WO2005079835A1 - Blアンジオスタチンを含む制がん剤 - Google Patents

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WO2005079835A1
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angiostatin
buffer
cancer
anticancer agent
cells
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English (en)
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Keiji Hasumi
Kosuke Shimizu
Tetsuro Yamamoto
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Ttc Co., Ltd.
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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/43Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
    • A61K38/46Hydrolases (3)
    • A61K38/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
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    • A61K38/484Plasmin (3.4.21.7)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents

Definitions

  • the present invention relates to an anticancer agent containing BL angiostatin and a method for producing the same.
  • Angiostatin is known as one such substance.
  • Angiostatin is a protein with a molecular weight of about 40,000 obtained by degrading the fibrinolytic factor plasminogen present in the blood. It has been reported that it has a significant effect (MS O'Reilly et al., Cell, 79, 315-328 (1994)).
  • Angiostatin includes (1) plasminogen hydrolyzed with elastase (MS O'Reilly et al., Nature Medicine, 2, 689-692 (1996)) and (2) gene recombination technology. Two types were known, which were produced directly by yeast using the method (BK Sim et al., Cancer Research 57, 1329-1334 (1997)).
  • angiostin is difficult to selectively produce angiostatin from plasminogen due to low by-product substrate specificity of elastase. There was a disadvantage that the activity of the statin was low. Also,
  • amino acid sequence of human plasminogen a signal peptide - for those containing (Me t 1 G ly 19)
  • amino acid sequence of the mature polypeptide that is, Glu 1 —A sn 791 .
  • Recombinant angiostatin also varies in physical properties and activity compared to its native counterpart, which can be attributed to changes in conformation due to differences in protein folding during expression in heterologous organisms, sugar chains, It is thought that the difference is the difference (Cao, Y., Int
  • Bashiroraishin MA cleaves plasminogen very selectively, fragments having the amino acid sequence of S er 441 from G 1 u 1 as BL-en Jiosutachin (major product, as a minor product, S er 441 from P he 75 , G lu 1 from V a 1 44 9, and P he 75 V a 1 fragment consisting of amino acids 449) to allowed to live Ji from (JP 2002- 272453 JP).
  • plasminogen which develops Bashiroraishin MA immobilized reactor (Afuietito wrap reactor), as a main component fragment having the amino acid sequence of S er 441 from G 1 u 1 at one step of the step from human plasma
  • plasminogen which develops Bashiroraishin MA immobilized reactor (Afuietito wrap reactor)
  • plasminogen which develops Bashiroraishin MA immobilized reactor (Afuietito wrap reactor
  • Recombinant angiostatin is an internal fragment of plasminogen consisting of amino acids from Le 74 to Le 451 (Sim, BK et al. Cancer Res 57, 1329-34 (1997)), whereas BL angiostatin Is angios as described above It has a different structure from that of statins, but has the same anti-vascular endothelial cell action as angiostatin.
  • fragment having the Amino acid sequence of S er 4 4 1 from G 1 u 1 is the main product, the fragments further having the Amino acid sequence of V a 1 4 4 9 from G 1 u 1, plasminogen one Gen This includes the N-terminal side of
  • plasminogen N-terminal peptide is rich in hydrophilic amino acids, the difference in the presence or absence of N-terminal base peptide between the BL Angi O statin and Anjiosutachi emissions, solubility It is thought that there will be differences not only in physical properties such as, but also in activity and kinetics in vivo.
  • BL angiostatin actually has an anticancer effect in vivo, and it is inexpensive, highly soluble in water, and has excellent anticancer properties Development of anticancer agents and methods for producing them is awaited.
  • BL angiostatin has an extremely excellent anticancer effect and Because of its high solubility, it was discovered that a particular anticancer effect was exhibited even by intravenous administration, and the present invention was completed.
  • the present invention relates to an anticancer agent containing BL angiostatin as an active ingredient and a method for producing the same.
  • FIG. 1 shows BL angiostatin purified by an affinity trap reactor.
  • Lane 1 is the resulting BL angiostatin.
  • Lane 2 contains 100 mM NaCl, vasirolysin MA (5 nM) and plasminogen (3 M). 0. 0 1% Tw een 8 0 , 1 mM C a C 1 2 5 0 mM Tris-HCl containing (pH 7. 4) After incubation 1 0 1 in 37, 60 minutes, ⁇ ⁇ ⁇ of sample buffer A solution (125 mM Tris-HCl buffer, pH 6.8 containing 4% SDS, 10% 2-mercaptoethanol, 20% sucrose, and 0.004% bromophenol blue) was added, and analysis was performed in the same manner as in Lane 1.
  • sample buffer A solution 125 mM Tris-HCl buffer, pH 6.8 containing 4% SDS, 10% 2-mercaptoethanol, 20% sucrose, and 0.004% bromophenol blue
  • FIG. 2 shows the effect of BL angiostatin on the growth of subcutaneously transplanted Lewis lung cancer (change in tumor volume).
  • X-axis is the number of days (days) from when transplanted Lewis lung carcinoma
  • Y axis is tumor volume (Yuzuru 3).
  • represents the control group
  • ⁇ , ⁇ , X and ⁇ represent the BL angiostatin 0.3, 1, 3, and 1 Omg / kg / day treatment groups, respectively.
  • the average value of the example represents the standard deviation.
  • a statistically significant difference compared with the control group is marked with *.
  • FIG. 3 shows the effect of BL angiostatin on the growth of subcutaneously transplanted Lewis lung cancer (tumor wet weight).
  • the X-axis is the dose of BL angiostatin (mg / kg / day) and the Y-axis is the tumor wet weight (mg).
  • Each value represents the mean soil standard error of 8 cases in each group. In the Dunnett's multiple comparison test, statistically significant differences compared to the control group are marked with *. * (p ⁇ 0.05), * * (p ⁇ 0.01)
  • FIG. 4 shows the effect of BL angiostatin on body weight of Lewis lung cancer subcutaneously transplanted animals.
  • the X axis is the number of days since transplantation of Lewis lung cancer (days), and the Y axis is body weight (g).
  • Ginseng is a control (saline) treatment group, ⁇ is angiostatin
  • FIG. 5 shows a histopathological image of the tumor and a Von Wi11 ebrand factor immunostaining image.
  • Control group tumor major axis 8.2 mm, minor axis 7.8 mm
  • A, B, C, D 3 mg / kg administration group
  • tumor major axis 7.0, minor axis 5.6 s administration group
  • E, F , G, H 10 mgZkg dose groups
  • D, H, and L are immunostained for Von Willebrand factor, and the others are hematoxylin and eosin.
