WO2005003286A1 - 細胞または組織の培養制御装置とその方法 - Google Patents

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    • C12N2533/00Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/50Proteins

Definitions

  • the invention of this application relates to a cell or tissue culture control device and method. More specifically, the invention of the present application relates to a culture control device and a method thereof that can artificially control the adhesion position and extension direction of cells or tissues without requiring a large-scale device.
  • Cells have many functions, such as adhesion, growth, proliferation, secretion, and gene expression. They form a complex network and exhibit a wide variety of physiological functions. In order to elucidate such complex life phenomena, various approaches are conceivable.
  • One of the methods is pattern culture, which controls the adhesion position and elongation direction of cultured cells and cultivates them in an arbitrary pattern. It is considered.
  • This method uses a photolithography method that transfers a pattern to a substrate using a mask (or negative) in which a pattern such as the adhesion position of cultured cells is transferred to a microchip in advance. are doing.
  • a photolithography a cell-adhesive and non-cell-adhesive region is patterned on a substrate and used for pattern culture of cultured cells.
  • reagents organic solvents
  • Various reagents (organic solvents) used have an adverse effect such as dissolving many polymer materials such as polystyrene used as a scaffold for cell adhesion when culturing cells and tissues. There was a problem that the scaffold was lost and it was difficult to maintain good culture conditions.
  • PDMS polydimethylsiloxane
  • This pattern culturing method uses soft lithography to transfer cell adhesive substances to a substrate using a microstructured surface made of polydimethylsiloxane (PDMS), which is a rubbery polymer, to produce patterns. It is based on a technology called.
  • PDMS polydimethylsiloxane
  • the pattern cultivation exemplified above uses photolithography or electron beam lithography as the base for PDMS surface processing, which requires large-scale equipment and costs. there were.
  • Another object of the present invention is to provide a culture control device and a method thereof that enable control of the adhesion position and extension direction of a tissue. Disclosure of the invention
  • a culture control device for culturing cells or tissues and controlling the adhesion position and extension direction of the cells or tissues at that time, It has a substrate on which a cell non-adhesive substance is immobilized, an electrode placed near the substrate, and a computer for controlling the function and operation of this electrode.
  • the present invention provides a culture control device, characterized in that active oxidizing species are electrochemically generated and the non-cell-adhesive substance fixed on the substrate is modified into a cell-adhesive substance.
  • the invention of the present application also provides, secondly, a culture control device characterized in that the cell non-adhesive substance is albumin.
  • albumin is a bovine serum albumin (Bovine Serum Albumin; BSA).
  • BSA Bovine Serum Albumin
  • a culture control device characterized in that the active oxidized species is an active halogen species generated by oxidizing a halide ion.
  • the active halogen species is hypobromous acid (HOBr) or hypochlorous acid (H0C1).
  • a cell or tissue is cultured using the culture control device according to any one of the first to fifth inventions, and the adhesion position of the cell or tissue at that time and A method of controlling the direction of extension,
  • An electrode is arranged near the substrate on which the cell non-adhesive substance is immobilized, and a computer for controlling the function and operation of this electrode is installed in connection with the electrode, and the electrode under the control of this computer is oxidized.
  • the present invention provides a control method characterized in that the method further comprises the steps of: Accordingly, there is provided a control method characterized by controlling an adhesion position and an elongation direction in the culture.
  • Figure 1 is a diagram showing the effect of sodium hypobromite on BSA, a shows a photograph confirming the cell culture state by fluorescent staining, and b and c show the results of surface plasmon measurement, respectively. .
  • FIG. 2a is a diagram schematically illustrating the modification of BSA. In a local area of a substrate using HOBr generated by a microelectrode.
  • FIG. 4 is a photograph and a diagram showing a state in which HeLa cells were cultured after applying and modifying albumin on a go board.
  • Fig. 3 is a photograph showing a state in which cells are cultured on a substrate after two-dimensionally scanning the electrode in a spiral shape and applying an oxidation pulse oxidation potential to the electrode.
  • FIG. 4 is a photograph showing culture conditions of dorsal root ganglion cells before (a) and after (b) modification of albumin on a substrate by oxidation potential.
  • Fig. 5 shows that the oxidized pulse oxidation potential is locally applied to the electrode on the substrate on which the cells have already been cultured to locally modify the cell non-adhesive activity.
  • This is a diagram schematically illustrating the steps of inoculating and culturing cultured cells at a location). As a result, a photograph (b) showing the state of HeLa cell culture for 2 hours is shown before the pattern culture of the right cell group.
  • Fig. (C Fluorescent photograph when calcine treatment was performed on Fig. (C), and photograph (d) showing the state after 24 hours of HeLa cell culture.
  • FIG. 6a shows that a substrate provided with electrodes is placed on a substrate on which albumin is immobilized via a spacer, and an oxidizing potential is applied to this electrode to generate an oxidation pulse, and the albumin is localized.
  • FIG. 6B is a diagram schematically illustrating a state in which cultured cells are cultured by eliminating and modifying the cell non-adhesive activity of the cells.
  • FIG. 6B is a photograph showing the shape of the electrode part used.
  • c is a photograph showing the results of cell culture when the substrate with electrodes shown in FIG. 6b was used.
  • the first invention of this application is a culture control device capable of artificially controlling the adhesion position and extension direction of cells and tissues without requiring a large-scale device.
  • a cell non-adhesive substance having an activity of inhibiting adhesion of culture cells or tissues to a scaffold or the like is immobilized on a substrate by using a hydrophobic interaction, These electrodes are arranged near this substrate.
  • a substrate a semiconductor, a thin glass plate, or the like can be used, and is not particularly limited. Further, the arrangement of the electrodes can be arbitrarily changed, and the movement and operation thereof can be controlled by a computer connected to the electrodes.
