CN108004202A - 一种用于无血清悬浮培养293t细胞的培养液 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液,是以不含L‑谷氨酰胺的高糖DMEM‑F12培养基为基液,添加L‑丙氨酰‑L谷氨酰胺、维生素C、HEPES、类胰岛素生长因子、表皮生长因子、脂质浓缩物、人血白蛋白、转铁蛋白、海藻糖、肝素钠和Pluronic F‑68制成。本发明公开的培养液不含任何血清成分,成分明确、批次稳定、质量可控、成本低廉,不仅适用于实验室常规培养,也适用于大规模生产培养,应用前景广泛。

Description

一种用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液
技术领域
本发明涉及生物技术领域,尤其是涉及一种用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液。
背景技术
293T细胞是由293细胞派生并表达SV40大T抗原的人肾上皮细胞系,是包装病毒的主要细胞。随着细胞治疗和基因治疗技术的快速发展,尤其在CAR-T疗法药物成功上市以来,293T无血清悬浮培养的产业化和规模化更为迫切。
尽管ATCC将293T细胞进行了商业化处理后得到比较稳定的细胞系,但在实际生产过程中,由于293T细胞的用量较大且传代次数过多,细胞的生物学特性就会发生改变,影响病毒的包装效率。目前293T细胞的常规培养方法多采用贴壁并添加血清进行培养,贴壁培养导致培养效率低,空间利用率低,仪器、耗材、人工等成本的增加;而血清成分复杂,批次间差异较大,血清质量的检定较为复杂,用此细胞生产的病毒质量难以控制,并且增加产品的检测项目,耗费大量的人力物力。而目前市售的悬浮无血清培养基,多存在悬浮驯化效率低、细胞增殖慢、细胞特性不稳定、价格昂贵等问题。针对这一问题,迫切需要结合中国2015版《中国药典》和《药品生产质量管理规范》等政策要求,设计一套无血清悬浮培养293T细胞培养液,以提高细胞增殖效率、保持细胞特性、增强病毒包装效率、降低商品成本及价格。
发明内容
针对现有技术的不足,本发明要解决的问题是提供一种用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液。
本发明所述用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液,该培养液不含血清成分,是以市售DMEM-F12培养基为基液添加L-丙氨酰-L谷氨酰胺、维生素C、HEPES、类胰岛素生长因子(IGF-1)、表皮生长因子(EGF)、脂质浓缩物、人血白蛋白、转铁蛋白、海藻糖、肝素钠、Pluronic F-68制成;其特征在于:所述培养液中的DMEM-F12培养基为不含L-谷氨酰胺的高糖DMEM-F12培养基,其中含有500~1500mg/L L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.1~1mg/L维生素C、2383~11915mg/L HEPES、5~200μg/L类胰岛素生长因子(IGF-1)、10~100μg/L表皮生长因子(EGF)、1~5ml/L脂质浓缩物、1~2g/L人血白蛋白、0.1~1mg/L转铁蛋白、1~4mg/L海藻糖、1250~12500U/L肝素钠和1~20ml/L Pluronic F-68(10%,100×)。
上述的用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液中:所述培养液中优选含有700~1100mg/L L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.2~0.6mg/L维生素C、4000~6500mg/L HEPES、10~28μg/L类胰岛素生长因子(IGF-1)、40~60μg/L表皮生长因子(EGF)、2~3ml/L脂质浓缩物、1.5~2g/L人血白蛋白、0.3~0.7mg/L转铁蛋白、2~3mg/L海藻糖、10000~12500U/L肝素钠和5~15ml/L Pluronic F-68(10%,100×)。
