WO2000053797A1 - Verfahren zum in vitro testen von wirkstoffen, vorrichtung und deren verwendung - Google Patents

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WO2000053797A1
WO2000053797A1 PCT/EP2000/002011 EP0002011W WO0053797A1 WO 2000053797 A1 WO2000053797 A1 WO 2000053797A1 EP 0002011 W EP0002011 W EP 0002011W WO 0053797 A1 WO0053797 A1 WO 0053797A1
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cell
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Herma GLÖCKNER
Horst-Dieter Lemke
Christoph Meyer
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Acordis Industrial Fibers Gmbh
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Definitions

  • the invention relates to a method for testing active substances on cells in vitro, a device and the use thereof.
  • Animal models for the screening of unknown cytostatics are based on the fact that, per treatment of the recipient animal, human tumor cell samples in Hollow thread devices are encapsulated and implanted in the recipient animal, as described in WO 94/25074 and US 5676 924.
  • this procedure has its limits, since animal models are naturally difficult to automate and involve a lot of effort and costs.
  • the idea of animal welfare is also increasingly opposed to testing in animal models.
  • test results on test animals which are mostly rodents, can be transferred to humans.
  • Metabolic differences between humans and animal species play an important role here, which lead to different pharmacokinetics in the animal model.
  • pharmacokinetics means the dynamic process in which an active ingredient with different kinetics is absorbed into the organism, i.e. absorbed, distributed, metabolized, i.e. implemented and eliminated. These processes cannot be quantified independently of each other in vivo because they overlap in time and are interdependent.
  • Possinger, Springer Verlag, (1996) therefore use mathematical models that describe the distribution of a drug in fictitious body spaces or compartments.
  • the form of administration in particular also has an effect on the pharmacokinetics of the substance.
  • the pharmacokinetics of an active ingredient is usually determined in vivo by measuring the serum concentration as a function of time.
  • in vitro models for testing substances is also widespread.
  • the cultivation of human primary cells in monolayer cultures for patient-specific testing is preferred in order to achieve a high sample throughput.
  • Such a procedure is described, for example, by GJL Kaspers et al. in Blood (1997), Volume 90, No. 7, pages 2723-29 and by R. Pieters in Blood (1990), Volume 76, No. 11, Pages 76, 2327-36.
  • the disadvantage of the known in vitro methods is that the microtiter plates used there are three-dimensional Do not allow cells to grow. Solid tumors e.g. For example, different subpopulations are likely to develop due to gradients in pH and nutrient supply. These gradients cause regional variations in cell vitality, metabolism and sensitivity to treatment with cytostatic agents.
  • in vitro pharmacokinetics which take place in the human organism have not hitherto been able to be achieved in vitro, i.e. cannot be modeled by appropriate in vitro pharmacokinetics.
  • in vitro pharmacokinetics This is to be understood to mean that the concentration of active substance in the environment of the target cell changes as a function of time in vitro in the same way as in the in vivo environment of the target cell, such as, for example, in the case of leukemia in serum, irrespective of the means by which this target is achieved.
  • the primary criteria are the curve shape and the absolute value of the active ingredient concentration, while the time axis can be gathered or stretched compared to the in vivo situation.
  • a third disadvantage of all known in vitro methods for drug testing is that no combination therapy can be simulated. This is of crucial importance because today only one cytostatic agent, i.e. monotherapy, is used as an exception, most of the therapies are combination therapies in which a chronological sequence of different cytostatics is used, as from the Compendium Internistic Oncology, publisher HJ . Schmoll, K. Höffgen, K. Possinger, Springer Verlag, (1996). With the standard methods in vitro it is not yet possible, as in Organism, once an active substance has been introduced into the assay, is removed again before the next active substance is administered.
  • the object of the present invention is to provide an in vitro method for testing active substances on cells and a device which can be used for the said method, whereby the aforementioned disadvantages are at least substantially reduced and in particular as an approximation the in vivo pharmacokinetics is made possible by corresponding in vitro pharmacokinetics and a combination therapy with different active substances can be simulated.
  • a method for in vitro testing of active substances on cells comprising at least the steps a) making available a cell culture container with an interior and an inner wall and with a first and second membrane system arranged in the interior, between the membrane systems and the inner wall a cell culture space is formed in the interior, b) presenting a cell culture and a cell culture medium in the cell culture space, c) feeding a liquid nutrient medium into the cell culture space and removing metabolic products by means of the first membrane system, d) supplying at least one gaseous medium into the cell culture space by means of the second membrane system, e) metering at least one active substance into the cell culture space, the metering taking place in accordance with a set active substance concentration-time curve and f) monitoring the cell vitality.
  • the active substances to be tested are understood to be substances whose effect on the cells to be examined is not known or is not sufficiently known before the test. This can also be gaseous active ingredients, such as Act on respiratory toxins or other possibly toxic gases. Among the substances defined above, cytostatics, antibiotics, cytokines, growth factors or antiviral agents are preferably used. In addition, basically all substances as defined above can be tested with regard to their effect on cells if these substances can be introduced into the cell culture area in dissolved form.
  • cell cultures can be tested which preferably consist of primary cells or cell lines, with tumor cell lines being particularly preferably used.
  • the volume of the cell culture space is preferably at least 0.3 ml and at most 2.0 ml, particularly preferably between 0.5 ml and 1.5 ml.
  • the first membrane system located in the interior of the cell culture container consists of at least one semipermeable membrane which is suitable for supplying a liquid nutrient medium, ie allows continuous mass transport through the membrane wall due to diffusive or convective transport mechanisms.
  • a liquid nutrient medium ie allows continuous mass transport through the membrane wall due to diffusive or convective transport mechanisms.
  • dialysis membranes such as Cuprophan ® or hydrophilic microporous membranes such as microporous polyethersulfone membranes can be used.
  • the second membrane system located in the interior of the cell culture vessel consists of at least one gas transfer membrane, in particular a Oxygenationsmembran as it is for example available as Oxyphan ® commercially.
  • the membranes of the first and second membrane systems are preferably hollow fiber membranes.
  • a cell culture container in which the first and second membrane systems consist of hollow fibers which are arranged in layers in a layer above one another in the interior.
  • the cell culture is introduced when using a cell culture container with a lid by adjusting the cell density in the cell culture medium, opening the lid of the cell culture container, pipetting in the desired volume of the cell suspension into the interior of the cell culture container and closing the cell culture container with the lid.
  • the cell culture can be introduced via an opening in the side wall of the interior, which e.g. is provided with a connection for a syringe or the like located on the outside of the cell culture container.
  • the cell culture can be introduced via at least one septum, via which access into the interior of the cell culture container is possible.
  • the cells can be in the form of suspension cells or cells in need of attachment, suspension cells generally being cells which are derived from the blood. and cells that need to be attached are usually cells that originate from the body tissue.
  • the latter can either be placed as undivided pieces of tissue directly into the interior of the cell culture container or the pieces of tissue are first separated and then placed like suspension cells.
  • the interior of the cell culture container is advantageously provided with a surface to which the cells preferentially adhere. This surface preferably consists of protein-coated polycarbonate or of additional textile material made of polyester which is introduced into the interior of the cell culture container.
  • the cell culture space preferably contains at least 1 ⁇ 10 5 cells per ml cell culture space, particularly preferably at least 1 • 10 6 cells per ml cell culture space.
  • the cell density in the cell culture space is more than 5 ⁇ 10 7 cells per ml cell culture space.
  • suspension cells with a cell density of at least 1 ⁇ 10 5 cells per ml cell culture space are used. This enables the cell densities to be approximated as in the blood.
  • the method according to the invention is preferably carried out at a cell density of at least 1 ⁇ 10 5 cells per ml of cell culture space in order to approach the cell densities of the body tissue after appropriate cell growth.
  • Each cell advantageously has an average distance of 0 ⁇ m to 600 ⁇ m to the closest membrane of the first and second membrane systems.
  • the cells are evenly supplied with nutrient medium and gas.
  • the metabolic products are removed again uniformly, so that overall a condition is simulated in the cell culture that is similar to the in vivo conditions.
  • Media can be used as liquid nutrient medium or as cell culture medium, as are usually used for supplying cells with nutrients or for culturing cells.
  • RPMI 1640 is preferred.
  • a nutrient medium containing RPM1 1640 and fetal calf serum is used.
  • a gaseous medium is preferably used as the gaseous medium, which has an oxygen partial pressure pO 2 of 0 to 160 mmHg and a carbon dioxide partial pressure pCO 2 of 0 to 115 mmHg.
  • the cell culture medium contains a bicarbonate buffer and the pCO 2 in the gaseous medium supplied is adjusted so that the pH of the cell culture medium is between 6.8 and 7.8.
  • the desired composition of the gaseous medium can be set by carrying out the method according to the invention in a room in which this composition prevails.
  • the gaseous medium is fed into the second membrane system via a sterile filter.
  • the second membrane system can also advantageously be used to remove gaseous metabolic products if it is operated in cross-flow mode and is connected to a gas supply line and a gas discharge line.
  • individual active substances and / or combinations of several active substances are metered in at different times.
  • a single active ingredient can be administered over a period of time in several successive doses, or different individual active ingredients can be added to the cell culture medium with a time delay.
  • a sequence of active substance combinations can also be metered in with a time delay, the active substance combinations remaining the same or being able to vary in their composition.
  • individual active substances and combinations of active substances of the type described above can also be metered in with a time delay.
  • the active ingredient can be supplied directly or via the first membrane system, or in the case that it is a gaseous active ingredient, via the second Membrane system in the cell culture room.
  • the active substance is supplied via the first membrane system, the active substance is fed into the culture medium stream and enters the cell culture space with the culture medium via the membranes of the first membrane system.
  • a gaseous active substance is supplied via the second membrane system, it is fed into the gaseous medium and enters the cell culture space with the gaseous medium via the membranes of the second membrane system.
  • the course of the active ingredient concentration over time can be set, for example, by the permeability of the first or second membrane system, by the duration of the addition of active ingredient and by the active ingredient concentration.
  • the procedures described above thus allow the simulation of a wide variety of pharmacokinetics of individual active substances and / or active substance combinations.
  • the active substance addition can take the form of a ramp in the form of a continuous infusion or a peak in the manner of an intravenous administration.
  • the cell culture container is kept at a temperature suitable for culturing the cells, preferably at 37 ° C.
  • monitoring cell vitality is understood to mean monitoring metabolic activity, proliferation, apoptosis or, in general, cell death.
  • a cell vitality dye is used to monitor the cell vitality.
