CZ370197A3 - Enzym degradující rhamnogalakturonan II a jeho deriváty, způsob výroby tohoto enzymu a rhamnogalakturonanu II a použití enzymu - Google Patents

Enzym degradující rhamnogalakturonan II a jeho deriváty, způsob výroby tohoto enzymu a rhamnogalakturonanu II a použití enzymu Download PDF

Info

Publication number
CZ370197A3
CZ370197A3 CZ973701A CZ370197A CZ370197A3 CZ 370197 A3 CZ370197 A3 CZ 370197A3 CZ 973701 A CZ973701 A CZ 973701A CZ 370197 A CZ370197 A CZ 370197A CZ 370197 A3 CZ370197 A3 CZ 370197A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
enzyme
degradation
derivatives
preparation
plant
Prior art date
Application number
CZ973701A
Other languages
English (en)
Inventor
Patrice Pellerin
Jean Marc Brillouet
Thierry Doco
Pascale Williams
STéPHANE VIDAL
Michel Moutounet
Original Assignee
Institut National De La Recherche Agronomique
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institut National De La Recherche Agronomique filed Critical Institut National De La Recherche Agronomique
Publication of CZ370197A3 publication Critical patent/CZ370197A3/cs

Links

Classifications

    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D65/00Accessories or auxiliary operations, in general, for separation processes or apparatus using semi-permeable membranes
    • B01D65/02Membrane cleaning or sterilisation ; Membrane regeneration
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L2/00Non-alcoholic beverages; Dry compositions or concentrates therefor; Their preparation
    • A23L2/70Clarifying or fining of non-alcoholic beverages; Removing unwanted matter
    • A23L2/84Clarifying or fining of non-alcoholic beverages; Removing unwanted matter using microorganisms or biological material, e.g. enzymes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D41/00Regeneration of the filtering material or filter elements outside the filter for liquid or gaseous fluids
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B08CLEANING
    • B08BCLEANING IN GENERAL; PREVENTION OF FOULING IN GENERAL
    • B08B7/00Cleaning by methods not provided for in a single other subclass or a single group in this subclass
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12GWINE; PREPARATION THEREOF; ALCOHOLIC BEVERAGES; PREPARATION OF ALCOHOLIC BEVERAGES NOT PROVIDED FOR IN SUBCLASSES C12C OR C12H
    • C12G1/00Preparation of wine or sparkling wine
    • C12G1/02Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation
    • C12G1/0203Preparation of must from grapes; Must treatment and fermentation by microbiological or enzymatic treatment
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12HPASTEURISATION, STERILISATION, PRESERVATION, PURIFICATION, CLARIFICATION OR AGEING OF ALCOHOLIC BEVERAGES; METHODS FOR ALTERING THE ALCOHOL CONTENT OF FERMENTED SOLUTIONS OR ALCOHOLIC BEVERAGES
    • C12H1/00Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages
    • C12H1/003Pasteurisation, sterilisation, preservation, purification, clarification, or ageing of alcoholic beverages by a biochemical process
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01171Rhamnogalacturonan hydrolase (3.2.1.171), i.e. rhamnogalacturonase
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2321/00Details relating to membrane cleaning, regeneration, sterilization or to the prevention of fouling
    • B01D2321/16Use of chemical agents
    • B01D2321/166Use of enzymatic agents

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Oblast techniky
Vynález se týká enzymu, degradujícího rhamnogalakturonan II (RG-II) a jeho deriváty, jakož i způsobu výroby tohoto enzymu.
Předmětem vynálezu je též způsob výroby RG-II.
Vynález se taktéž týká použití enzymu.
Dosavadní stav techniky
Rhamnogalakturonan II je univerzální a velmi složitou částí buněčných stěn rostlin (0'Neill a kol., Methods in Plant Biochemistry (1990) 2: 415-439). Přísluší k pektickým polysacharidům a je esenciálně přítomen na úrovni střední lamely a primární buněčné stěny.
Jeho struktura je extremně složitá (obrázek 1), protože se skládá z 12 různých monosacharidů pro jeden polymeračni stupeň (dp) blízký 30. Tato složitost je podporována přítomností málo se vyskytujících cukrů v jeho kompozici, která obsahuje: apiosu nebo 3-C-(hydroxymethyl)-D-glycerotetrosu; KDO nebo 2-keto-3-deoxy-D-mano-oktulosonikovou kyselinu; DHA nebo 3-deoxy-D-lyxo-heptulosarikovou kyselinu, 2-0-methyl-fukosu, 2-0-methyl-xylosu a konečně octovou kyselinu nebo 3-C-karboxy-5-deoxy-L-xylosu. Poslední monosacharid vytváří specifický markér pro RG-II. Nejobvyklejší monosacharidy v polysacharidech buněčných stěn, rhamnosa, fukosa, arabinosa, galaktosa a galakturonová kyselina a glukuronová kyselina, jsou rovněž přítomny v kompozici RG-II, nej častěji s anomery a s násobnými typy vazeb, které posiluji specificitu a složitost struktury molekuly.
Ultrastrukturálni organizace RG-II (obrázek 1) vede ke zvýšení této složitosti (Puvanesarajah a kol. Carbohydr. Res. (1991) 218: 211-222). Homologický řetěz a složenina 7 až 14 zbytků kyseliny galakturonové, vázaných přímo v a(1—>4) nese v ještě nedeterminovaných pozicích, 4 různé větve: dva disacharidy a dva řetězce více složitých oktanebo nonasacharidů. Jsou pozorovány různé struktury co se týče délky homogalakturonového řetězce a konce větve B a obdobně enzymatické účinky potřebené pro jeho získání. Na druhé straně, byla detekována přítomnost ještě neidentifikovaných substituentů na zbytku A5. Kromě toho obsahuje molekula RG-II 2 až 3 methylová seskupení, která esterifikují karbocyklická seskupení galakturonových kyselin a dvě acetylová seskupení situovaná na zbytcích R3 (acerová kyselina) a B4' (2-0-methyl-fukosa).
Struktura RG-II byla takto obecně určena, dokonce i když povaha jistých substituentů nebyla ještě identifikována.