上述的用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液中:所述培养液中最优选含有862mg/L L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.4mg/L维生素C、5958mg/L HEPES、20μg/L类胰岛素生长因子(IGF-1)、50μg/L表皮生长因子(EGF)、2ml/L脂质浓缩物、2g/L人血白蛋白、0.5mg/L转铁蛋白、2mg/L海藻糖、12500U/L肝素钠和1~20ml/L Pluronic F-68(10%,100×)。
上述用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液中所涉及的原料均为市售产品,其中类胰岛素生长因子包括重组人胰岛素样生长因子,人血白蛋白包括重组人血白蛋白,脂质浓缩物特指Thermo Fisher供应的货号为11905031的产品,规格为100ml/瓶。
上述用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液的制备:
1.使用电子天平精确称量500~1500mg L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.1~1mg维生素C和2383~11915mg HEPES,将称量好的成分倒入烧杯中,加入500ml不含L-谷氨酰胺的高糖DMEM-F12培养液为基液进行溶解。
2.待步骤1中所述固体组分完全溶解后,再依次加入0.25~10ml IGF-1溶液,0.2~2ml EGF溶液,1~5ml脂质浓缩物,5~10ml人血白蛋白,0.01~0.1ml转铁蛋白,0.1~0.4ml海藻糖,0.2~2ml肝素钠,1~20ml Pluronic F-68,充分混匀。
3.将步骤2中配制的混合液转入1L容量瓶中,再补加不含L-谷氨酰胺的高糖DMEM-F12培养液定容至1L,并使用NaHCO3调节混合液pH值至7~7.2,无菌环境下进行0.22μm过滤除菌,得到无血清悬浮培养293T细胞的培养液,4℃储存备用。
4.此时得到的无血清悬浮培养293T细胞的培养液中各成分终浓度为L-丙氨酰-L谷氨酰胺500~1500mg/L、维生素C 0.1~1mg/L、HEPES 2383~11915mg/L、IGF-1 5~200μg/L、EGF 10~100μg/L、脂质浓缩物1~5ml/L、人血白蛋白1~2g/L、转铁蛋白0.1~1mg/L、海藻糖1~4mg/L、肝素钠1250~12500U/L、Pluronic F-68(10%,100×)1~20ml/L。
上述制备过程均在20~30℃的无菌车间中进行,保证产品无菌。
上述无血清悬浮培养293T细胞的培养液可用于293T细胞的无血清悬浮驯化培养和传代培养。其中所述培养液将常用的L谷氨酰胺改为L-丙氨酰-L谷氨酰胺,以减少细胞大规模培养过程中毒性氨的浓度,增加氨基酸的利用;该培养液还含有类胰岛素生长因子、转铁蛋白、人血清白蛋白、脂质浓缩物、海藻糖、肝纳素、Pluronic F-68和表皮生长因子(EGF),可作为血清替代物为细胞提供必需的营养物质,肝纳素的添加可缓解细胞培养过程中的结团现象,以增加细胞的培养效率。
本发明公开的无血清悬浮培养293T细胞的培养液,各成分稳定,来源明确,培养的细胞批次间稳定,质量可控。使用该细胞培养液培养的细胞增殖快,细胞活性保持周期长,长期培养细胞不结团,冻存效率高,成本低廉;并与传统293T细胞贴壁培养基的相比,该配方培养的悬浮细胞在转染HIV慢病毒时转染效率更高。
本发明所述的无血清悬浮培养293T细胞的培养液适用于规模化生产,能为生物医疗行业提供质美价廉的293T细胞无血清悬浮培养液。
附图说明
图1为本发明的无血清悬浮培养293T细胞的培养液培养与市售无血清培养基培养的293T细胞形态比较。
其中:A为本发明的无血清悬浮培养293T细胞的培养液培养的293T的形态;B为市售的无血清培养基培养的293T的形态。
图2为本发明的无血清悬浮培养293T细胞的培养液培养与市售无血清培养基培养的293T细胞包装HIV慢病毒的效率对比。
其中:A为本发明的无血清悬浮培养293T细胞的培养液培养的293T细胞的包装效率;B为市售的无血清培养基培养的293T细胞的包装效率。
具体实施方式
说明:本发明中所涉及的原料均为市售产品,其中类胰岛素生长因子包括重组人胰岛素样生长因子,人血白蛋白包括重组人血白蛋白,脂质浓缩物特指Thermo Fisher供应的货号为11905031的产品,规格为100ml/瓶。