  • Magnification 5 times (A, E, 1), 25 -fold (B, F, J), 1 00 -fold (C, G, K), and 50-fold (D, H, L) 0 invention for carrying out the Best form of
  • the BL angiostatin of the present invention can be obtained by treating plasminogen with a protease, in particular, bacillolysin MA (BLMA), which is an enzyme produced by Bacillus megaterium A 9542.
  • BLMA bacillolysin MA
  • Bacillus megaterium A 9542 was deposited at the Patent Organism Depositary of the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Institute of Biotechnology, on March 21, 2001 under the accession number FERM P-18268.
  • the amino acid sequence of BLMA is disclosed in JP-A-2002-272453.
  • BLMA is human plasminogen S er 441 - V a 1 442 , L eu 74 - cut between P he 75 and V a 1 449 -L eu 450, G li ⁇ - S er 441 G 1 u 1 - Va l 449, P he 75 - S er 441, P he 75 - it is known to produce a fragment with a four ⁇ Njiosutachin like activity of V a 1 449.
  • angiostatin-like fragments can be used alone or in combination.
  • Plasminogen is known to be highly conserved in its amino acid sequence in mammals, particularly in humans. Accordingly, as the plasminogen as a raw material for producing the BL angiostatin of the present invention, any plasminogen can be used as long as it is derived from mammals. Is preferred.
  • BL angiostatin of the present invention can also be produced by chemical synthesis or gene recombination technology. Production by genetic recombination technology is preferred because relatively easy operation and mass production are possible.
  • BL Angios of the present invention In order to produce tatatin, a target protein can be produced by preparing a DNA having a nucleotide sequence encoding the protein and introducing it into a suitable expression system.
  • the DNA having the base sequence of BL angiostatin of the present invention is obtained by using a human-derived cDNA library (for example, derived from HepG2 cells) as a base for the base sequence information encoding the amino acid sequence of BL angiostatin. It can be obtained by screening using a suitable primer or probe designed based on the above. Screening can be performed by plaque hybridization or the like. Alternatively, a human-derived cDNA library (for example, derived from HepG2 cells) is used as type III, and a suitable primer designed based on the above nucleotide sequence information is used.
  • a human-derived cDNA library for example, derived from HepG2 cells
  • a suitable primer designed based on the above nucleotide sequence information is used.
  • the target gene can also be cloned directly.
  • Expression systems for expressing the recombinant protein are known to those skilled in the art.
  • To express DNA in a host cell first, the DNA is inserted downstream of a promoter in an expression vector, and then the recombinant expression vector is introduced into a host cell suitable for the expression vector.
  • Examples of expression vectors for bacteria include pGEMEX_l (Promega), pQE-9 (QIAGEN), pQE-30 (QIAGEN), pRSET (Invitrogen), pLEX (Invitrogen), and animal cells.
  • expression vectors include pc DNA I, pc DM8 (Funakoshi), pc DNA I / AmP (Invitrogen), pREP4 (Invitrogen), and expression vectors for producing recombinant viruses, such as pM
  • promoters that can be used in bacterial expression vectors include promoters derived from Escherichia coli and phage, such as the trp promoter, T7 promoter, and 1ac promoter.
  • Examples of a promoter that can be used in an expression vector for yeast include a PH05 promoter and a GAP promoter.
  • Examples of promoters that can be used in expression vectors for animal cells include, for example, the promoter of the IE (immediate early) gene of cytomegalovirus (human CMV), the early promoter of SV40, the promoter of retroinoles, and the promoter of adenowinores.
  • Examples include the tarothionine promoter and the heat shock promoter.
  • the host cell is not particularly limited as long as it can express the target protein, and includes bacteria, yeast, animal cells, insect cells, and the like.
  • Methods for introducing a recombinant vector into a host include, for example, the calcium phosphate method, the protoplast method, the electroporation method, the spheroblast method, the lithium acetate method, and the lipofection method, etc., depending on the type of host cell. It can be selected as appropriate.
  • a conventional protein isolation and purification method can be used. For example, if the recombinant protein is expressed in a lysed state in the cells, after the culture is completed, the cells are collected by centrifugation, suspended in an aqueous buffer, crushed, and the cell-free extract is collected. obtain.
  • an ordinary protein isolation and purification method that is, a solvent extraction method, a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, a precipitation method using an organic solvent
  • Purification can be carried out using an ion exchange chromatography method, a gel filtration method, and an affinity mouth matdaraphy method alone or in combination.
  • the present invention provides the following steps:
  • the present invention also relates to a method for producing BL angiostatin, comprising a step of elution with 6-aminohexanoic acid, wherein the buffer does not contain isopropyl alcohol. Preferably, all operations are performed at 4 ° C. Thereby, BL angiostatin can be obtained in high yield.
  • the anticancer agent of the present invention is generally provided in the form of a pharmaceutical composition containing BL angiostatin as an active ingredient and pharmaceutical additives such as a carrier and an excipient.
  • the anticancer agent of the present invention can be administered as a medicine to mammals including humans.
  • the route of administration of the drug of the present invention is not particularly limited, and is orally or parenterally administered (eg, For example, intramuscular administration, intravenous administration, subcutaneous administration, intraperitoneal administration, mucosal administration to the nasal cavity or the like, or inhalation administration may be used.
  • BL angiostatin unlike prior art angiostatin, has a high solubility in water (20 mg / ml or more), so that the anticancer agent of the present invention can be administered by intravenous administration. It has the feature of.
  • the form of the anticancer agent of the present invention is not particularly limited, and examples of preparations for oral administration include tablets, capsules, fine granules, powders, granules, liquids, and syrups.
  • preparations for parenteral administration include injections, drops, suppositories, inhalants, transmucosal absorbents, transdermal absorbents, nasal drops, ear drops and the like.
  • Those skilled in the art can appropriately select the form of the drug of the present invention, the additive for the preparation to be used, the method for producing the preparation, and the like.
  • the dose of the drug of the present invention can be appropriately selected in consideration of the gender, age or weight of the patient, the severity of symptoms, the administration purpose such as prevention or treatment, or the presence or absence of other complications. .
  • the dose is generally, 0. lmg / kg body weight / day ⁇ 1 0 Om g / kg body weight / day, Ru preferably 1 mg / kg body weight / day ⁇ 1 Omg / kg body weight / day der.
  • the anticancer agent of the present invention can be used for the treatment of breast cancer, lung cancer, pharyngeal cancer, stomach cancer, rotoma, liver cancer, colon cancer, uterine cancer, ovarian cancer, and the like.
  • Basirolysin MA was isolated from Bacillus megaterium A9542 strain (deposited at the Patent Depositary of Biotechnology, Industrial Technology Research Institute, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology under the deposit number F ERM P-18268) by the following method. Purified.
