SK156697A3 - Enzyme degrading rhamnogalacturonane ii and its derivatives, process for manufacturing this enzyme and rhamnogalacturonane ii, and application of the enzyme - Google Patents

Enzyme degrading rhamnogalacturonane ii and its derivatives, process for manufacturing this enzyme and rhamnogalacturonane ii, and application of the enzyme Download PDF

Info

Publication number
SK156697A3
SK156697A3 SK1566-97A SK156697A SK156697A3 SK 156697 A3 SK156697 A3 SK 156697A3 SK 156697 A SK156697 A SK 156697A SK 156697 A3 SK156697 A3 SK 156697A3
Authority
SK
Slovakia
Prior art keywords
enzyme
degradation
preparation
derivatives
plant
Prior art date
Application number
SK1566-97A
Other languages
English (en)
Inventor
Patrice Pellerin
Jean-Marc Brillouet
Thierry Doco
Pascale Williams
Stephane Vidal
Michel Moutounet
Original Assignee
Agronomique Inst Nat Rech
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Agronomique Inst Nat Rech filed Critical Agronomique Inst Nat Rech
Publication of SK156697A3 publication Critical patent/SK156697A3/sk

Links

Classifications

    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D65/00Accessories or auxiliary operations, in general, for separation processes or apparatus using semi-permeable membranes
    • B01D65/02Membrane cleaning or sterilisation ; Membrane regeneration
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L2/00Non-alcoholic beverages; Dry compositions or concentrates therefor; Their preparation
    • A23L2/70Clarifying or fining of non-alcoholic beverages; Removing unwanted matter
    • A23L2/84Clarifying or fining of non-alcoholic beverages; Removing unwanted matter using microorganisms or biological material, e.g. enzymes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D41/00Regeneration of the filtering material or filter elements outside the filter for liquid or gaseous fluids
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B08CLEANING
    • B08BCLEANING IN GENERAL; PREVENTION OF FOULING IN GENERAL
    • B08B7/00Cleaning by methods not provided for in a single other subclass or a single group in this subclass
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12GWINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
    • C12G1/00Preparation of wine or sparkling wine
    • C12G1/02Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation
    • C12G1/0203Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation by microbiological or enzymatic treatment
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12HPASTEURISATION, STERILISATION, PRESERVATION, PURIFICATION, CLARIFICATION OR AGEING OF ALCOHOLIC BEVERAGES; METHODS FOR ALTERING THE ALCOHOL CONTENT OF FERMENTED SOLUTIONS OR ALCOHOLIC BEVERAGES
    • C12H1/00Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages
    • C12H1/003Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages by a biochemical process
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01171Rhamnogalacturonan hydrolase (3.2.1.171), i.e. rhamnogalacturonase
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2321/00Details relating to membrane cleaning, regeneration, sterilization or to the prevention of fouling
    • B01D2321/16Use of chemical agents
    • B01D2321/166Use of enzymatic agents

