applied. It is possible to confirm the degree of breakage in item 2, etc., and it is possible to perform more accurate cell manipulation.
  • a procedure for performing a cell operation using the biological sample operation device 1 will be described.
  • a predetermined drug solution 19 to be injected or dropped into the cell 2 is filled in the cavity 16 of the cantilever 9.
  • the cell 2 to be operated is placed on the scanning stage 8, and while observing with the optical microscope 7, the alignment is performed so that the probe 17 of the cantilever 9 is directly above the cell 2.
  • the scanning stage 8 is scanned in the XY-axis direction, and when the probe 17 reaches the desired position.
  • Pulse The power supply 4 is operated to apply a pulse voltage of a predetermined magnitude between the conductive thin films 12 and 20.
  • the drug solution 19 flows out of the micropores 21 of the cantilever 9 and is injected or dropped into the cells 2. Thereafter, a change in the shape of the surface of the cell 2 is observed with the AFM 3, and a change occurring in the cell 2, for example, a state in which the gene injected into the cell 2 is expressed is observed with the optical microscope 7.
  • FIG. 4 is a schematic perspective view showing the configuration of the cantilever 31 according to the present embodiment.
  • the same components as those in FIG. 3 are denoted by the same reference numerals. As shown in FIG.
  • the cantilever 31 includes a beam portion 15 whose base end is cantilevered by a holder 14, a probe 17 provided with a cavity 16 projecting from the distal end of the beam portion 15, A mask 18 applied to the inner wall surface of the probe 17, a chemical solution 19 filled in the cavity 16, and a conductive thin film 20 disposed from the surface of the beam 15 to the inner wall surface of the probe 17. And a fine hole 32 communicating the cavity 16 with the outside of the probe 17.
  • the fine hole 32 is formed not to be located on the line connecting the apex of the cavity 16 and the apex of the probe 17, but to be slightly displaced. As a result, the apex of the probe 17 remains as a sharply shaped probe point 33 without being dropped. Since the radius of curvature of the probe point 33 is about 10 nm, the tip of the probe 17 is compared with the cantilever 9 in which the tip of the probe 17 is formed of the fine hole 21 having an aperture of about 20-500 nm. Thus, the surface of the cell 2 can be scanned with higher resolution.
  • FIG. 5 is a schematic perspective view showing the configuration of the cantilever 41 according to the present embodiment.
  • the same configuration as Fig. 3 is added.
  • the cantilever 41 includes a beam portion 15 whose base end is cantilevered by a holder 14, a probe 17 provided with a cavity 16 projecting from the distal end of the beam portion 15, and A mask 18 applied to the inner wall surface of the probe 17, a chemical solution 19 filled inside the cavity 16, and a conductive thin film 20 disposed from the surface of the beam 15 to the inner wall surface of the probe 17 And a fine hole 21 communicating the cavity 16 with the outside of the probe 17, and a projection 42 provided at the tip of the probe 17 and functioning as a probe point.
  • the micropore 21 is formed from the top of the cavity 16 to the top of the probe 17, as in the cantilever 9 of the first embodiment. Missing.
  • the protrusion 42 is formed in a triangular shape having a sharp corner 43, and the sharp edge 43 is positioned below the fine hole 21, and one end edge thereof is formed on the outer wall surface of the probe 17. It is fixed. By bringing the sharp corners 43 of the projections 42 into close contact with the surface of the cell 2, it is possible to scan the surface of the cell 2 with higher resolution as compared with the cantilever 9 of the first embodiment. It has become.
  • the shape of the projection 42 is not limited to a triangle as long as it has a sharp corner 43, and the design can be changed as appropriate.
  • FIG. 6 is a schematic perspective view showing the configuration of the cantilever 51 according to the present embodiment.
  • the same components as those in FIG. 3 are denoted by the same reference numerals. As shown in FIG.
  • the cantilever 51 includes a beam portion 15 whose base end is cantilevered by a holder 14, a probe 17 provided with a cavity 16 projecting from the distal end of the beam portion 15, and A mask 18 applied to the inner wall surface of the probe 17, a chemical solution 19 filled in the cavity 16, and a conductive thin film 20 disposed from the surface of the beam 15 to the inner wall surface of the probe 17 And a micropore 21 communicating between the cavity 16 and the outside of the probe 17, and a nanotube 52 attached to the tip of the probe 17.
  • the fine hole 21 is formed from the top of the cavity 16 to the top of the probe 17, similarly to the cantilever 9 according to the first embodiment, and the probe 17 Vertex is missing.
