SU1518367A1 - Способ получени биомассы бактерий PRoVIDeNcIa SтUаRтII, обогащенной рестриктазой Р Sт 1 - Google Patents

Способ получени биомассы бактерий PRoVIDeNcIa SтUаRтII, обогащенной рестриктазой Р Sт 1 Download PDF

Info

Publication number
SU1518367A1
SU1518367A1 SU874324974A SU4324974A SU1518367A1 SU 1518367 A1 SU1518367 A1 SU 1518367A1 SU 874324974 A SU874324974 A SU 874324974A SU 4324974 A SU4324974 A SU 4324974A SU 1518367 A1 SU1518367 A1 SU 1518367A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
biomass
units
opt
optical density
pst
Prior art date
Application number
SU874324974A
Other languages
English (en)
Inventor
Юрий Николаевич Бойков
Владимир Евгеньевич Репин
Original Assignee
Научно-производственное объединение "Биолар"
Научно-производственное объединение "Вектор"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-производственное объединение "Биолар", Научно-производственное объединение "Вектор" filed Critical Научно-производственное объединение "Биолар"
Priority to SU874324974A priority Critical patent/SU1518367A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1518367A1 publication Critical patent/SU1518367A1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к микробиологической и химической промышленности, а именно касаетс  способа получени  биомассы бактерий PROVIDENCIA STUARTII с высоким содержанием рестриктазы P ST 1. Целью изобретени   вл етс  повышение выхода биомассы и фермента. Дл  этого в качестве источника азота и витаминов используют рыбный гидролизат, в процессе выращивани  на стадии достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 1,25-1,75 опт.ед. в среду ввод т лактозу и свежую питательную среду, причем лактозу ввод т в количестве 0,6-1,6 г/л (в виде 40%-ного раствора), а свежую питательную среду - в концентрации 10-20% по отношению к объему ферментера и процесс ведут до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 2,5-3,5 опт.ед. В результате использовани  предложенного способа выход биомассы возрастает до 12,5-13,0 г/л культуральной жидкости, а выход рестриктазы повышаетс  с 400-600 ед/г биомассы до 61000-66000 ед/г биомассы или с 3000-4800 ед/л культуральной жидкости до 762500-858000 ед/л культуральной жидкости.