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Rhamnogalakturonan II je univerzálna a veľmi zložitá časť bunečných stien rastlín (O' Neill a koi., Methods in Plánt Biochemistry (1990) 2, 415 - 439). Patrí k pektickým polysacharidom a je esenciálne prítomný na úrovni strednej lamely a primárnej bunečnej steny.
Jeho štruktúra je extrémne zložitá (obrázok 1), pretože sa skladá z 12 rôznych monosacharidov pre jeden polymerizačný stupeň (dp) blízky 30. Táto zložitosť je podporovaná prítomnosťou málo sa vyskytujúcich cukrov v jeho kompozícii, ktorá obsahuje: apiózu alebo 3-C-(hydroxymetyl)-D-glycerotetrózu; KDO alebo 2-keto-3deoxy-D-mano-oktulozonikovú kyselinu; DHA alebo 3-deoxy-D-lyxo-heptulosarikovú kyselinu, 2-O-metyl-fukózu, 2-O-metyl-xylózu a konečne octovú kyselinu alebo 3-Ckarboxy-5-deoxy-L-xylózu. Posledný monosacharid vytvára špecifický markér pre RG-II. Najbežnejšie monosacharidy v polysacharidoch bunečných stien, rhamnóza, fukóza, arabinóza, galaktóza a galakturonová kyselina a glukuronová kyselina sú rovnako prítomné v kompozícii RG-II, najčastejšie s anomérmi a s násobnými typmi väzieb, ktoré posilňujú špecifitu a zložitosť štruktúry molekuly.
Ultraštrukturálna organizácia RG-II (obrázok 1) vedie k zvýšeniu tejto zložitosti (Puvanesarajah a kol., Carbohydr. Res. (1991) 218, 211 - 242). Homologická reťaz a zloženina 7 až 14 zvyškov kyseliny galakturonovej, viazaných priamo v alfa (1 4) nesie veste nedeterminovaných pozíciách 4 rôzne vetvy: dva disacharidy a dva
30833/H reťazce viacerých zložitých okta- alebo nonasacharidov. Pozorujú sa rôzne štruktúry, čo sa týka dĺžky homogalakturonového reťazca a konca vetvy B a podobne enzymatické účinky potrebné na jeho získanie. Na druhej strane bola detegovaná prítomnosť ešte neidentifikovaných substituentov na zvyšku A5. Okrem toho obsahuje molekula RG-II 2 až 3 metylové zoskupenia, ktoré esterifikujú
I karbocyklické zoskupenie galakturonových kyselín a dve acetylové zoskupenia situované na zvyškoch R3 (acerová kyselina) a B4' (2-O-metyl-fukóza).
Štruktúra RG-II bola takto všeobecne určená, dokonca i keď povaha istých substituentov nebola ešte identifikovaná.
V bunečnej stene rastlín je RG-II asociovaný s prírodnými pektínmi, avšak presný typ väzby medzi protopektínom a RG-II je ešte neznámy. Ostatne, tiež jeho úloha v rastlinnej stene je neznáma. Možno teda povedať, že je prítomný v celom rastlinstve (Albersheim a kol., Biochem. Soc. Transactions (1994) 22, 374 - 378) ; od pteridofytov do spermatofytov, od gymnospermov do angiospermov, od monokotyledónov do dikotyledónov (obrázok 2) a v nezanedbateľnom množstve v strednej lamele steny. Tiež je známe, že jeho štruktúra je zachovaná u rôznych rastlín, kde bol študovaný (Albersheim a koľ, Biochem. Soc. Transactions (1994), 22, 374 - 378).
Posledné práce ukázali, že môže reagovať ako signálny polysacharid a indukovať špecifickú odpoveď rastliny (elicitický účinok) (Aldington a Fry, J. Exp. Botany (1994) 45, 287 - 293). Avšak z jeho hojnosti, jeho všadepritomnosti a zo zložitosti jeho štruktúry možno predpokladať, akú základnú úlohu hrá v kohézii bunečných rastlinných stien, a teda v bunečnej organizácii rastlinných látok.
RG-II sa uvoľňuje z bunečných stien akciou enzýmov s pektolytickým účinkom (pektínesteráza, endo- alebo exopolygalakturonáza), ktoré degradujú reťazce prírodných pektínov a uvoľňujú RG-II v nedegradovanej forme (Darvill a kol., Plánt. Physiol. (1978) 62, 418 - 422), ako dokladá obrázok 1. Rozdielnosť dĺžky reťazca berie do úvahy enzymatické degradácie, ktoré umožnili jeho uvoľňovanie z prírodných pektínov (Whitcombe a kol., Carbohydr. Res. (1995) 271, 15 - 29).
Zložitosť a originalita štruktúry RF-II spôsobuje jeho zvláštnu rezistenciu voči degradácii enzýmami prítomnými v extraktoch rastlín, ako i v komerčných enzymatických preparátoch ako pôvodu fungicídneho, tak bakteriálneho.
30833/H
Žiaden degradačný účinok nemôže v skutočnosti jasne ukázať v komerčných enzymatických prípravkoch degradáciu bunečných stien rastlín bohatšiu na rôzne účinky. Samotné pozorované degradácie sa týkajú zvyškov arabinofuranózy, rhamnopyranózy alebo galaktopyranózy ležiacich na neredukujúcich koncoch bočných reťazcov. Exo-enzýmy dovoľujú uvoľnenie takýchto rezíduí, existujúcich v skutočnosti bežne v enzymatickej príprave; čo sa vysvetľuje nepochybne pozorovanou rozdielnosťou medzi rôznymi prípravami RG-ll, popisovanými rôznymi autormi.
Počas lisovania alebo drvenia ovocia a zeleniny sa uvoľňujú pektolytické účinky, ktoré spôsobujú degradáciu homogalakturonových reťazcov prírodných pektínov. Tieto účinky sú posilňované prídavkom komerčných pektolytických enzýmov a fermentačnou flórou v prípade vína a fermentovanými produktmi. RG-II sa uvoľňuje v intaktnej forme a v množstve často významnom v ovocných a zeleninových šťavách alebo nektároch v ich derivátoch, najmä vo víne.
Vo víne predstavuje RG-II jeden z hlavných polysacharidov (Doco a Brillouet, Carbohydr. Res. (1993) 243, 333 - 343), jeho koncentrácia môže dosahovať 100 mg/l. Podieľa sa na množstve nežiaducich javov, ako je zanesenie filtračných membrán (Belleville a kol., Enol. Vitie. Sci. (1991) 46, 100 - 107), utváranie nestabilných komplexov s inými koloidnými makromolekulami a indukciu precipitačných javov. Jeho eliminácia nutne prebieha za použitia špecifických enzýmov spôsobujúcich jeho degradáciu.
Doteraz boli popísané rôzne metódy získania RG-ll z vína:
- enzymatickou hydrolýzou s pomocou fungicídnych endopolygalakturonáz izolovaných z kultúr rastlinných buniek v suspenzii (Darvill a kol., Plánt Physiol. (1978) 62, 418-422), použitím komerčného enzymatického prípravku z Aspergillus niger, Pectinolu AC (Stevenson a kol., Carbohydr. Res. (1988) 179, 269 - 288), RG-ll je tu prítomný vo forme slabej koncentrácie a jeho čistenie implikuje množstvo eliminačných etáp proteínov a farbiacej látky,
30833/H
- z vína (Doco a Brillouet, Carbohydr. Res. (1993) 243, 333 - 343), popísané čistenie bolo úspešne vykonané v 4 etapách sterickou vylučovacou chromatografiou (CES) alebo iónovou výmenou.
Zistilo sa, že rhamnogalakturonan I alebo RG-I, i keď má veľmi blízke meno, je celkom odlišnou časťou rastlinnej bunečnej steny v porovnaní s RG-II ako z hľadiska štruktúrneho pohľadu (jeho štruktúra je založená na striedaní rhamnózy a galakturonovej kyseliny), tak svojou degradáciou enzýmami. Účinky rhamnogalakturonázy (Schols a kol., Carbohydr. Res. (1990) 206, 105 - 115) alebo protopektinázy (Sakamoto a Sakai, Carbohydr. Res. (1994) 259, 77 - 91) boli už popísané.
Z ďalej uvedenej analýzy stavu techniky vyplýva, že nie je známy žiaden enzým alebo enzymatický prípravok predstavujúci dostatočný degradačný účinok na RG-li. Preto je prítomnosť tohto polysacharidu zdrojom nežiaducich javov, ako je zanášanie filtračných membrán, utváranie nežiaducich komplexov s ďalšími koloidnými makromolekulami a indukcia precipitačných javov.
Ekonomickým dôsledkom uvedených nežiaducich skutočností v tomto prípade bola nutnosť nájsť riešenie daného problému.
Podstata vynálezu
Predložené riešenie podľa vynálezu ukazuje, že je možné izolovať enzýmy spôsobujúce degradáciu RG-II a jeho derivátov, z mikroorganizmov.
Ďalším novým vynájdeným predmetom je spôsob prípravy látky RG-II, dovoľujúci získať jej veľké množstvo z rôznych rastlinných zdrojov.
Ďalším predmetom vynálezu je enzým, ktorý degraduje RG-II a jeho deriváty.
Podstatou predloženého vynálezu je látka RG-II, celý polysacharid, majúci štruktúru vyznačenú na obrázku 1, ktorý je buď vo forme monoméru alebo diméru a celá výsledná molekula je produktom čiastočnej degradácie a obsahuje najmenej jeden fragment reťaze A, B, C alebo D charakterizujúci ako kompozíciu, tak i jej sekvenciu.
V ďalšom texte všetky skutočnosti vzťahujúce sa k látke RG-II platia tiež pre deriváty jej molekuly.
30833/H
Enzým, ktorý obzvlášť výhodne predstavuje popísaný účinok, je endohydrolázového typu.
Takýto enzým môže obzvlášť predstavovať účinok endo-beta-Lrhamnopyranozyl-(1->3')-D-apiofuranozyl hydrolázy a/alebo endo-alfa-Lfukopyranozyl-(1-»4)-L-rhamnopyranozyl hydrolázy. Ich účinok možno určiť možnosťou uvoľňovať reťazec A, ako je znázornené na obrázku 1.
Tento enzým môže byť produkovaný mikroorganizmom, najmä hubou druhu Penicillium.
Mikroorganizmy tohto druhu majúce degradačný účinok na látku RG-II a jej deriváty, predstavujú ďalší predmet vynálezu. Sú to najmä kmene Penicillium, ktoré boli následne deponované dňa 19. mája 1995 v Collection Nationale de Cultures des Microorganismes de ľlnstitut Pasteur (CNCM) - Národnej zbierke kultúr mikroorganizmov pri Pasteurovom inštitúte:
- kmeň Penicillium simplicissimum, deponovaný u CNCM pod označením n° 11577 (IPV1),
- kmeň Penicillium daleae, deponovaný u CNCM pod označením n° 1-1578 (LaV2).
Obidva tieto kmene húb predstavujú predmet vynálezu, ktorého podstatou sú huby s rýchlou produkciou (od šiesteho dňa pestovania) modrozelených spór.
Penicillium daleae je menej bežná huba, izolovaná z lesnej pôdy a ktorá je známa pre svoju kapacitu degradovať amidón a pektické polysacharidy. Tento druh je popísaný v publikácii „Compendium of Soil Fungi,,, H. K. Γomsch, W. Gams a T. H. Anderson (1980), Academic Press, London, str. 560.
Penicillium simplicissimum je viac známy kmeň častejšie izolovaný z dekomponovaných rastlín. Tento druh je popísaný v publikácii „Compendium of Soil Fungi,,, H. K. Domsch, W. Gams a T. H. Anderson (1980), Academic Press, London str. 597 - 598.
Predložený vynález sa tiež týka enzymatických prípravkov obsahujúcich enzým degradujúci látku RG-II a jej deriváty, ako je uvedené vyššie.
30833/H
Tieto enzýmy však môžu byť vo forme prípravkov, obsahujúcich iné enzýmy predstavujúce iné účinky.
Obohatenie týchto prípravkov o účinky predstavujúce degradáciu látky RG-ll ponúka celkom nový potenciál pre všetky aplikácie vyžadujúce čiastočnú alebo úplnú degradáciu bunečnej steny a rastlinných polysacharidov.
Enzýmy dovoľujúce špecifickú degradáciu látky RG-II a ich derivátov môžu byť použité na degradáciu alebo modifikáciu látky RG-II alebo jej derivátov, a to najmä v nasledujúcich aplikáciách:
- eliminácia RG-II zo štiav ovocia, zeleniny a ich derivátov, aby sa zlepšila filtrovateľnosť, uľahčila výroba štiav a koncentrovaných aromatických báz, uľahčilo sa čistenie a zaistila sa dobrá stabilita finálnych pi jduktov,
- čistenie membrán mikro- a ultrafiltráciou, použitých na čistenie štiav ovocia, zeleniny a ich derivátov,
- získanie prípravkov typu macerázy, t.j. prípravkov dovoľujúcich disociáciu bunečných látok mladých rastlín s minimálnou degradáciou parietálnych štruktúr (výroba ovocných nektárov, pyré, želé a koncentrátov ovocia a zeleniny),
- získanie stekutených prípravkov, t.j. pred vykonaním celkovej hydrolýzy polysacharidov bunečných stien rastlín (výroba štiav na báze aromatického ovocia, zeleniny a fermentované nápoje, pivo),
- výroba pektínov a krmív pre zvieratá zo zvyškov rastlín (dužina repy, pevné zvyšky po vylisovaní ovocia, ...),
- výroba celulózy z rastlín; enzymatická hydrolýza ďalších zložiek polysacharidov dovoľuje v skutočnosti zlepšiť výťažok výroby (textilný priemysel, výroba papiera).
Komerčné enzymatické prípravky umožňujúce degradáciu bunečných stien rastlín musia mať spôsob biochemického účinku najpresnejšie a najlepšie definovaný, podľa typu skúmaného použitia. Špecifický prínos enzýmov degradujúcich RG-II a majúcich presný a dobre determinovaný spôsob účinku, je v zmysle jedného z najlepších využití potenciálnych technológií, používajúcich enzýmy z húb.
30833/H
Enzýmy a enzymatické prípravky podľa predloženého vynálezu, vyššie popísané, sa môžu výhodne získať spôsobom, ktorý zahrňuje nasledujúce etapy:
- dodanie mikroorganizmov majúcich degradačný účinok na RG-II alebo jeho deriváty do prostredia adaptovanej kultúry na produkciu týchto enzýmov,