  • Alamar Blue ® is particularly preferred. This substance can be supplied to the cell culture room via the nutrient medium and the first membrane system. Alamar Blue ® penetrates the cell membranes into the interior of the cell, where it is converted into a fluorescent dye by cell metabolism. Therefore, the amount of fluorescent dye so formed can be used as a measure of cell vitality and with with a fluorescence sensor either on-line or after sampling in the nutrient medium. It is particularly advantageous that sampling in the cell culture room is not necessary, but can be carried out in the liquid stream that leaves the cell culture container. A further advantage is that the cell vitality dye can not only be supplied via the first membrane system, but can also be completely removed again, as a result of which any interference in the cell culture by the dye can be corrected and reversed.
  • At least one sensor can be used to monitor the cell vitality, which provides information about the state of the cells.
  • These are preferably miniaturized sensors for determining proliferation, vitality, apoptosis or in general cell death. It is particularly preferably a sensor for fluorescence.
  • Suitable sensors can be used for process monitoring in the method according to the invention. Sensors for monitoring the temperature, pH, partial pressure of oxygen pO 2 , or carbon dioxide pCO 2 , glucose or lactate are preferably used. In a particularly preferred embodiment, the sensors are integrated into the interior of the cell culture container as microsensors, as a result of which there is no disruptive influence of the sensors on the cell culture. One or more of the sensors mentioned can also be used in the cell culture room or in the nutrient medium and the sensor signals can be tracked online. For example, pH, p0 2 , glucose and lactate can be measured simultaneously.
  • a device which comprises a cell culture container with an interior suitable for receiving a cell culture in a cell culture medium, at least first means for feeding in the interior a nutrient medium and second means for supplying at least one gaseous medium are arranged, the means each having a supply side and a discharge side, and wherein a cell culture space is formed between said means and the inner wall of the interior, and wherein the first means with their supply side via a
  • the nutrient medium metering unit is in fluid communication with at least one nutrient medium container, and the second means are in fluid communication with their supply side via a gas metering unit with at least one gas storage container, and the device is characterized in that the cell culture space has a volume of at most 5 ml and at least 0.1 ml has that the device further contains means for supplying at least one active substance into the cell culture space and means for specifying an active substance concentration-time curve in the cell culture space.
  • the discharge means are in fluid connection with their discharge side with a waste container.
  • the discharge means are in fluid connection with their discharge side via a recirculation line with the at least one culture medium container.
  • a device that can isolate or detect certain metabolic products can be installed in the line between the discharge side of the first means and the waste container.
  • the first means located in the interior of the cell culture container preferably consist of at least one membrane suitable for the supply of liquid nutrient media.
  • the at least one membrane of the first means preferably consists of a semipermeable membrane which is suitable for supplying a liquid nutrient medium, ie which permits continuous mass transport through the membrane wall due to diffusive or convective transport mechanisms.
  • a semipermeable membrane which is suitable for supplying a liquid nutrient medium, ie which permits continuous mass transport through the membrane wall due to diffusive or convective transport mechanisms.
  • it is a nanofiltration, ultrafiltration or microfiltration membrane.
  • dialysis membranes such as Cuprophan ® or hydrophilic microporous membranes such as microporous polyethersulfone membranes can be used.
  • the second means located in the interior of the cell culture container preferably consist of at least one membrane suitable for gas exchange.
  • the at least one membrane of the second means preferably consist of a Oxygenationsmembran, more preferably of at least one Oxyphan ® membrane.
  • the second means are in fluid communication with a gas storage container.
  • the gas storage container from the gas space e.g. of an incubator and the gas space and the second means are in contact via a gas-permeable sterile filter.
  • the second means are in fluid communication with at least one gas storage container under gas pressure via at least one gas metering unit. In this way, different concentrations of different gas components can be set in a simple manner.
  • the membranes of the first and second means are designed as hollow fibers.
  • the hollow fibers are particularly preferably arranged in a plurality of layers in the interior in layers.
  • the maximum distance between the hollow fibers forming the respective means is between 50 ⁇ m and 600 ⁇ m.
  • the cell culture container has a bottom and a lid which delimit the interior, lie opposite one another and consist of a transparent material. The transparency of the bottom and lid allows microscopic observation of the cells during the drug test.
  • a heating system suitable for thermostating the cell culture container to 37 ° C, e.g. in the form of a heating foil, which allows sufficient transparency for, for example, microscopic observation of the cell culture.
  • the cell culture room preferably has a volume of 0.3 ml to 3.0 ml.
  • the advantage of this miniaturization is the particularly low consumption of cells, active substances, liquid and gaseous media.
  • the means for supplying active substance preferred in the device according to the invention consist of at least one active substance storage container, at least one active substance dosing unit and a line system which connects the at least one active substance storage container via a respective active substance dosing unit either directly or via the first means to the cell culture space of the cell culture container.
  • the means for specifying an active ingredient concentration time course in the cell culture space consist in the permeabilities of the membranes of the first means.
  • the device according to the invention comprises a means for monitoring cell vitality.
  • a particularly preferred embodiment of the device according to the invention contains, as a means for monitoring cell vitality, at least one sensor which is suitable for providing information about the state of the cell culture.
  • At least one sensor which is suitable for providing information about the state of the cell culture.
  • sensors for determining proliferation, vitality, apoptosis or in general cell death. It is particularly preferably a sensor for fluorescence.
  • the device according to the invention can contain sensors suitable for process monitoring, preferably sensors for temperature, pH, partial pressure of oxygen pO 2 , or carbon dioxide pCO 2 , glucose or lactate, which are attached in the interior of the cell culture container.
  • the sensors mentioned can be arranged individually or in combination in the interior of the cell culture container.
  • the object on which the present invention is based is further achieved by a modular active substance testing system which comprises at least 2 of the devices according to the invention.
  • the modular active substance testing system preferably comprises 6, 24 or 96 of the devices according to the invention, which are suitably arranged to form a modular structure.
  • the object on which the present invention is based is achieved by using the device according to the invention or the active substance testing system according to the invention for in vitro testing of the effect of active substances on cells.
  • the device according to the invention or the modular active substance testing system according to the invention can be used excellently to determine the influence of pharmacokinetics on the vitality of cells.
  • FIG. 1 flow diagram of a device according to the invention
  • FIG. 2a cross section of a modular active substance testing system with devices according to the invention
  • Figure 2b cross section of a modular drug testing system with three superposed levels with devices according to the invention
  • Figure 3 Top view of a modular drug testing system comprising six devices according to the invention.
  • FIG. 4a three active substance concentration-time profiles referred to as profiles 1 to 3.
  • Figure 4b Representation of the vital cells in four different cell culture containers as presented (inoculum) and as harvested (cell harvest).
  • FIG. 1 shows a culture medium container 4 which is fluid-connected via a line 14 and a culture medium metering unit 3 to the supply side of the first agent contained in the interior 2 of the cell culture container 1.
  • the discharge side of the first means located in the interior 2 of the cell culture container 1 is fluidly connected to a waste container 10 via the line 14.
  • a device 12 which can isolate or detect certain metabolic products.
  • the recirculation line 11 enables the liquid flowing from the discharge side of the first agent located in the interior 2 of the cell culture container 1 to be returned to the nutrient medium container 4.
  • An active substance storage container 7 is connected via a line system 9, an active substance metering unit 8 and a line 9b to the supply side of the Interior 2 of the cell culture container 1 located first means fluid-connected.
  • an active ingredient reaches the interior 2 of the cell culture container 1 via the first means.
  • the switching element 9c and the line 9a enable a direct fluid connection between an active substance storage container 7 and the interior 2 of the cell culture container 1.
  • At least one gas storage container 6 is fluidly connected via a gas metering unit 5 to the supply side of the second means located in the interior 2 of the cell culture container 1, the discharge side of which is connected to a gas discharge line 6a.
  • FIG. 2a shows in cross section a modular active substance testing system which is fixed in a holder 13.
  • a nutrient media container 4 is fluidly connected to a nutrient medium line 14 via a nutrient medium metering unit 3 designed here as a peristaltic pump, with the supply side of the first means 1a in the interior of the cell culture container 1, the connection between the nutrient medium metering unit 3 and the supply side of the first means 1a being realized by the lines 14 and 9b .
  • the discharge side of the first means 1a in the interior of the cell culture container 1 is fluidly connected to a waste container 10 via a line 14.
  • the discharge sides of several of the devices according to the invention can also be connected to a common waste container.
  • the cell culture container 1 is placed on a base plate 15 and fastened thereon with a locking mechanism.
  • a heating foil which is suitable for tempering the cell culture container and the medium to the required temperature, preferably to 37 ° C., shortly before it enters the cell culture container.
  • the heating foil can also be integrated into the bottom of the cell culture container 1, as long as this integration permits sufficient transparency of the cell culture container bottom, which is advantageous for visual or microscopic observation of the cell culture.
  • devices 16 which are suitable for taking a sample and can be designed, for example, as a septum.
  • the active substance storage container 7 is connected via the line system 9, the active substance metering unit 8 and the line 9b to the supply side of the first means 1a located in the cell culture container 1.
  • the liquids carrying lines are preferably silicone hoses with an inner diameter of 1 mm.
  • FIG. 2b shows in cross section a modular active substance testing system with three levels arranged one above the other, each in a holder 13, which contains devices according to the invention.
  • FIG. 2b illustrates that a large number of these devices can be provided by means of the modular arrangement of the devices according to the invention, as a result of which a large number of in vitro active substance tests can be carried out simultaneously.
  • FIG. 3 shows a top view of a modular active substance testing system in a holder 13, which fixes six devices according to the invention. Five of these devices are identical to the devices described in Figure 2a.
  • the sixth device shown at the bottom in FIG. 3, shows an arrangement 17 suitable for combination therapy, the three active substance storage containers 18a, 18b and 18c of which are fluid-connected to the supply side of the first means via separate active substance pumps 19a, 19b and 19c. Together with the active substance storage container 7 and the active substance metering unit 8, a combination therapy with four active substances can thus be carried out in the cell culture container of the lowest device according to the invention from FIG.
  • the devices of the modular drug testing system close nutrient media, cell cultures, drugs and waste solutions to the outside world. All parts of the device that come into contact with active substance are preferably designed as single-use articles. Therefore, each device of the modular system can be removed individually from said system by means of the locking mechanism already mentioned, without the operating personnel coming into contact with the partially highly toxic active ingredients. All parts that come into contact with the nutrient medium, active ingredient and cell culture must be sterilizable. Sterile operation of the device over 10 days has been demonstrated.
  • the modular arrangement of the devices allows a very large number of drug tests with different pharmacokinetics and drug combinations, to which the possibility of the modular system also contributes, to choose the number and occupancy of the individual devices in a variety of ways.
  • reference devices without the addition of active ingredient can be operated in parallel with devices with active ingredients.
  • the modular structure of the system from individual devices also has the advantage that the individual devices can be manipulated individually.
  • the same manipulation can also be carried out in different channels (multiple measurements).
  • a modular active substance testing system consisting of 6 devices weighs less than 10 kg and can easily be carried by one person. Because of the small dimensions, for example, a modular active substance testing system consisting of 24 devices can also be operated in a commercially available CO 2 incubator.