实施例1:最佳配方无血清悬浮培养293T细胞的培养液的制备
1.使用电子天平精确称量862mg L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.4mg维生素C和5958mgHEPES,将称量好的成分倒入烧杯中,加入500ml不含L-谷氨酰胺的高糖DMEM-F12培养液为基液进行溶解。
2.待步骤1中所述固体组分完全溶解后,再依次加入1ml IGF-1溶液,1ml EGF溶液,2ml脂质浓缩物,10ml人血白蛋白,0.05ml转铁蛋白,0.2ml海藻糖,2ml肝素钠,10mlPluronic F-68,充分混匀。
3.将步骤2中配制的混合液转入1L容量瓶中,再补加不含L-谷氨酰胺的高糖DMEM-F12培养液定容至1L,并使用NaHCO3调节混合液pH值至7~7.2,无菌环境下进行0.22μm过滤除菌,得到无血清悬浮培养293T细胞的培养液。
4.将步骤3中得到的无血清悬浮培养293T细胞的培养液转入带螺旋盖的塑料瓶中,得到无血清悬浮培养293T细胞的培养液商品,4℃储存,保质期6个月。
上述的IGF-1、EGF、人血白蛋白、转铁蛋白、海藻糖、肝纳素、Pluronic F-68等成分以市售产品为例,但不限定于所述产品,按照药典规定即可。
优选的,IGF-1供应商为货号PHG0078,规格20μg/瓶;EGF供应商为货号PHG0311,规格100μg/瓶;人血白蛋白品牌为安普莱士,国药准字S10920009,规格为10g,50ml/瓶;转铁蛋白供应商为sigma,货号为T2252,规格为100mg/瓶;海藻糖供应商为sigma,货号为T9531,规格为10mg/瓶;肝素钠供应商为南京新百,国药准字H32025851,规格为2ml,12500U/支;Pluronic F-68(10%,100×)供货商为货号24040032,规格100ml/瓶。
其中,IGF-1使用1ml 0.9%医用生理盐水完全溶解,浓度为20μg/ml;EGF使用2ml无菌PBS缓冲液完全溶解,浓度为50μg/ml;转铁蛋白使用10ml 0.9%医用生理盐水完全溶解,浓度为10mg/ml;海藻糖使用1ml 0.9%医用生理盐水完全溶解,浓度为10mg/ml。
实施例2:293T细胞的悬浮驯化培养
1. 293T细胞的复苏和接种
(1)从液氮灌中取出冻存的293T细胞,每支体积为1ml,迅速丢入40℃水浴锅中并快速晃动,在1~2min内使细胞溶液完全溶解。
(2)将细胞溶液转入15ml离心管中,每支离心管中以1:9的比例加入无血清培养基,即1ml细胞溶液加9ml培养基,300g,离心3min。
(3)加入1ml培养基将细胞重悬,两支并一支,共2ml细胞溶液加入含有18ml实施1例1中无血清完全培养基的T75cm2瓶中,置37℃,5%CO2的培养箱中培养2天达到70%~80%汇合状态。
2. 293T细胞的悬浮驯化
(1)吸弃除无血清培养基,并加入并加入0.05%胰酶消化剂使293T细胞消化脱离培养瓶表面,镜下观察细胞变圆,细胞间间隙加大时加入10ml无血清完全培养基终止消化。
(2)收集细胞,300g离心3min,用无血清完全培养基重悬,再将全部细胞接种于新的培养瓶中;置37℃,5%CO2的培养箱中培养2天,重复步骤2中(1)和(2)7-9次,直至细胞开始悬浮增殖,将全部细胞转入细胞培养袋(规格2L)培养至密度为2×106cell/ml,培养过程中定期晃动细胞培养袋,并及时进行补液。
(3)培养结束时,观察细胞状态并拍照,见图1(A)。
3.细胞冻存
将细胞培养液收集至250ml离心管中,离心收集细胞,并使用无血清冻存液进行冻存,冻存密度均为4×106cell/支/ml。
4.对照组
对照组中使用的培养基为无血清293SFM II培养基(GIBCO,Cat.No.10970-010),操作按照本实施例中1~3进行,培养结束时,观察细胞状态并拍照,见图1(B)。
5.结果分析
对比两组培养基悬浮驯化培养293T细胞的细胞状态发现,本发明中的293T细胞培养基比无血清293SFM II培养基培养速率快,培养效率高,在培养结束时,本发明的培养基培养的细胞不易结团,而市售培养基培养的细胞易结团,结团则会影响细胞生长效率,降低细胞的生物学活性。
实施例3:293T细胞的包装效率
1.细胞的复苏、接种和培养
(1)从液氮灌中取出冻存的293T细胞,每支体积为1ml,迅速丢入40℃水浴锅中并快速晃动,在1~2min内使细胞溶液完全溶解。