  • the nanotube 52 is made of carbon or the like, and its base end is The tip is fixed to the outer wall surface of the probe 17, and its tip is provided so as to protrude below the tip of the probe 17.
  • the opening diameter of the nanotube 52 is extremely small, and the tip of the nanotube 52 is brought very close to the surface of the cell 2 so that the surface of the cell 2 can be scanned with higher resolution as compared with the cantilever 9 of the first embodiment. It is possible to do.
  • FIG. 7 is a schematic perspective view showing the configuration of the cantilever 61 according to the present embodiment.
  • the same components as those in FIG. 3 are denoted by the same reference numerals. As shown in FIG.
  • the cantilever 61 includes a beam portion 15 whose base end is cantilevered by a holder 14, a probe 17 provided with a cavity 16 projecting from the distal end of the beam portion 15, and A mask 18 applied to the inner wall surface of the probe 17, a reactive gas (fluid) 62 filled in a tank (not shown), a feed nozzle 63 for feeding the reactive gas 62 to a cantilever 61, It has a conductive thin film 20 disposed from the surface of the beam portion 15 to the inner wall surface of the probe 17, and a fine hole 21 communicating the cavity 16 with the outside of the probe 17.
  • the reactive gas 62 is a general term for a gaseous substance that does not evaporate even in a vacuum and excites various chemical reactions with the surface of the substance, and includes not only a simple substance but also a compound or a mixture.
  • a halogen gas typified by HF or HC1
  • a cyanide gas typified by C4H5N or CH3CH2CN, or the like can be used.
  • the reactive gas 62 which is not shown in detail in the figure, is filled in the tank, which is a vacuum chamber.
  • the feeding nozzle 63 has one end connected to the tank and the other end narrowed and inserted into the cavity 16 of the cantilever 61.
  • the reactive gas 62 injected from the feed nozzle 63 has, as in the case of the chemical solution 19, an extremely small opening diameter of the fine holes 21, and each particle constituting the reactive gas 62 is an atomic atom. Since they are connected to each other by the action of force or the like, they are not ejected to the outside of the probe 17 through the fine holes 21 but stay in the cavity 16.