- opätovné zobratie enzýmu alebo enzymatického prípravku v supernatänte kultúry alebo v supernatantoch drviny mikroorganizmov.
Spôsob výhodne pozostáva z nasledujúcich etáp:
- dodanie mikroorganizmov majúcich degradačný účinok na RG-II do prostredia adaptovanej kultúry na produkciu týchto enzýmov a obsahujúcej RG-II,
- opätovné zobratie mikroorganizmov,
- rozdrvenie mikroorganizmov,
- eliminácia nerozpustenej látky, najmä filtráciou alebo centrifugovaním rozdrvených mikroorganizmov a
- opätovné zobratie supernatantu, obsahujúceho enzýmy alebo enzymatický prípravok.
Enzýmy môžu byť priamo obsiahnuté v supernatante kultúry, bez drviny mikroorganizmov, keď to podmienky dovoľujú, voliace také podmienky alebo kmene takého druhu, že enzýmy sú uvoľnené v danom prostredí.
Výhodne tento spôsob prípravy prebieha s pomocou kmeňov Penicillium deponovaných v zbierke kultúr CNCM pod číslami N° 1-1577 a N°1-1578.
Tieto enzýmy možno tiež získať pomocou genetického inžinierstva, po klonovaní génu alebo génov zodpovedných za ich syntézu alebo celkom inou technikou dostupnou odborníkovi v odbore, najmä syntézou vychádzajúcou z jednotlivých aminokyselín, po identifikácii ich sekvencií.
Predložený vynález sa tiež týka spôsobu získania RG-II a jeho metabolitov alebo derivátov z extraktov rastlinného pôvodu, ktorého podstata spočíva v tom, že zahrňuje chromatografovanie uvedeného extraktu.
30833/H
Je zrejmé, že sa spôsob týka nielen získania látky RG-II, ale tiež produktov degradácie ich molekuly,, ktoré sa môžu tvoriť, keď prebieha spôsob prípravy a ktoré sa nazývajú metabolity, ako i všetkých derivátov látky RG-II:
V predloženom vynáleze sa chápe pod pojmom „extrakt rastlinného pôvodu,, každá príprava obsahujúca obzvlášť rozpustné polysacharidy rastlinného pôvodu. Polysacharidy môžu byť podrobené etape koncentrácie, buď ultrafiltráciou alebo precipitáciou, napríklad z etanolu, metanolu alebo ostatných adekvátnych rozpúšťadiel.
Spôsob môže tiež zahrňovať aspoň jednu etapu chromatografickej aniónovej výmeny, pri pH slabo kyslom alebo neutrálnom, výhodne väčšom ako 4. Adsorpčná chromatografia prebieha na kolónach DEAE alebo QEAE.
Spôsob môže tiež zahrňovať aspoň jednu etapu adsorpčnej chromatografie RG-II na nosiči zadržiavajúcom RG-II. Adsorpčnú chromatografiu možno vykonávať na aktívnom uhlí, v kolóne s náplňou polystyrén - divinylbenzén alebo na inej vhodnej náplni.
Je možné pridať, pred a/alebo po chromatografickej etape, etapu separácie polysacharidov, buď frakcionačnou precipitáciou alebo ultrafiltráciou alebo sterickou vylučovacou chromatografiou. Na uskutočnenie frakcionačnej precipitácie sa výhodne používa etanol alebo metanol. Na vykonanie sterickej vylučovacej chromatografie sa výhodne používa kolóna so „sephakrylom,, alebo iným vhodným nosičom.
Predložený vynález sa medzi iným týka prípravkov, ktoré sa získajú niektorým z týchto spôsobov:
- časť prípravkov obsahuje majoritne (t. j. najmenej 95 %) monomérov látky RG-II, a druhá časť prípravkov obsahuje najmenej 80 %, výhodne viac ako 95 % dimérov látky RG-II.
Po každej chromatografii sa určí, vďaka zloženiu, aké frakcie látka RG-II obsahuje. Táto operácia je dostupná odborníkovi v odbore.
Uvedené spôsoby dovoľujú ľahko získať prípravky vo významnom množstve (rádovo kilogramov) rhamnogalakturonanu II zo všetkých produktov rastlinného
30833/H pôvodu, s výnimkou tých, ktoré pochádzajú z tráv, ako sú šťavy ovocia, zeleniny a ich derivátov, najmä vína, obzvlášť koncentrovaného vína, vína zlej kvality a vínneho muštu a tých, ktoré sú v rozmedzí desiatky gramov. Látka RG-II sa výhodne získa z primárnych stien rastlín, ale je možné ju tiež izolovať z každého produktu odvodeného od rastlín umožňujúceho rozpustnosť bunečnýc i stien, buď v priebehu spôsobu tradičnej transformácie (lisovanie, fermentácia,...) alebo pôsobením s pomocou enzýmov v tekutine.
Ďalším predmetom predloženého vynálezu je spôsob selekcie mikroorganizmov, špeciálne húb, vzhľadom k ich schopnosti degradovať látku RG-II, ktorého podstata spočíva v tom, že mikroorganizmy sa nechajú množiť v prispôsobenom kultivačnom prostredí obsahujúcom danú látku RG-II.
Vynález sa tiež týka kultivačného prostredia pre mikroorganizmy, ktorého podstata spočíva v tom, že obsahuje látku RG-II.
Spôsob podľa predkladaného vynálezu, obzvlášť spôsoby výroby a izolácie enzýmov podľa predkladaného vynálezu, rovnako tak ako spôsob výroby látky RG-II môžu byť vykonané odborníkom na základe iba prečítania predloženého popisu vynálezu a jeho všeobecných znalostí. Avšak je možné ako referencie použiť nasledujúci manuál: Methods in Microbiology, zv. 1 až 6, J. R. Morris a D. W. Ríbbons (1969 - 1972), Academic Press, London, New York.
Prehľad obrázkov na výkresoch
Predložený vynález bude bližšie vysvetlený prostredníctvom konkrétnych príkladov vyhotovenia, ktoré predmet vynálezu nijako neobmedzujú.
!
Popis predmetu vynálezu a príklady jeho vyhotovenia sa odvolávajú na pripojené obrázky, na ktorých
Obr. 1 predstavuje schematicky štruktúru rhamnogalakturonanu II, zahrňujúcu jeho štyri bočné reťazce A až D. Na tomto obrázku R1 predstavuje atóm vodíka alebo alfa-L-rhamnopyranózu a R2 a R3 predstavujú atóm vodíka alebo iný substituent.
Obr. 2 znázorňuje rozdelenie RG-II v rastlinnej ríši.
30833/H
Obr. 3 znázorňuje frakcionáciu polysacharidov, kyslých cukrov a neutrálnych cukrov vína na kolóne DEAE (Macroprep).
Obr. 4A a 4B sú profily vysokovýkonnej sterickej vylučovacej chromatografie (CES-HP) u dvoch frakcií RG-II, izolovaných z červeného vína.
Obr. 5 ukazuje profily vysokovýkonnej sterickej vylučovacej chromatografie na kolóne Superdex-75 HR u dvoch frakcií RG-II získan ch čistením vínneho koncentrátu:
a) frakcie III, dimér RG-II (molekulová hmotnosť 9500 Da, vymývaná po 18,5 min).
b) frakcie II, monomér RG-II (molekulárna hmotnosť 4750 Da, vymývanie po 20,5 min.).
Obr. 6 je schéma čistenia RG-I základnej úrovne.
Obr. 7 je porovnanie profilov, určených pomocou CES-HP na kolóne Superdex-75 HR, u celkových polysacharidov červeného vína (a) s frakciou, ktorá nie je zadržaná na živici Relite® DIAION® (b) s frakciou, ktorá je zadržaná a potom vymytá etanolom 20 % (c).
Obr. 8 znázorňuje degradáciu RG-II rozpustným bunečným extraktom Peniciliium simplicissimum (1-1577). Spektrá a, b a c zodpovedajú pôvodnému RG-II a RG-II po 24 hodinách a 48 hodinách degradácie.
Obr. 9 znázorňuje degradáciu RG-II rozpustným bunečným extraktom kmeňa P. daleae LaV2 (1-1578) (a: pôvodná RG-II, b: po 96 hodinách, c: po 168 hodinách, d: po 190 hodinách).
Obr. 10 znázorňuje degradáciu, nasledovanú chromatografiou CES-HP, pre RG-II kultúru Peniciliium simplicissimum (1-1577). Krivky a až f predstavujú spektrum pôvodného RG-ll a spektrá RG-ll po 96 hodinách, po 132 hodinách, po 168 hodinách, po 190 hodinách a po 400 hodinách rastu huby.
Obr. 11 znázorňuje degradáciu RG-ll kultúrou P. daleae (1-1578), nasledovanou chromatografiou CES-HP, po rôznych dobách (a: pôvodná RG-ll, b: po 72 hodinách, c: po 120 hodinách, d: po 240 hodinách, e: po 264 hodinách, f: po 336 hodinách, g: po 384 hodinách).
30833/H
Obr. 12 predstavuje zjednodušenú štruktúru z obr. 1. Sú znázornené miesta potenciálneho štiepenia enzýmu podľa predkladaného vynálezu, označené šipkami 1 a 2.
Obr. 13 znázorňuje štruktúru reziduálnej frakcie RG-II po jeho degradácii, spôsobenej Penicillium simplicissimum a P. daleae.
Obr. 14 znázorňuje dimerickú degradáciu RG-II kultúrou P. daleae (1-1578). Spektrá a až c predstavujú spektrum pôvodného dimerického RG-II a spektra RG-II po 168 hodinách a po 300 hodinách degradácie.
Obr. 15 znázorňuje degradáciu, nasledovanú chromatografiou CES-HP, čisteného RG-II úplným rozpustným bunečným extraktom Penicillium simplicissimum (1-1577). Spektrá a až d zodpovedajú pôvodnému RG-II a RG-II po 72 hodinách, po 120 hodinách a po 148 hodinách inkubácie.
Obr. 16 je porovnanie profilov polysacharidov, určených pomocou CES-HP červeného vína (spektrum a) a po 48 hodinách inkubácie v prítomnosti enzymatického extraktu IPV 1 (spektrum b).
Obr. 17 je porovnanie CES-HP profilov polysacharidov červeného vína (spektrum a) a po 48 hodinách inkubácie v prítomnosti Pectinex® Ultra Sp L samotného (spektrum b) a/alebo spojeného s enzymatickým extraktom kmeňa IPV1 (spektrum c).
Obr. 18 je porovnanie CES-HP profilov polysacharidov jablčného muštu, získaného úplným stekutením ovocia enzymatickým prípravkom Rapidase® Liq) po 48 hodinách inkubácie za absencie (spektrum a) a v prítomnosti (spektrum b) enzymatického extraktu kmeňa IPV1.
Obr. 19A a 19B znázorňujú degradáciu tkaniva červenej repy (obr. 19A) enzymatickým extraktom kmeňa IPV1 v porovnaní s porovnávacou vzorkou (obr. 19B).
Obr. 19C, 20A a 20C predstavujú degradáciu enzymatickým extraktom kmeňa IPV1 u tkaniva mrkvy, jablka a zemiaku v porovnaní so zodpovedajúcimi porovnávacími vzorkami (obr. 19D, 20B a 20D).
30833/H
Príklady uskutočnenia vynálezu
Príklad 1
Čistenie rhamnogalakturonanu II chromatografiou aniónovou výmenou a chromatografiou molekulárnym vytriedením, vychádzajúce z vína
RG-II sa nachádza v nedegradovanej podobe hlavne v šťave ovocia, zeleniny a v ich derivátoch, hlavne fermentovaných. RG-II môže byť čistený na homogenitu vychádzajúcu zo všetkých odvodených rastlinných produktov za použitia nasledujúcich etáp čistenia:
1. Získanie makromolekúl v jednej etape buď precipitáciou v etanole 80 % alebo ultrafiltráciou.
2. Preparatívna chromatografia aniónovou výmenou pri kyslom pH.
3. Chromatografia molekulárneho vytriedenia (táto posledná etapa dovoľujúca dosiahnuť zvýšenú úroveň čistoty môže byť vypustená, ak sa požaduje úroveň čistoty 80 % pri príprave RG-II).
1, Vzorka vina a získanie koloidov
Použité víno sa získalo z odrody Carignan noir, zbieranej v stave zrelosti v septembri 1991 v Domaine Experimentale de Pech-Rouge (Narbonne). 600 I bolo koncentrované na ultrafiltračnej membráne Carbo Sep M5 (Tech Sep, Francúzsko) do prahovej hodnoty 10 000. Úplné koloidy koncentrovaného vína (výsledný objem 25 I) boli potom precipitované pridaním 4 dielov etanolu, okysleného pridaním 60 mM HCI, premývané postupne v etanole 80 % a 90 %, vybraté vo vode a dialyzované na pufre citranu sodného 40 mM pri pH 4,6. Sušina úplných koloidov (určená po odsolení a lyofilizácii alikvotnej frakcie) predstavovala 296 g, t. j. zhruba 0,5 g na jeden liter vína.
2. Chromatografia výmenou aniónov
Koloidný roztok pri pH 4,6 sa frakcionoval chromatografiou výmenou aniónov 10 postupnými priechodmi kolónou (5 x 80 cm) DEAE-Macroprep (BioRad, USA) vyváženou na 20,5 ml/min. v pufre citranu sodného 40 mM pri pH 4,6. Neutrálne alebo slabo nabité polysacharidy boli vymyté injekčným pufrom (frakcia I). Frakcie obsahujúce RG-II boli vymyté najprv koncentračným priechodom citranovým pufrom
30833/H pri 50 mM (frakcia II) a potom adíciou 50 mM (frakcia III) a 150 mM (frakcia IV) NaCI do vymývacieho pufra (obr. 3). Tieto tri frakcie predstavovali 7,9 %, 6,6 % a 4,1 % celkových koloidov, vyjadrené v hmotnosti sušiny.
3, Čistenie RG-II do homogenity sterickou vylučovacou chromatografiou
RG-II obsiahnutý vo frakciách II a III bol čistený do homogenity sterickou vylučovacou chromatografiou na kolóne (5 x 75 cm) Sephacryl S-400 HR vyváženej na 7 ml/min. v pufre octanu sodného 50 mM pri pH 5 obsahujúcom 50 mM NaCI. Frakcie obsahujúce RG-II boli nakoniec dialyzované proti vode pred lyofilizáciou.
Dve získané vzorky RG-II vykazovali absolútne homogénny profil pri vysokovýkonnej sterickej vylučovacej chromatografii (CES-HP, analýza na d'Och kolónach Shodex OHPak a KB-803 a KB-805 v sérii, vymývanie L1NO3 0,1 M pri 1 ml/min., refraktometrická detekcia) (obr. 4) a reprezentovali 4,4 % a 4,6 % úplných koloidov vzorky vína. Obsah úplného RG-II vzorky použitého vína bol vyšší ako 50 mg/l, pretože bolo potrebné pridať i RG-II obsiahnutý vo frakcii IV, ktorý nebol čistený do homogenity.
4. Zloženie frakcií čisteného RG-II z vína