  • a personal computer is preferably used for system control, sample identification, data acquisition and data evaluation, on the screen of which the measured values currently present can be followed.
  • a data comparison between individual channels is also possible.
  • the evaluation software is just as capable of trend analysis as it is of analyzing the difference between reference and drug channels. The results can be evaluated and saved in relation to the patient.
  • the following example shows how the modular drug testing system can be used to measure the influence of pharmacokinetics on the vitality of cells.
  • the leukaemic cell line CCRF CEM is placed in a density of 1 »10 7 per ml cell culture medium (RPM1 1640 and 10 vol.% Fetal calf serum based on RPMI1640) and in a volume of 300 ⁇ l in four cell culture containers of a modular active substance test system according to the invention from 4 devices according to the invention .
  • the modular active substance testing system is enclosed in an incubator, in which a temperature of 37 ° C and a gaseous medium consisting of 5% CO 2 , 74% N 2 and 21% O 2 is present.
  • the gaseous medium just mentioned is supplied diffusively via sterile filters into the second membrane systems designed as Oxyphan ® in the interior of cell culture containers 1 to 4.
  • RPMI 1640 and 10% by volume fetal calf serum based on RPM11640 are used as the nutrient medium.
  • the nutrient medium at a flow rate of 7 ml / min is recirculated, whereby the leukemic cell lines as on the Cuprophan ® - are powered formed hollow fibers membranes of the first membrane system with nutrient medium.
  • the Nährmedienzucht is interrupted and the cytostatic idarubicin in three different active ingredient concentration-time comparison runs at a flow rate of the nutrient medium of 0.2 ml per minute over the Cuprophan ® membranes in the respective cell culture container of the devices of the invention as hereinafter dosed as described:
  • the active ingredient concentration-time profiles are designated as profiles 1 to 3 in FIG. 4a).
  • Profile 1 A solution of 0.20 ug per ml idarubicin the aforementioned cell culture medium in a period of 75 minutes through the Cuprophan ® - directed hollow fibers of the cell culture vessel.
  • Profile 2 A solution of 0.50 ug per ml idarubicin the aforementioned cell culture medium in a period of 20 minutes by the Cuprophan ® - directed hollow fibers of the cell culture vessel. 2 Then a solution of 0.25 ug per ml idarubicin is the above-mentioned cell culture medium in a period of 20 minutes by the Cuprophan ® - directed hollow fibers of the cell culture vessel. 2 Profile 3: A solution of 1, 00 ug idarubicin per ml of the above cell culture medium, in a period of 15 minutes by the Cuprophan ® - passed the cell culture container 3 hollow fibers.
  • No idarubicin is metered into the interior of the cell culture container 4.
  • This cell culture container serves as a control.
  • the active substance was added in such a way that the same area under the respective curve (area under curve, AUC) resulted for all of the active substance concentration-time profiles described above.
  • the cell culture container is rinsed for 1 hour with fresh nutrient medium (RPMI 1640 and 10% by volume fetal calf serum based on RPMI 1640) by passing the nutrient medium through the membranes of the first membrane system at a flow rate of 0.2 ml / min and the liquid stream emerging from the membranes is directed into the respective waste container.
  • fresh nutrient medium RPMI 1640 and 10% by volume fetal calf serum based on RPMI 1640
  • the nutrient medium recirculation is then resumed at a flow rate of 7 ml / min. After 72 hours, the nutrient medium used so far is replaced by the same but fresh nutrient medium. After 96 hours, the cells are harvested from the four cell culture containers and the number of vital cells and, as vitality, the percentage of the number of harvested vital cells in the total number of harvested cells determined according to the following relationship:
  • FIG. 4b behind “Inoculum”, the number of vital cells presented in the cell culture containers 1 to 4 is shown. Since the cells were placed in a volume of 300 ⁇ l and in a cell density of 1 ⁇ 10 7 per ml cell culture medium, the number is presented vital cells in the cell culture containers 1 to 4 30 • 10 5. The number of vital cells obtained after the cell harvest is plotted behind “cell harvest” in FIG. 4b. It can be seen that the profile of the active ingredient concentration over time reduced the number of vital cells the most.
  • the vitalities of the cells from the cell culture containers 1 to 4 were determined with the following result:

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Abstract

Ein Verfahren zum in vitro Testen von Wirkstoffen an Zellen umfaßt mindestens die Schritte: zur Verfügung stellen eines Zellkulturbehälters mit einem Innenraum und einer Innenwand und mit einem im Innenraum angeordneten ersten und zweiten Membransystem, wobei zwischen den Membransystemen und der Innenwand des Innenraums ein Zellkulturraum ausgebildet wird; Vorlegen einer Zellkultur und eines Zellkulturmediums im Zellkulturraum; Zuführen eines flüssigen Nährmediums in den Zellkulturraum und Abführen von Stoffwechselprodukten mittels des ersten Membransystems; Zuführen mindestens eines gasförmigen Mediums in den Zellkulturraum mittels des zweiten Membransystems; Zuführen von mindestens einem Wirkstoff in den Zellkulturraum, wobei das Zuführen gemäß einem eingestellten Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Verlauf erfolgt; und Überwachen der Zellvitalität. Desweiteren wird eine Vorrichtung und die Verwendung besagter Vorrichtung zum Test der Wirkung von Idarubicin auf die leukämische Zelllinie CCRF CEM beschrieben.

Description

Verfahren zum in vitro Testen von Wirkstoffen, Vorrichtung und deren Verwendung
Akzo Nobel nv, Arnhem
Beschreibung:
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Testen von Wirkstoffen an Zellen in vitro, eine Vorrichtung und deren Verwendung.
Eine Testung von Wirkstoffen, wie z.B. Zytostatika, die in der Chemotherapie von Krebs verwendet werden, ist aus vielfältigen Gründen notwendig. Dabei ist zu unterscheiden, ob es sich um einen völlig neuen Wirkstoff handelt, oder um einen Wirkstoff, dessen Wirksamkeit bereits grundsätzlich bekannt ist. Bei einem unbekannten Wirkstoff muß zunächst die grundsätzliche Wirksamkeit z.B. im Rahmen eines Wirk- stoffscreenings, die Dosis und die optimale Applikationsform, z.B. oral oder intravenös etc. ermittelt werden. Bei bereits bekannten Wirkstoffen werden z.B. mögliche Therapiestrategien überprüft und miteinander verglichen. Eine andere wichtige Fragestellung ist die patientenspezifische Testung bzw. die patientenspezifische Wirkung einer Substanz bei einem individuellen Patienten. Für jede dieser Fragestellungen stehen unterschiedliche Modellsysteme zur Verfügung.
Beim Wirkstoffscreening unbekannter Substanzen wird aus ethischen Gründen ausnahmslos nicht am Patienten, sondern mit Tiermodellen in vivo bzw. in vitro mit Zelllinien gearbeitet. Tiermodelle zum Screening unbekannter Cytostatika beruhen darauf, daß pro Behandlung des Empfängertieres humane Tumorzellproben in Hohlfadendevices enkapsuliert und in das Empfängertier implantiert werden, wie dies in WO 94/25074 und US 5676 924 beschrieben wird. Diese Vorgehensweise hat jedoch ihre Grenzen, da Tiermodelle naturgemäß schlecht zu automatisieren und mit einem hohen Aufwand und hohen Kosten verbunden sind. Zunehmend steht auch der Tierschutzgedanke einer Testung in Tiermodellen entgegen.
Fraglich ist auch die Übertragbarkeit der Testergebnisse an Versuchstieren, die zumeist Nagetiere sind, auf den Menschen. Eine wesentliche Rolle spielen dabei Stoffwechselunterschiede zwischen Mensch und Tierspezies, die im Tiermodell zu einer unterschiedlichen Pharmakokinetik führen. Im Rahmen dieser Erfindung wird unter Pharmakokinetik der dynamische Prozeß verstanden, in dem ein Wirkstoff mit unterschiedlichen Kinetiken in den Organismus resorbiert, d.h. aufgenommen, verteilt, metabolisiert, d.h. umgesetzt und wieder ausgeschieden wird. Diese Vorgänge lassen sich in vivo nicht unabhängig voneinander quantifizieren, da sie zeitlich überlappend und in gegenseitiger Abhängigkeit ablaufen. Im Kompendium Internistische Onkologie, Herausgeber: HJ. Schmoll, K. Höffgen, K. Possinger, Springer Verlag, (1996) werden deshalb mathematische Modelle gebraucht, welche die Verteilung eines Medikamentes in fiktiven Körperräumen bzw. Kompartimenten beschreiben. Dabei wirkt sich neben den Wirkstoffeigenschaften und dem Metabolismus insbesondere auch die Applikationsform auf die Pharmakokinetik der Substanz aus. Die Pharmakokinetik eines Wirkstoffes wird in vivo üblicherweise durch Messung der Serumkonzentration in Abhängigkeit von der Zeit ermittelt.
Auch die Verwendung von in vitro Modellen zur Testung von Substanzen ist weit verbreitet. Dabei wird die Kultivierung von humanen Primärzellen in Monolayer-Kultu- ren zur patientenspezifischen Testung bevorzugt, um einen hohen Probendurchsatz zu erzielen. Eine derartige Vorgehensweise wird z.B. von G.J.L. Kaspers et al. in Blood (1997), Band 90, Nr. 7, Seiten 2723-29 und von R. Pieters in Blood (1990), Band 76, Nr. 11 , Seiten 76, 2327-36 beschrieben. Der Nachteil der bekannten in vitro Verfahren ist, daß die dort verwendeten Mikrotiterplatten ein dreidimensionales Wachstum der Zellen nicht zulassen. Solide Tumore z. B. entwickeln unterschiedliche Subpopulationen wahrscheinlich aufgrund von Gradienten im pH-Wert und der Nährstoffversorgung. Diese Gradienten verursachen regionale Variationen der Zellvitalität, des Metabolismus und der Sensivität gegenüber einer Behandlung mit Zyto- statika. Es gibt Hinweise, daß maligne Zellen in einer dreidimensionalen, gewebeähnlichen Struktur ein anderes Verhalten gegenüber Zytostatika aufweisen, als Mo- noIayer-Kulturen, wie aus J.J. Casciari et al., J. Natl. Cancer Inst. (1994), Band 86, Seiten 1846-52 und K.M. Nicholson et al., Ann. Oncology (1996), Band 7, Supplement 1 , Abstract, hervorgeht.
