WO2003102582A1 - Procede de detection d'une biopuce de reagine biochimique - Google Patents

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WO2003102582A1
WO2003102582A1 PCT/JP2003/006791 JP0306791W WO03102582A1 WO 2003102582 A1 WO2003102582 A1 WO 2003102582A1 JP 0306791 W JP0306791 W JP 0306791W WO 03102582 A1 WO03102582 A1 WO 03102582A1
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biochip
nucleic acid
label
probe nucleic
detecting
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PCT/JP2003/006791
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Tadaaki Yabubayashi
Masazumi Tanaka
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Sumitomo Precision Products Co., Ltd.
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6834Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C12Q1/6837Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase using probe arrays or probe chips

Definitions

  • the present invention relates to an improvement in a method for detecting a biochemical sample using a nanochip, and by causing a probe nucleic acid arranged on a substrate to have a loop structure such that the open end side faces the substrate side, for example, to obtain a target DNA. Only when RNA or RNA is present, hybridization occurs, and the loop structure is eliminated and extended, so that it is possible to modify any label only to the hybridized target complex (biochemical reactant). (3) The accuracy of the hybridization and label modification itself is inherently high, and this can be used as an electrical, electromagnetic, electro-optical or electro-magnetic optical change to achieve highly accurate detection of biochemical samples. It relates to a method for detecting a chemical reactant and a biochip. Background art
  • the basic principle of gene detection utilizes the fact that DNA forms a complementary double helix structure. Since A (adenine) and T (thymine) and C (cytosine) and G (guanine) form a pair, for example, to detect a gene having the DNA sequence of AGGTTAC (5 ' ⁇ 3'), use a probe If the target gene is present in the sampled sample gene, the AGGTTAC sequence binds to the probe DNA sequence by DNA hybridization. Since the DNA has a double helix structure, the target DNA can be easily selected by detecting it.
  • sample DNA (sampled gene DNA) is modified with a fluorescent label, and probe DNA and the DNA hybrid
  • a fluorescence method is known, which performs a daizesing operation to detect DNA having a double helix structure, that is, a DNA that emits a fluorescent signal.
  • Fluorescent labels include fluorescent dyes themselves, chromosomes directly stained with fluorescent dyes, ionic fluorescent substances modified into carbohydrates cut from glycoproteins and glycolipids, or proteins, nucleic acids, enzymes, cells, etc. Labeling that emits fluorescence by various methods and substances, such as tagging with a fluorescent dye, has been proposed.
  • RNA and nucleic acid-like structures are assumed for the biochemical specimens to be detected, including the above-described DNA.
  • DNA, RNA structures and PNA structures having the required base sequence that function as probes are arranged on a required substrate such as a glass substrate, and formed into chips. It is necessary to perform a hybridization operation with a biochemical sample using the biochip as a basic unit, and to reliably detect the complex (biochemical reactant) between the target probe and the biochemical sample that has completed the hybridization. .
  • the present invention has been made in view of the problem of the method for detecting a biochemical sample using the biochip, and can simplify the detection process with good reproducibility, without requiring excessive skill for a measurer, and can be used for hybridization and labeling.
  • the purpose of the present invention is to provide a method for detecting a biochemical reactant and a biochip, which can improve the accuracy of each treatment and efficiency in the modification step of, and finally improve the detection accuracy of a target sample.
  • the inventors of the present invention have proposed a method for hybridizing a biochemical sample to a probe in a biochip in which many probes are arranged on a substrate such as glass. After examining in detail how to make the probe and how to modify the label such as a fluorescent label on the probe,
  • the probe that has not been hybridized is also modified, making detection by the label impossible.
  • the target sample is detected by detecting the label on the sample side after hybridization, and the target is detected by a non-specific method during rehybridization due to differences in setting conditions and the skill of the practitioner. The detection accuracy fluctuates and decreases due to adsorption,
  • the probe When the probe is a structure similar to RNA and nucleic acid, the probe has a stronger binding force to the biochemical sample than when the probe is a DNA structure, and a large number of probes are arranged on the substrate. It has been found that there are problems such as the possibility of adsorption to substances other than the target substance and hybridization and the increase in noise, which lowers the detection accuracy of the target biochemical sample. To achieve this, we focused on the need to provide a new basic structure capable of fundamentally improving the detection accuracy in a biochip in which many such probes are arranged.
  • the present inventors have developed a new basic structure capable of improving detection accuracy in a biochip in which a large number of probes are arranged on a substrate, that is, a configuration in which a probe on a substrate can hybridize only with a target biochemical sample.
  • the inventors conclude that if only the hybridized probe extends outside the other unhybridized probe, the label can be modified only at its tip, and that the probe biochemistry If the main site that complementarily binds to the sample enters the probe where it is sequenced, it cannot hybridize easily, but it can selectively and reliably hybridize only with the target biochemical sample.
  • the inventors have set forth the configuration of a biochip in which probes having such a loop structure are arranged on a substrate, in a biochemical sample detection operation, as described above, using a biochemical sample whose label has been modified as described above.
  • the probe that has hybridized that is, only the probe that has hybridized by eliminating the loop structure, has its tip, etc. It is possible to modify the label at the required location, and the accuracy of each step is improved at the time of hybridization and at the time of label modification, thereby significantly improving the detection accuracy of the target sample. We did not require the practitioner's skills in each process for improvement, so we found that the operation for detecting biochemical samples was relatively easy.
  • the configuration of the biochip according to the present invention allows selective modification of the label only to the hybridized probe or specimen.
  • Another label can be modified using the label initially provided as a target, and multiple labels can be formed.
  • various label detection methods can be used, i.e., provided on hybridized biochemical reactants.
  • a method that detects and identifies at least one of electrical, magnetic, and optical changes in the presence or absence of a label to be detected can be used, and the most appropriate label and detection method can be used according to the properties of the biochemical sample to be detected. We have found that we can do this and completed this invention.
  • the present inventors previously modified the label on the probe provided with the loop structure, and performed the above-mentioned electrical, magnetic, optical or combination measurement thereof before the hybridization operation, It is possible to quantitatively grasp the state of the probes arranged on the electrodes of the biochip, that is, the state of the probe on each electrode before performing various operations, etc., and after the hybridization operation, Furthermore, after the label is modified on the probe nucleic acid and / or biochemical sample that has formed a double strand, when the label is detected as a target to evaluate the presence or absence of a complex that has formed a double strand, Since the state of the probe on each electrode can be quantitatively grasped, comparison and evaluation can be performed with higher accuracy.
  • Probes can be modified by using different types of labels to be modified after recognition and hybridization operations, or by using multiple means that change the detection method by changing the form such as size and color even if they are the same type.
  • the present inventors have found that it is also possible to correct the detection result according to the state (the amount of the probe on the electrode) with higher accuracy, and completed the present invention.
  • the present invention relates to a probe nucleic acid which is arranged on one or more electrodes provided on the surface of a substrate or an analog thereof and forms a loop structure, or a probe nucleic acid which has been previously modified in addition to the above-mentioned structure and which has been previously labeled.
  • Electrical, magnetic This is a method for detecting a biochemical reactant, comprising a step of detecting and identifying by at least one of a target and an optical change.
  • the present invention provides a probe nucleic acid which is arranged on one or more electrodes provided on the surface of a substrate or the like and forms a loop structure.
  • a biochip having the probe nucleic acid thus obtained, hybridizing a biochemical sample to the probe nucleic acid, and forming a double-stranded probe during or after the hybridization.
  • a method for detecting a biochemical reactant comprising a step of detecting and identifying by at least one of the changes.
  • the present invention provides a probe nucleic acid which is arranged on one or more electrodes provided on the surface of a substrate or an analog thereof and forms a loop structure.
  • a biochip having a nucleic acid and hybridizing a biochemical sample in which the probe nucleic acid of the chip has been modified with a label in advance, the probe nucleic acid having a double strand and the biochemical sample
  • a method for detecting a biochemical reactant comprising a step of detecting and identifying a complex by at least one of electrical, magnetic, and optical changes on the surface of the biochip.
  • the present invention relates to a probe nucleic acid which is arranged on one or more electrodes provided on the surface of a substrate or an analog thereof and forms a loop structure, or a probe in which the label is modified in addition to the above-mentioned structure.
  • a biochip having a nucleic acid and the hybridization of a biochemical sample in which the probe nucleic acid of the chip has been modified with a label in advance, the probe nucleic acid or the double-stranded probe nucleic acid formed during or after the execution of the hybridization A step of modifying the label on the biochemical specimen or on both, by applying a complex of a double-stranded nucleic acid and the biochemical specimen to the electrical
  • a method for detecting a biochemical reactant comprising a step of detecting and identifying by at least one of magnetic and optical changes.
  • the present invention also provides the method for detecting a biochemical reactant described above,
  • measurements are taken to capture at least one electrical, magnetic or optical change on the surface of the biochip before or after the hybridization operation or before and after the label modification operation. How to compare the
  • the method of modifying the label on the probe nucleic acid or biochemical sample is to modify the second label with the target of the pre-modified first label.
  • T ⁇ is a multi-step modification with three or more steps.
  • the method of modifying the label on the probe nucleic acid and / or the biochemical specimen involves modifying the first label first, and then modifying the second label to target it.
  • -Labels are selected from metal fine particles (including Si), magnetic particles, ceramic fine particles, fluorescent labels, fluorescent dyes, dyes, chemical chromophores, and semiconductors.- Detected as electrical changes on the surface of the biochip 'The method of identification is the change in current or voltage or resistance at the biochip or electrode, At least one of the capacitance changes on the chip surface is detected.
  • -Detection and identification as electrical or magnetic changes on the surface of the biochip at least one of a change in current value, voltage value or resistance value of the biochip or electrode, and a change in capacitance on the biochip surface
  • a label modified on the double-stranded complex itself or the probe nucleic acid and / or biochemical specimen of the complex, or a signal from the complex and the label For example, a method having a step of magnetically detecting and identifying magnetism,
  • the method of detecting and identifying electrical and optical changes on the surface of the biochip is at least one of a change in current, voltage, or resistance at the biochip or electrode, and a change in capacitance on the biochip surface.
  • a label modified on the double-stranded complex itself or the probe nucleic acid and / or biochemical specimen of the complex, or a signal from the complex and the label For example, a method having a step of optically detecting and identifying light and the like,
  • the method of detecting and discriminating electrical, magnetic, and optical changes on the surface of the biochip • The method of detecting and discriminating electrical, magnetic, and optical changes on the surface of the biochip.
  • the current or voltage value of the biochip or electrode is a change in the resistance or the change in the capacitance of the biochip surface. Detecting and identifying at least one of them, and a label modified on the double-stranded complex itself, the probe nucleic acid and / or biochemical specimen of the complex, or both, A step of magnetically detecting and discriminating a signal, and a step of detecting a label modified on the double-stranded complex itself or the probe nucleic acid and / or biochemical specimen of the complex, or a signal from the complex and the label. A method having a step of optically detecting and identifying is also proposed.
  • the present invention provides a probe nucleic acid comprising a substrate having at least one electrode formed on a surface thereof or the like, and a probe nucleic acid having one end fixed and arranged on the electrode surface. And a probe chip, wherein each probe nucleic acid has a loop structure.
  • the arranged probe nucleic acid is
  • a biochip characterized by having a loop structure such that a pre-modified label is located on the substrate or the like side is also proposed.
  • a configuration in which the label is selected from metal fine particles (including Si), magnetic particles, ceramic fine particles, fluorescent labels, fluorescent dyes, dyes, chemical color formers, and semiconductors;
  • the substrate or the like material is glass or semiconductor silicon
  • FIG. 1A and FIG. IB are explanatory diagrams showing the loop structure of the probe DNA according to the present invention.
  • FIG. 2A and FIG. 2B are explanatory diagrams showing the loop structure of the probe RNA according to the present invention.
  • FIG. 3 is an explanatory diagram showing another loop structure of the probe RNA according to the present invention.
  • FIG. 4 is an explanatory diagram showing another loop structure of the probe RNA according to the present invention.
  • FIG. 5 is an explanatory diagram showing another loop structure of the probe RNA according to the present invention.
  • FIG. 6A is a perspective explanatory view showing a configuration of a biochip and a transfer arm according to the present invention
  • FIG. 6B is a perspective explanatory view showing a configuration of a transfer arm and a scanning device.
  • FIG. 7 is a perspective explanatory view showing another configuration of the biochip according to the present invention.
  • a biochemical specimen refers to DNA, RNA and a nucleic acid-like structure
  • a nucleic acid-like structure is a structure similar to a literal nucleic acid, for example, a molecule obtained by modifying a ribose or phosphodiester site of a nucleic acid.
  • PNA peptide nucleic acids
  • the probe nucleic acid includes DNA, RNA, and a nucleic acid-like structure.
  • the nucleic acid-like structure is the same as described above.
  • a loop structure is formed during or after the manufacturing process and is arranged on a substrate, or a loop structure is formed when arranged on a substrate, Either a configuration in which a loop structure is formed after arrangement on the substrate, or any configuration and formation method can be adopted.
  • a base sequence forming a pair capable of forming a complementary double strand at two required positions of the probe DNA for example, the positions A and T are formed in advance in the figure, and the substrate is, as shown in FIG.
  • the probe DNA 10 is arranged in 1 and the base sequence near the fixed end 11 side and the base sequence near the open end 12 side form a binding portion 13 to form a loop 14, thereby releasing the probe DNA 10. It can be configured to be located on the substrate 1 or near the upper surface of the substrate 1.
  • the probe DNA 10 arranged on the substrate 1 has a binding site between the base sequence near the fixed end 11 side and the base sequence near the open end side of the probe DNA 10 as in Fig. 1A. 13 is formed to form a loop 14, so that the site where the marker 3 can be decorated, in the figure, the biotin group 2 provided at the open end is located on the substrate 1 or near the upper surface of the substrate 1. It is.
  • 13 bonding sites can be formed at the distal end, the center, or the fixed end side to form various types of loop structures. Can be formed.
  • a base sequence forming a pair with a base on the open end 22 side of the probe RNA 20 is arranged at the center of the probe RNA 20.
  • the base sequence forming a pair is located at the center of the probe RNA 20, and the main site 25 that complementarily binds to the biochemical sample is more compared to the probe DNA 10 configuration example in FIG.
  • a loop 24 is formed so as to face the substrate 1.
  • the biotin group 2 provided at the open end 22 having the same configuration as that of FIG. 2A and capable of modifying the label is located above the substrate 1, and the label is similar to the example shown in FIG. 1B.
  • the two portions of the biotin group that allows modification of the domain 3 are linked to the base sequence paired with the open end 22 of the probe RNA 20, that is, the central binding portion 23 and the loop 24.
  • the gap X between the substrate 1 and the loop 24 is about the same as the size of the sign 3 or better. If it is narrow, the open end 22 and the biotin group 2 are not easily modified with the label 3 in any orientation on the substrate 1.
  • the probe nucleic acid has a binding site forming a loop, for example, any two positions of the probe nucleic acid, such that the main site complementary to the biochemical sample is arranged in the loop. It is possible to appropriately provide a binding part such as a molecule capable of binding, such as a sequence of bases forming a pair, and the position of the binding part forming the loop. It is clear from the above description that the shape of the loop or the direction of the probe open end can also adopt a deviation configuration.
  • FIG. 3 a configuration in which the distance between the open ends 22 is longer than the joint 23 so that the open end 22 provided with the biotin group 2 is closer to the substrate 1, as shown in FIG. 4, as in FIG. 3
  • the distance between the open end 22 and the connection portion 23 is longer and the biotin group 2 faces the connection portion 23 side.
  • FIG. 5 the same configuration as the example shown in FIG. A configuration in which 24 parts are made longer so as to be closer to the substrate 1 can be adopted.
  • legs 26 are provided to position the binding part 23 at the center of the probe RNA 20 as compared with FIG.
  • the sequence is not related to the main region 25 that complementarily binds to the sequence or loop 24 of the biochemical sample, so that it is not necessarily required to be a sequence of bases, etc.
  • the connecting portion 23 is formed at the end of the leg 26 to form a loop 24 portion.
  • the leg 26 is formed in a Y-shape, and the connecting portion 23 and the loop 24 portion are provided respectively.
  • the probe nucleic acid has a loop structure such that the first label-modified site capable of modifying a plurality of second labels is located on the substrate or on the substrate side near the substrate.
  • the gap between the substrate and the loop can be adopted, and the gap between the substrate and the loop is as small as or smaller than the outer diameter of the second sign, so that the second sign cannot easily pass through here and approach the first sign.
  • the location where the above-mentioned connecting portion is provided may be appropriately set so as to provide a gap between the two.
  • probe nucleic acids if the desired hybridization is possible with the desired biochemical sample, and if various loop structures can be formed as described above, both short and long chains can be used. Any base sequence configuration can be adopted You.
  • the number of bases is not particularly limited, but it is preferable that the base has a relatively long chain structure. It is desirable for improvement and reduction of noise at the time of detection, and the present invention can be applied even when the number of bases exceeds 100 or is about 1000.
  • a pair of base sequences is provided at any two positions of a probe nucleic acid as a binding portion for forming a loop. Any molecule or structure can be used as long as it can be sequenced and can form a loop by pairing, such as the means used to modify the label, etc. .
  • binding force at such a binding portion can be selected in consideration of the binding force with the sample (such as a sample).