  • Example 2 Preparation of an affinity trap activator of the present invention in which basilolysin MA and lysine are fixed (reactor 10 ml is prepared)
  • An immobilization reaction was performed by preparing a 84 mg / ml bacillolysin MA solution with the same buffer A, adding 17.6 ml of the solution to the column, and stirring at room temperature for 2 hours. After completion of the reaction, remove the solution by suction, add 20 ml of 5% isopropyl alcohol aqueous solution (pH 8.0) containing 0.2 M L-lysine hydrochloride, and stir at room temperature for 2 hours to perform the lysine immobilization reaction.
  • pH 8.0 isopropyl alcohol aqueous solution
  • buffer B (2 OraM MES (2- [morpholino] ethanesulfonic acid) -NaOH) containing 5% isopropyl alcohol. And stored at 4 ° C. in buffer B of the above composition containing 0.02% sodium azide.
  • Example 3 One-step purification process of BL angiostatin from human plasma using the bacillolysin MA lysine reactor
  • the used reactor was washed at 4 ° C. with a buffer C 5 Oml having the above composition containing 1 M NaCl and 200 mM 6-aminohexanoic acid. Then, it was stored at 4 ° C. in buffer C containing 0.02% sodium azide. The reactor washed and stored in this state could be used repeatedly for more than two months.
  • Example 4 One-step purification process of BL angiostatin from human plasma using the bacillolysin MA / lysine reactor (isopropyl alcohol-free method)
  • the used reactor was washed with 2.5 ml of buffer C containing 1 M NaCl and 200 mM 6-aminohexanoic acid. Then, it was stored at 4 ° C in buffer C containing 0.02% sodium azide. In this state, the saved reactor is It could be used repeatedly for more than two months.
  • the resulting BL angiopathy O to 4 g and 1 Omicron mu 1 was dissolved in purified water of statins, this ⁇ ⁇ ⁇ sample buffer (4% SDS, 1 0% 2- mercaptoethanol, 20% sucrose , 125 mM Tris-HCl buffer, pH 6.8) containing 0.004% bromophenol blue, and 10 ⁇ l of this was fractionated by electrophoresis using a 7.5% polyacrylamide gel. Stained with Coomassie Brilliant Blue R250 ( Figure 1).
  • Lewis lung carcinoma cells were subcutaneously implanted into C57B LZ6 mice and maintained for passage.
  • the tumor was excised and the cancer cells were suspended in phosphate buffered saline.
  • the ventral skin of BDF i mice were preliminarily reared then under 1 week SPF environment, a cell suspension of 0. 05 ml containing 1 X 1 0 5 cells per mouse It was transplanted. All subsequent experiments were performed in the SPF environment.
  • the BL angiostatin prepared by the method of Example 3 was lyophilized and dialyzed against purified water three times for 2 hours.
  • the obtained solution was freeze-dried and dissolved in physiological saline to a concentration of 20 mg / ml.
  • This solution was sterilized by filtration using a filter having a pore size of 0.22 / m.
  • This solution was further diluted with sterile saline to make solutions of 0.06 mg / ml, 0.2 mg / ml, 0.6 mg / ml and 2 mg / ml.
  • BL angiostatin solution was intravenously administered at a rate of 5 ml / kg once daily for 14 days. This resulted in respective doses of 0.3, 1, 3, and 10 mg / kg.
  • the control group received intravenous saline at the same volume. The number of animals in each group was 10.
  • the size of the tumor (the tumor volume was calculated from the minor axis and major axis as follows: square of minor axis X major axis X 0.52) and body weight were measured daily.
  • the day after the end of the administration the mice were sacrificed under ether anesthesia, and the tumors were excised and their wet weight was measured. Data for a total of 8 animals were statistically processed, excluding the maximum and minimum values for each group. Significant difference The Dunnett's multiple comparison test was used for the test, and a significance level of 0.05% or less was regarded as a significant difference.
  • control group 3 mg / kg administration group and 1 Omg / kg administration group, three representative examples each of tumors obtained from three individuals, measurement of major axis and minor axis, cell proliferation, hemorrhage, necrosis, histology of dividing cells Observation and immunostaining of vascular endothelial cells using anti-VonWi11 ebrand factor antibody.
  • the tumor volume was significantly reduced in the 3 and 10 mg / kg BL angiostatin-administered groups on day 10 after Lewis lung cancer transplantation (FIG. 2).
  • the tumor volume was less than or equal to 12 in the control group at all observation periods.
  • Tumor growth was also suppressed in the 0.3 and lmg / kg groups, but a statistically significant difference was observed in the 0.3 mg / kg group on days 14 and 15 in the lmg / kg group. It was day 14 in the kg group (Fig. 2). On the 15th day after transplantation, the tumor was removed and its wet weight was measured. ).
  • Table 1 summarizes the results of histopathological examination of the removed tumor.
  • cell proliferation was high (Fig. 5A)
  • bleeding was mild (Fig. 5B)
  • necrosis was slight (Fig. 5B)
  • moderately split cells were observed (Fig. 5C).
  • immunostaining of vascular endothelial cells with an anti-vw WnIll ebrand factor antibody revealed a mild to moderate positive cell ratio (FIG. 5D).
  • Moderate cell proliferation Figure 5E
  • mild bleeding Figure 5F
  • mild necrosis Figure 5F
  • moderately split cells in the BL angiostatin 3 mg / kg group Figure 5G
  • the percentage of von Willebrand factor-positive cells was found to be mild to moderate (Figure 5H).
  • the anticancer agent of the present invention can be used for treating breast cancer, lung cancer, pharyngeal cancer, stomach cancer, knee cancer, liver cancer, colon cancer, uterine cancer, ovarian cancer, prostate cancer, etc. .

