SU1632973A1 - Способ получени антигена аденовирусов крупного рогатого скота - Google Patents

Способ получени антигена аденовирусов крупного рогатого скота Download PDF

Info

Publication number
SU1632973A1
SU1632973A1 SU894637897A SU4637897A SU1632973A1 SU 1632973 A1 SU1632973 A1 SU 1632973A1 SU 894637897 A SU894637897 A SU 894637897A SU 4637897 A SU4637897 A SU 4637897A SU 1632973 A1 SU1632973 A1 SU 1632973A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
taurus
virus
adenovirus
carried out
cells
Prior art date
Application number
SU894637897A
Other languages
English (en)
Inventor
Раиса Васильевна Белоусова
Любовь Леонидовна Миронова
Татьяна Петровна Лобова
Нина Константиновна Преображенская
Лидия Николаевна Носач
Original Assignee
Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР
Московская ветеринарная академия им.К.И.Скрябина
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР, Московская ветеринарная академия им.К.И.Скрябина filed Critical Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР
Priority to SU894637897A priority Critical patent/SU1632973A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1632973A1 publication Critical patent/SU1632973A1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии и ветеринарной вирусологии и касаетс  получени  антигенов аденовирусов крупного рогатого скота, необходимых дл  создани  вакцин, диаг- ностикумов и других биологических препаратов , а также дл  проведени  научно-исследовательских работ. Целью изобретени   вл етс  увеличение выхода целевого продукта. Указанна  цель достигаетс  использованием перевиваемых линий клеток почек теленка, выбранных из группы: Таурус-1, Тау- рус-2 ВСКК (ДП) № 007 и Таурус-4 ВСКК (ДП) № 010, при этом выращивание культуры клеток осуществл ют в течение 3-4 дн„, а заражение вирусом осуществл ют с множественностью О, 1- 0,2 Т1Щ5о на клетку. &

