SU1646489A3 - Способ получени бычьего гормона роста - Google Patents

Способ получени бычьего гормона роста Download PDF

Info

Publication number
SU1646489A3
SU1646489A3 SU4027045A SU4027045A SU1646489A3 SU 1646489 A3 SU1646489 A3 SU 1646489A3 SU 4027045 A SU4027045 A SU 4027045A SU 4027045 A SU4027045 A SU 4027045A SU 1646489 A3 SU1646489 A3 SU 1646489A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
dna
plasmid
sequence
pmon
coding
Prior art date
Application number
SU4027045A
Other languages
English (en)
Inventor
Грабовский Криви Гвен
Original Assignee
Монсанто Компани (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Монсанто Компани (Фирма) filed Critical Монсанто Компани (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU1646489A3 publication Critical patent/SU1646489A3/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23KFODDER
    • A23K20/00Accessory food factors for animal feeding-stuffs
    • A23K20/10Organic substances
    • A23K20/184Hormones
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23KFODDER
    • A23K20/00Accessory food factors for animal feeding-stuffs
    • A23K20/10Organic substances
    • A23K20/168Steroids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

(21)4027045/13
(22)21002086
(31)704362
(32)22.05.85
(33)US
(46) 30.04.91. Бюл0 № 16
(71)Монсанто Компани (US)
(72)Гвен Грабовский Криви (US)
(53)575.224„2:577„2(048)(088.8)
(56)Proc. Nat l Acac, Sci, USA, 81, p. 5403-5407.
(54)СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БЫЧЬЕГО ГОРМОНА РОСТА
(57)Изобретение относитс  к генетической инженерии и касаетс  получени  рекомбинантного бычьего гормона роста. Цель изобретени  - повышение биологической активности бычьего гормона роста в отношении стимул ции лактации у коров. Бычий гормон роста получают путем конструировани  рекомбинантной плазмидной ЛНК, кодирующей бычий гормон роста в результате выделени  ДНК из плазмиды pGHex-I, встраивание кодона дл  аланина вслед за ATG кодоном, реклонировани  в плазмиду pBGFex-I, трансформации полученным ДНК штаммов Е„ coli с последующим выделением и очисткой конечного продукта. 1 з.п. ф-лы, 3 табл.
в &
Изобретение относитс  к генетической инженерии и касаетс  получени  рекомбинантного бычьего гормона роста .
Цель изобретени  - повышение биологической активности бычьего гормона роста в отношении стимул ции лактации у коров0
Бычий гормон роста получают путем конструировани  рекомбинантной штазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста, в результате выделени  кДНК из плазмиды pGHex-I, встраивани  кодона дл  аланина вслед за ATG кодоном, реклонировани  в плазмиду р Ъ GHex-I, трансформации полученными рекомбинантными ДНК штаммов Е.со- li с последующим выделением и очисткой конечного продукта
Пример 1.
а) Кодирующую соматотропин, т.е. 6ГР (Л) последовательность ДНК, выдел ют из pGHex-I как фрагмент Хва и клонируют в сайт Хва модифицированного вектора Ml3mp8 (M13mp8/ /Хва). Хва рассекает в обоих концах кодирующую 6ГР (Л) последовательность ДНК, выреза  таким образом полную кодирующую 6ГР (Л) последовательность . Плазмиду pBGHeJ( -I после обработки Лерментом I смешивают в присутствии ДНК-лигазы Т4 с РФ ДНК (РФ - репликативна  Форма вектора) М13тр8/Хва1, линеаризованной при помощи эндонуклеазы рестрикции Хва, и обрабатывают щелочной еЬосЛатазой из кишечника теленка (крупного рогатого скота). Затем смесь инкубируют в течение ночи при
ЗЭ
С& -U
00
ы
14 С. Обработка щелочной дюсфатазой из кишечника теленка (крупного рогатого скота) предотвращает рециркул - ризацию вектора М13тр8/Хва1. Вставку кодирующей 6ГР (Л) последовательности ДНК в вектор М13тр8/Хва1 с целью образовани  рекомбинантного вектора M13mp8/BGHex-I первоначально контролируют образованием бесцветных бл - шек на культуре бактерий IM101 Е. со- 11, выращиваемой на среде 1 х УТ, использу  процедуру покрыти  м гким агаром, который содержит 10 мл 100 мМ ИГТГ (изопропил-($-В-тиогалактопира- нозида) и 50 мкл 2% (в/о) X-GAL (5- бром-4-хлор-3-индолил-й-В-галакто- пиранозида) в 3 мл верхнего агара, и осуществл ют трансфекцию упом нутым рекомбинантным вектором аналогично описанному Вставку кодирующей 6ТР(Л последовательности подтверждают при помощи рестрикции изолированной РФ ДНК рекомбинантного вектора ферментом Хва1, в результате чего получают Фрагмент в 590 пар оснований, содержащий , вставленную последовательность Фрагмент в 590 пар оснований идентифицируют при помощи электрофореза на агаровом геле в однопроцентном агаре. Все последующие фрагменты после обработки ферментами иденти- сЬицируют именно при помощи этой процедуры . Ориентацию вставленных кодирующих 6ГР (Л) последовательностей контролируют при помощи обработки РФ рекомбинатного вектора ферментами Smal и Find III. Если кодирующие последовательности наход тс  в правильной З1 ориентации, в резуль- тате сечени  этими ферментами рестрикции получают фрагмент в 207 пар оснований. Осуществл ют изол цию однонитевой (ОН) ДНК фага, вектор MISmpS/BGHg -I используют в качестве матрицы при сайт-специфическом мутагенезе .