Dve frakcie čisteného RG-II vykazovali obidve charakteristické zloženie RG-II (tabuľka I). Neodlišovali sa významným spôsobom pri analýze ich zloženia.
Frakcie II a III získané na DEAE-Macroprep boli analyzované na kolóne Superdex75HR (1 x 30 cm, vymývanie po 14 min.) umožňujúcej molekulárne vytriedenie. Táto analýza (obr. 5) ukazuje, že frakcia II obsahuje majoritne monoméry RG-II (vymývanie po 20,5 min., molekulárna hmotnosť 4750 Dr), zatiaľ čo frakcia III obsahovala viac ako 95 % diméru RG-II (vymývanie po 18,5 min., molekulárna
I hmotnosť 9500 Da).
RG-II frakcie II bol použitý v nasledujúcich pokusoch na vytriedenie a indukciu špecifických enzymatických degradačných účinkov.
Príklad 2
Získanie RG-II adsorpčnou chromatografiou z vína zlej kvality
Použitím vína zlej kvality sa získalo destiláciou vo vákuu a koncentrácii 300 hl červeného vína (zmes vín viacerých odrôd).
30833/H
Víno zlej kvality, získané destiláciou, bolo koncentrované odparením vo vákuu. Vínanové soli boli po dekantácii z tohto koncentrátu eliminované a potom bolo víno zlej kvality znova koncentrované rovnakým spôsobom. Celkovo bolo víno koncentrované tridsaťkrát a celkové koloidy z 1000 I získaného koncentrovaného vína zlej kvality boli precipitované pridaním 4 objemov etanolu 90 %. Precipitát bol vybratý v 300 I vody, čím sa získal roztok vína zlej kvality, používaný ako zdroj RG-II. Adsorpčná chromatografia
Produkty chromatografickej separácie sa získali pomoco·' CLHP na kolónach Shodex (pozri príklad 1) alebo na kolóne Superdex HR 75 (Pharmacia, výťažok 0,6 ml/min) spojených so systémom refraktometrickej detekcie.
a) Na aktívnom uhlí
Aktívne uhlie vykazuje silnú adsorpčnú kapacitu vzhľadom k množstvu molekúl. Podľa predkladaného vynálezu je aktívne uhlie použité kvôli svojej schopnosti oddeľovať RG-II od rôznych druhov pektických polysacharidov. Všetky polysacharidy sú v skutočnosti adsorbované aktívnym uhlím, ale RG-II je uvoľňovaný pri koncentráciách alkoholu nižších ako 40 %. Vyskúšali sa dva typy aktívneho uhlia.
Práškové aktívne uhlie
Jeden liter päťkrát zriedeného roztoku vína zlej kvality bol privedený do kontaktu so 100 g práškového aktívneho uhlia (Norit® SA+) po dobu 30 minút. Potom bol roztok filtrovaný, aby sa eliminovali čiastočky uhlíka. Uhlík <_vyšný na filtri bol suspendovaný v 1 I etanolu 40 % a zmes bola pravidelne miešaná po 30 minút a potom filtrovaná vo vákuu. Vymytý RG-II sa potom analyzoval pomocou CLHP. Analýza zloženia tejto frakcie (tabuľka 2) ukazuje, že stupeň čistoty RG-II je okolo 50 %. 1
Extrudované aktívne uhlie
Tento typ aktívneho uhlia vyžaduje pre adsorbciu RG-II oveľa vyššiu kontaktnú dobu (48 hodín) s roztokom vína zlej kvality, ale jeho výhodou je uľahčenie etapy filtrácie. Na druhej strane potrebná hmotnosť uhlíka je dvakrát väčšia v porovnaní s práškovým uhlím.
Jeden liter päťkrát zriedeného roztoku vína zlej kvality bol privedený do kontaktu s 200 g extrudovaného aktívneho uhlia (Norit® RO-08 Supra) po dobu 48 hodín. Po
30833/H eliminácii neadsorbovanej frakcie bola frakcia obsahujúca RG-II desorbovaná umiestnením do roztoku etanolu 40 % na dobu 24 hodín. Získaný RG-II vykazoval rovnaký stupeň čistoty ako RG-II získaný za použitia práškového uhlia.
b) Na zmiešanej živici polystyrén - divinylbenzénu (Résine, Relite® DIAION®SP411)
Živica Relite® DIAION®SP411 je syntetická nepolárna živica tvorená kopolymérmi polystyrénu a divinylbenzénu. Táto živica zadržiava RG-II na úkor ďalších polysacharidov, prítomných v rastlinných extraktoch. Tieto sú teda separované na dve frakcie adsorpčnou chromatografiou na živici Relite® DIAION® SP411; nezadržaná frakcia obsahuje polysacharidy odlišné od RG-II a zadržaná frakcia, ktorá obsahuje RG-II.
Čistenie RG-II základnej úrovne
Schéma čistenia RG-II základnej úrovne z vína zlej kvality je znázornená na obr. 6. 250 I päťkrát zriedeného roztoku vína zlej kvality (2,5 objemov kolóny) bolo rýchlo odfarbené filtráciou na aktívnom uhlí Norit® RO-08 Supra a potom prechádzalo kolónou 90 I Relite® DIAION® SP411 pri výťažku 4 l/hod. (kontaktná doba 2 hodiny pre adsorbciu RG-II na tomto chromatografickom nosiči). Kolóna bola premývaná 100 I vody. Nezadržaná frakcia je teda predstavovaná premývacou tekutinou. Vymývanie RG-II sa dosiahlo priechodom 100 I etanolu 20 % nasledovným premývaním kolóny 200 I vody.
Takto získaný RG-II (1 kg prípravku z celého objemu vína zlej kvality) vykazoval stupeň čistoty blízky 60 % (tabuľka 2). RG-II bol precipitovaný pridaním etanolu (koncová koncentrácia 40 % etanolu). Takto získaný precipitát obsahuje RG-II so stupňom čistoty 90 %.
Príklad 3
Získanie PG-II adsorpčnou chromatografiou z vína
Víno (červené víno vinič Merlot 94, biele víno Chardonnay 94) bolo dealkoholizované a koncentrované dvakrát odparením vo vákuu na rotačnom odparovacom zariadení. Dve frakcie 15 ml boli naliate na 50 ml Relite® DIAION® SP411 pri 25 ml/hod. Potom bola kolóna premývaná 50 I vody. RG-II potom bol vymytý 50 ml etanolu 20 % a kolóna bola premývaná 100 ml vody. Analýza OLHP (obr. 7) ukazuje, že RG-II je kvantitatívné adsorbovaný na živici, lebo nie je prítomný vo frakcii, nezadržanej na
30833/H živici a že je kvantitatívne získaný premytím etanolom 20 %. Stupeň čistoty roztoku RG-II je blízky 50 % u červeného vína (tabuľka 2) a 35 % u bieleho vína.
Príklad 4
Získanie RG-II adsorpčnou chromatografiou z muštu vínneho hrozna
Amberlite® XAD 2 je nepolárna živica, ktorá je kopolymérom polystyrénu a divinylbenzénu. 100 ml muštu bieleho viničového hrozna získaného rozdrvením bobúľ viniča Grenache bolo injektované do kolóny 100 ml živice XAD 2 vyváženej vo vode. RG-II bol vymytý jedným objemom metanolu 60 % a stupeň čistoty bol zhruba 40 %. Výsledky analýzy vymytej zložky sú uvedené v tabuľke 2.
Príklad 5
Získanie RG-II adsorpčnou chromatografiou z ovocnej šťavy a zo zeleniny
Rozpustné extrakty boli získané z 0,6 kg olúpaných a nastrúhaných jabĺk, paradajok a mrkvy v 200 ml kyseliny askorbovej (výsledná koncentrácia 3 mM). Použitá šťava ovocia a zeleniny sa získala enzymatickým stekutením spojeným pôsobením komerčných enzymatických prípravkov (Pectinex® Ultra SPL, Novo Ferment a Rapidase® Liq, Gist - Brocades) po dobu 24 hodín pri 45 °C. Reakcia skvapalňovania bola prerušená denaturáciou enzýmov pôsobením tepla. Pevné rezíduá boli eliminované centrifugáciou a supernatant bol použitý ako zdroj RG-II. Čistenie RG-II ovocia a zeleniny po enzymatickom stekutení
Šťavy ovocia a zeleniny, získané enzymatickým stekutením boli filtrované filtračným papierom pred priechodom kolónou (2,5 x 30 cm) vyváženou vodou, obsahujúcou 50 ml Relite® DIAION® SP411 pri 25 ml/hod. Kolóna bola premývaná 50 ml vody, nasledovalo vymývanie RG-II 50 ml etanolu 20 % a premývanie kolóny 100 ml vody. Týmto spôsobom získané RG-II vykazovali stupeň čistoty vyšší ako 80 %.
Výsledky ich analýzy sú podané v tabuľke 2.
Príklad 6
Selekcia mikroorganizmov degradujúcich RG-II v monomérnej forme
30833/H
RG-ll je univerzálnou zložkou bunečných stien rastlín a jeho degradácia v biosfére je zaručená mikroorganizmami prirodzených ekosystémov: pôdy, kompostov, kalov čistiacich staníc...
Vychádzajúc z prírodných vzoriek boli izolované dva kmene húb, patriacich dvom druhom Penicillium, ktoré používajú RG-ll ako jediný zdroj uhlíka a energie.
1. Kultivačné prostredie
Kultivačné prostredie použité na selekciu mikroorganizmov, používajúcich RG-ll ako zdroj uhlíka a energie bolo vytvorené spôsobom, ktorý vyplýva z tabuľky 3. Jedná sa o minerálne kultivačné prostredie, do ktorého bol pridaný roztok monomerického RGll vo výslednej koncentrácii od 2 mg/l do 10 mg/ml. Kultúry obsahujúce huby boli zbavené kontaminujúcich baktérií pridaním troch antibiotík do kultivačného prostredia: penicilín G, streptomycín a tetracyklín.
2. Selekcia mikroorganizmov používajúcich RG-ll ako zdroj uhlíka a energie
Vzorky boli odobraté z rôznych prírodných ekosystémov (poľnohospodárska alebo lesná pôda, rašelina, komposty, kaly z čistiacich staníc, ovocie v stave dekompozície...) a vložené do kultúry pri 25 °C až 37 °C v minerálnom kultivačnom prostredí upravenom na obsah 10 mg/ml monomerického RG-ll. Zakaždým, keď sa pozoroval rast mikroorganizmov, kultúry boli preočkované viacnásobne na tom istom prostredí. Tento postup dovolil izolovať najprv viacero kultúr, zaručujúcich ich rast na prostredí s RG-ll. Degradácia RG-ll v prostredí bola súčasne kontrolovaná vysokovýkonnou sterickou vylučovacou chromatografiou a nechali sa iba kultúry, v ktorých sa pozorovalo, že súčasne s rastom mikroorganizmov dochádza k degradácii RG-ll.
Mikroorganizmy zaručujúce degradáciu RG-ll boli izolované po rozdelení kultúr v Petriho miskách v gelovom prostredí, získanom pridaním agarózy 2 % do kultivačného prostredia (tabuľka 3) a obsahujúcom 2,5 mg/ml monomerického RG-ll. Po jednom týždni inkubácie pri 25 °C boli klony odobraté a naočkované do tekutého kultivačného prostredia, aby bolo možné overiť ich schopnosť degradácie RG-ll.
3. Voľba kmeňov degradujúcich RG-ll
Nakoniec sa získali dva kmene vláknitých húb, lebo vykazovali požadované vlastnosti:
30833/H
1. Rýchly rast perfektne korelovaný s ubúdaním RG-II v prostredí.
2. Úbytok množstva RG-ll bol pozorovaný súbežne s posunom jeho vymývacieho objemu pri HP-SEC, čo indikuje prítomnosť enzymatického účinku degradácie typu endo-hydrolázy.
3. Výsledná úroveň degradácie RG-ll dosiahla 70 % po jednom týždni kultivácie pri 25 °C.
Tieto dve kultúry, označené ako E a K boli následne použité na produkciu enzýmov degradujúcich RG-ll a skúmanie spôsobu enzymatického pôsobenia. Boli kultivované bez miešania za kontaktu so vzduchom pri 25 °C v tekutom kultivačnom prostredí obsahujúcom 5 mg/ml RG-ll a v prítomnosti troch antibiotík: penicilínu G, streptomycínu a tetracyklínu.
Príklad 7
Produkcia enzýmov degradujúcich RG-ll
Rôzne druhy Penicillium sú známe kvôli ich schopnosti produkovať a rozširovať v kultivačnom prostredí enzýmy degradácie polysacharidov. Bola overená schopnosť dvoch izolovaných kmeňov produkovať enzýmy degradácie RG-ll.
1. Výskum enzýmov degradácie RG-ll v supernatante kultúry
Kmene P. daleae LaV2 (deponovaný u CNCM ako N° 1-1578) a P. simplicissimum IPV1 (deponovaný u CNCM ako N° 1-1577) boli kultivované pri 25 °C v kultivačnom prostredí, obsahujúcom 2,5 mg/ml monomerického RG-ll. Po 96 hodinách kultivácie bol odobratý 1 ml kultúry, obsahujúcej rastúce mycelium, sterilné filtrovaný na filtri 0,22 pm a potom sa pridalo 2 mg/ml pôvodného RG-il. Prostredie obsahujúce enzýmy degradácie a RG-ll bolo nechané na inkubáciu pri 25 °C a po 0,20 a 45 hodinách boli odobraté frakcie 25 μΙ a analyzované pomocou CES-HP. Porovnanie medzi dvoma profilmi vymývania RG-ll v rôznych dobách inkubácie jasne preukázali absenciu účinku degradácie RG-ll v kultivačnom prostredí. Tieto účinky boli preto hľadané v cytoplazme a periplazme húb.
2. Produkcia enzýmov degradácie RG-ll v úplných bunečných extraktoch húb
Vyššie uvedené kmene P. daleae LaV2 a P. simplicissimum IPV1 boli kultivované pri 25 °C v 4 ml kultivačného prostredia obsahujúceho 6 mg/ml monomerického RG-ll.
30833/H
Po 140 hodinách kultivácie bolo mycelium odobraté centrifugáciou, po ktorej nasledovalo drvenie (so sklenenými guľôčkami) pri 4 °C po dobu 4 minúty v pufre MES (kyselina morfolino-etánsulfónová)/KOH 50 mM nastavenom na pH 6 s pridaním 1 mM PMSF (fenylmetylsulfonyl fluorid) a 1 mM DTT (ditiotreitol). Bunečný supernatant bol získaný centrifugáciou pri 10 000 g x 5 minút.
Prítomnosť enzýmov degradácie RG-ll v rozpustnom bunečnom extrakte bola testovaná pridaním pôvodného RG-ll v koncentrácii 2,5 mg/ml do supernatantu po rozdrvení a centrifugácii, inkubácii pri 25 °C nasledovanou chromatografiou CES-HP degradácie RG-ll. Analýza profilov v okamihoch 24 hodín a 48 hodín v porovnaní s pôvodným RG-ll (obr. 8 a obr. 9) ukazuje silnú degradáciu (50 %) RG-ll po 24 hodinách, ktorá pokračuje až do 48 hodín a dáva 40 % reziduálnych molekúl.