  • the probe nucleic acid according to the present invention is arranged on a required electrode and has the above-mentioned loop structure, and can be used only for a desired biochemical specimen in a predetermined hybridization operation. It becomes possible to form a main chain. In addition, since this loop is eliminated by forming a double strand, it is possible to modify only a probe that has formed a double strand by labeling.
  • a substrate for forming a biochip or the like includes, in addition to a pure plate substrate, a substrate configuration using grooves or recesses formed by etching or the like to use required recesses or protrusions. Electrodes can be formed at required locations on those surfaces, such as a configuration in which protrusions such as pins are formed on a substrate or the like, a configuration using a surface such as a rod or a cube, etc., and the arrangement of probes and hybridization can be improved. If possible, various modes can be adopted according to the detection / identification method of the sign or the like to be adopted.
  • a material such as a membrane for example, nitrocellulose
  • a material such as a membrane for example, nitrocellulose
  • Substrates of any material and configuration can be employed as long as they are possible.
  • the surface roughness is preferably as flat as possible.
  • borosilicate glass and the like can be used as a glass substrate which is easily available and handled, and a thicker one is easier to handle, but a biochip of any thickness can be used depending on the purpose.
  • the method of washing and drying the substrate or the like includes washing with various solvents and washing in pure water, which are employed when manufacturing various devices of a semiconductor wafer.
  • Known methods for washing and drying substrates such as ultrasonic washing, washing with various acid solutions, pure water washing, blow drying, and spin drying can be appropriately selected and combined.
  • the electrode material can be formed on a required surface such as a substrate and the probe nucleic acid can be arranged on the electrode film
  • any known electrode material can be used. It is also preferable to provide a noble metal electrode film of gold, platinum, silver, or the like, which can facilitate the arrangement.
  • the method of forming the film is not particularly limited, but it is preferable to use a method used in a semiconductor device manufacturing process such as etching and film forming used in manufacturing the above-described required substrate.
  • a method used in a semiconductor device manufacturing process such as etching and film forming used in manufacturing the above-described required substrate.
  • a known vapor deposition method such as sputtering, ion plating, or CVD is preferable.
  • an underlayer can be appropriately formed to improve the adhesion to the electrode film.
  • means such as providing a Cr layer on a glass substrate or a quartz substrate or modifying the surface with a silane compound can be employed.
  • the step of arranging probe nucleic acids on a required electrode surface such as a substrate is not particularly limited, and any known method can be employed. For example, after washing the electrode film with acid or pure water, Using a probe nucleic acid and a buffer, the nucleic acid can be sequenced in a saturated steam atmosphere.
  • buffer solution for example, solution to the desired pH by blending a KH 2 P0 4 and K 2 HP0 4 may be employed.
  • a solution in which a known chemical solution is selected and blended to obtain a required pH such as PBS, NaCl and Tris-HCl, or NaCl and Tris-HCl and EDTA, can be used.
  • the step of arranging the probe nucleic acid on the substrate surface is as described in the above-described constitution of the substrate, constitution of the probe nucleic acid, and the arrangement method thereof.
  • a loop structure is formed during the manufacturing process or after the manufacturing, and the probe is arranged on a substrate, a loop structure is formed when the probe is arranged on the substrate, or an array is formed on the substrate. It is possible to adopt a configuration in which a loop structure is formed later, or any configuration and formation method can be adopted.
  • the step of hybridizing the biochemical sample to the probe nucleic acid forming the loop structure is not particularly limited, and any known method can be employed.
  • the biochemical sample and the buffer solution can be used. Hybridization using Can be chilled.
  • the buffer solution for example, a solution in which NaCl, Tris-HCl and EDTA are mixed and maintained at a required pH can be used.
  • the step of modifying the label on the probe nucleic acid and / or biochemical sample that has formed a double strand during or after the hybridization is performed in the probe nucleic acid or biochemical sample where the double strand was formed literally.
  • an intercalator that modifies the required label and selectively enters the junction between the two, which forms a double-stranded complex. Absent.
  • an inter-collector or to use it together with the sign.
  • the label may be a metal particle containing Si, a magnetic particle, a ceramic particle, a fluorescent label, a fluorescent dye, a dye, a chemical chromophore, a chromosome or a saccharide used for detecting a semiconductor or a biochemical sample.
  • a metal particle containing Si a magnetic particle, a ceramic particle, a fluorescent label, a fluorescent dye, a dye, a chemical chromophore, a chromosome or a saccharide used for detecting a semiconductor or a biochemical sample.
  • Those which can be modified to probe nucleic acids or biochemical specimens, such as chains, proteins, nucleic acids, enzymes, and cells, and those which can be modified as long as they can be re-modified with the above-mentioned various labels, can be used.
  • such a sign is not necessarily required to be electrically conductive as an electrical property, and the biochip of the present invention may have an electric change such as a current, a voltage, a resistance and a capacitance depending on the presence or absence of the sign.
  • a label that can cause a magnetic change with or without the label together with an electrical change, or a label that can cause both an electrical change and an optical change with or without the label can be used.
  • a shift configuration can be adopted for the marker.
  • Metal particle labels include Si, Au, Al, Ti, Cr, Mn, Fe, Co, Ni, Cu,
  • Fine particles of various metals such as Zn and Mo are used.
  • the shape, particle size, and uniformity of the fine particles can be arbitrarily selected as appropriate.
  • It can be deposited on the microparticle surface, 5Myupaiiota less, more preferably equal to or less than Iotamyupaiiota, in the range of several nm ⁇ several hundred nm Fine particles having a predetermined particle size uniform and industrially stable are preferred.
  • Magnetic particle labels include iron oxide-based fine particles commonly used in applications such as magnetic powders, iron oxide pigments, and magnetic fluids, as well as carbon-based particles used as magnetic toners and magnetic inks, metal particles, and the like.
  • Various magnetic materials are also available among the ceramic particles described below, and these can also be used.
  • various compositions and composite particles such as oxides such as iron oxides and metal-based alloys, have been proposed. It is preferable because the diameter and shape are uniform and industrially stable.
  • colored magnetic powders used as magnetic inks and magnetic toners have various magnetic properties, depending on the material, size and shape of the core magnetic powder, and the combination of the material, thickness, and number of films on the surface film. Because of its color and color tone, magnetic detection and optical detection can be performed simultaneously.
  • any known form such as a spherical shape or a unique crystal, can be used for the labeling of the ceramic particles, but is preferably 5 ⁇ or less, more preferably ⁇ or less, because a film can be formed on the surface of the fine particles.
  • nm ⁇ several hundred nm predetermined particle diameter range can be obtained in one and and industrially stable average Si0 2, Ti0 2, Zr0 2 , A1 2 0 3, ceramics particles such as MgO is preferred.
  • any known form can be used for the fluorescent label, and chromosomes, carbohydrates, proteins, nucleic acids, enzymes, cells, microparticles, and the like, which are tagged with a commercially available fluorescent dye, can be used by utilizing the properties of the label itself. As described later, it is possible to perform modification using an antigen-antibody reaction.
  • fluorescence itself is not essential in the present invention, chromosomes, carbohydrates, proteins, nucleic acids, enzymes, and cells used for fluorescent labeling and the like can be used as they are.
  • non-fluorescent dyes can be used as labels.
  • a chemical chromophore modifies a substance involved in a chromogenic reaction as a label, and refers to a substance used in a method for producing a chemical colour, such as an enzymatic method, and for example, by preparing a site modified with a biotin derivative.
  • a method of modifying the above-mentioned various labels into probe nucleic acids for example, the properties of particles themselves such as metal fine particles can be used, or an antigen-antibody reaction can be performed by modifying a known fluorescent label, for example. Any known method, such as modification by utilizing, can be employed. Further, modification is facilitated by using a solution form in which fine particles are uniformly dispersed like a neutral colloidal liquid.
  • the probe nucleic acid may be modified with biotin at its end, and streptavidin-coated metal or ceramics or other fine particles may be labeled using the high binding ability of biotin-avidin. Further, by adding an IgG anti-protein substance to the end of the probe nucleic acid, it is possible to modify the protein-coated fine particles and the like by using an antigen-antibody reaction.
  • the modification method may be any method as long as a required portion of the specimen can be appropriately labeled, and any of the above-mentioned known methods can be employed.
  • any method such as the method described above can be employed.
  • a method of detecting and identifying a complex of a probe nucleic acid having formed a double strand after hybridization and a biochemical specimen as an electrical change on the surface of a biochip substrate or the like is described in, for example, At least one of a change in a current value, a voltage value, or a resistance value applied to the surface of the substrate or the like, and a change in capacitance of the surface of the substrate or the like is detected, and the complex is identified based on the change before and after the hybridization.
  • a biochip is divided into a plurality of detection spots (stages), and each spot has a required number of electrodes.
  • a different probe nucleic acid forms a loop in each spot.
  • the current I, voltage V, resistance R, capacitance C, etc. to be supplemented are detected to detect the presence or absence of complex formation between the probe nucleic acid and the biochemical sample on the probe electrode.
  • Another probe electrode or sensor that can be detected is brought close to the surface of the biochip and the surface is scanned, and the current I value or voltage V value or resistance R value applied between the required electrodes before and after hybridization is measured.
  • the capacitance C value it is possible to detect the presence or absence of complex formation due to nodding and interpretation.
  • a complex of a probe nucleic acid and a biochemical sample which has formed a double strand after hybridization and which has been modified in advance or after hybridization with the probe nucleic acid or the biochemical sample or both.
  • the method for detecting and identifying the complex having a label as an electrical, magnetic, optical, or electromagnetic, electro-optical, or electro-magnetic-optical change on the surface of a biochip substrate or the like is described in the above.
  • Including detecting electrical changes associated with complex formation Needless to say, at least one of the required current I value or voltage V value or resistance R value and capacitance C value between the electrodes generated mainly due to the physical properties of the selected and used sign The presence or absence of the complex can be grasped as a change.
  • the term “electromagnetic change” refers to the probe nucleic acid or the biochemical sample, or both, or the electric change due to a further modified label, and the complex itself and its probe nucleic acid or biochemical sample.
  • the magnetism or the like of the mark provided on both is detected by magnetic detection means. Therefore, not only the magnetism or the like of the marker is detected by magnetic detection means, but also a voltage is applied between required electrodes or a magnetic field is applied to a biochip, and the complex or the marker or both are applied. It also means that a change in the electrical characteristics or the magnetic characteristics, or both, that has led to the detection of the change is detected by magnetic detection means.
  • the electro-optical change means not only the above-described probe nucleic acid and / or biochemical sample or both, but also the electric change due to the further modified label, and the complex itself and the probe nucleic acid and / or biochemical sample or both.
  • the signal from the provided sign is detected by optical detection means. Therefore, not only the optical characteristics of the label are detected by optical detection means, but also a voltage is applied between the required electrodes or a magnetic field is applied to the biochip, and the complex or the label or both are applied. It also means that the change in the electrical characteristics or optical characteristics that has led to the detection by the optical detection means is similarly detected.
  • electro-magnetic change and electro-optical change can be considered as an electro-magnetic-optical change.
  • magnetic fine particles having magnetism and emitting light at a specific wavelength can be used.
  • the above-mentioned steps and the like are appropriately selected and combined, and the signal from the label provided on the complex and the probe nucleic acid of the complex and / or the biochemical sample or both is electrically used. It can be easily recognized as a target, magnetic or optical change.
  • the means for performing the above-described electrical detection on the biochip substrate and at the same time, optically detecting and identifying various labels in close proximity to the substrate surface.
  • light scattering, SPR spectroscopy, chemical coloring, fluorescence detection, microscopy, imaging, and visual inspection can be used.
  • the light scattering method enables the detection of scattered light with a single laser beam by emitting light of a specific wavelength with the light reflected by the fine particles in the marking of metal particles or ceramic fine particles.
  • a detection chip substrate provided with a gold thin film according to the present invention is mounted on a prism, and one light beam of He-Ne laser is incident on the back surface of the substrate from one side of the prism to the other side of the prism. By setting the conditions so that this is totally reflected, scattered light can be detected by the CCD camera that observes the detection chip substrate from above.
  • SPR spectroscopy detects changes in the refractive index on the surface of a noble metal thin film.
  • a gold electrode is formed on a glass substrate, probe nucleic acid is immobilized on the gold thin film electrode, and the probe nucleic acid is contained in the sample.
  • the SPR angle incident angle at which the reflectance is minimized
  • the shift corresponds to the amount of the hybridized target sample, quantitative analysis of the target sample becomes possible by SPR measurement.
  • the signal can be amplified by modifying the label.
  • a probe chip is arranged on the surface of a noble metal thin film on a substrate to produce a biochip, and during or after the execution of hybridization, the probe is modified with a label such as a noble metal colloid or metal particle, resulting in a terminal.
  • a probe modified at the site of attachment to the label cannot attach the label at all if it has a loop (hairpin) structure, as described above.
  • Basic detection accuracy is improved by selectively hybridizing with the target sample by the stereostructure.
  • the label is selectively modified on the probe nucleic acid that has been eliminated, and the SPR angle is reduced by selectively modifying the label.
  • the shift can be amplified and highly accurate detection is possible.
  • the step of detecting the target sample that has formed a double strand after hybridization by SPR spectroscopy can be performed either in liquid or in air. Any known configuration can be adopted as the measurement system of the SPR method.
  • the immunohistochemical staining method can be applied to the chemical coloring method. It is suitable for avidin with four binding sites and peroxidase (HRP), which is biotinylated at multiple sites.
  • the complex (ABC) containing a large number of HRPs and partially leaving the avidin-binding site of avidin is formed, and the complex (ABC) and the biotin that has previously bound to the target antigen in the tissue It detects the target antigen by reacting with a conjugated antibody, and can be easily applied, for example, by preparing a site modified with biotin in the mouth.
  • Known immunohistological staining methods such as the APR method can also be applied.
  • various fluorescent dyes are attached to required sites of probe nucleic acid or label, or chromosomes, carbohydrates, proteins, nucleic acids, enzymes, cells, fine particles, etc., which are retagged with the fluorescent dyes Using the properties of the label itself or as described above using the antigen-antibody reaction to modify probe nucleic acids and biochemical specimens.
  • a fluorescence imaging detection system combining a microscope and a CCD camera, A detection method using a confocal microscope system and various optical devices and imaging devices has been proposed.
  • a known detection method and device can be used according to conditions such as the type of the fluorescent label and the properties of the fluorescence itself. It is good to select appropriately.
  • Non-fluorescent dyes can also be detected.
  • Microscope observation methods include known detection systems for fluorescence and scattered light, such as imaging detection systems combining microscopes and CCD cameras, confocal microscope systems, metallurgical microscopes, and various other optical and imaging devices. Although detection methods used in combination have been proposed, they can be used as they are.
  • the imaging processing method is to apply various known image processing such as enlargement, sharpening, coloring, etc. so that the image scanned by a camera or a microscope can be visually confirmed on a display, or to apply contrast, specific shape, and dimensions.
  • a known image processing is performed in order to detect the particles in software.
  • the biochip of the present invention can modify the particle label only to the probe nucleic acid and double-stranded probe nucleic acid formed by hybridization and the target sample.
  • the aggregate of particles is visually observed to detect the presence or absence of the target analyte.
  • the labels have unique colors and shapes as described above, and these are collectively visible, and the first label and the second label for detection are each a probe. Or, when provided on the specimen, they will be visually observed. Also, if the second marker is modified by targeting the first marker, both the first and second markers will be visible, but the first marker will not be visible. In that case, only the second sign will be visible.
  • the probe nucleic acids formed in a loop structure on the biochip and arranged in advance are modified with a label in advance, so that the probe on each electrode before the hybridization operation or the like is performed.
  • the label to be modified on this probe is not particularly limited, and may be any of the labels described above.
  • the probe nucleic acid may be provided at an offset position of the loop structure of the probe nucleic acid, for example, at a site such as a loop portion or a leg portion shown in the drawing.
  • the probe may be modified in any step of the biochip preparation process, such as modification at the same time as or after the array.
  • modification at the same time as or after the array.
  • the state of the probes arranged on each electrode of the biochip before the hybridization operation What is necessary is to be able to grasp quantitatively.
  • a label that is previously modified on a probe nucleic acid of a biochip and a label that is modified on a biochemical specimen after a hybridization operation are magnetically combined. It is possible to use different types, such as a detectable label and an optically detectable label, so that the initial detection of the biochip can use the magnetic sensor to determine the amount of probe nucleic acid. After grasping and operating the hybridizer, the biochemical reactant can be detected using the scattered light intensity sensor.
  • ceramic particle labels are used for the two types of labels.
  • the same scattered light intensity can be obtained by changing the outer diameter of the particle, but the analysis resolution can be increased by using multiple types of irradiating light.
  • the analysis resolution can be increased by using multiple types of irradiating light.
  • the biochip according to the present invention in which the label is modified in advance, can accurately determine in advance the quantitative ratio of the probe nucleic acid immobilized on each electrode arranged on the chip as described above.
  • the measurement results such as comparison and analysis based on the measurement signals from the biochemical samples on each electrode obtained by the above-mentioned various electrical, magnetic, and optical means performed after performing the operation are known.
  • the quantitative detection of the biochemical reactant can be performed with extremely high accuracy.
  • the state of the probes arranged on each electrode can be changed.