Олигонуклеотидную затравку, содержащую последовательность дл  искомой мутации, используют дл  затрав лени  синтеза копии замкнутой кольцевой ДНК матрицы M13mp8/BGHex-I онДНК. Полученные таким образом замкнутые кольцевые молекулы двунитевой (ДН) ДНК отдел ют от неполных колец и колец онДНК при помощи центрифугировани  градиентом щелочной сахарозы . Замкнутые кольцевые молекулы днДНК используют дл  трансформации
0 ,- о 5
Q
5
Е. coli IM101 и полученные в результате бесцветные бл шки помещают на фильтры Пэлл и просеивают, контролируют гибридизацию в меченную Р форму олигонуклеотидной затравки, использованной дл  осуществлени  сайт-специфического мутагенеза. Фильтры промывают при увеличивающихс  температурах до тех пор, пока не исчезнет радиоактивно меченный сигнал с контрольного фильтра, который приготавливают с использованием фага М13пгр8/ /BGHgj-I. Промывку фильтров осуществл ют при комнатной температуре в 6 х SSC (0,9 М NaCl 0,09 М цитрата натри ) в течение 10 мин, затем при 50°С в 6 X SSC в течение 5 мин, а последующие промывки - при увеличении температуры на 5°С. Бл шки, которые гибридизировались с образованием меченной радиоактивным элементом олигонуклеотидной затравки при темпера- турах более высоких, чем контрольные фаги, считают несущими новую созданную кодирующую 6ГР (Л,Л) последовательность и называют положительными . Отдельные бесцветные бл шки отбирают из культуры трансформированных клеток IM101 Е. coli и выращивают , в 5 мл среды 2 УТ Јl,6% (в/о) триптона, 1,0% (в/о) экстракта дрожжей , 0,5% (в/о) NaClj в течение ночи при 37°С в услови х аэрации. ДНК фага затем нанос т п тнами на нитроцеллюлозу , подвергают гибридизации с затравкой, меченной радиоактивным элементом, и промывают при увеличении температуры, как указано выше. ДНК фага, которые имели температуру гибридизации выше контрольных бл шек M13mp8/BGHex-I,  вл ютс  потенциально положительными.
Потенциально положительные бл шки из обеих процедур выращивают и используют дл  получени  онДНК фага, анализируют последовательность онДНК, чтобы подтвердить, что она действительно несет кодирующую 6ГР (А,Л) последовательность. РФ ДНК М13тр8/ /BGHex-I (ala) тоже анализируют, отбирают при помощи анализа ферментом рестрикции Нае III с тем, чтобы убедитьс  в присоединении кодона аланина после комплекса сигналов начала кодон метионина АТС, так как при создании кодона аланина образуютс  дополнительные сайт-ограничени  Нае III, частота присоединени  кодона
аланина составл ет примерно 2% кодирующей 6ГР (Л) последовательности ДНК.
б( Конструкцию кодирующей 6ГР (А,В) последовательности ДНК отбор и анализ последовательности осуществл ют аналогично описанному, но матрицей
вательность ДНК. Затем трансформированные Е. coli IM101 выращивают на среде 1 УТ, содержащей колориметрические реагенты, и отбор осуществл ют по образованию бесцветных бл шек аналогично описанному.
Вставку кодирующих сГР (Ф) после  вл етс  M13mp8/BGHex-I (ala), а олигону-довательностей ДНК подтверждают слеклеотидна  затравка указана в табл. 1 Частота превращени  кодона лейцина в кодон вал на составл ет примерно 10%„
В табл. 1 показано конструирова- .ние кодирующих соматотропин с К-кон- цевым аланином последовательностей.
в) Конструкцию кодирующей 6ГР (В) последовательности ДНК, отбор и анализ последовательности провод т аналогично описанному. При этом матрицей  вл етс  M13mp8/BGF -I, а олиго- нуклеотидна  затравка используетс  та же, что и при конструировании 6ГР (А,В). Частота превращени  кодона лейцина в кодон валина составл ет примерно 10%.
Используют олигонуклеотидный сайт- специфический мутагенез, чтобы присоединить кодон аланина к кодирующей сГР (Ф) последовательности ДНК.
Кодирующую сГР (Ф) последовательность ДНК в 590 пар оснований, содержащуюс  на плазмиде PPGHex-I, вы- дел ют из этой плазмиды при помощи эвдонуклеазого сечени  EcoRI и Hind III которые рассекают плазмиду в 5 -и 3 концах кодирующей сГР (Ф) последовательности . Рассеченную плазмиду pPGHex I смешивают с РФ ДНК М13тр9, который разрезают эндонуклеазами EcoRI и Hind III и предварительно обрабатывают щелочной фосфатазой из кишечника теленка (крупного рогатого скота) с тем, чтобы предотвратить повторную лигацию фрагментов рестрикции М13щр9. Затем в упом нутую смесь добавл ют ДНК-лигазу Т4. Благодар  наличию отклон ющихс  от нормы концов на РФ ДНК фага и кодирующей гГР (Ф) последовательности ДНК, образованных при использовании .двух различных Ферментов рестрикции, ДНК сГР (Ф) селективно вставл ют в РФ ДНК фага в правильной 51 ориентации . Затем осуществл ют трансформацию Е. coli IM101 в соответствии с описанием, приведенным выше дл  M13mp8/BGHЈX I, при помощи рекомби- нантного вектора M13mp9/PGHex-I, несущего кодирующую сП5 («г) последо10
20
25
30
дующим образом. Выбирают бесцветные бл шки, а РФ ДНК М13шр9/РСНех-1 рас- секают эндонуклеазами EcoRI иHind III и подвергают электрофорезу на агаровом геле, в результате чего получают J5 фрагмент в 590 пар оснований, содержащий вставленную ДНК с ГР (Ф)0 Зате Фаг M13mp9/PGHex -I размножают в Е0co li Ш101, выдел ют онПНК фага.