Enzymatické účinky, zaručujúce degradáciu RG-ll sú teda prítomné v rozpustnom bunečnom extrakte a môžu teda byť získané po rozdrvení húb. Dva izolované kmene Penicillium teda produkujú enzýmy degradácie rhamnogalakíuronanu II.
Príklad 8
Charakterizácia degradačných účinkov na RG-ll
Dva izolované a identifikované kmene Penicillium produkujú enzýmy, ktoré degradujú RG-ll v kultivačnom prostredí. Spôsob pôsobenia týchto enzýmov bol najprv skúmaný sledovaním degradácie polysacharidov v kultivačnom prostredí súbežne s rastom mikroorganizmov. Nevýhodou tohto prístupu je, že dovoľuje sledovať iba frakciu RG-ll, ktorá nie je asimilovaná hubou, avšak dovoľuje si uvedomiť, k akým účinkom dochádza a aký je ich spôsob pôsobenia.
1. Vykonanie kinetiky degradácie RG-ll pomocou Penicillium simplicissimum
Kmeň P. simplicissimum IPV1 bol kultivovaný v Erlenmeyercvej banke pri 25 °C v 10 ml kultivačného prostredia s 5 mg/ml monomerického RG-ll. V okamihoch 0, 96,132, 168 a 192 hodín boli odobraté frakcie 1 ml. pH kultivačného prostredia bolo potom upravené na 5 pridaním 20 μΙ HCi 1M. Nové odoberanie bolo vykonané po 360 hodinách a kultúra bola nakoniec zastavená po 400 hodinách inkubácie. Každá vzorka bola analyzovaná pomocou CES-HP (obr. 10), čo dovolilo sledovať degradáciu v priebehu rastu húb. Rôzne odobraté frakcie beli odsolené na kolóne (1 x 50 cm) Bio-Gel P-6, vyváženej pufrom octanu sodného 100 mM na pH 4.
30833/H
Po každej inkubačnej dobe bola vykonaná úplná štrukturálna analýza frakcie RG-II v procese degradácie. Táto analýza zahrňovala:
- Kvantifikatívne určenie pomeru degradácie RG-II.
- Určenie zloženia vzhľadom k neutrálnym glycidom a uránovým kyselinám.
- Určenie typu väzieb medzi rezíduami, vytvárajúcimi molekulu.
- Určenie dĺžky homo-galakturonického reťazca.
Súbor týchto analýz dovolil určiť stav molekuly RG-II po každú odobratú vzorku, a teda sledovať jej degradáciu v závislosti od času. Tieto výsledky ukazujú, že dochádzalo k enzymatickej degradácii molekuly v priebehu času.
2. Vykonanie kinetiky degradácie RG-II pomocou Penicillium daleae
Kvôli sledovaniu degradácie RG-II kmeňom P. daleae LaV2 bolo najprv 500 mg monomerického RG-II najprv zmydelnené (2 hodiny pri 4 °C v NaOH 50 mM), potom redukované (6 hodín pri 4 °C v prítomnosti 2,5 g NaBH4), aby bola označená extrémna redukčná schopnosť molekuly. Kmeň P. daleae ĽaV2 bol kultivovaný v Erlenmeyerovej banke pri 25 °C v 6 ml kultivačného prostredia s 5 mg/ml zmydelneného a redukovaného RG-II. V okamihoch 0, 72, ľ?0, 168, 240, 264, 336 a 384 hodín boli odobraté frakcie 0,6 ml. Každá vzorka bola analyzovaná pomocou CES-HP (obr. 11), čo dovolilo sledovať degradáciu v priebehu rastu húb. Rôzne odobraté frakcie boli odsolené na kolóne (1 x 30 cm) Superdex-75 HR vyváženej pri 0,6 ml/min pufrom mravčanom amónnym 30 mM na pH 5,2.
Po každej inkubačnej dobe bola vykonaná úplná štrukturálna analýza frakcie RG-II v procese degradácie. Táto analýza zahrňovala:
- Kvantifikatívne určenie pomeru degradácie RG-II.
- Určenie zloženia vzhľadom k neutrálnym glycidom a uránovým kyselinám vo forme trimetylsilylovaných derivátov po metanolýze.
- Určenie typu väzieb medzi rezíduami, vytvárajúcimi molekulu analýzou metylácie zahrňujúcej redukciu uránových kyselín lítium trietylborodeuteridom (Pellerin a kol., 1995 Carbohydr. Res. 277, str. 135- 143).
- Určenie dĺžky homo-galakturonického reťazca.
30833/H
Súbor týchto analýz dovolil určiť stav molekuly RG-II po každú odobratú vzorku, a teda sledovať jeho degradáciu v závislosti od času. Tieto výsledky ukazujú, že dochádzalo k enzymatickej degradácii molekuly v priebehu času.
3. Mechanizmus degradácie RG-II
Analýza zloženia (tabuľky 4 a 5) a typov väzieb pre každé rezíduum, nachádzajúce sa v molekule (tabuľky 6 a 7) dovoľuje sledovať stav reziduálnej molekuly RG-II v priebehu času. Vyplýva znej že RG-II je v prípade použitia dvoch kmeňov Penicillium sériou enzýmov, ktoré pôsobia sekvenčným spôsobom.
a) Prvá etapa degradácie spočíva v prerušení väzieb medzi rezíduom trojnásobne substituovanej beta-L-rhamnózy a rezídua alfa-L-fukózy a beta-D-apiózy, čo vedie k strate reťazca A (obr. 12), ktorý je asimilovaný hubou. Táto etapa sa odohráva v priebehu prvého dňa kultivácie súbežne so slabým skrátením homogalakturonického reťazca, ktorý sa mení v priemere z 8 - 9 rezíduí na 7 rezíduí a s čiastočnou stratou koncových rezíduí arabinofuranózy (B7 a D2) a rhamnopyranózy (C2).
b) Úplná eliminácia rezíduí A2 až A5 v reťazci A nesenom rezíduom beta-D-apiózy sa zdá zvyšovať odolnosť molekuly RG-II voči enzymatickej degradácii, lebo sa pozoruje druhá fáza degradácie, ktorá sa vyznačuje:
- Silným skrátením homo-galakturonického reťazca, ktorý sa zmenší na v priemere 4 rezíduá kyseliny galakturonovej.
- Stratou rezídua A1.
- Modifikáciami týkajúcimi sa neredukujúceho zakončenia reťazca B, stále viazaného k homo-galakturonickému reťazcu prostredníctvom beta-D-apiózy, menovite kvantitatívnou stratou koncového arabinofuranózového rezídua a stratou rezíduí alfa-L-rhamnózy (rezídua B6 a B7).
- Rezíduá Kdo a Dha sa zdajú byť čiastočne ovplyvnené enzymatickou degradáciou.
Všetky pozorované degradácie v priebehu tejto druhej fázy môžu byť získané pomocou známych enzýmov: beta-D-apiozidázy, beta-L-arabinozidázy, alfa-Lrhamnozidázy, endo- alebo exo-polygalakturonázy.
30833/H
Reziduálna molekula na konci rastu húb zodpovedá kvantitatívne reťazcu B (rezídua Βί až B5), rezíduám Kdo (C1) a Dha (D1) neseným kyslým oligosacharidom stredného stupňa polymerizácie 4 a predstavuje 20 až 30 % pôvodnej molekuly RG-II (obr. 13).
Prvá etapa, v ktorej dochádza k dvom enzymatickým účinkom typu endo- je teda kľúčová etapa, ktorá dovoľuje degradáciu molekuly RG-II. Kvantitatívne uvoľnenie reťazca A robí v skutočnosti molekulu citlivou na pôsobenie enzýmov so známymi spôsobmi pôsobenia, ktoré sa často nachádzajú v komerčných enzymatických prípravkoch.
Produkcia enzýmov s účinkom typu endo-beta-L-rhamnopyranozyl-(1->3')-Dapiofuranozyl hydrolázy (1) a endo-alfa-L-fukopyranozyl-(1-»4)-L-rhamnopyranozyl hydrolázy (2) kmeňom P. daleae LaV2 a P. simplicissimum IPV1 je teda rozhodujúca etapa, ktorá hubám dovoľuje zaistiť si svoj rast použitím RG-II. Je to teda použitie týchto enzýmov endo-beta-L-rhamnopyranozyl-(1-+3')-D-apiofuranozyl hydrolázy a endo-alfa-L-fukopyranozyl-(1-»4)-L-rhamnopyranozyl hydrolázy, ktoré dovoľuje zosilnenú enzymatickú degradáciu RG-ll. Špecifita účinku (1) je silnejšia, lebo reťazec B nie je ovplyvnený jeho hydrolytickým účinkom, zatiaľ čo je viazaný k homogalakturonickému reťazcu prostredníctvom rhamnozyiapiozidovej väzby rovnakého typu. Tento rozdiel v chovaní účinku (1) vzhľad om k reťazcom A a B môže byť vysvetlený:
- buď rozdielom medzi substituentmi rhamnózy: jeden reťazec viazaný v C3 v prípade B, jeden reťazec viazaný v C34 a dva monosacharidy viazané v C2 a C3 v prípade A,
- alebo rozdielnou lokalizáciou týchto dvoch reťazcov vo vnútri molekuly RG-ll.
Prítomnosť jedného alebo druhého z týchto účinkov v enzymatickom prípravku dovoľuje uvoľnenie reťazca A RG-ll a rieši teda problém nedegradovateľnosti RG-ll zvyčajnými enzýmami z pektinolytických prípravkov. Ostatné enzýmy, dovoľujúce ešte viac zosilnenú degradáciu RG-ll totiž zasahujú až po oddelení reťazca A účinkom vyššie menovaných enzýmov. V tejto druhej etape degradácie zasahujú enzýmy s účinkami:
- beta-D-apiozidázy,
30833/H
- alfa-L-arabinozidázy,
- alfa-L-rhamnozidázy,
- endo-polygalakturonázy,
- exo-polygalakturonázy.
Príklad 9
Získanie prípravku dimerického RG-ll a degradácia pomocou Peniciliium daleae
Kmeň P. daleae bol kultivovaný v prostredí obsahujúcom 5 ng/ml prípravku RG-ll, získaného priechodom koncentrátov vína zlej kvality cez živicu Relite® DIAION® (príklad 2). Ten prípravok obsahoval zhruba 60 % RG-ll, ktorý sa nachádza v dimerickej podobe, ako ukazuje analýza na kolóne Superdex -75 HR. Sledovanie kultivačného prostredia huby chromatografiou CLHP (obr. 14) ukazuje silnú degradáciu RG-ll. Nečistoty s najvyššou molekulárnou hmotnosťou (hlavne manany, prítomnej v koncentráte vina zlej kvality) nie sú degradované.
Kmene Peniciliium izolované na monomerickom RG-ll teda vykazujú schopnosť degradovať RG-ll vo forme diméru. Enzýmy, ktoré predstavujú predmet vynálezu, sú teda účinné na obidve formy molekuly.
Príklad 10
Získanie enzymatického prípravku degradujúceho RG-ll
Enzymatický prípravok obsahujúci účinok degradácie RG-ll, špeciálne účinky endobeta-L-rhamnopyranozyl-(1->3')-D-apiofuranozyl hydrolázy a endo-alfa-Lfukopyranozyl-(1-»4)-L-rhamnopyranozyl hydrolázy, bol získaný z kultúry P. simplicissimum IPV1 získanej nasledujúcim spôsobom.
120 ml kultivačného prostredia, obsahujúceho 6 mg/ml čisteného RG-ll bolo rozmiestnené do 8 Petriho misiek. Kmeň P. simplicissimum PIV1 bol kultivovaný pri 25 °C po dobu 6 dní. Mycelium (v čerstvom stave 1,2 g) bolo potom získané centrifugáciou nasledovanou rozdrvením, ako bolo popísané vyššie (príklad 3) v pufre MES/KOH 50 mM nastavenom na pH 6, obsahujúcom 1 mM PMSF a DTT. Celkový enzymatický extrakt (6 ml) bol nakoniec získaný centrifugáciou a použitý v nasledujúcich príkladoch.
30833/H
Príkladu
Degradácia čisteného RG-II enzymatickým extraktom P. simplicissimum IPV1
Nasledujúca zmes bola nechaná na inkubáciu pri teplote 25 °C v prítomnosti 0,02 % NaN3:
- 500 μΙ pufra octanu sodného 50 mM, pH 4,8,
- 12,5 μΙ roztoku čisteného RG-II (tabuľka 1, frakcia II) 200 ml/ml,
- 25 μΙ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1 získaného podľa príkladu 5.
Odoberanie 25 μΙ bolo vykonávané po 0, 72, 120 a 148 hodinách a vzorky boli analyzované pomocou CES-HP. Prítomnosť enzýmov s účinkom endo-beta-Lrhamnopyranozyl-(1-*3')-D-apiofuranozyl hydrolázy alebo endo-alfa-Lfukopyranozyl-(1->4)-L-rhamnopyranozyl hydrolázy bola potvrdená degradáciou RG-II (obr. 15). Degradačný profil je naostatok porovnateľný s profilom, získaným sledovaním supernatantu kultúry P. simplicissimum (obr. 10). Produkty degradácie molekuly RG-II sa objavujú vo frakcionačnej oblasti nízkych molekulových hmotností (obr. 15).
Príklad 12
Degradácia polysacharidu vína enzymatickým extraktom P. simplicissimum IPV1
Úplný enzymatický extrakt, obsahujúci enzýmy degradácie RH-II, špeciálne účinky typu endo-beta-rhamnopyranozyl-(1->3')-D-apiofuranozyl hyd’olázy alebo endo-alfaL-fukopyranozyl-(1->4)-L-rhamnopyranozyl hydrolázy bol skúmaný na svoju schopnosť degradovať RG-II, prítomný vo víne.
Úplné polysacharidy červeného vína (vinič Carignan noir) boli získané ultrafiltráciou vína (2 ml) na membráne Centrikon 30 (Amicon, USA). Filtrát (100 μΙ) bol vybratý 1,9 ml pufra octanu 50 mM pH 4,8. Nasledujúce vzorky boli nechané na inkubáciu pri 25 °C v prítomnosti 0,02 % NaN3.
a: 200 μΙ filtrátu obsahujúceho úplné polysacharidy vína, μΙ vody, μΙ pufra MES drvenia
30833/H b: 200 μΙ_ filtrátu obsahujúceho úplné polysacharidy vína, μΙ vody, μΙ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1, získaného podľa príkladu 9.
c: 200 μΙ filtrátu obsahujúceho úplné polysacharidy vína, μΙ Pectinex®Ultra Sp-L (Novo Ferment, Švajčiarsko), μΙ pufra MES drvenia, d: 200 μΙ filtrátu obsahujúceho úplné polysacharidy vína, μΙ Pectinex® Ultra Sp-L, μΙ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1, získaného podľa príkladu 9.
Po 48 hodinách bolo odobratých 25 μΙ každej vzorky a analyzované pomocou chromatografie CES-HP. Z analýzy výsledkov (obr. 16 a 17) vychádza:
- Degradácia RG-II vína (charakteristický vrchol vymývania po 18,2 minútach) enzymatickým extraktom P. simplicissimum IPV1 (obr. 16),
- Degradácia ďalších polysacharidov vína (manoproteínov, arabinanov a arabinogalaktananov) komerčným enzymatickým prípravkom Pectinex® Ultra SpL, zatiaľ čo charakteristický vrchol RG-II zostáva neporušený (obr. 17).
