WO2005084428A1 - てんかんモデル動物(chrna4:s284l) - Google Patents

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Shinichi Hirose
Sunao Kaneko
Motohiro Okada
Ryo Saito
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    • A01K2267/0356Animal model for processes and diseases of the central nervous system, e.g. stress, learning, schizophrenia, pain, epilepsy

Definitions

  • CHRNA4 S2 & 4L
  • the invention of this application relates to an epilepsy model animal having a genetic abnormality homologous to human autosomal dominant nocturnal frontal lobe epilepsy and spontaneously developing seizures during sleep.
  • Epilepsy is a chronic brain disease characterized by recurrent seizures caused by excessive firing of brain cells. Excessive firing of brain cells is the result of a variety of etiologies, and the seizure progression and prognosis also vary widely with epilepsy types. Therefore, accurate diagnosis and appropriate treatment are required for the treatment of epilepsy.
  • Epilepsy model animals are used as a means of developing and developing methods for diagnosing and treating epilepsy. Conventionally, as epilepsy model animals, drug-induced epilepsy animals by administration of kainic acid (kainic acid) and kindling-induced epilepsy animals (a method of repeating electrical brain stimulation below the threshold) have been used.
  • Non-Patent Document 1 Hirose, S. et al., Neurology 53: 1749-1753, 1999.
  • Non-Patent Document 2 Matsushima, N. et al., Epilepsy Res. 48: 181-186, 2002
  • the invention of this application has been made in view of the problems of conventional epilepsy model animals as described above, and has a genetic abnormality homologous to human autosomal dominant nocturnal frontal lobe epilepsy (expression of mutant CHRNA4) It is an object of the present invention to provide a new epileptic model animal that has the same physical symptoms (epileptic seizures during sleep) as human autosomal dominant nocturnal frontal lobe epilepsy.
  • This application discloses, as an invention to solve the above-mentioned problem, a totipotency in which a polynucleotide encoding a non-human mutant CHRNA4 corresponding to a human mutant CHRNA4 in which Ser at position 284 of SEQ ID NO: 1 has been substituted with Leu has been introduced.
  • a non-human animal or its progeny obtained by ontogenesis of cells, which has the polynucleotide in a somatic cell chromosome and spontaneously develops seizures during sleep.
  • CHRNA4: S284L A non-human animal or its progeny obtained by ontogenesis of cells, which has the polynucleotide in a somatic cell chromosome and spontaneously develops seizures during sleep.
  • the polynucleotide encoding the non-human mutant CHRNA4 is a fusion polynucleotide with a polynucleotide corresponding to the promoter region of a gene specifically expressed in the brain cortex / hippocampus.
  • the non-human animal is a rat
  • the polynucleotide encoding the rat mutant CHRNA4 is t at position 865 in SEQ ID NO: 2 and t at position 866 in SEQ ID NO: 2.
  • polynucleotide having a nucleotide sequence substituted with c.
  • polynucleotide refers to a phosphate ester of a nucleoside in which a purine or pyrimidine is ⁇ - ⁇ -glycosidically linked to a sugar (nucleotide ATP, GTP, CTP, UTP; or dATP, dGTP, dCTP, dTTP) refers to a molecule that has multiple bonds.
  • non-human mutant CHRNA4 corresponding to human mutant CHRNA4 means that Ser of non-human CHRNA4 corresponding to Ser. No.
  • FIG. 1 is an electroencephalogram during sleep of an epilepsy model animal of the present invention.
  • the upper row is a record for 60 seconds
  • the middle row is a record of spike wave clusters (15 seconds)
  • the lower row is a transition of spike wave clusters to a very slow wave complex, and the frequency gradually decreases. 15 seconds).
  • BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The epilepsy model animal (CHRNA4: S284L) of the present invention can be produced for any kind of non-human mammal. For example, it can be created for mice, rats, rabbits, cats, dogs, dogs, horses, magpies, etc.However, considering the versatility and convenience of experimental animals, The use of rats and the like is preferred.
  • mutant CHRNA4 polynucleotide encoding non-human mutant CHRNA4 a mutant CHRNA4 polynucleotide corresponding to the target animal species is used.
