WO2004106546A1 - Verfahren zur detektion von dna-punktmutationen (snp-analyse) sowie zugehörige anordnung - Google Patents

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WO2004106546A1
WO2004106546A1 PCT/EP2004/005829 EP2004005829W WO2004106546A1 WO 2004106546 A1 WO2004106546 A1 WO 2004106546A1 EP 2004005829 W EP2004005829 W EP 2004005829W WO 2004106546 A1 WO2004106546 A1 WO 2004106546A1
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detection
dna
label
temperature
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PCT/EP2004/005829
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Walter Gumbrecht
Peter Paulicka
Manfred Stanzel
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Siemens Aktiengesellschaft
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    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
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    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C12Q1/6837—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase using probe arrays or probe chips

Definitions

  • the invention relates to a method for the detection of DNA point mutations (SNP analysis) using a binding (hybridization) of target DNA to be detected to capture DNA immobilized on a position on a DNA chip.
  • DNA analysis using hybridization technology is a known method (in “Genetic Methods” G.Gassen and G. Sehrimpf, Spectrum Academic Publishing House Heidelberg, 1999, Chapter 11 "Blotting Methods and Hybridizations", pages 243 to 261).
  • DNA probe molecules so-called catcher oligonucleotides
  • catcher oligonucleotides are immobilized on a solid support material. Because of their specific affinity with the complementary sample DNA, they “capture” them by forming so-called hybrids, ie pairs of catcher and target molecule. This binding event is usually indicated by optical or enzymatic reporter molecules.
  • DNA analyzes are e.g. the detection of infectious agents, such as tuberculosis or HIV.
  • infectious agents such as tuberculosis or HIV.
  • Single nucleotide polymorphism or SNP's for short, places special demands on DNA analysis.
  • a capture molecule that consists of approximately 20 different nucleotides to be target molecules that are contained in only one Distinguish only one nucleotide, selectively binds or does not bind, since the binding energetic differences are very small, the requirements for the selectivity of the DNA sensor are very high.
  • DNA sensors are known from the prior art, for which reference is made, for example, to the unpublished DE 102 59 820 AI and DE 102 59 821 AI of the applicant.
  • the capture / target DNA hybrids are formed under specific boundary conditions, matching catcher / target DNA pairs having a higher binding energy than those which have a wrong base pairing. Due to the small binding energy differences in SNPs, "perfect match” and “single point mismatch” can often not be clearly differentiated.
  • this method has not been able to be tabulated as a robust and general method.
  • this method requires precise knowledge of the respective SNP energy differences in order to be able to set the individual electrical conditions, such as electrical potential, possibly pulse duration and intensity. DNA can be damaged by using high-energy pulses.
  • the method according to the invention advantageously makes use of the methodology of electrochemical detection, in particular of redox cycling in combination with an enzyme label or enzymatic amplification.
  • the enzyme used here preferably has thermal stability.
  • the DNA capture molecules are on a solid carrier material, preferably a silicon chip or an insulator provided with electrodes.
  • the sensor chip is connected to a microfluidic system including a precision pump.
  • Figures la, lb and lc the methodical procedure in the invention with three examples for predetermined temperature profiles, a liquid flow profile and with a sensor signal of a single hybridization position depending on the time, Figures 2 and 3 according to the sensor signals (current curves) Figure lc derived evaluation or melting curves with the initial slopes of the current or on the
  • FIG. 4 shows a schematically illustrated arrangement for carrying out the method
  • FIG. 5 and FIG. 6 shows the enlarged representation of two process states in the arrangement according to FIG. 4
  • FIG. 7 and FIG. 8 shows an exemplary embodiment for optical detection in the case of described SNP method
  • Figure 9 and Figure 10 shows an embodiment of the electrochemically enzymatic variant of the method.
  • a method for the detection of DNA point mutations is to be carried out using a binding, ie hybridization, of target DNA to be detected on capture DNA immobilized on a DNA chip in a position-specific manner:
  • a transducer chip e.g. a silicon chip or other, preferably planar arrays with at least one hybridization position and preferably electrochemical transducers e.g. in the form of micro-precious metal electrodes is loaded with at least one type of DNA capture probe.
  • the transducers have e.g. a diameter of 180 ⁇ m and a two-dimensional grid dimension of 200x200 ⁇ m.
  • the transducer array has several 10 to approx. 100 positions.
  • the sequences of the capture probes are selected in such a way that all four possible nucleotide variants of an SNP are spotted.
  • the chip is installed in a flow cell, which enables a thin layer of liquid over the hybridization positions of the chip, which form a transducer or sensor array.
  • the hybridization with the analyte DNA sample in particular a biotinylated PCR product, is carried out at a temperature at which all match but also mismatch hybrids can arise.
  • Streptavidin-enzyme conjugate is then coupled via the biotinylated target DNA.
  • a solution with the substrate specific for the enzyme is pumped over the sensor chip. The pump is preferably stopped at a constant temperature for 5-10 s, for example, and the initial slope of the current rise is measured.
  • the increase in current results from the fact that the label enzyme (for example a thermostable esterase) converts the enzyme substrate (corresponding to the enzyme, for example p-aminophenylacetate), the resulting reaction product (corresponding to p-aminophenol) is converted electrochemically at the transducer electrodes and thereby a reaction product proportional electric current is generated.
  • the increase in the electrical current results from the fact that the enzyme continuously supplies reaction product at the point of binding and thus an increase in the product concentration takes place, which is accompanied by an increase in the electrical current.
  • reaction product to be detected e.g. p-aminophenol
  • the reaction product to be detected is released on the bound label enzyme and can diffuse freely, or can be washed away with the stream of the enzyme substrate liquid.
  • Detection by means of preferably electrochemical conversion on electrodes or by optical detection, e.g. by measuring the absorption of suitable optically active reaction products can only take place if the flow rate of the enzyme substrate solution for detection is significantly reduced or is preferably set to zero.
  • the liquid pump is then started up again (a few ⁇ l / min) and the temperature is increased by a few ° C, eg 2 ° C, at the same time.
  • This measure on the one hand removes the enriched reaction products from the detection sites, and on the other hand the mis-target-target-DNA hybrids can be released by increasing the temperature and thus melting and transported away from the hybridization or detection positions.
  • the previously increased electrochemical signals are which is reset (not necessarily to zero, but only significantly reduced) and, on the other hand, a re-hybridization of the mismatched target DNA with the capture DNA is prevented due to the reduction in concentration. Only the reset sensor signals enable further measurements. For this purpose, after a few seconds, for example 20 s, the pump is stopped again for 5-10 s, for example, and the current rise is recorded again.