  • a pulse voltage is applied to the reactive gas 62 from the conductive thin film 20, the bonding force between the particles is reduced.
  • the gas is cut, and the reactive gas 62 flows out of the probe 17.
  • the reactive gas 62 By causing the reactive gas 62 to flow out of the micropores 21 and adhere to the surface of the cell 2 in this manner, various chemical reactions are excited between the cell 2 and the reactive gas 62. Observation with an optical microscope 7.
  • the present invention is not limited to the atomic force microscope, and cantilevers provided in other scanning probe microscopes can be used.

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Abstract

本生体試料操作装置(1)は、基端が片持ち支持された梁部(15)と、該梁部(15)の先端に突設され内部に空洞(16)が設けられてなる探針(17)と、前記空洞(16)から前記探針(17)の外部へと前記探針(17)を貫通して形成された微細孔(21)と、前記空洞(16)内に充填された流体(19)と、該流体(19)を前記微細孔(21)から流出させるとともに生体試料(2)に注入する流体注入手段(4,12,20)と、を具備するものである。

Description

明 細 書
生体試料操作装置
技術分野
[0001] 本発明は、細胞等の生体試料に対して、遺伝子、蛋白質、又は酵素等を含む薬液 を注入又は滴下する生体試料操作装置に関し、特に、カンチレバーを用いた生体試 料操作装置に関する。
背景技術
[0002] 従来、生物研究や病理研究等の分野においては、細胞の内部に遺伝子等を注入 して発現させることが行われる。ここで、細胞等の生体試料の内部に遺伝子等を注入 する手段としては、走査型プローブ顕微鏡に備えられたカンチレバーを用いる方法 が従来提唱されている(特許文献 1参照)。図 8は、従来の生体試料操作装置の一例 を示す図である。図に示すように、生体試料操作装置は 80、図示しない走査型プロ ーブ顕微鏡に備えられ先端部に先鋭な形状の探針 81が突設されたカンチレバー 82 と、該カンチレバー 82の先端に取り付けられカーボンナノチューブ等からなる針状物 83と、を具備してなるものである。本生体試料操作装置 80の使用に際しては、針状 物 83の先端に遺伝子等を固定化し、カンチレバー 82を走査して針状物 83を細胞 8 4内へ揷入することにより遺伝子等を細胞 84内に導入し、この状態で保持して遺伝 子の発現を行う。
[0003] 一方、本出願人は、カンチレバーを用いた微細加工装置を従来提唱している(特 許文献 2参照)。この微細加工装置は、片持ち支持されたカンチレバー部と、該カン チレバー部の先端に突設された突出部とを備えてなるものであり、突出部には空洞 が形成されるとともに、該空洞から突出部の外部へと通じる微細孔が突出部を貫通し て形成されている。ここで、突出部の空洞の内部には、インジウム、ガリウム、又はイン ジゥムとガリウムの合金等の流体が充填されてレ、る。微細加工装置の使用に際しては 、カンチレバーに対してパルス電圧を印加することにより、流体が微細孔を通じて外 部へ流出し、試料の表面に Inや Ga等の超微小ドットや超微細線が形成される。この ようにして、高速光通信用の半導体発光素子等が作製されるものとなっている。 [0004] しかし、従来の生体試料操作装置 80では、細胞 84内に導入すべき遺伝子等を針 状物 83の先端に固定化する必要があるため、遺伝子や薬品等が溶け込んだ薬液や 反応性ガス等の流体を、細胞 84に対して注入又は滴下することができなレ、、という問 題がある。