Description

Изобретение относитс  к микробио- логической и химической промышленности, а именно касаетс  способа получени  биомассы бактерий Providencia stuartii V, высоким содержанием рестриктазы
Pst 1 .
Цель изобретени  - повышение выхода биомассы и фермента.
Способ осуществл ют следующим образом .
В процессе культивировани  ввод т свежую питательную среду и лактозу, чго позвол ет культивировать клетки Providencia stuartii до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 2,5-3,5 опт.ед. (ФЭК, фипьтр № 6, кювета 0,5 см).
При введении лактозы в количествах менее 0,6 г/л (в виде 40%-ного раствора ), например 0,1 г/л, снижаетс  выход биомассы и фермента. Введение лактозы в количествах более 1,6 г/л (в виде 40%-ного раствора), например 2,1 г/л, приводит к снижению выхода биомассы и фермента. При зтом происходит сильное закисление среды, в ко- торой развитие бактерий Providencia scuartii происходит слабо.
При введении свежей питательной среды в концентрации менее 10% по отношению к объему ферментера (напри- мер, 5%) снижаетс  выход биомассы и фермента.
При культивировании бактерий Providencia sCuarcii до оптической плотности бактериальной суспензии менее 2,5 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см), например 2,0 опт. ед., происходит снижение выхода биомассы и фермента, так как незавершен процесс постепенной ассимил ции лактозы и рыбного гидролизата. При культивировании бактерий Providencia stuartii до оптической плотности бактериальной суспензии более 3,5 опт. ед. (например, 4,0 опт. ед.) происходит снижение вы- хода биомассы и фермента, так как происходит старение культуры и наступает фаза отмирани  клеток.
Пример 1. Оживление штамма Providencia stuartii 17 ВКПМ В-4076 осуществл ют на сухом питательном агаре , содержащем 35 г/л сухого питательного агара и 1,0л воды, в чашках Петри. Инкубируют в термокамере при 35-37 С в течение 16-18 ч.
С поверхности агара в чашках Петри культуру перенос т бактериологической петлей в качалочные колбы с питательной средой, содержащей 50 г/л рыб ного гидролизата и до 1,0 л воды. В каждой колбе находитс  200 мл среды. Культуру в колбах выращивают на качалке при 35-37 0 в течение 16-18 ч. Посевной материал готов т из расчета 8%
5 0
5
Q ..
з
0
5
по отношению к объему питательной среды, загруженной в ферменте.
Ферментацию культуры провод т в ферментере Electrolux рабочей емкостью 50 л на питательной среде, содержащей 50 г/л рыбного гидролизата и до 1,0 л воды, при:
РН72,-7,4;
подаче воздуха 100 л/мин;
перемешивании 300 об/минj
добавлении лактозы (в виде 40%-ного раствора) при достижении оптической плотности бактериальной суспензии 1,75 опт. ед. (ФЭК, фильтр К« 6, кювета 0,5 см) в количестве 1,6 г/л (75 г лактозы и 187,5 мл воды)
добавлении 20% свежей среды при достижении оптической плотности бактериальной суспензии 1,75 опт.ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см) в количестве 10 л.
Процесс выращивани  ведут до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 3,5 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см).
Выход биомассы 13,0 г/л культураль- ной жидкости.
Выход рестриктазы Pst 1: 66000 ед/г биомассы; 858000 ед/л культуральной жидкости.
Дл  определени  активности использован метод злектрофореза в геле. Активность определ ют в конце вьщеле- ни  (после хроматографии на колонке с фосфоцеллюлозой).
За единицу активности рестриктазы Pst 1 принимают количество фермента, которое требуетс  дл  полного расщеплени  1 мкг ДНК фага в течение 1 ч при .
Выделение фермента провод т следующим образом.
50 г биомассы бактерий суспендируют в 100 МП 10 мМ трис-НС1 буфера (рН 7,2), содержащего 10 i 2-меркап- тоэтанола, 1 i азида натри , 1 кд1 трилона Б (буфер А), и довод т этим же буфером до объема 150 мл. К суспензии добавл ют 1,5 мл 10%-ного тритона Х-100 и 150 мг лиэоцима. Лизис провод т 1 ч при посто нном перемешивании . Дальнейшее фракционирование ли- зата провод т в системе двухфазного разделени .
Полученный лизат добавл ют к смеси, состо щей из 37,0 мл 15%-ного водного раствора декстрана Т-500, 56 мл 30%- ного водного раствора полизгиленглико5 15
л  (ПЭГ) и 35 МП 4,0 М хлористого натри  (рН смеси 6,5). Тщательно перемешивают в течение 15 мин и центрифугируют на центрифуге High speed (20000 X g, 20 мин). Верхнюю ПЭГ-фазу объемом 120 мл, содержащую фермент, отбирают, разбавл ют двухкратным объёмом буфера А, добавл ют тритон X- 100 (0,1%) и нанос т на колонку с
фосфоцеллюпозой, уравновешенную буфером А, содержащим 0,1% тритона Х-100 (буфер Б). Фермент элюируют 0-1,0 М линейным градиентом концентрации натри  хлористого в буфере Б. Фракции, содержащие рертриктазу Psc 1 концентрируют диализом против буфера Б, содержащего 55% глицерина.
Получают очищенный фермент Pst 1 в виде прозрачной бесцветной жидкое- ти.
Рестриктаза Pst 1 расщепл ет ДНК фага Л на 18 сайгов.
Содержание нуклеаз - после выделени  отсутствую .
Хран т рестриктазу Pst 1 при -10 С в т,ечение 1г.
Пример 2. Оживление культуры и выраЕцивание посевного материала
провод т подобно примеру 1.
Ферментацию культуры провод т в ферментере Electrolux рабочей емкостью 50 л на питательной среде, содержащей 50 г/л рыбного гидролизата и до 1,0 л воды, при:
рН7,2-7,4,
подаче воздуха 100 л/мин;
перемешивании 300 об/мин}