  • the above processes are repeated until all DNA target molecules have been successively separated from the capture probes according to their melting points.
  • the melting curves thus obtained i.e. the current increases of all transducer positions as a function of temperature are evaluated. This is done in particular computer-controlled according to a predetermined software program.
  • thermostable enzymes such as a thermostable esterase was used.
  • the measurement methodology described is illustrated with reference to FIG. 1.
  • the time is plotted in the same scale as the abscissa, the temperature between 50 ° C. and 60 ° C. as the ordinate in FIG. La and the flow in non-scaled units and in FIG. 1b in FIG lc the sensor signal (redox cycling current) is plotted.
  • the temperature is increased in predeterminable steps or linearly, with the flow being changed correlated (synchronously).
  • the flow is preferably changed, in particular set to zero, in each case after a constant temperature has been set. If the melting temperature of the catcher-target-DNA hybrid has been reached, the target DNA including the enzymatic label will detach itself from the catcher DNA under the laws of statistical distribution and will be separated from the respective one by the liquid flow
  • Transducer position removed and preferably rinsed in a waste container.
  • the target-catcher DNA hybrids whose melting temperature has not yet been reached remain in their hybridization position.
  • the washing liquid contains enzyme-specific substrate which is converted into product by the still bound enzyme labels, which in turn accumulates at the hybridization positions due to the changed (in particular set to zero) flow, diffuses to the sensor electrodes and can be electrochemically detected.
  • FIG. 1c there is thus a significant increase in the current measured value, which in each case characterizes the intact hybridization of a catcher / target DNA pair.
  • the initial slope of the current rise is used for the evaluation.
  • new liquid reaches the hybridization positions, whereby further molecules of the same measuring point or first molecules from other measuring points with a higher melting temperature are melted and washed away.
  • FIG. 3 shows the measured values standardized from FIG. 2
  • the factor V in the factor V PCR product is a gene that is important for blood clotting.
  • the initial slopes of the current measurement values (dl / dt), as in the example of a transducer or measurement position from FIG. 1c, are plotted in FIGS. 2 and 3 as a function of the respectively set temperature value.
  • Significant, in particular sigoidal, titration curve-like curve profiles 31, 32 result for individual catcher / target DNA pairs. It is important that matching catcher / target DNA pairs have a significantly different signal course or a different position of the curve along the abscissa than mismatching catcher / target DNA pairs. In particular, the melting process and the associated drop in the melting curve occur in matching pairs
  • FIG. 4 shows a general arrangement with a specifically used measurement setup, consisting of a chip with several hybridization positions 5, 5 ..., 5 n ':
  • a so-called DNA chip is designated by 1, as it is vo prior art is known.
  • Such a DNA chip 1 has a plurality of measuring positions 5, 5 ⁇ , ..., 5 n on its surface 2, for example in the form of an array.
  • Capture DNA molecules are arranged immobilized at each measurement position 5, 5 X ,... 5 n> , for example the capture DNA 100 at the immobilization point 6.
  • a target DNA 200 can attach to the capture DNA 100.
  • the target DNA 200 can be labeled.
  • the label can be an enzyme as a biocatalytic label, in which case the enzyme label preferably contains a thermostable enzyme.
  • the individual measuring points for the immobilization of the catcher DNA 100 are designated in all the following figures with 5, 5 ', ... 5 n ⁇ .
  • the chip 1 which is formed from silicon or another semiconductor material, amplifier and measurement structures, which are generally designated 3, can already be introduced.
  • the chip 1 can also consist of an insulating material with metallic electrodes without integrated signal processing.
  • a device 10 for exact temperature setting or temperature control is assigned to the measuring chip 1.
  • Peltier elements or the like are suitable for this.
  • a temperature measurement is carried out on the chip and / or, if appropriate, on the temperature control device.
  • the surface 2 as the measuring side of the chip 1 faces a flow channel 20 through which all substances necessary for the analysis process, such as target DNA 200 and possibly labeling enzyme, or from a reservoir 40 washing liquid with possibly enzyme-specific substrate S with a predetermined River are fed. It is a flow control 30, which maintains an exact flow for a predetermined time interval and which ensures a defined flow stop, and also a receptacle or waste container 50 for substances that are no longer required. With the arrangement described with reference to FIG. 4, it is in particular possible to guide a washing liquid provided with enzyme substrate S as a thin liquid layer over the chip under precise temperature control. Predeterminable flow control and precise measurement and evaluation are possible.
  • FIGS. 5 and 6 show two process states in general form, starting from the chip 1, the associated thermostat 10 and the flow channel 20.
  • the capture DNA 100 and the target DNA 200 with the individual polymorphisms and the associated point mutations are shown in an enlarged representation.
  • all of the catchers 100 bind the target DNA 200, the so-called match bonds AT, GC in particular, but also the mismatch bonds G // A, C // A and A // A are present. It is obvious that the match bonds are stronger than the mis-match bonds.
  • a state with thermostatting of, for example, 60 ° C. is shown specifically in FIG. 6, at which temperature the mismatch bonds are melted, so that the mismatch target DNA is subsequently washed away.
  • the washed away target DNA molecules can be rinsed up to the waste container 50. However, it is also sufficient to remove the washed away target DNA molecules only a short distance from the measurement position so that they can no longer be detected from any measurement position.
  • FIGS. 7/8 on the one hand and FIGS. 9/10 on the other hand show two alternative measurement options.
  • FIGS. 7 and 8 are based on FIGS. 4 and 5/6, the target DNA 200 being provided with a fluorescence label F. With such a fluorescence-labeled target DNA 200, an optical reading is possible. The optical signals 75 are recorded and evaluated in a precise position using a spectrometer which is not shown in detail in FIGS. 7 and 8.
  • S is an enzyme substrate
  • E is an enzyme label
  • P is the reaction product
  • the target DNA molecules 200 are provided with the enzyme label E, the arrows indicating the enzymatically catalyzed reaction and the diffusion of the reaction products P at the electrical measuring positions.
  • the measuring positions 5, 5 ⁇ , ..., 5 n 'of the chip 1 there are electrochemical signal recorders or transducers 95, 95', in connection with the signal transmission structures 3 already mentioned in the silicon of the chip 1 such an electrical signal such as a current can be detected, which represents a measure of the concentration of the reaction product P.
  • FIGS. 7 and 8 the two states at a temperature of 50 ° C. and a temperature of 60 ° C. are again shown in FIG. 9 and FIG. 10.
