JPH01320995A - ヌクレオシド化合物の製造方法 - Google Patents
ヌクレオシド化合物の製造方法Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
この発明は、微生物またはその処理物による塩基交換反
応を利用したヌクレオシド化合物の製造方法に関する。
応を利用したヌクレオシド化合物の製造方法に関する。
[従来の技術]
酵素を用いてヌクレオシドの塩基部分を他の塩基と交換
して新たなヌクレオシドを製造する方法は1例えば特開
昭56−102794号公報に記載されている。この公
開公報には、セラチア属の常温菌セラチア会マルセッセ
ンス(5erratiatsarcescens) I
F O3052の菌体から調製した粗酵素液を用いて
チミジンとウリジンまたは2°−デオキシウリジンとを
リン酸カリウムの存在下に塩基交換させて5−メチルウ
リジンまたはチミジンを生成させる方法が開示されてい
る。
して新たなヌクレオシドを製造する方法は1例えば特開
昭56−102794号公報に記載されている。この公
開公報には、セラチア属の常温菌セラチア会マルセッセ
ンス(5erratiatsarcescens) I
F O3052の菌体から調製した粗酵素液を用いて
チミジンとウリジンまたは2°−デオキシウリジンとを
リン酸カリウムの存在下に塩基交換させて5−メチルウ
リジンまたはチミジンを生成させる方法が開示されてい
る。
[発明が解決しようとする課題]
上記従来の方法に用いられている菌は、常温菌であるた
め、高温下では短時間で失活しやすく、再利用すること
ができない。
め、高温下では短時間で失活しやすく、再利用すること
ができない。
一般に、上記塩基交換反応等化学反応は、温度が高い方
が反応速度が速い、また、一般に反応物質の溶解度も温
度が高い方が高い。
が反応速度が速い、また、一般に反応物質の溶解度も温
度が高い方が高い。
したがって、高温下においても長時間にわたり安定に塩
基交換反応をおこなうことができる微生物ないし酵素を
利用できれば、塩基交換反応を高い基質濃度でおこなえ
るので高い濃度で生成物を得ることができるとともに、
反応時間も短縮されることとなる。しかしながら、従来
、そのような微生物ないし酵素を用いた塩基交換反応に
よるヌクレオシド化合物を製造する方法は知られていな
い。
基交換反応をおこなうことができる微生物ないし酵素を
利用できれば、塩基交換反応を高い基質濃度でおこなえ
るので高い濃度で生成物を得ることができるとともに、
反応時間も短縮されることとなる。しかしながら、従来
、そのような微生物ないし酵素を用いた塩基交換反応に
よるヌクレオシド化合物を製造する方法は知られていな
い。
[課題を解決するための手段]
本発明者らは、上記課題を解決するために65℃で生育
する好熱性菌的tooo株を検索した。
する好熱性菌的tooo株を検索した。
その結果、バチルス属好熱性菌が耐熱性に優れ、塩基交
換反応を高い反応速度でおこなうことを見出し、本発明
を完成するにいたった。
換反応を高い反応速度でおこなうことを見出し、本発明
を完成するにいたった。
すなわち、この発明は、チミンと、イノシン、アデノシ
ン、グアノシンおよびウリジンからなる群の中から選ば
れたリボヌクレオシド、または2°−デオキシイノシン
、2′−デオキシアデノシン、2′−デオキシグアノシ
ンおよび2゛−デオキシウリジンからなる群の中から選
ばれたデオキシリボヌクレオシドとを、水溶液中、リン
酸またはリン酸塩の存在下に、バチルス属好熱性菌生菌
体もしくはその菌体処理物により塩基交換反応させて5
−メチルウリジンまたはチミジンであるヌクレオシド化
合物を生成させることを特徴とするヌクレオシド化合物
の製造方法である。
ン、グアノシンおよびウリジンからなる群の中から選ば
れたリボヌクレオシド、または2°−デオキシイノシン
、2′−デオキシアデノシン、2′−デオキシグアノシ
ンおよび2゛−デオキシウリジンからなる群の中から選
ばれたデオキシリボヌクレオシドとを、水溶液中、リン
酸またはリン酸塩の存在下に、バチルス属好熱性菌生菌
体もしくはその菌体処理物により塩基交換反応させて5
−メチルウリジンまたはチミジンであるヌクレオシド化
合物を生成させることを特徴とするヌクレオシド化合物
の製造方法である。
バチルス属好熱性菌は、好ましくは、バシルスやステア
ロサーモフィルス(Bacillus stearot
hermophilus)J T S 859 テあ
り、上記塩基交換反応は通常40℃ないし70℃の温度
でおこなわれる。
ロサーモフィルス(Bacillus stearot
hermophilus)J T S 859 テあ
り、上記塩基交換反応は通常40℃ないし70℃の温度
でおこなわれる。
以下、この発明をさらに詳しく説明する。
この発明は、チミンと特定のリボヌクレオシドまたはデ
オキシリボヌクレオシドとをバチルス属好熱性菌の生菌
体もしくはその処理物を用いて塩基交換させ、対応する
ヌクレオシド化合物すなわち5−メチルウリジンまたは
チミジンを製造する方法である。
オキシリボヌクレオシドとをバチルス属好熱性菌の生菌
体もしくはその処理物を用いて塩基交換させ、対応する
ヌクレオシド化合物すなわち5−メチルウリジンまたは
チミジンを製造する方法である。
バシルス・ −
このlJfの方法に用られるバシルスOステアロサーモ
フィルスに属する菌株としては、既に保存されている種
々の既知の菌株を用いることができる。しかしながら、