добавлении лактозы (в виде 40%-но- го раствора) при достижении оптическо плотности бактериальной суспензии 1,5 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см) в количестве 1,1 г/л (50 г лактозы и 125 мл воды)
добавлении 15% свежей среды при достижении оптической плотности бактериальной суспензии 1,5 опт.ед. (ФЭК Фильтр № 6, кювета 0,5 см) 7,5 л.
Процесс выращивани  ведут до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 3,0 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см).
Выход биомассы 12,75 г/л ку; ьту- ральной лсидкости.
Выход рестриктазы Pst 1: 63500 ед/г биомассы; 809625 ед/л культуральной жидкости.
о
5
0
5
Определение активности, вь1деление фермента Pst i н хранение провод т подобно примеру 1.
Пример 3. Оживление культуры и выращивание посевного материала провод ч подобно примеру 1 .
Ферментацию культуры провод т в ферменте Electrolux с рабочей ем- кос1 ью 50 л на питательной среде, содержащей 50 г/л рыбного гидролизата и до 1,0 л воды, при:
рН
7,2-7,4; 100 л/мин; 300 об/мин
5
0
0
5
0
5
подаче воздуха
перемешивании
I добавлении лактозы (в виде 40%- иого раствора) при достижении опти- ческой плотности бактериальной сус- ;пензии 1,25 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см) в количестве 0,6 г/л (25 г лактозы и 62,5 мл воды)
добавлении 10% свежей среды при достижении оптической плотности бактериальной суспензии 1,25 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см) в количестве 5,0 л.
Процесс выращивани  ведут до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 2,5 опт. ед. (ФЭК, фильтр М 6, кювета 0,5 см).
Выход биомассы 12,5 г/л культуральной жидкости.
Выход рестрикгазы Pst 1: 61000 ед/г биомассы, 762500 ед/л культуральной жидкости.
Определение активности, вьщеление фермента Pst 1 и хранение провод т подобно примеру 1.
Пример 4. Оживление культуры и вьц ащивание посевного материала провод т подобно примеру 1.
Ферментацию культуры провод т в ферментере Electrolux рабочей емкостью 50 л на питательной среде, содержащей 50 г/л рыбного гидролизата и до 1,0 л воды, при:
рН7,2-7,4,
подаче воздуха100 л/мин|
перемешивании300 об/мин{
добавлении лактозы (в виде 40%-но- го раствора) при достижении оптической плотности бактериальной суспензии клеток 0,75 опт.ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см) в количестве 1,6 г/л (75 г лактозы и 187,5 мл вод;- .
добавлении 20% свежей среды при достижении оптической плотности бактериальной суспензии 1,75 опт. ед.
(ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см) в количестве 10 л.
Процесс выращивани  ведут до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 3,5 опт. ед. (ФЭК, фш1ьтр К 6, кювета 0,5 см).
Выход биомассы 5,6 г/л культураль- ной жидкости.
Выход рестриктазы Pst 1: 31250 ед/ биомассы; 175000 ед/л культуральной жидкости.
Пример 5. Оживление культуры и выращивание посевного материала провод т подобно примеру 1.
Ферментацию культуры провод т в ферментере Electrolux рабочей емкостью 50 л на питательной среде, содержащей 50 г/л рыбного гидролизата и до 10 л воды, при:
РН7,2-7,4;
подаче воздуха 100 л/минt
перемешивании 300 об/мин
добавлении 20% свежей среды при достижении оптической плотности бакте риальной суспензии 1,75 опт. ед. (ФЭК, фильтр К 6, кювета 0,5 см) в количестве 10 л
добавлении лактозы (в виде 40%-но- го раствора) при достижении оптичес- кой плотности бактериальной суспензии 2,25 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см) в количестве 1,6 г/л (75 г лактозы и 187,5 мл воды).
Процесс выращивани  ведут до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 3,5 опт. ед. (ФЭК, филы р № 6, кювета 0,5 см).
Выход биомассы 6,6 г/л культуральной жидкости.
Выход рестриктазы Pst 1: 34200 ед/ биомассы; 225720 ед/л культуральной жидкости.
5
0
0
5
та 0,5 см) в количестве 1,6 г/л (75 г лактозы и 187,5 мл воды).
Процесс вьфащивани  ведут до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 3,5 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кювета 0,5 см).
Выход биомассы 7,6 ед/л культуральной жидкости.
Выход рестриктазы Pst 1: 40500 ед/г биомассы, 307800 ед/л культуральной жидкости.
Пример 7. Оживление культуры и выращивание посевного материала провод т подобно примеру 1.
Ферментацию культуры провод т в ферментаторе Electrolux рабочей емкостью 50 л на питательной среде, содержащей 50 г/л рыбного гидролиёа- та и до 1 л воды, при:
,2-7,4;
подаче воздуха100 л/мин;
перемепмвании300 об/мин;
добавлении 20% свежей среды при достижении оптической плотности бактериальной суспензии 1,75 опт. ед. (ФЭК, фильтр К 6, кювета 0,5 см) в количестве 10 л.
Процесс выращивани  ведут до достижени  оптической плотности бактериальной суспензии 3,5 опт. ед. (ФЭК, фильтр К 6, кювета 0,5 см).
Выход биомассы 8,2 ед/л культуральной жидкости.
Выход рестриктазы Pst 1: 37000 ед/г биомассы; 303400 ед/л культуральной жидкости.
Таким образом в результате использовани  предлагаемого способа выход биомассы возрастает с 7,5-8,0 до 12,5-13,0 г/л культуральной жидкости, а выход рестриктазы Pst 1 повьшаетс  с 400-600 до 61000-66000 ед/г био
6. Оживление культуры . массы или с 3000-4800 До 762500858000 ед/л культуральной жидкости.
Пример
и выращивание посевного материала провод т подобно примеру 1.
Ферментацию культуры провод т в ферментере Electrolux рабочей емкостью 50 л на питательной среде, содержащей 50 г/л рыбного гидролизата и до 1 л воды, при:
рН7,2-7,4)
подаче воздуха 100 л/мин;
50