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии и ветеринарной вирусологии и касаетс  получени  антигенов аденовирусов крупного рогатого скота, необходимых дл  создани  вакцин, диаг- ностикумов и других биологических препаратов , а также дл  проведени  научно-исследовательских работ.
Цель изобретени  - увеличение выхода целевого продукта.
Пример 1. Получение антиге- на аденовируса КРС II подгруппы (7-й серотип) провод т на линии перевиваемых клеток почек теленка Тау- рус-1, выращенных в стационарных матрасных колбах.
В 1,5-литровую матрасную колбу с клетками линии Таурус-1 на уровне 110 пассажа ввод т 0,25%-ный раствор трипсина, подогретого до 37°С, Через 10-15 с раствор удал ют, а сосуд с клетками помещают в термостат при 37°С на 2-3 мин. Затем внос т небольшое количество питательной среды и энергичным встр хиванием заканчивают процесс отделени  клеток от стекла После этого в клеточную взвесь добавл ют среду роста - Игла MEM с 10% сыворотки крупного рогато- то скота (СКРС) и разливают на две 1,5-литровые матрасные колбы,
Эти культуры III пассажа инкубируют при 37°С в течение 3 сут до момен« 1
СО
15
20
25
та формировани  плотного моносло . При заражении вирусом среду из куль- туральных сосудов сливают, клетки однократно промывают питательной ере- с дои и ввод т 0,1 ТЦЦ5о/клетку. Используют штамм вируса Русь 18/81 на уровне 10 пассажа на культуре клеток тестикул бычка после проведени  его через организм теленка. Адсорбцию ви- Q руса провод т в термостате при 36°С в течение 90 мин. Затем добавл ют 200 мл поддерживающей среды - Игла MEM без СКПС с добавками 0,03% глю- тамина и 0,04% аргинина. Культуры ежедневно просматривают под малым . увеличением микроскопа На вторые сутки примерно 40-50% клеток подвергаютс  специфической дегенерации, на третьи сутки в процесс вовлекаютс  практически все клетки. Титр аденовируса равен 7,0 lg ТЦД50/мп. В параллельных опытах на первичной культуре клеток тестикул бычка титр вируса равен 4 lg ТЦЦ5о/мл.
П р и м е р 2. Получение антигена аденовируса КРС II подгруппы (7-й серотип) провод т на линии перевиваемых клеток почек теленка Тау- рус-1, выращенных в роллерах.
В 1-литровый роллерный флакон с клетками линии Таурус-1 ввод т взвесь клеток III пассажа, полученную из 1,5-литровой матрасной колбы в объеме 100 мл. Далее культуры готов т по примеру 1. Флакон с клетками помещают в роллерную установку с режимом вращени  20 об./ч. Заражение культур провод т во примеру 1 с множественностью 0,2 Т1Щ50/клетку, а сбор вируса осуществл ют через 48 ч после заражени . Титр вируса 7,75 lg , В параллельных опытах на первичной культуре клеток тестикул бычка титр 5,5 lg ТЦЦ50/мл.
П р и м е р 3. Получение антигена аденовируса КРС II подгруппы (7-й серотип) провод т по линии перевиваемых клеток почек теленка Таурус-1 , выращенных на микроносител х.
В 1-литровую колбу внос т 100х 10Й клеток 115 пассажа, взвешенных в 250 мл среды Игла MEM с 10% СКРС и 5 мл микроносител  Цитолар-1, содержание примерно 40 тыс, частиц диаметром 230-250 мк.
Адсорбцию клеток на МН провод т в течение 24 ч при 35°С, затем включают магнитную мешалку со скоростью
вируса провод т в течение 1 ч 37°С. После этого внос т до
16329734
22 об./мин. На следующие сутки добавл ют 250 мл свежей питательной среды того же состава. Через 72 ч после формировани  моносло  на МН, среду роста удал ют, а на клетки внос т 10 мл вирусосодержащей суспензии с титром 4,75 lg . Адсорбцию при
500 мл поддерживающей среды, указанного в примере 1 состава. Перед заражением определ ют количество клеток в колбе, В данном случае оно было 300-10б.
Полна  дегенераци  клеток на МН зарегистрирована на третьи сутки, когда и производ т сбор вируса. Титр вируса равен 7 lg ,
П р и м е р 4. Получение антигена аденовируса КРС I подгруппы (1-й серотип) провод т на линии перевиваемых клеток почек Таурус-2, выращенных в стационарных матрасных колбах.
Культуру на уровне 100 пассажа готов т по примеру 1, но используют на четвертые сутки после экспланта- ции, когда формируетс  монослой. При заражении ввод т аденовирус 1-го серотипа, штамм Bovine-10 с множественностью 0,1 ТЦД50/клетку, адсорбцию провод т в течение 90 мин при 37°С. Все последующие процедуры осуществл ют по примеру 1. Сбор вируса провод т через 96 ч. Титр аденовируса равен 4,5 lg , что не ниже титра вируса, полученного в параллельных опытах на первичной культуре клеток почек эмбриона коровы .
30
35
40
П р и м е р 5. Получение антигена аденовируса КРС I подгруппы (1-й се- 45 ротип) провод т на линии перевиваемых клеток почек теленка Таурус-2, выращенных в роллерах. Культуру на уровне 100 пассажа готов т по примеру 2, но монослой формируетс  и четвертые сутки. При заражении ввод т аденовирус 1-го серотипа, штамм Bovine-10 с множественностью 0,2 ТЦЦ50/клетку. Все последующие процедуры осуществл ют по примеру 1. Сбор вируса провод т через 96 ч.
50
55
Титр аденовируса равен 5,5 1ЈТЦЦи/мл. В параллельных опытах на первичной культуре клеток почек эмбриона коровы титр вируса составил 5 1§ТЦЦи/мп,,
вируса провод т в течение 1 ч 37°С. После этого внос т до
б./мин. На следующие сутки до ют 250 мл свежей питательной ы того же состава. Через 72 ч е формировани  моносло  на МН, у роста удал ют, а на клетки в 10 мл вирусосодержащей суспенс титром 4,75 lg . Адс
П р и м е р 5. Получение антигена аденовируса КРС I подгруппы (1-й се- ротип) провод т на линии перевиваемых клеток почек теленка Таурус-2, выращенных в роллерах. Культуру на уровне 100 пассажа готов т по примеру 2, но монослой формируетс  и четвертые сутки. При заражении ввод т аденовирус 1-го серотипа, штамм Bovine-10 с множественностью 0,2 ТЦЦ50/клетку. Все последующие процедуры осуществл ют по примеру 1. Сбор вируса провод т через 96 ч.
Титр аденовируса равен 5,5 1ЈТЦЦи/мл. В параллельных опытах на первичной культуре клеток почек эмбриона коровы титр вируса составил 5 1§ТЦЦи/мп,,
516329
П р и м е р 6. Получение антигена аденовафуса КРС II подгпуппы (7-й серотип) провод т на линии перевиваемых клеток почек теленка Таурус-4, выращенных в стационарных матрасных колбах. Культуру на уровне 145 пассажа готов т по примеру 1, ее ис- пользуют на четвертые сутки после формировани  моносло . При заражении jg ввод т аденовирус 7-го серотипа, тамм Русь 18/81 - 0,1 ТЦЦ50/клетку. Все последующие процедуры осуществл т по примеру 1. Сбор вируса прово т через 112 ч. Титр аденовируса ра- 15 вен 5,5 lg ТЦЦдо/мл- в параллельных опытах на первичной культуре клеток тестикул бычка титр равен 4S5 lg
ТЦД5о/мл.
Пример 7. Получение антигена 20 аденовируса КРС II подгруппы (7-й серотип) провод т на линии перевиваемых клеток почек теленка Т урус-4, выращенных в роллерах. Культуру на уровне 145 пассажа готов т по приме- 25 ру 1, ее используют на третьи сутки, когда сформировалс  монослой. При заражении ввод т аденовирус 7-го сероти- па, штамм Русь 18/81 - 0,2 ТЦЦщ/клетку . Все последующие процедуры осу- 30 ществл ют по примеру 1. Сбор вируса провод т через 96 ч. Титр аденовируса
73&
равен 6,25 lg . В параллельных опытах на первичной культуре клеток тестикул бычка составил 5,5 lg ТЦЦёо/мл.
Т г. ким образом, предлагаемый способ размножени  аденовирусов КРС разных на предлагаемых лини х перевиваемых клеток почек теленка, имеющихс  в большом количестве в жидком азоте,  вл етс  перспективным и высокоэкономичным.