使用する菌株としては、酵素生産lの高いバシルス・ス
テアロサーモフィルスJTS859が最も好ましいもの
である。この菌株は1通商産業省工業技術院微生物工業
技術研究所において寄託されており、その寄託番号は、
微工研菌寄第9666号(FEPN P−91388)
である。
フィルスに属する菌株としては、既に保存されている種
々の既知の菌株を用いることができる。しかしながら、
使用する菌株としては、酵素生産lの高いバシルス・ス
テアロサーモフィルスJTS859が最も好ましいもの
である。この菌株は1通商産業省工業技術院微生物工業
技術研究所において寄託されており、その寄託番号は、
微工研菌寄第9666号(FEPN P−91388)
である。
この菌株の菌学的性質をバージェイス・マニュアルOオ
ブ・システマティックーアナリシス、第2巻に準じて検
討した結果を以下に示す。
ブ・システマティックーアナリシス、第2巻に準じて検
討した結果を以下に示す。
1、形態
桿菌: 5.4〜8.5 gmxO−7〜0.9 gm
m同円形胞子形成: 2.0〜2.3 g m x 1
.1〜1.21Lm 、1細胞に1個、位置は末端2
、培養的性質 NB培J1!4: 62℃2日間培養。
m同円形胞子形成: 2.0〜2.3 g m x 1
.1〜1.21Lm 、1細胞に1個、位置は末端2
、培養的性質 NB培J1!4: 62℃2日間培養。
平板上:白色僅かに黄色を含む、光沢あり、不透明、盛
り上らない、コロ ニーの形は円形波状。
り上らない、コロ ニーの形は円形波状。
スラント上:白色僅かに黄色を含む、光沢あり、不透明
、盛り上らない、生 育は中程度。
、盛り上らない、生 育は中程度。
3、生化学的性質
1 グラム染色 陽性
2 産気的培養 生育せず
3 運動性 あり 周毛4 オキシダー
ゼ 陽性 5 カタラーゼ 陽性 6 ゼラチンの液化 液化能あり7 リドマスミ
ルク 凝固させる8 0Fテスト
発酵タイプ9 V−P、MRテスト 瞼性 10 グルコースからの ガスの発生 発生せず 11 グルコースからの 酸の産生 産生した 12 アラビノースからの 酸の産生 産生ぜず 13 マニトールからの 酸の産生 産生した 14 キシロースからの 酸の産生 産生せず 15 サブロー培地での生育 スラント 生育した 液体 生育した 1 6 0.001%リゾチーム 下での生育 生育せず 17 0.02%アザイド 下での生育 生育せず 18 7%NaC1 下での生育 生育せず (2%まで生育した) 19 カゼインの加水分解 分解能あり20 デンプ
ンの加水分解 分解能あり21 ジヒドロキシアセ トンの生成 生成せず 22 エラグヨーク試験 生育せず23 クエン酸
の利用 陰性 24 インドールの産生 陰性 25 ウレアーゼ活性 陽性 26 フェニルアラニンの 脱アミノ化 陰性 27 アルギニンデヒドロ ラーゼ活性 陽性 28 チロシンの分解 陰性 29 レバン産生 陰性 30 硝酸塩の還元 陽性 31 硝酸ナトリウムの 脱窒1@ 陰性 32 硫化水素の生成 陽性 33 無機窒素源の利用 No3を唯一の窒 素源として 生育した NH4を唯一の窒 素源として 生育した 34 GC含量 47.3%35 生育
温度 40〜71℃で生育最適 60〜68℃ 36 PH範囲 pH5,7〜8.5で生育最適
pH6,0〜7.0 以上の性質に基づき、本菌株は、バシルスΦステアロサ
ーモフィルスと同定される。
ゼ 陽性 5 カタラーゼ 陽性 6 ゼラチンの液化 液化能あり7 リドマスミ
ルク 凝固させる8 0Fテスト
発酵タイプ9 V−P、MRテスト 瞼性 10 グルコースからの ガスの発生 発生せず 11 グルコースからの 酸の産生 産生した 12 アラビノースからの 酸の産生 産生ぜず 13 マニトールからの 酸の産生 産生した 14 キシロースからの 酸の産生 産生せず 15 サブロー培地での生育 スラント 生育した 液体 生育した 1 6 0.001%リゾチーム 下での生育 生育せず 17 0.02%アザイド 下での生育 生育せず 18 7%NaC1 下での生育 生育せず (2%まで生育した) 19 カゼインの加水分解 分解能あり20 デンプ
ンの加水分解 分解能あり21 ジヒドロキシアセ トンの生成 生成せず 22 エラグヨーク試験 生育せず23 クエン酸
の利用 陰性 24 インドールの産生 陰性 25 ウレアーゼ活性 陽性 26 フェニルアラニンの 脱アミノ化 陰性 27 アルギニンデヒドロ ラーゼ活性 陽性 28 チロシンの分解 陰性 29 レバン産生 陰性 30 硝酸塩の還元 陽性 31 硝酸ナトリウムの 脱窒1@ 陰性 32 硫化水素の生成 陽性 33 無機窒素源の利用 No3を唯一の窒 素源として 生育した NH4を唯一の窒 素源として 生育した 34 GC含量 47.3%35 生育
温度 40〜71℃で生育最適 60〜68℃ 36 PH範囲 pH5,7〜8.5で生育最適
pH6,0〜7.0 以上の性質に基づき、本菌株は、バシルスΦステアロサ
ーモフィルスと同定される。
上記菌株の培養に際しては、窒素源として、トリプトン
、ペプトンまたはカザミノ酸を、および炭素源としてグ
ルコースまたはスクロースを含み、さらに酵母エキスと
塩化ナトリウムを含む培地を用いる。培地の初発のpH
は6.0〜7.0が好ましい。
、ペプトンまたはカザミノ酸を、および炭素源としてグ
ルコースまたはスクロースを含み、さらに酵母エキスと
塩化ナトリウムを含む培地を用いる。培地の初発のpH
は6.0〜7.0が好ましい。
培養は、60〜65℃、180〜220rpmで振盪培