[0005] また、直径が 10nm 30nm程度の針状物 83を細胞内に挿入するので、細胞膜 8 5にはこの針状物 83の径より大きい孔 86が開き、また、針状物 83で細胞核 87を傷付 けてしまう場合もある。これにより、細胞 84が大きなダメージを受けて死滅してしまつ たり、細胞 84の自己修復機能により孔 86や傷が修復されるとしても、その修復に長 時間を要する、という問題もある。
[0006] 特許文献 1 :日本国特許出願公開番号 特開 2003—325161号公報
特許文献 2 :日本国特許出願公開番号 特開 2004 - 34277号公報
発明の開示
[0007] 本発明は、このような問題に鑑みてなされたものであり、遺伝子等が溶け込んだ薬 液等の流体を、生体試料に注入又は滴下することを可能とし、且つ、その際に生体 試料に与えるダメージを最小限とする手段を提供することを目的とする。
[0008] 本発明に係る生体試料操作装置は、生理活性物質又は化学反応を励起する物質 を、生体試料に注入する生体試料操作装置において、基端が片持ち支持された梁 部と、該梁部の先端に突設され内部に空洞が設けられてなる探金十と、前記空洞から 前記探針の外部へと前記探針を貫通して形成された微細孔と、前記空洞内に充填さ れた流体と、該流体を前記微細孔から流出させるとともに生体試料に注入する流体 注入手段と、を具備するものである。本発明によれば、探針の空洞内に充填された微 小量の流体を、流体注入手段によって微細孔から流出させるとともに生体試料に注 人すること力 Sできる。
[0009] また、本発明は、前記流体注入手段が、前記流体に接触して設けられた第 1電極と 、前記生体試料に接触して設けられた第 2電極と、該第 1電極及び第 2電極の間に パルス電圧を印加するパルス電源と、を具備するものである。本発明によれば、流体 にパルス電圧が印加されることで、流体を構成する各粒子間に作用する結合力が切 断され、凝集力を失った流体が微細孔から流出する。また、生体試料に対してパルス 電圧が印加されることにより、一過性の絶縁破壊で生体試料の表面に孔が開き、流 体は電気泳動により孔を通って生体試料内に取り込まれる。また、この孔は非常に微 小なものであり、生体試料の自己修復機能ですぐに修復されるので、生体試料に大 きなダメージを与えることもなレ、。これにより、生体試料に与えるダメージを極力低減 しつつ、生体試料内に流体を注入することができる。
[0010] また、本発明は、生理活性物質又は化学反応を励起する物質を、生体試料に滴下 する生体試料操作装置において、基端が片持ち支持された梁部と、該梁部の先端 に突設され内部に空洞が設けられてなる探金十と、前記空洞から前記探 ^"の外部へと 前記探針を貫通して形成された微細孔と、前記空洞内に充填された流体と、該流体 を前記微細孔から流出させる流体流出手段と、を具備するものである。本発明によれ ば、探針の空洞内に充填された微小量の流体を、流体流出手段によって微細孔から 流出させて生体試料上に滴下することができる。
[0011] また、本発明は、前記流体流出手段が、前記流体に接触して設けられた一対の電 極と、該各電極の間にパルス電圧を印加するパルス電源と、を具備するものである。 本発明によれば、流体にノ^レス電圧を印加することで、流体を構成する各粒子間に 作用する結合力を切断し、微細孔から流出させることができる。
[0012] また、本発明は、前記梁部、前記探針、及び前記微細孔が、走査型プローブ顕微 鏡の探針を構成するものである。本発明によれば、生体試料の操作後に、薬液等が 確実に生体試料内に注入又は滴下されたカ また、ノ^レス電圧を印加したことによる 生体試料の壊れ具合はどの程度か等を確認することができる。
[0013] また、本発明は、前記生体試料の操作及び操作後の前記生体試料の変化を観測 するための操作観測手段を具備するものである。本発明によれば、複数個並べた生 体試料の中から、操作すべき生体試料を容易に選択することができ、且つ、操作観 測手段で観測しながらより正確に生体試料を操作することができる。また、操作後の 生体試料に生じる内部変化を観測することもできる。
図面の簡単な説明
[0014] [図 1]本発明の実施形態に係る生体試料操作装置 1, 30, 40, 50, 60を示す模式図 [図 2]図 1におレ、て細胞 2の近傍を拡大した部分拡大断面図。
[図 3]第 1の実施形態に係るカンチレバー 9の構成を示す概略斜視図。
[図 4]第 2の実施形態に係るカンチレバー 31の構成を示す概略斜視図。
[図 5]第 3の実施形態に係るカンチレバー 41の構成を示す概略斜視図。
[図 6]第 4の実施形態に係るカンチレバー 51の構成を示す概略斜視図。
[図 7]第 5の実施形態に係るカンチレバー 61の構成を示す概略斜視図。
[図 8]従来例に係る生体試料操作装置 80を示す概略側面図。
[図 9]各図に用いた引用符号を説明する別紙。
発明を実施するための最良の形態
