SU1124033A1 - Способ получени плазмидной ДНК - Google Patents

Способ получени плазмидной ДНК Download PDF

Info

Publication number
SU1124033A1
SU1124033A1 SU833555304A SU3555304A SU1124033A1 SU 1124033 A1 SU1124033 A1 SU 1124033A1 SU 833555304 A SU833555304 A SU 833555304A SU 3555304 A SU3555304 A SU 3555304A SU 1124033 A1 SU1124033 A1 SU 1124033A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
dna
rnase
dodecyl sulfate
alkaline
biomass
Prior art date
Application number
SU833555304A
Other languages
English (en)
Inventor
Айна Мартыновна Зилбере
Александр Борисович Шафранский
Янина Яновна Хартмане
Скайдрите Эрнестовна Ансберга
Индрикис Оскарович Муйжниекс
Антра Альбертовна Камрадзе
Original Assignee
Предприятие П/Я Г-4740
Латвийский Государственный Университет Им.П.Стучки
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Предприятие П/Я Г-4740, Латвийский Государственный Университет Им.П.Стучки filed Critical Предприятие П/Я Г-4740
Priority to SU833555304A priority Critical patent/SU1124033A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1124033A1 publication Critical patent/SU1124033A1/ru

Links

Abstract

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ Ш1АЗМВДНОЙ ДНК из микробной биомассы, включающий лизис клеток, центрифугирование, осаждение целевого продукта из надосадочной жидкрсти спиртом, очистку от примесей РНК с помощью РНКазы, о тличающийс  тем, что, с целью увеличени  выхода целевого продукта , лизис клеток провод т щелочным раствором додецилсульфата натри  при соотношении биомасса : буферный раствор : щелочной; раствор додецилсульфата натри  1 : 19 :