養するか、通気攪拌培養によりおこなう、集菌時期は、
対数増殖期の中期から後期がよく、振盪培養の場合には
、培養開始4時間後から6時間後に当る。7時間を越え
培養終期になると菌体の持つ酵素活性は激減する。
養するか、通気攪拌培養によりおこなう、集菌時期は、
対数増殖期の中期から後期がよく、振盪培養の場合には
、培養開始4時間後から6時間後に当る。7時間を越え
培養終期になると菌体の持つ酵素活性は激減する。
こうして集菌した菌株は生菌体のままもしくは処理して
使用することができる(以下これらを総称して生菌体等
という)、処理物には、生菌体を超音波により破砕した
後遠心分離して得られる上清、またはこの上清を65℃
で1時間熱処理した後遠心分離して得られる上清が含ま
れる。さらに、この上清をアセトン処理し、プロテアー
ゼ等の不要なタンパク賀を除去してより安定な形態とし
たものを用いることもできる。
使用することができる(以下これらを総称して生菌体等
という)、処理物には、生菌体を超音波により破砕した
後遠心分離して得られる上清、またはこの上清を65℃
で1時間熱処理した後遠心分離して得られる上清が含ま
れる。さらに、この上清をアセトン処理し、プロテアー
ゼ等の不要なタンパク賀を除去してより安定な形態とし
たものを用いることもできる。
ちなみに、上記菌体を破砕して得られた粗酵素液中の酵
素の63℃における酵素活性の半減期は392〜401
時間であった。この値は、上記従来のセラチア・マルセ
ッセンスIFO3052から得られた酵素の60℃にお
ける酵素活性の半減期が1時間であるのに比べて非常に
長いことを示している。
素の63℃における酵素活性の半減期は392〜401
時間であった。この値は、上記従来のセラチア・マルセ
ッセンスIFO3052から得られた酵素の60℃にお
ける酵素活性の半減期が1時間であるのに比べて非常に
長いことを示している。
ヌクレオシド の1
この発明により、5−メチルウリジンまたはチミジンで
あるヌクレオシド化合物を製造するには、」二記生菌体
等によりチミンを水溶液中でリポヌクレオシドまたはデ
オキシリボヌクレオシドと塩基交換反応させる。この反
応はリン酸またはリン酸塩の存在下でおこなう、リン酸
塩としてはリン酸カリウムを用いることができる。
あるヌクレオシド化合物を製造するには、」二記生菌体
等によりチミンを水溶液中でリポヌクレオシドまたはデ
オキシリボヌクレオシドと塩基交換反応させる。この反
応はリン酸またはリン酸塩の存在下でおこなう、リン酸
塩としてはリン酸カリウムを用いることができる。
チミンと塩基交換させるリポヌクレオシドはイノシン、
アデノシン、グアノシンおよびウリジンからなる群の中
から選ばれる。また、デオキシヌクレオシドは2°−デ
オキシイノシン、2′−デオキシアデノシン、2°−デ
オキシグアノシンおよび2°−デオキシウリジンからな
る群の中から選ばれる。
アデノシン、グアノシンおよびウリジンからなる群の中
から選ばれる。また、デオキシヌクレオシドは2°−デ
オキシイノシン、2′−デオキシアデノシン、2°−デ
オキシグアノシンおよび2°−デオキシウリジンからな
る群の中から選ばれる。
反応水溶液はチミン、リポース供与体であるリポヌクレ
オシドもしくはデオキシリポース供与体であるデオキシ
リボヌクレオシド、並びにリン酸塩を含んでいればよく
、これに上記生菌体等を加える。水溶液中のチミンの濃
度は20〜100mM、リポヌクレオシドまたはデオキ
シヌクレオシドの濃度は20〜100mM、およびリン
酸塩の濃度は5〜100mMであることが好ましいが、
チミンおよびリポヌクレオシドまたはデオキシリボヌク
レオシドの濃度はこれ以上であっても反応は生じる。
オシドもしくはデオキシリポース供与体であるデオキシ
リボヌクレオシド、並びにリン酸塩を含んでいればよく
、これに上記生菌体等を加える。水溶液中のチミンの濃
度は20〜100mM、リポヌクレオシドまたはデオキ
シヌクレオシドの濃度は20〜100mM、およびリン
酸塩の濃度は5〜100mMであることが好ましいが、
チミンおよびリポヌクレオシドまたはデオキシリボヌク
レオシドの濃度はこれ以上であっても反応は生じる。
上記生菌体等のおこなう酵素反応は平衡反応であり、そ
の平衡定数は、例えばチミンとイノシンを反応させて5
−メチルウリジンとヒポキサンチンを生成させる場合6
3℃で0.25であり、チミンとウリジンを反応させ5
−メチルウリジンとウラシルを生成させる場合63℃で
1.60である。また、チミンと2°−デオキシイノシ
ンを反応させてチミジンとヒボキサンチンを生成させる
場合の反応平衡定数は63℃で0.27であり、またチ
ミンと2′−デオキシウリジンを反応させてチミジンと
ウラシルを生成させる場合の反応平衡定数は63℃で1
.29である。従って、5−メチルウリジンまたはチミ
ジンの生成濃度は、反応液中のチミンとリポヌクレオシ
ドもしくはデオキシリボヌクレオシドの初期濃度によっ
て決まる。この発明における反応は、平衡定数に基づく
理論値まで進行する。
の平衡定数は、例えばチミンとイノシンを反応させて5
−メチルウリジンとヒポキサンチンを生成させる場合6
3℃で0.25であり、チミンとウリジンを反応させ5
−メチルウリジンとウラシルを生成させる場合63℃で
1.60である。また、チミンと2°−デオキシイノシ
ンを反応させてチミジンとヒボキサンチンを生成させる
場合の反応平衡定数は63℃で0.27であり、またチ
ミンと2′−デオキシウリジンを反応させてチミジンと