  • an oxidation potential By applying an oxidation potential to the electrodes under the control of this computer, it is possible to locally generate active oxidizing species electrochemically. Wear. With this activated species, a non-cell adhesive substance can be modified into a cell adhesive substance. In other words, by applying an oxidation potential (or, if the application time is short, sometimes referred to as an oxidation pulse) to the electrode at any location on the substrate, active oxidizing species are generated, and cell adhesion occurs only at that location. The cell or tissue can adhere to the scaffold. Since the size of this electrode is small, these series of reactions are performed locally as described above. .
  • the cell adhesion area depends on the distance between the electrode and the substrate and the time of the electrode reaction, and is governed by the diffusion and supply of active chemical species generated at the tip of the electrode.
  • cell in this application may be a cultured cell of any origin, for example, a plant cell, an insect cell, or an animal cell, or a cell derived from a different species or a cell such as a collagen gel membrane, a cocoon thread, or a nylon mesh. It may be a fused cell with a cell. Of course, primary cells or cell lines may be used. Particularly, it is preferably an animal cell.
  • primary cells in animal cells chicken embryo-derived cells (PSG), rat primary cardiomyocytes, rat primary hepatocytes, mouse primary bone marrow cells, porcine primary hepatocytes, ', vascular endothelial cells
  • Examples include cord blood cells, human primary bone marrow hematopoietic cells, and human primary neurons such as dorsal root ganglion cells (DRG).
  • Examples of cell lines include CH0 cells derived from Chinese hamster ovary cells, HeLa cells derived from human uterine cancer, Huli7 cells derived from human liver cancer, and HepG2 cells. . 'Also, cells obtained by genetic manipulation such as plasmid introduction or virus infection into these cells can be used in the invention of this application.
  • the cells may be adhesive cells or floating cells, but the effect of the invention of this application can be more remarkably obtained when the cells are adhesive cells. Therefore, it is preferable.
  • tissue includes, for example, liver, heart, kidney, skin, bone, cartilage, bone marrow and the like, and tissues derived from these exemplified tissues.
  • a cell non-adhesive substance means that many cells and tissues often adhere to a scaffold in order for the cells to proliferate and elongate, and have a non-adhesive activity that inhibits this adhesion.
  • the second invention of this application is based on the fact that, when albumin is used as the cell non-adhesive substance in the above-mentioned culture control device, the speed of the albumin reforming reaction itself is extremely high.
  • a culture control device wherein the albumin is derived from bovine serum albumin (Bovine Serum Albumin; BSA).
  • BSA bovine Serum Albumin
  • the cell non-adhesive substance is not limited to albumin, but may be any substance as long as it has an activity of preventing cells from adhering to a substrate, that is, a scaffold.
  • examples of the type of albumin include fetal bovine serum (FBS), ovalbumin contained in egg white, lactalbumin in milk, and the like.
  • the invention of this application uses a denaturing agent or active oxidizing species to eliminate the non-adhesive activity of non-adhesive substances such as albumin and to allow cells and tissues to adhere to the scaffold. Become. That is, it can be modified into a cell adhesive substance.
  • the denaturing agent include guanidine hydrochloride and the like.
  • a culture control device characterized in that the active oxidizing species is an active halogen species generated by oxidizing a halide ion.
  • “Halide ion” refers to an ion of a halogen element belonging to Group 17 (7B) of the periodic table, and any halide ion can be used. Specifically, it refers to fluorine (F), chlorine (Cl), bromine (Br), iodine (I), or asthion (At).
  • These active halogen species are preferably hypobromous acid (HOBr) or hypochlorous acid (H0C1), and can be provided as the culture control device of the fifth invention.
  • a method for culturing cells or tissues using the culture control device of the above invention, and controlling the adhesion position and the extension direction of the cells or tissues at that time is provided.
  • an electrode is arranged near a substrate on which a cell non-adhesive substance such as albumin is immobilized, and a computer for controlling the operation of the electrode is connected to the electrode. Then, by applying an oxidation potential to an electrode under the control of the computer, an active oxidizing species is locally generated electrochemically, and the cell non-adhesive substance is modified into a cell adhesive substance. it can.
  • an active oxidizing species is locally generated electrochemically, and the cell non-adhesive substance is modified into a cell adhesive substance.
  • a control method characterized by performing the control method of the sixth invention step by step can be provided.
  • this control method four more new cells or tissues should be seeded, co-cultured with the previously cultured cells or tissues, and the adhesion position and elongation direction during this culture should be controlled.
  • the electrode is two-dimensionally scanned at an arbitrary position where cells and tissues are not cultured again on a substrate on which cells and tissues are already cultured, and an oxidation potential (oxidation pulse, etc.) is applied to the electrodes.
  • Active acid Generate species.
  • This active oxidizing species transforms the cell non-adhesive substance at any part (local) of the substrate into a cell-adhesive substance again, and inoculates it with a new culture cell or tissue. It can be performed.
  • the type and origin of the newly seeded cells and tissues are not particularly limited, and may be different from the previously cultured cell types and tissues. The type and origin of cells and tissues can be adopted as appropriate for the purpose of research, experiment, and the like. .
  • the invention of this application does not require a large-scale device, does not require patterning of the cell-adhesive and non-cell-adhesive regions prior to culturing the cells, and does not require artificial cells or tissues.
  • a culture control device and method that enable control of the adhesion position and the direction of elongation can be realized, and can be provided as innovative tools in a wide range of fields such as medical engineering and sensor engineering. In addition, it can be expected to have significant economic effects.
  • a glass plate was used as a substrate.
  • the substrate was washed and immersed in a solution of lOnM n-octadecyltri Q small xysilane_benzene for 2 hours to hydrophobize the substrate surface. :. Then, by immersing ⁇ Shi serum albumin (BSA) phosphate buffer (PBS) containing a solution (1 to 0. 5 mg 10 mg m Ji, pH 7. 4) for 30 minutes, by hydrophobic interactions with BSA The substrate was adsorbed and fixed on the substrate surface.