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Способ получени  биомассы бактери Providencia stuartii, обогащенной рестриктазой Pst 1, включающий культ вирование продуцента на питательной среде, содержащей источники аминного
    перемешивании
    300 об/мин; азота и витаминов при аэрации и пеЬЗ
    ) ремешивании, отличающийс 
    добавлении лактозы (в виде 40%-но- го раствора) при достижении оптической плотности бактериальной суспензии 1,75 опт. ед. (ФЭК, фильтр № 6, кюве
    Формула изобретени 
    Способ получени  биомассы бактерий Providencia stuartii, обогащенной рестриктазой Pst 1, включающий культивирование продуцента на питательной среде, содержащей источники аминного
    азота и витаминов при аэрации и пе
    ) ремешивании, отличающийс 
    тем, что, с целью повышени  выхода биомассы и фермента, в качестве источника аминного азота и витаминов ис9151836710
    пользуют рыбный гидролизаг, в процес-чесгве 0,6-1,5-г/л, а свежую пигагельсё вьфащива(ш  на стадии достижени ную среду - в концентрации 10-20% по
    оптической плотности бактериальнойотношению к объему ферментера и просуспензии 1,25-1,75 опт. ед. в средуцесс ведут до достижени  оптической
    ввод т лактозу и свежую питательнуюплотное;и бактериальной суспензии 2,5среду , причем лактозу ввод т в коли-3,5 oirr. ед.
SU874324974A 1987-11-04 1987-11-04 Способ получени биомассы бактерий PRoVIDeNcIa SтUаRтII, обогащенной рестриктазой Р Sт 1 SU1518367A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU874324974A SU1518367A1 (ru) 1987-11-04 1987-11-04 Способ получени биомассы бактерий PRoVIDeNcIa SтUаRтII, обогащенной рестриктазой Р Sт 1

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU874324974A SU1518367A1 (ru) 1987-11-04 1987-11-04 Способ получени биомассы бактерий PRoVIDeNcIa SтUаRтII, обогащенной рестриктазой Р Sт 1