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Abstract

 本発明は、BLアンジオスタチンを有効成分として含む制がん剤及びその製造方法を提供する。

Description

明 細 書
B Lアンジォスタチンを含む制がん剤 技術分野
本発明は B Lアンジォスタチンを含む制がん剤及びその製造方法に関する。 背景技術
血管の新生を阻害する物質は、 癌の増殖、 浸潤、 転移を抑制することから、 抗 腫瘍剤としての用途が期待されており、 このような物質の一つとしてアンジォス タチンが知られている。 アンジォスタチンは、 血液中に存在する、 線溶因子であ るプラスミノーゲンを分解することにより得られる分子量約 4 0, 000のタン パク質であり、 動物実験では、 癌に対して劇的な効果を示すことが報告されてい る (M.S. O'Reilly et al., Cell, 79, 315-328(1994))。
アンジォスタチンには、 (1 ) プラスミノーゲンをエラスターゼで加水分解し たもの (M.S. O'Reilly et al. , ature Medicine, 2, 689-692 (1996) ) 及び (2) 遺伝子組換え技術を用いて酵母に直接生産させたもの (B.K. Sim et al. , Cancer Research 57, 1329-1334 (1997)) の 2種類が知られていた。
しかし、 (1 ) では、 エラスターゼの基質特異性の低さのため、 副生成物が多 く生じ、 プラスミノーゲンからアンジォスタチンを選択的に生成させることが困 難であることから、 アンジォスタチンの活性が低いという欠点があった。 また、
(2) では、 アンジォスタチンの精製が困難であり、 高コストであり、 また、 水 に対する溶解性が低いという問題があつた。
最近、 Bacillus megaterium A9542株が産生するプロテアーゼであるバシロラ イシン MAを用いて、 ヒ トプラスミノーゲンを特異的に切断したアンジォスタチ ン様断片 (主に G 1 u1— S e r441、 以降、 「B Lアンジォスタチン」 と記載す る。) が開発された。 (特開 2 0 0 2— 2 7 24 5 3号公報)。 ヒ トプラスミノー ゲンのアミ ノ酸配列は公知であり、 S W I 3 3 ? 1 〇丁に受入番号? 00 74 7として登録されている。 なお、 ヒ トプラスミノーゲンのアミノ酸配列 は、 シグナルペプチド (Me t 1— G l y 19) を含むものであるため、 本出願で は、 シグナルペプチドを除外した成熟ポリペプチド、 すなわち、 G l u1— A s n 791のアミノ酸配列に基づくアミノ酸番号でアミノ酸位置を示した。
また、 組換えアンジォスタチンは、 天然型に比べて物理的性質と活性にばらつ きがあり、 これは異種生物での発現の過程でのタンパク質フォールディングの差 に基づく立体構造の変化、 糖鎖修飾の差などが原因と考えられる (Cao, Y., Int
J Biochem Cell Biol 33, 357-69 (2001)、 Dell' Eva, R., et al. , Endothelium
9, 3-10 (2002))。 また、 同様の原因により、 組換えタンパク質の溶解性が低い ことも指摘されている。 これらの点で、 組換え体と比較して、 酵素法により生産 される天然型が有利である。
しカゝし、 タンパク質解酵素の基質認識が特異性であることから、 プラスミノー ゲンから選択的にアンジォスタチンを生成することは、 極めて困難であり、 多く の副産物を生成するという欠点があった。
また、 すべての巿販ェラスタ一ゼ標品が活性のあるアンジォスタチンを生産す ることができるわけではなく、 切断、 その後の処理によってアンジォスタチンを 変性させる可能性も示唆されている (O'Reilly et al. , Nat Med 2, 689-92
(1996))。
バシロライシン MAは、 プラスミノーゲンを極めて選択的に切断し、 BLアン ジォスタチン (主生成物として G 1 u 1から S e r 441のアミノ酸配列を有する フラグメント、 微量生成物として、 P h e 75から S e r 441、 G l u 1から V a 1449、 および P h e 75から V a 1449のアミノ酸からなるフラグメント) を生 じせしめる (特開 2002— 272453号公報)。
更に発明者らは、 バシロライシン MA固定化リアクター (ァフイエティート ラップリアクター) を開発し、 ヒ ト血漿から 1段階のステップで G 1 u 1から S e r 441のアミノ酸配列を有するフラグメントを主成分とするプラスミノーゲン フラグメントの製造技術を開発し (?〇丁 】? 03 003 38)、 製造時間 の短縮とコス ト削減を達成した。
組換えアンジォスタチンは L e u74から L e u 451のアミノ酸からなるプラス ミノーゲンの内部フラグメントである (Sim, B. K. et al. Cancer Res 57, 1329-34 (1997)) のに対し、 BLアンジォスタチンは、 上述のようにアンジォス タチンとは異なる構造を有するが、 アンジォスタチンと同様の抗血管内皮細胞作 用をもつ。
特に、 主生成物である G 1 u 1から S e r 4 4 1のァミノ酸配列を有するフラグ メント、 更に G 1 u 1から V a 1 4 4 9のァミノ酸配列を有するフラグメントは、 プラスミノ一ゲンの N末端側を含むものである。
プラスミノーゲンの N末端ペプチド (G 1 u 1から G 1 u 8 3 ) は親水性アミノ 酸に富み、 N末端べプチドの有無の差は B Lアンジォスタチンとアンジォスタチ ンとの間に、 溶解性などの物理的特性だけではなく、 生体内での活性、 動態など にも差異をもたらすと考えられる。
しかし、 B Lアンジォスタチンが、 実際に、 インビボでの制がん効果を有する との報告はまだなされておらず、 安価で、 水に対する溶解性が高く、 かつ、 優れ た制がん性を有する制がん剤及びその製造方法の開発が待たれている。
本発明者は、 上記の B Lアンジォスタチンのがんに対する効果について鋭意研 究を行なった結果、 驚くべきことに、 B Lアンジォスタチンが極めて優れた制が ん効果を有し、 かつ、 水に対する溶解性が高いことから、 静脈内投与によっても 格別の制がん効果を奏することを発見して、 本発明を完成するに至った。