ウラシルを生成させる場合の反応平衡定数は63℃で1
.29である。従って、5−メチルウリジンまたはチミ
ジンの生成濃度は、反応液中のチミンとリポヌクレオシ
ドもしくはデオキシリボヌクレオシドの初期濃度によっ
て決まる。この発明における反応は、平衡定数に基づく
理論値まで進行する。
反応液のpHは通常6.0〜8.5、好ましくは6.5
〜7.0である。また、反応は40〜70℃でおこなう
ことができるが、温度が高いほど反応速度は速く、60
〜70℃の温度で反応させることが好ましい。
〜7.0である。また、反応は40〜70℃でおこなう
ことができるが、温度が高いほど反応速度は速く、60
〜70℃の温度で反応させることが好ましい。
[実施例]
以下、実施例によりこの発明をさらに具体的に説明する
。
。
実施例 1
(A) トリプトン10g/J1.イーストエキス5
g/文、グルコース3 g/l、グリセロール18.9
g/iおよび塩化ナトリウム3 g/lからなる液体培
地(pH7,0)100mfLを500mMの三角フラ
スコに入れ、滅菌した。これに、バシルス・ステアロサ
ーモフィルスJTS859を5白金耳接種し、65℃、
相対湿度35%、210rpmで4時間振盪培養した。
g/文、グルコース3 g/l、グリセロール18.9
g/iおよび塩化ナトリウム3 g/lからなる液体培
地(pH7,0)100mfLを500mMの三角フラ
スコに入れ、滅菌した。これに、バシルス・ステアロサ
ーモフィルスJTS859を5白金耳接種し、65℃、
相対湿度35%、210rpmで4時間振盪培養した。
このとき菌の生育は対数増殖の中期であった。得られた
培養液を遠心分離器(100OG、10分)にかけ集菌
し、湿菌260 m gを得た。
培養液を遠心分離器(100OG、10分)にかけ集菌
し、湿菌260 m gを得た。
(B) イノシン5.36g/fi、チミン2.52
g/交、リン酸−カリウム4.08g/文、リン酸二カ
リウム5.22g/Jl、およびグルコース2.0g/
lからなる反応水溶液(pH7,0)10mJLを仕込
んだ50mJl三角フラスコに上記(A)で得た湿iJ
130 m gを入れ、65℃で3時間反応させた。
g/交、リン酸−カリウム4.08g/文、リン酸二カ
リウム5.22g/Jl、およびグルコース2.0g/
lからなる反応水溶液(pH7,0)10mJLを仕込
んだ50mJl三角フラスコに上記(A)で得た湿iJ
130 m gを入れ、65℃で3時間反応させた。
生成した5−メチルウリジンを高速液体クロマトグラフ
ィーで定性定量分析した結果、1.57g/見(6,1
mM)の5−メチルウリジンが生成していることがわか
った。この濃度は、平衡定数0.25から計算される理
論値6.6mMの92%に相当する0反応をさらに続け
れば1反応は理論値まで進む。
ィーで定性定量分析した結果、1.57g/見(6,1
mM)の5−メチルウリジンが生成していることがわか
った。この濃度は、平衡定数0.25から計算される理
論値6.6mMの92%に相当する0反応をさらに続け
れば1反応は理論値まで進む。
なお、高速液体クロマトグラフィーの分析には、ポンプ
に島津製作所製LC−6Aを用い、カラムにはケムコソ
ルブ5−005−Hφ 4x300を用いた。また、溶
離液には水:メタノール=95:5(V/V)を用い、
流速0−8mJ1/分、カラム温度38℃で分析した。
に島津製作所製LC−6Aを用い、カラムにはケムコソ
ルブ5−005−Hφ 4x300を用いた。また、溶
離液には水:メタノール=95:5(V/V)を用い、
流速0−8mJ1/分、カラム温度38℃で分析した。
検出には紫外254nmを用いた。ヒボキサンチン、チ
ミン、イノシンおよび5−メチルウリジンの保持時間は
、それぞれ、6.2.8.7.10.4および12.2
分であった。
ミン、イノシンおよび5−メチルウリジンの保持時間は
、それぞれ、6.2.8.7.10.4および12.2
分であった。
実施例 2
実施例1 (A)と同様に培養して得られた湿菌400
mgを20mMリン酸カリウム水溶液(pH7,0)4
m文に懸濁し、超音波で2分間処理し、遠心分離しく1
2000G、10分)、上清を得た。
mgを20mMリン酸カリウム水溶液(pH7,0)4
m文に懸濁し、超音波で2分間処理し、遠心分離しく1
2000G、10分)、上清を得た。
イノシン22 、35 g/l、チミン10.50g/
交、リン酸−カリウム1.36g/i、リン酸二カリウ
ム1.74g/iからなる反応水溶液(pH7,0)3
6mMに上記上清4 m 41を添加し、65℃で16
時間反応させた。生成した5−メチルウリジンは6.4
5g/lであり、反応は完全に平衡状態に達していた。
交、リン酸−カリウム1.36g/i、リン酸二カリウ
ム1.74g/iからなる反応水溶液(pH7,0)3
6mMに上記上清4 m 41を添加し、65℃で16
時間反応させた。生成した5−メチルウリジンは6.4
5g/lであり、反応は完全に平衡状態に達していた。
反応後、反応液を陽イオン交換樹脂ダウエックス50W
X(H+型)100mMに通し、チミンおよび5−メチ
ルウリジンを含みヒボキサンチンおよびイノシンを含ま
ない通過画分を得た。この両分を濃縮後、高速液体クロ
マトグラフィーを用いて5−メチルウリジンを単離し1
77mgを得た。
X(H+型)100mMに通し、チミンおよび5−メチ
ルウリジンを含みヒボキサンチンおよびイノシンを含ま
ない通過画分を得た。この両分を濃縮後、高速液体クロ
マトグラフィーを用いて5−メチルウリジンを単離し1