(2)将细胞溶液转入15ml离心管中,每支离心管中以1:9的比例加入无血清培养基,即1ml细胞溶液加9ml培养基,300g,离心3min。
(3)加入1ml培养基将细胞重悬,两支并一支,共2ml细胞溶液加入含有18ml实施1例1中无血清完全培养基的T75cm2瓶中,置37℃,5%CO2的培养箱中培养24h后,观察细胞状态,收集细胞,300g,离心3min。
(4)加入培养基重悬细胞,将细胞转移至1L摇瓶中,0-48h搅拌速度为40r/min,培养48h后,搅拌速度为60r/min,置于37℃,5%CO2条件下扩大培养。
2.HIV慢病毒的包装
(1)HIV慢病毒是由psPAX2包装质粒、pMD2G包装质粒和pSIN GFP HIV慢病毒表达质粒三种质粒包装而成,三种质粒由本实验室保存,三种质粒经过无内毒素高纯度抽提获得。
(2)将三种质粒按照下表添加到50ml离心管中。
(3)加入CaCl2溶液156.25μl,快速摇匀,约10s;
(4)加入2×HBS 1250μl,快速摇匀30s,静置2min 30s;
(5)吸取2.5ml 293T无血清完全培养基加入上述混合物中,充分吹打混匀,获得复合物;
(6)取摇瓶中细胞,计数4×107个293T细胞,转移至离心管中,离心后,使用293T无血清完全培养基50ml重悬,并接种于新的细胞培养袋(规格500ml)中。
(7)将复合物逐滴均匀地分别加入含有4×107个293T细胞中,混匀,于37℃,5%CO2细胞培养箱中培养;
(8)培养12-14h后进行细胞补液,混匀,于37℃,5%CO2细胞培养箱中培养;
(9)继续培养细胞36h后,荧光显微镜下观察细胞形态与转染情况,见图3(A)。
3.对照组
对照组中使用的培养基为293SFM II无血清培养基,操作按照本实施例中1—2中的步骤进行,转染结束时,荧光显微镜下观察细胞形态与转染情况,见图3(B)。
4.结果分析
在转染36h后,本发明公开的无血清培养基的转染效率明显高于293SFM II无血清培养基。
实施例4:293T细胞的一次性生物反应器大规模悬浮培养
1. 293T细胞的复苏接种和培养
(1)从液氮灌中取出冻存的293T细胞,每支体积为1ml,迅速丢入40℃水浴锅中并快速晃动,在1~2min内使细胞溶液完全溶解。
(2)将细胞溶液转入15ml离心管中,每支离心管中以1:9的比例加入无血清培养基,即1ml细胞溶液加9ml培养基,300g,离心3min。
(3)加入1ml培养基将细胞重悬,两支并一支,共2ml细胞溶液加入含有18ml实施1例1中无血清完全培养基的T75cm2瓶中,置37℃,5%CO2的培养箱中培养24h后,观察细胞状态,收集细胞,300g,离心3min。
(4)加入培养基重悬细胞,将细胞转移至1L摇瓶中,0-48h搅拌速度为40r/min,培养48h后,搅拌速度为60r/min,置于37℃,5%CO2条件下扩大培养。
2.一次性生物反应器的大规模培养
293T细胞被用于基因治疗过程的慢病毒包装工艺,基因治疗属于个体化治疗,293T细胞不需要持续培养,慢病毒现用现包,这样生产的慢病毒滴度高,侵染效率也高,所以使用一次性生物反应器既能节约成本,又能进行个体化设计,比较符合基因治疗的要求。
一次性生物反应器主要包括:细胞培养袋、呼吸袋、取样器。
主要步骤为:
(1)当实施例5步骤1中细胞培养至3×105—6×105cell/ml,将细胞全部接种至5L振荡激流式一次性生物反应器中,通入CO2和0.5mmol/L NaOH调节pH 7.0-7.2,控制温度为37℃,通过自动控制系统通入混合O2/N2/空气控制DO 40%-50%,起始转速55r/min,随培养体积扩大提高至65r/min。
(2)每24h取样,计算细胞密度及存活率,测定葡萄糖和乳酸浓度。
(3)当细胞密度大于1×106cell/ml开始流加培养,流加率为0.6-1,即前24h培养体积的0.6-1倍。
(4)培养4-6天,当细胞密度达到2×106个cell/ml,按照一定的质粒浓度,添加质粒进行病毒包装,此时包装的病毒即可满足一个患者的需求。
实施例5:无血清悬浮培养293T细胞的培养液配方