  • amino acid sequence of mouse CHRNA4 SEQ ID NO: 5
  • cDNA polynucleotide sequence encoding it
  • the “polynucleotide encoding mouse mutant CHRNA4” is obtained by substituting the Ser codon (tct) at position 960-962 in SEQ ID NO: 4 with the Leu codon (ctt, ctc, cta, ctg, tta or ttg).
  • the amino acid sequence of rat CHRNA4 (SEQ ID NO: 3) and the polynucleotide (cDNA) sequence encoding it (SEQ ID NO: 2) are known (GenBank / NM-024354), and the 286th Ser of SEQ ID NO: 3 Corresponds to Ser. 284 of human CHRNA4.
  • the “polynucleotide encoding rat mutant CHRNA4” is obtained by replacing the Ser codon (tct) at position 865-867 in SEQ ID NO: 2 with the Leu codon (ctt, etc ;, cta, ctg, tta or ttg).
  • the nucleotide substitution can be performed by a method using a commercially available mutagenesis kit or a known method such as a mutagenesis type PCR method.
  • the polynucleotide encoding the non-human mutant CHRNA4 is also preferably introduced as a fusion polynucleotide with a polynucleotide corresponding to the promoter region of a gene expressed specifically in the brain cortex / hippocampus.
  • a promoter region for example, PDGF- ⁇ chain promoter region or the like can be used.
  • the epilepsy model animal (CHRNA4: S284L) of the present invention can be prepared according to a known transgenic animal preparation method (for example, Proc. Natl. Acad. Scl. USA 77; 7380-7384, 1980).
  • the above-mentioned polynucleotide (preferably a fusion polynucleotide) was introduced into a totipotent cell of a non-human animal, the cell was developed into an individual, and the introduced polynucleotide was integrated into the genome of a somatic cell.
  • a transgenic animal of interest can be produced by selecting individuals. Fertilized eggs and early embryos can be used as the totipotent cells into which the polynucleotide is introduced. Considering the yield of transgenic animals and the efficiency of transgene transfer to the next generation, physical injection of DNA (microinjection) is the most suitable method for introducing genes into cultured cells.
  • the fertilized egg into which the gene has been injected is then transplanted into the fetal oviduct of the foster parent, and the animals that have developed and born are placed in foster parents and bred, and then DNA is extracted from a part of the body (such as the tip of the tail). Confirm the presence of the introduced polynucleotide by analysis or PCR. If the individual (heterozygote) in which the presence of the introduced polynucleotide is confirmed is the first generation (Founder: F0), the transgene is transmitted to 50% of its offspring (F1). Further, by mating the male and female of this F1 individual, an individual (F2) having a transgene in both diploid chromosomes can be created.
  • a knock-in method using a known target gene recombination method As a method for introducing a foreign gene into the chromosomal DNA of an individual animal, a knock-in method using a known target gene recombination method (Gene Yuichi targeting method: Science 244: 1288-1292, 1989) is used. It has been known. In this knock-in method, an endogenous gene present in the chromosomal DNA of an animal individual is completely replaced by an exogenous gene. Therefore, the transgenic animal produced by this knock-in method does not produce endogenous proteins, but produces only exogenous (mutant) proteins homologous to the endogenous proteins.
  • the transgenic method used for producing an epilepsy model animal of the present invention encodes a mutated CHRNA4 at an arbitrary position on the chromosomal DNA while the endogenous gene (CHRNA4 gene) remains normal. Guide polynucleotide Enter. Therefore, in the epilepsy model animal of the present invention, both normal CHRNA4 and mutant CHRNA4 are produced.
  • the neuronal nicotinic acetylcholine receptor is a protein that functions as an ion channel (two ⁇ -subunits and three ⁇ -subunits). Such an ion channel has a channel function if any of the subunits is mutated. change.
  • the normal subunit and the mutant subunit may be expressed simultaneously, and the inventors of the present application express the normal subunit and the mutant subunit simultaneously rather than expressing the mutant subunit as in the knock-in method.
  • the inventors of the present application have completed the invention based on the concept that this is suitable as a model animal exhibiting human epileptic seizures.