  • BSA Shi serum albumin
  • PBS phosphate buffer
  • Example 2 Effect of sodium hypobromite on BSA
  • NaBrO sodium hypobromite
  • HBrO hypobromic acid
  • An arbitrary portion of the substrate was immersed in a NaBrO solution (a solution obtained by diluting 9% of effective bromine NaBrO with PBS 10-fold) on a substrate having BSA immobilized on the entire surface of the substrate.
  • a NaBrO solution a solution obtained by diluting 9% of effective bromine NaBrO with PBS 10-fold
  • HeLa cells were seeded on the substrate as cultured cells and cultured. The results are shown in Figure 1a. Fluorescence staining was performed by a known method to confirm the results.
  • the left side of the dashed line is the one without NaBrO treatment, and the right side of the dashed line is the one with NaBrO treatment.
  • HeLa cells adhere to the substrate surface and are cultured by performing NaBrO treatment. This is thought to mean that BSA lost its cell non-adhesive activity and was modified to have cell adhesion.
  • the effect of sodium hypobromite on BSA was evaluated by surface plasmon (SPR) measurement using a surface plasmon biosensor (SPR 670M, Nippon Laser Iden).
  • SPR surface plasmon
  • the NaBrO solution is brought into contact with the substrate on which BSA is immobilized, a decrease in the resonance angle is observed, as shown in Fig.lc, and when the culture solution containing serum is further brought into contact, the resonance angle increases. confirmed.
  • BSA immobilized on the substrate is oxidized by the NaBrO solution (ie, HBrO), so that serum proteins are easily adsorbed on the substrate. It can be thought that it will be. That is, the adhesion of cells to the substrate is promoted by the adhesion of cell-adhesive substances (in this case, cell-adhesive proteins) such as fibronectin (FN) and laminin (LN) contained in serum to the substrate. It is considered that.
  • cell-adhesive substances in this case, cell-adhesive proteins
  • FN fibronectin
  • LN laminin
  • the substrate on which a cell non-adhesive substance such as BSA is immobilized is exposed to an aqueous solution of a denaturing agent such as guanidine hydrochloride. Disappears, and the cultured cells can adhere and proliferate on the substrate surface. .
  • the electrodes used to generate the active halogen species were made as microelectrodes.
  • a platinum (Pt) wire thinned by electrolytic etching was inserted into a glass cavity, and the glass was melted by heating, and the Pt wire was sealed in the cavity.
  • the tip of the cavities was polished to expose the Pt portion, thereby producing a Pt microdisk electrode.
  • the electrode radius was determined to be 15 Aim from the portamograph obtained in a 4 mM potassium ferrocyanide solution.
  • the tip diameter including the insulating glass portion was about.
  • the fabricated electrode was installed near the substrate and under the control of the convenience. In other words, the electrode position was determined by using a step pin under a computer control. An Ag / AgCl electrode was used as a reference electrode, and the oxidation current of halide ions was controlled by a computer.
  • FIG. 2a is a diagram schematically illustrating the modification of BSA on a local area of a substrate using HOBr generated by a microelectrode.
  • Figure 2b shows the Br-oxidation potential.
  • FIG. 2 is a photograph and a diagram showing a state in which HeLa cells are cultured after addition.
  • the BSA-immobilized substrate prepared in Example 1 was treated with an aqueous solution containing 25 mM KBr, 0.1 M KC1, and 0.1 M phosphate buffer (pH 7.5). And the distance between the microelectrode and the substrate was kept at (! ⁇ 5 m. By applying a 1.7V oxidation potential to the electrode, HOBr was generated locally on the substrate, and BSA on the substrate was Cell non-adhesive activity was modified to cell adhesiveness.
  • Oxidation potential was applied to the electrodes for 60 seconds, and the BSA was locally placed on the substrate and scanned. HeLa cells were seeded and cultured as cultured cells. (4) The electrodes to which the oxidation potential was applied were placed, and HeLa cells could be grown only at the scanned locations.
  • HOC 1 is used to modify a cell-non-adhesive substance (BSA in this example) fixed to a substrate into a cell-adhesive substance, use 0.1M KC1, 0.1M phosphoric acid. Immerse in an aqueous solution containing buffer (pH 7.5) and apply 1.9V C1 monoxide potential to the electrode.
  • Example 4 Effect on culture in cultured cells by two-dimensional movement of electrodes
  • a microelectrode and a BSA-immobilized substrate were placed in the same manner as in Example 3 (2). Then, while maintaining the state where the oxidation potential was applied to the substrate electrode, the electrode was two-dimensionally scanned at a speed of 1250 im / s to modify the cell non-adhesive activity of BSA to cell adhesiveness. At this time, the pattern width changes depending on the moving speed of the electrode, and an array of single cells can be formed by moving the electrode at a high speed. The movement of the electrodes is performed under the control of a computer, and any pattern culture can be performed. By using this feature, it is possible to control the direction of axon extension in the case of nerve cells. The results were as shown in FIGS. FIG.
  • FIG. 3 is a photograph showing a state in which BSA is modified by two-dimensionally scanning an electrode in a spiral shape, and HeLa cells are seeded and cultured as cultured cells. As shown in FIG. 3, the HeLa cells adhered spirally and proliferated.
  • Fig. 4a is a photograph showing dorsal root ganglion cells (DRG) cultured by a conventional method
  • Fig. 4b is the result of seeding DRG on a BSA-modified substrate. It is a photograph.
  • DRG dorsal root ganglion cells
  • cells can be cultured along the pattern (shape) by two-dimensionally scanning the electrode in an arbitrary pattern (shape) while maintaining the electrode potential.
  • Example 3 (2) the operation of Example 3 (2) was performed on the substrate on which the cells had already been cultured to locally modify the cell non-adhesive activity, and the culture cells were seeded and cultured at this location.
  • the step of performing is schematically illustrated.
  • Example 3 (2) by repeating the electrode operation of Example 3 (2), even if the substrate has already been cultured cells, another cultured cell can be seeded at an arbitrary location later. It can be cultured. Of course, by repeating such an electrode operation stepwise, it is possible to inoculate and cultivate cultured cells (even heterologous cells) in multiple steps. '.