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1518367A1 true SU1518367A1 (ru) 1989-10-30

Family

ID=21334994

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU874324974A SU1518367A1 (ru) 1987-11-04 1987-11-04 Способ получени биомассы бактерий PRoVIDeNcIa SтUаRтII, обогащенной рестриктазой Р Sт 1

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1518367A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Smith D.I., Blattner F.R., Davies J. The isolation and partial characterization of a new restriction endonuclease from Providencia stuartii. - J. Nuc leic Ac. Res., 1976, V. 3, N 2 p. 343-353. Sreen P.J., Heyneker H.L., Bolivar F., Rodriguez R.L., Betlach M.C., Covarrubias A.A., Backman K., Rus- sel D.J., Tait R., Boyer H.W. A general method vor the purification of restriction enzymes. - Nucleic Acids Res., 1978, v. 5, fr 7, p.2373-2380. Лабораторна методика производства биомассы Providencia stuartii, утв. 03.10.81. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU615304B2 (en) A new transaminase, the preparation thereof and the use thereof
US5468625A (en) α-L-Rhamnosidase for obtaining rhamnose, a process for its preparation and its use
SU1518367A1 (ru) Способ получени биомассы бактерий PRoVIDeNcIa SтUаRтII, обогащенной рестриктазой Р Sт 1
SU676177A3 (ru) Способ получени биомассы микроорганизмов
SU1502616A1 (ru) Питательна среда дл культивировани бактерий PRoVIDeNcIa SтUаRтII - продуцента рестриктазы РSт 1
SU1698286A1 (ru) Питательна среда дл культивировани штамма РSеUDомоNаS SтUтZеRI ВКПМ В-4724 - продуцента рестриктазы PS и 1
RU2085212C1 (ru) Способ изготовления единого бруцеллезного антигена для ра, рск и рдск
Tzeng et al. High productivity tank fermentation for gramicidin S synthetases
Rasheva et al. Taxonomic investigation of Monascus purpureus 94-25 strain
Schuster et al. A synthetic medium for continuous culture of the S‐layer carrying Bacillus stearothermophilus PV 72 and studies on the influence of growth conditions on cell wall properties
Fossati et al. Large scale preparation of purified exocellular dd‐carboxypeptidase–transpeptidase of Streptomyces strain R61
RU2115728C1 (ru) Штамм бактерии bacillus stearothermophilus - продуцент эндонуклеазы рестрикции, узнающей и расщепляющей последовательность нуклеотидов 5'-ggtnacc-3'
SU904325A1 (ru) Способ получени L-треонина
JP2001517429A (ja) 繊毛虫(原生動物)の連続大量培養を用いた生物由来の貴重物質を生産する発酵法
SU1576565A1 (ru) Способ получени эндонуклеазы-рестриктазы, расщепл ющей последовательность нуклеотидов 5 @ =G @ CGC=3 @
RU2158302C2 (ru) Питательная среда для роста бифидо- и лактобактерий
JPS6243671B2 (ru)
SU1449579A1 (ru) Питательна среда дл выращивани АRтнRовастеR LUтеUS - продуцента рестриктазы AI и I
RU2083481C1 (ru) Способ получения молекулярного водорода из сине-зеленых водорослей
SU1659480A1 (ru) Штамм бактерий КLевSIеLLа рNеUмоNIае-продуцент рестриктазы Кр @ 378 1
RU1549227C (ru) Способ получения комплекса литических ферментов
RU2021373C1 (ru) Штамм бактерий bacillus pumilus, продуцирующий эндонуклеазу рестрикции, узнающую и расщепляющую последовательность нуклеотидов 5` = cctnagc-3`
SU1832129A1 (ru) Шtamm бaktepий bacillus brevis-пpoдуцeht pectpиktaзы b b i
RU2103356C1 (ru) Консорциум бактерий pseudomonas sp., pseudomonas fluorescens, pseudomonas putida, thiobacillus sp., используемый для очистки сточных вод от алкилсульфонатов
SU621724A1 (ru) Способ получени липазы