Description

to
со
00 Изобретение относитс  к биохимии и может быть использовано дл  решени научно-исследовательских и прикладны задач при выделении и очистке плазми ной ДНК в упом нутой области, а такж в микробиологии, медицине, генной инженерии. Плазмидна  ДНК  вл етс  объектом., используемым в генной инженерии в качестве векторных молекул, а также как субстрат дл  многих ферментов, в том числе эндонуклеаз рестрикции, как тест-ДНК. Известен способ получени  плазмид ной ДНК из бактериальных клеток., Кле ки суспендировали в буфере, разрушал лизоцимом, балластные белки отдел ли с помощью додецилсульфата натри . Дл очистки препарата использовали хлоро форм, изоамиловый спирт и фенол. Пополучаемый препарат ДНК содержит много примесей хромосомальной ДНК и РНК D Наиболее близким к изобретению по технической сущности и достигаемому результату  вл етс  способ получени  ковалентно-замкнутой кольцевой плазмидной ДНК, включающий еледущие стадии; суспендирование бактериальных клеток в трис-буфере содержащем глюкозу, лизоцим, инкубирова ние при О, лизис щелочным раствором додецилсульфата натри , нейтрализад ш ймеси ацетатом натри  и центрифугиррвание . Плазмидную ДНК дважды переосаждают спиртом и гшкубируют с .РНКазой 2. Однако дл  известного способа характерен недостаточно высокий выход целевого продукта. Целью изобретени   вл етс  увеличение выхода плазмидной ДНК. Постайленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу получени  плазмидной ДНК из микробной биомассы включающему лизис клеток, центрифу гирование, осаждение целевого про;дукта из надосадочной жидкости спиртом очистку от примесей РНК с помощью РНКазы, лизис клеток провод т щелочным раствором додецилсульфата натри  при соотношении биомасса : буферньй раствор : щелочной раствор додецилсульфата натри  1:19(37-45), а очист ку от РНК осуществл ют РНКазой в присутствии 1,0-2,0 мМ ЭДТА. Способ осуществл ют следующш образом. Повышение выхода обеспечиваетс  за счет сохранени  суперспирапьной структуры ДНК в процессе лизиса. Понижение количества додецилсульфата натри  и натра едкого, которые в среду ввод тс  в определенных соотношени х , т.е. в количествах, определ ющих возможность регулировани  лизиса с целью сохранени  ковалентно св занной кольцевой плазмидной ДНК, а услови  инкубации обеспечивают разделение ковалептно-замкнутой кольцевой . плазмидной ДНК от балластных веществ. Услови  лизиса и инкубации предотвращают релаксацию ковалентно-замкнутой кольцевой плазмидной ДНК в линейную и открытую кольцевую ДНК. Предлагаемый способ обеспечивает накопление ковалентно-замкнутой кольцевой плазмидной ДНК 95-96%. Процесс очистки от РНК провод т ферментом РНКазой (0,8-0,81 мкг на 1 мг суммаррых рибонуклеиновых кислот) в присутствии 1,0-3,0 мМ ЭДТА (динатриева  соль этилендиамин N - N - N - N -тётрауксусной кислоты). Введение ЭДТА подавл ет активность нуклеаз, так как нуклеазы  вл ютс  металлозависимыми ферментами , Э/ГГА св зывает ионы металла и ферментный центр инактивируетс . В предлагаемых услови х присутствие ЭДТА активирует каталитическую способность РНКазы, так как РНКаза не  вл етс  металлозависимым ферментом- Присутствие ЭДТА напротив повышает ее активность. Предлагаемый способ направлен на сохранение структ;уры плазмидной ДНК, конфигурации ее цепи, на предотвращение раскручивани  цепи. Цепи удерживаютс  вместе благодар  образованию трех водородных св зей 1ежду гуанином (G) и цитозином (Ц) и двух водородных св зей между аденином (А) и тимином (т). Однако стабильность двойной спирали в основном определ етс  взаимодействием параллельно-J(-злектронных систем оснований. Пример 1.40г биомассы Eicherichia coli НВ 101 ресуспендируют в 750 г буфера, состо щего из мМ:ЭДТА 10, глюкоза 50, трис-HCf 25, рН 8,0. Добавл ют 1,5 кг 0,8%-ного додецилсульфата натри  в 0,1 н МаОН и перемешивают в течение 5 мин при комнатной температуре. Смесь нейтрализуют добавлением 1,075 кг ЗМ ацетата натри , рН 4,8. Оставл ют при О - -4С в течение 1 ч.рсадок отдел ют центрифуги311 рованием. Супернатант, содержащий плазмидную ДНК, дважды переосаждают охлажденньп этанолом (6,65 кг). Полу ченньй осадок после центрифугировани ресуспендируют в 50 мл буфера, состо  щего из мМ: трис-НС 10, рН 7,6, МаСв 10, ЭДТА 10, добавл ют активированную РНКазу из расчета 50 мкг на 700 млсумма-таых рибонуклеиновых кислот и инкубируют 30 мин при . Инкубат дваждь перёосаждают охлажден ным эталоном.Осадок ресуспендируют, в 20 мл буфера, состо щего из, мМ: трис--нсе 10, рН 7,6, NaCC 10, 10. Концентрацию ДНК плазмиды определ ют по формуле С А 260 -а 50, где С - концентраци  плазмидной ДНК, мкг/мл;. А-.,..- оптическа . плотность при длине волны 260 нм; а - кратность разбавлени ; 50 - коэффициент, соответствующий 1 оптической единице йри .цлине волны 260 нм, мкг/мл; 1520 мкг/мл С 0,76-40:50 1,52 мг/мл. Общий выход ДНК плазмиды 30,4 мг при объеме 20 мл 0,076%. Содержание ковалентно-замкнутой кольцевой ДНК 95%. Пример 2. 40 г биомас.сы Eicherichia coli НВ 101 ресуспендиРЗЖ )Т в 750 г буфера, состо щего из, мМ: ЭДТА 10, глюкоза 50,трис-НС 25, рН 8,0. Добавл ют 1,7 кг 0,8%-ного 3 .4 додецилсульфата натри  в 0,1 н. NaOH и перемешивают, в течение 5 мин при комнатной температуре. Смесь нейтрализуют добавлением 1,2 кг ЗМ ацетата, натри ,.рН 4,8. Далее процесс провод т по примеру 1 , но в буфере дл  инкубации с РНКазой концентрацию ЭДТА довод тдо 2,0 мМ. Концентрацию ДНК определ ют по Формуле С з 50 0,68-4050 1360 мкг/мл 1,36 мг/мл. Общий выход ДНК плазмиды 28 мг при объеме 20,6 мл 0,07 %. Содержание кoвaлeнтнo-зa кнyтoй кольцевой ДНК 95,5%. Приме р 3. 40 г биомассы Eicherichia coli НВ 101 ресуспендируют в 750 г буфера, состо щего из, мМ: ЭДТА 10, глюкоза 5П, трис-НСе 25, рН 8,0. Добавл ют 1,82 кг 0,8%-ного додецилсульфата натри  в 0,1 н. NaOH и перемешивают в течение 5 мин при комнатной температуре . Смесь нейтрализуют добавлением 1,3 кг ЗМ ацетата натри , рН 4,8. . Далее процесс провод т по примеру 1, но R буфере дл  инкубации с РНКазой концентрацию ЭДТА довод т до 3,0 мМ. Концентрацию ДНК плазмиды s мкг/мл определ ют по формуле С Az60-a-50 0,05-40-50 1300 мкг/мл 1,3 мг/мл. Общий выход ДНК плазмиды 27,3 мг при объеме 21,0 мл 0,068%. Содержание ковалентно-замкнутой кольцевой ДНК 96%.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК из микробной биомассы, включающий лизис клеток, центрифугирование, осаждение целевого продукта из надосадочной жидкости спиртом, очистку от примесей РНК с помощью РНКазы, о тличающийся тем, что, с целью увеличения выхода целевого про дукта, лизис клеток проводят щелочным раствором додецилсульфата натрия при соотношении биомасса : буферный раствор : щелочной; раствор додецилсульфата натрия 1 ; 19 : (37-45). а очистку от РНК осуществляют РНКазой в присутствии 1,0-3,0 мМ ЭДТА.
    1 1124033
SU833555304A 1983-02-16 1983-02-16 Способ получени плазмидной ДНК SU1124033A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833555304A SU1124033A1 (ru) 1983-02-16 1983-02-16 Способ получени плазмидной ДНК