  • a biochemical reactant having a double-stranded structure formed by modifying a fluorescent dye or a small magnetic particle at a site such as a loop portion and a leg portion of a probe nucleic acid has a relatively large particle size.
  • probe nucleic acid is modified in advance with a label in order to determine the quantitative ratio of the probe nucleic acid on each electrode.
  • Probe nuclei using a means to determine the exact change It goes without saying that it is possible to determine the acid ratio. If the probe nucleic acid is not modified in advance, the quantitative ratio before hybridization operation can be determined based on the electrical change, and after various operations such as hybridization and modification. It is also possible to collectively measure the ratio of probe nucleic acid by measuring electrical, magnetic, and optical changes.
  • a rectangular silicon substrate and a glass substrate are used for the biochip, and they are stored in a not-shown carrying case for handling.
  • the case is configured as an ordinary container with a lid to take in and out the biochip.
  • a carrying case such as a DVD-RAM
  • when the carrying case is inserted into a scanning device for detection only a built-in biochip is exposed from the outer case to the inside of the device. In other words, it is assumed that the handling is performed manually, and that semi-automation and full automation by machines are performed.
  • the biochip 30 shown in FIG. 6A is taken out of the carrying case and is held by the transfer arm 32 for semi-automation, but here, the lead terminals 31a and 31b of the biochip 30 are shaped like the U-shaped transfer arm 32.
  • a configuration is adopted in which the power supply terminal is inserted into the connection terminal in the holding portion 33 to allow conduction and hold the connection.
  • the biochip 30 held in the groove of the U-shaped holding portion 33 of the transfer arm 32 shown in FIG. 6B is applied with a required voltage and current through the arm 32 in this dry state to apply a necessary voltage and current to each electrode of the chip. In such a state that the required probe nucleic acid is arranged, electrical measurements such as current and resistance can be performed.
  • the lead terminals 31a and 31b are not shown in detail, here, a lead film of a required pattern is formed on the substrate surface, and the lead terminal 31a is a biochip on the opposite side of the terminal. Leads are read from a plurality of electrodes with probes arranged in half the area ⁇ of 30.Lead terminals 31b are arranged with probes in the remaining half area ⁇ . Lead from a plurality of electrodes.
  • the surface of the biochip 30 is divided into a region ct and a region ⁇ in order to reliably compare required measurements before and after the hybridization.
  • the electrodes and the required various probe nucleic acids are appropriately arranged in exactly the same pattern in both regions, and in region ⁇ , only the same portion is immersed in a buffer solution to hybridize with the required biochemical sample.
  • the required modification of the label is performed, but the region ⁇ is not subjected to hybridization and the modification of the label is not performed, and the region ⁇ after the completion of the hybridization is washed and dried.
  • the arm 32 By applying a required voltage and current through the arm 32 in a dry state in both regions, the current and resistance in each state of the region ⁇ before the hybridization and the region ⁇ after the hybridization are applied. Electrical measurements such as values can be made.
  • the probe is inserted into the scanning device 40 while being held by the transfer arm 32, but inside the device, for example, an electrode that can be approached from the top with the probe nucleic acid on the surface of the biochip 30.
  • Either an electrical, optical, or magnetic probe such as a probe, a CCD probe, or a magnetic head, or a combination of these is arranged.
  • electrical, optical, and magnetic measurements before and after hybridization can be performed. By comparing the measurement results before and after hybridization, it is possible to easily detect the presence or absence of a complex between the probe and the biochemical sample that formed a double-stranded chain after hybridization, that is, the presence of a biochemical reactant. Can be.
  • one main surface of the substrate is divided into two.However, in addition to dividing it into many parts, making both sides the same, dividing the area by providing slits, or forming a plurality of strips without dividing the area It is also possible to use a plate or a bar, and it is also possible to adopt a configuration in which the region ⁇ is sealed with a lid, a container member, or the like at the time of hybridization.
  • the region ⁇ is sealed with a lid, a container member, or the like at the time of hybridization.
  • the same region can be used as a negative control, whereby the presence or absence of the complex can be easily detected in the above-described operation.
  • a no-operation region, a negative control region, a region of known concentration, and a sample region for inspection can be set for the buffer solution.
  • the biochip 50 shown in FIG. 7 is obtained by dividing the plate-shaped biochip 50 into four pieces by three slits to form stick-shaped chip areas 51 to 54, and each chip area 51 to 54 has the same electrode pattern. Is formed, and lead terminals 55a to 55d are provided at one end of the chip 50 to be connected to the electrode groups provided on the chip regions 51 to 54, respectively. The operation of arranging required probe nucleic acids on predetermined electrodes for the biochip 50 is repeated, and the same type of each probe nucleic acid is arranged on each chip region 51 to 54 under the same conditions.
  • the chip area 51 is not immersed in one buffer solution, no operation area
  • the chip area 52 is a negative control area immersed in the same buffer solution containing no biochemical sample
  • the chip area 53 is a known concentration.
  • the area of known concentration immersed in the same type of buffer solution containing the same biochemical specimen, and the chip area 54 serve as a sample area for the test, and at the same time, can be operated under the same conditions.
  • the detection target was approximately 856 bp of DNA around the mutant gyrB gene of the Campylobacter jejuni 0-19 sera, and the central 60-base RNA that complementarily binds to the DNA at the center was identified.
  • Produced as probe RNA For comparison, three types of DNA were used: 30-terminal DNA complementary to the DNA at the end, 30-base DNA at the center and 60-base DNA complementary to the DNA at the center. It was prepared as DNA. In addition, 30 bases were configured not to form a loop in the same chain, and 60 bases were configured to form a loop in the same chain.
  • a glass substrate was used as a substrate for biochip production, and after ultrasonic cleaning in acetone, methanol, and ultrapure water, the surface was etched with 10% hydrofluoric acid for 20 seconds. After ultrasonic cleaning in acetone, methanol and ultrapure water, it was dried with nitrogen gas.
  • a Cr layer having a thickness of about lnm was first provided on a glass substrate using a sputtering apparatus (ULVAC), and then an Au layer having a thickness of about 50nm was provided.
  • the resist layer was removed, and an electric circuit having a configuration in which the Au film electrodes were arranged on the substrate in a required pattern and connected by Au film wires was provided.
  • an insulating mask layer was provided on the circuit-battery portion of the Au film wire etc. except for the Au film electrode where the probe nucleic acid is to be arranged.
  • the substrate was immersed in concentrated sulfuric acid for about 1 hour, and then washed with ultrapure water. Thereafter, the probe RNA, 3 of DNA 'end side in SH (thiol) groups, 5' pro portion RNA was qualified end side Piochin groups, DNA-D-BFR solution (KH 2 P0 4, K 2 HP0 4 , pH 7.0) was dropped on the substrate, allowed to stand in saturated steam for about 15 hours, and probe RNA and DNA were adhered onto the Au film electrode on the glass substrate to obtain a biochip according to the present invention.
  • SH thiol
  • DNA-D-BFR solution KH 2 P0 4, K 2 HP0 4 , pH 7.0
  • the probe After performing hybridization using the DNA strand on the four types of spots of the probe of the present invention and the comparative probe, the probe was modified with avidin-coated fluorescent fine particles. After that, detection of hybridization, ie, fluorescence, was performed using an inverted fluorescence microscope and a CCD camera. Further, the same four kinds of probes were subjected to a fluorescent label modification treatment with avidin-coated fluorescent fine particles without performing the hybridization, and then the fluorescence was detected.
  • probe DNA with 30 bases fluorescent emission is observed regardless of the presence or absence of hybridization with the target DNA, and the deviation can be observed.Since it does not have a loop structure, the fluorescent label can always be modified. That is, it was confirmed that the detection of the target DNA was difficult.
  • the fluorescent label cannot be modified at all before hybridization with the target DNA, and strong fluorescence is observed only from the double-stranded probe after hybridization.
  • the probe with 60 bases has a loop structure, and it is confirmed that only the hybridized probe can be modified with a label at the tip, and that the target DNA can be easily detected. did it.
  • the biochip After the detection with the fluorescent label described above, the biochip is washed and dried, and then, as shown in FIG. 6, the biochip is set on a scanning device in which an electrode probe is mounted on a transfer arm, and the voltage, current, The capacitance was measured. This measurement result In the dry state before the hybridization and the modification of the fluorescent label, the voltage, current, and capacitance measured when the fluorescent label was modified without the hybridization were observed. did.
  • the above-mentioned scanning device was equipped with an optical detector using the above-mentioned CCD camera, and it was hybridized by attaching it to a transfer arm and performing electrical measurement and optical detection of fluorescent labels at the same time. It was confirmed that quantitative detection of the probe could be performed more accurately.
  • RNA was used as the detection target instead of the DNA of Example 1. That is, a gyrB gene (Campylobacter jejuni) was prepared by the RNA synthesis method using in vitro RNA, and purified RNA of about 800 bases was used.
  • a gyrB gene Campylobacter jejuni
  • a biochip according to the present invention was prepared by arranging the probe DNA on the same glass substrate as in Example 1 under the same conditions using a 60-base DNA that binds complementarily to the above-mentioned synthetic RNA at the center. did.
  • the colloidal gold modification method adopted as a method of modifying knowledge is as follows.
  • the biochip described above is washed with an R-BFR solution after hybridization, gently dried with nitrogen gas, and coated with avidin.
  • the colloid (particle size: 10 nm, manufactured by SIGMA) was dropped and allowed to stand for 1 to 3 hours in saturated steam to modify it using the specific binding of biotin and avidin.
  • the modification of the metal microparticles was carried out in the form of a colloidal solution of pH 7.4 using pre-avidin-coated Fe microparticles with an average particle size of about 3 ⁇ 4 ⁇ in order to bind the 5 ′ end of the probe to the biotin-avidin. .
  • Example 2 After hybridization was carried out in the same manner as in Example 1 using the above RNA strand, gold colloid modification or metal fine particle modification was performed, and then SPR measurement was performed. For comparison, at the same time, an H-BFR solution having no target RNA was allowed to react with probe DNA, modified with a label, and then subjected to SPR measurement. In the SPR measurement, the biochip was washed with an R-BFR solution, dried gently with nitrogen gas, and then immediately subjected to SPR measurement. The SPR measurement was performed using the imaging system.
  • colloidal gold modification and metal particle modification can be selectively performed only on the probe DNA hybridized with the target RNA, and thus SPR angle shift amplification is possible, and the biochemical reaction by hybridization is possible. It was confirmed that the body could be detected. Furthermore, when streptavidin was modified in the same manner as in the above-mentioned colloidal gold modification, similarly, it was possible to selectively modify only the probe DNA hybridized with the target RNA.
  • the biochip After detection by the above-described metal particle labeling as in Example 1, the biochip was washed and dried, and then set in a scanning device attached to a transfer arm and placed with an electrode probe as shown in Fig. 6. Then, the voltage, current, and capacitance were measured. This measurement result is used to measure the voltage, current, and capacitance when the metal particle label is modified without the hybridization in the dry state before the modification of the hybridization and the metal particle label. Observed in comparison with the results. As a result of performing an example in which the amount of target RNA was varied in the above-described operation for hybridization, the difference and the degree of electrical change due to the presence or absence of hybridization and the presence or absence of metal particle labeling were determined by SPR detection using metal labeling.
  • the amount of shift in the SPR angle corresponds to the amount of the hybridized target sample, but it was confirmed that the shift in the SPR angle and the change in the electrical measurement showed the same tendency. It was confirmed that the biochip was capable of quantitatively detecting one part as an electrical change.
  • Example 2 the probe DNA was modified in advance with avidin in order to bind the 5 ′ end of the probe modified with a biotin group and the silylation particles with a biotin-avidin instead of the gold or Fe fine particles described above.
  • the procedure was carried out using coated silica particles to produce codidal silica at pH 7.4. Particle size of colloidal silica
  • a detection chip is mounted on a prism, and a He-Ne laser beam is incident on one side of the prism on the back side of the substrate and is transmitted to the other side of the prism. Total reflection was performed and observed from the upper surface of the biochip.
  • a CCD camera was used to detect the scattered light intensity.
  • a modification treatment of the silica fine particle label coated with avidin was carried out without performing the hybridization. As a result, before the hybridization with the target RNA, no modification of the labeling of the force particles could be performed, and no scattered light could be observed.However, after the hybridization, the hybridization with the target RNA was performed. Strong scattered light was observed only from the probe DNA that was subjected to the experiment. In addition, it was possible to detect the target RNA in the same manner in the case of the particles of any size.
  • Example 2 a biochip in which the surface area of FIG. 7 was divided was prepared as in Example 2, and the chip area 51 had no sample, was immersed in the same type of buffer solution as in Example 2, and The chip region 52 is subjected to hybridization in the same manner as in Example 2 using the buffer solution having a known amount of the sample, and the chip region 53 is formed of the buffer having a known amount of the sample.
  • the hybridization was performed using the buffer solution to be tested, and hybridization was performed with the target RNA in the chip area 54, as in Example 2. After washing, drying and drying each area after the modification with the above-mentioned labeling method, before attaching to the transfer arm and placing the electrode probe and CCD camera as shown in Fig. 6. It is set in the scanning device, to measure voltage, current, capacitance with the detection of the scattered light intensity.
  • Example 2 A biochip having the same configuration as in Example 1 except that the glass substrate was a silicon substrate was produced.
  • the probe DNA was modified by a chemical coloring (enzyme) method based on the ABC method using an avidin-pyotin-peroxidase complex instead of the above-mentioned colloidal modification of gold or Fe particles. That is, the composite was dropped and left at room temperature for lhr. Thereafter, the plate was washed with TBS-T (Tris Buffered Saline with Tween 20), a tetramethylbenzine solution was added dropwise, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 5 to 15 minutes.
  • TBS-T Tris Buffered Saline with Tween 20
  • the target RNA was present, the color developed. When the target RNA was not present, no color was formed, and the target RNA could be clearly identified by visual observation. Also, using the same biochip, Instead, a dye coated with avidin was added dropwise, and time modification was performed at room temperature to 37 ° C in saturated steam. After that, the cells were washed with TBS and dried with nitrogen gas. When the target RNA was present, the cells were colored. However, when the target RNA was not present, the cells were not colored, and the target sample could be detected visually.
  • the apparatus was set on a scanning device having an electrode probe mounted on a transfer arm, and the voltage, current, and capacitance were measured. This measurement result is compared with the measurement results of the voltage, current, and capacitance when the label is modified without hybridization in the dry state before the hybridization and the label modification are performed. By comparing, it is possible to capture the changes in the electric current and the electric current, and to complement the above-mentioned visual detection.
  • a biochip was produced in the same manner as in Example 1.
  • the same gyrB gene (856 bp) as in Example 1 was used.
  • the target sample was modified with silica particles having a particle size of 50 nm, and used at a known constant concentration in one buffer.
  • the probe used was a DNA of 60 bases that complementarily binds to the above-mentioned gyrB gene, was configured to have a loop structure, and was previously modified with magnetic material fine particles.
  • the biochip was provided with electrode portions a to f on the surface of the glass substrate in the same manner as in Example 1, and the probe DNA was fixed on each electrode in the same manner as in Example 1. After that, it was washed with R-BFR solution and dried gently with nitrogen gas.
  • the relationship between the electrode area and the concentration of the buffer solution containing the probe DNA was optimized so that the amount immobilized at each electrode was as uniform as possible.
  • the obtained biochip was mounted on a transfer arm, set on a scanning device equipped with a magnetic head probe, and the magnetism on the electrodes was measured.
  • the results of “magnetism detection strength” in Table 1 were obtained.
  • Magnetic detection intensity” is shown as a relative ratio with reference to electrode a.
  • Example 2 the target sample was hybridized to a biochip, washed with an R-BFR solution, and dried gently with nitrogen gas.
  • the biochip after the hybridization operation was subjected to the detection of the scattered light intensity in the same manner as in Example 3, and the result of “scattered light detection intensity” in Table 1 was obtained.
  • the measurement results of the scattered light intensity on each electrode after the operation of hybridization in Table 1 were used.
  • the ⁇ magnetic detection intensity '' in Table 1 was used to grasp the state of the probe on each electrode before the operation of hybridization.
  • the results of “detection intensity after correction” in Table 1 were obtained. That is, the deviation of the detected value of the scattered light intensity was significantly reduced from 37.4 after the measurement to 6.04 after the correction by correcting the probe amount ratio.
  • Electrode a 1 1.02 0.97 1.05 0.95 0.90 Scattered light detection intensity
  • the configuration of a biochip in which probe nucleic acids having a loop structure are arranged on a substrate according to the present invention is that, in a detection operation of a biochemical sample, after performing hybridization with a biochemical sample, modification with a label is performed, It is possible to modify the label only on the hybridized probe and at the required location, and the accuracy of each step is improved during hybridization and label modification, and the detection accuracy of the target sample is significantly improved. .
  • RNA when detecting DNA, the use of RNA as a probe makes DNA-RNA binding more stable than DNA-DNA binding, so that detection sensitivity is higher and more stable than when DNA is used as a probe. There is an advantage that the detection accuracy can be maintained.
  • the biochip according to the present invention is characterized in that, in addition to the characteristic that hybridization of the target probe nucleic acid and the biochemical sample and the accuracy of the label modification itself are inherently high, the biochip is electrically connected as shown in Examples. It can be supplemented as a dynamic, electro-magnetic, electro-optical, or electro-magnetic-optical change, enabling highly accurate detection of biochemical samples and more quantitative detection.