[0015] 以下、本発明の第 1の実施形態を図面に基づいて説明する。図 1は、本実施形態 に係る生体試料操作装置 1を示す模式図である。図に示すように、生体試料操作装 置 1は、操作対象である細胞(生体試料) 2を操作すると共に該細胞 2の表面の変化 を観測するための原子間力顕微鏡(以下、「AFM」という) 3と、該 AFM3に対してパ ルス電圧を印加するパルス電源 4と、 AFM3及びパルス電源 4の動作を制御する制 御部 5と、該制御部 5の入出力部であるコンピュータ 6と、細胞操作及び操作後の細 胞 2の内部変化を観測するための光学顕微鏡 (操作観測手段) 7と、を具備してなる ものである。尚、本実施形態では、生体試料の一例として細胞 2を用いて説明するが 、これ以外にも、例えば、生物の組織片ゃ、蛋白'酵素等の生体高分子を用いること も可能である。
[0016] AFM3は、走查型プローブ顕微鏡の一種であり、細胞 2の表面形状を観測するとと もに、該細胞 2を操作するためのものである。該 AFM3は、図 1に示すように、細胞 2 が載置される走查ステージ 8と、該走查ステージ 8上の細胞 2の表面をスキャンする力 ンチレバー 9と、を備えている。
[0017] 図 2は、図 1において細胞 2の近傍を拡大した部分拡大断面図である。図 1及び図 2に示すように、走査ステージ 8は、図示しない圧電素子ァクチユエータを内蔵したス テージ本体 10と、該ステージ本体 10の最上部に配設されたガラス板 11と、該ガラス 板 11の上面に貼設された透明な導電性薄膜 (第 2電極) 12と、を有している。走查ス テージ 8は、導電性薄膜 12上に細胞 2が載置された状態で、圧電素子ァクチユエ一 タに電圧を印加して伸縮させることにより、細胞 2を XYZ軸方向に移動させることが可 能となっている。また、図 1に示すように、ステージ本体 10には、該ステージ本体 10を 上下方向に貫通する空隙 13が形成され、該空隙 13の下方に前記光学顕微鏡 7が 配置されている。これにより、ガラス板 11と導電性薄膜 12を通して、細胞 2を操作す る様子及び細胞 2内に生じる変化等を光学顕微鏡 7で観測できるものとなっている。
[0018] 図 3は、カンチレバー 9の構成を示す概略斜視図である。図 1乃至図 3に示すように 、カンチレバー 9は、基端がホルダ 14によって片持ち支持された梁部 15と、該梁部 1 5の先端に突設され空洞 16が設けられてなる探針 17と、該探針 17の内壁面に塗布 されたマスク 18と、空洞 16内に充填された薬液 19と、梁部 15の表面から探針 17の 内壁面へと配設された導電性薄膜 (第 1電極) 20と、空洞 16から探針 17の外部へと 探針 17を貫通して形成された微細孔 21と、を有してレ、る。
[0019] 探針 17は、細胞 2の表面と極微接近してその表面形状を検出するものである。この 探針 17は、図 3に示すように、四角錐形状を有し、該四角錐の底面側から頂点側へ 向かって四角錐形状の空洞 16が形成されている。また、マスク 18は、前記薬液 19の 表面張力を低減させることにより、薬液 19が微細孔 21から外部へ流出しやすくする ものである。本実施形態では、探針 17の内壁面に金を塗布して薄膜を形成している 。尚、本発明においてマスク 18は任意の構成であり、その成分や膜厚等は適宜設計 変更が可能である。また、薬液 19は、 DNA等の核酸物質、又は抗原 ·酵素 ·ホルモ ン等の蛋白物質(以下、これらを「生理活性物質」とレ、う)を緩衝液に溶力 たもので あり、導電性を有している。この薬液 19は、微細孔 21の開口径が超微小であること、 加えて、薬液 19を構成する各粒子は原子間力等の作用によって互いに結合してい ることにより、微細孔 21を通じて探針 17の外部に流出することなく探針 17内に保持さ れている。尚、薬液 19は、本実施形態の他にも例えば、細胞 2に微小量滴下すること により化学反応を励起するようなものであってもよレ、。また、微細孔 21は、空洞 16内 に充填された薬液 19を探針 17の外部へ流出させる流出口の役割を果たすものであ る。該微細孔 21は、横断面が円形であって、その開口径が 20— 500nmの超微小な 孔である。この微細孔 21は、図 3に示すように、空洞 16の頂点から探針 17の頂点に 向かって形成されている。従って、探針 17はその頂点が欠落し、その先端は微細孔 21の断面により構成されており、この断面を細胞 2の表面に極微接近させることにより その形状をスキャンするものとなっている。尚、微細孔 21の横断面の大きさを変える ことで薬液 19の流出量を調節することができる。また、導電性薄膜 20は、薬液 19及 び細胞 2に対してパルス電圧を印加するためのものである。この導電性薄膜 20は、 図 2及び図 3に示すように、梁部 15の上面にその長手方向に沿って貼設され、その 先端部は下方に曲折されて探針 17の内壁面に沿って貼設されている。従って、空洞 16内に薬液 19を充填した時に、導電性薄膜 20の先端部が薬液 19と接触した状態 となっている。