Ein weiterer Nachteil der bekannten in vitro Verfahren ist, daß eine im menschlichen Organismus ablaufende Pharmakokinetik bisher in vitro nicht realisiert werden kann, d.h. nicht durch eine entsprechende in vitro Pharmakokinetik modelliert werden kann. Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wird jedoch von einer in vitro Pharmakokinetik gesprochen. Darunter soll verstanden werden, daß sich die Wirkstoffkonzentration in der Umgebung der Zielzelle in Abhängigkeit von der Zeit in vitro auf gleiche Weise ändert, wie in der in vivo Umgebung der Zielzelle, wie etwa bei Leukämien im Serum, unabhängig davon, mit welchen Mitteln dieses Ziel erreicht wird. Primäres Kriterium sind dabei die Kurvenform und der absolute Wert der Wirkstoffkonzentration, während die Zeitachse gegenüber der in vivo Situation gerafft oder gestreckt sein kann.
Ein dritter Nachteil aller heute bekannten in vitro Verfahren zur Wirkstofftestung besteht darin, daß keine Kombinationstherapie nachgebildet werden kann. Dies ist deshalb von entscheidender Bedeutung, weil heute nur noch ausnahmsweise mit nur einem Cytostatikum, d.h. mit einer Monotherapie behandelt wird, die meisten Therapien also Kombinationstherapien sind, bei der eine zeitliche Abfolge von verschiedenen Cytostatika angewendet wird wie aus dem Kompendium Internistische Onkologie, Herausgeber HJ. Schmoll, K. Höffgen, K. Possinger, Springer Verlag, (1996) hervorgeht. Bei den Standardverfahren in vitro kann bisher nicht, wie im Organismus, eine einmal in das Assay eingeführte Wirksubstanz wieder abgeführt werden, bevor die nächste Wirksubstanz verabreicht wird.
Alle drei genannten Nachteile führen dazu, daß derzeit in vitro das Verhalten realer Tumore gegenüber Chemotherapie nicht gut simuliert werden kann. Dies führt dazu, daß in der Fachwelt gravierende Zweifel am prognostischen Wert der bislang bekannten in vitro Verfahren zum Test von Wirkstoffen an Zellen bestehen.
Somit besteht ein Bedarf für ein in vitro Verfahren zum Test von Wirkstoffen an Zellen und für eine Vorrichtung, die zu besagtem Verfahren verwendet werden kann, wodurch die zuvor genannten Nachteile zumindest wesentlich verringert werden.
Daher stellt sich die vorliegende Erfindung die Aufgabe, ein in vitro Verfahren zum Test von Wirkstoffen an Zellen und eine Vorrichtung zu Verfügung zu stellen, die zu besagtem Verfahren verwendet werden kann, wodurch die zuvor genannten Nachteile zumindest wesentlich verringert werden und wodurch insbesondere eine Annäherung an die in vivo Pharmakokinetik durch eine entsprechende in vitro Phamakoki- netik ermöglicht wird und eine Kombinationstherapie mit verschiedenen Wirkstoffen nachgebildet werden kann.
Diese Aufgabe wird gelöst durch ein Verfahren zum in vitro Testen von Wirkstoffen an Zellen umfassend mindestens die Schritte a) zur Verfügung stellen eines Zellkulturbehälters mit einem Innenraum und einer Innenwand und mit einem im Innenraum angeordneten ersten und zweiten Membransystem, wobei zwischen den Membransystemen und der Innenwand des Innenraums ein Zellkulturraum ausgebildet wird, b) Vorlegen einer Zellkultur und eines Zellkulturmediums im Zellkulturraum, c) Zuführen eines flüssigen Nährmediums in den Zellkulturraum und Abführen von Stoffwechselprodukten mittels des ersten Membransystems, d) Zuführen mindestens eines gasförmigen Mediums in den Zellkulturraum mittels des zweiten Membransystems, e) Zudosieren von mindestens einem Wirkstoff in den Zellkulturraum, wobei das Zudosieren gemäß einem eingestellten Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Verlauf erfolgt und f) Überwachen der Zellvitalität.
Unter den zu testenden Wirkstoffen sind im Rahmen der vorliegenden Erfindung solche Stoffe zu verstehen, deren Wirkung auf die zu untersuchenden Zellen vor dem Test nicht oder nicht ausreichend bekannt ist. Hierbei kann es sich auch um gasförmigen Wirkstoffe, wie z.B. Atemgifte oder andere ggf. toxisch wirkende Gase handeln. Unter den vorstehend definierten Stoffen werden bevorzugt Cytostatika, Antibiotika, Cytokine, Wachstumsfaktoren oder antivirale Agentien eingesetzt. Darüber hinaus können grundsätzlich alle wie vorstehend definierten Stoffe hinsichtlich ihrer Wirkung auf Zellen getestet werden, wenn sich diese Stoffe in gelöster Form in den Zellkulturraum einbringen lassen.
Im erfindungsgemäßen Verfahren können Zellkulturen getestet werden, die bevorzugt aus Primärzellen oder aus Zelllinien bestehen, wobei besonders bevorzugt Tu- morzelliinien eingesetzt werden. Das Volumen des Zellkulturraums beträgt vorzugsweise zumindest 0,3 ml und höchstens 2,0 ml, besonders bevorzugt liegt es zwischen 0,5 ml und 1 ,5 ml. Dadurch wird nur eine geringe Menge an Zellmaterial verbraucht, so dass z.B. einem Krebspatienten nur geringe Mengen an Zellen für das erfindungsgemäße Verfahren entnommen werden müssen.
Das im Innenraum des Zellkulturbehälters befindliche erste Membransystem besteht aus mindestens einer semipermeablen Membran, welche zur Zuführung eines flüssigen Nährmediums geeignet ist, d.h. einen kontinuierlichen Stofftransport durch die Membranwand aufgrund diffusiver oder konvektiver Transportmechanismen erlaubt. Je nach Erfordernis, d.h. je nachdem, ob ein diffusiver oder konvektiver Stofftransport des Nährmediums erforderlich ist, handelt es sich um eine Nanofiltrations-, Ul- trafiltrations- oder Mikrofiltrationsmembran. Z.B. lassen sich Dialysemembranen wie etwa Cuprophan® oder hydrophile mikroporöse Membranen, wie z.B. mikroporöse Polyethersulfon-Membranen einsetzen. Das zweite im Innenraum des Zellkulturbehälters befindliche Membransystem besteht aus mindestens einer Gastransfermembran, insbesondere einer Oxygenationsmembran, wie sie z.B. als Oxyphan® im Handel erhältlich ist. Die Membranen des ersten und zweiten Membransystems sind bevorzugt Hohlfasermembranen.
In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens wird ein Zellkulturbehälter eingesetzt, bei dem das erste und zweite Membransystem aus Hohlfasern besteht, die in mehreren Lagen schichtförmig übereinander im Innenraum angeordnet sind.
Das Vorlegen der Zellkultur geschieht in einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens bei Verwendung eines Zellkulturbehälters mit Deckel durch Einstellen der Zelldichte im Zellkulturmedium, öffnen des Deckels des Zellkulturbehälters, Einpipettieren des gewünschten Volumens der Zellsuspension in den Innenraum des Zellkulturbehälters und Verschließen des Zellkulturbehälters mit dem Deckel.
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens kann das Vorlegen der Zellkultur über eine Öffnung in der Seitenwand des Innenraums erfolgen, die z.B. mit einem an der Außenseite des Zellkulturbehälters befindlichen Anschluß für eine Spritze oder dergleichen versehen ist.
In einer dritten bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens kann das Vorlegen der Zellkultur über mindestens ein Septum erfolgen, über welches ein Zugang in den Inneraum des Zellkulturbehälters möglich ist.
Die Zellen können als Suspensionszellen oder als anheftungsbedürftige Zellen vorliegen, wobei Suspensionszellen in der Regel Zellen sind, die aus dem Blut ent- stammen, und anheftungsbedürftige Zellen in der Regel Zellen sind, die dem Körpergewebe entstammen. Letztere können entweder als unzerteilte Gewebestücke direkt in den Innenraum des Zellkulturbehälters vorgelegt werden oder die Gewebestücke werden zuerst vereinzelt und danach wie Suspensionszellen vorgelegt. Für anheftungsbedürftige Zellen ist der Innenraum des Zellkulturbehälters vorteilhafterweise mit einer Oberfläche ausgestattet, an der die Zellen bevorzugt haften. Bevorzugt besteht diese Oberfläche aus proteinbeschichtetem Polycarbonat oder aus zusätzlich im Innenraum des Zellkulturbehälters eingebrachtem textiien Material aus Polyester.
Bei Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens enthält der Zellkulturraum bevorzugt mindestens 1 • 105 Zellen pro ml Zellkulturraum, besonders bevorzugt mindestens 1 • 106 Zellen pro ml Zellkulturraum. In einer besonders geeigneten Ausführungsform beträgt die Zelldichte im Zellkulturraum mehr als 5 • 107 Zellen pro ml Zellkulturraum. In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens werden Suspensionszellen mit einer Zelldichte von mindestens 1 • 105 Zellen pro ml Zellkulturraum eingesetzt. Dadurch wird eine Annäherung an die Zelldichten wie im Blut möglich. Auch bei Verwendung von anheftungsbedürftigen Zellen wird das erfindungsgemäße Verfahren vorzugsweise bei einer Zelldichte von mindestens 1 • 105 Zellen pro ml Zellkulturraum durchgeführt, um nach entsprechendem Zellwachstum sich den Zelldichten des Körpergewebes anzunähern.
Vorteilhafterweise hat jede Zelle einen mittleren Abstand von 0 μm bis 600 μm zur jeweils nächstgelegenen Membran des ersten und zweiten Membransystems. Dadurch werden die Zellen gleichmäßig mit Nährmedium und Gas versorgt. Gleichzeitig werden die Stoffwechselprodukte gleichmäßig wieder abgeführt, so dass insgesamt ein Zustand in der Zellkultur simuliert wird, der den in vivo Verhältnissen ähnelt.
Als flüssiges Nährmedium bzw. als Zellkulturmedium können Medien eingesetzt werden, wie sie üblicherweise zur Versorgung von Zellen mit Nährstoffen bzw. zur Züchtung von Zellen verwendet werden. Bevorzugt wird RPMI 1640 eingesetzt. In einer besonders bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens wird ein RPM1 1640 und fötales Kälberserum enthaltendes Nährmedium eingesetzt.
Als gasförmiges Medium wird bevorzugt ein Gasgemisch eingesetzt, das einen Sau- erstoff-Partialdruck pO2 von 0 bis 160 mmHg und einen Kohlendioxid-Partialdruck pCO2 von 0 bis 115 mmHg aufweist. In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens enthält das Zellkulturmedium einen Bicarbonatpuffer und der pCO2 im zugeführten gasförmigen Medium wird so eingestellt, dass der pH- Wert des Zellkulturmediums zwischen 6,8 und 7,8 liegt.
Die gewünschte Zusammensetzung des gasförmigen Mediums kann dadurch eingestellt werden, dass das erfindungsgemäße Verfahren in einem Raum durchgeführt wird, worin diese Zusammensetzung herrscht. In diesem Fall erfolgt die Zufuhr des gasförmigen Mediums über einen Steril-Filter in das zweite Membransystem.