ДНК Ml3mp9/PGRex-I используют в качестве матрицы дл  сайт-специфического мутагенеза, как описано выше, конструировани  кодирующей 6ГР (А,Л) последовательности, использу  специальную затравку (табл. 1), Частота присоединени  кодона аланина, в данном случае ПСС, к кодирующей сГР (Ф) последовательности, составл ет примерно 12%. Получение кодирующей сГР (А) последовательности опдтверж- дают анализ последовательности ДНК.
Пример2. Получают три полипептида , соматотропины видов 6ГР (А, Л), 6ГР (А,В) и сГР (А).
Кодирующие 6ГР (А,Л), 6ГР (А,В) 3 и 6ГР (В) последовательности ДИК, содержащиес  на рекомбинантных векторах Mi3mp8/BGHex-I (ala), М13тпр8/ВОНе 1-1. (ala, val) и М13шр8/ /BGPe}C-I (val), соответственно исполь зуют дл  замены кодирующей 6ГР (Л) последовательности ДНК, содержащейс  на плазмиде экспрессии pBGH х-1. Это осуществл ют при помощи переваривани  соответствующих РФ ДНК М13 45 ферментом Хва1. Глазмиду экспрессии pBGFex-I переваривают эндонуклеазой Хва1, а затем обрабатывают щелочной фосфатазой из кишечника теленка (крупного рогатого скота) с тем, чтобы предотвратить повторную лигацию фрагментов рестрикции. Каждую из переваренных РФ ДНК смешивают с пере- ваненой ДНК рВОКех-1 и подвергают лигации в течение ночи при 14°С. . Полученные таким образом рекомбинант- ные векторы экспрессии, которые обозначают рМОМ 3209, pMON 3215 и рМОК 3214, несут кодирующие 6ГР (А,Л), ) и бг (В) последовательнос40
50
55
вательность ДНК. Затем трансформированные Е. coli IM101 выращивают на среде 1 УТ, содержащей колориметрические реагенты, и отбор осуществл ют по образованию бесцветных бл шек аналогично описанному.
Вставку кодирующих сГР (Ф) послеу-довательностей ДНК подтверждают сле0
0
5
0
дующим образом. Выбирают бесцветные бл шки, а РФ ДНК М13шр9/РСНех-1 рас- -V секают эндонуклеазами EcoRI иHind III и подвергают электрофорезу на агаровом геле, в результате чего получают 5 фрагмент в 590 пар оснований, содержащий вставленную ДНК с ГР (Ф)0 Затем Фаг M13mp9/PGHex -I размножают в Е0coli Ш101, выдел ют онПНК фага.
ДНК Ml3mp9/PGRex-I используют в i качестве матрицы дл  сайт-специфического мутагенеза, как описано выше, конструировани  кодирующей 6ГР (А,Л) последовательности, использу  специальную затравку (табл. 1), Частота присоединени  кодона аланина, в данном случае ПСС, к кодирующей сГР (Ф) последовательности, составл ет примерно 12%. Получение кодирующей сГР (А) последовательности опдтверж- дают анализ последовательности ДНК.
Пример2. Получают три полипептида , соматотропины видов 6ГР (А, Л), 6ГР (А,В) и сГР (А).
Кодирующие 6ГР (А,Л), 6ГР (А,В) и 6ГР (В) последовательности ДИК, содержащиес  на рекомбинантных векторах Mi3mp8/BGHex-I (ala), М13тпр8/ВОНе 1-1. (ala, val) и М13шр8/ /BGPe}C-I (val), соответственно используют дл  замены кодирующей 6ГР (Л) последовательности ДНК, содержащейс  на плазмиде экспрессии pBGH х-1. Это осуществл ют при помощи переваривани  соответствующих РФ ДНК М13 5 ферментом Хва1. Глазмиду экспрессии pBGFex-I переваривают эндонуклеазой Хва1, а затем обрабатывают щелочной фосфатазой из кишечника теленка (крупного рогатого скота) с тем, чтобы предотвратить повторную лигацию фрагментов рестрикции. Каждую из переваренных РФ ДНК смешивают с пере- ваненой ДНК рВОКех-1 и подвергают лигации в течение ночи при 14°С. . Полученные таким образом рекомбинант- ные векторы экспрессии, которые обозначают рМОМ 3209, pMON 3215 и рМОК 3214, несут кодирующие 6ГР (А,Л), ) и бг (В) последовательнос0
0
5
ти ДНК соответственное, Затем Е. со- li W 3110 подвергают трансформации .смесью, содержащей pMON 3209 или pMON 3215, или pMON 3214, или pBGFex-I, и выращивают в бульоне Лауриа (БЛ), содержащем 1% (в/о) триптона, 0,5% (в/о) экстракта дрожжей и 0,5% (в/о) NaCl, а также 12,5 мкг/мл тетрациклина и200мкг/мл ампициллина. Штамм Е. coli W 3110 с плазмидой pMON 3209 задепонирован под номером АТСС 53024,, Штамм Е„ coli W 3110 с плазмидой pMON 3215 задепонирован под номером АТСС 53022„ ТрансЛорма цию осуществл ют следующим образом. Приблизительно 50 мл культуры Е. coli W 3110 выращивают в среде БЛ до ОП600 0,60„ Клетки извлекают в виде таблетки и вновь суспендируют в 10 мл буфера А, содержащего 25 мҐ трис, рН 7,6, и .10 мМ NaClc Затем клетки извлекают в форме таблетки и вновь суспендируют в 1 мл бу Ьера А, в который добавл ют 14 мл буфера В, содержащего 25 мМ трис, рН 7,6, 10 мМ NaCl, 50 мМ CaClz, и суспензию инкубируют на льду в течение 30 мин. Далее клетки извлекают в дюрме таблетки и вновь суспендируют в 3 мл буфера В. Порцию в 0,2 мл суспендированных клеток вновь смешивают с 0,t мл буфера В и 0,1-0,5 мкг рекомбинантным вектором экспрессии (pMON 3209 или pMON 3215, pMON 3214 или ВГ-Нех-1) и инкубируют на льду в
lex
течение 60 мин., Затем инкубированную смесь нагревают на 1 мин при 37°С, после чего добавл ют 3 мл среды БЛ. Далее полученную в результате смесь инкубируют в течение 60 мин при 37°С. Клетки извлекают в форме таблетки и вновь суспендируют в 300 мл среды БЛ и выращивают на пластинках с БЛ, содержащих вышеназванные антибиотики. Далее отбирают стойкие колонии и выдел ют ДНК векторов экспрессии pMON 3209, pMON 3215, рВСНех-1 и рМОИ 3214. ДНК pMON 3209, pMON 3215, рВГ-Рех-1 и pMON 3214 анализируют на наличие фрагмента Хва в 590 пар оснований и фрагмента Kind III/Smal в 200 пар оснований, подтверждающих наличие кодирующих 6ГР (А,Л), 6ГР (В) и 6ГР (А,В) последовательностей ДНК в правильной ориентации Далее плазмиды экспресси pMON 3209 и pltON 3215 анализируют при помощи анализа эндонуклеазами