V buněčné stěně rostlin je RG-II asociován s přírodními pektiny, ovšem přesný typ vazby mezi protopektinem a RG-II je ještě neznámý. Ostatně, taktéž jeho úloha v rostlinné stěně je neznámá. Lze tudíž říci, že je přítomen v celém rostlinstvu (Albersheim a kol., Biochem. Soc. Transactions (1994) 22: 374-378); od pteridofytů do spermatofytů, od gymnospermů do angiospermů, od monokotyledonů do dikotyledonů (obrázek 2) a v nezanedbatelném množství v střední lamele stěny. Také je známo, že jeho struktura je zachována u různých rostlin, kde byl studován (Albersheim a kol., Biochem. Soc. Transactions (1994) 22: 374-378) .
Poslední práce ukázaly, že může reagovat jako signální polysacharid a indukovat specifickou odpověď rostliny (elicitický účinek) (Aldington a Fry, J. Exp. Botany (1994) 45: 287-293). Avšak z jeho hojnosti, jeho všudypřítomnosti a ze složitosti jeho struktury lze předpokládat, jakou základní úlohu hraje v kohezi buněčných rostlinných stěn a tudíž v buněčné organizaci rostlinných látek.
RG-II se uvolňuje z buněčných stěn akcí enzymů s pektolytickým účinkem (pektinesterása, endo- nebo exopolygalakturonása), které degradují řetězce přírodních pektinů a uvolňují RG-II v nedegradované formě (Darvill a kol. Plant. Physiol. (1978) 62: 418-422), jak dokládá obrázek 1. Rozdílnost délky řetězce bere v úvahu enzymatické degradace, které umožnily jeho uvolňování z přírodních pektinů (Whitcombe a kol., Carbohydr. Res (1995) 271: 1529) .
Složitost a originalita struktury RG-II způsobuje jeho obzvláštní rezistenci vůči degradaci enzymy přítomnými v extraktech rostlin, jakož i v komerčních enzymatických preparátech jak původu fungicidního, tak bakteriálního.
Žádný degradační účinek nemůže ve skutečnosti jasně ukázat v komerčních enzymatických přípravcích degradaci buněčných stěn rostlin bohatší na různé účinky. Samotné pozorované degradace se týkají zbytků arabinofuranosy, rhamnopyranosy nebo galaktopyranosy ležících na neredukujicích koncích bočních reziduí, přípravě; rozdílností řetězců. Exo-enzymy dovolují uvolnění takových existujících ve skutečnosti což se vysvětluje bez mezi různými přípravami běžně v pochyby
RG-II, enzymatické pozorovanou popisovanými různými autory.
Během lisování nebo drcení ovoce a zeleniny se uvolňují • *
pektolytické účinky, které způsobuji degradaci homogalakturonových řetězců přírodních pektinů. Tyto účinky jsou posilovány přídavkem komerčních pektolytických enzymů a fermentační florou v případě vína a fermentovanými produkty. RG-II je uvolňován v intaktní formě a v množství často významném v ovocných a zeleninových šťávách nebo nektarech v jejich derivátech, zvláště ve víně.
Ve víně představuje RG-II jeden z hlavních polysacharidů (Doco a Brillouet, Carbohydr. Res. (1993) 243: 333-343), jeho koncentrace může dosahovat 100 mg/1. Podílí se na množství nežádoucích jevů, jako je zanesení filtračních membrán (Belleville a kol. , Enol. Vitic. Sci. (1991) 46: 100-107), utváření nestabilních komplexů s jinými koloidními makromolekulami a indukci precipitačních jevů. Jeho eliminace nutně probíhá za použití specifických enzymů působících jeho degradaci.
Do současnosti byly popsány různé metody získání RG-II z vína:
-enzymatickou hydrolýzou za pomoci fungicidních endopolygalakturnas izolovaných z kultur rostlinných buněk v suspensi (Darvill a kol. Plant Physiol. (1978) 62: 418422) ,
- použitím komerčního enzymatického přípravku z Aspergillu niger, Pectinolu AC (Stevenson a kol. Carbohydr. Res. (1988) 179: 269-288); RG-II je zde přítomen ve formě slabé koncentrace a jeho čištění implikuje množství eliminačních etap proteinů a barvící látky,
- z vína (Doco a Brillouet, Carbohydr. Res. (1993) 243:333343) , popsané čištění bylo úspěšně provedeno ve 4 etapách sférickou vylučovací chromatografií (CES) nebo iontovou
Zjistilo se, že rhamnogalakturonan I nebo RG-I, i když má velmi blízké jméno, je zcela odlišnou částí rostlinné buněčné stěny ve srovnání s RG-II jak z hlediska strukturního pohledu (jeho struktura je založena na výměnou .
střídání rhamnosy a galakturonové kyseliny), tak svojí degradací enzymy.
Účinky rhamnogalakturonasy (Schols a kol., Carbohydr. Res.
(1990) 206: 105-115) nebo protopektinasy (Sakamoto a
Sakai,
Carbohydr. Res. (1994)
259: 77-91) byly již popsány.
Z dále uvedené analýzy stavu techniky plyne, že není znám žádný enzym nebo enzymatický přípravek představující dostatečný degradační účinek na RG-II. Proto je přítomnost tohoto polysacharidu zdrojem nežádoucích jevů, jako je zanášení filtračních membrán, utváření nežádoucích komplexů s dalšími koloidními makromolekulami a indukce precipitačních jevů.
Ekonomickým důsledkem uvedených nežádoucích skutečností v tomto případě byla nutnost nalézti řešení daného problému.
Podstata vynálezu
Předložené řešení podle vynálezu ukazuje, že je možné izolovat enzymy způsobující degradaci RG-II a jeho derivátů, z mikroorganismů.
Dalším nově vynalezeným předmětem je způsob přípravy látky RG-II, dovolující získat její velké množství z různých rostlinných zdrojů.
Dalším předmětem vynálezu je enzym, který degraduje RG-II a jeho deriváty.
• ·
Podstatou předloženého vynálezu je látka RG-II, celý polysacharid, mající strukturu vyznačenou na obrázku 1, který je buď ve formě monomeru nebo dimeru a celá výsledná molekula je produktem částečné degradace a obsahuje nejméně jeden fragment řetězu A, B, C nebo D charakterisující jak kompozici, tak i její sekvenci.