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Description

明細書
生化学反応体の検出方法とバイォチップ 技術分野
この発明は、 ノ^オチップを用いた生化学検体の検出方法の改良に係り、 基 板に配列されたプローブ核酸に例えば解放末端側が基板側に向くようにループ 構造を取らせることで、 目的 DNAや RNAがある場合にのみハイプリダイゼ一 シヨンが起こり、 前記ループ構造が解消されて伸びることから、 ハイブリダィ ズした目的の複合体 (生化学反応体)にのみ任意の標識を修飾することが可能と なリ、 ハイプリダイゼ一ション並びに標識の修飾自体の精度が本来的に高く、 これを電気的、 電気磁気的、 電気光学的あるいは電気磁気光学的な変化として 高精度な生化学検体の検出が実現できる生化学反応体の検出方法とバイオチッ プに関する。 背景技術
遺伝子検出の基本原理は、 DNAが相補的な二重螺旋構造を形成することを 利用するものである。 A (アデニン)と T (チミン)、 C (シトシン)と G (グァニン)が 対をなすことから、 例えば、 AGGTTAC(5'→3')の DNA配列を持つ遺伝子を検 出するには、 プローブとして TCCAATG(3'→5')の配列を持つ DNAを作成し、 サンプリング検体遺伝子中に目的遺伝子が存在すると、 DNAハイプリダイ ゼ一シヨンによって、 プロ一ブ DNAの配列に AGGTTACの配列が結合して二 重螺旋構造を取るため、 これを検出することで目的 DNAを容易に選別できる ことになる。
二重螺旋構造の DNAを検出する方法として、 検体 DNA (サンプリング遺伝子 DNA)に蛍光標識の修飾を施しておき、 プローブ DNAと前記の DNAハイプリ ダイゼ一シヨン操作を行い、 二重螺旋構造を呈した DNA、 すなわち蛍光シグ ナルを発するものを検出する、 蛍光法が知られている。
蛍光標識としては、 蛍光色素そのものの他、 蛍光色素により直接染色された 染色体、 糖蛋白や糖脂質から切り出された糖鎖体に修飾したイオン性蛍光物 質、 あるいはタンパク質、 核酸、 酵素、 細胞等を蛍光色素でタグ化するなど、 種々方法並びに物質で蛍光を発する標識が提案されている。
上述の DNAを初めとして検出対象となる生化学検体には、 RNA及び核酸類 似構造物などの多種多様の構造物が想定される。 これらの生化学検体を効率よ く検出するには、 プローブとして機能する所要の塩基配列を有する DNAや RNA構造体、 PNA構造体を所要のガラス基板などの基板上に配列してチップ 化し、 かかるバイオチップを基本単位として生化学検体とのハイプリダイゼ一 シヨン操作を施し、 当該ハイプリダイゼ一シヨンを完了した目的のプローブと 生化学検体との複合体 (生化学反応体)を確実に検出する必要がある。
検体側に蛍光標識を施す蛍光法を用い、 前記バイオチップにハイブリダィ ゼーシヨンを行いハイプリダイズした DNAを検出する方法では、 蛍光標識の 修飾操作が煩雑であること、 また、 施術者の技量によって前記ハイブリダィ ゼーシヨン並びに標識の修飾効率が異なること、 さらに種々条件で蛍光色素の 光消失が発生すること、 未反応吸着物によるバックダラゥンドノィズの上昇で 検出精度が低下すること等の問題が指摘されている。 発明の開示
この発明は、 前記バイオチップを用いた生化学検体の検出方法の問題に鑑 み、 検出工程を再現性よく簡素化でき、 測定者に過度の技量を要求することが なく、 ハイブリダイゼ一ション並びに標識の修飾工程におけるそれぞれの施術 並びに効率の精度を高め、 最終的に目的検体の検出精度の向上が可能となる生 化学反応体の検出方法とバイオチップの提供を目的としている。 発明者らは、 バイオチップを用いた生化学検体の検出精度の向上を目的に、 ガラスなどの基板にプロ一ブが多数配列されたバイオチップにおいて、 プロ一 ブへ生化学検体をハイプリダイゼ一シヨンさせる方法、 プローブへの蛍光標識 などの標識の修飾方法について詳細に検討したところ、
1)ハイプリダイゼ一シヨンを完了して二重螺旋構造を形成したプローブへ標識 を修飾すると、 ハイプリダイズしていないプローブへも修飾が行われて標識に よる検出が不能となるため、 従来、 予め検体側に標識の修飾を施しておき、 ハ ィプリダイズした後に検体側の標識を検出することで目的検体を検出するが、 条件設定の違いや施術者の技量などによリハイプリダイゼ一シヨン時に非特異 的な吸着が生じて検出精度が変動低下すること、
2)プロ一ブが RNA及び核酸類似構造物である場合、 プロ一ブが DNA構造物で ある時と比較して生化学検体との結合力が強く、 かつ基板に多数のプロ一ブが 配列されているため、 目的物以外との吸着やハイプリダイゼ一シヨンの可能性 が高くノイズが増大して目的生化学検体の検出精度が低下すること、 等の問題があることを知見し、 これらを解消するには、 かかるプローブが多数 配列されるバイオチップにおいて、 根本的に検出精度を向上させ得る新たな基 本構造を与えなければならないことに着目した。
そこで発明者らは、 基板にプロ一ブが多数配列されたバイォチップにおい て、 検出精度を向上させ得る新たな基本構造、 すなわち基板上のプローブが目 的の生化学検体とのみハイブリダイズできる構成を目的に種々検討し、 ハイブ リダイズした生化学反応体にのみ標識を修飾することで基本的に検出精度を高 めることが可能であることに着目し、 またあえて容易にはハイプリダイズでき ないようにし、 目的の生化学検体とのみハイプリダイズするように構成して本 来的な検出精度を高めておくことに着目し、 検出精度を高めることが可能とな るプローブ自体の構造やその構成について鋭意検討した。 その結果、 発明者らは、 ハイブリダイズしたプロ一ブのみが他のハイブリダ ィズしていないプローブより外側へ伸びていると、 その先端にのみ標識が修飾 可能であること、 またプローブの生化学検体と相補的に結合する主要部位が配 列するプロ一ブ内に潜り込んで 、ると容易にはハイブリダイズできないが、 選 択的にかつ確実に目的の生化学検体とのみハイプリダイズ可能であることに着 目し、 これらを実現し検出精度を高めるためにバイオチップに立体的な構造を 与えることができる構成について検討したところ、 基板表面に固定されない解 放端側又はその標識を修飾可能にした部位が基板側に位置するように、 あるい は生化学検体と相補的に結合する主要部位が基板上や表面近傍の基板側に位置 するように、 基板に配列するプローブにループ構造を採用することで、 上述の 選択的なハイプリダイズが実現でき基本的に検出精度を高めることが可能であ ることを知見した。
また、 発明者らは、 かかるループ構造を有するプローブを基板に配列したバ ィォチップの構成は、 生化学検体の検出操作において、 前述の如く先に標識を 修飾した生化学検体を用いてハイプリダイゼ一シヨンするのではなく、 従来と は逆に生化学検体とのハイブリダイゼ一シヨンを行つた後、 ハイブリダイズし たプロ一ブ、 すなわちループ構造を解消してハイブリダイズしているプローブ にのみ、 その先端などの所要の箇所に標識を修飾することが可能となり、 ハイ ブリダイゼーション時並びに標識の修飾時と、 各工程での精度が向上して目的 検体の検出精度が著しく向上するとともに、 基本的に検出精度の向上のために 各工程で施術者の技量を要求しないため、 生化学検体の検出操作カ 較的容易 になることを知見した。
また、 発明者らは、 この発明によるバイオチップの構成は、 ハイブリダィズ したプローブや検体にのみ選択的に標識の修飾が可能であることから、 標識に は従来の蛍光標識、 蛍光色素を初め、 Siを含む金属粒子、 磁性体粒子、 セラ ミックス粒子、 化学発色体、 半導体など任意の粒子を採用できること、 また最 初に設けた標識を目標にさらに別の標識を修飾でき、 多重標識を形成できるこ と、 従って用いた標識の種類に応じて種々の標識の検出方法、 すなわちハイブ リダィズした生化学反応体に設けられる標識の有無を電気的、 磁気的、 光学的 な変化のうち少なくとも 1つを検出 ·識別する方法が採用でき、 また、 検出する 生化学検体の性状に応じて最適な標識や検出方法を採用できることを知見し、 この発明を完成した。
さらに、 発明者らは、 このループ構造を与えたプローブに予め標識を修飾 し、 ハイブリダィゼーシヨン操作前に前記の電気的、 磁気的、 光学的あるいは それらを組み合せた計測を行うことにより、 バイォチップの電極上に配列させ ているプロ一ブの状態、 すなわち各種操作などを行う前の各電極上のプローブ の状態を定量的に把握しておくことが可能となり、 ハイブリダイゼ一ション操 作後、 さらには 2本鎖を形成したプローブ核酸又は生化学検体あるいはその両 方に標識を修飾した後に、 当該標識を目標に検知して 2本鎖を形成した複合体 の有無の評価をするに際し、 予め各電極上のプローブの状態を定量的に把握で きることから、 対比や評価をよリ精度の高いものとすることができること、 ま た、 予めプローブに修飾する標識とハイプリダイゼ一ション操作後に修飾する 標識を別異の種類とするか、 同種であっても寸法や色などの形態を変えて標識 の検出方法を換えたリ複数手段を採用することで、 プローブの状態 (電極上の プロ一ブ量)による検出結果の補正をより高精度で行うことも可能であること を知見し、 この発明を完成した。
この発明は、 基板又はその類似物表面に設けられた 1又は 2以上の電極上に配 列されループ構造を形成したプロ一ブ核酸かあるいは前記構成に加え予め標識 を修飾したプロ一ブ核酸を有するバイオチップを用い、 該チップのプロ一ブ核 酸に生化学検体をハイプリダイゼ一シヨンする工程、 2本鎖を形成したプロ一 ブ核酸と生化学検体との複合体を該バイオチップの表面における電気的、 磁気 的、 光学的な変化の少なくとも 1つにより検出 '識別する工程を有することを特 徴とする生化学反応体の検出方法である。
また、 この発明は、 基板又はその類似物表面に設けられた 1又は 2以上の電極 上に配列されル一プ構造を形成したプロ一ブ核酸かある ヽは前記構成に加え予 め標識を修飾したプローブ核酸を有するバイオチップを用い、 該チップのプ 口一ブ核酸に生化学検体をハイブリダイゼ一シ 3ンする工程、 ハイブリダイ ゼ一ションの実行中又は実行後に 2本鎖を形成したプロ一ブ核酸又は生化学検 体あるいはその両方に標識を修飾する工程、 2本鎖を形成したプロ一ブ核酸と 生化学検体との複合体を該バイオチップの表面における電気的、 磁気的、 光学 的な変化の少なくとも 1つにより検出 ·識別する工程を有することを特徴とする 生化学反応体の検出方法である。
また、 この発明は、 基板又はその類似物表面に設けられた 1又は 2以上の電極 上に配列されループ構造を形成したプロ一ブ核酸かある ヽは前記構成に加え予 め標識を修飾したプローブ核酸を有するバイオチップを用い、 該チップのプ ' ローブ核酸に予め標識を修飾した生化学検体をハイブリダィゼーシヨンするェ 程、 2本鎖を形成したプロ一ブ核酸と生化学検体との複合体を該バイオチップ の表面における電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つにより検出-識 別する工程を有することを特徴とする生化学反応体の検出方法である。
また、 この発明は、 基板又はその類似物表面に設けられた 1又は 2以上の電極 上に配列されル一プ構造を形成したプロ一ブ核酸かあるいは前記構成に加え予 め標識を修飾したプローブ核酸を有するバイオチップを用い、 該チップのプ ローブ核酸に予め標識を修飾した生化学検体をハイプリダイゼ一シヨンするェ 程、 ハイプリダイゼーシヨンの実行中又は実行後に 2本鎖を形成したプローブ 核酸又は生化学検体あるいは両方に標識を修飾する工程、 2本鎖を形成したプ 口一ブ核酸と生化学検体との複合体を該バイオチップの表面における電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つにより検出'識別する工程を有すること を特徴とする生化学反応体の検出方法である。
また、 この発明は、 上述の生化学反応体の検出方法において、
• 検出 ·識別する工程で、 ハイブリダィゼ一シヨン操作前にバイオチップ表 面の電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つを捉える測定を行い得 られた測定結果を基準として、 各工程後のバイオチップのそれら測定結果 と比較する方法、
- 検出.識別する工程で、 ハイブリダィゼ一シヨン操作の前後あるいはさら に標識修飾操作の前後における該バイオチップの表面における電気的、 磁 気的、 光学的な変化の少なくとも 1つを捉える測定を行いこれらを比較する 方法、
- 検出.識別する工程で、 ハイブリダィゼ一シヨン操作前に複数の電極を有 するバイオチップ表面の電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つを 捉える測定を行い各電極上のプローブ核酸の量比を予め求めて各工程後の 測定値に対する補正基準として用いる方法、
• プロ一ブ核酸又は生化学検体に標識を修飾する方法が、 予め修飾されて いた第 1の標識を目標として第 2の標識を修飾する 2段階ある tヽは 3段階以上 の多段修飾である方法、
- プロ一ブ核酸又は生化学検体あるいはその両方に標識を修飾する方法 が、 先に第 1の標識を修飾してさらにそれを目標として第 2の標識を修飾す る 2段階あるレ、は 3段階以上の多段修飾である方法、
- 標識が、 金属微粒子 (Siを含む)、 磁性体粒子、 セラミックス微粒子、 蛍光 標識、 蛍光色素、 色素、 化学発色体、 半導体から選択される方法、 - バイオチップの表面における電気的な変化として検出'識別する方法が、 バイォチップ又は電極における電流値又は電圧値あるいは抵抗値の変化、 ィォチップ表面の静電容量変化のうち少なくとも 1つを検出.識別する方 法、
- バイオチップの表面における電気的、 磁気的な変化として検出 '識別する 方法が、 バイオチップ又は電極における電流値又は電圧値あるいは抵抗値 の変化、 バイオチップ表面の静電容量変化のうち少なくとも 1つを検出 '識 別する工程と、 2本鎖を形成した複合体自体又は複合体のプロ一ブ核酸又は 生化学検体あるいはその両方に修飾された標識、 あるいは複合体と前記標 識からの信号、 例えば磁性を磁気的に検知 '識別する工程を有する方法、
• バイオチップの表面における電気的、 光学的な変化として検出 '識別する 方法が、 バイオチップ又は電極における電流値又は電圧値あるいは抵抗値 の変化、 バイオチップ表面の静電容量変化のうち少なくとも 1つを検出 '識 別する工程と、 2本鎖を形成した複合体自体又は複合体のプロ一ブ核酸又は 生化学検体あるいはその両方に修飾された標識、 あるいは複合体と前記標 識からの信号、 例えば光等を光学的に検知 ·識別する工程を有する方法、
• バイオチップの表面における電気的、 磁気的、 光学的な変化として検出- 識別する方法が、 バイォチップ又は電極における電流値又は電圧値あるレヽ は抵抗値の変化、 バイオチップ表面の静電容量変化のうち少なくとも 1つを 検出 *識別する工程と、 2本鎖を形成した複合体自体又は複合体のプロ一ブ 核酸又は生化学検体あるいはその両方に修飾された標識、 あるいは複合体 と前記標識からの信号を磁気的に検知 ·識別する工程と、 2本鎖を形成した 複合体自体又は複合体のプローブ核酸又は生化学検体あるいはその両方に 修飾された標識、 あるいは複合体と前記標識からの信号を光学的に検知-識 別する工程を有する方法、 を併せて提案する。
さらに、 この発明は、 表面に少なくとも 1つの電極が形成された基板又はそ の類似物からなリ、 前記電極面上に一方端を固定して配列されたプローブ核酸 を有し、 かつ各プローブ核酸がループ構造を有することを特徴とするバイオ チップである。
さらに、 上記構成のバイオチップにおいて、 配列したプローブ核酸は、
1)生化学検体と相補的に結合する主要部位が該基板等側に位置するようル一プ 構造を有する、
2)その電極表面に固定されな 、解放端側又はその標識を修飾可能にした部位が 該基板等側に位置するようループ構造を有する、
3)第 2の標識を修飾可能にした第 1の標識が修飾された部位が該基板等側に位置 するようループ構造を有する、
4)予め修飾された標識が該基板等側に位置するようループ構造を有する、 こと を特徴とするバイオチップを併せて提案する。
また、 上記構成のバイオチップにおいて、
標識が、 金属微粒子 (Siを含む)、 磁性体粒子、 セラミックス微粒子、 蛍光標 識、 蛍光色素、 色素、 化学発色体、 半導体から選択される構成、
基板又はその類似物材料がガラス又は半導体シリコンである構成、