0
5
0
5
0
5
0
5
рестрикции (Пае III) с тем, чтобы убедитьс  в присутствии нового сайта Нае III, образовавшегос  при присоединении кодона ГСС (аланина). Фрагмент Хва в 590 пар оснований из векторов pHON 3209, рМОК 3214 и pMON 3215 анализируют на состав последовательности с тем, чтобы подтвердить присутствие в этих векторах экспрессии кодирующих дл  6ГР (А,Л), 6ГР (Е) и 6ГР (А,В) последовательностей ДНК„
Отдельные колонии Е. coli W 3110, несущие плазмиды pMON 3209, pHON 3214, BOHejt-I или pMON 3215, помещают в 5 мл БЛ, содержащего 12,5 мкг/мл тетрациклина, и выращивают в течение ночи при 37°С при аэрации. После чего 0,5 мл каждой культуры используют дл  выращивани  отдельно на 25 мл среды М9, содержащей (на 1 л среды) 100 мл солей (70 г , 30 г КНгР04, 5 г NaCl, 10 г ТР4С1 на 1000 мл общего объема), 1,2 мл 1 М раствора MgSO., 0,25 мл 0,1%-ного В4 , 12,5 мл 20%-ного (в/о) раствора глюкозы , 0,025 мл 1 М раствора СаС1, дополненной 0,5% (в/о) казаминовых кислот и 6,25 мкг/мл тетрациклина и содержащейс  в 250-миллиметровой колбе. Каждую культуру выращивают при 37°С в услови х аэрации до тех пор, пока ОП600 (оптическа  плотность в диапазоне 600 нм) не достигнет х 1,0. Далее 0,2 мл извлекают из каждой упом нутой колбы и отдельно подвергают лизированию в буфере додецил- сульфатнатри  (ДСН) полиакриламид- ного гелевого электрофореза (ПАГЭ) и и анализируют методом ДСН-ПАГЭ„ Протеины с молекул рным весом 22000 дальтон в высоких концентраци х получают в культуре Е. coli W 3110 дл  обеих генетических конструкций, Клетки культуты Е. coli W 3110, несущие плазмиду pBR322, не продуцируют протеин в 22000 дальтон, который св зываетс  с антителами антисоматотропи- на.
Бактерии, несущие плазмиды pMON 3209, pMON 3214, рВПНех-1 и pMON 3215, хран т следующим образом. Каждую колонию культуры Е. coli W 3110, трансформированную при помощи только одной плазмиды (pMON 3209 или рМШ 3215, pMON 3214 или pBGHex-I), выращивают в течение ночи при 37°С в 5 мл БЛ плюс 12,5 мкг/мл тетрациклина при аэрации. Порцию в 1 мл каж
дои культуры после выращивани  в течение ночи добавл ют отдельно в индивидуальные колбы, содержащие 25 мл БЛ плюс 12,5 мкг/мл тетрациклина и выращивают до достижени  ОПбООв1,0. Затем клетки из каждой колбы собирают центрифугированием при ускорении 6000 х g при 4°С в течение 5 мин таблетки. Отдельно суспендируют с о- ва в 12 мл БЛ плюс 7,5% (в/в) ДМСО и очень быстро замораживают на сухом льду порци ми в t мл„ Далее клетки хран т в холодильнике с жидким азотом . 10 мкг очищенной ДНК плазмиды хран т при -80°С.
Кодирующую сГР (А) последовательность , содержащуюс  на рекомбннант- ном векторе M13mp9/PGHex-I Cala), используют дл  того, чтобы заменить кодирующую 6ГР (Л) последовательность ДНК, содержащуюс  на модифицированном векторе экспрессии Модифицированный вектор экспрессии pBGHex-if  вл етс  вектором экс- прессии pBGHe)(-I, в котором сайт ограничени  EeoRI, расположенный вверх от промотора триптофана (ptr p), удален. Модифицированный вектор экспрессии pBGHex-I конструируют при помощи частичного переваривани  ферментом EcoRI pBGHex-I с последующей обработкой нуклеазой SI с тем, чтобы удалить липкие концы Вектор
pBGHav-I после рестрикции подверга
ют рециркул ризации с использованием
/ДНК-лигазы Т4, а затем используют дл  трансформации культуры Е. со- li JM101. Все это осуществл ют в соответствии с описанным ранее. ДНК плазмиды из каждой колонии анализируют на наличие фрагмента EcoRI/ /Hind III в 590 пар оснований, несущего кодирующую сГР (А) последовательность , и Фрагмента EcoRI/ /Pst I в 1050 пар оснований, несущего последовательность ptr p. Удаление этого EcoRI сайта рестрикции упрощает сайт-специфическую вставку специального сайта кодирующей сГР (А) последовательности в вектор экспрес- сии pBRHex-I в правильной ориентации. Рекомбинантный вектор экспрессии, полученный таким образом, в дальнейшем обозначают pMON 3213. Смесь, содержащую рМШ 3213, используют дл  трансформации культуры Е. coliW3110, затем трансформированные клетки выращивают и подвергают селекции:Куль5
0
тура Е„ coli W 3110, содержаща  pMON 3213, депонирована под номером АТСС 53023. Замену кодирующей сГР (Л) последовательности кодирующей сГР (А) последовательностью в векторе экспрессии pBGHe)(-I под- (тверждают при помощи выделени  ДНК pMON 3213 и последующем сечении упом нутого вектора экспрессии эндону- клеазамн EcoRI и Hind III и получают фрагмент в 590 пар оснований, а сечение с использованием Нае III показывает присутствие дополнительного Нае III фрагмента рестрикции, который образуетс  из-за присутстви  кодона аланина в кодирующей сГР (А) последовательности ДНК. Окончательное подтверждение присутстви  кодирующей сГР (А) последовательности ДНК в векторе экспрессии рМШ 3213 получают при помощи частичного анализа последовательности фрагмента EcoRI/Hind III в 590 пар оснований