  • the epilepsy model animal of the present invention (CHRNA4: S284L) has the excellent property of spontaneously developing epileptic seizures during sleep, similar to human chromosomal dominant nocturnal frontal lobe epilepsy, as described in Examples below. .
  • Rat Chrna4 and Chrnb2 cDNAs were PCR amplified from rat fetal cDNA panels (Clontech, Palo Alto, Calif.) And subcloned into pCRTOPOII vectors (Invitrogen, Carlsbad, Calif.). Nucleotide substitutions (SEQ ID NO: 865, C ⁇ T, 866, T ⁇ C; S286L) that cause a missense displacement homologous to human nocturnal frontal epilepsy are replaced with the QuickChange Site-Directed Mutagenesis Kit (Stratagene, La Jolla, CA) ) was introduced into Chrna4 cDNA.
  • Wild-type Chrana4 and Chrnb2 cDNA and mutant Chrna4 cDNA Corresponding cRNAs were generated by introduction into the pSP64 Poly (A) vector (Promega, Madison, Wl) and used for in vitro electrophysiological studies in Xenopus oocytes.
  • the mutant Chrna4 cDNA was inserted into an expression vector having a human PDGF- ⁇ chain promoter of a pCI-neo vector (Promega).
  • the integrity of the clone was confirmed by multiple sequencing using a series of sequencing primers.
  • the vector containing the mutant Chrna4 cDNA was cleaved with SnaBI and NaeI, and a linear fragment containing the mutant cDNA and the PDGF- ⁇ promoter was purified. This fragment was injected into rat oocytes (SD) at Japan SLC, Inc. (Hamamatsu City) to create transgenic rats.
  • Tissue cut from the transgenic rat was analyzed using a buffer [50 mM Tris (pH 8), 10 mM EDTA, 100 mM sodium chloride, 1% (w / v) SDS, and 50 mg / ml proteinase K (Sigma)].
  • RNase A treatment 100 pg / ml, 37 ° C for 1 hour
  • ammonium acetate added to a final concentration of 2 M, cool, and centrifuge to precipitate the protein.
  • the DNA in the supernatant was precipitated with 0.6 vol of cold isopropanol and washed with 70% ethanol
  • the DNA pellet was dissolved in water at step 4.
  • the amount of DNA was evaluated by the absorbance at 260 nm.
  • a portion (50 ng) of the DNA was amplified by PCR, and the PCR products were sequenced by an automatic sequencer (ABI 3100: Perkin Elmer Biosystems, Foster City, CA).

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Abstract

配列番号1の第284位SerがLeuに置換したヒト変異型CHRNA4に相当する非ヒト変異型CHRNA4をコードするポリヌクレオチドを導入した全能性細胞を個体発生して得られる非ヒト動物またはその子孫動物であって、体細胞染色体中に上記ポリヌクレオチドを保有するてんかんモデル動物(CHRNA4:S284L)。ヒト染色体優性夜間前頭葉てんかんと相同の遺伝子異常を有し、かつヒト常染色体優性夜間前頭葉てんかんと同様の症状(睡眠中のてんかん発作)を有する。

Description

明細書
てんかんモデル動物 (CHRNA4: S2&4L)
技術分野 この出願の発明は、 ヒト常染色体優性夜間前頭葉てんかんと相同の遺伝子異常 を有し、 睡眠中にてんかん発作を自然発症するてんかんモデル動物に関するもの である。
背景技術 てんかんは、 脳細胞の過剰な発射が原因となる反復発作によって特徴づけられ る慢性的な脳疾患である。 脳細胞の過剰な発射は様々な病因の結果であり、 それ 故に発作の進行や予後もてんかんの種類によって大きく異なる。 従って、 てんか んの治療にあたっては、 正確な診断と適切な処置が求められている。 てんかんの診断法や処理方法の開発、 発展のための手段として 「てんかんモデ ル動物」 が使用されている。 従来、 てんかんモデル動物としては、 カイニン酸 (kainic acid) の投与による薬物誘導てんかん動物やキンドリング (閾値以下の 電気脳刺激を繰り返す方法) 誘導てんかん動物が使用されてきた。 しかしながら、 これら従来のモデル動物は、 強制的にけいれん発作を誘導させ た動物に過ぎず、 「けいれん発作」 のモデル動物とはなり得たが、 ヒトてんかん の真のモデル動物とはなり得なかった。 一方、 近年の分子生物学的研究の進展によって、 幾つかのてんかん病型で遺伝 子異常が同定され初めている。 この出願の発明者らも、 ヒト染色体優性夜間前頭 葉てんかんがニューロンニコチン性アセチルコリン受容体 α4 サブユニッ ト ( CHRNA4) 遺伝子の変異に関係すること (非特許文献 1 ) 、 そして CHRNA4 遺伝子の変異が具体的には第 284位 Serが Leuに置換することであることを見出 している (非特許文献 2 ) 。 非特許文献 1 : Hirose, S. et al., Neurology 53: 1749- 1753, 1999.