基板又はその類似物を別途用意する電気的回路基板に組み込み可能とした構 成、 を併せて提案する。 図面の説明
図 1A、 図 IBはこの発明によるプローブ DNAのループ構造を示す説明図であ る。
図 2A、 図 2Bはこの発明によるプロ一ブ RNAのル一プ構造を示す説明図であ る。
図 3は、 この発明によるプロ一ブ RNAの他のループ構造を示す説明図であ る。 図 4は、 この発明によるプロ一ブ RNAの他のループ構造を示す説明図であ る。
図 5は、 この発明によるプロ一ブ RNAの他のループ構造を示す説明図であ る。
図 6Aはこの発明によるバイオチップと搬送アームの構成を示す斜視説明図 であり、 図 6Bは搬送アームとスキヤニング装置の構成を示す斜視説明図であ る。
図 7は、 この発明によるバイオチップの他の構成を示す斜視説明図である。 発明を実施するための最良の形態
この発明において、 生化学検体は DNAと RNA及び核酸類似構造物をいい、 核酸類似構造物は、 文字どおりの核酸に類似した構造物であり、 例えば核酸の リボースあるいはリン酸ジエステル部位を修飾した分子ゃリボース-リン酸骨 格をアミド結合に置き換えたペプチド核酸 (PNA)等がある。
この発明において、 プローブ核酸は、 DNAと RNA及び核酸類似構造物をい い、 例えば、 核酸類似構造物としては、 上記と同様である。
この発明において、 プローブ DNAや RNAにループ構造を与えるには、 その 製造過程中又は製造後にループ構造を形成していて基板に配列されるか、 基板 に配列する際にループ構造を形成するか、 基板に配列後にループ構造を形成す るように構成するか、 いずれの構成、 形成方法も採用できる。
例えば、 プローブ DNAの所要の二箇所に相補的な二重鎖を形成可能な対を なす塩基の配列、 一例として図では Aと Tの箇所を予め形成しておき、 図 1Aに 示すごとく、 基板 1にプローブ DNA10を配列した際の固定端 11側近くにある塩 基配列と解放端 12側近くにある塩基配列とで結合部 13が形成されてループ 14 を形成することで、 プローブ DNA10の解放端 12力基板 1上あるいは基板 1上面 近傍に位置するように構成することができる。 また、 図 IBに示す例は、 基板 1に配列したプローブ DNA10が、 図 1Aと同様 にプローブ DNA10の固定端 11側近くにある塩基の配列と解放端側近くにある 塩基の配列とで結合部 13が形成されてループ 14を形成することで、 標識 3を修 飾可能にした部位、 図では解放先端に設けたピオチン基 2が基板 1上あるいは基 板 1上面近傍に位置するように構成してある。
プロ一ブ核酸にループ構造を形成するための前記した対をなす塩基の配列を 設ける箇所を適宜設定することで、 結合部 13箇所が先端側、 中央あるいは固定 端側と種々形態のループ構造を形成し得る。 例えば図 2に示す例は、 プローブ RNA20の解放端 22側の塩基と対をなす塩基配列をプローブ RNA20の中央部側 に配置してある。
図 2Aに示す例は、 対をなす塩基の配列をプローブ RNA20の中央部側に配置 して、 生化学検体と相補的に結合する主要部位 25が図 1のプローブ DNA10構成 例と比較してより基板 1側へ向くようにループ 24を形成してある。
また、 図 2Bに示す例は、 図 2Aと同様構成で標識を修飾可能にした解放端 22 に設けたピオチン基 2が基板 1上方に位置しておリ、 図 1Bに示す例と同様に標 識 3を修飾可能にしたピオチン基 2部分が、 基板 1との距離にかかわらず、 プ 口―ブ RNA20の解放端 22側と対をなす塩基の配列部分、 すなわち中央の結合 部 23とループ 24部分にそして固定端 21と中央の結合部 23との間の脚 26部とで 囲まれる形態であリ、 基板 1とル一プ 24の隙間 Xが標識 3の寸法と同程度あるい はよリ狭いと、 解放端 22及びピオチン基 2は基板 1上でどのような向きであつ ても容易には標識 3で修飾され難くなる。
この発明において、 プローブ核酸には前述の如く、 生化学検体と相補的に結 合する主要部位がループ内に配列されるように、 ループを形成する結合部、 例 えばプローブ核酸の任意の二箇所に対をなす塩基の配列等の結合可能な分子等 の結合部を適宜設けることが可能であリ、 前記ループを形成する結合部の位置 ゃル一プの形状、 あるいはプロ一ブ解放端の向き等は 、ずれの構成も採用でき ることは上記の説明から明らかである。
例えば図 3に示すごとく、 ピオチン基 2を設けた解放端 22がよリ基板 1に近接 するように結合部 23より解放端 22の間がより長い構成、 図 4に示すごとく、 図 3と同様構成で結合部 23よリ解放端 22の間がさらに長くかつピオチン基 2が結 合部 23側を向いている構成、 さらに図 5に示すごとく、 図 2Bに示す例と同様構 成で、 ループ 24部分がより基板 1に近接するよう長くした構成等が採用でき る。
さらに、 図 2の構成は、 上述したように図 1に比較して結合部 23をプローブ RNA20の中央に位置させるために脚 26を設けているが、 ここは特に結合部 23 の対をなす塩基の配列やループ 24部分の生化学検体と相補的に結合する主要部 位 25とは無縁であるから、 必ずしも塩基等の配列である必要はなく、 公知の核 酸類似構造物としたり、 前記の基板 1とループ構造の隙間 Xの設定のために他の 分子と置換したり、 種々構成を採用できる。 さらに、 脚 26の先に結合部 23を 形成してループ 24部を形成しているが、 例えばこの脚 26を Y字型に構成してそ れぞれ結合部 23とループ 24部を設けて、 一つの固定端 21、 脚 26部から 2つの ループを有するプロ一ブ RNA20を形成することも可能である。
また、 この発明において、 プロ一ブ核酸には、 複数の第 2の標識を修飾可能 にした第 1の標識が修飾された部位が基板上又はその近傍の基板側に位置する ようループ構造を有する構成力採用でき、 基板とループの隙間は第 2の標識の 外径と同程度あるいはより狭く、 第 2の標識がここを通過して第 1の標識に容易 に近接することができな 、程度の隙間となるように、 前記の結合部を設ける箇 所を適宜設定するとよい。
プロ一ブ核酸において、 目的の生化学検体と所要のハイプリダイゼ一シヨン が可能であリ、 かつ上述のごとく種々構成のループ構造を形成することが可能 であれば、 短鎖、 長鎖を問わずいずれの塩基配列の構成であっても採用でき る。 また、 この発明において、 塩基数は特に限定しないが、 比較的長鎖の構成 を有するものが望ましく、 例えば本来的に標識が修飾し難い塩基数が 50あるい は 60以上のものが検出精度の向上や検出時のノイズの低減に望ましく、 さらに 塩基数が 100を超えたり、 1000程度の場合であってもこの発明を適用できる。 この発明において、 ループを形成する結合部として、 プロ一ブ核酸の任意の 二箇所に対をなす塩基の配列を設ける例を説明したが、 塩基の配列以外の例え ば分子間結合が可能なもの、 標識の修飾に用いた手段など、 プローブ核酸内に 配置.配列可能であり、 かつペアリングしてループを形成することが可能であ れば、 いずれの分子、 構造物であっても利用できる。
また、 かかる結合部における結合力を、 採用する塩基、 分子種やその配置や 長さによリ適宜選定することも可能で、 ハイプリダイゼ一ションゃ標識の修飾 時における温度条件や他の分子構造物 (検体など)との結合力等を考慮して、 当 該結合部における結合力を選定できる。
従って、 この発明によるプローブ核酸は、 所要の電極上に配列されてかつ前 述のループ構造を有した構成であリ、 所定のハイプリダイゼ一ションの操作に おいて、 目的の生化学検体とのみ 2本鎖を形成することが可能となる。 また、 2 本鎖を形成することにより、 このループが解消されるため、 2本鎖を形成した プロ一ブにのみ標識による修飾が可能となる。
この発明において、 バイオチップを形成するための基板又はその類似物に は、 純然たる板の基板の他、 エッチングなどで溝や凹部などを形成して所要の 凹部又は凸部を使用する基板構成や、 基板などにピン等の突起物を形成した構 成、 棒や立方体などの表面等を利用する形態、 構成など、 それらの表面の所要 箇所に電極を形成でき、 プローブの配列やハイプリダイゼ一ションが可能であ れば、 採用する標識などの検出'識別方法等に応じて、 種々の形態を採用する ことが可能である。 この発明において、 基板としては、 ガラス基板、 樹脂基板、 シリコン基板等 の硬質材料の他、 メンブラン (例えば二トロセルロースなど)等の材料も採用可 能で、 また積層基板などプローブ核酸の配列が実施可能な基板であればいずれ の材質、 構成の基板も採用できる。 また、 基板に電極など種々の薄膜を成膜す る場合は、 その表面粗度はできるだけ平坦なものが好ましい。
入手や取扱いの良好なガラス基板としては、 公知のホゥケィ酸ガラス等が利 用でき、 厚みは厚いほうが取り扱いやすいが、 バイオチップとしては目的に応 じていずれの厚みのものも利用できる。
かかる電極膜を成膜する場合、 基板又はその類似物の洗浄、 乾燥方法として は、 半導体ゥェ一ハゃ各種デバイスを製造する際に採用される、 各種溶剤によ る洗浄、 純水中の超音波洗浄、 各種酸溶液による洗浄、 純水洗浄、 ブロー乾 燥、 スピン乾燥など公知の基板等の洗浄、 乾燥方法を適宜選択、 組合せて採用 できる。
電極材料は、 基板などの所要表面に形成でき、 かつ電極膜上にプローブ核酸 の配列が可能であれば、 公知の電極材料のいずれも採用可能であり、 また、 電 極でありかつプローブ核酸の配列を容易にすることが可能な金、 白金、 銀など の貴金属電極膜を設けることも好ましい。
成膜方法としては、 特に限定されないが、 前述した所要形態の基板などの製 作に採用されるエツチング、 成膜などの半導体デバイスの製造プロセスで採用 される方法を採用することが好ましく、 例えば所要パターンで電極とそのリ一 ド部を形成し、 また膜厚みを一定に制御するため、 スパッタリング、 イオンプ レ一ティング、 CVD等の公知の気相成長による方法が好ましい。
なお、 採用した基板等の材質に応じて、 電極膜との密着性を向上させるため に下地層を適宜成膜することができる。 例えば、 ガラス基板、 石英基板に Cr層 を設けたり、 シラン化合物によって表面改質するなどの手段を採用できる。 この発明において、 基板等の所要電極表面にプロ一ブ核酸を配列する工程 は、 特に限定されるものでなく、 公知のいずれの方法も採用でき、 例えば電極 膜上を酸や純水で洗浄後、 プロ一ブ核酸と緩衝液を用 、て飽和水蒸気雰囲気中 で配列させることができる。
緩衝液としては、 例えば KH2P04と K2HP04を配合して所要 pHにした溶液 が採用できる。 他には、 PBSや、 NaClと Tris-HCl、 NaClと Tris-HClと EDTA を用いるなど、 所要 pHにするため公知の薬液を選定配合した溶液等も採用で きる。
以下にこの発明による生化学反応体の検出方法を詳述する。 まず、 基本工程 を説明すると、
• 基板等の表面にプロ一ブ核酸を配列する工程、
• ループ構造を形成してレ、るプロ一ブ核酸に生化学検体をハイブリダイゼ一 シヨンする工程、
• ハイプリダイゼーションの実行中又は実行後に 2本鎖を形成したプローブ核 酸又は生化学検体あるいはその両方に標識を修飾する工程、
- 前記標識を検出 ·識別する工程、 を有する。
基板表面にプローブ核酸を配列する工程は、 前述した基板の構成、 プローブ 核酸の構成、 その配列方法において、 明らかにしたとおりである。 また、 当該 プローブにループ構造を与えるには、 その製造過程中又は製造後にループ構造 を形成していて基板に配列されるか、 基板に配列する際にループ構造を形成す るか、 基板に配列後にループ構造を形成するように構成するか、 いずれの構 成、 形成方法も採用できる。
ループ構造を形成しているプローブ核酸に生化学検体をハイプリダイゼ一 シヨンする工程は、 特に限定されるものでなく、 公知のいずれの方法も採用で き、 例えば基板の洗浄後に生化学検体と緩衝溶液を用いてハイプリダイゼー シヨンさせることができる。 前記の緩衝溶液としては、 例えば NaClと Tris- HC1と EDTAを配合して所要 pHに保持した溶液が採用できる。
ハイプリダイゼーションの実行中又は実行後に 2本鎖を形成したプローブ核 酸又は生化学検体あるいはその両方に標識を修飾する工程は、 文字どおり 2本 鎖を形成したところのプロ一ブ核酸か生化学検体、 あるいはそれぞれに所要の 標識を修飾するもので、 2本鎖を形成して複合体となっている両者の結合部に 選択的に入り込むようなインタ一カレ一タ一を特に標識とする必要はない。 し かし、 インタ一カレ一タ一を採用したり、 前記標識と共に用いたりすることも 可能である。
この発明において、 前記標識には、 Siを含む金属粒子、 磁性体粒子、 セラ ミックス粒子、 蛍光標識、 蛍光色素、 色素、 化学発色体、 半導体あるいは生化 学検体の検出に利用されている染色体、 糖鎖体、 タンパク質、 核酸、 酵素、 細 胞など、 プローブ核酸又は生化学検体に修飾できるもの、 さらに前記の各種標 識で再修飾できれば!、ずれのものも利用できる。
また、 かかる標識は、 電気的特性として必ずしも導電性である必要はなく、 この発明のバイオチップとしては、 当該標識の有無で電流、 電圧、 抵抗、 静電 容量等の電気的な変化を生じることで検出可能であリ、 さらには電気的な変化 とともに当該標識の有無で磁気的な変化を生じ得る標識を用いたり、 あるいは 当該標識の有無で電気的変化と光学的変化を共に生じ得る標識を用いるなど、 前記標識には 、ずれの構成も採用可能である。
金属粒子標識は、 Siを含み、 Au、 Al、 Ti、 Cr、 Mn、 Fe、 Co、 Ni、 Cu、
Zn、 Moなどの各種金属の微粒子を用いるもので、 特に微粒子の形状や粒径寸 法や均一性は任意に適宜選択できる。 特に必須条件ではないが、 プローブゃ検 体の所要部位に修飾可能とすること、 微粒子表面に成膜可能なことなどから、 5μπι以下、 さらに Ιμπι以下が好ましく、 数 nm〜数百 nmの範囲で所定粒径が均 一でかつ工業安定的に得られる微粒子が好ましい。 磁性体粒子標識には、 磁性粉、 酸化鉄顔料、 磁性流体等の用途で一般的な酸 化鉄系微粒子の他、 磁性トナーや磁性ィンクとして利用されている炭素系微粒 子、 前記金属粒子や後述のセラミックス粒子のなかにも種々の磁性材がありこ れらも利用できる。 また、 磁気記録媒体用磁性粉には、 酸化鉄系等の酸化物、 合金などのメタル系等種々組成や複合体粒子が提案されており、 これらは数 nm〜数百 nmの範囲で所定粒径や形状が均一でかつ工業安定的に得られること から好ましい。 さらに、 磁性インキ *磁性トナーとして利用される着色磁性粉 体は、 核となる磁性粉体の材質、 大きさや形状、 また表面膜の材料、 厚さ、 成 膜数などの組み合わせによって、 種々の磁性や色調を呈するため、 磁気的検出 と光学的検出を同時に実施できる。
セラミックス粒子標識には、 球形や固有の結晶体など、 公知のいずれの形態 も採用できるが、 微粒子表面に成膜可能なことなどから、 5μιη以下、 さらに Ιμπι以下が好ましく、 検出方法に応じて数 nm〜数百 nmの範囲で所定粒径が均 一でかつ工業安定的に得られる Si02、 Ti02、 Zr02、 A1203、 MgOなどのセラ ミックス微粒子が好ましい。
蛍光標識には、 公知のいずれの形態も採用でき、 市販されている蛍光色素に よりタグ化された染色体、 糖鎖体、 タンパク質、 核酸、 酵素、 細胞、 微粒子等 を標識自体の性質を利用したリ後述のごとく抗原-抗体反応を利用して修飾さ せることが可能である。 また、 この発明では蛍光自体は必須でないため、 蛍光 標識等に利用されている染色体、 糖鎖体、 タンパク質、 核酸、 酵素、 細胞をそ のまま利用することも可能である。 また、 蛍光でない色素も標識として利用で きる。
この発明において化学発色体は、 発色反応に関与するものを標識として修飾 するもので、 酵素法等の化学的発色をさせる方法に用いる物質をいい、 例えば ビォチン誘導体で修飾した箇所を用意することで容易に実施できる。 この発明において、 上述の各種標識をプローブ核酸に修飾する方法として は、 例えば金属微粒子等の粒子自体の性質を利用したり、 公知の蛍光標識を修 飾する方法などのように抗原-抗体反応を利用して修飾するなど、 公知のいず れの方法も採用できる。 また、 中性のコロイダル液のごとく、 微粒子を均一分 散させた溶液の形態を利用することで修飾が容易になる。