  • Figure 5b shows HeLa cells divided into two groups and subjected to pattern culture. Also, as shown in Fig. 5c, before performing cell culture on the right cell population, luciferin treatment was performed, so it was confirmed that only the left cell population was fluorescently stained. It was done.
  • Figure 5d is a photograph showing the state after 24 hours of culture. As shown in Fig. 5d, it was confirmed that the cell population was cultured in a circular shape only at the site where local modification was performed by operating the electrode.
  • a substrate with electrodes is installed on a substrate on which BSA is immobilized via a spacer, and active octogens are generated from the electrodes as in Example 3 (2). Then, only the portion corresponding to the electrode portion was made to lose and modify the cell non-adhesive activity of BSA, and the cultured cells were cultured.
  • the results were as shown in FIGS. 6b and 6c.
  • the electrode portion was arranged at the bold line portion shown in FIG. 6B, and a substrate having the electrode portion was used to apply a peroxidation potential for 10 seconds.
  • HeLa cells were seeded on the modified BSA-immobilized substrate and cultured. As shown in Fig. 6c, it was confirmed that the cultured cells (in this example, HeLa cells) adhere, proliferate, and are induced along the shape of the electrode portion.

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Abstract

細胞または組織を培養し、その際の細胞または組織の接着位置および伸長方向を制御する培養制御装置であって、細胞非接着性物質が固定化された基板、この基板近傍に配置された電極、そしてこの電極の機能および動作を制御するためのコンピュータとを有し、この電極に酸化電位を印加することによって、電気化学的に活性酸化種が生成され、基板に固定された細胞非接着性物質を細胞接着性物質へと改質させることを特徴とする。

Description

明細書 細胞または組織の培養制御装置とその方法 技術分野
この出願の発明は、 細胞または組織の培養制御装置とその方法に関す るものである。 さらに詳しくは、 この出願の発明は、 大掛かりな装置を 必要とせず、 人為的に細胞または組織の接着位置および伸長方向の制御 を可能とする培養制御装置とその方法に関するものである。 背景技術
細胞には、 接着、 成長、 増殖、 分泌、 遺伝子発現等数多くの機能を有 し、 複雑なネットワークを形成して、 多種多様な生理機能を発揮してい る。 このような複雑な生命現象を解明するために、 様々なアプローチが 考えられ、 その一つの方法として、 培養細胞の接着位置や伸長方向を制 御し、 任意のパターンにて培養育成するパターン培養が考えられている。 この培養細胞のパターニングを制御する方法について、 .数多く研究ゃ検 討がなされてきている。 たとえば、 フォトリソ;ダラ-スィ; を用 ,たパ夕 —ン培養方法が提案されている (Yoshihiro. I to, Bioma.terial s 20 ; 2333-2342, 1999)。 この方法は、 予め培養細胞の接着位置等のパターン をマイクロチップに写したマスク (あるいは、 ネガ) と呼ばれるものを 使用して、 基板にパターンを転写することを特徵とするフォトリソグラ フィ一を利用している。 このフォトリソグラフィ一によって、 基板上に 細胞接着性と細胞非接着性の領域をパターンエングしておき、 培養細胞 のパターン培養に用いている。 しかしながら、 フォトリソグラフィ一に 用いられる各種の試薬類 (有機系溶剤) は、 細胞や組織等の培養の際に 細胞接着の足場等として利用されるポリスチレン等の多くのポリマー 材を溶解する等の悪影響があり、 培養細胞の足場が失われ、 良好な培養 条件を保つことが困難であるという問題あった。
近年、 ポリジメチルシロキサン (PDMS) を用いたパターン培養方法が 開発された (Ravi S. Kane, S uichi Takayaia, et al. , Biomaterial s 20 ; 2363-2376, 1999)。 このパターン培養方法は、 パターンを産生する のにゴム状の高分子であるポリジメチルシロキサン (PDMS) で作製した 微細構造を有する表面を利用して、 細胞接着物質を基板に転写するソフ トリソグラフィ一と呼ばれる技術を基にしている。 このような PDMS を 用いた技術を採用することによって、 培養基板に対するフォトリソグラ フィ一が不要となり、 上記のような有機系溶剤による足場の溶解等が生 じることなく、 培養条件への悪影響を減少することができる。