非特許文献 2: Matsushima, N. et al., Epilepsy Res. 48: 181- 186, 2002
発明の開示 この出願の発明は、 前記のとおりの従来のてんかんモデル動物の問題点に鑑み てなされたものであり、 ヒト常染色体優性夜間前頭葉てんかんと相同の遺伝子異 常 (変異型 CHRNA4の発現) を有し、 ヒト常染色体優性夜間前頭葉てんかんと同 一の身体症状 (睡眠中のてんかん発作) を自然発症する新しいてんかんモデル動 物を提供することを課題としている。 この出願は、 前記の課題を解決するための発明として、 配列番号 1の第 284 位 Serが Leuに置換したヒト変異型 CHRNA4に相当する非ヒト変異型 CHRNA4を コードするポリヌクレオチドを導入した全能性細胞を個体発生して得られる非ヒ ト動物またはその子孫動物であって、 体細胞染色体中に上記ポリヌクレオチドを 保有し、 睡眠中にてんかん発作を自然発症することを特徴とするてんかんモデル 動物 (CHRNA4: S284L) を提供する。 またこのてんかんモデル動物 (CHRNA4: S284L) においては、 非ヒト変異型 CHRNA4 をコードするポリヌクレオチドが、 脳皮質 ·海馬特異的に発現する遺伝 子のプロモーター領域に相当するポリヌクレオチドとの融合ポリヌクレオチドで あることを好ましい態様としている。 さらにこの発明のてんかんモデル動物 (CHRNA4: S284L) においては、 非ヒ ト動物がラットであり、 ラット変異型 CHRNA4をコードするポリヌクレオチドが、 配列番号 2の第 865位 cが t、 第 866位 tが cに置換したヌクレオチド配列を有 するポリヌクレオチドであることを好ましい態様としている。 なお、 この発明において 「ポリヌクレオチド」 とは、 プリンまたはピリミジン が糖に β-Ν-グリコシド結合したヌクレオシドのリン酸エステル (ヌクレオチド ATP、 GTP、 CTP、 UTP; または dATP、 dGTP、 dCTP、 dTTP) 力複数個結合し た分子を言う。 また 「ヒト変異型 CHRNA4 に相当する非ヒト変異型 CHRNA4」 とは、 ヒト CHRNA4 (配列番号 2 ) の第 284位 Ser に相当する非ヒト CHRNA4 の Ser が Leuに置換していることを意味する。 この発明におけるその他の用語や概念は、 発明の実施形態の説明や実施例にお いて詳しく規定する。 またこの発明を実施するために使用する様々な技術は、 特 にその出典を明示した技術を除いては、 公知の文献等に基づいて当業者であれば 容易かつ確実に実施可能である。 例えば、 遺伝子工学および分子生物学的技術は Sambrook and Maniatis, m Molecular Clonmg-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, 1989; Ausubel, F. M. et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York, N.Y, 1995等に記載されている。
図面の簡単な説明 図 1 は、 この発明のてんかんモデル動物の睡眠中の脳波記録である。 上段は 60 秒間の記録であり、 中段は棘波群発の記録 (15 秒間) 、 下段は棘波群発が極徐波 複合に移行し、 次第にその周波数が減少 '振幅が増大したことを示す記録 (15 秒 間) である。 発明を実施するための最良の形態 この発明のてんかんモデル動物 (CHRNA4: S284L) は、 あらゆる種類の非ヒ ト哺乳動物を対象として作出することができる。 例えば、 マウス、 ラット、 ゥサ ギ、 ネコ、 ィヌ、 ブ夕、 ゥマ、 ゥシ等を対象として作出することができるが、 実 験動物としての汎用性や利便性を考慮してマウス、 ラット等の使用が好ましい。 