V dalším textu, všechny skutečnosti vztahující se k látce RG-II, platí též pro deriváty její molekuly.
Enzym, který obzvláště výhodně představuje popsaný účinek je endohydrolasového typu.
Takovýto enzym může býti obzvláště představován účinkem endo~3-L-rhamnopyranosyl-(1—>3' )-D-apiofuranosyl hydrolasy a/nebo hydrolasy.
řetězec A, endo-a-L-fukopyranosyl- (1—>4) -L-rhamnopyranosyl
Jejich účinek lze určit možností uvolňovat jak je znázorněno na obrázku 1.
Tento enzym může býti produkován mikroorganismem, obzvláště houbou druhu Penicíllium.
Mikroorganismy tohoto druhu mající degradační účinek na látku RG-II a její deriváty, představují další předmět vynálezu. Jsou to zvláště kmeny Penicíllium, které byly následně deponovány dne 19. května 1995 v Collection Nationale de Cultures des Microorganismes de 1'Institut Pasteur (CNCM) - Národní sbírce kultur mikroorganismů při Pasteurově institutu:
- kmen Penicíllium simplicissimum, deponovaný u CNCM pod . označením n° 1-1577 (IPV1),
- kmen Penicíllium dalese, deponovaný u CNCM pod označením houba, izolovaná z lesní (LaV2).
Oba tyto podstatou pěstování) kmeny hub představují jsou houby s rychlou modrozelených spor.
předmět produkcí
Penicillium daleae je méně běžná půdy a která je známá pro svoji kapacitu degradovat amidon a pektické polysacharidy.
„Compendium
T.Η.Anderson
Tento druh je popsán v of Soil Fungi, H.K.Domsch, (1980) Academie
Press, London, strana
560 .
Penicillium simpli cissimum dekomponovaných „Compendium of Soil Fungi, izolovaný z publikaci
T.H.Anderson (1980) Academie Press, je více známý kmen rostlin. Tento druh je Η.K.Domsch,
London, strana častěj i popsán v
W.Gams a
597-598 .
Předložený vynález se také obsahujících enzym degradující jak je uvedeno výše.
týká enzymatických látku RG-II a její přípravků deriváty,
Tyto enzymy však mohou býti ve jiné enzymy představující jiné formě přípravků, obsahujících účinky.
Obohacení těchto přípravků o účinky představující degradaci látky RG-II nabízí zcela nový potenciál pro všechny aplikace vyžadující částečnou nebo úplnou degradaci buněčné stěny a rostlinných polysacharidů.
Enzymy dovolující specifickou degradaci látky RG-II a jejejích derivátů mohou býti použity pro degradaci nebo modifikaci látky RG-II nebo jejích derivátů, a to zvláště v následujících aplikacích:
- eliminace RG-II z šťáv ovoce, zeleniny a jejich derivátů, aby se zlepšila filtrovatelnost, ulehčila výroba šťáv a koncentrovaných aromatických bázi, usnadnilo se čištěni a zajistila se dobrá stabilita finálních produktů,
- čištění membrán mikro- a ultrafiltrace, použitých pro čištění šťáv ovoce, zeleniny a jejích derivátů, získání přípravků typu macerasy, to jest přípravků dovolujících disociaci buněčných látek mladých rostlin s minimální degradací parietálních struktur (výroba ovocných nektarů, pyré, želé a koncentrátů ovoce a zeleniny), získání ztekucených přípravků, to jest před provedením celkové hydrolýzy polysacharidů buněčných stěn rostlin (výroba šťáv na bázi aromatického ovoce, zeleniny a fermentované nápoje, pivo), výroba pektinů a krmiv pro zvířata ze zbytků rostlin (dužina řepy, pevné zbytky po vylisování ovoce...),
- výroba celulosy z rostlin; enzymatická hydrolýza dalších složek polysacharidů dovoluje ve skutečnosti zlepšit výtěžek výroby (textilní průmysl, výroba papíru).
Komerční enzymatické přípravky umožňující degradaci buněčných stěn rostlin musí míti způsob biochemického účinku nejpřesněji a nejlépe definovaný, podle typu zkoumaného použití. Specifický přínos enzymů degradujících RG-II a majících přesný a dobře determinovaný způsob účinku je ve smyslu jednoho z nej lepších využití potenciálních technologií, požívajících enzymy z hub.
Enzymy a enzymatické přípravky podle předloženého vynálezu, výše popsané, mohou býti výhodně získány způsobem, který zahrnuje následující etapy:
- dodáni mikroorganismů majících degradační účinek na RG-II nebo jeho deriváty do prostředí adaptované kultury na produkci těchto enzymů.
opětné sebrání enzymu nebo enzymatického přípravku v supernatantu kultury nebo v supernatantech drtě mikroorganismů.
Způsob výhodně sestává z následujících etap:
- dodání mikroorganismů majících degradační účinek na RG-II do prostředí adaptované kultury na produkci těchto enzymů a obsahující RG-II,
- opětné sebrání mikroorganismů,
- rozdrcení mikroorganismů, eliminace nerozpuštěné látky, zvláště filtrací nebo centrifugováním rozdrcených mikroorganismů a
- opětné sebrání supernatantu, obsahujícího enzymy nebo enzymatický přípravek.
Enzymy mohou býti přímo obsaženy v supernatantu kultury, bez drtě mikroorganismů, když to podmínky dovolují, volíce takové podmínky nebo kmeny takového druhu, že enzymy jsou uvolněny v daném prostředí.
Výhodně tento způsob přípravy probíhá za pomoci kmenů Pemcillium deponovaných ve sbírce kultur CNCM pod čísly N°l-1577 a N°l-1578.
Tyto enzymy lze taktéž získat inženýrství, po klonování genu nebo pomocí genetického genů odpovědných za jejich syntézu nebo zcela jinou technikou dostupnou odborníkovi v oboru, obzvláště syntézou vycházející z jednotlivých aminokyselin, po identifikaci jejich sekvencí.