しかしながら、 上記に例示したパターン培養では、 PDMSの表面加工に フォトリソグラフィ一、 あるいは、 電子ビームリソグラフィーを基盤と しているため、 大掛かりな装置が必要となり、 コスト等がかかってしま うという.問題があった。 また、 細胞接着性と細胞非接着性の領域を細胞 の培養に先立つて、 'パターニングする必要があり 細胞が接着する場所 の規定に限定され、 引き続いて生じる細胞の伸長や増殖の位置制御する ことが困難で 'あり、 さらに複数種類の細胞を段階的にバタ i ニングする ことも困難であった。 このような問題は、 基板の表面を細胞非接着性と し、 任意の箇所を細胞接着性に改質、 変化させることによって、 解決す ると期待できるが、 このような技術は未だ報告、 あるいは発表されてい ない。
そこで、 この出願の発明は、 以上のとおりの事情に鑑みてなされたも のであって、従来技術の問題点を解決し、大掛かりな装置を必要とせず、 細胞接着性と細胞非接着性の領域を細胞の培養に先立って、 パターニン グする必要もなく、 人為的に細胞または組織の接着位置および伸長方向 の制御を可能とする培養制御装置とその方法を提供することを課題と している。 発明の開示
この出願の発明は、 前記の課題を解決するものとして、 第 1には、 細 胞または組織を培養し、 その際の細胞または組織の接着位置および伸長 方向を制御する培養制御装置であって、 細胞非接着性物質が固定化され た基板、 この基板近傍に配置された電極、 そしてこの電極の機能および 動作を制御するためのコンピュータとを有し、 この電極に酸化電位を印 加することによって、 電気化学的に活性酸化種が生成され、 基板に固定 された細胞非接着性物質を細胞接着性物質へと改質させる; tとを特徴 とする培養制御装置を提供する。
またこの出願の発明は、 第 2には、 細胞非接着性物質が、 アルブミン であることを特徴とする培養制御装置を、 第 3には、 アルブミンが、 ゥ シ血清アルブミン (Bovine Serum Albumin ; BSA) 由来であることを特 徵とする培養制御装置を、 第 4には、 活性酸化種が、 ハロゲン化物ィォ ンを酸化させて生成された活性ハロゲン種であることを特徴とする培 養制御装置を、 第 5には、 活性ハロゲン種が、 次亜臭素酸.(HOBr) また は次亜塩素酸(H0C1)であることを特徴とする培養制御装置を提供する。 さらにまた、 この出願の発明は、 第 6には、 上記第 1から第 5の発明 のいずれかの培養制御装置を用いて、 細胞または組織を培養し、 その際 の細胞または組織の接着位置および伸長方向を制御する方法であって、 細胞非接着性物質が固定化された基板の近傍に電極が配置され、 またこ の電極の機能および動作を制御するためのコンピュータが電極と連結 設置され、 このコンピュータの制御下にある電極に酸化電位を印加する ことによって、 電気化学的に活性酸化種を生成させ、 基板に固定された 細胞非接着性物質を細胞接着性物質へと改質させることによって、 細胞 または組織の接着位置および伸長方向を制御することを特徴とする制 御方法を提供し、 そして、 第 7には、 第 6の発明の制御方法を段階的に 行うことによって、さらに新たな細胞または組織を播種し、共培養して、 この培養に際した接着位置および伸長方向を制御することを特徵とす る制御方法を提供する。 図面の簡単な説明
図 1は、 BSAに対する次亜臭素酸ナトリゥムの効果を示した図であり、 aは細胞の培養状態を蛍光染色して確認した写真を、 bおよび cは表面 プリズモン測定の結果をそれぞれ示している。
図 2 aは、マイクロ電極で生成した HOBrを用いる基板の局所における BSA.を改質する様子を模式的に例示した図であり、 図 2 bは、 ΒΓ酸化パ ルス':酸化電位を電極に印加し、 碁板のアルブミンを改質した後に、 HeLa 細胞を培養した様子を示した写真と図である。
図 3は、 渦巻状に電極を 2次元走査して、 酸化パルス酸化電位を電極 に印加したじて、 基板に細胞を培養した様子を示した写真 ある。
図 4は、 酸化電位による基板上のアルブミンの改質前 (a) と改質後 (b) の後根神経節細胞の培養状態をそれぞれ示した写真である。
図 5は、 既に細胞を培養されている基板に対して、 局所的に酸化パル ス酸化電位を電極に印加して局所的に細胞非接着活性を改質させ、 この 箇所に培養細胞を播種 ·培養を行う工程を概略的に例示した図 )であ り、 その結果として、 HeLa細胞培養 2時間の様子を示した写真 (b)、 右 側細胞群のパターン培養前にカルセィン処理を行った場合の蛍光写真 図 (c:)、 HeLa細胞培養 24時間後の様子を示した写真 (d) である。
図 6 aは、 アルブミンを固定化した基板にスぺ一サ一を介して電極部 を備えた基板を設置し、 この電極部に酸化電位を印加から酸化パルスを 発生させ、 局所的に.アルブミンの細胞非接着活性を消失させ、 改質させ て、 培養細胞を培養する様子を模式的に例示した図であり、 図 6 bは、 使用した電極部の形状を示した写真であり、 図 6 c は、 図 6 b に示した 電極部付き基板を使用した場合の、 細胞培養の結果を示した写真である。 発明を実施するための最良の形態
この出願の発明は、 上記のとおりの特徴をもつものであるが、 以下に その実施の形態について詳しく説明する。
この出願の第 1の発明は、 大掛かりな装置を必要とすることなく、 細 胞ゃ組織の接着位置や伸長方向等を人為的に制御することができる培 養制御装置である。 この培養制御装置では、 培養細'胞.や組織が足場等に 接着することを阻害する活性を有する細胞非接着性物質を、 疎水化相互 作用を利用して基板に固定化し、 またマイクロ電極等の電極をこの基板 近傍に配置させている。 基板としては、 半導体やガラス薄板等が利用す ることができ、. 特段限定されるものではない。 また、 電極は、 任意に配 置変更することができ、 その移動や動作等は、 電極と連結されているコ ンピュー夕によって制御することができる。
そして、 このコンピュータの制御下にある電極に酸化電位を印加する ことによって、 電気化学的に活性酸化種を局所的に生成させることがで きる。 この活性化種によって、 細胞非接着性物質を細胞接着性物質へと 改質することができる。 すなわち、 基板の任意の箇所で、 電極に酸化電 位 (あるいは、 印加時間が短いのなら酸化パルスともいうことがある) を印加することによって、 活性酸化種が生成され、 その箇所のみを細胞 接着性物質に改質させることができ、 細胞、 あるいは組織が足場に接着 することができるようになる。 この電極のサイズは、 小さいため、 これ ら一連の反応は、 上記のとおり局所的に行われる。 .