導入する 「非ヒト変異型 CHRNA4をコ一ドするポリヌクレオチド」 としては、 対象とする動物種に対応した変異型 CHRNA4ポリヌクレオチドを使用する。 例え ば、 マウス CHRNA4のアミノ酸配列 (配列番号 5 ) とこれをコードするポリヌク レオチド (cDNA) 配列 (配列番号 4 ) は公知 (GenBank/NM-015730) であり、 配列番号 5の第 286位 Serがヒト CHRNA4の第 284位 Serに相当する。 従って、 「マウス変異型 CHRNA4をコードするポリヌクレオチド」 は、 配列番号 4におけ る第 960— 962位の Ser コドン (tct) を Leu コドン (ctt、 ctc、 cta、 ctg、 tta または ttg) に置換することによって作成することができる。 また、 ラッ ト CHRNA4 のアミノ酸配列 (配列番号 3 ) とこれをコードするポリヌクレオチド (cDNA) 配列 (配列番号 2 ) は公知 (GenBank/NM-024354) であり、 配列番 号 3の第 286位 Serがヒト CHRNA4の第 284位 Serに相当する。 従って、 「ラ ット変異型 CHRNA4をコードするポリヌクレオチド」 は、 配列番号 2における第 865 - 867位の Ser コドン (tct) を Leu コドン (ctt、 etc;、 cta、 ctg、 tta また は ttg) に置換することによって作成することができる。 ヌクレオチドの置換は、 市販の変異導入キッ卜を用いる方法や、 変異導入型 PCR法等の公知の方法で行う ことができる。 この非ヒト変異型 CHRNA4をコードするポリヌクレオチドはまた、 脳皮質 ·海 馬特異的に発現する遺伝子のプロモーター領域に相当するポリヌクレオチドとの 融合ポリヌクレオチドとして導入することも好まし。 このようなプロモー夕一領 域としては、 例えば PDGF-β鎖プロモー夕一等を使用することができる。 この発明のてんかんモデル動物 (CHRNA4: S284L) は、 公知のトランスジェ ニック動物作成法 (例えば、 Proc. Natl. Acad. Scl. USA 77;7380-7384, 1980) に従って作成することができる。 すなわち、 前記のポリヌクレオチド (好 ましくは融合ポリヌクレオチド) を非ヒト動物の分化全能性細胞に導入し、 この 細胞を個体へと発生させ、 体細胞のゲノム中に導入ポリヌクレオチドが組み込ま れた個体を選別することによって目的とするトランスジエニック動物を作製する ことができる。 ポリヌクレオチドを導入する分化全能性細胞としては、 受精卵や初期胚を用い ることができる。 また培養細胞への遺伝子導入法としては、 トランスジエニック 動物個体の産出高率や次代への導入遺伝子の伝達効率を考慮した場合、 DNA の物 理的注入 (マイクロインジェクション) 法が最適である。 遺伝子を注入した受精 卵は、 次に仮親の卵管に移植され、 個体まで発生し出生した動物を里親につけて 飼育させたのち、 体の一部 (尾部先端等) から DNA を抽出し、 サザン解析や PCR 法により導入したポリヌクレオチドの存在を確認する。 導入ポリヌクレオチ ドの存在が確認された個体 (ヘテロ接合体) を初代 (Founder: F0) とすれば、 導入遺伝子はその子 (F1 ) の 50%に伝達される。 さらに、 この F1 個体の雌雄を 交配させることにより、 2倍体染色体の両方に導入遺伝子を有する個体 (F2) を 作出することができる。 なお、 外来遺伝子を動物個体の染色体 DNAに導入する方法としては、 公知の標 的遺伝子組換え法 (ジーン夕一ゲティング法: Science 244: 1288- 1292, 1989) を用いたノックイン (Knock In) 法が知られている。 このノックイン法では、 動 物個体の染色体 DNAに存在する内在性遺伝子が外来性遺伝子に完全に置換される。 従って、 このノックイン法で作出された遺伝子導入動物は、 内在性タンパク質は 産生せず、 この内在性タンパク質に相同な外来性 (変異型) タンパク質のみを産 生する。 