77mgを得た。
なお、高速液体クロマトグラフィーによる分取には、ポ
ンプに島津製作所製LC−6Aを用い、カラムにはりク
ロソルブRP−18φ 8x250を用いた。また、溶
離液には水:メタノール= 97 、5 : 2 、5
(V/V)を用い、流速4m11分でおこなった。検
出には紫外254nmを用いた。
ンプに島津製作所製LC−6Aを用い、カラムにはりク
ロソルブRP−18φ 8x250を用いた。また、溶
離液には水:メタノール= 97 、5 : 2 、5
(V/V)を用い、流速4m11分でおこなった。検
出には紫外254nmを用いた。
実施例 3
実施例2と同様に調製した上清50終見をイノシン5.
365g/文、チミン2.522g/見、リン酸−カリ
ウムL、36g/fLおよびリン酸二カリウム1.74
2g/iからなる反応水溶液(pH7,0)9501L
!Lに添加し、40℃、50℃、60℃および70℃の
各温度で、1時間、2時間、および3時間反応させた。
365g/文、チミン2.522g/見、リン酸−カリ
ウムL、36g/fLおよびリン酸二カリウム1.74
2g/iからなる反応水溶液(pH7,0)9501L
!Lに添加し、40℃、50℃、60℃および70℃の
各温度で、1時間、2時間、および3時間反応させた。
生成した5−メチルウリジンを高速液体クロマトグラフ
ィーで分析した結果を下記表1に示す、この結果から、
反応温度の上昇とともに反応速度が速くなることがわか
る。
ィーで分析した結果を下記表1に示す、この結果から、
反応温度の上昇とともに反応速度が速くなることがわか
る。
表 1
実施例 4
実施例2と同様にして得た上清を63℃で1時間加熱し
た後、遠心分離しく12000G、10分)、上清を得
た。この上清を下記のアセトン処理に供して部分精製を
おこない、不要なタンパク質を除去した。
た後、遠心分離しく12000G、10分)、上清を得
た。この上清を下記のアセトン処理に供して部分精製を
おこない、不要なタンパク質を除去した。
すなわち、上記上清l容に対し0.8容の一10℃のア
セトンを添加し、水冷下で15分間攪拌した。これを遠
心分離しく12000G。
セトンを添加し、水冷下で15分間攪拌した。これを遠
心分離しく12000G。
10分)、上清を得た。この上清にさらに0.6容の一
1O℃のアセトンを添加し、水冷下で15分間攪拌した
。これを遠心分離しく1200G、10分)、得られた
沈殿を0.5容の20mMリン酸カリウム溶液に溶解さ
せ、アセトン処理済み酵素液を得た。
1O℃のアセトンを添加し、水冷下で15分間攪拌した
。これを遠心分離しく1200G、10分)、得られた
沈殿を0.5容の20mMリン酸カリウム溶液に溶解さ
せ、アセトン処理済み酵素液を得た。
熱処理後の酵素の回収率は90.6%であり、アセトン
処理後のそれは90.4%であった。また、タンパク質
当りの酵素の比活性は全体で2.7倍増加した。
処理後のそれは90.4%であった。また、タンパク質
当りの酵素の比活性は全体で2.7倍増加した。
こうして得たアセトン処理済み酵素液50延又と20m
Mリン酸カリウム溶液(PH7,0)150gRをチミ
ン25mM、リン酸−カリウム10mM、リン酸二カリ
ウム10no、Mおよび表2に示すリポヌクレオシド2
5mMからなる反応水溶液(pH7,0)800涛見に
添加し、60℃で30分間反応させた。生成した5−メ
チルウリジンを高速液体クロマトグラフィーで定性定量
分析した。結果を表2に併記する。
Mリン酸カリウム溶液(PH7,0)150gRをチミ
ン25mM、リン酸−カリウム10mM、リン酸二カリ
ウム10no、Mおよび表2に示すリポヌクレオシド2
5mMからなる反応水溶液(pH7,0)800涛見に
添加し、60℃で30分間反応させた。生成した5−メ
チルウリジンを高速液体クロマトグラフィーで定性定量
分析した。結果を表2に併記する。
表 2
実施例 5
実施例2と同様にして得た上清l容に、チミン1.3m
M、イノシン1.3mMおよびリン酸カリウム20mM
よりなる溶液(pH7,0)3容を添加した後、63℃
で加熱した。得られた加熱処理済み粗酵素液100ル又
をチミン25mM、イノシン25mMおよびリン酸カリ
ウム20mMからなる反応水溶液(pH7,0)400
μ交に添加し、60分間反応させた。下記表3に、加熱
処理時111’fと、生IO&5−メチルウリジンの濃
度を示す。
M、イノシン1.3mMおよびリン酸カリウム20mM
よりなる溶液(pH7,0)3容を添加した後、63℃
で加熱した。得られた加熱処理済み粗酵素液100ル又
をチミン25mM、イノシン25mMおよびリン酸カリ
ウム20mMからなる反応水溶液(pH7,0)400
μ交に添加し、60分間反応させた。下記表3に、加熱
処理時111’fと、生IO&5−メチルウリジンの濃
度を示す。
この結果から、酵素の活性と加熱処理の関係を表す以下
の式を得た。
の式を得た。
1ogY=−7,5!10 T+Iag1.132 y
=−0,1180上記式において、Tは加熱処理時Fi
n (時1?Jf)。
=−0,1180上記式において、Tは加熱処理時Fi
n (時1?Jf)。
Yは熱処理をおこなった酵素液を用いて上記反応をおこ
なったときに生成する5−メチルウリジンの濃度、γは
相関係数である。この式から、酵素活性の半減期が40
1時間であることがわかり、耐熱性が高いことが示され
た。
なったときに生成する5−メチルウリジンの濃度、γは
相関係数である。この式から、酵素活性の半減期が40