Экспрессию кодирующей сГР (А) последовательности ДНК и продуцирование сГР (А) в культуре Е. coliW3110 .осуществл ют прм помощи тех же приемов , которые были описаны ранее и использовались при получении 6ГР (А, Л) и 6ГР (А,В). Аналогичным образом получают высокие концентрации протеинов в 22000 дальтон что устанавливают при помощи анализа ДСН-ПАГЭ. Клетки Е. coll W 3110, несущие вектор эксперссии pMON 3213, хран т так же, кик описано ранее и используют дл  получени  в больших количествах сГР (А) (ферментацию осуществл ют в 10-100-литровых емкост х. Содержание протеина сГР (А) в реакторе-ферментации емкостью 100 л составл ет приблизительно I г/л бульона.
Примерз Соматотропные полипептиды , синтезированные в культуре Е„ coli, подвергают очистке из неочищенных солюбилиэированных светопреломл ющих тел, содержащих один из 6ГР (А,Л), 6ГР (А,В), met - 6ГР (В), met - 6ГР (Л) или сГР (А) при помощи иммуноадсорбентной хроматографии0 Все три вида соматотропина, очищенные при помощи иммуноадсорбентной хроматографии, имели чистоту, превышающую 95%. Этот факт устанавливают при помощи анализа ДСН-ПАГЭ с использованием 1 мг очищенного протеина на 7,5-15%-ном (в/о) градиентном геле. Концентрации протеинов очищенных ви
П16
дов 6ГР определ ют при помощи известного анализа с использованием высокоразрешающей жидкостной хроматографии „
Протеины, очищенные при помощи хроматографии, основанной на принципе иммунного средства, дл  использовани  в анализе на N-концевую последовательность , подвергают диализу до полного удалени  воды, а затем лио- филизируют„ Перед выполнением анализ fr-концевой последовательности очищенные протеины снова суспендируют в буфер бикарбоната аммони , содержащий 50 мМ бикарбоната аммони  плюс 0,1% (в/о) ДСН, и подвергают диализу против того же буфера с тем, чтоб удалить остаточные трис/оксиметил/ /аминометан/трис/ и глицин,
Б табл. 2 приведены результаты анализа N-концевой последовательностей дл  нескольких препаратов полипептидов 6ГР (А,Л), 6ГР (А,В), met - 6ГР (В), met - 6ГР (Л) и сГР (А). Количество протеина с N-концевым мети онином приведено в процентах от общего содержани  соматотропина в пробе . Дл  определени  количества ме- тионина используют два метода. При помощи непр мого метода количество NHv-met-ala-рЪе... в преобладающей попул ции NH2 ala-pheoо о вычисл ют исход  из различий в lag-сигналах. Так как эта процедура зависит от некоторой оценки нормального запаздывани  дл  последовательности, которое измен етс  от цикла к циклу, она  вл етс  лишь весьма грубой оценкой дл  содержащейс  последовательности NH -ala-phe... Пр мой метод, содержащий реакцию молекул рной деградации Эдмана, заключаетс  в сравнении мощности сигналов от PTH-tnet относительно PTH-ala после отделени  PTH-met от химического шума с использованием высокоразрешающей 1 жидкостной хроматографии (ВРЖХ). В частности, реакци  деградации Эдмана заключаетс  во взаимодействии N- концевой аминокислоты с реагентом, который отсекает эту аминокислоту, и в ее последующем высвобождении в форме РТН-производНого этой аминокислоты . Последн   процедура будет давать хорошие оценки (%) дл  met-ala- phe... в том случае, если загр знение свободной аминокислотой  вл етс  низким.
5
0
5
489
.
0
5
0
5
0
11
Степень обработки N-концевого ме- тионина варьирует в клетках от ферментации к ферментации, но всегда происходит в не менее 80% от всех молекул соматотропина.
Пример40 В табл„ 3 показано изменение надоев молока, вызванное инъекцией солюбилизованных видов 6ГР коровам Из полученный данных видно, что 6ГР (А,В) и met-бГР стимулируют надои молока в гораздо более значительной степени, чем соответствующие им (содержащие лейцин) аналоги 6ГР (А,Л) и met-бГР (Л). Кроме того, испытываемые валиновые 6ГР- виды при совместном сопоставлении с лейциновым бРР-видами дают в ста тистическом смысле (,02) более значительный прирост надоев молока
Исследование провод т следующим образом.
Коровам породы Холетеин в период их второго и третьего триместра лактации дают 5 мл раствора бикарбоната натри  (рН 9,8+0,5), только (контроль ) или содержащего примерно 25 мг 6ГР (А,В), 6ГР (А,Л), met - 6ГР (В) или met - 6ГР (Л) в дальнейшем все эти смеси вместе именуютс  испытуемыми соматотропинами), ежедневно . Все испытуемые соматотропины и контрольные пробы примен ют парентерально при помощи внутримышечной инъекции в полусухожильную мыцщу ежедневно в течение 21 дн . Фиксируют ежедневный удой каждой коровы, начи- на  за шесть дней до первой ежедневной инъекции и на прот жении 21 дн , в течение которых делали инъекции„ Анализируют каждую жирность, содержание протеинов в молоке и соматические клетки Результаты, представленные в табл. 3, указывают, что увеличение надоев молока, полученное при применении 6ГР (А,В) к коровам, примерно на 50% выше, чем полученное при использовании 6ГР (А,Л) и примерно на 17% выше при применении met - 6ГР (В),чем при применении met - 6ГР (Л).
г