  • a particular advantage of the enzymatic / electrochemical process is the fact that, in contrast to e.g. optical method is largely independent of a background signal, since the current increase dl / dt is used for the evaluation and not the absolute current signal itself. This means that it is not necessary for the enzyme-labeled target DNA, as well as the reaction product P generated by it, into the Rinse waste bin. Only the concentration of the reaction product P specific to the measuring position has to be reduced by briefly rinsing. As a result, it is also sufficient to simply pump the washing liquid back and forth in the subsequent rinsing processes, thus saving washing liquid, which is particularly advantageous in the case of integrated and miniaturized embodiments.
  • label-free detection of the bound target DNA 200 is also possible.
  • optical label-free detection the intrinsic changes in UV absorption when the DNA double strands are melted are recorded.
  • the process of intrinsic guanine oxidation is used in the case of electrical label-free detection.
  • Another label-free detection can be done using electrochemical impedance methods.
  • label-free detection is also possible by measuring the mass change, ie gravimetrically, for example using acoustic methods such as surface wave sensors (so-called SAW ⁇ s).
  • the measurement and associated evaluation can be automated. This is how it can be applied. Depending on this, the respective flow profile takes place, in which on the one hand the melted mismatch bonds are rinsed away when a predetermined temperature is set and on the other hand the position-specific bound target DNA is detected in the case of “non-moving” washing liquid.

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Abstract

Bei der SNP-Analyse wird eine DNA-Hybridisierung ausgenutzt und ein DNA-Chip verwendet. Im Einzelnen wird in einem defi-nierten zeitlichen Ablauf eine zu analysierende flüssige DNA-Probe über den DNA-Chip geleitet. Nach erfolgter Hybridisie-rung unter niedrigen Stringenzbedingungen wird die Tempera-tur definiert verändert, so dass Fänger/Ziel-DNA-Hybride auf-geschmolzen werden, wobei das Aufschmelzen der Fänger/Ziel-DNA-Hybride in Abhängigkeit von der Temperatur detektiert und ausgewertet wird. Es ist neben dem bekannten DNA-Chip (1) we-nigstens eine Einrichtung (10) zur Temperatursteuerung bzw. -regelung und eine Einrichtung (20, 30) zum lateralen Anströ-men der Oberfläche (1) des DNA-Chips (1) vorhanden. Mit ge-eigneten Messmitteln können somit Faktoren für zusammenpas-sende (Match) Hybride und nicht zusammenpassende (Mismatch / single point Mismatch) Hybride erfasst und ausgewertet wer-den.

Description

Beschreibung
Verfahren zur Detektion von DNA-Punktmutationen (SNP-Analyse) sowie zugehörige Anordnung
Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Detektion von DNA-Punktmutationen (SNP-Analyse) , unter Ausnutzung einer Bindung (Hybridisierung) von nachzuweisender Ziel-DNA an auf einem DNA-Chip positionsspezifisch immobilisierter Fänger- DNA.
Die DNA-Analyse mittels Hybridisierungstechnik ist ein bekanntes Verfahren (in „Gentechnische Methoden" G.Gassen und G. Sehrimpf, Spektrum Akademischer Verlag Heidelberg, 1999, Kap. 11 „Blottingverfahren und Hybridisierungen", Seiten 243 bis 261) . Auf einem festen Trägermaterial werden DNA-Sonden- Moleküle, sog. Fänger-Oligonukleotide immobilisiert, die aufgrund ihrer spezifischen Affinität mit der komplementären Proben-DNA, diese „einfangen" indem sie sog. Hybride, d.h. Paare von Fänger- und Zielmolekül, bilden. Dieses Bindungsereignis wird üblicherweise durch optische oder auch enzymati- sche Reportermoleküle angezeigt.
Anwendung für solche DNA-Analysen ist z.B. die Detektion von Infektions-Erregern, wie Tuberkulose oder HIV. Eine besondere Anforderung an die DNA-Analytik wird bei sog. „Single Nucleo- tide Polymorphism" , kurz SNP's, gestellt. Hier ist es erforderlich, dass ein Fängermolekül, das aus ca. 20 verschiedenen Nukleotiden besteht, Zielmoleküle, die sich in nur einem ein- zigen Nukleotid unterscheiden, selektiv bindet bzw. nicht bindet. Da die bindungsenergetischen Unterschiede sehr klein sind, sind die Anforderungen an die Selektivität des DNA- Sensors sehr hoch.
DNA-Sensoren sind vom Stand der Technik bekannt, wozu beispielsweise auf die nichtvorveröffentlichte DE 102 59 820 AI und die DE 102 59 821 AI des Anmelders verwiesen wird. Die Bildung der Fänger/Ziel-DNA-Hybride erfolgt unter spezifischen Randbedingungen, wobei zueinander passende Fänger/Ziel- DNA-Paare eine höhere Bindungsenergie haben als solche, die eine Fehlbasenpaarung besitzen. Aufgrund der geringen Bin- dungsenergieunterschiede bei SNPs lassen sich „perfect match" und „single point mismatch" oftmals nicht eindeutig unterscheiden.
Letzteres Problem wurde bisher dadurch gelöst, dass bei den Analyseverfahren des Standes der Technik ein sog. „stringen- ter Waschschritt" eingeführt wurde, d.h. die Ionenstärke einer Waschflüssigkeit wurde so gewählt, dass die zunächst unspezifisch gebundenen „Single base mismatch" Zielmolküle von den Fängern getrennt werden, die „perfect match" Zielmoleküle jedoch an den Fängermolekülen gebunden bleiben. Ebenso sind noch aufwendigere optische Schmelzpunktanalysen möglich. Bei diesem Verfahren nutzt man die intrinsische Veränderung der Lichtabsorption beim Schmelzen des DNA-Doppelstranges und es ist kein optischer Label notwenig. Sowohl beim stringenten Waschen als auch bei der optischen Schmelzpunktanalyse, bei der außerdem relativ große Mengen an DNA benötigt werden und ein Spektrophotometer für die Detektion in flüssiger Phase unerlässlich ist, können die Bedingungen meist nur auf eine einzige SNP eingestellt werden. Befinden sich mehrere SNPs auf einem Sensor-Chip, so ist die Trennung aller Fehlpaarungen nicht möglich.