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833555304A SU1124033A1 (ru) 1983-02-16 1983-02-16 Способ получени плазмидной ДНК

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1124033A1 true SU1124033A1 (ru) 1984-11-15

Family

ID=21050642

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU833555304A SU1124033A1 (ru) 1983-02-16 1983-02-16 Способ получени плазмидной ДНК

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1124033A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2553513C2 (ru) * 2013-05-20 2015-06-20 Андрей Сергеевич Сухих Способ получения бифидогенного фактора

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Clevell D.B. and Helinski D.R. Proc. Nath. Acad. Sci. USA, 1969, 62, 1159-1166. 2. Birnboim H.C. and Doly J. Nucleic Acids Res., 1979, 7, 6, p. 1513-1523. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2553513C2 (ru) * 2013-05-20 2015-06-20 Андрей Сергеевич Сухих Способ получения бифидогенного фактора

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4468464A (en) Biologically functional molecular chimeras
Mathis et al. Effect of histone acetylation on structure and in vitro transcription of chromatin
Date Demonstration by a novel genetic technique that leader peptidase is an essential enzyme of Escherichia coli
Perret et al. Relaxation of a transfer RNA specificity by removal of modified nucleotides
JPS63233798A (ja) 5′−グアニル酸の製造法
FI79139B (fi) Foerfarande foer klonande av en gen, som kodar foer ett vaermebestaendigt -amylas, in i escherichia coli och bacillus subtilis.
EP0063764A1 (en) Transformation method of a microorganism
Rogers et al. Formation of ornithine transcarbamylase in cells and protoplasts of Escherichia coli
SU1124033A1 (ru) Способ получени плазмидной ДНК
Dover et al. Genetic analysis of the γ-aminobutyrate utilization pathway in Escherichia coli K-12
JPS6185191A (ja) 組換えdnaコスミツドシヤトルベクター
JPS5931691A (ja) 発酵法によるl−スレオニンの製造法
JPS62155081A (ja) 新規微生物およびそれを用いる醗酵法によるビオチンの製造法
EP0107400A1 (en) Hybrid plasmid and process for producing glutathione using said plasmid
JPH062061B2 (ja) N−アセチルノイラミン酸リア−ゼの製法
JP2587764B2 (ja) N−アシルノイラミン酸アルドラーゼの製造法
JPS5820188A (ja) 新規微生物及びそれを用いるグルタチオンの製造法
JPH01320995A (ja) ヌクレオシド化合物の製造方法
US4988622A (en) Recombinant plasmid DNA pVN 22 coding biosynthesis of human leukocyte interferon alpha-I1 and strain Pseudomonas sp. 31 (pVN 22) - producer of human leukocyte interferon alpha-I1 containing same
JPS61502799A (ja) 組換えdna分子、形質転換された微生物、並びにペニシリンvアミダ−ゼの製造方法
JPS60188069A (ja) 酢酸菌の環状dνa導入法
JPS60180590A (ja) プラスミド
JPS59159778A (ja) 耐熱性のロイシン脱水素酵素の製造法
JPS5955187A (ja) 制限エンドヌクレア−ゼおよびその調製法
JPH0231690A (ja) 遺伝子組換えで造成されるプラスミドによるグルタチオンの製造法