Claims (2)

  1. Формула изобретени 
    Способ получени  бычьего гормона роста, включающий получение кДНК, кодирующей бычий гормон роста, встраивание кДНК в бактериофаг, трансформацию полученными рекомбинантными фагами штаммов Escherichia coli, отбор клонов, содержащих рекомбинант- ные плазмиды с геном бычьего гормона, выделение рекомбинантных плазмид и встраивание кДНК из этих плаэмид в вектор экспрессии с последующей трансформацией полученной плазмидой экспрессии штаммов Е. coli, отбором .трансформированных штаммов, культивированием в питательной среде, выделением и очисткой конечного продукта , отличающийс  тем, что, с целью повышени  биологической активности бычьего гормона роста в
    pGH(A) 51 CCAGTGMTTCTATGGCCTTCCCAGCTATG M13mp9/PGHey-I
    Проба
    Количество протеина с N-концевым метионином проведено в пересчете на проценты от общего содержани  сома- тотропина в пробе. Данные дл  протеина, очищенного после проведени  двух отдельных ферментации .
    отношении стимул ции лактации у коров , фрагмент кДНК, выделенный из плазмиды pGHex-I, с помощью сайт- специфического мутагенеза встраивают кодон дл  алаиина вслед за АТС кодо- ном и полученный модифицированный фрагмент реклонируют в плазмиду pBGHfrj{-I вместо последовательности ДНК, кодирующей BGH (L).
  2. 2. Способ по п„ 1, отличающийс  тем, что бычий гормон представл ет собой BGH (A,V).
    Таблица 1
    pMON 3213
    Таблица 2
    N-концевой метионин , %
    Непр мой I Пр мой
    1
    Примечание,, Значени  приведены в пересчете по методу наименьших квадратов (в килограммах) на корову (в день) молокл с нормализованной жидкостью в 3,5% жира.
    Таблица 3
SU4027045A 1985-02-22 1986-02-21 Способ получени бычьего гормона роста SU1646489A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US06/704,362 US4861868A (en) 1985-02-22 1985-02-22 Production of proteins in procaryotes