Předložený vynález se také týká způsobu získání RG-II a jeho
- 10 metabolitů nebo derivátů z extraktů rostlinného původu, jehož podstata spočívá v tom, že zahrnuje chromatografování zmíněného extraktu.
Je zřejmé, že se způsob týká nejen získání látky RG-II, ale také produktů degradace její molekuly, které se mohou tvořit, když probíhá způsob přípravy a které se nazývají metabolity, jakož i všech derivátů látky RG-II.
V předloženém vynálezu se rozumí pod pojmem „extrakt rostlinného původu každá příprava obsahující obzvláště rozpustné polysacharidy rostlinného původu. Polysacharidy mohou býti podrobeny etapě koncentrace, buď ultrafiltrací nebo precipitací, například z ethanolu, methanolu nebo ostatních adekvátních rozpouštědel.
Způsob může též zahrnovat alespoň jednu etapu chromatografické aniontové výměny, při pH slabě kyselém nebo neutrálním, výhodně větším než 4. Adsorpční chromatografie probíhá na kolonách DEAE nebo QEAE.
Způsob může též zahrnovat alespoň jednu etapu adsorpční chromatografie RG-II na nosiči zadržujícím RG-II. Adsorpční chromatografii lze provádět na aktivním uhlí, v koloně s náplní polystyren-divinylbenzen nebo na jiné vhodné náplni.
Je možné přidati, před a/nebo po chromatografické etapě, etapu separace polysacharidů, buď frakcionačni precipitací nebo ultrafiltrací, nebo sférickou vylučovací chromatografií. Pro uskutečnění frakcionačni precipitace se výhodně používá ethanol nebo methanol. Pro provedení sférické vylučovací chromatografie se výhodně používá kolona s „sephakrylem nebo jiným vhodným nosičem.
Předložený vynález se mezi jiným týká přípravků, které se získají některým z těchto způsobů:
- část přípravků obsahuje majoritně to jest nejméně 95%) monomerů látky RG-II, a
- druhá část přípravků obsahuje nejméně 80%, výhodně více než 95% dimerů látky RG-II.
Po každé chromatografii se určí, díky složení, jaké frakce látka RG-II obsahuje. Tato operace je dostupná odborníkovi v oboru.
Uvedené způsoby dovolují snadno získat přípravky ve významném množství (řádově kilogramů) rhamnogalakturonanu II ze všech produktů rostlinného původu, s výjimkou těch, které pocházejí z trav, jako jsou šťávy ovoce, zeleniny a jejich derivátů, zvláště vína, obzvláště koncentrovaného vína, vína špatné kvality a vinného moštu a těch, které jsou v rozmezí desítky gramů. Látka RG-II se výhodně získá z primárních stěn rostlin, ale je možné ji také izolovat z každého produktu odvozeného od rostlin umožňujícího rozpustnost buněčných stěn, buď během způsobu tradiční transformace (lisováni, fermentace..) nebo působením za pomoci enzymů v tekutině.
Dalším předmětem předloženého vynálezu je způsob selekce mikroorganismů, speciálně hub, vzhledem k jejich schopnosti degradovat .látku RG-II, jehož podstata spočívá v tom, že mikroorganismy se nechají množit v uzpůsobeném kultivačním prostředí obsahujícím danou látku RG-II.
Vynález se také týká kultivačního prostředí pro mikroorganismy, jehož podstata spočívá v tom, že obsahuje látku RG-II.
Způsoby podle předkládaného vynálezu, obzvláště způsoby výroby a isolace enzymů podle předkládaného vynálezu, stejně tak jako způsob výroby látky RG-II mohou být provedeny odborníkem na základě pouhého přečteni předloženého popisu vynálezu a jeho obecných znalostí. Nicméně je možné pro referenci použít následující manuál: Methods i Microbiology, svazky 1 až 6, J. R. Morris a D. W. Ribbons (1969-1972), Academie Press, London, New York.
Přehled obrázků na výkresech
Předložený vynález bude blíže vysvětlen prostřednictvím konkrétních příkladů provedení, které předmět vynálezu nikterak neomezují.
Popis předmětu vynálezu a příklady jeho provedení se odvolávají na připojené obrázky, na kterých obr. 1 představuje schematicky strukturu rhamnogalakturonanu
II, zahrnující jeho čtyři postranní řetězce A až D. Na tomto obrázku R1 představuje atom vodíku nebo a-L-rhamnopyranosu a R2 a R3 představují atom vodíku nebo jiný substituent, obr. 2 znázorňuje rozdělení RG-II v rostlinné říši, obr. 3 znázorňuje frakcionaci polysacharidů, kyselých cukrů a neutrálních cukrů vína na koloně DEAE (Macroprep), obr. 4A a 4B jsou profily vysokovýkonné sterické vylučovací chromatografie (CES-HP) u dvou frakcí RG-II, isolovaných z červeného vína, obr. 5 ukazuje profily vysokovýkonné sterické vylučovací chromatografie na koloně Superdex-75 HR u dvou
frakci RG-II získaných čištěním vinného koncentrátu:
a) frakce III, dimer RG-II (molekulová hmotnost 9500 Da, vymývaná po 18,5 min),
b) frakce II, monomer RG-II (molekulární hmotnost 4750 Da, vymývání po 20,5 min), obr. 6 je schéma čištění RG-I základní úrovni, obr. 7 je porovnání profilů, určených pomocí CES-HP na koloně Superdex-75 HR, u celkových polysacharidů červeného vína (a) s frakcí, která není zadržena na pryskyřici Relite® DIAION® (b) s frakcí, která je zadržena a potom vymyta ethanolem 20 % (c) , obr. 8 znázorňuje degradaci RG-II rozpustným buněčným extraktem Penicillium simplicissimum (1-1577). Spektra a, b a c odpovídají původnímu RG-II a RG-II po 24 hodinách a 48 hodinách degradace, obr. 9 znázorňuje degradaci RG-II rozpustným buněčným extraktem kmenu P. daleae LaV2 (1-1578) (a:
původní RG-II, b: po 96 hodinách, c: po 168 hodinách, d: po 190 hodinách), obr. 10 znázorňuje degradaci, následovanou chromatografií CES-HP, pro RG-II kulturou Penicillium simplicissimum (1-1577). Křivky a až f představují spektrum původního RG-II a spektra RG-II po 96 hodinách, po 132 hodinách, po 168 hodinách, po 190 hodinách a po 400 hodinách růstu houby, obr. 11 znázorňuje degradaci RG-II kulturou P. daleae (I14
1578), následovanou chromatografii CES-HP, po různých dobách (a: původní RG-II, b: po 72 hodinách, c: po 120 hodinách, d: po 240 hodinách, e: po 264 hodinách f: po 336 hodinách, g: po 384 hodinách), obr. 12 představuje zjednodušenou strukturu z obr. 1. Jsou znázorněna místa potenciálního štěpení enzymu podle předkládaného vynálezu, označená šipkami 1 a 2, obr. 13 znázorňuje strukturu residuálni frakce RG-II po jeho degradaci, způsobené Penicillium simplicissimum a P. daleae.