パルス電源 4は、薬液 19及び細胞 2に対してパルス電圧を印加するものである。こ のパルス電源 4は、図 1及び図 2に示すように、カンチレバー 9の導電性薄膜 20、及 び走査ステージ 8の導電性薄膜 12にそれぞれ接続され、導電性薄膜 20と導電性薄 膜 12との間にパルス電圧を印加するものとなっている。ここで、薬液 19は導電性を有 するものであり、また、細胞 2を構成する細胞膜 22及び細胞液 23もまた導電性を有 するものなので、導電性薄膜 20と導電性薄膜 12の間には電流が流れる。この時、薬 液 19を構成する各粒子間に作用する結合力が、電気的なショックを受けることで切 断され、凝集力を失った薬液 19は微細孔 21を通って探針 17の外部へと流出する。 この薬液 19の流出量は、パルス電圧の大きさを制御することにより調節することがで きる。更に、細胞 2にも電流が流れるため、一過性の絶縁破壊で細胞膜 22には微細 な破壊孔 24が開き、パルス電圧により電気泳動する薬液 19は、細胞膜 22の破壊孔 24を通って細胞 2内に取り込まれる。この細胞膜 22に生じた破壊孔 24は、非常に微 細なものなので、細胞 2の自己修復機能によりすぐに塞がれ、細胞 2は大きなダメー ジを受けないものとなっている。このようにして、空洞 16内に充填された薬液 19が細 胞 2内に注入されるものとなっている。尚、本実施形態では、微細孔 21から流出させ た薬液 19を細胞 2に注入している力 これに限られず、流出させた薬液 19を細胞 2 上に滴下することも可能である。この場合、図に詳細は示さないが、一対の電極を共 に薬液 19に接触させて設け、該各電極間にパルス電圧を印加すれば、細胞 2には 絶縁破壊が起こらず、流出した薬液 19は細胞 2内に取り込まれることなく細胞 2上に 滴下される。また、薬液 19の各粒子間に作用する結合力を切断する手段としては、 本実施形態のように薬液 19に電気的なショックを与える以外にも、例えば、パルスレ 一ザにより機械的なショックを与える方法を用いることもできる。
[0021] 制御部 5は、前記 AFM3と前記ノ ルス電源 4の動作を制御するものである。この制 御部 5は、走查ステージ 8を水平方向すなわち XY軸方向に走査し、この間、カンチレ バー 9の探針 17と細胞 2との間に作用する原子間力が一定となるように、 Z軸方向す なわち垂直方向への走查を制御する。この時、走查ステージ 8の XY軸方向の位置 に対応した Z軸方向のフィードバック量を制御部 5の出力電圧として検出し、これをコ ンピュータ 6の図示しない演算装置を介して画面上に 3次元画像として出力すること により、細胞 2の表面の形状を超精密に測定することが可能となっている。尚、本実 施形態では、カンチレバー 9を位置固定して走查ステージ 8を移動させることで細胞 2 の表面をスキャンしている力 これとは逆に、走查ステージ 8を位置固定してカンチレ バー 9を移動させることで細胞 2の表面をスキャンすることも可能であり、この場合、制 御部 5でカンチレバー 9の動作を制御すればよい。また、制御部 5は、前記パルス電 源 4の動作も制御しており、走査ステージ 8を走査して細胞 2の表面を観測しながら、 カンチレバー 9が所望の位置に達した時に、電圧パルスを印加して薬液 19を細胞 2 に注入又は滴下することが可能となっている。尚、本実施形態では、走査ステージ 8 上に 1個の細胞 2を載置した場合を例にして説明している力 S、走査ステージ 8上に複 数個の細胞 2を並べて、その中から選択した任意の細胞 2のみに対して薬液 19を注 入又は滴下するものとしてもよい。このように、薬液 19を細胞 2に注入した後、 AFM3 で細胞 2の表面の形状を観測して、薬液 19が確実に細胞 2内に注入されたか、また 、パルス電圧を印加したことによる細胞 2の壊れ具合はどの程度か等を確認すること ができ、より正確な細胞操作を行うことが可能となっている。
[0022] 以下、生体試料操作装置 1を使用して細胞操作を行う手順について説明する。ま ず、細胞 2内に注入又は滴下する所定の薬液 19をカンチレバー 9の空洞 16内に充 填しておく。次に、操作対象となる細胞 2を走查ステージ 8上に載置し、光学顕微鏡 7 で観測しながら、カンチレバー 9の探針 17が細胞 2の真上にくるように位置合わせを 行う。次に、走查ステージ 8を Z軸方向に走査して探針 17を細胞 2に近接させた後、 走查ステージ 8を XY軸方向に走査し、探針 17が所望の位置に達した時に、パルス 電源 4を操作して各導電性薄膜 12, 20の間に所定の大きさのパルス電圧を印加する 。これにより、カンチレバー 9の微細孔 21から薬液 19が流出し、細胞 2に注入又は滴 下される。その後、細胞 2の表面の形状変化を AFM3で観測すると共に、細胞 2内に 生じる変化、例えば、細胞 2内に注入した遺伝子が発現する様子を光学顕微鏡 7で 観測する。