Bei der optischen Detektion von Schmelzkurven ist oftmals die erforderliche Stabilität des optischen Signals (intrinsische Aktivität der DNA, bzw. Label) für kontinuierliche Messungen, bzw. Wiederholungsmessungen nicht gegeben. Das Gleiche gilt für irreversible Detektionsverfahren. Insbesondere kann es erforderlich sein, dass der Chip nach dem stringenten Waschen getrocknet werden muss, bevor er einer optischen Auslesung zugeführt werden kann In „An Active Microelectronics Device for Multiplex DNA Ana- lysis", M. Heller, IEEE Engineering in Medicine and Biology, March/April 1996, Seiten 100 bis 104 wird weiterhin eine sog. „elektrische Stringenzbehandlung" beschrieben, bei der die Hybridisierung auf einem mit Elektroden versehenen Chip vorgenommen wird. Single-point-mismatch Hybride werden aufgrund des Poly-Anionen-Charakters der DNA durch negative Polarisierung der Elektroden getrennt. Dieses Verfahren hat sich jedoch nicht als robustes und allgemeines Verfahren e- tabueren können. Außerdem ist bei diesem Verfahren eine genaue Kenntnis der jeweiligen SNP-Energieunterschiede erforderlich um die individuellen elektrischen Bedingungen wie e- lektrisches Potential, evtl. Pulsdauer und Intensität einstellen zu können. Durch die Anwendung von energiereichen Pulsen kann die DNA beschädigt werden.
Davon ausgehend ist es Aufgabe der Erfindung, ein einfaches und robustes, wie auch schonendes und reversibles Verfahren, das in einem Arbeitsgang mehrere SNPs mit unterschiedlichen, idealerweise auch unbekannten Schmelz-Temperaturen sicher de- tektieren kann, vorzuschlagen und eine zugehörige Anordnung zur Durchführung des Verfahrens zu schaffen.
Die Aufgabe ist erfindungsgemäß durch die Abfolge der Verfah- rensschritte gemäß Patentanspruch 1 gelöst. Vorteilhafte Weiterbildungen sind in den abhängigen Verfahrensansprüchen angegeben.
Eine zugehörige Anordnung zur Durchführung des erfindungsge- mäßen Verfahrens ist Gegenstand des Patentanspruches 28. Weiterbildungen dieser Anordnung sind in den abhängigen Sachansprüchen angegeben.
In spezifischer Weiterbildung macht sich das erfindungsgemäße Verfahren vorteilhafterweise die Methodik der elektrochemischen Detektion, insbesondere des Redoxcyclings in Kombination mit einem Enzymlabel bzw. enzymatischer Verstärkung zunut- ze. Das dabei verwendete Enzym weist vorzugsweise eine thermische Stabilität auf. Die DNA-Fängermoleküle befinden sich auf einem festen Trägermaterial, vorzugsweise einem Silizium- Chip oder einem mit Elektroden versehenem Isolator.
Bei der erfindungsgemäßen Anordnung sind wenigstens eine Einrichtung zur Temperaturkontrolle bzw. -regelung der Flüssigkeit über den Hybridisierungspositionen des Chips sowie eine Einrichtung zur Regelung der Flüssigkeitsfließgeschwindigkeit und zugehörige Detektionsmittel vorhanden. Im Einzelnen ist dazu der Sensorchip mit einem Mikrofluidiksyste inkl. Präzisionspumpe verbunden.
Weitere Einzelheiten und Vorteile der Erfindung ergeben sich aus der nachfolgenden Figurenbeschreibung von Ausführungsbei- spielen. Es zeigen
Figur la, lb und lc das methodische Vorgehen bei der Erfindung mit drei Beispielen für vorgegebene Temperatur- profile, einem Flüssigkeitsflussprofil sowie mit einem Sensorsignal einer einzelnen Hybridisierungsposi- tion in Abhängigkeit von der Zeit, Figur 2 und 3 die aus den Sensorsignalen (Stromkurven) gemäß Figur lc abgeleiteten Auswerte- bzw. Schmelzkurven mit den Anfangssteigungen des Stroms bzw. den auf das
40°C Signal normierten Stromanstieg als Funktion der Temperatur, Figur 4 eine schematisch dargestellte Anordnung zur Durchführung des Verfahrens, Figur 5 und Figur 6 die vergrößerte Darstellung zweier Verfahrenszustände in der Anordnung gemäß Figur 4, Figur 7 und Figur 8 ein Ausführungsbeispiel zur optischen Detektion beim beschriebenen SNP-Verfahrens und Figur 9 und Figur 10 ein Ausführungsbeispiel zur elektroche- misch enzymatischen Variante des Verfahrens. Es soll ein Verfahren zur Detektion von DNA-Punktmutationen (SNP-Analyse) , unter Ausnutzung einer Bindung, d.h. Hybridisierung, von nachzuweisender Ziel-DNA an auf einem DNA-Chip positionsspezifisch immobilisierter Fänger-DNA durchgeführt werden:
Zur vorteilhaften Realisierung der SNP-Analyse wird insbesondere folgendermaßen vorgegangen: Ein Transducer-Chip, z.B. ein Silizium-Chip oder andere, vorzugsweise planare Arrays mit mindestens einer Hybridisierungsposition und vorzugsweise elektrochemischen Transducern z.B. in Form von MikroEdelmetall-Elektroden wird mit mindestens einer Art von DNA- Fängersonden beladen. Die Transducer haben z.B. einen Durchmesser von 180 μm und ein zweidimensionales Rastermaß von 200x200 μm. Das Transducer-Array besitzt mehrere 10 bis ca. 100 Positionen. Zur Realisierung von SNP-Analysen werden die Sequenzen der Fängersonden so ausgewählt, dass jeweils alle vier möglichen Nukleotid-Varianten eines SNP gespottet werden. Bei genauer Kenntnis der Schmelzbedingungen von Ideal- paarung (match) und Fehlpaarung (mismatch) kann auch mit einer einzigen Art von Fängersonde gearbeitet werden. Aus der Lage der Schmelzkurve kann dann auf Match oder Mismatch geschlossen werden. Um alle drei möglichen analytischen Situationen (l:nur Match, 2: nur Mismatch, 3: Match kombiniert mit Mismatch) sicher detektieren zu können, sind im einfachsten Fall zwei Messpositionen mit Match- bzw. Mismatch- Fängersonden erforderlich.