また、 プロ一ブ核酸の末端にピオチンを修飾しておき、 ストレプトアビジン をコートした金属やセラミックス等の微粒子をピオチン-ァビジンの高い結合 能力を利用して標識となすことができる。 さらに、 プローブ核酸の末端に IgG ゃ抗プロティン物質を付加することで、 タンパクをコートした前記微粒子等を 抗原-抗体反応を利用して修飾することが可能である。
さらに、 生化学検体に前記各種の標識を修飾することも可能であり、 修飾方 法は、 当該検体の所要箇所を適宜標識化できればよく、 上述の公知のいずれの 方法も採用でき、 特に末端を修飾するには上述の方法などいずれの方法も採用 できる。
この発明において、 ハイブリダイゼ一ション後に 2本鎖を形成したプロ一ブ 核酸と生化学検体との複合体を、 バイオチップの基板等の表面における電気的 変化として検出 ·識別する方法は、 例えば、 該基板等表面に流した電流値又は 電圧値あるいは抵抗値の変化、 該基板等表面の静電容量変化のうち少なくとも 1つを検出し、 ハイプリダイゼーシヨン前後の当該変化で前記複合体を識別す ることができる。
具体的には、 バイオチップが複数の検出用スポット (ステージ)に区分けさ れ、 各スポットに所要数の電極を有した構成で、 各スポットにはそれぞれ異な るプロ一ブ核酸がループを形成して各電極上に多数配列されている場合、 ま ず、 ハイブリダイゼ一ション前のドライ時又は所要バッファ一液に浸漬するな どのウエット時に、 基板等又は各電極に交流、 直流あるいはパルス性の所要の 電流を流し (電圧を印加し)、 その際の所要電極間の電流 I値又は電圧 V値あるい は抵抗 R値、 静電容量 C値を測定しておく。
次に、 所要の生化学検体とのハイプリダイゼ一シヨンを行い、 その後直ち に、 あるいは洗浄後所要のバッファ一液中で、 または洗浄工程、 乾燥後に再度 所要電流を流し (電圧を印加し)、 前記と同様の測定を行いその間の変化を観 察、 解析することで、 各プローブ用電極上にあるハイブリダィゼーシヨンによ リ 2本鎖を形成したプロ一ブ核酸と生化学検体との複合体の生成の有無を検知 できる。
また、 各電極上にあるプロ一ブ核酸と生化学検体との複合体生成の有無を検 出するため、 バイオチップの基板等表面に起こる電気的な変化として捉える対 象として、 電流 I、 電圧 V、 抵抗 R、 静電容量 Cのいずれかあるいはそれらを組 み合せた測定用電気回路や電気素子回路を当該バイオチップ上に形成してお き、 前記プローブ用電極と接続する構成なども採用可能である。
また、 プロ一ブ用電極上でのプロ一ブ核酸と生化学検体との複合体生成の有 無を検知するのに、 補足対象の電流 I、 電圧 V、 抵抗 R、 静電容量 C等を検知で きる他のプローブ電極やセンサ一を、 バイオチップ表面に近接させて当該表面 をスキャニングし、 ハイブリダイゼ一ション前後の所要電極間に印加している 電流 I値又は電圧 V値あるいは抵抗 R値、 静電容量 C値の少なくとも 1つの変化を 捉えることで、 ノ、ィプリダイゼーシヨンに伴う複合体の生成の有無を検知でき る。
この発明において、 ハイプリダイゼ一シヨン後に 2本鎖を形成したプロ一ブ 核酸と生化学検体との複合体で、 プロ一ブ核酸又は生化学検体あるいはその両 方に予めあるいはハイプリダイゼ一シヨン後に修飾された標識を有した該複合 体を、 バイオチップの基板等の表面における電気的、 磁気的、 光学的あるいは 電気磁気的、 電気光学的、 電気磁気光学的な変化として検出 ·識別する方法 は、 前述のごとく複合体の形成に伴う電気的な変化を検知することを含むこと はもちろんであるが、 主に選定使用した標識の物理的な性状に起因して発生す る所要電極間の電流 I値又は電圧 V値あるいは抵抗 R値、 静電容量 C値の少なく とも 1つの変化として当該複合体の有無を捉えることができる。
ここで電気磁気的変化とは、 上記のプロ一ブ核酸又は生化学検体ある 、はそ の両方、 あるいはさらに修飾した標識による電気的変化を捉えるとともに、 複 合体自体並びにそのプローブ核酸又は生化学検体あるいは両方に設けられた標 識が有する磁性などを磁気的な検知手段で検知することを意味する。 従って、 該標識が有する磁性などを磁気的な検知手段で検知することはもちろんのこ と、 所要の電極間に電圧を印加したりあるいはバイォチップに磁場を印加し て、 前記複合体又は標識あるいは両者が有するに至った電気的特性又は磁気的 特性あるいはその両方の変化を磁気的な検出手段で検知することも意味する。 例えば、 標識に磁気記録媒体用の磁性微粒子を用いて磁気へッドを検出用プ ローブとして所要の磁場を印加した後の磁気的変化を検知することはもちろ ん、 標識に金属粒子やセラミックス粒子などを用いて、 電圧又は磁場あるいは その両方を印加後に所要電極間の電流 I値又は電圧 V値あるいは抵抗 R値、 静電 容量 C値の変化としてこれを検知することも意味し、 電気的な変化と磁気的な 変化を個別にあるいは同時に検出することも可能である。
また、 電気光学的変化とは、 上記のプローブ核酸又は生化学検体あるいはそ の両方、 あるいはさらに修飾した標識による電気的変化を捉えるとともに、 複 合体自体並びにそのプローブ核酸又は生化学検体あるいはその両方に設けられ た標識からの信号を光学的な検知手段で検知することを意味する。 従って、 該 標識が有する光学的特性を光学的な検知手段で検知することはもちろんのこ と、 所要の電極間に電圧を印加あるいはバイオチップに磁場を印加して、 前記 複合体又は標識あるいは両者が有するに至った電気的特性あるいは光学的特性 の変化を同様に光学的な検出手段で検知することも意味する。 例えば、 標識に金属粒子やセラミックス微粒子を用いて、 CCDを検出用プ ローブとして所要の電圧または磁場を印加あるいは特定波長の光を照射した 後、 あるいはこれら全ての操作後に標識から発せられる信号の変化を検知する ことはもちろん、 電圧又は磁場を印加あるいはレーザ一光の照射、 さらにはこ れらの操作全てを施した後に所要電極間の電流 I値又は電圧 V値あるレ、は抵抗 R 値、 静電容量 C値の変化としてこれを検知することも意味し、 電気的な変化と 光学的な変化を個別にあるいは同時に検出することも可能である。
さらに、 上述の電気磁気的変化と電気光学的変化を組み合せた、 電気磁気的 光学的変化として捉えることが可能であることは明らかであり、 例えば磁性を 有しかつ特定波長で発光する磁性微粒子が開発されており、 これを用いると上 述の工程等を適宜選定して組み合せることで、 複合体及び複合体のプローブ核 酸又は生化学検体あるいはその両方に設けられた標識からの信号を電気的、 磁 気的及び光学的な変化として容易に捉えることができる。
また、 バイオチップの基板では前述の電気的な検出を行い、 同時に基板表面 に近接して光学的に各種標識を検出 ·識別する手段を併用することも可能であ る。 例えば光散乱法、 SPR分光法、 化学発色法、 蛍光検知法、 顕微鏡法、 ィ メ一ジング処理法、 目視法などを採用することができる。
光散乱法は、 金属粒子やセラミックス微粒子標識において、 微粒子が反射す る光で特定波長光を発したり、 レ一ザ一光による散乱光の検知を可能にするも ので、 一般的な構成例を説明すると、 例えばこの発明による金薄膜を設けた検 出チップ基板をプリズム上に載置し、 He-Neレ一ザ一光をプリズムの一方側よ リ基板裏面に入射してプリズムの他方側へこれを全反射させるように条件設定 することで、 検出チップ基板を上面から観察する CCDカメラ側に散乱光を検 出することができる。
また、 セラミックス微粒子自体が有する可視光下での特定色を検出したり、 特定粒径のセラミックス微粒子に対して特定波長の光を照射して特定色を発光 させてこれを検出するなど、 前記セラミックス微粒子の種類やその粒径や性状 等、 条件に応じて公知の検出方法や装置を適宜選定することも可能である。
SPR分光法は、 貴金属薄膜表面における屈折率変化を検出するもので、 例え ばガラス基板上に金電極を形成し、 金薄膜電極上にプロ一ブ核酸を固定化し、 プロ一ブ核酸が検体中の目的 RNAなどの核酸類とのハイブリダイゼーション により二本鎖を形成すると、 金薄膜電極上の屈折率が変化するために SPR角 (反射率が最小となる入射角度)がシフトするが、 SPR角のシフトはハイプリダ ィゼ一シヨンした目的検体の量と対応するために、 SPR測定によって目的検体 の定量的な解析が可能となる。
また SPR分光法において、 標識の修飾によって前記信号の増幅が可能であ る。 具体的に説明すると、 基板の貴金属薄膜表面にプローブ核酸を配列してバ ィォチップを作製し、 ハイプリダイゼ一シヨンの実行中又は実行後のプローブ に貴金属コロイドゃ金属粒子等の標識を修飾すると、 末端に標識への接着部位 を修飾したプローブは、 ル一プ (へァピン)構造を取る場合は標識が全く接着で きないことは前述したとおりであり、 このル一プ構造を取るプロ一ブはその立 体的構造により選択的に目的検体とハイプリダイズすることで基本的な検出精 度が向上する。
また、 目的検体とのハイプリダイゼ一シヨン反応によってプローブ核酸の ループ力 军消された状態になリ、 ノ、ィプリダイズされたプローブ核酸に選択的 に標識の修飾が行われることで、 前述の SPR角のシフトを増幅でき、 高精度の 検出が可能になる。 さらに、 ハイブリダィゼーシヨン後に 2本鎖を形成した目 的検体を SPR分光法にて検出する工程は、 液中あるいは大気中のいずれも可能 である。 SPR法の測定システムとしては、 公知のいずれの構成も採用可能であ る。
化学発色法は、 免疫組織染色方法が応用できる。 これは予め 4つの結合部位 をもつアビジンと複数箇所でピオチン化されたペルォキシダーゼ (HRP)を適当 な割合で混合し、 多数の HRPを含み一部にァビジンのピオチン結合部位を残 す複合体 (ABC)を形成させて、 この複合体 (ABC)と予め組織中の標的抗原と結 合したピオチン化抗体とを反応させて標的抗原を検出するもので、 例えばプ 口一ブにピオチンで修飾した箇所を用意することで容易に適用できる。 また、 APR法など公知の免疫組織染色方法も応用できる。
蛍光検知法は、 種々の蛍光色素自体をプローブ核酸又は標識の所要部位に着 設したり、 又は蛍光色素によリタグイ匕された染色体、 糖鎖体、 タンパク質、 核 酸、 酵素、 細胞、 微粒子等を標識自体の性質を利用したり前述のごとく抗原- 抗体反応を利用してプロ一ブ核酸、 生化学検体に修飾させたものを検出する が、 顕微鏡と CCDカメラを組み合せた蛍光イメージング検出システム、 共焦 点顕微鏡システム等、 また種々の光学装置やイメージング装置を併用した検出 方法が提案されており、 前記蛍光標識の種類やその蛍光自体の性状等、 条件に 応じて公知の検出方法や装置を適宜選定するとよい。 また、 蛍光でない色素も 同様に検知できる。
顕微鏡観察法は、 公知の蛍光や散乱光などの検出システムとして、 顕微鏡と CCDカメラを組み合せたィメ一ジング検出システム、 共焦点顕微鏡システ ム、 金属顕微鏡等、 また種々の光学装置やイメージング装置を併用した検出方 法が提案されているが、 これらをそのまま利用することが可能である。
イメージング処理法は、 カメラ又は顕微鏡にてスキャニングした画像をディ スプレイで目視で確認できるように拡大、 鮮鋭化、 着色化等、 各種の公知の画 像処理を施したり、 あるいはコントラストや特定形状、 寸法の粒子をソフト ウェアー的に検出するために公知の画像処理を施すなどの方法である。
目視法は、 この発明のバイオチップがハイプリダイゼ一シヨンによリ 2本鎖 を形成したプロ一ブ核酸と目的検体にのみ粒子標識を修飾できることから可能 になるものであり、 詳述した各種の標識粒子の集合体を目視にて観察し、 目的 検体の有無を検出するものである。 この発明において、 標識は上述のごとく独自の色や形を有しており、 これら は集合して目視可能になるもので、 検出に際しての第 1の標識と第 2の標識がそ れぞれプローブ又は検体に設けられる場合はこれらを目視することになる。 ま た、 第 1の標識をターゲットにして第 2の標識が修飾される場合は、 第 1の標識 と第 2の標識の両方を目視することになるが、 第 1の標識が目視できないような 場合は第 2の標識のみを目視することになる。
また、 上述の第 1の標識を修飾してさらにそれを目標として第 2の標識を修飾 する 2段階修飾、 あるいは先に修飾した標識にさらに修飾を繰り返す多段修飾 を行って、 目視可能な標識粒子の集合体となすことが可能である。
この発明において、 バイオチップ上のループ構造を形成して配列されて ヽる プローブ核酸に予め標識を修飾しておくことで、 ハイプリダイゼーシヨン操作 などを行う前の各電極上のプロ一ブの状態を定量的に把握することを可能とす るが、 このプローブに修飾する標識は、 特に限定されることなく前述のいずれ の標識でもよい。 また、 プロ一ブ核酸が有しているル一プ構造の 、ずれの位 置、 例えば図示のループ部や脚部等の部位に設けられてもよく、 さらにプロ一 ブ核酸の電極への配列と同時あるいは配列後に修飾するなど、 バイォチップの 作製工程のいずれの工程において修飾されてもよく、 要するにハイプリダイ ゼ一ション操作前の状態にある当該バイオチップの各電極上に配列したプロ一 ブの状態を定量的に把握できればよい。
また、 この発明においてより検出精度や定量性を向上させるために、 例え ば、 バイオチップのプローブ核酸に予め修飾する標識とハイプリダイゼ一ショ ン操作後の生化学検体に修飾する標識を、 磁気的に検出可能な標識と光学的に 検出可能な標識とするなど、 別異の種類とすることが可能であり、 これにより バイォチップの初期検知の際には磁気センサ一を用いてプローブ核酸の量を把 握し、 ハイプリダイゼ一シヨン操作後は散乱光強度センサ一を用いて生化学反 応体を検出することができる。 さらに、 前記 2種の標識にセラミックス粒子標 識を用いた場合、 例えば粒子外径を変えることで同じ散乱光強度を見るにも照 射する光を複数種とすることで解析分解能を高めたリ、 プロ一ブ核酸に修飾し た標識又は生化学検体に修飾した標識などの目的標識のみを個別に検知するこ となどが可能となる。
さらに、 予め標識を修飾したこの発明によるバイオチップは、 上述の如く当 該チップに配置した各電極上に固定化されたプローブ核酸の量比を前もって正 確に把握することが可能で、 各種の操作を行った後に行う前述の電気的、 磁気 的、 光学的な各種手段で得られた各電極上の生化学検体からの測定信号に基づ く対比や解析等の測定結果に対して、 既知の各電極上のプローブ核酸の量比に 応じて補正することで、 生化学反応体の定量検出を極めて高精度に実施可能と する。
また、 プローブに修飾する標識がハイプリダイゼ一ション操作後に修飾する 標識等と明確に区別できるように標識の構成や寸法あるいは種類を適宜選定し ておくことで、 各電極上に配列したプローブの状態を定量的に把握するため に、 前述のようにハイプリダイゼーシヨン操作前に所要の測定を実施すること なく、 ハイプリダイゼ一ション操作やその後に行う標識の修飾を完了した後、 例えば電気的、 磁気的、 光学的な変化の 1つ以上を測定することで各電極上の プロ一ブを定量的に把握することが可能である。 従って、 例えばプロ一ブ核酸 のル一プ部ゃ脚部等の部位に蛍光色素や微小な磁性体粒子を修飾して、 2本鎖 を形成した生化学反応体には比較的粒径の大きなセラミックス粒子を修飾する などの場合、 各種操作の完了後の一回の測定工程のみで各電極上のプローブの 量比とともに、 2本鎖を形成した生化学反応体の量比などの目的の検出、 識別 が可能となり、 操作上の利便性が向上する。
この発明のバイォチップにおいて、 各電極上のプロ一ブ核酸の量比を求める ためにプロ一ブ核酸に予め標識を修飾した例を以上に詳述したが、 標識を修飾 しない場合でも前述した電気的な変化を求める手段を用いてかかるプローブ核 酸の量比を求めることが可能であることは言うまでもないことである。 プロ一 ブ核酸に予め標識を修飾しない場合、 ハイプリダイゼーシヨン操作前にかかる 量比を電気的な変化を基に求めることも可能であリ、 またハイプリダイゼー シヨンや修飾などの各種操作後にまとめて、 電気的、 磁気的、 光学的な変化と して測定してプロ一ブ核酸の量比を求めることも可能である。
この発明において、 バイオチップの形態は種々の構成を採用できることは前 述したとおりであるが、 以下に一構成例を説明する。 ここではバイオチップに 矩形のシリコン基板及びガラス基板を用い、 これを図示しないキャリンダケ一 スに収納してハンドリングするが、 ケースとしては通常の蓋つきの容器として バイオチップを出し入れする構成と、 例えば市販の DVD-RAMなどのキヤリン グケースの如く、 検出のためのスキャニング装置に当該キヤリングケースを揷 入すると外装ケースから内蔵されたバイオチップのみを該装置内に露出させる 構成を採用した。 すなわち、 ハンドリングを人手で行う場合、 また機械による 半自動化及び全自動化を行う場合を想定している。