一方、 この発明のてんかんモデル動物の作出に用いた卜ランスジェニッ ク方法は、 内在性遺伝子 (CHRNA4 遺伝子) は正常のままの状態で、 新たにその 染色体 DNAの任意の位置に変異型 CHRNA4 をコードするポリヌクレオチドを導 入する。 このため、 この発明のてんかんモデル動物では、 正常な CHRNA4 と変異 型 CHRNA4が共に産生されている。 ニューロンニコチン性ァセチルコリン受容体 はイオンチャンネル (αサブュニッ卜 2個、 βサブュニット 3個) として機能す るタンパク質であるが、 このようなイオンチヤンネルはいずれかのサブュニッ 卜 が変異していればチャンネル機能が変更する。 従って、 正常サブユニットと変異 サブユニッ トが同時に発現してもよく、 この出願の発明者らは、 ノックイン法の ように変異サブュニットを発現させるよりも、 正常サブュニッ トと変異サブュニ ッ 卜を同時に発現さえることがヒ卜型てんかん発作を呈するモデル動物として適 切であるとのコンセプトに基づき、 この出願の発明を完成させた。 この発明のてんかんモデル動物 (CHRNA4: S284L) は、 後記の実施例に示す ように、 ヒト染色体優性夜間前頭葉てんかんと同様に、 睡眠中にてんかん発作を 自然発症するという優れた特性を有している。
実施例 以下、 実施例を示してこの出願の発明についてさらに詳細かつ具体的に説明す るが、 この出願の発明は以下の例によって限定されるものではない。
( 1) 方法
( 1- 1) トランスジエニックラットの作成
ラッ ト Chrna4 および Chrnb2 の cDNA は、 ラッ ト胎児 cDNA パネル ( Clontech, Palo Alto, CA ) 力、 ら PCR 増幅し、 pCRTOPOII ベク ター (Invitrogen, Carlsbad, CA) にサブクロ一ニングした。 ヒト夜間前頭葉てんか んと相同のミスセンス変位を生じさせるヌクレオチド置換 (配列番号 2の第 865 位 C→T、 第 866 位 T→C; S286L ) を QuickChange Site-Directed Mutagenesis Kit (Stratagene, La Jolla, CA) を用いて Chrna4 cDNAに導入し た。 野性型 Chrana4 と Chrnb2 の cDNA、 および変異型 Chrna4 cDNA を pSP64 Poly(A)ベクタ一 (Promega, Madison, Wl) に導入して対応する cRNAs を作成し、 アフリカッメガエル卵母細胞を用いた in vitro 電気生理学的研究に使 用した。 変異型 Chrna4 cDNAは、 pCI-neoベクター (Promega) のヒト PDGF- β 鎖プロモーターを保有する発現ベクターに挿入した。 各クローニングステップ 毎に、 一連のシ一クェンシングプライマーを用いた複数回のシークェンシングに よってクローンの完全性を確認した。 変異型 Chrna4 cDNA を保有するベクター を Sna BI and Nae Iで開裂し、 変異型 cDNAと PDGF-βプロモーターを含む直 鎖状断片を精製した。 この断片を、 Japan SLC, Inc社 (浜松市) においてラット 卵母細胞 (SD) に注入し、 トランスジエニックラットを作出した。
( 1-2) トランスジエニックラットの遺伝子型の確認