なお、 細胞接着面積は、 電極と基板間の距離、 また電極反応の時間依 存しており、 電極先端で生成された活性化学種の拡散供給に支配されて いる。
この出願における 「細胞」 とは、 いかなる由来の培養細胞でもよく、 たとえば植物細胞、 昆虫細胞、 動物細胞があり、 また異種由来の細胞同 士あるいは細胞とコラーゲンゲル膜、 繭糸、 ナイロンメッシュ等の非細 胞との融合細胞でもよい。 もちろん、 初代細胞や株化細胞でもよい。 特 に動物細胞であることが好ましい。 さらに、 動物細胞における初代細胞 としでは、 ニヮトリ胚由来細胞(PSG)、 ラット初代心筋細胞、 ラット初 代肝細胞、 マウス初代骨髄細胞、 ブタ初代肝細胞、',ゥシ血管内皮細胞、 七卜初代臍帯血細胞'、 ヒト初代骨髄造血細胞、 後根神経節細胞(DRG)等 のヒト初代神経細胞等が例示される。 また、 株化細胞では、 チヤィニー ズ八ムスター卵巣細胞由来の CH0細胞、ヒト子宮ガン由来の. HeLa細胞、 ヒト肝ガン由来の Huli7細胞や HepG2細胞等が例示できる:。.'また、 これ ら細胞にプラスミ ド導入やウィルス感染等の遺伝子操作により得られ た細胞もこの出願の発明に用いることができる。
また、 細胞は、 接着性細胞あるいは浮遊性細胞でもよいが、 接着性細 胞であることが、 この出願の発明の効果をより顕著に得ることができる ため、 好ましい。
一方、 「組織」 とは、 たとえば肝臓、 心臓、 腎臓、 皮膚、骨、 軟骨、骨 髄等や、 これら例示した組織から派生して形成された組織等が挙げられ る。
この出願における、 細胞非接着性物質とは、 多くの細胞や組織は、 自 身が増殖 '伸長するためには、 足場に接着することが多く、 この接着を 阻害する非接着活性を有する物質のことを指す。 そこで、.この出願の発 明の第 2の発明は、 上記の培養制御装置において、 細胞非接着性物質と してアルブミンを用いた場合、 アルブミンの改質反応自体の速度はきわ めて高いため、 神経細胞、 心筋細胞、 内皮細胞等多くの培養細胞の接着 誘導が可能となり、 好ましい態様としている。 さらに、 第 3の発明とし て、'このアルブミンが、ゥシ血清アルブミン(Bovine Serum Albumin ; BSA) 由来であることを特徴とする培養制御装置を提供する。 もちろん、 細胞 非接着物質は、 アルブミンに限定されるものではなく、 細胞が、 基板、 すなわち足場に接着することを防ぐ活性を有するものであれば、 いかな るものでもよい。 アルブミンの種類においても、 ゥシ胎児血清(Fe t al Bovine Serum; FBS)、 卵白中に含有するオボアルブミン、 乳中のラクト アルブミン等を例示することができる。
. この出願の発明は、 変性剤や活性酸化種等を用いることによって、 ァ . ルブミン等の細胞非接着性物質の非接着活性を消失させ、 細胞や組織が 足場に接着することができるようになる。 すなわち、 細胞接着性物質へ と改質することができる。 なお、 変性剤としては、 グァニジン塩酸等が 例示できる。
この出願の発明は、 上記の通り変性剤あるいは活性酸化種いずれも使 用することができるが、 活性酸化種を使用することが好ましい。 すなわ ち、 第 4の発明として、 活性酸化種として、 ハロゲン化物イオンを酸化 させて生成された活性ハロゲン種であることを特徴とする培養制御装 置を提供する。 「ハロゲン化物イオン」 は、 周期表 17族 (7B) に属する ハロゲン元素のイオンのことであり、 いずれのハロゲン化物イオンも利 用することができる。 具体的には、 フッ素(F)、 塩素(Cl)、 臭素(Br)、 ヨウ素(I)またはァス夕チオン(At)のことである。 これら活性ハロゲン 種は、 次亜臭素酸.(HOBr) または次亜塩素酸 (H0C1) であることが好ま しく、 第 5の発明の培養制御装置として提供することができる。
さらにまた、第 6の発明として、上記の発明の培養制御装置を用いて、 細胞または組織を培養し、 その際の細胞または組織の接着位置および伸 長方向を制御する方法を提供する。 この制御方法は、 アルブミン等の細 胞非接着性物質が固定化された基板の近傍に電極が配置されており、 こ の電極の動作を制御するためのコンピュータが電極と連結設置されて いる。 そして、 このコンピュータの制御下にある電極に酸化電位を印加 することによって、 電気化学的に活性酸化種を局所的に生成させ、 細胞 非接着性物質を細胞接着性物質へと改質させることができる。 これによ つて:、 細胞または組織の接着位置および俾長方向を制御することができ る。
そして、 第 7の発明として、 第 6の発明の制御方法を段階的に行.うこ とを特徴とする制御方法を提供することができる。 この制御方法の場合 には、 さら 4こ新たな細胞または組織を播種し、 先に培養 ている細胞ま たは組織と共培養して、 この培養に際した接着位置および伸長方向を制 御することができる。 すなわち、 既に細胞や組織が培養されている基板 に対して、 再び細胞や組織が培養されていない任意の箇所に電極を 2次 元走査し、 そして酸化電位 (酸化パルス等) を電極に印加して、 活性酸 化種を生成させる。 この活性酸化種が、 再び基板の任意の箇所(局所的) の細胞非接着性物質を細胞接着性物質へと改質し、 そこに新たな培養細 胞あるいは組織を播種することによって、 パターン培養を行うことがで きる。 この際の新たに播種する細胞や組織の種類や由来は、 特に限定さ れるものではなく、 先に培養されている細胞種や組織由来とは、 異なる ものでもよい。 研究、 実験等の目的に合わせて、 細胞や組織の種類や由 来は、 適宜に採択することができる。 .