[0023] 次に、本発明の第 2の実施形態を図面に基づいて説明する。本実施形態に係る生 体試料操作装置 30は、第 1の実施形態の生体試料操作装置 1と比較してカンチレバ 一 31の構成が異なることを特徴とし、それ以外の構成については第 1の実施形態と 同じ構成であり、ここでは詳細な説明は省略する。図 4は、本実施形態に係るカンチ レバー 31の構成を示す概略斜視図である。尚、図 4において図 3と同じ構成に付い ては同じ符号を付している。図 4に示すように、カンチレバー 31は、基端がホルダ 14 によって片持ち支持された梁部 15と、該梁部 15の先端に突設され空洞 16が設けら れてなる探針 17と、探針 17の内壁面に塗布されたマスク 18と、空洞 16の内部に充 填された薬液 19と、梁部 15の表面から探針 17の内壁面へと配設された導電性薄膜 20と、空洞 16と探針 17の外部とを連通する微細孔 32と、を有している。
[0024] 該カンチレバー 9では、微細孔 32が、空洞 16の頂点と探針 17の頂点とを結ぶ線上 には位置せず、若干位置ズレして形成されている。これにより、探針 17の頂点は欠 落することなく先鋭な形状の探針点 33として残存している。この探針点 33は、曲率半 径が略 10nm程度に形成されているため、探針 17の先端が 20— 500nm程度の開 口径を有する微細孔 21で構成される前記カンチレバー 9と比較して、細胞 2の表面 をより高分解能にスキャンすることが可能となっている。ここで、探針点 33で指定した 所定位置に対して、より正確に薬液 19を流出させるためには、微細孔 32をより探針 点 33に近い位置に形成することが好適である。
[0025] 次に、本発明の第 3の実施形態を図面に基づいて説明する。本実施形態に係る生 体試料操作装置 40も、第 1の実施形態の生体試料操作装置 1と比較してカンチレバ 一 41の構成が異なることを特徴とし、それ以外の構成については第 1の実施形態と 同じ構成であり、ここでは詳細な説明は省略する。図 5は、本実施形態に係るカンチ レバー 41の構成を示す概略斜視図である。尚、図 5において図 3と同じ構成に付い ては同じ符号を付している。図 5に示すように、カンチレバー 41は、基端がホルダ 14 によって片持ち支持された梁部 15と、該梁部 15の先端に突設され空洞 16が設けら れてなる探針 17と、該探針 17の内壁面に塗布されたマスク 18と、空洞 16の内部に 充填された薬液 19と、梁部 15の表面から探針 17の内壁面へと配設された導電性薄 膜 20と、空洞 16と探針 17の外部とを連通する微細孔 21と、探針 17の先端部に設け られ探針点として機能する突起部 42と、を有している。
[0026] 該カンチレバー 41では、微細孔 21は、第 1の実施形態のカンチレバー 9と同様に、 空洞 16の頂点から探針 17の頂点に向かって形成されており、探針 17はその頂点が 欠落している。一方、突起部 42は、先鋭な角部 43を有する三角形状に形成され、該 先鋭な角部 43を微細孔 21の下方に位置させるようにして、その一端縁が探針 17の 外壁面に固着されている。この突起部 42の先鋭な角部 43を細胞 2の表面に極微接 近させることにより、第 1の実施形態のカンチレバー 9と比較して、細胞 2の表面をより 高分解能にスキャンすることが可能となっている。尚、突起部 42は先鋭な角部 43を 有していればよぐその形状は三角形に限られず適宜設計変更が可能である。
[0027] 次に、本発明の第 4の実施形態を図面に基づいて説明する。本実施形態に係る生 体試料操作装置 50も、第 1の実施形態の生体試料操作装置 1と比較してカンチレバ 一 51の構成が異なることを特徴とし、それ以外の構成については第 1の実施形態と 同じ構成であり、ここでは詳細な説明は省略する。図 6は、本実施形態に係るカンチ レバー 51の構成を示す概略斜視図である。尚、図 6において図 3と同じ構成に付い ては同じ符号を付している。図 6に示すように、カンチレバー 51は、基端がホルダ 14 によって片持ち支持された梁部 15と、該梁部 15の先端に突設され空洞 16が設けら れてなる探針 17と、該探針 17の内壁面に塗布されたマスク 18と、空洞 16の内部に 充填された薬液 19と、梁部 15の表面から探針 17の内壁面へと配設された導電性薄 膜 20と、空洞 16と探針 17の外部とを連通する微細孔 21と、探針 17の先端部に取り 付けられたナノチューブ 52と、を有している。
[0028] 該カンチレバー 51では、微細孔 21は、第 1の実施形態に係るカンチレバー 9と同 様に、空洞 16の頂点から探針 17の頂点に向かって形成されており、探針 17はその 頂点が欠落している。一方、ナノチューブ 52は、カーボン等からなり、その基端部は 探針 17の外壁面に固着され、その先端部は探針 17の先端よりも下方に突出して設 けられている。このナノチューブ 52の開口径は極めて微小であり、その先端を細胞 2 の表面に極微接近させることにより、第 1の実施形態のカンチレバー 9と比較して、細 胞 2の表面をより高分解能にスキャンすることが可能となっている。