Das zweite Membransystem läßt sich mit Vorteil auch zur Entfernung gasförmiger Stoffwechselprodukte einsetzen, wenn es im cross-flow Modus betrieben wird und mit einer Gaszuführleitung und einer Gasabführleitung verbunden ist.
In einer vorteilhaften Ausgestaltung des Verfahrens werden einzelne Wirkstoffe und/oder Kombinationen mehrerer Wirkstoffe zeitversetzt zudosiert. Somit kann z.B. ein einzelner Wirkstoff über die Zeit verteilt in mehreren aufeinanderfolgenden Dosen verabreicht werden oder es können verschiedene einzelne Wirkstoffe zeitversetzt dem Zellkulturmedium zudosiert werden. Ebenso kann eine Abfolge von Wirkstoffkombinationen zeitversetzt zudosiert werden, wobei die Wirkstoffkombinationen in ihrer Zusammensetzung gleich bleiben oder variieren können. Schließlich können im Verfahren der vorliegenden Erfindung auch Einzelwirkstoffe und Wirkstoffkombinationen der vorstehend beschriebenen Art zeitversetzt zudosiert werden.
Die Wirkstoffzuführung kann direkt oder über das erste Membransystem, bzw. für den Fall, dass es sich um einen gasförmigen Wirkstoff handelt, über das zweite Membransystem in den Zellkulturraum erfolgen. Bei der Zuführung des Wirkstoffs über das erste Membransystem wird der Wirkstoff in den Nährmedienstrom eingespeist und tritt mit dem Nährmedium über die Membranen des ersten Membransystems in den Zellkulturraum ein. Bei Zuführung eines gasförmigen Wirkstoffs über das zweite Membransystem wird dieser in das gasförmige Medium eingespeist und tritt mit dem gasförmigen Medium über die Membranen des zweiten Membransystems in den Zellkulturraum ein. Dies bedeutet natürlich, dass die Membranen der beiden Membransysteme für den jeweiligen Wirkstoff durchlässig sein müssen. Bei Zugabe des Wirkstoffs über das erste bzw. zweite Membransystem läßt sich der Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Verlauf beispielsweise durch die Permeabilität des ersten bzw. zweiten Membransystems, durch die Dauer der Wirkstoffzugabe und durch die Wirkstoffkonzentration einstellen. Die vorstehend beschriebenen Verfahrensweisen erlauben also die Simulation verschiedenster Pharmakokinetiken von Einzelwirkstoffen und/oder Wirkstoffkombinationen. Z.B. kann die Wirkstoffzugabe analog einer Dauerinfusion rampenförmig oder analog einer intravenösen Verabreichung peakförmig erfolgen.
Während des Wirkstofftestes wird der Zellkulturbehälter auf einer für das Kultivieren der Zellen geeigneten Temperatur gehalten, vorzugsweise auf 37 °C.
Unter Überwachung der Zellvitalität wird im Rahmen der vorliegenden Erfindung die Überwachung der Stoffwechselaktivität, der Proliferation, der Apoptose oder allgemein des Zelltodes verstanden.
Zur Überwachung der Zellvitalität dient in einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens ein Zellvitalitätsfarbstoff. Besonders bevorzugt wird alamar Blue®. Diese Substanz kann über das Nährmedium und das erste Membransystem dem Zellkulturraum zugeführt werden. Alamar Blue® dringt durch die Membranen der Zellen ins Zellinnere und wird dort durch den Zellstoffwechsel in einen Fluoreszenzfarbstoff umgewandelt. Daher kann die Menge des solchermaßen gebildeten Fluoreszenzfarbstoffs als Maß für die Zellvitalität benutzt werden und mit einem Fluoreszenzsensor entweder on-line oder nach Probennahme im Nährmedium nachgewiesen werden. Von besonderem Vorteil ist, dass eine Probennahme im Zellkulturraum nicht erforderlich ist, sondern im Flüssigkeitsstrom erfolgen kann, der den Zellkulturbehälter verläßt. Ein weiterer Vorteil besteht darin, dass über das erste Membransystem der Zellvitalitätsfarbstoff nicht nur zugeführt, sondern auch vollständig wieder abgeführt werden kann, wodurch jede Störung der Zellkultur durch den Farbstoff korrigierbar und umkehrbar ist.
Im erfindungsgemäßen Verfahren kann zur Überwachung der Zellvitalität mindestens ein Sensor eingesetzt werden, der Informationen über den Zustand der Zellen liefert. Vorzugsweise handelt es sich hierbei um miniaturisierte Sensoren zur Bestimmung der Proliferation, Vitalität, Apoptose oder allgemein des Zelltodes. Besonders bevorzugt handelt es sich um einen Sensor für Fluoreszenz.
Im erfindungsgemäßen Verfahren können zur Prozessüberwachung geeignete Sensoren eingesetzt werden. Vorzugsweise werden Sensoren zur Überwachung von Temperatur, pH, Partialdruck von Sauerstoff pO2, oder Kohlendioxid pCO2, Glucose oder Lactat eingesetzt. In einer besonders bevorzugten Ausführungsform werden die Sensoren in den Innenraum des Zellkulturbehälters als Mikrosensoren integriert, wodurch es zu keinem störenden Einfluß der Sensoren auf die Zellkultur kommt. Auch können einer oder mehrere der genannten Sensoren im Zellkulturraum oder im Nährmedium eingesetzt und die Sensorsignale on-line verfolgt werden. So können beispielsweise pH, p02, Glucose und Lactat gleichzeitig gemessen werden. An Stelle oder additioneil zur eben beschriebenen on-line Sensorik sind weitere bevorzugte analytische Methoden im erfindungsgemäßen Verfahren Methoden zur Endpunktsbestimmung wie etwa das MTT-Assay (Mitochondriale Reduktion von Tetrazolium- farbstoff) oder die Durchflußcytometrie.
Die Aufgabe wird des Weiteren durch eine Vorrichtung gelöst, die einen zur Aufnahme einer Zellkultur in einem Zellkulturmedium geeigneten Zellkulturbehälter mit einem Innenraum umfaßt, wobei im Innenraum erste Mittel zur Zuführung mindestens eines Nährmediums und zweite Mittel zur Zuführung mindestens eines gasförmigen Mediums angeordnet sind, wobei die Mittel jeweils eine Zuführungsseite und eine Abführungsseite aufweisen, und wobei zwischen besagten Mitteln und der Innenwand des Innenraums ein Zellkulturraum ausgebildet ist, und wobei die ersten Mittel mit ihrer Zuführungsseite über eine Nährmediendosiereinheit mit mindestens einem Nährmediumbehälter in Fluidverbindung stehen, und die zweiten Mittel mit ihrer Zuführungsseite über eine Gasdosiereinheit mit mindestens einem Gasvorratsbehälter in Fluidverbindung stehen, und wobei die Vorrichtung dadurch gekennzeichnet ist, dass der Zellkulturraum ein Volumen von höchstens 5 ml und mindestens 0,1 ml hat, dass die Vorrichtung desweiteren Mittel zur Zuführung von mindestens einem Wirkstoff in den Zellkulturraum und Mittel zum Vorgeben eines Wirkstoffkonzentrations- Zeit-Verlaufs im Zellkulturraum enthält.
In einer bevorzugter Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung stehen die ersten Mittel mit ihrer Abführungsseite mit einem Abfallbehälter in Fluidverbindung.
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform stehen die ersten Mittel mit ihrer Abführungsseite über eine Rezirkulationsleitung mit dem mindestens einen Nährmedienbehälter in Fluidverbindung. In der Leitung zwischen der Abführungsseite der ersten Mittel und dem Abfallbehälter kann ein Gerät installiert sein, das bestimmte Stoffwechselprodukte isolieren oder detektieren kann.
Die im Innenraum des Zellkulturbehälters befindlichen ersten Mittel bestehen vorzugsweise aus mindestens einer für die Zuführung flüssiger Nährmedien geeigneten Membran.
Die mindestens eine Membran der ersten Mittel besteht bevorzugt aus einer semipermeablen Membran, welche zur Zuführung eines flüssigen Nährmediums geeignet ist, d.h. einen kontinuierlichen Stofftransport durch die Membranwand aufgrund diffusiver oder konvektiver Transportmechanismen erlaubt. Je nach Erfordernis, d.h. je nachdem, ob ein diffusiver oder konvektiver Stofftransport des Nährmediums erforderlich ist, handelt es sich um eine Nanofiltrations-, Ultrafiltrations- oder Mikrofiltrati- onsmembran. Z.B. lassen sich Dialysemembranen wie etwa Cuprophan® oder hydrophile mikroporöse Membranen, wie z.B. mikroporöse Polyethersulfon-Membranen einsetzen.
Die im Innenraum des Zellkulturbehälters befindlichen zweiten Mittel bestehen vorzugsweise aus mindestens einer für den Gasaustausch geeigneten Membran.
Die mindestens eine Membran der zweiten Mittel bestehen vorzugsweise aus einer Oxygenationsmembran, besonders bevorzugt aus mindestens einer Oxyphan® Membran.
Erfindungsgemäß stehen die zweiten Mittel mit einem Gasvorratsbehälter in Fluidverbindung. Hierbei kann der Gasvorratsbehälter aus den Gasraum z.B. eines Brutschranks bestehen und Gasraum und zweite Mittel sind über einen gasdurchlässigen Sterilfilter in Kontakt. In einer bevorzugten Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung stehen die zweiten Mittel über mindestens eine Gasdosiereinheit mit mindestens einem unter Gasüberdruck stehenden Gasvorratsbehälter in Fluidverbindung. Hierdurch lassen sich auf einfache Weise unterschiedliche Konzentrationen verschiedener Gaskomponenten einstellen.
In einer bevorzugten Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung sind die Membranen der ersten und der zweiten Mittel als Hohlfasern ausgebildet.
Besonders bevorzugt sind die Hohlfasern in mehreren Lagen schichtförmig übereinander im Innenraum angeordnet.
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform liegt der maximale Abstand der die jeweiligen Mittel ausbildenden Hohlfasern untereinander zwischen 50 μm und 600 μm. In einer bevorzugten Ausführungsform weist der Zellkulturbehälter einen Boden und einen Deckel auf, welche den Innenraum begrenzen, einander gegenüber liegen und aus einem transparenten Material bestehen. Die Transparenz von Boden und Deckel erlaubt eine mikroskopische Beobachtung der Zellen während des Wirkstofftests.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform ist im Boden ein zur Thermostati- sierung des Zellkulturbehälters auf 37 °C geeignetes Heizsystem, z.B. in Form einer Heizfolie, integriert, die eine hinreichende Transparenz für die beispielsweise mikroskopische Betrachtung der Zellkultur zuläßt.