図 6Aに示すバイォチップ 30は、 キヤリングケースより取り出して半自動化 のための搬送アーム 32に保持させるが、 ここではバイオチップ 30のリ一ド端 子 31a,31bを搬送アーム 32のコ字型の保持部 33内の接続端子内に揷入させて通 電可能にして保持する構成を採用している。 図 6Bに示す搬送アーム 32のコ字 型の保持部 33の溝に保持されたバイォチップ 30は、 このドライ状態で該ァー ム 32を通じて所要の電圧、 電流を印加して該チップの各電極上に所要のプロ一 ブ核酸が配列された状態における、 電流や抵抗値などの電気的な計測を行うこ とができる。
なお、 リ一ド端子 31a,31bは詳細に図示しないが、 ここでは基板表面に所要 パターンのリ一ド用膜を成膜してあり、 リ一ド端子 31aは当該端子とは反対側 のバイォチップ 30の半分の領域 αにあるプロ一ブを配列した複数の電極から リードしてあり、 リ一ド端子 31bは残リ半分の領域 βにあるプローブを配列し . た複数の電極からリードしてある。 ここでバイォチップ 30の表面を領域 ct、 領 域 βに分割するのは、 ハイプリダイゼーシヨン前後における所要の計測を確実 に対比できるようにするためである。
すなわち、 両方の領域に全く同じパターンで電極並びに所要の各種プローブ 核酸が適宜配列されておリ、 領域 αは同部のみをバッファ一液に浸漬して所要 の生化学検体とのハイプリダイゼーシヨンを実施し、 あるいはさらに所要の標 識の修飾を実施するが、 領域 βはハイブリダィゼーシヨン、 標識の修飾を実施 せずにおき、 前記ハイブリダィゼ一シヨンの完了後の領域 αに洗浄、 乾燥を施 し、 両方の領域がドライ状態で該アーム 32を通じて所要の電圧、 電流を印加す ることで、 ハイブリダイゼ一ション前の領域 βとハイブリダイゼ一ション後の 領域 αの各状態における、 電流や抵抗値などの電気的な計測を行うことができ る。
また、 図 6Βに示すごとく、 搬送アーム 32に保持したままスキャニング装置 40に揷入するが、 装置内にはバイオチップ 30表面のプローブ核酸を載せた電 極に対して、 例えば上側から近接できる電極プローブ、 CCDプローブ、 磁気 ヘッドなどの電気的、 光学的、 磁気的なプローブのいずれかを配置するか、 あ るいはこれらを組み合せて配置してあり、 上記のごとく搬送アーム 32側からの 通電による計測と併せて、 ハイブリダィズ前後の電気的、 光学的、 磁気的な計 測を実施することができる。 こうしてハイプリダイズ前後の計測結果を比較す ることで、 ハイプリダイゼ一ション後に 2本鎖を形成したプロ一ブと生化学検 体との複合体、 すなわち生化学反応体の有無を容易に検出することができる。 上述の例では基板の一方主面を 2分割するが、 多数に分割したり、 また両面 を同様構成とするほか、 スリットを設けて領域を分割したり、 あるいは領域を 分けることなく複数の短冊状板や棒材を用いることも可能であリ、 さらにハイ ブリダィゼ一シヨン時に前記領域 β部分を蓋や容器部材などでシールしておく 構成も採用できる。 なお、 バイオチップの領域 ctに前記ハイプリダイゼ一シヨン操作を施す時 に、 先の例は領域 βには何らの操作も施さないが、 例えば同領域を生化学検体 を含まない同種バッファ一液に浸漬して同領域をネガテイブコントロールとす ることができ、 これにより上述した操作において複合体の有無を容易に検出す ることができる。 また、 このバイオチップ 30を 2枚使用することで、 バッ ファー液に対して無操作領域、 ネガティブコントロール領域、 既知濃度の領 域、 そして検査のサンプル領域を設定することができる。
さらに、 図 7に示すバイォチップ 50は、 板状のバイオチップ 50を 3本のス リットで 4分割してスティック状のチップ領域 51~54を作製し、 各チップ領域 51~54には同じ電極パターンを成膜して、 チップ 50の一方端にリ一ド端子 55a~55dを設けてそれぞれチップ領域 51〜54上に設けた電極群と接続する構 成からなる。 このバイォチップ 50に対して所要のプロ一ブ核酸を所定の電極上 に配置する操作を繰り返して各チップ領域 51~54上に同じ条件で同種の各プ ローブ核酸を配置する。 次に、 例えばチップ領域 51はバッファ一液にも浸漬し なレ、無操作領域、 チップ領域 52は生化学検体を含まない同種バッファ一液に浸 漬するネガティブコントロール領域、 チップ領域 53は既知濃度の生化学検体を 含む同種バッファー液に浸漬する既知濃度の領域、 そしてチップ領域 54は検査 のサンプル領域として、 同時に同条件の操作を可能にする。
なお、 個別に同じ電極パターンを形成した複数のスティック状のバイォチッ プを用いることも可能であり、 チップ表面の各電極に同時にプロ一ブ核酸の配 列を行った後、 先の例と同様操作を行う他、 例えば生化学検体の含有濃度がそ れぞれ異なる複数種のハイプリダイゼ一シヨンを複数のバイオチップに施し、 さらにこれらを所要の標識を修飾したものとしないものに分けた後、 搬送ァ一 ムにこれら複数のバイオチップを装着して前述の計測を実施することで、 ハイ プリダイゼ一シヨンをよリ正確に定量的に計測することが可能となる。 実施例
実施例 1.
検出目標を、 キャンピロバクタ一 'ジエミ二 (Campylobacter jejuni)0-19血 清型 gyrB遺伝子変異部周辺のおよそ 856bpの DNAとし、 これとその中央部で 相補的に結合する中央 60塩基の RNAをプローブ RNAとして作製した。 又、 比 較のために前記 DNAと末端部で相補的に結合する末端 30塩基の DNA、 中央部 で相補的に結合する中央 30塩基の DNA、 中央 60塩基の DNAの 3種類をプロ一 ブ DNAとして作製した。 なお、 30塩基のものは同一鎖内でループを形成しな いように、 60塩基のものは同一鎖内でループを形成するように構成した。 バイオチップ作製するための基板にガラス基板を用い、 これをアセトン、 メ タノ一ル、 超純水中で超音波洗浄した後、 10%フッ酸で表面を 20秒間エツチン ク"を行ない、 さらに、 アセトン、 メタノール、 超純水中で超音波洗浄した後、 窒素ガスで乾燥させた。
その後、 所要パターンでレジスト層を設けた後スパッタ装置 (ULVAC)を用 ぃガラス基板にまず約 lnm厚みの Cr層を設け、 次 、で約 50nm厚みの Au層を 設けた。 次にレジスト層を除去して基板に所要パターンで Au膜電極を配列し かつ Au膜線で結線した構成の電気回路を設けた。 またさらに、 プロ一ブ核酸 を配列する予定の Au膜電極を除く Au膜線等の回路バタ一ン部分には絶縁マス ク層を設けた。
前記基板を濃硫酸中に 1時間程度浸漬した後、 超純水で洗浄した。 その後、 プローブ RNA、 DNAの 3'端側を SH (チオール)基で、 5'端側をピオチン基で修 飾したプロ一ブ RNA,DNA-D-BFR溶液 (KH2P04、 K2HP04, pH 7.0)を基板 上に滴下し、 飽和水蒸気中に約 15時間放置し、 プローブ RNA、 DNAをガラス 基板の Au膜電極上に付着させてこの発明によるバイオチップとなした。 ハイブリダィゼ一シヨンは、 R-BFR溶液 (NaCl、 Tris-HCL 117.4)と11- BFR溶液 (NaCl、 Tris-HCL EDTA、 pH 7.4)で洗浄後に、 所要濃度からなる 検体 DNAの H-BFR溶液を滴下し、 約 16~24時間放置して実施した。
この発明のプローブと比較のプローブの 4種のスポッ卜に対して、 前記 DNA 鎖を用いてハイプリダイゼ一シヨンを実施した後、 ァビジンをコートした蛍光 微粒子をプローブに対して修飾した。 その後、 蛍光倒立顕微鏡と CCDカメラ を用いてハイプリダイゼ一シヨンの検出、 すなわち蛍光の検出を実施した。 また、 同様の 4種のプローブに対して、 前記ハイブリダィゼ一シヨンを実施 することなく、 アビジンをコートした蛍光微粒子で蛍光標識の修飾処理を行 い、 その後蛍光の検出を実施した。
塩基数 30のプロ一ブ DNAにおいては、 目的 DNAとのハイブリダイゼ一ショ ンの有無にかかわらずレ、ずれも蛍光発光が観測され、 ループ構造を有していな いため、 常に蛍光標識の修飾が可能であること、 すなわち目的 DNAの検出が 困難であることを確認した。
一方、 塩基数 60のプローブ DNA及びプローブ RNAにおいては、 目的 DNA とのハイブリダイゼ一ション前では蛍光標識の修飾が全くできず、 ハイブリダ ィゼーシヨン後では二本鎖を形成したプローブからのみ強い蛍光を観測するこ とができ、 塩基数 60のプローブはループ構造を有しており、 ハイブリダィズし たプローブにのみ、 その先端に標識を修飾することが可能であり、 目的 DNA の検出が容易であることが確認できた。
また、 この発明のプローブ RNAの場合は、 DNA-RNA結合の安定性が DNA- DNA結合よリ強いため、 比較の 60塩基のプローブ DNAに比較して検出感度が より高くなることを確認した。
また、 上述の蛍光標識による検出後に、 バイオチップを洗浄して乾燥させた 後、 図 6に示すごとく、 搬送アームに装着して電極プローブを配置したスキヤ ニング装置にセットして、 電圧、 電流、 静電容量を測定した。 この測定結果 を、 前記のハイブリダイゼ一シヨンと蛍光標識の修飾を行う前のドライ状態の 場合、 ハイブリダィゼ一シヨンなしで蛍光標識の修飾を行った場合の電圧、 電 流、 静電容量の測定結果と対比し観察した。
この発明と比較のスポットの対比において、 ハイブリダイゼ一シヨンの有 無、 蛍光標識の有無による電気的変化が、 先の蛍光標識による検出結果と一致 することを確認し、 ハイプリダイゼ一シヨンを電気的な変化として検出可能な バイオチップであることを確認した。 前述の操作でハイプリダイズする際の目 的 DNAの量を種々換えた場合も実施した結果、 目的 DNA量に相関した信号の 変化が検出でき、 定量的な検出が可能であることを確認した。
さらに、 上記のスキャニング装置に前述の CCDカメラを用いた光学検出器 を装着した構成となし、 搬送アームに装着して電気的な計測とともに蛍光標識 の光学的検知を同時に行うことで、 ハイブリダイズしたプロ一ブの定量的な検 出がよリ正確に実施可能であることを確認した。
実施例 2
検出目標には、 実施例 1の DNAに換えて RNAを使用した。 すなわち、 gyrB 遺伝子 (Campylobacter jejuni)よリ、 ィン'ビト口 RNA合成法によリ作製し、 精製した約 800塩基の RNAを用いた。
また、 プロ一ブ DNAには上記の合成 RNAと中央で相補的に結合する 60塩基 の DNAを用いて、 実施例 1と同様のガラス基板に同様条件で配列してこの発明 によるバイオチップを作製した。
ここで槔識の修飾方法として採用した金コロイド修飾方法は、 上記のバイオ チップをハイプリダイゼーシヨン後に R-BFR溶液で洗浄し、 窒素ガスでおだや かに乾燥させ、 アビジンをコートした金コロイド (粒径 10nm、 SIGMA製)を滴 下し 1〜3時間、 飽和水蒸気中で放置することで、 ピオチンとアビジンの特異的 結合を利用して修飾させた。 また、 金属微粒子修飾は、 プロ一ブの 5'端側とピオチン-ァビジン結合させる ため、 予めアビジンコートした平均粒径力 ¾μιη程度の Fe微粒子を用いて、 pH 7.4のコロイダル液となして実施した。
前記の RNA鎖を用レヽて実施例 1と同様にハイブリダイゼーシヨンを実施した 後、 金コロイド修飾又は金属微粒子修飾を行い、 その後 SPR測定を行った。 ま た比較のため、 同時に目的 RNAを有しなレヽ H-BFR溶液をプロ一ブ DNAと反応 させた後、 標識による修飾処理をしてから SPR測定を行った。 なお、 SPR測定 は、 バイオチップを R-BFR溶液で洗浄後に窒素ガスで穏かに乾燥し、 その後速 やかに SPR測定を行なった。 SPR測定はィメ一ジングシステムを用いて行つ た。
その結果、 目的 RNAとハイブリダイゼ一シヨンしたプロ一ブ DNAのみに選 択的に金コロイド修飾及び金属微粒子修飾が可能であり、 従って、 SPR角度シ フト増幅が可能で、 ハイプリダイゼ一シヨンによる生化学反応体の検出が可能 であることを確認した。 さらに、 前記金コロイド修飾と同様方法でストレプト ァビジンを修飾した場合も同様に目的 RNAとハイブリダイゼ一シヨンしたプ 口一ブ DNAのみに選択的に修飾が可能であつた。
さらに、 比較のため、 前記ハイブリダィゼ一シヨンを実施することなく、 ァ ビジンをコートした Fe微粒子標識の修飾処理を行った。 しかし、 目的 RNAと のハイブリダイゼ一ション前(しな 、場合)は Fe微粒子標識の修飾が全くでき ず、 ハイブリダィゼ一シヨン後では Fe微粒子標識の修飾が行われ、 前記 SPR測 定においてハイプリダイゼ一シヨン前後で明らかな差が見られた。
また、 上記のハイプリダイゼーシヨンを実施する際に、 目的 RNAがある場 合と、 ない場合を設定して、 Fe微粒子コロイダル修飾を行い、 その後、 微分干 渉顕微鏡にて観察を行った。 目的 RNAがある場合には、 Fe微粒子が多数観察 されたが、 目的 RNAがなレ、場合には、 Fe微粒子はほとんど観察されなかつ た。 なお、 前記バイオチップのいずれの場合も、 表面に粒状感のあるなしで明 確に目的 RNAの存在を目視で区別することができた。
また、 実施例 1と同様に上述の金属粒子標識による検出後に、 バイオチップ を洗浄して乾燥させた後、 図 6に示すごとく、 搬送アームに装着して電極プ ローブを配置したスキャニング装置にセットして、 電圧、 電流、 静電容量を測 定した。 この測定結果を、 前記のハイブリダィゼ一シヨンと金属粒子標識の修 飾を行う前のドライ状態の場合、 ハイプリダイゼ一シヨンなしで金属粒子標識 の修飾を行った場合の電圧、 電流、 静電容量の測定結果と対比し観察した。 前述の操作でハイブリダイズする際の目的 RNAの量を種々換えた例を実施 した結果、 ハイブリダィゼ一シヨンの有無、 金属粒子標識の有無による電気的 変化の差異やその程度は、 金属標識による SPR検出と一致すること、 すなわち SPR角のシフト量はハイプリダイゼーシヨンした目的検体の量と対応するが、 この SPR角のシフトと電気的測定の変化量が同傾向を示すことを確認し、 ハイ プリダイゼ一シヨンを定量的に電気的な変化として検出可能なバイオチップで あることを確認した。
実施例 3
実施例 2において、 プローブ DNAの修飾に、 前述の金又は Fe微粒子に換え て、 ピオチン基で修飾したプロ一ブの 5'端側とシリ力粒子とをピオチン-ァビジ ン結合させるため、 予めアビジンコートしたシリカ粒子を用いて、 pH 7.4のコ 口ィダルシリカとなして実施した。 コロイダルシリカとしては粒径が
100nm~800nmの種々粒径のものを用いた。
スキャニング装置におけるハイプリダイゼ一シヨンの検出機構には、 検出 チップをプリズム上に載置し、 He-Neレ一ザ一光をプリズムの一方側よリ基板 裏面に入射してプリズムの他方側へこれを全反射させて、 バイオチップの上面 から観察する CCDカメラで散乱光強度を検出する方法で実施した。 また、 比較のため、 前記ハイブリダィゼーシヨンを実施することなく、 アビ ジンをコートしたシリカ微粒子標識の修飾処理を行った。 その結果、 目的 RNAとのハイブリダイゼ一ション前では、 シリ力微粒子標識の修飾が全く実 施できず、 散乱光を観測することができなかったが、 ハイプリダイゼーション 後では目的 RNAとのハイブリダイゼ一ションが行われたプロ一ブ DNAからの み強い散乱光を観測することができた。 また、 いずれの粒径のシリ力粒子の場 合も同様に目的 RNAの検出が可能であつた。
次に、 図 7の表面領域を分割したバイォチップを実施例 2のとおり作製し、 チップ領域 51は検体を有しなレ、実施例 2と同種のバッファー液に浸漬しさらに 上述のシリ力粒子標識による修飾を行い、 チップ領域 52は既知の量の検体を有 する該バッファ一液を用いて実施例 2と同様にハイブリダイゼ一シヨンを行 い、 チップ領域 53は既知の量の検体を有する該バッファー液を用いて実施例 2 と同様にハイプリダイゼ一シヨンを行いかつシリ力粒子標識による修飾を行 い、 チップ領域 54は実施例 2と同様に検査対象のバッファー液を用いて目的 RNAとのハイブリダイゼ一シヨンを行い、 上述のシリ力粒子標識による修飾 後に、 各領域を洗浄して乾燥させた後、 図 6に示すごとく、 搬送アームに装着 して電極プローブと CCDカメラを配置した前記スキャニング装置にセットし て、 散乱光強度の検出とともに電圧、 電流、 静電容量を測定した。