obr. 14 znázorňuje dimerickou degradaci RG-II kulturou P. daleae (1-1578) . Spektra a až c představují spektrum původního dimerického RG-II a spektra RG-II po 168 hodinách a po 300 hodinách degradace.
obr. 15 znázorňuje degradaci,
CES-HP, čištěného
buněčným extraktem
(1-1577) Spektra a
RG-II a RG-II po 72
následovanou chromatografií RG-II úplným rozpustným Penicillium simplicissimum až d odpovídají původnímu hodinách, po 120 hodinách a po 148 hodinách inkubace, obr. 16 je porovnání profilů polysacharidů, určených pomocí
CES-HP červeného vína (spektrum a) a po 48 hodinách inkubace v přítomnosti enzymatického extraktu IPV 1 (spektrum b), obr. 17 je porovnáni CES-HP profilů polysacharidů červeného vína (spektrum a) a po 48 hodinách inkubace v • · · · • · ·· • · ·· • · · · · • ·· je přítomnosti Pectinex® (spektrum b) a extraktem kmene porovnání CES-HP nebo
Ultra Sp spojeného s samotného enzymatickým
IPV1 (spektrum c), profilů polysacharidu jablečného moštu, získaného úplným ztekucenim ovoce enzymatickým přípravkem Rapidase® Liq) hodinách inkubace za absence (spektrum přítomnosti (spektrum b) enzymatického extraktu kmene IPV1,
19A a
19B znázorňuji degradaci tkáně červené
19A) enzymatickým extraktem kmene
IPV1 ve srovnání se srovnávacím vzorkem (obr.
obr. 19C, 20A a 20C představuji degradaci enzymatickým extraktem kmene IPV1 u tkáně mrkve, jablka a brambory ve srovnáni s odpovídajícími srovnávacími vzorky (obr'. 19D, 20B a 20D) .
Příklady provedeni vynálezu
PŘÍKLAD lj ČIŠTĚNÍ RHAMNOGALACTURONANU II
CHROMATOGRAFIÍ ANIONTOVOU VÝMĚNOU A CHROMATOGRAFIí
MOLEKULÁRNÍM VYTŘÍDĚNÍM, VYCHÁZEJÍCE Z VÍNA
RG-II se nachází v nedegradované podobě zejména v šťávě ovoce, zeleniny a v jejich derivátech, zejména fermentovaných. RG-II může být čištěn na homogenitu vycházejíce ze všech odvozených rostlinných produktů za použití následujících etap čištění:
1. Získání makromolekul v jedné etapě buď precipitací v ethanolu 80 % nebo ultrafiltrací.
2. . Preparativní chromatografie aniontovou výměnou při kyselém pH.
3. Chromatografie molekulárního vytřídění (tato poslední etapa dovolující dosáhnout zvýšené úrovně čistoty může být vypuštěna, jestliže je požadována úroveň čistoty 80 % při přípravě RG-II).
1. Vzorek vina a získáni koloidů
Použité víno bylo získáno z odrůdy Carignan noir, sklizené ve stavu zralosti v září 1991 v Domaine Experimentale de Pech-Rouge (Narbonne). 600 litrů bylo koncentrováno na ultrafiltrační membráně Carbo Sep M5 (Těch Sep, Francie) do prahové hodnoty 10.000. Úplné koloidy koncentrovaného vína (výsledný objem 25 1) byly potom precipitovány přidáním 4 dílů ethanolu, okyseleného přidáním 60 mM HC1, promývány postupně v ethanolu 80 % a 90 %, vyjmuty ve vodě a dialysovány na pufru citranu sodného 40 mM při pH 4,6. Sušina úplných koloidů (určená po odsolení a lyofilisaci alikvotní frakce) představovala 296 g, to jest zhruba 0,5 g na jeden litr vína.
2. Chromatografie výměnou aniontů
Koloidní roztok při pH 4,6 byl frakcionován chromatografií výměnou aniontů 10 postupnými průchody kolonou (5. x 80 cm) DEAE-Macroprep (BioRad, USA) vyváženou na 20,5 ml/min v pufru citranu sodném 40 mM při pH 4,6. Neutrální nebo slabě nabité polysacharidy byly vymyty injekčním pufrem (frakce
I) . Frakce obsahující RG-II byly vymyty nejprve koncentračním průchodem citranovým pufrem při 50 mM (frakce
II) a potom adicí 50 mM (frakce III) a 150 mM (frakce IV). NaCl do vymývacího pufru (obr. 3) . Tyto tři frakce
představovaly 7,9 %, 6,6 % a 4,1 % celkových koloidů,
vyjádřeno v hmotnosti sušiny.
3. Čištění RG-II do homogenity sférickou vylučovací
chromatografii
RG-II obsažený ve frakcích II a III byl čištěn do homogenity sférickou vylučovací chromatografií na koloně (5 x 75 cm) Sephacryl S-400 HR vyvážené na 7 ml/min v pufru octanu sodném 50 mM při pH 5 obsahujícím 50 mM NaCl.
Frakce obsahující RG-II byly nakonec dialysovány proti vodě před lyofilisací.