Zur praktischen Umsetzung der neuen Messmethode wird der Chip in eine Durchflusszelle eingebaut, die eine dünne Flüssigkeitsschicht über den Hybridisierungspositionen des Chips, die ein Transducer- oder Sensor-Array bilden, möglich macht. Die Hybridisierung mit der Analyt-DNA-Probe, insbesondere ein biotinyliertes PCR-Produkt, wird bei einer solchen Temperatur durchgeführt, bei der alle Match- aber auch Mismatch-Hybride entstehen können. Anschließend wird über die biotinylierten Ziel-DNA Streptavidin-Enzym-Konjugat angekoppelt. Nunmehr wird eine Lösung mit dem für das Enzym spezifischen Substrat über den Sensor-Chip gepumpt. Die Pumpe wird für z.B. 5-10 s vorzugsweise bei konstanter Temperatur gestoppt und die Anfangssteigung des Stromanstiegs wird gemessen. Der Stromanstieg resultiert aus der Tatsache, dass das Labelenzym (z.B. eine thermostabile Esterase) das Enzymsubstrat (dem Enzym entsprechend z.B. p-Aminophenylacetat) umsetzt, das daraus entstehende Reaktionsprodukt (entsprechend p-Aminophenol) an den Transducerelektroden elektrochemisch umgesetzt wird und dadurch ein dem Reaktionsprodukt proportionaler elektrischer Strom generiert wird. Der Anstieg des elektrischen Stroms resultiert aus der Tatsache, dass das Enzym am Ort der Bindung kontinuierlich Reaktionsprodukt nachliefert und somit ein Anstieg der Produkt-Konzentration stattfindet was mit einem Anstieg des elektrischen Stroms einhergeht.
Hervorzuheben ist, dass das zu detektierende Reaktionsprodukt (z.B. p-Aminophenol) am gebundenen Labelenzym freigesetzt wird und frei diffundieren kann, bzw. mit dem Strom der Enzymsubstratflüssigkeit weggespült werden kann. Eine Detektion mittels vorzugsweise elektrochemischer Umsetzung an Elektroden oder durch optische Detektion, z.B. durch Absorptionsmessung von geeigneten optisch aktiven Reaktionsprodukten, kann nur dann erfolgen, wenn die Fließgeschwindigkeit der Enzymsubstratlösung zur Detektion deutlich reduziert wird oder vorzugsweise auf Null gesetzt wird.
Anschließend wird die Flüssigkeitspumpe wieder in Betrieb ge- nommen (wenige μl/min) und gleichzeitig die Temperatur definiert um wenige °C, z.B. 2°C, erhöht. Durch diese Maßnahme werden zum einen die angereicherten Reaktionsprodukte von den Detektionsorten entfernt, zum anderen können die Mis atch- Ziel-Fänger-DNA-Hybride durch Temperaturerhöhung und somit Aufschmelzen gelöst und von den Hybridisierungs- bzw. Detek- tionspositionen wegtransportiert werden. Dadurch werden zum einen die vorher angestiegenen elektrochemischen Signale wie- der zurückgesetzt (nicht notwendigerweise auf Null, sondern lediglich deutlich reduziert) und zum anderen wird eine Re- Hybridisierung der fehlgepaarten Ziel- mit der Fänger-DNA aufgrund der Konzentrationsverminderung verhindert. Erst die zurückgesetzten Sensorsignale ermöglichen weitere Messungen. Dazu wird nach einigen Sekunden, z.B. 20 s, die Pumpe abermals für z.B. 5-10 s gestoppt und der Stromanstieg erneut aufgezeichnet .
Obige Vorgänge werden solange wiederholt, bis alle DNA- Zielmoleküle gemäß ihrer Schmelzpunkte nacheinander von den Fängersonden abgetrennt wurden. Die somit erhaltenen Schmelzkurven, d.h. die Stromanstiege aller Transducerpositionen als Funktion der Temperatur, werden ausgewertet. Dies erfolgt insbesondere rechnergesteuert nach vorgegebenem Software- Programm.
Das gesamte Verfahren ist nach ca. 10min abgeschlossen und stellt somit im Vergleich zum Stand der Technik ein besonders schnelles Verfahren dar, das aufgrund der Verwendung von en- zymatischer Verstärkung eine hohe Empfindlichkeit und deshalb auch hohe Verlässlichkeit aufweist.
Ein typischer Temperaturbereich zur Aufnahme von oben be- schriebenen Schmelzkurven ist ca. 40°C bis 70°C. Da Enzyme, insbesondere aus der Literatur bekannte Labelenzyrαe im allgemeinen nur bis ca. 40°C stabil sind, d.h. oberhalb dieser Temperatur denaturieren und somit ihre für die Messung notwendige katalytische Wirkung verlieren, werden erfindungsge- maß insbesondere thermostabile Enzyme, wie z.B. eine thermostabile Esterase eingesetzt.
Anhand Figur 1 wird die beschriebene Messmethodik verdeutlicht. In den Teilfiguren la, lb, lc ist jeweils als Abszisse die Zeit in gleicher Skalierung aufgetragen, wobei in Figur la als Ordinate die Temperatur zwischen 50°C und 60°C und in Figur lb der Fluss in nicht skalierten Einheiten und in Figur lc das Sensorsignal (Redoxcyclingstrom) aufgetragen ist. Man erkennt, dass die Temperatur in vorgebbaren Schritten bzw. linear erhöht wird, wobei damit korreliert (synchron) der Fluss geändert wird. Vorzugsweise wird jeweils nach Einstel- lung einer konstanten Temperatur der Fluss geändert, insbesondere auf Null eingestellt. Sofern die Schmelztemperatur des Fänger-Ziel-DNA-Hybrides erreicht ist, wird sich die Ziel-DNA inklusive der enzymatischen Markierung unter den Gesetzen der statistischen Verteilung von der Fänger-DNA lösen und wird durch den Flüssigkeitsstrom von der jeweiligen
Transducerposition entfernt und vorzugsweise in einen Abfallbehälter gespült. Die Ziel-Fänger-DNA-Hybride deren Schmelztemperatur noch nicht erreicht ist bleiben auf ihren Hybridisierungsposition erhalten. In der Waschflüssigkeit befindet sich enzymspezifisches Substrat das von den noch gebundenen Enzymlabeln zum Produkt umgesetzt wird, das seinerseits aufgrund des geänderten (insbesondere auf Null gesetzten) Flusses sich an den Hybridisierungspositionen anreichert, zu den Sensorelektroden diffundiert und elektrochemisch detektiert werden kann. In der Figur lc ergibt sich somit ein signifikanter Anstieg des Strommesswertes, der jeweils die intakte Hybridisierung eines Fänger/Ziel-DNA-Paares kennzeichnet. Insbesondere wird die Anfangssteigung des Stromanstiegs zur Auswertung herangezogen. Wenn die Temperatur erhöht wird und der Fluss auf den Ausgangswert zurückgeführt wird, gelangt neue Flüssigkeit zu den Hybridisierungspositionen, wobei weitere Moleküle der selben Messstelle bzw. erste Moleküle von anderen Messstellen mit höherer Schmelztemperatur aufgeschmolzen und weggespült werden.