また、 本発明者は、 B Lアンジォスタチンの製造の際に、 バシロマイシン MA による自己消化の阻害剤であるイソプロピルアルコールを用いないでも、 効率よ く B Lアンジォスタチンを得ることができることを発見して、 本発明を完成する に至った。 発明の開示
本発明は、 B Lアンジォスタチンを有効成分として含む制がん剤及びその製造 方法に関する。 図面の簡単な説明
図 1は、 ァフイエティートラップリアクターにより精製した B Lアンジォスタ チンを示す。 レーン 1は、 得られた B Lアンジォスタチンである。 レーン 2は、 バシロライシン MA ( 5 nM)、 プラスミノーゲン (3 M) を 1 0 0 mMN a C l、 0. 0 1 %Tw e e n 8 0、 1 mM C a C 1 2を含む 5 0 mM トリス塩酸 (pH 7. 4) 1 0 1 中で37 、 60分間インキュベートした後、 Ι Ο μΙ のサン プル緩衝液 (4%SDS、 1 0% 2—メルカプトエタノール、 20%スクロース、 0. 004 %ブロモフエノールブルーを含む 1 2 5mM トリス塩酸緩衝液、 pH 6. 8) を加えレーン 1と同様に分析した。
図 2は、 皮下移植ルイス肺がんの増殖に対する B Lアンジォスタチンの効果 (腫瘍体積の推移) を表す。 X軸はルイス肺がんを移植してからの日数 (日) で あり、 Y軸は腫瘍体積 (讓 3) である。 ·は、 対照群を、 ▲、 騸、 X及び♦は、 それぞれ、 BLアンジォスタチン 0. 3、 1、 3及び 1 Omg/kg/day 処理群を表 し、 それぞれの値は、 各群 8例の平均値土標準偏差を表す。 D u n n e t tの多 重比較検定で、 対照群と比較して統計的に有意な差は *印を付してある。 * (P < 0. 05)、 * * (p < 0. 01)
図 3は、 皮下移植ルイス肺がんの増殖に対する B Lアンジォスタチンの効果 (腫瘍湿重量) を表す。 X軸は B Lアンジォスタチンの用量 (mg/kg/day) であ り、 Y軸は腫瘍湿重量 (mg) である。 それぞれの値は、 各群 8例の平均値土標準 誤差を表す。 Du n n e t tの多重比較検定で、 対照群と比較して統計的に有意 な差は *印を付してある。 * (p < 0. 05)、 * * (p < 0. 01)
図 4は、 ルイス肺がん皮下移植動物の体重に対する B Lアンジォスタチンの影 響を表す。 X軸はルイス肺がんを移植してからの日数 (日) であり、 Y軸は体重 (g) である。 參は対照 (生理食塩水) 処理群であり、 ▲は、 アンジォスタチン
0. 3 mg/kg/day 処理群であり、 醒は、 アンジォスタチン 1 mg/kg/day 処理群で あり、 Xは、 アンジォスタチン 3 mg/kg/day 処理群であり、 ♦は、 アンジォスタ チン 1 Omg/kg/day 処理群である。 それぞれの値は、 各群 8例の平均値土標準誤 差を表す。 Du n n e t tの多重比較検定で、 対照群と比較して統計的に有意な 差は *印を付してある。 * (pく 0. 05)、 * * (p < 0. 01)
図 5は、 腫瘍の病理組織像及び V o n W i 1 1 e b r a n d因子免疫染色像 を表す。 対照群 (腫瘍長径 8. 2mm、 短径 7. 8 mm) (A、 B、 C、 D) 、 3mg/kg 投与群 (腫瘍長径 7. 0隨、 短径 5. 6讓) (E、 F、 G、 H) および 10 mgZk g投与群 (腫瘍長径 4. 4 mm、 短径 2. 8 mm) ( 1、 J、 :、 L) の代表例を示す。 D、 Hおよび Lは V o n Wi l l e b r a n d因子 免疫染色、 それ以外はへマトキシリン 'ェォシン染色。 倍率は、 5倍 (A、 E、 1 )、 25倍 (B、 F、 J)、 1 00倍 (C、 G、 K)、 および 50倍 (D、 H、 L)0 発明を実施するための最良の形態
本発明の B Lアンジォスタチン
本発明の B Lアンジォスタチンは、 プロテアーゼ、 特に、 バチラス メガテリ ゥム (Bacillus megaterium) A 9542が産生する酵素であるバシロライシ ン MA (BLMA) を用いてプラスミノーゲンを処理することによって得ること ができる。 バチラス メガテリゥム (Bacillus megaterium) A 9542は、 産業技術総合研究所生命工学研究所の特許生物寄託センターに平成 1 3年 3月 2 1 日に受託番号 FERM P— 1 8268として寄託されている。 B LMAの アミノ酸配列は、 特開 2002— 272453に開示されている。
BLMAは、 ヒ トプラスミノーゲンの S e r 441— V a 1442、 L e u74— P h e 75及び V a 1449 -L e u 450の間を切断し、 G l i^— S e r 441 G 1 u 1— Va l 449、 P h e 75— S e r 441、 P h e 75— V a 1449の 4種類のァ ンジォスタチン様活性を有する断片を生成することが知られている。
本発明の制がん剤としては、 上記の 4つのアンジォスタチン様断片の 1種類以 上を単独でか又は組み合わせて用いることができるが、 特に、 G l u1— S e r
441が好ましく用いられる。
プラスミノーゲンは、 哺乳動物、 特にヒ トゃゥシにおいて、 そのアミノ酸配列 が高度に保存されていることが知られている。 したがって、 本発明の BLアンジ ォスタチンの製造のための原料としてのプラスミノーゲンは、 哺乳動物に由来す るものであればあらゆるものを用いることができ、 特に、 ヒ トゃゥシ由来のプラ スミノーゲンが好ましい。
また、 本発明の B Lアンジォスタチンは、 化学合成又は遺伝子組み換え技術に よっても製造することができる。 比較的容易な操作でかつ大量に製造できるとい う点では、 遺伝子組み換え技術による製造が好ましい。 本発明の BLアンジォス タチンを製造するには、 該タンパク質をコードする塩基配列を有する DNAを作 製し、 これを好適な発現系に導入することにより目的タンパク質を製造すること ができる。
本発明の B Lアンジォスタチンの塩基配列を有する DNAは、 ヒ ト由来 (例え ば、 He pG 2細胞由来など) の c DNAライブラリ一を、 BLアンジォスタチ ンのアミノ酸配列をコードする塩基配列の情報に基づいて設計した好適なプライ マー又はプローブを用いてスクリーユングすることにより入手できる。 スクリー ニングはプラークハイブリダィゼーシヨン等で行うことができる。 あるいは、 ヒ ト由来 (例えば、 He p G2細胞由来など) の c DNAライブラリーを铸型とし て使用し、 上記塩基配列の情報に基づいて設計した好適なプライマーを用いて P