Der Zellkulturraum hat bevorzugt ein Volumen von 0,3 ml bis 3,0 ml. Der Vorteil dieser Miniaturisierung besteht in einem besonders geringen Verbrauch an Zellen, Wirkstoffen, flüssigen und gasförmigen Medien.
Die in der erfindungsgemäßen Vorrichtung bevorzugten Mittel zur Wirkstoffzuführung bestehen aus mindestens einem Wirkstoffvorratsbehälter, mindestens einer Wirkstoffdosiereinheit und aus einem Leitungssystem, das den mindestens einen Wirkstoffvorratsbehälter über jeweils eine Wirkstoffdosiereinheit direkt oder über die ersten Mittel mit dem Zellkulturraum des Zellkulturbehälters verbindet.
In einer bevorzugten Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung bestehen die Mittel zum Vorgeben eines Wirkstoff-Konzentrations-Zeitverlaufs im Zellkulturraum in den Permeabilitäten der Membranen der ersten Mittel.
In einer bevorzugten Ausführungsform umfaßt die erfindungsgemäße Vorrichtung ein Mittel zur Überwachung der Zellvitalität.
Eine besonders bevorzugte Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung enthält als Mittel zur Überwachung der Zellvitalität mindestens einen Sensor, der geeignet ist, Informationen über den Zustand der Zellkultur zu liefern. Vorzugsweise handelt es sich hierbei um miniaturisierte Sensoren zur Bestimmung der Proliferation, Vitalität, Apoptose oder allgemein des Zelltodes. Besonders bevorzugt handelt es sich um einen Sensor für Fluoreszenz.
Die erfindungsgemäße Vorrichtung kann zur Prozessüberwachung geeignete Sensoren enthalten, wobei es sich vorzugsweise um Sensoren für Temperatur, pH, Partial- druck von Sauerstoff pO2, oder Kohlendioxid pCO2, Glucose- oder Lactat handelt, die im Innenraum des Zellkulturbehälters angebracht sind.
Dabei können die genannten Sensoren einzeln oder in Kombination im Innenraum des Zellkulturbehälters angeordnet sein.
Die der vorliegenden Erfindung zugrunde liegende Aufgabe wird des Weiteren durch ein modulares Wirkstoffprüfsystem gelöst, welches mindestens 2 der erfindungsgemäßen Vorrichtungen umfaßt.
Vorzugsweise umfaßt das modulare Wirkstoffprüfsystem 6, 24 oder 96 der erfindungsgemäßen Vorrichtungen, welche in geeigneter Weise zu einem modularen Aufbau angeordnet sind.
Schließlich wird die der vorliegenden Erfindung zugrunde liegende Aufgabe durch die Verwendung der erfindungsgemäßen Vorrichtung oder des erfindungsgemäßen Wirkstoffprüfungssystems zum in vitro Test der Wirkung von Wirkstoffen auf Zellen gelöst.
Die erfindungsgemäße Vorrichtung bzw. das erfindungsgemäße modulare Wirkstoffprüfsystem läßt sich hervorragend zur Ermittlung des Einflusses der Pharmakokinetik auf die Vitalität von Zellen verwenden.
Die vorliegende Erfindung wird anhand der nachfolgenden Zeichnungen und des Beispiels näher erläutert. Es zeigen in vereinfachter schematischer Darstellung: Figur 1 : Flußschema einer erfindungsgemäßen Vorrichtung,
Figur 2a: Querschnitt eines modularen Wirkstoffprüfsystems mit erfindungsgemäßen Vorrichtungen,
Figur 2b: Querschnitt eines modularen Wirkstoffprüfsystems mit drei übereinander angeordneten Ebenen mit erfindungsgemäßen Vorrichtungen und
Figur 3: Draufsicht auf ein modulares Wirkstoffprüfsystem umfassend sechs erfindungsgemäße Vorrichtungen.
Figur 4a: Drei als Profil 1 bis 3 bezeichnete Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Verläufe.
Figur 4b: Darstellung der vitalen Zellen in vier verschiedenen Zellkulturbehältern wie vorgelegt (Inoculum) und wie geerntet (Zellernte).
Figur 1 zeigt einen Nährmedienbehälter 4, der über eine Leitung 14 und eine Nähr- mediendosiereinheit 3 mit der Zuführungsseite des im Innenraum 2 des Zellkulturbehälters 1 enthaltenen ersten Mittel fluidverbunden ist. Die Abführungsseite der im Innenraum 2 des Zellkulturbehälters 1 befindlichen ersten Mittel ist über die Leitung 14 mit einem Abfallbehälter 10 fluidverbunden. In der Leitung 14 zwischen der Abführungsseite der ersten Mittel und dem Abfallbehälter 10 befindet sich ein Gerät 12, das bestimmte Stoffwechselprodukte isolieren oder detektieren kann. Die Rezirkula- tionsleitung 11 ermöglicht ein Zurückleiten der aus der Abführungsseite der im Innenraum 2 des Zellkulturbehälters 1 befindlichen ersten Mittel abfließenden Flüssigkeit in den Nährmedienbehälter 4. Ein Wirkstoffvorratsbehälter 7 ist über ein Leitungssystem 9, eine Wirkstoffdosiereinheit 8 und eine Leitung 9b mit der Zuführungsseite der im Innenraum 2 des Zellkulturbehälters 1 befindlichen ersten Mittel fluidverbunden. In der eben beschriebenen Konfiguration gelangt ein Wirkstoff über die ersten Mittel in den Innenraum 2 des Zellkulturbehälters 1. Das Umschaltelement 9c und die Leitung 9a ermöglichen eine direkte Fluidverbindung zwischen einem Wirkstoffvorratsbehälter 7 und dem Innenraum 2 des Zellkulturbehälters 1. Mindestens ein Gasvorratsbehälter 6 ist über eine Gasdosiereinheit 5 mit der Zuführungsseite der im Innenraum 2 des Zellkulturbehälters 1 befindlichen zweiten Mittel fluidverbunden, deren Abführungsseite mit einer Gasabführleitung 6a verbunden ist.
Figur 2a zeigt im Querschnitt ein modulares Wirkstoffprüfsystem, das in einer Halte- rung 13 fixiert ist. Ein Nährmedienbehälter 4 ist mit einer Nährmedienleitung 14 über eine hier als Schlauchpumpe ausgeführte Nährmediendosiereinheit 3 mit der Zuführungsseite der ersten Mittel 1a im Innenraum des Zellkulturbehälters 1 fluidverbunden, wobei die Verbindung zwischen Nährmediendosiereinheit 3 und Zuführungsseite der ersten Mittel 1a durch die Leitungen 14 und 9b realisiert sind. Die Abführungsseite der ersten Mittel 1a im Innenraum des Zellkulturbehälters 1 ist über eine Leitung 14 mit einem Abfallbehälter 10 fluidverbunden. Jedoch können auch die Abführungsseiten mehrerer der erfindungsgemäßen Vorrichtungen mit einem gemeinsamen Abfallbehälter verbunden sein. Der Zellkulturbehälter 1 ist auf einer Grundplatte 15 plaziert und darauf mit einem Rastmechanismus befestigt. In der Grundplatte 15 integriert befindet sich eine Heizfolie, die geeignet ist, den Zellkulturbehälter und das Medium kurz vor seinem Eintritt in den Zellkulturbehälter auf die benötigte Temperatur, bevorzugt auf 37 °C, zu temperieren. Die Heizfolie kann aber auch in den Boden des Zellkulturbehälters 1 integriert sein, solange diese Integration eine hinreichende Transparenz des Zeilkulturbehälterbodens zuläßt, die für eine visuelle oder mikroskopische Beobachtung der Zellkultur von Vorteil ist. Vor und hinter dem Zellkulturbehälter 1 befinden sich Vorrichtungen 16, die für eine Probennahme geeignet sind und beispielsweise als Septum ausgeführt sein können. Der Wirkstoffvorratsbehälter 7 ist über das Leitungssystem 9, die Wirkstoffdosiereinheit 8 und die Leitung 9b mit der Zuführungsseite der im Zellkulturbehälter 1 befindlichen ersten Mittel 1a verbunden. Die Flüssigkeiten führenden Leitungen sind vorzugsweise Siliconschläuche mit einem Innendurchmesser von 1 mm. Figur 2b zeigt im Querschnitt ein modulares Wirkstoffprüfsystem mit drei übereinander angeordneten Ebenen in je einer Halterung 13, die erfindungsgemäße Vorrichtungen enthält. Figur 2b verdeutlicht, das mittels der modularen Anordnung der erfindungsgemäßen Vorrichtungen eine Vielzahl dieser Vorrichtungen bereitgestellt werden kann, wodurch sich eine Vielzahl von in vitro Wirkstofftests gleichzeitig durchführen läßt.
Figur 3 zeigt in Draufsicht ein modulares Wirkstoffprüfsystem in einer Halterung 13, die sechs erfindungsgemäße Vorrichtungen fixiert. Fünf dieser Vorrichtungen sind identisch mit den in Figur 2a beschriebenen Vorrichtungen. Die sechste, in Figur 3 ganz unten eingezeichnete Vorrichtung zeigt eine zur Kombinationstherapie geeignete Anordnung 17, deren drei Wirkstoffvorratsbehälter 18a, 18b und 18c über jeweils eigene Wirkstoffpumpen 19a, 19b und 19c mit der Zuführungsseite der ersten Mittel fluidverbunden sind. Zusammen mit dem Wirkstoffvorratsbehälter 7 und der Wirkstoffdosiereinheit 8 kann somit im Zellkulturbehälter der untersten erfindungsgemäßen Vorrichtung von Figur 3 eine Kombinationstherapie mit vier Wirkstoffen durchgeführt werden.
Die Vorrichtungen des modularen Wirkstoffprüfsystems schließen Nährmedien, Zellkulturen, Wirkstoffe und die Abfall-Lösungen gegenüber der Außenwelt ab. Alle mit Wirkstoff in Kontakt kommenden Teile der Vorrichtung sind bevorzugt als Einmal-Ar- tikel ausgeführt. Daher kann mittels des bereits erwähnten Rastmechanismus jede Vorrichtung des modularen Systems einzeln aus besagem System entfernt werden, ohne dass das Betriebspersonal mit den zum Teil hochtoxischen Wirkstoffen in Berührung kommt. Alle mit Nährmedium, Wirkstoff und Zellkultur in Kontakt kommenden Teile müssen sterilisierbar sein. Ein steriler Betrieb der Vorrichtung über 10 Tage ist nachgewiesen.