Statt der Temperaturerhöhung in Rampenschritten entsprechend Kurve 21 kann ggf. ein Temperaturanstieg auch kontinuierlich oder nach vorgegebenem Profil entsprechend den Kurven 21 x bzw. 21' * erfolgen. Dabei braucht der Fluss entsprechend Kur- ve 22 nicht notwendigerweise gestoppt, sondern nur signifikant geändert werden. Es ergeben sich jeweils auf einander abgestimmten Profilkurven 21, 22 als Variable. Wesentlich ist die Einstellung jeweils eines stationären bzw. guasistationä- ren Zustandes. In Figur lc ist das Sensor-Signal, das beispielsweise als Stromwert gemessen wird, mit 23 und spezifische Steigungswerte des Sensorsignals mit 24 bezeichnet. Die Figur 2 zeigt die Schmelzkurven 31, 32 von mehreren
Match- (31) sowie mehreren Single-Base-Mismatch(32) - Hybridisierungspositionen für ein Faktor-V-PCR-Produkt, die an den positionsspezifischen Transducern gemäß Figur lc gemessen wurden, wobei der Stromanstieg dl/dt in nA/ in als Funktion der Temperaturaufgetragen ist.
Die Figur 3 zeigt die aus Figur 2 normierten Messwerte
Stromanstieg (T) /Stromanstieg (T=40°C) als Kurven 31 λ und 32 \ so dass die einzelnen Kurven ver- gleichbar sind. Beim Faktor V im Faktor-V-PCR-Produkt handelt es sich um ein Gen, das für die Blutgerinnung von Bedeutung ist.
Im Einzelnen sind in den Figuren 2 und 3 die Anfangssteigungen der Strommesswerte (dl/dt) , wie im Beispiel einer Transducer- bzw. Meßposition aus Figur lc in Abhängigkeit vom jeweils eingestellten Temperaturwert aufgetragen. Es ergeben sich signifikante, insbesondere sig oidale, titrationskurvenähnliche Kurvenverläufe 31, 32 für einzelne Fänger/Ziel-DNA-Paare. We- sentlich ist dabei, dass zueinander passende (match) Fänger/Ziel-DNA-Paare einen signifikant anderen Signalverlauf, bzw. eine andere Lage der Kurve entlang der Abszisse haben als nicht zueinander passende (mismatch) Fänger/Ziel-DNA-Paare. Insbesondere tritt der Schmelzvorgang und damit verbunden der Abfall der Schmelzkurve bei zueinander passenden Paaren
(Match) bei höheren Temperaturen als bei nicht zueinander passenden Fänger/Ziel-DNA-Paaren (Mismatch) auf.
In Figur 4 ist eine allgemeine Anordnung mit einem konkret verwendeten Messaufbau, bestehend aus einem Chip mit mehreren Hybridisierungspositionen 5, 5 ..., 5n' dargestellt: In Figur 4 ist ein sogenannter DNA-Chip mit 1 bezeichnet, wie er vo Stand der Technik bekannt ist. Ein solcher DNA-Chip 1 hat auf seiner Oberfläche 2 eine Vielzahl von Messpositionen 5, 5λ, ..., 5n beispielsweise in Arrayform. An jeder Messposition 5, 5X, ..., 5n> sind Fänger-DNA-Moleküle immobilisiert angeordnet, beispielsweise die Fänger-DNA 100 am Immobilisierungspunkt 6. An die Fänger-DNA 100 kann sich eine Ziel-DNA 200 anlagern. Die Ziel-DNA 200 können mit einem Label versehen werden. Das Label kann ein Enzym als biokatalytische Markierung sein, wobei die Enzymmarkierung in diesem Fall vorzugsweise ein thermostabiles Enzym beinhaltet.
Die einzelnen Messstellen für die Immobilisierung der Fänger- DNA 100 sind in allen nachfolgenden Figuren mit 5, 5', ... 5nλ bezeichnet. Im Chip 1, der aus Silicium oder einem ande- ren Halbleitermaterial gebildet ist, können vorzugsweise bereits Verstärker- und MessStrukturen, die pauschal mit 3 bezeichnet sind, eingebracht sein. Der Chip 1 kann aber auch aus einem isolierenden Material mit metallischen Elektroden ohne integrierte Signalverarbeitung bestehen.
Dem Mess-Chip 1 ist eine Einrichtung 10 zur exakten Temperatureinstellung bzw. Temperaturregelung zugeordnet. Dafür kommen beispielsweise Peltierelemente oder dergleichen in Frage. Eine Temperaturmessung erfolgt auf dem Chip und/oder gegebe- nenfalls auf der Einrichtung zur Temperaturregelung.
Die Oberfläche 2 als Messseite des Chips 1 ist einem Strömungskanal 20 zugewandt, durch den alle für den Analysenvorgang notwendigen Substanzen, wie Ziel-DNA 200 und ggf. Markierungs-Enzym, bzw. aus einem Reservoir 40 Waschflüssigkeit mit ggf. enzymspezifischem Substrat S mit vorgegebenem Fluss zugeführt werden. Es ist eine Flussregelung 30, die jeweils für ein vorgegebenes Zeitintervall einen exakten Fluss einhält und die einen definierten Fluss-Stopp gewährleistet, und weiterhin ein Aufnahme- bzw. Abfallbehälter 50 für nicht mehr benötigte Substanzen vorhanden. Mit der anhand von Figur 4 beschriebenen Anordnung ist es insbesondere möglich, eine mit Enzymsubstrat S versehene Waschflüssigkeit unter präziser Temperaturkontrolle als dünne Flüssigkeitsschicht über den Chip zu führen. Dabei ist eine vorgebbare Flusskontrolle und eine genaue Messung sowie Auswertung möglich.
In den Figuren 5 und 6 sind zwei Verfahrens-Zustände in allgemeiner Form dargestellt, wobei vom Chip 1, der zugehörigen Thermostatierung 10 und dem Durchflusskanal 20 ausgegangen wird. In vergrößerter Darstellung sind die Fänger-DNA 100 und die Ziel-DNA 200 mit den einzelnen Polymorphismen und den zugehörigen Punktmutationen dargestellt. Insbesondere ist ersichtlich, dass beispielsweise bei einer Temperatur von 50°C alle Fänger 100 die Ziel-DNA 200 binden, wobei insbesondere die sogenannten Match-Bindungen A-T, G-C aber auch die Mis- match-Bindungen G//A, C//A und A//A vorhanden sind. Es ist offensichtlich, dass die Match-Bindungen stärker als die Mis- match-Bindungen sind.