CRを行うことにより、 目的遺伝子を直接クローニングすることもできる。 組み換えタンパク質を発現させるための発現系 (遺伝子を含む発現べクタ一と その宿主) は当業者に公知である。 DN Aを宿主細胞中で発現させるためには、 まず、 該 DNAを発現ベクター中のプロモーターの下流に挿入し、 次いでこの組 み換え発現ベクターを、 当該発現ベクターに適合した宿主細胞中に導入する。 細菌用の発現ベクターとしては、 p GEMEX_ l (Promega) , p QE— 9 (QIAGEN)、 p Q E - 30 (QIAGEN) , p R S ET (Invitrogen) , p LEX (Invitrogen) などが挙げられ、 動物細胞用の発現ベクターとして、 例えば、 p c DNA I、 p c DM8 (フナコシ)、 p c DNA I /AmP (Invitrogen), p REP 4 (Invitrogen) や、 組換えウィルス作成用発現ベクター、 例えば、 pM
FG (Takara) が挙げられる。
細菌用の発現べクターに用いることができるプロモーターとしては、 例えば、 t r pプロモーター、 T 7プロモーター、 1 a cプロモーター等の大腸菌や ファージ等に由来するプロモーター等を挙げることができる。 酵母用の発現べク ターに用いることができるプロモーターとしては、 例えば、 PH05プロモー ター、 GAPプロモーターを挙げることができる。 動物細胞用の発現ベクターに 用いることができるプロモーターとしては、 例えば、 サイ トメガロウィルス(ヒ ト CMV)の I E (immediate early)遺伝子のプロモーター、 SV40の初期プロ モーター、 レトロゥイノレスのプロモーター、 アデノウイノレスのプロモーター、 メ タロチォネインプロモーター、 ヒートショックプロモーターを挙げることができ る。
宿主細胞としては、 目的タンパク質を発現できるものであれば特に制限されず、 細菌、 酵母、 動物細胞、 昆虫細胞などが挙げられる。
組換えベクターの宿主への導入方法は、 例えば、 リン酸カルシウム法、 プロ ト プラスト法、 エレク トロポレーシヨン法、 スフエロブラスト法、 酢酸リチウム法、 リポフエクション法などが挙げられ、 宿主細胞の種類に応じて適宜選択すること ができる。
形質転換体の培養物から、 目的の組み換えタンパク質を単離精製するには、 通 常のタンパク質の単離、 精製法を用いることができる。 例えば、 組み換えタンパ ク質が、 細胞内に溶解状態で発現した場合には、 培養終了後、 細胞を遠心分離に より回収し水系緩衝液に懸濁後、 細胞を破砕し、 無細胞抽出液を得る。 該無細胞 抽出液を遠心分離することにより得られた上清から、 通常のタンパク質の単離精 製法、 即ち、 溶媒抽出法、 硫安等による塩析法、 脱塩法、 有機溶媒による沈殿法、 イオン交換クロマトグラフィー法、 ゲルろ過法、 ァフィ二ティーク口マトダラ フィ一法を単独でか又は組み合わせて用い、 精製することができる。
また、 本発明は、 下記工程:
ァガロースゲル上にバシロライシン MA及びリシンを固定したァフィ二ティ ト ラップリアクターを緩衝液で平衡化する工程、
クェン酸処理した血清を添加する工程、
塩化ナトリゥムを含む緩衝液で洗浄する工程、 及び
6—ァミノへキサン酸で溶出する工程からなる、 B Lアンジォスタチンの製造方 法であって、 上記緩衝液が、 イソプロピルアルコールを含まないことを特徴とす る、 製造方法にも関する。 好ましくは、 全ての操作を 4 °Cで行う。 これによつて、 B Lアンジォスタチンを高収率で得ることができる。
本発明の制がん剤は、 一般的には、 有効成分としての B Lアンジォスタチンと 担体、 賦形剤などの製剤用添加物とを含む医薬組成物の形態で提供される。
本発明の制がん剤は、 ヒ トを含む哺乳動物に医薬として投与することができる。 本発明の薬剤の投与経路は特に限定されず、 経口投与または非経口投与 (例え ば、 筋肉内投与、 静脈内投与、 皮下投与、 腹腔内投与、 鼻腔などへの粘膜投与、 または吸入投与など) の何れでもよい。
B Lアンジォスタチンは、 先行技術のアンジォスタチンとは異なり、 水に対す る溶解度が高い (20mg/ml 以上) ことから、 本発明の制がん剤は、 静脈内投与 によって投与することができるという特徴を有する。
本発明の制がん剤の形態は特に限定されず、 経口投与のための製剤としては例 えば、 錠剤、 カプセル剤、 細粒剤、 粉末剤、 顆粒剤、 液剤、 シロップ剤などが挙 げられ、 非経口投与のための製剤としては例えば、 注射剤、 点滴剤、 座剤、 吸入 剤、 経粘膜吸収剤、 経皮吸収剤、 点鼻剤、 点耳剤などが挙げられる。 本発明の薬 剤の形態、 使用すべき製剤用添加物、 製剤の製造方法などは、 いずれも当業者が 適宜選択することができる。
本発明の薬剤の投与量は、 患者の性別、 年齢または体重、 症状の重症度、 予防 または治療といった投与目的、 あるいは他の合併症状の有無などを総合的に考慮 して適宜選択することができる。 投与量は、 一般的には、 0. lmg/kg 体重/ 日〜 1 0 Omg/kg 体重/日、好ましくは 1 mg/kg 体重/日〜 1 Omg/kg 体重/日であ る。
本発明の制がん剤は、 乳がん、 肺がん、 咽頭がん、 胃がん、 臈がん、 肝がん、 結腸がん、 子宮がん、 卵巣がん、 等の治療に用いることができる。 実施例
以下に、 本発明について具体的に説明するが、 本発明は実施例に記載されたも のに限定されるものではない。
例 1. バシロライシン MAの生産及び精製
バシロライシン MAは、 Bacillus megaterium A9542 株 (寄託番号 F ERM P- 1 8268で経済産業省産業技術総合研究所生命工学工業技術研究所特許生 物寄託センターに寄託されている) から、 以下の方法により分離精製した。