是以市售不含L-谷氨酰胺的高糖DMEM-F12培养基为基液,其中含有500mg/L L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.1mg/L维生素C、2383mg/L HEPES、5μg/L类胰岛素生长因子(IGF-1)、10μg/L表皮生长因子(EGF)、1ml/L脂质浓缩物、1g/L人血白蛋白、0.1mg/L转铁蛋白、1mg/L海藻糖、1250U/L肝素钠和1ml/L Pluronic F-68(10%,100×)。
配制方法同实施例1。
实施例6:无血清悬浮培养293T细胞的培养液配方
是以市售不含L-谷氨酰胺的高糖DMEM-F12培养基为基液,其中含有1500mg/L L-丙氨酰-L谷氨酰胺、1mg/L维生素C、11915mg/L HEPES、200μg/L类胰岛素生长因子(IGF-1)、100μg/L表皮生长因子(EGF)、5ml/L脂质浓缩物、2g/L人血白蛋白、1mg/L转铁蛋白、4mg/L海藻糖、12500U/L肝素钠和20ml/L Pluronic F-68(10%,100×)。
配制方法同实施例1。

Claims (3)

1.一种用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液,所述培养液不含血清成分,是以市售DMEM-F12培养基为基液添加L-丙氨酰-L谷氨酰胺、维生素C、HEPES、类胰岛素生长因子(IGF-1)、表皮生长因子(EGF)、脂质浓缩物、人血白蛋白、转铁蛋白、海藻糖、肝素钠、Pluronic F-68制成;其特征在于:所述培养液中的DMEM-F12培养基为不含L-谷氨酰胺的高糖DMEM-F12培养基,其中含有500~1500mg/L L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.1~1mg/L维生素C、2383~11915mg/L HEPES、5~200μg/L类胰岛素生长因子(IGF-1)、10~100μg/L表皮生长因子(EGF)、1~5ml/L脂质浓缩物、1~2g/L人血白蛋白、0.1~1mg/L转铁蛋白、1~4mg/L海藻糖、1250~12500U/L肝素钠和1~20ml/L Pluronic F-68。
2.根据权利要求1所述的用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液,其特征在于:所述培养液中含有700~1100mg/L L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.2~0.6mg/L维生素C、4000~6500mg/LHEPES、10~28μg/L类胰岛素生长因子(IGF-1)、40~60μg/L表皮生长因子(EGF)、2~3ml/L脂质浓缩物、1.5~2g/L人血白蛋白、0.3~0.7mg/L转铁蛋白、2~3mg/L海藻糖、10000~12500U/L肝素钠和5~15ml/L Pluronic F-68。
3.根据权利要求1所述的用于无血清悬浮培养293T细胞的培养液,其特征在于:所述培养液中含有862mg/L L-丙氨酰-L谷氨酰胺、0.4mg/L维生素C、5958mg/L HEPES、20μg/L类胰岛素生长因子(IGF-1)、50μg/L表皮生长因子(EGF)、2ml/L脂质浓缩物、2g/L人血白蛋白、0.5mg/L转铁蛋白、2mg/L海藻糖、12500U/L肝素钠和1~20ml/L Pluronic F-68。
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110438066A (zh) * 2019-08-19 2019-11-12 杭州百凌生物科技有限公司 一种可稳定传代的可悬浮培养的哺乳动物细胞系293 c18p及其制备方法和应用
CN110804579A (zh) * 2019-11-06 2020-02-18 无锡生基医药科技有限公司 慢病毒载体制备用293t细胞培养基及其制备方法
CN113215085A (zh) * 2021-05-07 2021-08-06 澳门大学 一种脂类物质添加剂及其应用
CN113981007A (zh) * 2021-10-27 2022-01-28 苏州博腾生物制药有限公司 基于hek293t克隆筛选的用于高滴度慢病毒生产的悬浮驯化方法