1時間であることがわかり、耐熱性が高いことが示され
た。
表 3
実施例 6
実施例1 (A)と同様にして得た湿菌10mgを20
mMリン酸カリウム溶液(pH7,0)200g見に懸
濁し、これを2°−デオキシイノシン25mM、チミン
25mMおよびリン酸カリウム20mMからなる反応水
溶液(pH7,0)に添加し、60℃で2時間反応させ
た。
mMリン酸カリウム溶液(pH7,0)200g見に懸
濁し、これを2°−デオキシイノシン25mM、チミン
25mMおよびリン酸カリウム20mMからなる反応水
溶液(pH7,0)に添加し、60℃で2時間反応させ
た。
生成したチミジンを高速液体クロマトグラフィーで定性
定量分析した結果、4.62mMのチミジンが生成して
いることがわかった。この濃度は、平衡定数0.27か
ら計算される理論値6.83mMの68%に相当する0
反応をさらに続ければ、反応は理論値まで進む。
定量分析した結果、4.62mMのチミジンが生成して
いることがわかった。この濃度は、平衡定数0.27か
ら計算される理論値6.83mMの68%に相当する0
反応をさらに続ければ、反応は理論値まで進む。
なお、高速液体クロマトグラフィー分析は、実施例1と
同じ条件でおこなった。ヒボキサンチン、チミン、2°
−デオキシイノシンおよびチミジンの保持時間は、それ
ぞれ、6.2.8.7.12.7および18.3分であ
った。
同じ条件でおこなった。ヒボキサンチン、チミン、2°
−デオキシイノシンおよびチミジンの保持時間は、それ
ぞれ、6.2.8.7.12.7および18.3分であ
った。
実施例 7
実施例1(A)と同様に培養して得られた湿菌400m
gを20mMリン酸カリウム水溶液(pH7,0)4m
文に懸濁し、超音波で2分間処理し、遠心分離しく12
000G、10分)。
gを20mMリン酸カリウム水溶液(pH7,0)4m
文に懸濁し、超音波で2分間処理し、遠心分離しく12
000G、10分)。
1:情を得た。
2゛−デオキシイノシン21.0g/41.チミン10
.50g/立、リン酸−カリウム1.36g/見、リン
酸二カリウム1.74g/iからなる反応水溶液(pH
7,0)36m文に上記上清4 m lを添加し、65
℃で16時間反応させた。
.50g/立、リン酸−カリウム1.36g/見、リン
酸二カリウム1.74g/iからなる反応水溶液(pH
7,0)36m文に上記上清4 m lを添加し、65
℃で16時間反応させた。
生成したチミジンは6 、21 g/lであり1反応は
完全に平衡状態に達していたφ 反応後1反応液を陽イオン交換樹脂ダウエックス50W
X(H+型)100mfLに通し、チミンおよびチミジ
ンを含みヒボキサンチンおよび2′−デオキシイノシン
を含まない通過画分を得た。
完全に平衡状態に達していたφ 反応後1反応液を陽イオン交換樹脂ダウエックス50W
X(H+型)100mfLに通し、チミンおよびチミジ
ンを含みヒボキサンチンおよび2′−デオキシイノシン
を含まない通過画分を得た。
この両分を濃縮後、高速液体クロマトグラフィーを用い
てチミジンを単離し158 m gを得た。
てチミジンを単離し158 m gを得た。
なお、高速液体クロマトグラフィーによる分取は実施例
2と全く同様におこなった。
2と全く同様におこなった。
実施例 8
実施例7と同様に調製した上清100g文および20m
Mリン酸カリウム水溶液(pH7,0)100鉢愛を2
°−デオキシイノシン25mM。
Mリン酸カリウム水溶液(pH7,0)100鉢愛を2
°−デオキシイノシン25mM。
チミン25mM、およびリン酸カリウム20mMからな
る反応水溶液(pH7,0)800μ文に添加し、40
℃、50℃、60℃sよび70”C(7)各温度で、1
時間、2時間、および3時間反応させた。生成したチミ
ジンを高速液体クロマトグラフィーで分析した結果を下
記表4に示す、この結果から、反応温度の」−Hととも
に反応速度が速くなることがわかる。
る反応水溶液(pH7,0)800μ文に添加し、40
℃、50℃、60℃sよび70”C(7)各温度で、1
時間、2時間、および3時間反応させた。生成したチミ
ジンを高速液体クロマトグラフィーで分析した結果を下
記表4に示す、この結果から、反応温度の」−Hととも
に反応速度が速くなることがわかる。
表 4
実施例 9
実施例7と同様にして得た上清を63℃で1時間加熱し
た後、遠心分離しく12000G、10分)、上清を得
た。この上清を下記のアセトン処理に供して部分精製を
おこない、不要なタンパク質を除去した。
た後、遠心分離しく12000G、10分)、上清を得
た。この上清を下記のアセトン処理に供して部分精製を
おこない、不要なタンパク質を除去した。
すなわち、上記上清1容に対し0.8容の一10℃のア
七トンを添加し、水冷下で15分間攪拌した。これを遠
心分離しく12000G、10分)、上清を得た。この
上清にさらに0.6容の一1O℃のア七トンを添加し、
水冷下で15分間攪拌した。これを遠心分離しく120
0G。
七トンを添加し、水冷下で15分間攪拌した。これを遠
心分離しく12000G、10分)、上清を得た。この
上清にさらに0.6容の一1O℃のア七トンを添加し、
水冷下で15分間攪拌した。これを遠心分離しく120
0G。
10分)、得られた沈殿を0.5容の20mMリン酸カ
リウム溶液に溶解させ、アセトン処理済み酵素液を得た
。
リウム溶液に溶解させ、アセトン処理済み酵素液を得た
。
熱処理後の酵素の回収率は90.6%であり、アセトン
処理後のそれは90.4%であった。また、タンパク質