前記測定の結果、 予め測定したプロ一ブ DNAを配列したままの状態の場合 の測定結果とともに、 ネガティブコントロールとして前記のハイプリダイゼ一 シヨンとシリ力粒子標識の修飾を行った領域 51の場合、 既知量の目的検体とハ ィプリダイゼ一シヨンを行った領域 52の場合、 検査対象の目的検体とハイプリ ダイゼーションしてシリ力粒子標識の修飾を行った領域 53(既知量)及び領域 54(サンプル)の場合の 4種の電圧、 電流、 静電容量を同時に測定するととも に、 各領域の散乱光強度の検出結果も得られた。 また、 図 7の各領域と同じ電極パターンを個別のスティック状基板にそれぞ れ 2か所を有する構成のバイォチップを作製し、 先と同様の操作並びに目的 RNAとのハイプリダイゼ一シヨンを行い、 その後シリ力粒子標識による修飾 後に、 洗浄して乾燥させた後、 前記スキャニング装置にセットして、 散乱光強 度の検出とともに電圧、 電流、 静電容量を測定した。 この際、 各チップは 2領 域を有するので前記操作を行つた領域と該操作なしの領域となし、 またハイブ リダイゼ一シヨンには目的 RNAの量を予め特定して種々の含有量となる 5種の バッファ一液を用意しておき、 5枚のバイオチップに該バッファー液による 5種 のハイブリダイゼーシヨンを実施した。
これらの測定結果より、 目的検体とのハイブリダイゼ一シヨンによリ二本鎖 を形成したプローブ、 さらにシリ力粒子標識が修飾されたプローブが存在する 場合の電圧、 電流、 静電容量の変化、 散乱光強度の変化と目的 RNA濃度との 間に一定の相関関係を見い出すことができ、 先にハイブリダィゼーシヨンを実 施したバイォチップにおける測定結果と比較することにより定量的な測定が可 能となることを確認した。
実施例 4
実施例 1において、 ガラス基板をシリコン基板とする以外は同様の構成のバ ィォチップを作製した。 また実施例 2において、 プローブ DNAの修飾に、 前述 の金又は Fe微粒子コロイダル修飾に換えて、 アビジン-ピオチン-ペルォキシ タ一ゼ複合体を用いる ABC法による化学発色 (酵素)法を実施した。 すなわち、 前記複合体を滴下して室温で lhr放置した。 その後、 TBS-T(Tween20添加 Tris Buffered Saline)で洗浄し、 テトラメチルべンジン溶液を滴下し、 5〜15min、 室温で放置した。
その後、 超純水にて洗浄し、 窒素ガスにて乾燥させた。 その結果、 目的 RNAがある場合は発色した力 目的 RNAがない場合は発色せず、 明確に目視 にて識別することができた。 又、 同じバイオチップを用い、 上記の ABC法に 換えてアビジンをコートした色素を滴下し、 室温〜 37°C、 飽和水蒸気中で 時間の修飾を行った。 その後、 TBSで洗浄し、 窒素ガスにて乾燥させたとこ ろ、 目的 RNAがある場合は着色したが、 目的 RNAがない場合は着色せず、 明 確に目視にて目的検体を検出できた。
上記実施例において、 実施例 2と同等構成のバイオチップを用い、 ハイプリ ダイゼ一シヨン後アビジンをコートした色素を滴下し、 室温〜 37°C、 飽和水蒸 気中で 1~2時間の修飾を行った。 その後、 TBSで洗浄し、 さらに、 予め染色さ れたタンパクにピオチンを修飾した第 2の標識を、 上記条件と同様に滴下し て、 修飾処理した。 その後 TBSで洗浄し、 乾燥させたところ、 目的 RNAがあ る場合は上記の色素のみに比較して強く着色し、 また目的 RNAがなレ、場合は 着色せず、 明確に目視にて目的 RNAを確認することができた。
また、 上述の化学発色標識及び色素標識による検出後に、 図 6に示すごと く、 搬送アームに装着して電極プローブを配置したスキャニング装置にセット して、 電圧、 電流、 静電容量を測定した。 この測定結果を、 前記のハイブリダ ィゼ一シヨンと標識の修飾を行う前のドライ状態の場合、 ハイブリダイゼ一 シヨンなしで標識の修飾を行った場合の電圧、 電流、 静電容量の測定結果と対 比することによリ、 ノ、ィプリダイゼ一シヨンを電気的な変化として捕捉でき、 上述の目視による検出を補完することが可能となった。
実施例 5
実施例 1と同様方法でバイォチップを作製した。 目的検体には実施例 1と同様 の gyrB遺伝子 (856bp)を用いた。 また、 目的検体は粒径 50nmのシリカ粒子で 修飾しておき、 バッファ一液で既知の一定濃度となるようにして用いた。 プ ローブは、 前記 gyrB遺伝子と相補的に結合する 60塩基の DNAで、 ループ構造 を取る構成としかつ予め磁性材微粒子で修飾したものを用いた。
バイオチップは、 実施例 1と同様方法にてガラス基板表面に a〜fの電極部を 設け、 上記のプローブ DNAを実施例 1と同様方法にて各電極に配列固定した。 その後 R-BFR溶液で洗浄し、 さらに窒素ガスでおだやかに乾燥させた。 なお、 プロ一ブ DNAの配列には、 電極面積とプロ一ブ DNAを含むバッファ一液濃度 との関係を最適化して、 各電極部で固定化される量ができるだけ均等になるよ うにした。
得られたバイオチップを搬送アームに装着して磁気へッドプローブを配置し たスキャニング装置にセットして、 電極上の磁気を測定したところ表 1の 「磁 気検出強度」 の結果を得た。 「磁気検出強度」 は電極 aを基準として相対比で 示す。
次に、 実施例 1と同様方法にて、 目的検体をバイォチップにハイブリダイ ゼ一シヨンして、 R-BFR溶液で洗浄し、 さらに窒素ガスでおだやかに乾燥させ た。 ハイプリダイゼーション操作後のバイォチップに実施例 3と同様方法にて 散乱光強度の検出を施し、 表 1の 「散乱光検出強度」 の結果を得た。
表 1のハイプリダイゼーシヨン操作後の各電極上における散乱光強度の測定 結果を、 ハイプリダイゼーション操作前の各電極上にあるプロ一ブの状態を把 握した表 1の 「磁気検出強度」 の比、 すなわちプローブ量比により補正したと ころ、 表 1の 「補正後の検出強度」 の結果を得た。 すなわち、 散乱光強度の検 出値の偏差は、 プローブ量比の補正によリ測定後の 37.4から補正後の 6.04へと 著しく減少した。
作製したバイオチップの各電極 (スポット )上に配列したプロ一ブに標識を施 しておくことで、 ハイブリダイゼ一ション操作前の各電極上のプロ一ブの量比 を測定することが可能であり、 このプローブ量比を予め得ておくことで、 ハイ プリダイゼ一シヨン操作後の 2本鎖を形成した目的検体量の測定値を正確に補 正することが可能となり、 生化学反応体の定量的な検出が極めて高い精度で実 施できることを確認した。 検出強度 電極 電極 電極 電極
\スポット a b c d e f 磁気検出強度
(電極 aを 1とする) 1 1.02 0.97 1.05 0.95 0.90 散乱光検出強度
(a.u.) 800 810 780 830 763 725 (標準偏差 = 37.4)
補正後の検出強度
(a.u.) 800.0 794.1 804.1 790.5 803.2 805.6 (標準偏差 = 6.04)
産業上の利用可能性
この発明によるループ構造を有するプローブ核酸を基板に配列したバイオ チップの構成は、 生化学検体の検出操作において、 生化学検体とのハイブリダ ィゼ一シヨンを行つた後に、 標識による修飾を行 、、 ハイブリダイズしたプ ローブにのみ、 かつ所要の箇所に標識を修飾することが可能となり、 ハイプリ ダイゼーシヨン時並びに標識の修飾時と、 各工程での精度が向上して目的検体 の検出精度が著しく向上する。
一般に、 生体内現象を捉えるためには、 DNAではなく、 m-RNAの発見量を 調べる必要があるとされるが、 上述のようにループ構造を利用したこの発明の プローブはバックダラゥンドノィズが低く高感度のため、 また検体に標識を修 飾しておく必要がないため、 m-RNAの動向を c-DNAを作製することなく、 直 接検出可能となる。
また DNAを検出する場合、 プローブに RNAを用いることで、 DNA-RNA結 合の安定性は DNA-DNA結合よリ強いため、 プローブに DNAを用いた場合よ リ、 検出感度が高く、 安定した検出精度を維持できる利点がある。
この発明によるバイオチップは、 目的とするプロ一ブ核酸と生化学検体との ハイプリダイゼ一シヨン並びに標識の修飾自体の精度が本来的に高いという特 徴に加え、 実施例に示すようにこれを電気的、 電気磁気的、 電気光学的あるい は電気磁気光学的な変化として補足することが可能であリ、 高精度な生化学検 体の検出、 さらに定量的な検出が実現できる。

Claims

請求の範囲 基板又はその類似物表面に設けられた 1又は 2以上の電極上に配列され ル一プ構造を形成したプロ一ブ核酸かあるいは前記構成に加え予め標識 を修飾したプロ一ブ核酸を有するバイオチップを用い、 該チップのプ ローブ核酸に生化学検体をハイプリダイゼ一ションする工程、 2本鎖を 形成したプロ一ブ核酸と生化学検体との複合体を該バイオチップの表面 における電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つにより検出-識 別する工程を有する生化学反応体の検出方法。 基板又はその類似物表面に設けられた 1又は 2以上の電極上に配列され ループ構造を形成したプローブ核酸かあるいは前記構成に加え予め標識 を修飾したプローブ核酸を有するバイォチップを用い、 該チップのプ 口一ブ核酸に生化学検体をハイプリダイゼーションする工程、 ハイプリ ダイゼ一ションの実行中又は実行後に 2本鎖を形成したプローブ核酸又 は生化学検体あるいはその両方に標識を修飾する工程、 2本鎖を形成し たプロ一ブ核酸と生化学検体との複合体を該バイオチップの表面におけ る電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つにより検出 '識別する 工程を有する生化学反応体の検出方法。
3. 基板又はその類似物表面に設けられた 1又は 2以上の電極上に配列され ループ構造を形成したプロ一ブ核酸かあるいは前記構成に加え予め標識 を修飾したプロ一ブ核酸を有するバイオチップを用い、 該チップのプ ローブ核酸に予め標識を修飾した生化学検体をハイプリダイゼ一シヨン する工程、 2本鎖を形成したプロ一ブ核酸と生化学検体との複合体を該 バイオチップの表面における電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくと も 1つにより検出 ·識別する工程を有する生化学反応体の検出方法。
4. 基板又はその類似物表面に設けられた 1又は 2以上の電極上に配列され ループ構造を形成したプロ一ブ核酸かあるいは前記構成に加え予め標識 を修飾したプロ一ブ核酸を有するバイオチップを用い、 該チップのプ ローブ核酸に予め標識を修飾した生化学検体をハイプリダイゼ一シヨン する工程、 ハイプリダイゼ一シ 3ンの実行中又は実行後に 2本鎖を形成 したプロ一ブ核酸又は生化学検体あるいはその両方に標識を修飾するェ 程、 2本鎖を形成したプローブ核酸と生化学検体との複合体を該バイオ チップの表面における電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つ によリ検出 ·識別する工程を有する生化学反応体の検出方法。
5. 検出.識別する工程で、 ハイブリダィゼ一シヨン操作前にバイオチッ プ表面の電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つを捉える測定 を行い得られた測定結果を基準として、 各工程後のバイオチップのそれ ら測定結果と比較する請求項 1から請求項 4のいずれかに記載の生化学反 応体の検出方法。
6. 検出 '識別する工程で、 ハイブリダィゼ一シヨン操作の前後あるいは さらに標識修飾操作の前後における該バイオチップの表面における電気 的、 磁気的、 光学的な変化の少なくとも 1つを捉える測定を行いこれら を比較する請求項 1から請求項 4のいずれかに記載の生化学反応体の検出 方法。
7. 検出 ·識別する工程で、 ハイプリダイゼーシヨン操作前に複数の電極 を有するバイオチップ表面の電気的、 磁気的、 光学的な変化の少なくと も 1つを捉える測定を行レ、各電極上のプロ一ブ核酸の量比を予め求めて 各工程後の測定値に対する補正基準として用いる請求項 1から請求項 4の いずれかに記載の生化学反応体の検出方法。
8. プローブ核酸又は生化学検体に予め修飾された標識が、 第 1の標識を 目標として第 2の標識を修飾する 2段階あるいは 3段階以上の多段修飾に よるものである請求項 1から請求項 4のいずれかに記載の生化学反応体の 検出方法。
9. プローブ核酸又は生化学検体に標識を修飾する方法が、 先に第 1の標 識を修飾してさらにそれを目標として第 2の標識を修飾する 2段階あるい は 3段階以上の多段修飾である請求項 2又は請求頊 4のレ、ずれかに記載の 生化学反応体の検出方法。
10. 標識が、 金属微粒子 (Siを含む)、 磁性体粒子、 セラミックス微粒子、 蛍光標識、 蛍光色素、 色素、 化学発色体、 半導体から選択される請求項
1から請求項 4のいずれかに記載の生化学反応体の検出方法。
11. ノ ォチップの表面における電気的な変化として検出 ·識別する方法 が、 バイォチップ又は電極における電流値又は電圧値あるいは抵抗値の 変化、 バイオチップ表面の静電容量変化のうち少なくとも 1つを検出-識 別する方法である請求項 1から請求項 4のいずれかに記載の生化学反応体 の検出方法。
12. バイオチップの表面における電気的、 磁気的な変化として検出'識別 する方法が、 バイオチップ又は電極における電流値又は電圧値あるいは 抵抗値の変化、 バイオチップ表面の静電容量変化のうち少なくとも 1つ を検出 ·識別する工程と、 2本鎖を形成した複合体からの信号を磁気的に 検知 ·識別する工程を含む請求項 1から請求項 4のいずれかに記載の生化 学反応体の検出方法。
13. バイオチップの表面における電気的、 光学的な変化として検出 '識別 する方法が、 バイォチップ又は電極における電流値又は電圧値あるレ、は 抵抗値の変化、 バイオチップ表面の静電容量変化のうち少なくとも 1つ を検出 ·識別する工程と、 2本鎖を形成した複合体からの信号を光学的に 検知 ·識別する工程を含む請求項 1から請求項 4のいずれかに記載の生化 学反応体の検出方法。
14. バイオチップの表面における電気的、 磁気的、 光学的な変化として検 出-識別する方法が、 バイオチップ又は電極における電流値又は電圧値 あるいは抵抗値の変化、 バイオチップ表面の静電容量変化のうち少なく とも 1つを検出-識別する工程と、 2本鎖を形成した複合体からの信号を 磁気的かつ光学的に検知 ·識別する工程を含む請求項 1から請求項 4のレヽ ずれかに記載の生化学反応体の検出方法。
15. 表面に少なくとも 1つの電極が形成された基板又はその類似物からな リ、 前記電極面上に配列されたプローブ核酸を有し、 かつ各プローブ核 酸がループ構造を有するバイオチップ。
16. 表面に少なくとも 1つの電極が形成された基板又はその類似物からな リ、 前記電極面上に配列されたプローブ核酸を有し、 配列したプローブ 核酸は生化学検体と相補的に結合する主要部位力基板又はその類似物側 に位置するようループ構造を有するバイォチップ。
17. 表面に少なくとも 1つの電極が形成された基板又はその類似物からな リ、 前記電極面上に配列されたプローブ核酸を有し、 配列したプローブ 核酸はその電極表面に固定されなレ、解放端側又はその標識を修飾可能に した部位が基板又はその類似物側に位置するようループ構造を有するバ ィォチップ。
18. 表面に少なくとも 1つの電極が形成された基板又はその類似物からな リ、 前記電極面上に配列されたプローブ核酸を有し、 配列したプローブ 核酸は第 2の標識を修飾可能にした第 1の標識が修飾された部位が基板又 はその類似物側に位置するようループ構造を有するバイオチップ。
19. 表面に少なくとも 1つの電極力形成された基板又はその類似物からな リ、 前記電極面上に配列されたプローブ核酸を有し、 配列したプローブ 核酸は予め修飾された標識力基板又はその類似物側に位置するようル一 プ構造を有するバイオチップ。
20. 標識が、 金属微粒子 (Siを含む)、 磁性体粒子、 セラミックス微粒子、 蛍光標識、 蛍光色素、 色素、 化学発色体、 半導体から選択される請求項 18または請求項 19に記載のバイォチップ。
21. 基板又はその類似物材料がガラス又は半導体シリコンである請求項 15 から請求項 19のいずれかに記載のバイォチップ。
22. 基板又はその類似物を別途用意する電気的回路基板に組み込み可能と した請求項 15から請求項 19のいずれかに記載のバイオチップ。
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