- Komplementárny účinok dvoch enzymatických prípravkov bol potvrdený (obr. 17) degradáciou súboru polysacharidov vína vo vzorke c.
Úplný enzymatický extrakt P. simplicissimum IPV1 obsahujúci enzýmy typu endobeta-L-rhamnopyranozyl-(1->3')-D-apiofuranozyl hydrolázy alebo endo-alfa-Lfukopyranozyl-(1-»4)-L-rhamnopyranozyl hydrolázy teda obsahuje enzymatické účinky, ktoré chýbajú v komerčných enzymatických prípravkoch vyrábaných z Aspergillus aculeatus a je bohatý na účinky celulolytické, hemicelulázické a pektinolytické, špeciálne účinok rhamnogalakturonázy (Schols a kol., 1990, Carbohydr. Res. 206, str. 105 - 1i 5).
Pridanie enzýmov podľa predkladaného vynálezu spolu s ďalšími pektinolytickými účinkami vedie k zosilnenej degradácii polysacharidov vína a dovoľuje teda zlepšenie filtrovateľnosti a bráni vytváraniu problémov s koloidmi a precipitátmi.
30833/H
Príklad 13
Degradácia polysacharidu jablčného muštu enzymatickým extraktom P. simplicissimum IPV1
Ovocná šťava z jablka bola pripravená z 1 kg jabĺk (odroda Starking). Celé jablká boli rozsekané na plátky o hrúbke 1 cm, bol pridaný 1 g kyseliny askorbovej a 500 μΙ enzymatického prípravku Rapidase® Liq (Gist Brocades, Francúzsko) a nechané 2 hodiny za miešania pri 50 °C. Ovocie potom bolo stekutené pôsobením komerčného enzymatického prípravku a šťava sa nakoniec získala centrifugáciou. Prípravok Rapidase® Liq obsahuje zvýšené množstvo účinkov typu pektinázy (pektín, lyáza, endo- a exo-polygalakturonáza, rhamnogalakturonáza, arabináza, ...), hemicelulózy (galaktanázy, xylanázy,...) a celulázy.
1,5 ml čírej jablčnej šťavy bolo uLrafiltrované na membráne Centricon 30 (Amicon, USA). Filtrát (100 μΙ) bol vybraný 1,4 ml pufra octanu 50 mM pH 4,8 a nasledujúce vzorky boli nechané na inkubáciu pri 25 °C v prítomnosti 0,02 % NaNg:
a: 200 μΙ filtrátu obsahujúceho úplné polysacharidy jablčnej šťavy, μΙ vody, b: 200 μΙ filtrátu obsahujúceho úplné polysacharidy jablčnej šťavy, μΙ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1.
Po 48 hodinách bolo z každej vzorky odobraté 25 ml na vykonanie analýzy chromatografiou CES-HP.
Analýza výsledkov (obr. 18) ukazuje komplementárny účinok enzýmov degradácie RG-II, lebo pridanie enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1 dovoľuje zosilnenú degradáciu reziduálnych polysacharidov po spracovaní jabĺk prípravkom Rapidase® Liq. Špeciálne charakteristický vrchol RG-II (vymývanie po 18,2 min.) je podrobený silnej degradácii. Navyše degradácia štruktúr s najvyššími molekulárnymi hmotnosťami, odolnými na účinok enzýmov, prítomnými v Rapidase® Liq naznačuje, že tieto frakcie tiež obsahujú fragmenty RG-II.
Úplný enzymatický extrakt P. simplicissimum IPV1, v ktorom boli preukázané účinky typu endo-beta-L-rhamnopyranozy!-(1->3')-D-apÍofuranozyl hydrolázy alebo endoalfa-L-fukopyranozyl-(1—>4)-L-rhamriopyranozyl hydrolázy, obsahuje teda enzymatické účinky, ktoré nie sú prítomné v komerčných enzymatických prípravkoch
30833/H vyrábaných z Aspergillus niger a μ upísaných ako prípravky, majúce súbor známych celulolytických, hemicelulázických a pektinolytických účinkov 'do toho rátajúc účinky rhamnogalakturonázy). Komplementárny a doplňujúci účinok enzýmov degradácie RG-II je teda týmto pokusom dostatočne preukázaný.
Príklad 14
Macerácia ovocia a zeleniny enzymatickým extraktom P. simplicissimum IIPV1
Účinok disociácie rastlinných tkanív u úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1 bol preukázaný na nasledujúcom ovocí a zelenine:
- červená repa,
- mrkva,
- zemiaky „Bintge,,
- jablká Golden.
Fragmenty s rozmermi 158 x 4 x 2 mm každého ovocia alebo zeleniny boli umiestnené v 2 ml pufra octanu 50 mM pH 4,8 a k nim bolo pi .dané:
- 200 μΙ pufra MES drvenia kvôli corovnávacím pokusom,
- 200 μΙ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1 pre enzymatické pokusy.
Rôzne vzorky boli umiestnené na nkubáciu pri 25 °C v prítomnosti NaN3 po dobu 72 hodín a potom boli intenzívne miešané vírom (2 x 10 sekúnd) a fotografované. Z analýzy výsledkov vyplynulo:
- Takmer úplný rozpad tkaniva u červenej repy a mrkvy (obr. 19).
- Maceračný účinok, sprevádzaný objavením sa buniek v suspenzii u zemiakoy a jabĺk (obr. 20). ' .
Úplný enzymatický extrakt extraklj P. simplicissimum IPV1 obsahujúci účinky typu endo-beta-L-rhamnopyranozyl-(1—>3')-D-apiofuranozyl hydrolázy alebo endo-alfa-Lfukopyranozyl-XI-^-L-rhamnopyra íozyl hydrolázy má teda schopnosť disociácie rastlinných tkanív.
30833/H
Priemyselná využiteľnosť
Enzymatický účinok degradácie RG-II môže byť teda použitý buď ako taký a/alebo v kombinácii s ďalšími enzýmami / tekutej fáze a/alebo na pevných nosičoch a dovoľuje:
- degradáciu zvýšeného stupňa, napríklad na 70 %, RG-II v šťavách ovocia, zeleniny a ich derivátoch, čím sa dosiahne lepšia filtrovateľnosť, uľahčí sa príprava koncentrátov štiav a uľahčujú sa fenomény čistenia a zaisťuje sa dobrá stabilita výsledných produktov,
- čistenie nosičov mikro- s uHmfiltrácie, používaných pri filtrácii štiav ovocia, zeleniny a ich derivátov.
Tieto enzymatické účinky uľahčujú degradáciu bunečných stien rastlín a sú teda použiteľné buď samotné a/alebo v kombinácii s ostatnými enzýmami vo všetkých aplikáciách, ktoré vyžadujú mace áciu, stekutenie alebo úplnú alebo čiastočnú hydrolýzu rastlinných tkanív, najmä:
- v príprave produktov typu maceráz, ako sú ovocné nektáre, pyré, želé a ovocné a zeleninové koncentráty a ich derváty, do toho rátajúc i víno,
- v príprave štiav a aromatických báz ovocia, zeleniny a ich derivátov stekuccvaním, do toho rátajúc i víno a prípravu piva,
- vo výrobe pektínov vychádzajúc z rastlinných rezíduí ako sú bulvy červenej repy, z pevných rezíduí po lisovar í odučia a podobne,
- vo výrobe potravy pre zvieratá z rastlinných materiálov,
- vo výrobe celulózy z rastlín pre textilný priemysel (najmä s bavlnou ako východiskovým materiálcm) a vo výrobe papiera,
- vo výrobe oligosacharidov s elicitickým účinkom vyvolávajúcim obrannú reakciu rastlín, pričom tieto oligosacharicy môžu byť použité ako fytosanitárne produkty.
30833/H
Tabuľka I Zloženie dvoch frakcií RG-II izolovaných z vína
Stav molekuly Frakcia II Frakcia III
Monomér Dimér
Proteíny3 0,6 0,6
Urónové kyseliny3 36,9 39
Neutrálne cukry3 27,3 24,9
Metanol3 1,4 1,3
Kyselina octová3 1,6 1,8
Rhamnóza0 31,8 35,4
2-O-CH3-fukóza° 6,3 6,5
Fukóza0 3,7 5,2
2-O-CH3-xylóza° 4,8 4,8
Apióza0 7,4 7,5
Arabinóza0 25 23,7
Galaktóza0 19,1 15,8
Kyselina acerová0 1,2 2,2
Kyselina galakturonová0 38,2 37,2
Kyselina glukuronová0 3,3 3,4
Kdo° 4,4 5
Dha° 2,6 2,5
a % sušiny b % molárnych
30833/H
Tabuľka 3 Kultivačné prostredie vláknitých húb
Minerálne prostredie
NH4NO3 2 g/l
K2HPO4 1 g/l
MgSO4, 7 H2O 0,5 g/l
KCI 0,5 g/l
Síran železitý 10 mg/l
Hellerov roztok
ZnSO4 1 g/l
MnSO4, H2O 0,1 g/l
CuSO4, 5 H2O 0,03 g/l
AICI2 0,03 g/l
NiCI2, 6 H2O 0,03 g/l
KJ 0,01 g/l
Kys. boritá 1 g/l
Vitamínový roztok
Vit. B1 0,08 g/l
Vit. H 0,08 g/l
Vyhotovenie kultivačného prostredia
Minerálne prostredie 1 ml
Hellerov roztok 1 μΙ
Vitamínový roztok 1μΙ
Streptomycín (50 mg/ml) 2μΙ
30833/H
Tabuľka 3 Kultivačné prostredie vláknitých húb
Tetracyklín (5 mg/ml) 2 μ!
Penicilín (10 000 J/ml) 10 μΙ
Polysacharid 5 mg/ml
Kultúra realizovaná pri teplote okolia (25 °C), za svetla J
30833/H
Tabuľka 4 Zloženie (v % východiskovej sušiny) RG-'! v priebehu kinetiky degradácie pomocou P. simplicissimum
Východiskové 96 h 132 h
Neutrálne monosacharidy 28,2 28,5 23,1
Urónové kyseliny 40,4 35,3 25,9
Neutr. monosach.+ urónové kys. 68,6 63,8 49,0
Monosacharidy Rezíduum č.
2-O-Me-fukóza B4' 2,1 2,4 2,1
Rhamnóza A2,B2,B6,D2 9,4 9,1 7,2
Fukoza A3 1,1 1,1 0,6
2-O-Me-xylóza A3' 1,4 1,6 1,2
Arabinóza B5,B7,C2 6,2 6,0 5,5
Apióza A1.B1 2,2 2,7 3,5
Galaktóza A5,B4 5,5 5,0 3,5
Kys. galakturonová A2',A2, poly- GalA 23,3 24,2 19.5
Kys. glukuronová A4 3,2 3,0 1,8
str. dp homogalakturonového reťazca 8-9 7-8 7
% reziduálnej molekuly 100 93 71
30833/H
Tabuľka 4
168 h 192 h 400 h
Neutrálne monosacharidy 19,1 18,5 10,3
Urónové kyseliny 18,1. 16,4 9,9
Neutr. monosach.+ urónové kys. 37,2 34,9 20,2
Monosacharidy Rezíduum č.
2-O-Me-fukóza B4' 2,0 2,1 2,0
Rhamnóza A2,B2,B6,D2 6,4 5,4 2,9
Fukoza A3 0,1 0,1 0,0
2-O-Me-xylóza A3' 0,1 0,0 0,0
Arabinóza B5,B7,C2 5,0 4,5 1,5
Apióza A1,B1 2,4 2,2 1,4
Galaktóza A5,B4 2,7 2,4 2,5
Kys. galakturonová A2',A2, poly- GalA 18,9 15,2 8,5 I
Kys. glukuronová A4 0,3 0,2 0,0
str. dp homogalakturonového reťazca 6-7 6 4
% reziduálnej molekuly 54 51 29
30833/H
Tabuľka 5 Zloženie v počte rezíduí RG-II v priebehu kinetiky degradácie pomocou P. daleae
Výcho- diskový 120 h 168 h 240 h 264 h 336 h 384 h
Rhamnóza 4,0 3,2 3,0 2,6 2,1 0,7 0,2
2-O-Me-fukóza 1,0 1,0 1,0 0,8 0,8 0,2 0,1
Fukóza 1,0 1,0 1,0 0,7 1,0 0,5 0,6
2-O-Me-xylóza 1,0 1,0 1,0 0,5 0,3
Apióza 2,0 2,0 1,9 1,7 1,5 0,4 0,2
Arabinóza 3,0 2,6 2,2 1,8 1,4 0,4 0,2
Galaktóza 2,0 1,8 1,3 1,1 0,9 0,2 0,2
Kys. galakturonová 10,5 10,5 7,9 7,5 7,7 4,1 4,0
Kys. glukuronová 1,0 1,4 0,8 0,3 0,3
Kys. acerová 0,6 0,6 0,6 0,6 0,6 0,3 0,2
Kdo 0,9 1,9 0,9 0,5 0,9 0,7 0,6
Dha 0,7 0,1 0,3 0,3 0,6 0,6 0,5
Celkovo 27,7 27,0 21,9 18,3 18,1 8,1 6,8
stredná dp homogalakturo- nového reťazca 8,5 8,0 8,0 7,5 6,0 4,5 3,5
% reziduálnej molekuly 100 97 79 66 65 29 25
30833/H
Tabuľka 6 Analýza metylácie a väzieb rezíduí vytvárajúcich molekulu RG-II v priebehu degradácie pomocou P. simplicissímum x
CM cn x
o so x
CM n
x
Ό
OS τί
O
X υ
>
CM — O O
OO — O ° v-l
Os vq oo os sr Λ o o o o o o o o co o o r- oo — S O o o — o o o — o o’ o O O 0 — 0 °°. o — r-. ri O X o* o o so u-ι O p~ r- tí· O O CM vs os xf — o /1
- O — O o o cm* — o* o* o o 0—0 vs_ vs xr vs O oo o — o r, x, ?, 0.32-3 %
CM
CO oo O O Γ-ζΌ O CM/Ί Ά ''’.’ľ't.
_?o —~ o O CM* F-/O O o ® 0 — 0
3 T3 H Ό CM SO CM m m 5 Φ co « < r·· ·< t—*
N Q «
d)
K
m
G >s
X
N :<D >
Oj >1
E-i k
Φ
4J s<D
H ►i
P
Φ £
o.
T T11Ť T ΪΤΤ • *—'x-/ · »
-Λ » ’ ♦ A, c co <
o o o x*
o —' O T
Q.
cd
x
(X
5SS- 1 co Ť φ
3 Ό
3 ‘CD
VS Tí* p Ό
X o o' 'n CD
O — E U. 05
Φ
t— X3
JiC 3
E X Φ
U1 v-> — ΌO* — O* o . T3 CD c__ X ,Φ 'L·.
X Q.
2 >
X & ‘CD X X
c Φ
ľ? ” ľ? < « < CD +-» ίο o E φ x
Q. CD
> •CD
X en
O o
2 N
t T T *'*' ·—< ω E ‘CD u_ O
'T*' * x-z o v
o ô o «5
O «4 . rt <3 λ 5SS
CM CO cM*CX
O (2 • o
Φ 3 co
CM* CM ?“ CM OS :f cm 1 T
o.
o s
ó
CM φ ’φ cM* co
Ť T
-C = £ o E Qí
*Sr <ď <í% tí. >» ><í Ί3 O 'Ó 3 73
< •AX·? S 1 •Φ Φ o O
τ\ os<n4 < CO co vS vo
CM* cm 01 OS* xf CM cm CO CM*
Í5 o
E >
-ω x
(O
D
O
V) >.
Ό φ
en
Φ
Φ
O
E >
CM ω
>6 □
•σ
N
Φ
2,3,4-Me3-Rha = 1,5-di-O-acetyl-2,3,4-tri-O-metyl-rhamnitol, atď. p = pyranóza, f = furanóza
Tabuľka 7 Analýza metylácie a väzieb rezíduí vytvárajúcich molekulu RG-II
v priebehu degradácie pomocou Penicillium daleae
Metyléter Väzba Východ 72 h 120 h 160 h 240 h 264 h
2,3,4-Rha Rhfl/)-» 1.4 1.2 1 1.2 1.2 1.2
3,4-Rlia ->2-Rhap-> 1.1 0.7 0.5 0.4 0.3 0.4
2,4-RJia -»3-Rhap-> 1 1 1 1 1 1
3-Rha —>2,4-Rhnp-> 0.4 0.1 0.3
Rha -»2,3,4-Rhap-+ 1.2 1.2 1.2 1.1 0.8 0.3
2,3,4-Fuc 2-G-CH3-Fuc-> 0.8 0.7 0.7 0.8 0.7 0.8
2-Fuc —>3,4-F»c—> 0.6 0.7 0-7 0.6 0.3 0.2
2,3,4-Xy) 2-0-CH3-Xyl-> 0.6 0.6 0.5 0.5 0.3 0.1
2,3-Api -»3'-Api-> '2.2 2.2 2.3 2.2 2.2 1.8
2,3,5-Ara Ara/—> 1.6 1.4 1.1 1.3 0.8 0.8
3,4-Ara ->2-Arap-> 0.3 0.3 0.3 0.3 0.5
4-Ara ->2,3-Arňp—> 0.6 0.7 0.6 0.6 0.4 0.2
2,3,4,6-Gal Galp—> 0.5 0.5 0.5 ' 0.4 0.3 0.2
2,6-Gal. . -»3,4-GaIp-> 0.6 0.6 0.5 0.5 0.4 0.3
3,6-Gal ->2,4-Gal/>-> 1.0 1.2 1.1 1.1 1.0 0.9
'3-Accr —>2-AccrA-> 0.5 0.5 0.3 0.5 0.6 0.6
2,3,4-GalA GalpA—> 2.6 3.0 3.0 2.6 1.9 1.4 1' . -
2,3-GaJA —>4-GaIpA—» 2.0 2.3 2.1 1.8 1.7 1.5
2-GiiIA ->3,4-GídpA-> 1.5 1.5 1.5 . 1.5 1.3 1.3
3-GalA -»2,4-Gal/JA-» 1.1 1.2 1.3 1.3 1.8 1.6
GalA · —>2,3,4-GalpA—> 0.8 0.9 0.8 0.7 0.3 0.2
1,2,3,5-GalA —>4-Ga!/>A rcduit 1.0 . o.y 0.8 0.7 0.7 0.8
2,3,4-GlcA GIc/jA—> 0.2 1
3,4GlcA —>2-GlcpA— 1.1 1.4 1.3 1.1 0.6 0.4
Výsledky sú dané v molárnych pomeroch vypočítaných vzhľadom k 1 rezíduu ->3)Rhap-(1->, rezíduu B2 v molekule RG-II, ktorá zostáva nemenná v priebehu degradácie 2,3,4-Me3-Rha = 1,5-di-0-acetyl-2,3,4-tri-0-metyl-rhamnitol, atď.
30833/H