トランスジエニックラットの尾部切断組織を、 緩衝液 [50 mM Tris (pH 8), 10 mM EDTA, 100 mM sodium chloride, 1% (w/v) SDS, and 50 mg/ml proteinase K (Sigma)] 中で 55" で一晚消化した。 RNase A処理 (100 pg/ml、 37°Cで 1時間) の後、 酢酸アンモニゥムを終濃度 2 M となるように加え、 冷却 し、 遠心してタンパク質を沈殿させた。 上清中の DNAを 0.6 volの冷イソプロパ ノールで沈殿させ 70%エタノールで洗浄した。 DNAペレットを 4ででー晚水に溶 解した。 DNA 量は 260 nm の吸光度で評価し、 その DNA の一部 (50ng) を PCR 増幅した。 PCR 産物は、 自動配列決定装置 (ABI 3100: Perkin Elmer Biosystems, Foster City, CA) によってシークェンシングした。
その結果、 作出されたトランスジエニックラッ トは、 導入した変異型 Chrna4 cDNAを体細胞染色体に保有することが確認された。
( 1-3) トランスジエニックラットの脳波 (EEG) 測定
8— 10 週齢のトランスジエニックラットに対して脳波 (EEG)を測定した。 ハロ タン (halothane) 麻酔 (ハロタンと 02の 1.5%混合物と N20) の後、 ラットを 脳固定装置に固定し、 脳波測定用のテフロン (登録商標) 被覆ステンレス電極を 左右大脳半球の前頭葉 (プレダマより A = 3.2 mm、 L = 0.8 mm) に装着し、 歯 科用セメントで固定した。 不関電極は、 小脳部位の上部に埋め込んだ。 脳波は、 0. 1 ± 3 kHz 帯域に設定したテレメーター (Unimec Co., Tokyo, Japan) を用 いて、 電極装着の 7 日後から自由運動条件下で測定した。 脳波分析は、 Chart for windows (Adinstruments, Sydney, Australia) も用レ て仃つた。
結果は図 1に示したとおりである。 軽睡眠期特有の紡錘波の後に、 てんかん発 作に特徴的な棘波群発 (図 1 中段) が十数秒持続した後に、 極徐波複合に移行し、 次第にその周波数が減少 ·振幅が増大 (図 1 下段) し、 てんかん発作は部分発作 から二次性全般化発作に移行した。 以上のとおり、 作出されたトランスジエニックラットは、 変異型 CHRNA4を発 現し、 睡眠中にてんかん発作を生じさせた。 この変異型 CHRNA4の発現という遺 伝子型と、 睡眠中のてんかん発作という身体症状から、 このトランスジエニック ラットがヒ卜染色体優性夜間前頭葉てんかんのモデル動物として適格であること が確認された。
産業上の利用可能性 以上詳しく説明したとおり、 この出願の発明によって、 ヒト染色体優性夜間前 頭葉てんかんと相同の遺伝子異常を有し、 かつヒト染色体優性夜間前頭葉てんか んと同様の症状 (睡眠中のてんかん発作) を有する動物が提供される。 このてん かんモデル動物は、 ヒト染色体優性夜間前頭葉てんかんの診断法の開発や、 その 治療法の開発等に極めて有用である。

Claims

請求の範囲
1. 配列番号 1の第 284位 Serが Leuに置換したヒト変異型 CHRNA4に 相当する非ヒ卜変異型 CHRNA4をコードするポリヌクレオチドを導入した全能性 細胞を個体発生して得られる非ヒト動物またはその子孫動物であって、 体細胞染 色体中に上記ポリヌクレオチドを保有し、 睡眠中にてんかん発作を自然発症する ことを特徴とするてんかんモデル動物 (CHRNA4 ·· S284L) 。
2. 非ヒト変異型 CHRNA4をコードするポリヌクレオチドが、 脳皮質 ·海 馬特異的に発現する遺伝子のプロモーター領域に相当するポリヌクレオチドとの 融合ポリヌク レオチドである請求項 1 のてんかんモデル動物 ( CHRNA4 : S284L) 。
3. 非ヒト動物がラットであり、 ラット変異型 CHRNA4をコ一ドするポリ ヌクレオチドが、 配列番号 2の第 865位 cが t、 第 866位 tが cに置換したヌク レオチド配列を有するポリヌクレオチドである請求項 1または 2のてんかんモデ ル動物 (CHRNA4: S284L) 。
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