Dva získané vzorky RG-II vykazovaly naprosto homogenní profil při vysokovýkonné sférické vylučovací chromatografii (CES-HP, analýza na dvou kolonách Shodex OHPak KB-803 a KB805 v sérii, vymývání L1NO3 0,1 M při 1 ml/min, refraktometrická detekce) (obr. 4) a representovaly 4,4 % a 4,6 % úplných koloidů vzorku vína. Obsah úplného RG-II vzorku použitého vína byl vyšší než 50 mg/1, protože bylo třeba přidat i RG-II obsažený ve frakci IV, který nebyl čištěn do homogenity.
4. Složeni frakcí čištěného RG-II z vina
Dvě frakce čištěného RG-II vykazovaly obě charakteristické složení RG-II (tabulka I) . Neodlišovaly se . významným způsobem při analýze jejich složení.
Frakce II a III získané na DEAE-Macroprep byly analyzovány na koloně Superdex-75HR (1 x 30 cm, vymývání po 14 min) umožňující molekulární vytřídění. Tato analýza (obr. 5) ukazuje, že frakce II obsahuje majoritně monomery RG-II (vymývání po 20,5 min, molekulární hmotnost 4750 Da) , zatímco frakce III obsahovala více než 95 % dimeru RG-II (vymývání po 18,5 min, molekulární hmotnost 9500 Da).
RG-II frakce II byly použit v následujících pokusech pro vytřídění a indukci specifických enzymatických degradačních účinků.
PŘÍKLAD 2 ZÍSKÁNÍ RG-II ADSORPČNÍ CHROMATOGRAFIí Z VÍNA
ŠPATNÉ KVALITY
Použitím vína špatné kvality bylo získáno destilací ve vakuu a koncentrací 300 hl červeného vína (směs vín více odrůd):
Víno špatné kvality získané destilací bylo koncentrováno odpařením ve vakuu. Vinanové soli byly po dekantaci z tohoto koncentrátu eliminovány a potom bylo víno špatné kvality znovu koncentrováno stejným způsobem. Celkově bylo víno koncentrováno třicetkrát a celkové koloidy ze 1000 1 získaného koncentrovaného vína špatné kvality byly precipitovány přidáním 4 objemů ethanolu 90 %. Precipitát byl vyjmut v 300 1 vody, čímž byl získán roztok vína špatné kvality, používaný jako zdroj RG-II.
Adsorpční chromatografie
Produkty chromatografické separace byly získány pomocí CLHP na kolonách Shodex (viz příklad 1 nebo na koloně Superdex HR 75 (Pharmacia, výtěžek 0,6 ml/min) spojených se systémem refraktometrické detekce.
(a) Na aktivním uhlí
Aktivní uhlí vykazuje silnou adsorpční kapacitu vzhledem k množství molekul. Podle předkládaného vynálezu je aktivní uhlí použito pro svou schopnost oddělovat RG-II od různých • · ···· · · · · ·· · • · · · · ···· • ····· · · · ··· · • · · · · · · ·· ·· ··· ···· ·· · druhů pektických polysacharidů. Všechny polysacharidy jsou ve skutečnosti adsorbovány aktivním uhlím, ale RG-II je uvolňován při koncentracích alkoholu nižších než 40 %. Byly zkoušeny dva typy aktivního uhlí.
Práškové aktivní uhlí
Jeden litr pětkrát zředěného roztoku vína špatné kvality byl přiveden do kontaktu s 100 gramy práškového aktivního uhlí (Nořit® SA+) po dobu 30 minut. Potom byl roztok filtrován, aby byly eliminovány částečky uhlíku. Uhlík zbylý na filtru byl suspendován v 1 litru ethanolu 40 % a směs byla pravidelně míchána po 30 minut a potom filtrována ve vakuu. Vymytý RG-II byl potom analyzován pomocí CLHP. Analýza složení této frakce (tabulka 2) ukazuje, že stupeň čistoty RG-II je okolo 50 %.
Extrudované aktivní uhlí
Tento typ aktivního uhlí vyžaduje pro adsorbci RG-II daleko vyšší kontaktní dobu (48 hodin) s roztokem vína špatné kvality, ale jeho výhodou je usnadnění etapy filtrace. Na druhé straně potřebná hmotnost uhlíku je dvakrát větší ve srovnání s práškovým uhlím.
Jeden litr pětkrát zředěného roztoku vína špatné kvality, byl přiveden do kontaktu s 200 gramy extrudovaného aktivního uhlí (Nořit® RO-08 Supra) po dobu 48 hodin. Po . eliminaci neadsorbované frakce byla frakce obsahující RG-II desorbována umístěním do roztoku ethanolu 40 % na dobu 24 hodin. Získaný RG-II vykazoval stejný stupeň čistoty jako RG-II získaný za použití práškového uhlí.
(b) Na smíšené pryskyřici polystyren-divinylbenzenu (Résine. Relite® DIAION® SP411) • ·
DIAION® SP411 je polystyrenu
RG-II na syntetická nepolární a divinylbenzenu. úkor dalších extraktech. Tyto
Pryskyřice Relite® pryskyřice tvořená Tato pryskyřice polysacharidů, jsou tedy separovány na na pryskyřici Relite® obsahuje polysacharidy která obsahuje RG-II.
kopolymery zadržuj e přítomných v dvě frakce adsorpční chromatografií frakce,
DIAION® SP411:
různé od RG-II nezadržená a zadržená frakce,
Čištěni RG-II základní úrovni
Schéma čištění RG-II základní úrovni z vína špatné kvality je znázorněno na obr. 6. 250 litrů pětkrát zředěného roztoku vína špatné kvality (2,5 objemů kolony) bylo rychle odbarveno filtrací na aktivním uhlí Nořit® RO-08 Supra a potom procházelo kolonou 90 litrů Relite® DIAION® SP411 při výtěžku 40 1/hod (kontaktní doba 2 hodiny pro adsorpci RG-II na tomto chromatografickém nosiči). Kolona byla promývána 100 litry vody. Nezadržená frakce je tedy představována promývací tekutinou. Vymývání RG-II bylo dosaženo průchodem 100 litrů ethanolu 20 % následovaným promýváním kolony 200 litry vody.