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4830848/13A Division RU2072393C1 (ru) 1985-02-22 1990-08-20 Способ получения рекомбинантного полипептида со свойствами свиного гормона роста

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1646489A3 true SU1646489A3 (ru) 1991-04-30

Family

ID=24829151

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4027045A SU1646489A3 (ru) 1985-02-22 1986-02-21 Способ получени бычьего гормона роста

Country Status (3)

Country Link
US (4) US4861868A (ru)
SU (1) SU1646489A3 (ru)
ZA (1) ZA861323B (ru)

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5037806A (en) * 1985-02-22 1991-08-06 Monsanto Company Biologically active method using somatotropins
US4861868A (en) * 1985-02-22 1989-08-29 Monsanto Company Production of proteins in procaryotes
US5141922A (en) * 1985-02-22 1992-08-25 Monsanto Company Biologically active proteins and a method for their use
US5244882A (en) * 1987-03-12 1993-09-14 Amgen, Inc. Porcine growth hormone analogs, and compositions
US5104806A (en) * 1987-03-12 1992-04-14 Amgen, Inc. Porcine growth hormone analogs encoding dna
HUT71885A (en) * 1992-07-08 1996-02-28 Monsanto Co Process for preparing a composition containing benzimidazoles for treatment stomach ulcer in swine
US5932439A (en) * 1995-11-13 1999-08-03 Monsanto Comapny Escherichia coli K-12 strains for production of recombinant proteins
AU4860200A (en) * 1999-04-01 2000-10-23 Monsanto Technology Llc Dna construct for regulating the expression of a polypeptide coding sequence in a transformed bacterial host cell
DE19943177C2 (de) * 1999-09-09 2002-10-24 Dieter Jenne Verfahren zur Herstellung von aktiven Serienproteasen und inaktiven Varianten
KR20090007504A (ko) 2000-02-24 2009-01-16 몬산토 테크놀로지 엘엘씨 소마토트로핀의 지속적인 방출을 위한 비수성 주사제제들
KR20030023878A (ko) 2000-06-26 2003-03-20 몬산토 테크놀로지 엘엘씨 소마토트로핀의 지속적인 방출을 위한 계면활성제 함유비수성 제제들
US6664234B1 (en) 2000-06-30 2003-12-16 Monsanto Technology Llc Non-aqueous injectable formulation preparation with pH adjusted for extended release of somatotropin
US8703717B2 (en) 2009-02-03 2014-04-22 Amunix Operating Inc. Growth hormone polypeptides and methods of making and using same
US8680050B2 (en) * 2009-02-03 2014-03-25 Amunix Operating Inc. Growth hormone polypeptides fused to extended recombinant polypeptides and methods of making and using same
CN102348715B (zh) 2009-02-03 2017-12-08 阿穆尼克斯运营公司 延伸重组多肽和包含该延伸重组多肽的组合物
US8133916B1 (en) * 2009-03-10 2012-03-13 Amelgo, LLC Control of milk production and mammary involution
US9849188B2 (en) 2009-06-08 2017-12-26 Amunix Operating Inc. Growth hormone polypeptides and methods of making and using same
WO2023233034A1 (en) 2022-06-03 2023-12-07 Boehringer Ingelheim International Gmbh Recombinant expression of myeloid-derived growth factor

Family Cites Families (34)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3842063A (en) * 1971-06-03 1974-10-15 Lilly Co Eli Polypeptides from bovine,ovine,human and porcine pancreas
US4056520A (en) * 1972-03-31 1977-11-01 Research Corporation Clinically active bovine growth hormone fraction
US4366246A (en) * 1977-11-08 1982-12-28 Genentech, Inc. Method for microbial polypeptide expression
US4704362A (en) * 1977-11-08 1987-11-03 Genentech, Inc. Recombinant cloning vehicle microbial polypeptide expression
US4342832A (en) * 1979-07-05 1982-08-03 Genentech, Inc. Method of constructing a replicable cloning vehicle having quasi-synthetic genes
US4571421A (en) * 1979-11-05 1986-02-18 Genentech, Inc. Mammalian gene for microbial expression
US4425437A (en) * 1979-11-05 1984-01-10 Genentech, Inc. Microbial polypeptide expression vehicle
US4443539A (en) * 1980-02-05 1984-04-17 The Upjohn Company Process for preparing bovine growth hormone
IL59690A (en) * 1980-03-24 1983-11-30 Yeda Res & Dev Production of bovine growth hormone by microorganisms and modified microorganisms adapted to produce it
IE52755B1 (en) * 1980-08-26 1988-02-17 Univ California Bovine pre-growth and growth hormone
SE453510B (sv) * 1980-12-29 1988-02-08 Toyo Jozo Kk Peptid for analys av humant paratyroidhormon
JPS58996A (ja) * 1981-06-01 1983-01-06 ザ・ボ−ド・オブ・トラステイ−ズ・ミシガンステ−トユニバ−シテイ− 細菌中での牛成長ホルモン遺伝子のクロ−ン化
US4880910A (en) * 1981-09-18 1989-11-14 Genentech, Inc. Terminal methionyl bovine growth hormone and its use
NZ201918A (en) * 1981-09-18 1987-04-30 Genentech Inc N-terminal methionyl analogues of bovine growth hormone
EP0085036A1 (en) * 1982-01-18 1983-08-03 Monsanto Company Method for improved bovine milk production
US4670393A (en) * 1982-03-22 1987-06-02 Genentech, Inc. DNA vectors encoding a novel human growth hormone-variant protein
US4423037A (en) * 1982-05-13 1983-12-27 The General Hospital Corporation Inhibitors of peptide hormone action
GB2121054B (en) * 1982-05-25 1986-02-26 Lilly Co Eli Cloning vectors for expression of exogenous protein
US4745069A (en) * 1982-05-25 1988-05-17 Eli Lilly And Company Cloning vectors for expression of exogenous protein
EP0103395A3 (en) * 1982-08-17 1985-05-22 Biogen N.V. Dna sequences, recombinant dna molecules and processes for producing bovine growth hormone-like polypeptides in high yield
AU2092983A (en) * 1982-11-08 1984-05-17 Genentech Inc. Porcine growth hormone produced by recombinant dna technology
US4673641A (en) * 1982-12-16 1987-06-16 Molecular Genetics Research And Development Limited Partnership Co-aggregate purification of proteins
EP0111814A3 (en) * 1982-12-16 1985-08-14 Mgi Pharma, Inc. The cloning and expression of nucleotide sequences encoding bovine growth hormone
GR79124B (ru) * 1982-12-22 1984-10-02 Genentech Inc
US4661454A (en) * 1983-02-28 1987-04-28 Collaborative Research, Inc. GAL1 yeast promoter linked to non galactokinase gene
US4755465A (en) * 1983-04-25 1988-07-05 Genentech, Inc. Secretion of correctly processed human growth hormone in E. coli and Pseudomonas
BG49718A3 (en) * 1983-07-15 1992-01-15 Bio- Technology General Corp Method for preparing of polypeptid with superoxiddismutasne activitty
US4521409A (en) * 1983-10-03 1985-06-04 Cornell Research Foundation, Inc. Use of growth hormone to enhance ruminant mammary development
US4549986A (en) * 1983-12-23 1985-10-29 The Salk Institute For Biological Studies Human CGRP
DE3585170D1 (de) * 1984-03-06 1992-02-27 Lilly Co Eli Expressionsvektoren fuer rinderwachstumshormonderivate.
DE3588249T2 (de) * 1984-08-16 2004-05-06 Savient Pharmaceuticals, Inc. Methode zur Herstellung von menschlichen Wachstumshormonen
US4795706A (en) * 1985-01-31 1989-01-03 Eli Lilly And Company Novel expression control sequences
US4861868A (en) * 1985-02-22 1989-08-29 Monsanto Company Production of proteins in procaryotes
US5037806A (en) * 1985-02-22 1991-08-06 Monsanto Company Biologically active method using somatotropins