当りの酵素の比活性は全体で2.7倍増加した。
処理後のそれは90.4%であった。また、タンパク質
当りの酵素の比活性は全体で2.7倍増加した。
こうして得たアセトン処理済み酵素液50ル交と20m
Mリン酸カリウム溶液(pH7,0)150、文をチミ
ン25mM、 リン酸−カリウム10mM、 リン酸
二カリウム10mMおよび表5に示すデオキシリボヌク
レオシド25mMからなる反応水溶液(pH7,0)8
00gMに添加し、60℃で30分間反応させた。生成
したチミジンを高速液体クロマトグラフィーで定性定量
分析した。結果を表5に併記する。
Mリン酸カリウム溶液(pH7,0)150、文をチミ
ン25mM、 リン酸−カリウム10mM、 リン酸
二カリウム10mMおよび表5に示すデオキシリボヌク
レオシド25mMからなる反応水溶液(pH7,0)8
00gMに添加し、60℃で30分間反応させた。生成
したチミジンを高速液体クロマトグラフィーで定性定量
分析した。結果を表5に併記する。
表 5
実施例 10
実施例7と同様にして得た上清l容に、チミン1.3m
M、2゛−デオキシイノシン1.3mMおよびリン酸カ
リウム20mMよりなる溶液(pH7,0)3容を添加
した後、63℃で加熱した。得られた加熱処理済み粗酵
素液1 oo=文をチミン25cnM、2′−デオキシ
イノシン25mMおよびリン酸カリウム20mMからな
る反応水溶液(PH7,0)400経文に添加し、60
分間反応させた。下記衣6に、加熱処理時間と、生成チ
ミジンの濃度を示す。
M、2゛−デオキシイノシン1.3mMおよびリン酸カ
リウム20mMよりなる溶液(pH7,0)3容を添加
した後、63℃で加熱した。得られた加熱処理済み粗酵
素液1 oo=文をチミン25cnM、2′−デオキシ
イノシン25mMおよびリン酸カリウム20mMからな
る反応水溶液(PH7,0)400経文に添加し、60
分間反応させた。下記衣6に、加熱処理時間と、生成チ
ミジンの濃度を示す。
この結果から、酵素の活性と加熱処理の関係を表す以下
の式を得た。
の式を得た。
1ogY= −0,87x 10 丁+log2
.107 = −0,989上記式において、Tは加
熱処理時間(時間)、Yは熱処理をおこなった酵素液を
用いて上記反応をおこなったときに生成するチミジンの
濃度(mM)、 γは相関係数である。この式から、酵
素活性の半減期が392時間であることがわかり、耐熱
性が高いことが示された。
.107 = −0,989上記式において、Tは加
熱処理時間(時間)、Yは熱処理をおこなった酵素液を
用いて上記反応をおこなったときに生成するチミジンの
濃度(mM)、 γは相関係数である。この式から、酵
素活性の半減期が392時間であることがわかり、耐熱
性が高いことが示された。
表 6
比較例
セラチア・ブルセツセンスIFO3052の菌体から調
製した粗酵素液を用いて、ウリジンまたはデオキシウリ
ジンとチミンとを水溶液中、リン酸カリウムの存在下で
37℃および60℃の温度でそれぞれ反応させた。得ら
れる5−メチルウリジンまたはチミジンの生成速度は、
反応を37℃でおこなった場合よりも60℃でおこなっ
た方が2.8倍速かった。
製した粗酵素液を用いて、ウリジンまたはデオキシウリ
ジンとチミンとを水溶液中、リン酸カリウムの存在下で
37℃および60℃の温度でそれぞれ反応させた。得ら
れる5−メチルウリジンまたはチミジンの生成速度は、
反応を37℃でおこなった場合よりも60℃でおこなっ
た方が2.8倍速かった。
次に、上記粗酵素液を予め60℃で3時間゛加熱処理し
た粗酵素液を用いて上記と同様の反応をおこなったとこ
ろ、37℃および60℃の反応温度のいづれにおいても
5−メチルウリジンまたはチミジンは生成しなかった。
た粗酵素液を用いて上記と同様の反応をおこなったとこ
ろ、37℃および60℃の反応温度のいづれにおいても
5−メチルウリジンまたはチミジンは生成しなかった。
この結果から、5−メチルウリジンまたはチミジンの生
成速度は反応温度を高くすれば速くできが、上記常温菌
からWlした酵素は高温下で失活してしまうので、再利
用できず、また長期間にわたって反応をおこなうことが
できないことがわかる。
成速度は反応温度を高くすれば速くできが、上記常温菌
からWlした酵素は高温下で失活してしまうので、再利
用できず、また長期間にわたって反応をおこなうことが
できないことがわかる。
[発明の効果]
以上述べたように、この発明においては、バシルス属好
熱性菌の生菌体もしくはその菌体処理物を用いることに
より、チミンとリボヌクレオシドまたはデオキシリボヌ
クレオシドとの塩基交換反応を高温下でおこなうことが
できるので、対応するヌクレオシド化合物すなわち5−
メチルウリジンまたはチミジンを速い速度でしかも高濃
度で得ることができる。また、高温下で塩基交換反応を
おこなうことができるので、高温下では生存し得ない常
温菌による汚染の問題も回避できる。さらに、用いる菌
体またはその処理物は、活性の半減期が非常に長く、繰
返し長期の使用に耐える。
熱性菌の生菌体もしくはその菌体処理物を用いることに
より、チミンとリボヌクレオシドまたはデオキシリボヌ
クレオシドとの塩基交換反応を高温下でおこなうことが
できるので、対応するヌクレオシド化合物すなわち5−
メチルウリジンまたはチミジンを速い速度でしかも高濃
度で得ることができる。また、高温下で塩基交換反応を
おこなうことができるので、高温下では生存し得ない常
温菌による汚染の問題も回避できる。さらに、用いる菌
体またはその処理物は、活性の半減期が非常に長く、繰