Claims (32)

1. Enzým, vyznačujúci sa tým, že vykazuje degradačný účinok na rhamnogalakturonan II (RG-II) a jeho deriváty.
2. Enzým podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že vykazuje účinok typu endohydrolázy.
3. Enzým podľa nárokov 1 a 2, vyznačujúci sa tým, že vykazuje účinok endobeta-L-rhamnopyranozyl-(1-»3')-D-apiofuranozyl hydrolázy.
4. Enzým podľa nárokov 1 a 2, vyznačujúci sa tým, že vykazuje účinok endoalfa-L-fukopyranozyl-(1 ->4)-L-rhamnopyranozyl hydrolázy.
5. Mikroorganizmus, najmä huba, vyznačujúci sa tým, že vykazuje degradačný účinok na RG-II a jeho deriváty.
6. Huba podľa nároku 5, vyznačujúca sa tým, že je druh Penicillium.
7. Kmeň húb podľa niektorého z nárokov 5 a 6, vyznačujúci sa tým, že je deponovaný u CNCM pod číslom 1-1578 (LAV2).
8. Kmeň húb podľa niektorého z nárokov 5 a 6, vyznačujúci sa tým, že je deponovaný u CNCM pod číslom 1-1577 (IPV1).
9. Enzým podľa niektorého z nárokov 1 až 4, vyznačujúci sa tým, že môže byť produkovaný kmeňom podľa niektorého z nárokov 5 až 8.
10. Enzymatický prípravok, vyznačujúci sa tým, že obsahuje enzým podľa niektorého z nárokov 1 až 4 a 9.
11. Spôsob výroby enzýmu alebo enzymatického prípravku podľa niektorého z nárokov 1 až 4 a 9 a 10, zahrňujúci nasledujúce etapy:
- kultivácia mikroorganizmov podľa niektorého z nárokov 5 až 8 v kultivačnom prostredí upravenom na produkciu enzýmov podľa niektorého z nárokov 1 až 4,
- získanie enzýmov alebo enzymatického prípravku zo supernatantu kultúry alebo zo supernatantu drviny mikroorganizmov.
30833/H
12. Spôsob podľa nároku 11, vyznačujúci sa tým, že zahrňuje nasledujúce etapy:
- kultiváciu mikroorganizmov podľa niektorého z nárokov 5 až 8 v kultivačnom prostredí upravenom pre mikroorganizmy obsahujúce RG-II alebo niektorý z jeho derivátov,
- získanie mikroorganizmov,
- rozdrvenie mikroorganizmov,
- eliminácia nerozpustného materiálu a
- získanie supernatantu obsahujúceho enzým alebo enzýmový prípravok.
13. Spôsob získania RG-II z extraktu rastlinného pôvodu, zahrňujúci nasledujúce etapy:
- separácia makromolekúl obsahujúcich uvedený extrakt a
- chromatografia iónovou výmenou pri pH vyššom ako 4.
14. Spôsob podľa nároku 13, vyznačujúci sa tým, že separácia je vykonávaná precipitáciou alebo ultrafiltráciou.
15. Spôsob podľa niektorého z nárokov 13 a 14, vyznačujúci sa tým, že chromatografia iónovou výmenou je nasledovaná sterickou vylučovacou chromatografiou.
16. Spôsob získania RG-II z extraktov rastlinného pôvodu zahrňujúci aspoň jednu adsorpčnú chromatografiu na nosiči, zadržiavajúcom RG-ll.
17. Spôsob podľa nároku 16, vyznačujúci sa tým, že adsorpčná chromatografia je vykonávaná na aktívnom uhlí alebo na polystyrén/ divinylbenzénovej živici.
18. Prípravok RG-ll, ktorý môže byť získaný spôsobom podľa niektorého z nárokov 13 až 17, vyznačujúci sa tým, že obsahuje aspoň 95 % monomérov RGll.
19. Prípravok RG-ll, ktorý sa môže získať spôsobom podľa niektorého z nárokov 13 až 17, vyznačujúci sa tým, že obsahuje aspoň 80 %, výhodne viac ako 95 % dimérov RG-ll.
3G833/H
20. Spôsob selekcie mikroorganizmov, najmä hu.j, na ich schopnosť degradovať RG-ll, vyznačujúci sa tým, že uvedené mikroorganizmy sa nechajú rásť na prispôsobenom kultivačnom prostredí obsahujúcom RG-ll, pričom uvedený RG-ll je možné získať spôsobom podľa niektorého z nárokov 13 až 17.
21. Kultivačné prostredie pre mikroorganizmy, vyznačujúce sa tým, že obsahuje RG-ll, získaný spôsobom podľa niektorého z nárokov 13 až 17.
22. Spôsob podľa niektorého z nárokov 11 alebo 12, vyznačujúci sa tým, že RG-ll je získaný spôsobom podľa niektorého z nárokov 13 až 17.
23. Použitie enzýmu alebo enzymatického prípravku podľa niektorého z nárokov 1 až 4, 9 a 10 alebo získaného spôsobom podľa niektorého z nárokov 11 a 12 pre degradáciu alebo modifikáciu RG-ll alebo jeho deriv átov.
24. Použitie enzýmu alebo enzymatického prípravku podľa niektorého z nárokov 1 až 4, 9 a 10 alebo získaného spôsobom podľa niektorého z nárokov 11 a 12 na zlepšenie filtrovateľnosti a uľahčenia prípravy koncentrovanej šťavy alebo kvôli uľahčeniu čistenia.
25. Použitie enzýmu alebo enzymatického prípravku podľa niektorého z nárokov 1 až 4, 9 a 10 alebo získaného spôsobom podľa niektorého z nárokov 11 a 12 na čistenie filtračných nosičov použitých na filtráciu ovocných alebo zeleninových štiav a ich derivátov.
26. Použitie enzýmu alebo enzymatického prípravku podľa niektorého z nárokov 1 až 4, 9 a 10 alebo získaného spôsobom podľa niektorého z nárokov 11 a 12 pre maceráciu, stekutenie alebo úplnú alebo čiastočnú hydrolýzu rastlinného tkaniva.
27. Použitie podľa nároku 26 v maceračnej príprave pre výrobu ovocnýcn nektárov, pyré, želé a ovocných a zeleninových koncentrátov a ich derivátov, do toho rátajúc i víno.
28. Použitie podľa nároku 26 pri stekucovaní na prípravu ovocných a zeleninových štiav a aromatických báz a ich derivátov, do toho rátajúc i víno a pri výrobe piva.
29. Použitie podľa nároku 26 na výrobu pektínov z rastlinných rezíduí ako sú bulvy červenej repy a pevných rezíduí vzniknutých lisovaním ovocia.
3C833/H
30. Použitie podľa nároku 26 na prípravu potravy p;e zvieratá z rastlinných látok.
31. Použitie podľa nároku 26 na výrobu celulózy z mstlin, výhodne z bavlny, pre textilný priemysel a vo výrobe papiera.
32. Použitie podľa nároku 26 na výrobu oligosacharidov s elicitickým ičinkom vyvolávajúcim obrannú reakciu rastlín, pričom tieto oiigc sacharidy sú vyrábané z rastlinných rezíduí a môžu sa použiť ako fytosanitárne produkty.
SK1566-97A 1995-05-23 1996-05-21 Enzyme degrading rhamnogalacturonane ii and its derivatives, process for manufacturing this enzyme and rhamnogalacturonane ii, and application of the enzyme SK156697A3 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9506142A FR2734578B1 (fr) 1995-05-23 1995-05-23 Enzyme degradant le rhamnogalacturonane ii, procedes d'obtention de cette enzyme et du rhamnogalacturonane ii et utilisation de cette enzyme
PCT/FR1996/000758 WO1996037604A2 (fr) 1995-05-23 1996-05-21 Enzyme et microorganisme degradant le rhamnogalacturonane ii