グルコース 1 0/0、 コーンスターチ 3o/0、 大豆ミール 1%、 ペプトン 0. 50/0、 イース ト抽出物 0. 5%、 C a CO30. 2%、 CB 442 0. 0 1 %の成分 を含む液体培地 (pH7. 0) 1 00ml を含む 5 00ml 容三角フラスコで、 Bacillus megaterium A9542株を 28 °Cで 6日間振とう培養後、 培養液 3リット ルをセライ トを用いてろ過し、 そのろ液 1 リッ トルを H2〇で 5リットルに希釈 し、 イソプロピルアルコールを最終濃度 5% (v/v) となるように添加した。 そ の後、 2 OraM ME S (2— 〔N—モルホリノ〕 エタンスルホン酸) 一 Na〇H 緩衝液 ( p H 6. 5 ) 5 %イソプロピルアルコールで平衡化した 400 ml の カルボキシメチルセルロース(生化学工業株式会社)カラムに流速 1 5 ml/分で注 入した。 同じ緩衝液 60 Oml で洗浄した後、 20mM ME S/N a OH (p H 6. 5) /5%イソプロピルアルコール/ 0. 2M Na C lで溶出した。 その 溶出画分を 60ml ずつ分画し、 活性の認められた画分を集めた。 その純度を S D S-P AGEで確認し、 精製物 90 mgを得た。
例 2. バシロライシン MA及びリシンを固定した本発明のァフィ二ティートラッ プリアクターの作成 (リアクター 10mlを作成)
臭化シアンであらかじめ活性化しておいたァガロースゲル (セファロース 4 B、 フアルマシア社) 2. 8 6 gを 1 mMH C 1溶液 1 0 0ml に懸濁し、 室温で 1 5分間撹拌した。 これをカラムに移し、 吸引して HC 1溶液を除去し、 ImMH C 1溶液 1 00ml で 3回、 次に 0. 5M Na C l、 5%イソプロピルアルコー ルを含む緩衝液 A (0. 1M 炭酸水素ナトリウム、 pH8. 3) 75ml で 1回 ゲルを洗浄した。 2. 84mg/ml のバシロライシン MA溶液を同じ緩衝液 Aで作 成し、 その 1 7. 6 mlをカラムに添加し、 室温で 2時間撹拌することによって、 固定化反応を行なった。 反応終了後、 吸引により溶液を除去し、 0. 2M L- リシン塩酸塩を含む 5%イソプロピルアルコール水溶液 (pH8. 0) 20 ml を加えて、 室温で 2時間撹拌することによりリシンの固定化反応を行なった。 反 応終了後、 溶液を吸引により除去し、 5%イソプロピルアルコールを含む、 緩衝 液 B ( 2 OraM ME S (2— 〔モルホリノ〕 エタンスルホン酸) 一 N a OH) 500ml でゲルを洗浄し、 最後に 0. 02%アジ化ナトリウムを含む、 上記組 成の緩衝液 B中、 4 °Cで保存した。
例 3. バシロライシン MA リシンリアクタ一を用いた、 ヒ ト血漿からの B Lァ ンジォスタチンの一段階精製プロセス
クェン酸処理したヒ ト血漿 95ml にイソプロピルアルコール 5ml を氷上で添 加し、 30分間放置した後、 遠心分離 (22, 000 x g、 4°C、 1時間) によ り上清を得、 ろ過した。 以降の操作はすべて 4 °Cで行なった。 例 2で作成した本 発明のバシロライシン MA/リシンリアクター 1 0ml を、 5%イソプロピルァ ルコールを含む緩衝液 C (25mM リン酸ナトリウム、 pH7. 4) で平衡化し た。 平衡化したリアクターに、 上記の上清を流速 1. 5 ml/分で添加した。 その 後、 0. 5M N a C 1を含む上記組成の緩衝液 C 20 Oml でリアクターを洗浄 した (3ml/分)。 生成した B Lアンジォスタチンの溶出は、 200mM の 6—ァ ミノへキサン酸を含む 5 %イソプロピルアルコール溶液 5 Oml で行なった。 そ の結果、 ほとんどの B Lアンジォスタチンは、 1 0〜 3 Oml の溶出液で溶出さ れた。 B Lアンジォスタチンの収量は、 4. 2mg であり、 純度は 95%であつ た。
なお、 使用後のリアクターは、 1Mの Na C l と 200mMの 6—アミノへキサ ン酸を含む上記組成の緩衝液 C 5 Oml を用いて 4 °Cで洗浄した。 その後、 0. 02 %アジ化ナトリウムを含む緩衝液 C中、 4 °Cで保存した。 この状態で洗 浄、 保存したリアクターは、 2ヶ月以上繰り返して使用可能であった。
例 4. バシロライシン MA/リシンリアクターを用いた、 ヒ ト血漿からの BLァ ンジォスタチンの一段階精製プロセス (イソプロピルアルコールを用いない方 法)
クェン酸処理したヒ ト血漿を 1 5, 000 r pm、 20分間遠心して、 上清を 得た。 以下の操作は、 すべて 4°Cで行った。 例 2で作製した本発明のバシロライ シン MA リシンリアクター 0. 5ml を、 緩衝液 Cで平衡化した。 これに、 上 記の上淸 2. 5 ml を流速 0. 1ml/分で添加した。 その後、 1 5 ml の 0. 5M 塩化ナトリ ウムを含む緩衝液 Cで洗浄 (0. 1 5ml/分) 後、 2. 5 ml の 20 OmM 6—ァミノへキサン酸で溶出した。 大部分の B Lアンジォスタチンは、 0から 1. 5ml の溶出液で溶出された。 B Lアンジォスタチンの収量は 63 μ g で純度は 94%であった (図 1)。
なお、 使用後のリアクターは、 1Mの Na C l と 200mMの 6—ァミノへキサ 酸を含む緩衝液 C 2. 5ml を用いて洗浄した。 その後、 0. 02%アジ化ナト リウムを含む緩衝液 C中、 4°Cで保存した。 この状態で、 保存したリアクターは 2ヶ月以上繰り返して使用可能であった。
得られた B Lアンジォスタチンのうち 4 gを精製水に溶解して 1 Ο μ1とし、 これに Ι Ο μΙ のサンプル緩衝液 (4%SDS、 1 0% 2—メルカプトエタノー ル、 20%スクロース、 0. 004 %のブロモフエノールブルーを含む 1 25mM トリス塩酸緩衝液、 pH 6. 8) を加え、 そのうち 1 0 μ 1 を、 7. 5%ポリアク リルアミ ドゲルを用いた電気泳動で分画した後、 クーマシーブリリアントブルー R 250で染色した (図 1)。
例 5. B Lアンジォスタチンのルイス肺がんに対する効果
•がん種及びがんの移植方法、 試験動物
ルイス肺がん細胞を C 5 7 B LZ 6マウスに皮下移植して継代維持した。
10— 14日目の腫瘍を摘出し、 リン酸緩衝生理食塩水にがん細胞を懸濁した。 5週齢で購入し、 その後 1週間 S P F環境下で予備飼育した B D F iマウスの腹 側部皮下に、 1匹当たり 1 X 1 05個の細胞を含む 0. 05 ml の細胞懸濁液を移 植した。 以後の実験もすベて S P F環境で行った。
·薬剤調製方法、 投与方法、 投与条件
例 3の方法で調製した B Lアンジォスタチンを凍結乾燥し、 これを精製水に対 して、 2時間、 3回透析した。 得られた溶液を凍結乾燥して、 20mg/ml となる ように生理食塩水に溶解した。 この溶液を孔径 0. 22 / m のフィルターを用い てろ過滅菌した。 この溶液をさらに滅菌生理食塩水で希釈して、 0. 06mg/ml、 0. 2mg/ml、 0. 6 mg/ml及び 2 mg/mlの溶液を作製した。 ルイス肺がん細胞の 移植の翌日から、 上記の B Lアンジォスタチン溶液を、 5 ml/kg の割合で毎日 1回 14日間静脈内投与した。 これにより、 それぞれの投与量は、 0. 3、 1、 3、 および 1 0mg/kg となった。 対照群には、 生理食塩水を同容量静脈内投与し た。 各群の動物数は 10匹とした。