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Способ получени  антигена аденовирусов крупного рогатого скота, включающий выращивание культуры клеток и заражение вирусом с последующей инкубацией, отличающий- с   тем, что, с целью увеличени  вькода целевого продукта, в качестве культуры клеток используют перепиваемые линии клеток почек теленка, выбранные из группы: Таурус-1, Таурус-2 ВСКК (ДП) № 007 и Таурус-4 ВСКК (ДП) № 010, при этом выращивание культуры клеток осуществл ют в течение 3- 4 дн., а заражение вирусом осуществл ют с множественностью 0,1-0,2 ТЦД на клетку.
SU894637897A 1989-01-18 1989-01-18 Способ получени антигена аденовирусов крупного рогатого скота SU1632973A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894637897A SU1632973A1 (ru) 1989-01-18 1989-01-18 Способ получени антигена аденовирусов крупного рогатого скота

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894637897A SU1632973A1 (ru) 1989-01-18 1989-01-18 Способ получени антигена аденовирусов крупного рогатого скота

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1632973A1 true SU1632973A1 (ru) 1991-03-07

Family

ID=21422998

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894637897A SU1632973A1 (ru) 1989-01-18 1989-01-18 Способ получени антигена аденовирусов крупного рогатого скота

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1632973A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2772751C1 (ru) * 2020-12-08 2022-05-25 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория" Способ получения гипериммунной сыворотки к аденовирусу bovine-10 крупного рогатого скота

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Сюрин В.Н., Фомина Н.В. Частна ветеринарна вирусологи „ - М.: Колос, 1979, с. 108. Авторское свидетельство СССР № 1347448, кл. С 12 N 5/00, С 12 N 5/02, 1987. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2772751C1 (ru) * 2020-12-08 2022-05-25 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория" Способ получения гипериммунной сыворотки к аденовирусу bovine-10 крупного рогатого скота

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2012005502A (ja) インフルエンザウイルスの複製のための動物細胞および方法
CN107142249B (zh) 一种全悬浮细胞培养生产猪伪狂犬病毒抗原的方法
CN1970080A (zh) 用悬浮的Vero细胞生产病毒疫苗的方法
CN110373379A (zh) 一种Marc-145全悬浮细胞直接培养猪蓝耳病病毒疫苗的方法
US4059486A (en) Cell culture process
CN108004202A (zh) 一种用于无血清悬浮培养293t细胞的培养液
CN101044237B (zh) 制备病毒材料的方法
CN109913404A (zh) 鸡传染性法氏囊病毒活疫苗的制备方法
US3887430A (en) Culture medium for tissue culture techniques
CN103160458A (zh) 一种适合Vero细胞生长的低血清培养基
US4169761A (en) Process for the cultivation of viruses
CN116836944A (zh) 轮状病毒疫苗和生产轮状病毒疫苗的方法
SU1632973A1 (ru) Способ получени антигена аденовирусов крупного рогатого скота
US20140106403A1 (en) Drain down and re-feed of microcarrier bioreactor
KR20120027381A (ko) 일본뇌염 백신 및 그것의 제조 방법
CN106367399B (zh) 一种使用全悬浮技术生产猪细小病毒病疫苗的方法
CN110241090B (zh) 一种全悬浮细胞培养生产猪伪狂犬病毒抗原的方法
CN107137705B (zh) 猪伪狂犬gE基因缺失病毒灭活疫苗的生产方法
CN110227153A (zh) 一种猪轮状病毒亚单位疫苗的制备方法及其应用
CN117070476B (zh) 一株牛疱疹病毒4型毒株及其在灭活疫苗制备中的应用
RU2751664C1 (ru) Способ получения иммуногенных компонентов культурального вируса ящура типов А, О, Азия-1 с применением бессывороточной среды "Cellventoтм ВНК-200" для изготовления противоящурных вакцин
CN110862972B (zh) 一种犬腺病毒ⅰ型无血清培养方法
CN107523534B (zh) 重组cho细胞的贴壁微载体悬浮培养方法
RU2142816C1 (ru) Способ получения антигерпетической вакцины и лекарственная форма на ее основе
CN116966290B (zh) 猪流行性腹泻灭活疫苗制备方法及其应用