[0029] 次に、本発明の第 5の実施形態を図面に基づいて説明する。本実施形態に係る生 体試料操作装置 60も、第 1の実施形態の生体試料操作装置 1と比較してカンチレバ 一 61の構成が異なることを特徴とし、それ以外の構成については第 1の実施形態と 同じ構成であり、ここでは詳細な説明は省略する。図 7は、本実施形態に係るカンチ レバー 61の構成を示す概略斜視図である。尚、図 7において図 3と同じ構成に付い ては同じ符号を付している。図 7に示すように、カンチレバー 61は、基端がホルダ 14 によって片持ち支持された梁部 15と、該梁部 15の先端に突設され空洞 16が設けら れてなる探針 17と、該探針 17の内壁面に塗布されたマスク 18と、図示しないタンク 内に充填された反応性ガス(流体) 62と、該反応性ガス 62をカンチレバー 61に給送 する給送ノズル 63と、梁部 15の表面から探針 17の内壁面へと配設された導電性薄 膜 20と、空洞 16と探針 17の外部とを連通する微細孔 21と、を有している。
[0030] 反応性ガス 62は、真空中でも蒸発せず、物質の表面と種々の化学反応を励起する 気体状の物質の総称であり、単体は勿論のこと化合物や混合物等も包含している。 この反応性ガス 62としては、例えば、 HFまたは HC1に代表されるハロゲンガスや、 C 4H5Nまたは CH3CH2CNに代表されるシアン化ガス等を用いることが可能であり、 その他にも、常温で固体や液体であるものは加熱する等して気化した上で用いること が可能である。この反応性ガス 62は、図に詳細は示さなレ、が、真空チャンバ一である 前記タンク内に充填されている。一方、給送ノズル 63は、その一端が前記タンクに接 続されると共に、他端は細く絞られてカンチレバー 61の空洞 16内に差し込まれてい る。この給送ノズル 63から噴射された反応性ガス 62は、前記薬液 19と同様に、微細 孔 21の開口径が超微小であること、且つ、反応性ガス 62を構成する各粒子は原子 間力等の作用により互いに結合していることにより、微細孔 21を通じて探針 17の外 部には噴出せず空洞 16内に滞留するものとなっている。また、この反応性ガス 62に 対して、導電性薄膜 20からパルス電圧が印加されることにより、各粒子間の結合力が 切断され、反応性ガス 62は探針 17の外部に流出するものとなっている。このようにし て微細孔 21から反応性ガス 62を流出させて、細胞 2の表面に付着させることにより、 細胞 2と反応性ガス 62との間に種々の化学反応が励起され、この変化を AFM3や光 学顕微鏡 7により観測する。
産業上の利用可能性
本発明では、原子間力顕微鏡に限られず、他の走査型プローブ顕微鏡に備えられ たカンチレバーを使用することも可能である。

Claims

請求の範囲
[1] 生理活性物質又は化学反応を励起する物質を、生体試料に注入する生体試料操 作装置において、
基端が片持ち支持された梁部と、該梁部の先端に突設され内部に空洞が設けられ てなる探針と、前記空洞から前記探針の外部へと前記探針を貫通して形成された微 細孔と、前記空洞内に充填された流体と、該流体を前記微細孔から流出させるととも に生体試料に注入する流体注入手段と、を具備することを特徴とする生体試料操作 装置。
[2] 前記流体注入手段が、前記流体に接触して設けられた第 1電極と、前記生体試料 に接触して設けられた第 2電極と、該第 1電極及び第 2電極の間にパルス電圧を印加 するパルス電源と、を具備することを特徴とする請求項 1に記載の生体試料操作装置
[3] 生理活性物質又は化学反応を励起する物質を、生体試料に滴下する生体試料操 作装置において、
基端が片持ち支持された梁部と、該梁部の先端に突設され内部に空洞が設けられ てなる探針と、前記空洞から前記探針の外部へと前記探針を貫通して形成された微 細孔と、前記空洞内に充填された流体と、該流体を前記微細孔から流出させる流体 流出手段と、を具備することを特徴とする生体試料操作装置。
[4] 前記流体流出手段が、前記流体に接触して設けられた一対の電極と、該各電極の 間にパルス電圧を印加するパルス電源と、を具備することを特徴とする請求項 3に記 載の生体試料操作装置。
[5] 前記梁部、前記探針、及び前記微細孔が、走査型プローブ顕微鏡の探針を構成 することを特徴とする請求項 1乃至 4のいずれかに記載の生体試料操作装置。
[6] 前記生体試料の操作及び操作後の前記生体試料の変化を観測するための操作 観測手段を具備することを特徴とする請求項 1乃至 4のいずれかに記載の生体試料 操作装置。
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