Speziell in Figur 6 ist ein Zustand mit einer Thermostatierung von beispielsweise 60°C dargestellt, wobei bei dieser Temperatur die Mismatch-Bindungen aufgeschmolzen sind, so dass anschließend die Mismatch-Ziel-DNA weggewaschen werden. Die weggewaschenen Ziel-DNA-Moleküle können bis zum Abfallbehälter 50 gespült werden. Es ist aber auch ausreichend, die weggewaschenen Ziel-DNA-Moleküle nur eine geringe Distanz von den Mess-Position zu entfernen, sodass sie von keiner Messposition mehr detektiert werden können.
Das Aufschmelzen der Mismatch-Bindungen kann positionsspezifisch in Abhängigkeit von der Temperatur detektiert und ausgewertet werden. Dafür sind in den Figuren 7/8 einerseits und in den Figuren 9/10 andererseits zwei alternative Messmög- lichkeiten dargestellt. Die Figuren 7 und 8 gehen aus von den Figuren 4 bzw. 5/6, wobei die Ziel-DNA 200 mit einem Fluoreszenz-Label F versehen sind. Bei solcher fluoreszenzmarkierter Ziel-DNA 200 ist eine optische Auslesung möglich. Die optischen Signale 75 werden mit einem in den Figuren 7 und 8 nicht im Einzelnen dargestellten Spektrometer positionsgenau erfasst und ausgewertet.
Aus dem Vergleich der Figuren 7 und 8 ergibt sich deutlich, dass bei Überschreiten der Schmelztemperatur, beispielsweise bei der Temperatur von 60°C, die Mismatch-Bindungen geschmolzen sind und die diesbezüglichen Ziel-DNA 200 einschließlich der Fluoreszenz-Label F weggespült sind. Insofern ergibt sich bei den Mismatch-Positionen ein reduziertes Signal.
Bei der bevorzugten, alternativen enzymatisch/ -elektrochemischen Messung wird eine enzymatisch katalysierte Reaktion zur Bildung eines Produktes P ausgenutzt, für die folgende Gleichung gilt:
E S → P,
wobei S ein Enzymsubstrat, E ein Enzymlabel und P das Reaktionsprodukt bedeuten.
In der Figur 9 sind die Ziel-DNA-Moleküle 200 mit dem Enzym- Label E versehen, wobei durch die Pfeile die enzymatisch katalysierte Reaktion und die Diffusion der Reaktionsprodukte P an die elektrischen Messpositionen angedeutet ist. An den Messpositionen 5, 5Λ, ..., 5n' des Chips 1 befinden sich e- lektrochemische Signalaufnehmer bzw. Transducer 95, 95', wobei in Verbindung mit den bereits erwähnten Signalverabei- tungsStrukturen 3 im Silicium des Chips 1 unmittelbar ein solches elektrisches Signal wie z.B. ein Strom erfasst werden kann, welches ein Maß für die Konzentration des Reaktionspro- duktes P darstellt. Entsprechend den Figuren 7 und 8 sind in Figur 9 und Figur 10 wiederum die beiden Zustände bei einer Temperatur von 50°C und einer Temperatur von 60°C gezeigt. Es ergeben sich somit im ersten Zustand durch Umsetzung von S in P an allen Messpo- sitionen vergleichsweise große elektrische Signale und im zweiten Zustand reduzierte bzw. keine Signale and den Mis- match-Positionen, jedoch ein vergleichsweise großes elektrochemisches Signal an der Match-Position. Die weggewaschenen Ziel-DNA-Moleküle, sowie weggewaschenes Reaktionsprodukt P können wiederum bis zum Abfallbehälter 50 gespült werden. Es kann aber auch ausreichend sein, die weggewaschenen Ziel-DNA- Moleküle und Reaktionsprodukte nur um eine geringe Distanz von den Mess-Positionen zu entfernen, so dass sie von keiner der vorhandenen Messpositionen mehr detektiert werden können.
Ein besonderer Vorteil des enzymatisch/elektrochemischen Verfahrens besteht in der Tatsache, dass es im Gegensatz zu z.B. optischen Verfahren weitgehend unabhängig von einem Hintergrundsignal ist, da der Stromanstieg dl/dt zur Auswertung he- rangezogen wird und nicht das absolute Stromsignal selbst. Dadurch ist es nicht nötig, dass die enymmarkierte Ziel-DNA, sowie durch sie generiertes Reaktionsprodukt P bis in den Abfallbehälter zu spülen. Es muss lediglich die messpositions- spezifische Aufkonzentration des Reaktionsproduktes P durch kurzzeitiges Spülen abgebaut werden. Dadurch ist es auch ausreichend, bei den folgenden Spülvorgängen die Waschflüssigkeit lediglich hin- und herzupumpen und es wird somit eine Einsparung von Waschflüssigkeit ermöglicht, was insbesondere bei integrierten und miniaturisierten Ausführungsformen von Vorteil ist.
Die Stromsignale entsprechen den Peaks in Figur lc, wobei in den Figuren 2 und 3 deren AnfangsSteigungen dl/dt entsprechend den Geraden 24, 24,,24l%, ... aus Figur lc ausgewertet werden. Neben den beiden Beispielen mit einer Detektion über optische oder enzymatische Label ist auch eine labelfreie Detektion der gebundenen Ziel-DNA 200 möglich. Bei der optischen labelfreien Detektion werden die intrinsischen Veränderungen der UV-Absorption beim Aufschmelzen der DNA-Doppelstränge erfasst. Bei der elektrischen labelfreien Detektion wird dagegen der Prozess einer intrinsischen Guanin-Oxidation ausgenutzt. Eine weitere labelfreie Detektion kann mittels elektrochemischer Impedanzmethoden erfolgen. Weiterhin ist auch eine labelfreie Detektion durch Messungen der Massenänderung, d.h. gravimetrisch, z.B. über akustische Methoden wie Oberflächenwellen-Sensoren (sog. SAWΛs) möglich.
Bei den Labelverfahren ist auch der Einsatz von magnetischen Labein in Kombination mit Magnetfeld-Sensoren möglich.
Bei den beschriebenen Methoden ist wesentlich, dass die Messung und zugehörige Auswertung automatisierbar ist. So können gelt werden. In Abhängigkeit davon erfolgt das jeweilige Flussprofil, bei dem zunächst bei Einstellung einer vorgegebenen Temperatur einerseits die aufgeschmolzenen Mismatch- Bindungen weggespült werden und andererseits die Detektion der positionsspezifischen gebundenen Ziel-DNA bei „nicht bewegter" Waschflüssigkeit erfolgt.