Takto získaný RG-II (1 kg přípravku z celého objemu vína špatné kvality) vykazoval stupeň čistoty blízký 60 % (tabulka 2). RG-II byl precipitován přidáním ethanolu (koncová koncentrace 40 % ethanolu). Takto získaný precipitát obsahuje RG-II se stupněm čistoty 90 %.
PŘÍKLAD 3 ZÍSKÁNÍ RG-II ADSORPČNÍ CHROMATOGRAFIí Z VÍNA
Víno (červené víno réva Merlot 94, bílé víno Chardonnay 94) bylo dealkoholisováno a koncentrováno dvakrát odpařením ve.
vakuu na rotačním odpařovacim zařízení.
• ·
Dvě frakce 15 ml byly nality na 50 ml Relite® DIAION® SP411 při 25 ml/hod. Potom byla kolona promývána 50 ml vody. RG-II pak byl vymyt 50 ml ethanolu 20 % a kolona byla promývána 100 ml vody. Analýza CLHP (obr. 7) ukazuje, že RG-II je kvantitativně adsorbován na pryskyřici, neboť není přítomen ve frakci, nezadržené na pryskyřici a že je kvantitativně získán promytím ethanolem 20 %. Stupeň čistoty roztoku RG-II je blízké 50 % u červeného vína (tabulka 2) a 35 % u bílého vina.
PŘÍKLAD 4 ZÍSKÁNÍ RG-II ADSORPČNÍ CHROMATOGRAFI! Z MOŠTU VINNÝCH HROZNU
Amberlite® XAD 2 je nepolární pryskyřice, která je kopolymerem polystyrenu a divinylbenzenu. 100 ml moštu bílých vinných hroznů získaných rozdrcením bobulí révy Grenache byly injektovány do kolony 100 ml pryskyřice XAD 2 vyvážená ve vodě. RG-II byl vymyt jedním objemem methanolu 60 % a stupeň čistoty byl zhruba 40 %. Výsledky analýzy vymyté složky jsou uvedeny v tabulce 2.
PŘÍKLAD 5 ZÍSKÁNÍ RG-II ADSORPČNÍ CHROMATOGRAFIí Z OVOCNÉ ŠŤÁVY A ZE ZELENINY
Rozpustné extrakty byly získány z 0,6 kg oloupaných a nastrouhaných jablek, rajských jablek a mrkve v 200 ml kyseliny askorbové (výsledná koncentrace 3 mM),. Použitá šťáva ovoce a zeleniny byla získána enzymatickým ztekucením spojeným působením komerčních enzymatických přípravků (Pectinex® Ultra SPL, Novo Ferment a Rapidase® Liq, GistBrocades) po dobu 24 hodin při 45°C. Reakce zkapalňování byla přerušena denaturací enzymů působením tepla. Pevná residua byla eliminována centrifugací a supernatant byl. použit jako zdroj RG-II.
Čištění RG-II ovoce a zeleniny po enzymatickém ztekucení
Šťávy ovoce a zeleniny, získané enzymatickým ztekucením byly filtrovány filtračním papírem před průchodem kolonou (2,5 x 30 cm) vyváženou vodou, obsahující 50 ml Relite® DIAION® SP411 při 25 ml/hod. Kolona byla promývána 50 ml vody, následovalo vymývání RG-II 50 ml ethanolu 20 % a promývání kolony 100 ml vody.
Tímto způsobem získané RG-II vykazovaly stupeň čistoty vyšší než 80 %.
Výsledky jejich analýzy jsou podány v tabulce 2.
PŘÍKLAD 6 SELEKCE MIKROORGANISMU DEGRADUJÍCÍCH RG-II V
MONOMERNÍ FORMĚ
RG-II je universální složkou buněčných stěn rostlin a jeho degradace v biosféře je zaručována mikroorganismy přirozených ekosystémů: půdy, kompostů, kalech čisticích stanic ...
Vycházejíce z přírodních vzorků byly isolovány dva kmeny hub, náležejících dvěma druhům Penicillium, které používají RG-II jako jediný zdroj uhlíku a energie.
1. Kultivační prostředí
Kultivační prostředí použité pro selekci mikroorganismů, používajících RG-II jako zdroj uhlíku a energie bylo vytvořeno způsobem, který vyplývá z tabulky 3. Jedná se o minerální kultivační prostředí, do kterého byl přidán roztok monomerického RG-II ve výsledné koncentraci od 2 mg/1 do 10. mg/ml. Kultury obsahující houby byly zbaveny kontaminujících — 93 — ·· ·· · ·· ·· ···· ···· ······ · ···· · ···· • ····· · · · ···· • · · · · · · ·· ·· ··· ···· ·· · bakterií přidáním tří antibiotik do kultivačního prostředí: penicilín G, streptomycin a tetracyklin.
2. Selekce mikroorganismů užívajících RG-II jako zdroje uhlíku a energie
Vzorky byly odebrány z různých přírodních ekosystémů (zemědělská nebo lesní půda, rašeliny, komposty, kaly z čisticích stanic, ovoce ve stavu dekompozice . ..) a vloženy do kultury při 25°C až 37°C v minerálním kultivačním prostředí upraveném na obsah 10 mg/ml monomerického RG-II. Pokaždé, když byl pozorován růst mikroorganismů, kultury byly přeočkovány vícenásobně na témž prostředí. Tento postup dovolil isolovat nejdříve více kultur, zaručujících jejich růst na prostředí s RG-II. Degradace RG-II v prostředí byla současně kontrolována vysokovýkonnou sterickou vylučovací chromatografií a byly ponechány pouze kultury, v nichž bylo pozorováno, že současně s růstem mikroorganismů dochází k degradaci RG-II.
Mikroorganismy zaručující degradaci RG-II byly isolovány po rozdělení kultur v Petriho miskách v gelovém prostředí, získaném přidáním agarosy 2 % do kultivačního prostředí (tabulka 3) a obsahujícím 2,5 mg/ml monomerického RG-II. Po jednom týdnu inkubace při 25 °C byly klony odebrány a naočkovány do tekutého kultivačního prostředí, aby bylo možno ověřit jejich schopnost degradace RG-II.