返し長期の使用に耐える。
Claims (3)
- (1)チミンと、イノシン、アデノシン、グアノシンお
よびウリジンからなる群の中から選ばれたリボヌクレオ
シド、または2′−デオキシイノシン、2′−デオキシ
アデノシン、2′−デオキシグアノシンおよび2′−デ
オキシウリジンからなる群の中から選ばれたデオキシリ
ボヌクレオシドとを、水溶液中、リン酸またはリン酸塩
の存在下に、バシルス属好熱性菌生菌体もしくはその菌
体処理物により塩基交換反応させて5−メチルウリジン
またはチミジンであるヌクレオシド化合物を生成させる
ことを特徴とするヌクレオシド化合物の製造方法。 - (2)バシルス属好熱性菌がバシルス・ステアロサーモ
フィルスJTS859である請求項1に記載の製造方法
。 - (3)塩基交換反応を40℃ないし70℃の範囲の温度
でおこなうことを特徴とする請求項1または2記載の製
造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63154234A JP2547438B2 (ja) | 1988-06-22 | 1988-06-22 | ヌクレオシド化合物の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63154234A JP2547438B2 (ja) | 1988-06-22 | 1988-06-22 | ヌクレオシド化合物の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01320995A true JPH01320995A (ja) | 1989-12-27 |
JP2547438B2 JP2547438B2 (ja) | 1996-10-23 |
Family
ID=15579782
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63154234A Expired - Lifetime JP2547438B2 (ja) | 1988-06-22 | 1988-06-22 | ヌクレオシド化合物の製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2547438B2 (ja) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1990010080A1 (en) * | 1989-02-28 | 1990-09-07 | Yamasa Shoyu Kabushiki Kaisha | Production of nucleoside |
JPH06253854A (ja) * | 1993-02-26 | 1994-09-13 | Yamasa Shoyu Co Ltd | 組換えdna手法によるヌクレオシド・ホスホリラーゼの製造法 |
US5547857A (en) * | 1994-04-18 | 1996-08-20 | Ajinomoto Co., Inc. | Process for producing 5-methyluridine and purification by sedimentation velocity |
WO2002036800A1 (fr) * | 2000-11-06 | 2002-05-10 | Mitsui Chemicals, Inc. | Procede de production de compose nucleoside |
CN111411136A (zh) * | 2019-09-27 | 2020-07-14 | 大连民族大学 | 一种海洋芽孢杆菌Bacillus sp.JIN118生产胸腺嘧啶的制备方法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS56102794A (en) * | 1979-05-01 | 1981-08-17 | Ajinomoto Co Inc | Preparation of pyrimidine ribonucleosides and pyrimidine deoxyribonucleosides |
-
1988
- 1988-06-22 JP JP63154234A patent/JP2547438B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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JPS56102794A (en) * | 1979-05-01 | 1981-08-17 | Ajinomoto Co Inc | Preparation of pyrimidine ribonucleosides and pyrimidine deoxyribonucleosides |
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JP2795748B2 (ja) * | 1989-02-28 | 1998-09-10 | ヤマサ醤油株式会社 | ヌクレオシドの製造法 |
JPH06253854A (ja) * | 1993-02-26 | 1994-09-13 | Yamasa Shoyu Co Ltd | 組換えdna手法によるヌクレオシド・ホスホリラーゼの製造法 |
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