·観察項目
投与期間中は、 腫瘍の大きさ (短径及び長径から腫瘍体積を以下のように算 出 :短径の 2乗 X長径 X 0. 52) 及び体重を毎日測定した。 投与終了翌日、 エーテル麻酔下にマウスを致死させ、 腫瘍を摘出してその湿重量を測定した。 各 群の最大及び最小値を除外して、 計 8匹の動物のデータを統計処理した。 有意差 の検定には Du n n e t tの多重比較検定を用い、 危険率 0. 05%以下を有意 差とした。 更に、 対照群、 3mg/kg 投与群および 1 Omg/kg 投与群の代表例各 3個体から得られた腫瘍について、 長径および短径の測定、 細胞増殖、 出血、 壊 死、 分裂細胞の組織学的観察、 および抗 V o n W i 1 1 e b r a n d因子抗体 を用いた血管内皮細胞の免疫染色を行った。
,観察結果、 考察
対照群と比較して、 ルイス肺がん移植後 1 0日目移行、 3及び 10mg/kgBL アンジォスタチン投与群において、 腫瘍体積が有意に低下した (図 2)。 1 Omg/kg 投与群においてはすべての観察期間で、 腫瘍体積は対照群の 1 2以 下であった。 0. 3及び lmg/kg 投与群においても腫瘍成長の抑制が観察された が統計的に有意な差となったのは、 0. 3mg/kg 投与群で 1 4及び 1 5 日目、 lmg/kg 投与群で 14日目であった (図 2)。 また、 移植後 1 5日目に腫瘍を摘 出して、 その湿重量を測定したが、 B Lアンジォスタチン投与群では対照群と比 較して、 50— 70%の値となった (図 3)。 0. 3、 3及ぴ 1 Omg/kg 投与群 における差は統計的に有意な差であった。 一方、 飼育期間を通して各群の体重に 有意な差は見られなかった (図 4)。 また、 動物の一般状態も、 試験群間の差は 見られなかった。
摘出した腫瘍の病理組織学的検査の結果を表 1にまとめた。 対照群では、 細胞 増殖が高度に (図 5A)、 出血が軽度に (図 5 B)、 壊死が軽微に (図 5 B)、 分 裂細胞が中等度に (図 5 C) 認められた。 また、 抗 v o n W i l l e b r a n d因子抗体による血管内皮細胞の免疫染色では、 陽性細胞の割合が軽度から中等 度に認められた (図 5D)。 B Lアンジォスタチン 3mg/kg 投与群では、 細胞増 殖が中等度に (図 5 E)、 出血が軽度に (図 5 F)、 壊死が軽度に (図 5 F)、 分 裂細胞が中等度に (図 5G)、 v o n W i l l e b r a n d因子陽性細胞の割 合が軽微から中等度に (図 5 H) 認められた。 更に、 B Lアンジォスタチン
1 Omg/kg 投与群では、 細胞増殖が軽微から中等度に (図 5 1 )、 出血が軽微か ら中等度に (図 5 J)、 壊死が軽度から高度に (図 5 J)、 分裂細胞が軽微から軽 度に (図 5K)、 v o n W i 1 l e b r a n d因子陽性細胞の割合が軽微から 軽度に (図 5 L) 認められた。 表 1. 腫瘍の病理組織学的検査および von Wi llebrand因子免疫染色検査の結果 用量 ng/kg) 0 3 10 腫瘍の病理組織学的
所見 (へマ トキシリ
ン ·ェォシン染色)
長径 10. 6 7. 6 8. 2 7. 4 7. 0 7. 1 5. 5 6. 7 4. 4 短径 5. 0 7. 5 7. 8 5. 6 5. 6 4. 2 2. 8 6. 2 2. 8 細胞增殖 +++ +++ +++ ++ ++ ++ 土 ++ + 出血 + + + + + + ++ 土 + 壊死 土 - 土 + + + +++ + ++ 分裂細胞 ++ ++ ++ ++ ++ ++ 土 + 士 月重 の von
Wi llebrand 因子免疫
+ ++ ++ + ++ 土 土 + 土 染色所見 (陽性血管
の割合)
以上のことから、 1 日当たり 0 . 3 mg/kg〜 1 O mg/kg の B Lアンジォスタチ ンの静脈内投与は、 皮下移植ルイス肺がんの成長の抑制に有効であることが示さ れた。 また、 腫瘍の病理組織学的検査の結果から、 B Lアンジォスタチンの投与 により、 腫瘍細胞の分裂増殖の低下、 壊死の増加がおこることが示された。 さら に、 抗 v o n W i 1 1 e b r a n d因子抗体による血管内皮細胞の免疫染色に より、 B Lアンジォスタチンが、 がんの新生血管を抑えていることが確認され、 この血管新生阻害作用が、 上述の腫瘍細胞の分裂増殖の低下、 壊死の増加をもた らすものと考えられる。 また、 試験動物の体重や一般状態に影響しないことから、 B Lアンジォスタチンは重篤な副作用を持たないものと推測される。 臨床予測性 に優れたルイス肺がんの成長を抑制したことから、 他の多くのがん (乳がん、 肺 がん、 咽頭がん、 膝がん、 肝がん、 結腸がん、 子宮がん、 卵巣がん等) に対して、 抑制効果を示すと考えられる。 産業上の利用可能性
本発明の制がん剤は、 乳がん、 肺がん、 咽頭がん、 胃がん、 膝がん、 肝がん、 結腸がん、 子宮がん、 卵巣がん、 前立腺がん等の治療に用いることができる。

Claims

求 の
2. BLアンジォスタチンが、 哺乳動物に由来する、 請求の範囲第 1項に記載の 制がん剤。
3. B Lアンジォスタチンが、 ヒ トプラスミノーゲンの G 1 u i— S e r 441、 G l u 1— V a l 449、 P h e 75- S e r 441及ぴ 1 e 75-V a 1449断片か らなる群より選択される、 請求の範囲第 1又は 2項に記載の制がん剤。
4. 下記工程:
ァガロースゲル上にバシロライシン M A及びリシンを固定したァフィ二ティ ト ラップリアクターを緩衝液で平衡化する工程、
クェン酸処理した血清を添加する工程、
塩化ナトリゥムを含む緩衝液で洗浄する工程、 及び
6—ァミノへキサン酸で溶出する工程からなる、 請求の範囲第 1項に記載の B L アンジォスタチンの製造方法であって、 上記緩衝液が、 イソプロピルアルコール を含まないことを特徴とする、 製造方法。
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