以上のような、 この出願の発明によって、 大掛かりな装置を必要とせ ず、 細胞接着性と細胞非接着性の領域を細胞の培養に先立って、 パター ニングする必要もなく、 人為的に細胞または組織の接着位置および伸長 方向の制御を可能とする培養制御装置とその方法が実現されることと なり、 医用工学やセンサ工学等の広い分野領域に革新的なツールとして 提供することができ、 産業的にも、 経済的にも大きな効果をもたらすこ とが期待することができる。
以下に実施例を説明し、 さらに詳しくこの出願の発明について説明す る。 もちろん、 以下の例によって発明が限定されることはない。 実施例
実施例 1 :基板の前処理
ガラス板を基板として用いた。 この基板を洗浄し、 lOnM n-ォク夕デ シルトリ Q小キシシラン _ ベンゼン溶液に 2時間浸し 基板表面を疎水 化させた。 :.次に、 ゥシ血清アルブミン(BSA)を含むリン酸バッファー (PBS)溶液(0. 5mgから 10mg mじ1、 pH 7. 4) に 30分間浸すことによって、 BSAを疎水化相互作用によって、 基板表面に吸着固定させた。 実施例 2 : BSAに対する次亜臭素酸ナトリウムの効果
( 1 ) 培養細胞を用いた検討
基板に固定化された BSA に対する次亜臭素酸ナトリウム (NaBrO) の 効果を評価した。 NaBrO は、 弱酸によって容易に分解され、 強い酸化力 を有する次亜臭素酸 (HBrO) を遊離するという特徴をもつ。 基板全面に BSA を固定化した基板に、 基板の任意の箇所を前記の特徴をもつ NaBrO 溶液 (有効臭素 9¾の NaBrOを PBSで 10倍希釈した溶液) に浸した。 次 に、 培養細胞として HeLa細胞をこの基板上に播種し、 培養を行った。 結果は、 図 1 a に示したとおりである。 公知の方法で、 蛍光染色を行 つて、確認した。破線の左側は、 NaBrO処理を行っていないものであり、 破線の右側は、 NaBrO処理を行ったものである。 NaBrO処理を行うこと によって、 HeLa細胞は基板表面に接着し、 培養されている。 これは、 す なわち、 BSAの細胞非接着性の活性が失われ、 細胞接着性へと改質され たことを意味すると考えられる。
( 2 ) 表面プラズモン(SPR)測定
BSA に対する次亜臭素酸ナトリゥムの効果を表面プラズモン(SPR)測 定を表面プラズモンバイオセンサ (SPR 670M、 日本レーザ一電子) を用 いて評価した。 基板全面に BSAを固定化した後に、 ·血清を含有する培養 液を流すと :、 図 l b に示したとおり、 BSA 固定化後のシグナルの基準で ある共鳴角度が増加した。 一方、 BSAを固定化した基板に. NaBrO溶液を 接触させると、 図 l c のとおり、 共鳴角度の減少が観測され、 さらに血 清を含む培養液を接触させると、 共鳴角度が増加するという結果が確認 された。
このような結果から、 基板に固定化された BSAは、 NaBrO溶液 (すな わち、 HBrO) で酸化されることで、 血清タンパク質が基板に吸着しやす くなると考えることができる。 すなわち、 血清中に含まれるフイブロネ クチン(FN)やラミニン(LN)等の細胞接着性物質 (この場合、 細胞接着性 タンパク質) が基板に接着することで、 細胞の基板への接着が促進され ることと考えられる。
なお、 図には示していないが、 BSA等の細胞非接着性物質が固定化さ れている基板を、 塩酸グァニジン等の変性剤の水溶液にさらすことによ つても、 BSAの細胞非接着活性が消失し、 培養細胞が基板表面に接着、 増殖することができる。 .
実施例 3 :電気化学的手法の利用
( 1 ) 電極の作製
活性ハロゲン種の生成に用いた電極はマイクロ電極として作製した。 電解エッチングにより細線化した白金(Pt)線をガラスキヤビラリ一に 挿入し、 加熱することによって、 ガラスを融解し、 キヤビラリ一内に Pt 線を封入した。 次に、 キヤビラリ一先端を研磨することによって、 Pt部 を露出させ、 Ptマイクロディスク電極として、 作製した。 4mM フエロシ アン化カリウム溶液中で得られてポルタモグラフから、 電極半径は 15 Ai mとした。また、絶縁ガラス部分を含むチップ径:は、約. とした。
( 2 ) 電極の操作、'制御
作製された電極は、 基板近傍に、 かつ、 コンビユー夕の制御の下にな るよう設置じた。 すなわち、 電極位置は、 コンピュータの.制御下にある ステツピン <グモ一夕一駆動型 xyzステージにマイク口電極を固定して用 いた。 なお、' 参照極として、 Ag/AgC l電極を用い、 ハロゲン化物イオン の酸化電流はコンピュータにて制御した。
図 2 aは、マイクロ電極で生成した HOBrを用いる基板の局所を BSAを 改質する様子を模式的に例示した図であり、 図 2 bは、 Br—酸化電位を印 加した後に、 HeLa細胞を培養した様子を示した写真と図である。
図 2 a に例示したように、 実施例 1で作製した、 BSA を固定化した基 板を 25mM KBr、 0. lM KC1、 0. 1M リン酸バッファ一 (pH 7. 5) を含有す る水溶液中に浸し、マイクロ電極一基板間の距離を (!〜 5 mに保持した。 そして、 1. 7Vの ΒΓ酸化電位を電極に印加することで、 基板局所に HOBr が生成され、 基板上の BSAの細胞非接着活性を細胞接着性へと改質させ た。
結果は、 図 2 bに示したとおりである。 電極に ΒΓ酸化電位を 60秒間 印加し、 BSAが固定化された基板に局所的に配置、 走査した。 そして、 培養細胞として HeLa細胞を播種 ·培養した。 ΒΓ酸化電位を印加された 電極を配置、 走査した箇所のみに HeLa細胞を育成することができた。 なお、 HOC 1を用いて、 基板に固定されている細胞非接着性物質 (実 施例においては BSA)を細胞接着性物質に改質する場合には、 0. 1M KC1、 0. 1M リン酸バッファ一 (pH 7. 5) を含む水溶液中に浸し、 1. 9V の C1一 酸化電位を電極に印加する。
実施例 4 :電極 2次元移動による培養細胞における培養への効果