Somit wird deutlich, dass die modulare Anordnung der Vorrichtungen eine sehr große Zahl von Wirkstofftests mit verschiedenen Pharmakokinetiken und Wirkstoffkombinationen zuläßt, wozu auch die Möglichkeit des modularen Systems beiträgt, die Zahl und die Belegung der einzelnen Vorrichtungen in vielfältiger Weise zu wählen. Beispielsweise können Referenzvorrichtungen ohne Wirkstoffzugabe parallel zu Vorrichtungen mit Wirkstoffen betrieben werden. Der modulare Aufbau des Systems aus einzelnen Vorrichtungen hat gegenüber den konventionellen Zellkulturgefäßen (96-Well-, 24-Well und 6-Wellplatten) auch den Vorteil einer individuellen Manipulier- barkeit der einzelnen Vorrichtungen. Andererseits kann in verschiedenen Kanälen auch die gleiche Manipulation (gleiche Probe, gleiche Behandlung) durchgeführt werden (Mehrfachmessungen).
Ein aus 6 Vorrichtungen bestehendes modulares Wirkstoff prüfsystem wiegt weniger als 10 kg und kann problemlos von einer Person getragen werden. Wegen der geringen Abmessungen kann z.B. ein aus 24 Vorrichtungen bestehendes modulares Wirkstoffprüfsystem auch in einem handelsüblichen CO2-lnkubator betrieben werden.
Zur Systemsteuerung, Probenidentifikation, Datenaufnahme und Datenauswertung dient vorzugsweise ein Personal Computer, an dessen Bildschirm die momentan anliegenden Meßwerte verfolgt werden können. Zudem ist ein Datenvergleich zwischen einzelnen Kanälen möglich. Die Auswertesoftware ist zur Trendanalyse ebenso fähig wie etwa zur Analyse der Differenz zwischen Referenz- und Wirkstoffkanälen. Die Ergebnisse können patientenbezogen ausgewertet und gespeichert werden.
Das folgende Beispiel zeigt, wie das modulare Wirkstoffprüfsystem zur Messung des Einflusses der Pharmakokinetik auf die Vitalität von Zellen verwendet werden kann.
Beispiel:
Die leukämische Zelllinie CCRF CEM wird in einer Dichte von 1» 107 pro ml Zellkulturmedium (RPM1 1640 und 10 Vol.% fötales Kälberserum bezogen auf RPMI1640) und in einem Volumen von 300 μl in vier Zellkulturbehälter eines erfindungsgemäßen modularen Wirkstoffprüfsystems aus 4 erfindungsgemäßen Vorrichtungen vorgelegt. Das modulare Wirkstoffprüfsystem wird in einen Brutschrank eingeschlossen, in dem eine Temperatur von 37 °C und ein gasförmiges Medium bestehend aus 5 % CO2, 74 % N2 und 21 % O2 vorliegt. Die Zufuhr des eben genannten gasförmigen Mediums erfolgt diffusiv über Sterilfilter in die zweiten als Oxyphan® ausgebildeten Membransysteme in den Innenraum der Zellkulturbehälter 1 bis 4. Als Nährmedium wird RPMI 1640 und 10 Vol.% fötales Kälberserum bezogen auf RPM11640 eingesetzt. Für eine Zeitdauer von 24 h wird das Nährmedium mit einer Flußgeschwindigkeit von 7 ml/min rezirkuliert, wodurch die leukämischen Zelllinien über die als Cuprophan® - Hohlfasern ausgebildeten Membranen des ersten Membransystems mit Nährmedium versorgt werden. Nach 24 h Rezirkulation wird die Nährmedienzufuhr unterbrochen und das Zytostatikum Idarubicin in drei verschiedenen Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Ver- läufen mit einer Flußgeschwindigkeit des Nährmediums von 0,2 ml pro Minute über die Cuprophan® -Membranen in die jeweiligen Zellkulturbehälter der erfindungsgemäßen Vorrichtungen wie im folgenden beschrieben zudosiert:
Die Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Verläufe sind in Figur 4a) als Profile 1 bis 3 bezeichnet.
Profil 1 : Eine Lösung von 0,20 μg Idarubicin pro ml des o.g. Zellkulturmediums wird in einem Zeitraum von 75 Minuten durch die Cuprophan® - Hohlfasern des Zellkulturbehälters 1 geleitet.
Profil 2: Eine Lösung von 0,50 μg Idarubicin pro ml des o.g. Zellkulturmediums wird in einem Zeitraum von 20 Minuten durch die Cuprophan® - Hohlfasern des Zellkulturbehälters 2 geleitet. Anschließend wird eine Lösung von 0,25 μg Idarubicin pro ml des o.g. Zellkulturmediums in einem Zeitraum von 20 Minuten durch die Cuprophan® - Hohlfasern des Zellkulturbehälters 2 geleitet. Profil 3: Eine Lösung von 1 ,00 μg Idarubicin pro ml des o.g. Zellkulturmediums wird in einem Zeitraum von 15 Minuten durch die Cuprophan® - Hohlfasern des Zellkulturbehälters 3 geleitet.
Im den Innenraum des Zellkulturbehälters 4 wird kein Idarubicin zudosiert. Dieser Zellkulturbehälter dient als Kontrolle. Die jeweilige Zugabe des Wirkstoffs erfolgte dabei dergestalt, dass für alle der vorstehend beschriebenen Wirkstoffkonzentrations-Zeit- Verläufe die gleiche Fläche unter der jeweiligen Kurve (area under curve, AUC) resultierte. Nach der Zudosierung des Zytostatikums wird 1 h lang der Zellkulturbehälter mit frischen Nährmedium (RPMI 1640 und 10 Vol.% fötales Kälberserum bezogen auf RPMI 1640) gespült, indem das Nährmedium mit einer Flußgeschwindigkeit von 0,2 ml/min durch die Membranen des ersten Membransystems und der aus den Membranen austretende Flüssigkeitsstrom in den jeweiligen Abfallbehälter geleitet wird. Danach wird die Nährmedienrezirkulation mit einer Flußgeschwindigkeit von 7 ml/min wieder aufgenommen. Nach 72 Stunden wird das bisher verwendete Nährmedium durch das gleiche aber frische Nährmedium ersetzt. Nach 96 h werden die Zellen aus den vier Zellkulturbehältern geerntet und mittels Trypanblau-Färbung die Zahl der vitalen Zellen und als Vitalität der prozentuale Anteil der Zahl der geernteten vitalen Zellen an der Gesamtzahl geernteter Zellen gemäß folgender Beziehung ermittelt:
Vitalität = (Zahl der geernteten vitalen Zellen/Gesamtzahl geernteter Zellen)»100(%)
In Figur 4b ist hinter „Inoculum" die Zahl der in den Zellkulturbehältern 1 bis 4 vorgelegten vitalen Zellen dargestellt. Da die Zellen in einem Volumen von 300 μl und in einer Zelldichte von 1» 107 pro ml Zellkulturmedium vorgelegt wurden, beträgt die Zahl der vorgelegten vitalen Zellen in den Zellkulturbehältern 1 bis 4 30 • 105. Hinter „Zellernte" ist in Figur 4b die Zahl der vitalen Zellen aufgetragen, die nach der Zellernte erhalten wurden. Man erkennt, dass der Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Verlauf gemäß Profil 1 die Zahl der vitalen Zellen am stärksten verringerte. Die Vitalitäten der Zellen aus den Zellkulturbehältern 1 bis 4 wurden mit folgendem Ergebnis ermittelt:
Zellkulturbehälter Vitalität
1 29 %
2 36 %
3 47 %
4 90 %

Claims

Patentansprüche:
1. Verfahren zum in vitro Testen von Wirkstoffen an Zellen umfassend mindestens die Schritte a) zur Verfügung stellen eines Zellkulturbehälters mit einem Innenraum und einer Innenwand und mit einem im Innenraum angeordneten ersten und zweiten Membransystem, wobei zwischen den Membransystemen und der Innenwand des Innenraums ein Zellkulturraum ausgebildet ist, b) Vorlegen von Zellen als Zellkultur und eines Zellkulturmediums im Zellkulturraum, c) Zuführen eines flüssigen Nährmediums in den Zellkulturraum und Abführen von Stoffwechselprodukten aus dem Zellkulturraum mittels des ersten Membransystems, d) Zuführen mindestens eines gasförmigen Mediums in den Zellkulturraum mittels des zweiten Membransystems, e) Zudosieren von mindestens einem Wirkstoff in den Zellkulturraum, wobei das Zudosieren gemäß einem vorgegebenen Wirkstoffkonzentrations-Zeit- Verlauf erfolgt und f) Überwachen der Zellvitalität.
2. Verfahren nach Anspruch 1 , dadurch gekennzeichnet, dass als Wirkstoffe Cyto- statika, Antibiotika, Cytokine, Wachstumsfaktoren oder antivirale Agentien eingesetzt werden.
3. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass als Zellkultur Primärzellen eingesetzt werden.
4. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass als Zellkultur Tumorzelllinien eingesetzt werden.
5. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 4 , dadurch gekennzeichnet, dass der Zellkulturraum ein Volumen von mindestens 0,1 ml und höchstens 5 ml hat.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass der Zellkulturraum ein Volumen von mindestens 0,3 ml und höchstens 3,0 ml hat.
7. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, dass als erstes Membransystem mindestens eine semipermeable Membran oder mindestens eine hydrophile mikroporöse Membran und als zweites Membransystem mindestens eine Gastransfermembran eingesetzt wird.
8. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet, dass das erste und zweite Membransystem aus Hohlfasern besteht, die in mehreren Lagen schichtförmig übereinander angeordnet sind.
9. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 8, dadurch gekennzeichnet, dass ein Zellkulturbehälter verwendet wird, der einen abnehmbaren Deckel aufweist und das Vorlegen der Zellkultur durch Einstellen der gewünschten Zelldichte im Zellkulturmedium, öffnen des Deckels des Zellkultur- behälters, Einpipettieren des gewünschten Volumens der Zellsuspension in den Innenraum des Zellkulturbehälters und Verschließen des Zellkulturbehälters mit dem Deckel geschieht.
10. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 9, dadurch gekennzeichnet, dass als Zellkulturmedium RPMI 1640 verwendet wird.
11. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 10, dadurch gekennzeichnet, dass mindestens 1 • 105 Zellen pro ml Zellkulturraum vorgelegt werden.
12. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 11 , dadurch gekennzeichnet, dass jede Zelle einen mittleren Abstand von 0 μm bis 600 μm zur jeweils nächstgelegenen Membran des ersten und zweiten Membransystems aufweist.
13. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass als flüssiges Nährmedium RPM1 1640 eingesetzt wird.
14. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 13, dadurch gekennzeichnet, dass das gasförmige Medium einen pO2 von 0 bis 160 mmHg und einen pCO2 von 0 bis 115 mmHg aufweist.
15. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 14, dadurch gekennzeichnet, dass das Zellkulturmedium einen Bicarbonatpuffer enthält und der pCO2 im zugeführten gasförmigen Medium so eingestellt wird, dass der pH- Wert des Zellkulturmediums zwischen 6,8 und 7,8 liegt.
16. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 15, dadurch gekennzeichnet, dass gasförmige Stoffwechselprodukte mittels des zweiten Mem- bransystems aus dem Zellkulturraum entfernt werden.
17. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 16, dadurch gekennzeichnet, dass einzelne Wirkstoffe und/oder Kombinationen mehrerer Wirkstoffe zeitversetzt zudosiert werden.
18. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 17, dadurch gekennzeichnet, dass die Wirkstoffdosierung direkt oder über das erste Membransystem in den Zellkulturraum erfolgt.
19. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 18, dadurch gekennzeichnet, dass die Vorgabe des Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Verlaufs durch die Permeabilitäten des ersten Membransystems, durch die Dauer der Wirkstoffzugabe und durch die Wirkstoffkonzentration geschieht.
20. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 19, dadurch gekennzeichnet, dass der Zellkulturbehälter auf einer Temperatur von 37 °C gehalten wird.
21. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 18, dadurch gekennzeichnet, dass die Zellvitalität mittels eines Zellvitalitätsfarbstoffs überwacht wird.
22. Verfahren nach Anspruch 21 , dadurch gekennzeichnet, dass als Zellvitalitätsfarbstoff alamar Blue® dient.
23. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis 22, dadurch gekennzeichnet, dass die Zellvitalität mit mindestens einem Sensor überwacht wird.
24. Verfahren nach Anspruch 23, dadurch gekennzeichnet, dass ein Sensor für Fluoreszenz eingesetzt wird.
25. Vorrichtung umfassend einen zur Aufnahme einer Zellkultur in einem Zellkulturmedium geeigneten Zellkulturbehälter (1) mit einem Innenraum (2), wobei im Innenraum erste Mittel zur Zuführung mindestens eines Nährmediums und zweite Mittel zur Zuführung mindestens eines gasförmigen Mediums angeordnet sind, wobei die Mittel jeweils eine Zuführungsseite und eine Abführungsseite aufweisen, und wobei zwischen besagten Mitteln und der Innenwand des Innenraums ein Zellkulturraum ausgebildet ist, und wobei die ersten Mittel mit ihrer Zuführungsseite über eine Nährmediendosiereinheit (3) mit mindestens einem Nährmediumbehälter (4) in Fluidverbindung stehen, und die zweiten Mittel mit ihrer Zuführungsseite über eine Gasdosiereinheit (5) mit mindestens einem Gasvorratsbehälter (6) in Fluidverbindung stehen, dadurch gekennzeichnet, dass der Zellkulturraum ein Volumen von höchstens 5 ml und mindestens
0,1 ml hat, dass die Vorrichtung des Weiteren Mittel (7), (8), (9), (9a), (9b) und (9c) zur Zuführung von mindestens einem Wirkstoff in den Zellkulturraum und Mittel zum Vorgeben eines Wirkstoffkonzentrations-Zeit-Verlaufs im Zellkulturraum enthält.
26. Vorrichtung nach Anspruch 25, dadurch gekennzeichnet, dass die ersten Mittel mit ihrer Abführungsseite mit einem Abfallbehälter (10) in Fluidverbindung stehen.
27. Vorrichtung nach Anspruch 25, dadurch gekennzeichnet, dass die ersten Mittel mit ihrer Abführungsseite über eine Rezirkulationsleitung (11 ) mit dem mindestens einen Nährmedienbehälter (4) in Fluidverbindung stehen.
28. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 27, dadurch gekennzeichnet, dass die ersten Mittel aus mindestens einer für die Zuführung flüssiger Nährmedien geeigneten Membran bestehen.
29. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 28, dadurch gekennzeichnet, dass die zweiten Mittel aus mindestens einer für den Gasaustausch geeigneten Membran bestehen.
30. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 29, dadurch gekennzeichnet, dass der Zellkulturbehälter (1) einen Boden und einen Deckel aufweist, welche den Innenraum begrenzen, einander gegenüber liegen und aus einem transparenten Material bestehen.
31. Vorrichtung nach Anspruch 30, dadurch gekennzeichnet, dass im Boden des Zellkulturbehälters (1) ein Heizsystem integriert ist.
32. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 31 , dadurch gekennzeichnet, dass die mindestens eine Membran der ersten Mittel eine semi- permeable Membran oder eine hydrophile mikroporöse Membran ist.
33. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 32, dadurch gekennzeichnet, dass die mindestens eine Membran der zweiten Mittel eine Oxy- genationsmembran ist.
34. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 33, dadurch gekennzeichnet, dass die Membranen der ersten und der zweiten Mittel Hohlfasern sind.
35. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 34, dadurch gekennzeichnet, dass die Hohlfasern in mehreren Lagen schichtförmig übereinander im Innenraum angeordnet sind.
36. Vorrichtung nach Anspruch 35, dadurch gekennzeichnet, dass der maximale Abstand der die jeweiligen Mittel ausbildenden Hohlfasern untereinander zwischen 50 μm und 600 μm liegt.
37. Verfahren nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 36, dadurch gekennzeichnet, dass der Zellkulturraum ein Volumen von 0,3 ml bis 3,0 ml hat.
38. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 37, dadurch gekennzeichnet, dass die Mittel zur Wirkstoffzuführung aus mindestens einem Wirkstoffvorratsbehälter (7), mindestens einer Wirkstoffdosiereinheit (8) und aus einem Leitungssystem (9) besteht, das den mindestens einen Wirkstoffvorratsbehälter (7) über jeweils eine Wirkstoffdosiereinheit (8) direkt (9a) oder über die ersten Mittel (9b) mit dem Zellkulturraum des Zellkulturbehälters (1) verbindet.
39. Vorrichtung nach einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 38, dadurch gekennzeichnet, dass die Vorrichtung ein Mittel zur Überwachung der Zellvitalität umfaßt.
40. Vorrichtung nach Anspruch 39, dadurch gekennzeichnet, dass das Mittel zur Überwachung der Zellvitalität aus mindestens einem Sensor bestehen.
41. Vorrichtung nach Anspruch 40, dadurch gekennzeichnet, dass der Sensor ein Fluoreszenz - Sensor ist.
42. Modulares Wirkstoffprüfsystem umfassend mindestens 2 Vorrichtungen gemäß Anspruch 25 bis 41.
43. Modulares Wirkstoffprüfsystem gemäß Anspruch 42 bestehend aus 6, 24 oder 96 Vorrichtungen gemäß den Ansprüchen 25 bis 41.
44. Verwendung der Vorrichtung gemäß einem oder mehreren der Ansprüche 25 bis 41 oder des modularen Wirkstoffprüfsystems gemäß einem der Ansprüche 42 oder 43 zum in vitro Test der Wirkung von Wirkstoffen auf Zellen.
45. Verwendung der Vorrichtung oder des modularen Systems gemäß Anspruch 44, dadurch gekennzeichnet, dass der Einfluß einer Pharmakokinetik auf die Vitalität von Zellen ermittelt wird.
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Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8048673B2 (en) 1999-08-19 2011-11-01 Artecel Sciences, Inc. Use of adipose tissue-derived stromal cells for chondrocyte differentiation and cartilage repair
US8163536B2 (en) * 2000-05-10 2012-04-24 Tristem Trading (Cyprus) Limited Device for preparing an undifferentiated cell from a more committed cell
JP2014193415A (ja) * 2001-02-07 2014-10-09 Avita Medical Ltd 細胞懸濁液の作製方法及び細胞懸濁液
JP2016503299A (ja) * 2012-11-13 2016-02-04 シーホース バイオサイエンス インコーポレイテッド 制御された媒体流動上での三次元組織測定のための装置および方法
US10626358B2 (en) 2013-03-14 2020-04-21 Avita Medical Ltd Systems and methods for tissue processing and preparation of cell suspension therefrom
US10631974B2 (en) 2001-02-07 2020-04-28 Avita Medical Ltd Cell suspension preparation technique and device

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0180165A2 (de) * 1984-10-30 1986-05-07 E.I. Du Pont De Nemours And Company Kompartimentierte Zellkulturanlage und Verfahren
US4661458A (en) * 1983-08-31 1987-04-28 Cell Environmental Systems, Ltd. Cell culture system
EP0363262A1 (de) * 1988-09-30 1990-04-11 Terumo Kabushiki Kaisha Zell-Brutschrank
US4937196A (en) * 1989-08-18 1990-06-26 Brunswick Corporation Membrane bioreactor system
WO1999028438A1 (fr) * 1997-11-27 1999-06-10 Bertin & Cie Dispositif d'amplification de cellules hematopoietiques et ses applications
DE19810901C1 (de) * 1998-03-13 1999-06-17 Ascalon Gesellscchaft Fuer Inn Bioreaktor

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4661458A (en) * 1983-08-31 1987-04-28 Cell Environmental Systems, Ltd. Cell culture system
EP0180165A2 (de) * 1984-10-30 1986-05-07 E.I. Du Pont De Nemours And Company Kompartimentierte Zellkulturanlage und Verfahren
EP0363262A1 (de) * 1988-09-30 1990-04-11 Terumo Kabushiki Kaisha Zell-Brutschrank
US4937196A (en) * 1989-08-18 1990-06-26 Brunswick Corporation Membrane bioreactor system
WO1999028438A1 (fr) * 1997-11-27 1999-06-10 Bertin & Cie Dispositif d'amplification de cellules hematopoietiques et ses applications
DE19810901C1 (de) * 1998-03-13 1999-06-17 Ascalon Gesellscchaft Fuer Inn Bioreaktor

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8048673B2 (en) 1999-08-19 2011-11-01 Artecel Sciences, Inc. Use of adipose tissue-derived stromal cells for chondrocyte differentiation and cartilage repair
US8911994B2 (en) 1999-08-19 2014-12-16 Artecel Sciences Inc. Use of adipose tissue-derived stromal cells for chondrocyte differentiation and cartilage repair
US8163536B2 (en) * 2000-05-10 2012-04-24 Tristem Trading (Cyprus) Limited Device for preparing an undifferentiated cell from a more committed cell
JP2014193415A (ja) * 2001-02-07 2014-10-09 Avita Medical Ltd 細胞懸濁液の作製方法及び細胞懸濁液
US10631974B2 (en) 2001-02-07 2020-04-28 Avita Medical Ltd Cell suspension preparation technique and device
US10729536B2 (en) 2001-02-07 2020-08-04 Avita Medical Ltd Cell suspension preparation technique and device
JP2016503299A (ja) * 2012-11-13 2016-02-04 シーホース バイオサイエンス インコーポレイテッド 制御された媒体流動上での三次元組織測定のための装置および方法
US10626358B2 (en) 2013-03-14 2020-04-21 Avita Medical Ltd Systems and methods for tissue processing and preparation of cell suspension therefrom
US11124752B2 (en) 2013-03-14 2021-09-21 Avita Medical Ltd Systems and methods for tissue processing and preparation of cell suspension therefrom

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