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SK156697A3 true SK156697A3 (en) 1998-09-09

Family

ID=9479302

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SK1566-97A SK156697A3 (en) 1995-05-23 1996-05-21 Enzyme degrading rhamnogalacturonane ii and its derivatives, process for manufacturing this enzyme and rhamnogalacturonane ii, and application of the enzyme

Country Status (20)

Country Link
US (1) US6103506A (sk)
EP (1) EP0827533B1 (sk)
JP (1) JPH11508127A (sk)
AR (1) AR002067A1 (sk)
AT (1) ATE330006T1 (sk)
AU (1) AU6006796A (sk)
BR (1) BR9608812A (sk)
CA (1) CA2222193A1 (sk)
CZ (1) CZ370197A3 (sk)
DE (1) DE69636247D1 (sk)
FR (1) FR2734578B1 (sk)
HU (1) HUP9900744A2 (sk)
IL (1) IL118404A (sk)
PL (1) PL323529A1 (sk)
RU (1) RU2220203C2 (sk)
SK (1) SK156697A3 (sk)
TR (1) TR199701421T1 (sk)
UA (1) UA64696C2 (sk)
WO (1) WO1996037604A2 (sk)
ZA (1) ZA964107B (sk)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7132119B1 (en) 1997-04-08 2006-11-07 Pall Corporation Method for producing beer
WO1999038956A2 (en) * 1998-01-30 1999-08-05 Institut National De La Recherche Agronomique Enzyme modifying rhamnogalacturonane ii, dna encoding for said enzymes and method for producing the enzyme
FR2980800B1 (fr) * 2011-09-30 2014-01-10 Agronomique Inst Nat Rech Procede de preparation d'un produit alimentaire liquide enrichi en oligosaccharides et en polysaccharides
JP6539400B1 (ja) * 2018-10-24 2019-07-03 株式会社アンチエイジング・プロ Lps高含有組成物の製造方法
CN117204574B (zh) * 2023-11-09 2024-02-02 北京市农林科学院 促进肠道菌群发酵平衡的果胶基膳食补充剂及其制备方法

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3541945A1 (de) * 1985-11-27 1987-06-04 Lomapharm Rudolf Lohman Gmbh K Immunstimulierend wirkende polysaccharide aus zellkulturen von echinacea purpurea (l.) moench und echinacea angustifolia, d.c. verfahren zu ihrer herstellung und sie enthaltende pharmazeutische zubereitungen
DE3934304A1 (de) * 1989-10-13 1991-04-18 Lohmann Rudolf Lomapharm Polysaccharide mit antiphlogistischer wirkung, verfahren zu ihrer gewinnung und sie enthaltende arzneimittel
CA2109218A1 (en) * 1991-05-02 1992-11-03 Kurt Dorreich Rhamnogalacturonase, corresponding dna sequence, rhamnogalacturonase containing enzyme preparation and use of the enzyme preparation
EP0570075A3 (en) * 1992-05-15 1995-02-15 Quest Int Cloning and expression of DNA encoding a ripening form of a polypeptide having rhamnogalacturonase activity.
DE4221753C2 (de) * 1992-07-02 1994-11-24 Plantamed Arzneimittel Gmbh Immunologisch und antiphlogistisch wirksame Polysaccharide aus Sedum telephium, Verfahren zu ihrer Gewinnung und diese enthaltende Arzneimittel
DK24493D0 (sk) * 1993-03-05 1993-03-05 Novo Nordisk As

Also Published As

Publication number Publication date
AR002067A1 (es) 1998-01-07
WO1996037604A3 (fr) 1997-01-23
AU6006796A (en) 1996-12-11
ATE330006T1 (de) 2006-07-15
DE69636247D1 (de) 2006-07-27
CZ370197A3 (cs) 1998-03-18
EP0827533B1 (fr) 2006-06-14
US6103506A (en) 2000-08-15
WO1996037604A2 (fr) 1996-11-28
JPH11508127A (ja) 1999-07-21
EP0827533A2 (fr) 1998-03-11
FR2734578B1 (fr) 1997-08-14
TR199701421T1 (xx) 1998-02-21
BR9608812A (pt) 1999-02-17
CA2222193A1 (fr) 1996-11-28
IL118404A0 (en) 1996-09-12
HUP9900744A2 (hu) 1999-06-28
ZA964107B (en) 1996-12-03
FR2734578A1 (fr) 1996-11-29
UA64696C2 (en) 2004-03-15
PL323529A1 (en) 1998-03-30
RU2220203C2 (ru) 2003-12-27
IL118404A (en) 2006-10-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Vidal et al. Polysaccharides from grape berry cell walls. Part I: tissue distribution and structural characterization of the pectic polysaccharides
Øbro et al. Rhamnogalacturonan I in Solanum tuberosum tubers contains complex arabinogalactan structures
Nacos et al. Kenaf xylan–A source of biologically active acidic oligosaccharides
Prabasari et al. Pectic polysaccharides from mature orange (Citrus sinensis) fruit albedo cell walls: Sequential extraction and chemical characterization
Shet et al. Pectinolytic enzymes: classification, production, purification and applications
Basanta et al. Effect of extraction time and temperature on the characteristics of loosely bound pectins from Japanese plum
JPH072113B2 (ja) 高温性細菌アシドサームス・セルロリティクスからの熱安定性精製エンドグルカナーゼ
Flores-Gallegos et al. Comparative study of fungal strains for thermostable inulinase production
JPH07508890A (ja) エンドグルカナーゼとセロビオヒドロラーゼの共同作用
Kurakake et al. Enzymatic Properties of β‐1, 3‐Glucanase from Streptomyces sp Mo.
NZ202876A (en) Enzymes for degradation of carbohydrates
SK156697A3 (en) Enzyme degrading rhamnogalacturonane ii and its derivatives, process for manufacturing this enzyme and rhamnogalacturonane ii, and application of the enzyme
Lu et al. Improved production and antioxidant activity of exopolysaccharides by submerged culture of Lentinula edodes by the addition of lignocellulose
JPH06506831A (ja) ラムノガラクツロナーゼ、対応するdna配列、ラムノガラクツロナーゼ含有酵素調製物および該酵素調製物の用途
DE10019076A1 (de) Verwendung von Polygalakturoniden als Lebensmittelzusatzstoffe
US20130156890A1 (en) Methods of Juice Production
Bassim Atta et al. Chapter Fungal Pectinases in Food Technology
Hart et al. Orange finisher pulp as substrate for polygalacturonase production by Rhizopus oryzae
US5330903A (en) Method for producing capsular polysaccharides
Vidal et al. Penicillium daleae, a soil fungus able to degrade rhamnogalacturonan II, a complex pectic polysaccharide
Ortiz-Basurto et al. Presence of rhamnogalacturonan II in the juices produced by enzymatic liquefaction of Agave pulquero stem (Agave mapisaga)
Konno et al. Degradation of pectic polysaccharides extracted from suspension cultures of carrot by purified exo‐polygalacturonase
Jeong et al. Production of an anti-complement exo-polymer produced by Auricularia auricula-judae in submerged culture
Alvarez et al. A novel substitution pattern in glucuronoarabinoxylans from woody bamboos
Konno et al. Expolygalacturonase from Suspension Cultures of Marchantia polymorpha: Its Presence and Involvement in Pectic Polysaccharide Degradation