Also Published As

Publication number Publication date
US6210928B1 (en) 2001-04-03
US4861868A (en) 1989-08-29
ZA861323B (en) 1987-02-25
US5399489A (en) 1995-03-21
US5744328A (en) 1998-04-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
SU1646489A3 (ru) Способ получени бычьего гормона роста
US5470719A (en) Modified OmpA signal sequence for enhanced secretion of polypeptides
EP0047600B1 (en) Bovine pre-growth and growth hormone
RU2129606C1 (ru) ШТАММ ESCHERICHIA COLI JM 105, ТРАНСФОРМИРОВАННЫЙ ПЛАЗМИДОЙ PAE12, - ПРОДУЦЕНТ АЛЬФА-АМИДИРУЮЩЕГО ФЕРМЕНТА, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА PAE12, ЛИНИЯ КЛЕТОК С127 МЫШИ, ТРАНСФИЦИРОВАННАЯ ПЛАЗМИДОЙ PD BPV-ММТ NEO αАЕА75-ПРОДУЦЕНТ АЛЬФА-АМИДИРУЮЩЕГО ФЕРМЕНТА, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА pd BPV-MMT Neo αAEA75
KR100316347B1 (ko) 대장균엔테로톡신ⅱ신호펩티드의변형체와인체성장호르몬의융합단백질을발현하는재조합미생물및그를이용한인체성장호르몬의제조방법
JP3207416B2 (ja) ソマトトロピン・アナログ類
US6229003B1 (en) Production of bovine growth hormone by microorganisms
AU634517B2 (en) Somatotropin analogs
EP0193515B1 (en) Method for obtaining biologically active bovine and porcine growth hormone and composition comprising biologically active porcine growth hormone
JPH07108221B2 (ja) レンニンの製造方法
DD153393A5 (de) Verfahren zur reinigung von nucleotidsequenzen
US6316004B1 (en) Chimeric somatostatin containing protein and encoding DNA, plasmids of expression, method for preparing chimeric protein, strain-producers, immunogenic composition, method for increasing the productivity of farm animals
JPS63240799A (ja) 組換えポリペプチドの製法
JPS61149089A (ja) Dna塩基配列、ポリペプチド分泌発現ベクター及び形質転換微生物
KR960016704B1 (ko) 소마토트로핀 암호화 cDNA, 발현 벡터 및 숙주
JP2591713B2 (ja) アシネトバクター・カルコアセチカスからの酵素ムタロターゼの製造のためのdna配列、組換えdna分子および方法
EP0285361A2 (en) Purification of apase-1 1 and retrieval of the nematode resistance gene
Takasaki et al. Cloning and sequence analysis of a snake, Atractaspis engaddensis gene encoding sarafotoxin S6c
JPS62226998A (ja) ヒトカルシトニン前駆体ペプチド及びその製造方法
WO1987001708A2 (en) Enhanced bioactivity of mammalian somatotropin through selective deamidation
DE3220333C2 (ru)
EP0443790B1 (en) Growth hormone-like glycoproteins
CA1302321C (en) Preparation of polypeptides
KR860001922B1 (ko) 소의 성장 호르몬을 유전 암호화하는 데옥시뉴클레오티드 배열을 발현시키는데 사용하기 위한 발현 전달 벡터의 제조 방법
JPH0272878A (ja) 組換えdna、それを含む形質転換体及びそれを用いたグルコースデヒドロゲナーゼの製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
REG Reference to a code of a succession state

Ref country code: RU

Ref legal event code: MM4A

Effective date: 20040222