実施例 3 ( 2 ) に.例示したと同様に、 マイクロ電極および BSA固定化 '済み基板を設置した。そして、 ΒΓ酸化電位を基板電極に印加した状態を 保持したまま電極を 1250 i m/sの速度で、 2次元走査して、 BSAの細胞 非接着活性を細胞接着性に改質させた。 この時、 電極の移動速度に依存 してパターン幅が変化し、 電極を高速移動することによって単一細胞の 配列を形成させることができる。 この電極の移動は、 コンピュータの制 御下で行われ、 任意のパターン培養を行うことができる。 この特徴を利 用することによって、 神経細胞の場合には、 軸索の伸長方向も制御する ことがで.きる。 結果は、 図 3および図 4に示したとおりであった。 図 3は、 渦巻状に 電極を 2次元走査し BSAを改質し、 培養細胞として HeLa細胞を播種 · 培養した様子を示した写真である。 この図 3に示したとおり、 HeLa細胞 は、 渦巻状に接着し、 増殖した。
また、図 4 aは後根神経節細胞(DRG)を通常の方法で培養した様子を示 した写真であり、 図 4 bは BSAを改質した基板に DRGを播種 '培養した 結果を示した写真である。 改質を行ってない場合は、 図 4a のように、 無秩序に増殖し、 その一方で図 4 b に示したとおり、 改質行った場合に おいては、 改質を行った箇所に沿って軸索が伸長することが確認された。
このように、電極電位を保持しながら、電極を任意のパターン (形状) で 2次元走査することによって、 そのパターン (形状) に沿って細胞を 培養することができることが確認された。
実施例 5 :培養細胞の再播種
図 5 a に、 既に細胞を培養されている基板に対して、 実施例 3 ( 2 ) の操作を行い、 局所的に細胞非接着活性を改質させ、 この箇所に培養細 胞を播種 ·培養を行う工程を概略的に例示した。
この図 5 a に例示したとおり、 実施例 3 ( 2 ) の電極操作を繰り返す ことによって、 既に培養細胞が培養されている基板であっても、 任意の 箇所に後から別の培養細胞を播種 ·培養することができる。 .もちろん、 このような電極操作を段階的に繰り返すことによって、 多段階的に培養 細胞 (異種の細胞も) を播種して、 培養することができる。' .
結果は、 図 5 b、 cおよび dに示したとおりである。 図 5 bは、 HeLa細 胞を 2つの群に分け、 パターン培養したものである。 また、 図 5 cに示 したように、 右側の細胞集団のパターン培養を行う前に、 力ルセイン処 理を行っているため、 左側の細胞集団のみが蛍光染色されることが確認 された。 図 5 d は、 培養 24 時間後の状態を示した写真である。 この図 5dに示したとおり、電極操作による局所的な改質をした箇所のみに円形 に細胞集団が培養されていることが確認された。
実施例 6 :アルブミン固定基板と基板電極の利用
図 6 a に例示したとおり、 BSA を固定化した基板にスぺーサーを介し て電極部を備えた基板を設置し、 電極部から実施例 3 ( 2 ) のように活 性八ロゲン種を発生させ、 この電極部に対応する箇所のみを BSAの細胞 非接着活性を消失させ、 改質させて、 培養細胞を培養した。
結果は、 図 6 bおよび図 6 cに示したとおりであった。 図 6 bに示した 太線箇所に電極部を配置させており、 この電極部を有する基板を用いて、 ΒΓ酸化電位を 10秒間印加させた。 次いで、 HeLa細胞をこの改質された BSA 固定基板に播種し、 培養を行った。 図 6 c のとおり、 電極部の形状 に沿って、 培養細胞 (本実施例では、 HeLa細胞) が接着、 増殖され、 誘 導されることが確認された。 産業上の利用可能性
この出願の発明によって、. 大掛かりな装置を必要とせず、 細胞接着性 と細胞非接着性の領域を細胞の培養に先立って、 'パターニングする必要 も.なく、 人為的に細胞または組織の接着位置および伸長方向の制御を可 能とする培養制御装置とその方法が提供される。

Claims

請求の範囲
1 . 細胞または組織を培養し、 その際の細胞または組織の接着位置お よび伸長方向を制御する培養制御装置であって、 細胞非接着性物質が固 定化された基板、 この基板近傍に配置された電極、 そしてこの電極の機 能および動作を制御するためのコンピュータとを有し、 この電極に酸化 電位を印加することによって、 電気化学的に活性酸化種が生成され、 基 板に固定された細胞非接着性物質を細胞接着性物質へと改質させるこ とを特徴とする培養制御装置。
2 . 細胞非接着性物質が、 アルブミンであることを特徴とする請求項 1記載の培養制御装置。
3 . アルブミンが、 ゥシ血清アルブミン (Bovine Serum Albumin ; BSA) 由来であることを特徵とする請求項 2記載の培養制御装置。
4 . 活性酸化種が、 ハロゲン化物イオンを酸化させて生成された活性 ハロゲン種であることを特徴とする請求項 1から 3いずれかに記載の 培養制御装置。
5 . 活性ハロゲン種が、 次亜臭素酸 (HOBr) または次亜塩素酸 (H0C 1). であることを.特徴とする請求項 4記載の培養制御装置。
6 . 請求項, 1.から 5いずれかに記載の培養制御装置を用いて、 細胞ま たは組織を培養し、 その際の細胞または組織の接着位置おょぴ伸長方向 を制御する方法であって、 細胞非接着性物質が固定化された基板の近傍 に電極が配置され、 またこの電極の機能および動作を制御するためのコ ンピュ一夕が電極と連結設置され、 このコンピュータの制御下にある電 極に酸化電位を印加することによって、 電気化学的に活性酸化種を生成 させ、 基板に固定された細胞非接着性物質を細胞接着性物質へと改質さ せることによって、 細胞または組織の接着位置および伸長方向を制御す ることを特徵とする制御方法。
7 . 請求項 6記載の制御方法を段階的に行うことによって、 さらに新 たな細胞または組織を播種し、 共培養して、 この培養に際した接着位置 および伸長方向を制御することを特徴とする制御方法。
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