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zur Detektion von DNA-Punktmutationen (SNP- Analyse) unter Ausnutzung einer Bindung (Hybridisierung) von nachzuweisender Ziel-DNA an auf einem DNA-Chip positionsspezifisch immobilisierter Fänger-DNA, wobei ein definierter zeitlicher Ablauf erfolgt, mit folgenden Verfahrensschritten: a) Eine Waschflüssigkeit wird mit geregelter Fliessgeschwin- digkeit über den DNA-Chip geleitet, b) die Temperatur an den Hybridisierungspositionen wird definiert verändert, c) die Fänger/Ziel-DNA-Hybride werden temperaturabhängig aufgeschmolzen und durch strömende Waschflüssigkeit von den Hybridisierungspositionen entfernt, d) die Fließgeschwindigkeit wird innerhalb vorgegebener Zeitintervalle auf Null geregelt, e) bei der aktuellen Temperatur noch gebundene Ziel-DNA wird positionsspezifisch detektiert, wobei die Detektion der positionsspezifisch gebundenen Ziel-DNA bei „nicht beweg- tenv Waschflüssigkeit durchgeführt wird, f) die Signale werden nach vorgegebenem Programm ausgewertet.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die Verfahrensschritte a) bis e) mehrfach wiederholt werden.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Temperaturveränderung in einer stetigen Erhöhung besteht.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, dass die stetige Temperaturerhöhung als Funktion der Zeit linear ist .
5. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, dass die stetige Temperaturerhöhung als Funktion der Zeit in Rampen mit Haltezeiten erfolgt.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass während der Haltezeiten der Fluss über den DNA-Chip gestoppt wird.
7. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Detektion der gebundenen Ziel-DNA labelfrei (markierungsfrei) erfolgt.
8. Verfahren nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, dass die labelfreie Detektion optisch erfolgt.
9. Verfahren nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, dass die optische Detektion die intrinsische Veränderung der UV- Absorption beim Aufschmelzen von DNA-Doppelsträngen nutzt.
10. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, dass die labelfreie Detektion elektrisch erfolgt.
11. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, dass die labelfreie Detektion mittels der intrinsischen Guanin-
Oxidation erfolgt.
12. Verfahren nach Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, dass die labelfreie Detektion mittels elektrochemischer Impedanz- methoden erfolgt.
13. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, dass die labelfreie Detektion gravimetrisch erfolgt.
14. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass die Detektion der gebundenen Ziel-DNA unter Ausnutzung eines Labels (Markierung) erfolgt.
15. Verfahren nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet, dass die Detektion mittels eines optischen Labels erfolgt.
16. Verfahren nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet, dass die Detektion mittels eines magnetischen Labels erfolgt.
17. Verfahren nach Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet, dass die Detektion mittels eines enzymatischen Labels erfolgt.
18. Verfahren nach Anspruch 17, dadurch gekennzeichnet, dass die Waschflüssigkeit Enzymsubstrat enthält.
19. Verfahren nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, dass das Enzym im verwendeten Temperaturbereich stabil (aktiv) ist .
20. Verfahren nach den Ansprüchen 16 bis 19, dadurch gekenn- zeichnet, dass das enzymatische Label eine Reaktion katalysiert die optisch detektierbar ist.
21. Verfahren nach den Ansprüchen 16 bis 19, dadurch gekennzeichnet, dass das enzymatische Label eine Reaktion kataly- siert die elektrochemisch detektierbar ist.
22. Verfahren nach Anspruch 21, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei dem elektrochemischen Detektionsverfahren um eine mittels Redoxcycling verstärkte Strommessung handelt.
23. Verfahren nach den Ansprüchen 16 bis 19, dadurch gekennzeichnet, dass die Veränderung der Konzentration des Substrates oder Produktes detektiert und ausgewertet wird.
24. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüchen, dadurch gekennzeichnet, dass die Auswertung und Darstellung des Sensorsignals (Detektionssignal) als Funktion der Temperatur erfolgt.
25. Verfahren nach Anspruch 24, dadurch gekennzeichnet, dass die Normierung der Schmelz-Kurve auf eine bestimmte Temperatur erfolgt .
26. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Auswertung rechnergesteuert wird.
27. Verfahren nach Anspruch 26, dadurch gekennzeichnet, dass die Auswertung softwaremäßig durchgeführt wird.
28. Anordnung zur Durchführung des Verfahrens nach Anspruch 1 oder einem der Ansprüche 2 bis 27, umfassend wenigstens einen
DNA-Chip (1) und zugehörige Messmittel, dadurch gekennzeichnet, dass wenigstens eine Einrichtung (10) zur Temperatursteuerung und/oder -regelung, eine Einrichtung (20) zum Anströmen der Chip-Oberfläche (2) mit einer Waschflüssigkeit mit einer Einrichtung (30) zur Flusskontrolle und dass Mittel (1 - 5, 75, 95) zur Detektion der Aufschmelzvorgänge vorhanden sind.
29. Anordnung nach Anspruch 28, dadurch gekennzeichnet, dass der DNA-Chip (1) Transducer (5, 5Λ, ... ; 95) als Teile eines
Arrays zur Immobilisierung von DNA-Fängersonden (100) auf der Chip-Oberfläche (2) bildet.
30. Anordnung nach Anspruch 29, dadurch gekennzeichnet, dass die Waschflüssigkeit ein Enzymsubstrat (S) enthält.
31. Anordnung nach Anspruch 28, dadurch gekennzeichnet, dass Enzymlabel (E) als Markierung für die Ziel-DNA (100) vorhanden sind.
32. Anordnung nach Anspruch 31, dadurch gekennzeichnet, dass die Enzymlabel (E) thermostabil sind.
33. Anordnung nach Anspruch 28, dadurch gekennzeichnet, dass die Einrichtung (10) zur Temperatursteuerung und -regelung ein zeitlich vorgebbares Temperaturprofil einstellt.
34. Anordnung nach Anspruch 28, dadurch gekennzeichnet, dass die Einrichtung (30) zum Anströmen des DNA-Chips (1) mit Waschflüssigkeit mit vorgegebenem Flussprofil in Abhängigkeit von der eingestellten Temperatur regelbar ist.
35. Anordnung nach Anspruch 28, dadurch gekennzeichnet, dass die Detektionsmittel (1 - 5, 95) zur elektrochemischen Detektion des enzymatischen Umsatzes ausgebildet sind.
36. Anordnung nach Anspruch 35, dadurch gekennzeichnet, dass die Detektionsmittel (1 - 5, 95) zur Messung von Strömen und/oder Potentialen ausgebildet sind.
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