CN114409745A (zh) * 2021-06-04 2022-04-29 南方医科大学 一种高效分泌表达猪流行性腹泻病毒s1蛋白的生产方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1772884A (zh) * 2005-10-18 2006-05-17 中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所 一种支持hek293细胞贴附培养的无动物来源成分无血清培养基
CN103468638A (zh) * 2013-09-23 2013-12-25 天津瑞普生物技术股份有限公司 一种293细胞的大规模悬浮培养方法
EP2218775B1 (en) * 1996-08-30 2015-01-28 Life Technologies Corporation Method for producing a polypeptide in vitro in mammalian cells in a protein-free and serum-free culture medium

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2218775B1 (en) * 1996-08-30 2015-01-28 Life Technologies Corporation Method for producing a polypeptide in vitro in mammalian cells in a protein-free and serum-free culture medium
CN1772884A (zh) * 2005-10-18 2006-05-17 中国人民解放军军事医学科学院生物工程研究所 一种支持hek293细胞贴附培养的无动物来源成分无血清培养基
CN103468638A (zh) * 2013-09-23 2013-12-25 天津瑞普生物技术股份有限公司 一种293细胞的大规模悬浮培养方法

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JEAN-FRANÇOIS GÉLINAS等: "Assessment of selected media supplements to improve F/HN lentiviral vector production yields", 《SCIENTIFIC REPORTS》 *
吴燕峰: "《实用医学细胞培养技术》", 31 January 2010 *
孟其麟: "适应无血清培养的HEK293细胞系的培育", 《中国预防兽医学报》 *
王永芬: "《动物细胞培养技术》", 31 July 2012 *
赵亮: "293细胞无血清培养基及结团特性研究", 《道客巴巴》 *

Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110438066A (zh) * 2019-08-19 2019-11-12 杭州百凌生物科技有限公司 一种可稳定传代的可悬浮培养的哺乳动物细胞系293 c18p及其制备方法和应用
CN110804579A (zh) * 2019-11-06 2020-02-18 无锡生基医药科技有限公司 慢病毒载体制备用293t细胞培养基及其制备方法
CN113215085A (zh) * 2021-05-07 2021-08-06 澳门大学 一种脂类物质添加剂及其应用
CN113215085B (zh) * 2021-05-07 2024-05-10 澳门大学 一种脂类物质添加剂及其应用
CN114409745A (zh) * 2021-06-04 2022-04-29 南方医科大学 一种高效分泌表达猪流行性腹泻病毒s1蛋白的生产方法
CN114409745B (zh) * 2021-06-04 2022-07-01 南方医科大学 一种高效分泌表达猪流行性腹泻病毒s1蛋白的生产方法
CN113981007A (zh) * 2021-10-27 2022-01-28 苏州博腾生物制药有限公司 基于hek293t克隆筛选的用于高滴度慢病毒生产的悬浮驯化方法
CN113981007B (zh) * 2021-10-27 2024-04-09 苏州博腾生物制药有限公司 基于hek293t克隆筛选的用于高滴度慢病毒生产的悬浮驯化方法

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