3. Volba kmenů degradujících RG-II
Nakonec byly získány dva kmeny vláknitých hub, neboť vykazovaly požadované vlastnosti:
1. Rychlý růst perfektně korelovaný s ubýváním RG-II v prostředí.
2. Úbytek množství RG-II byl pozorován souběžně s posunem jeho vymývacího objemu při HP-SEC, což indikuje přítomnost enzymatického účinku degradace typu endo-hydrolasy.
3. Výsledné úroveň degradace RG-II dosáhla 70 % po jenom týdnu kultivace při 25°C.
Tyto dvě kultury, označené jako E a K byly následně použity pro produkci enzymů degradujících RG-II a zkoumání způsobů enzymatického působení. Byly kultivovány bez míchání za kontaktu se vzduchem při 25 °C v tekutém kultivačním prostředí obsahujícícm 5 mg/ml RG-II a v přítomnosti tří antibiotik: penicilinu G, streptomycinu a tetracyklinu.
PŘÍKLAD 7 PRODUKCE ENZYMU DEGRADUJÍCÍCH RG-II
Různé druhy Penicillium jsou známy pro jejich schopnost produkovat a rozšiřovat v kultivačním prostředí enzymy degradace polysacharidů. Byla ověřena schopnost dvou isolovaných kmenů produkovat enzymy degradace RG-II.
1. Výzkum enzymů degradace RG-II v supernatantu kultury:
Kmeny P. daleae LaV2 (deponovaný u CNCM jako N° 1-1578) a P.' simplicissimum IPV1 (deponovaný u CNCM jako N° 1-1577) byly kultivovány při 25°C v kultivačním prostředí, obsahujícím
2,5 mg/ml monomerického RG-II. Po 96 hodinách kultivace byl odebrán 1 ml kultury, obsahující rostoucí mycelium, sterilně filtrován na filtru 0,22 μιη a pak bylo přidáno 2 mg/ml původního RG-II. Prostředí obsahující enzymy degradace a RGII bylo ponecháno k inkubaci při 25°C a po 0,20 a 45 hodinách byly odebrány frakce 25 μΐ a analyzovány pomocí CES-HP. Porovnání mezi dvěma profily vymývání RG-II v různých dobách inkubace jasně prokázaly absenci účinku degradace RG-II v kultivačním prostředí. Tyto účinky byly • · · · · ·· ···«·· • » · · ···· · · · • · · · · · · · · • ····· · · · ··· · • · · · · · · ·· ·· ··· ···· ·· · proto hledány v cytoplasmě a periplasmě hub.
2. Produkce enzymů degradace RG-II v úplných buněčných extraktech hub:
Výše uvedené kmeny P. daleae LaV2 a P. simplicissimum IPV1 byly kultivovány při 25°C v 4 ml kultivačního prostředí, obsahujícího 6 mg/ml monomerického RG-II. Po 140 hodinách kultivace bylo mycelium odebráno centrifugací, po které následovalo drcení (se skleněnými kuličkami) při 4°C po dobu 4 minut v pufru MES (kyselina morfolino-ethan-sulfonová)/KOH 50 mM nastaveném na pH 6 s přidáním 1 mM PMSF (fenylmethylsulfonyl fluorid) a 1 mM DTT (dithiothreitol) . Buněčný supernatant byl získán centrifugací při 10000 g x 5 minut.
Přítomnost enzymů degradace RG-II v rozpustném buněčném extraktu byla testována přidáním původního RG-II v koncentraci 2,5 mg/ml do supernatantu po rozdrcení a centrifugací, inkubací při 25°C následovanou chromatografii CES-HP degradace RG-II. Analýza profilů v okamžicích 24 hodin a 48 hodin ve srovnáni s původním RG-II (obr. 8 a obr. 9) ukazuje silnou degradaci (50 %) RG-II po 24 hodinách, která pokračuje až do 48 hodin a dává 40 % residuální ch' molekul.
Enzymatické účinky, zaručující degradaci RG-II jsou tedy přítomny v rozpustném buněčném extraktu a mohou tedy být získány po rozdrcení hub. Dva isolované kmeny Penicillium tedy produkují enzymy degradace rhamnogalacturonanu II.
PŘÍKLAD 8 CHARAKTERIZACE DEGRADAČNÍCH ÚČINKU NA RG-II
Dva isolované a identifikované kmeny Penicillium produkují enzymy, které degradují RG-II v kultivačním prostředí..
Způsob působení těchto enzymů byl nejprve zkoumán sledováním ···· • ·· • ·· • · 4·· •· ··Φ· ··· • ·
·· degradace polysacharidů v kultivačním prostředí souběžně s růstem mikroorganismů. Nevýhodou tohoto přístupu je, že dovoluje sledovat pouze frakci RG-II, která není asimilována houbou, nicméně dovoluje si uvědomit k jakým účinkům dochází a jaký je jejich způsob působení.
1. Provedeni kinetiky degradace RG-II pomocí Penicilliuin simplicissimum
Kmen P. simplicissimum IPV1 byl kultivován v Erlenmeyerově baňce při 25 °C v 10 ml kultivačního prostředí s 5 mg/ml monomerického RG-II. V okamžicích 0, 96, 132, 168 a 192 hodin byly odebrány frakce 1 ml. pH kultivačního prostředí bylo potom upraveno na 5 přidáním 20 μΐ HC1 1M. Nové odebírání bylo provedeno po 360 hodinách a kultura byla nakonec zastavena po 400 hodinách inkubace. Každý vzorek byl analyzován pomocí CES-HP (obr. 10), což dovolilo sledovat degradaci v průběhu růstu hub. Různé odebrané frakce byly odsoleny na koloně (1 x 50 cm) Bio-Gel P-6, vyvážené pufrem octanem sodným 100 mM na pH 4.
Po každé inkubační době byla provedena úplná strukturální analýza frakce RG-II v procesu degradace. Tato analýza zahrnovala:
- Kvantifikativní určení poměru degradace RG-II.
- Určení složení vzhledem k neutrálním glycidům a uronovým kyselinám.
- Určení typu vazeb mezi residuy, vytvářejícími molekulu.
- Určení délky homo-galacturonického řetězce.
Soubor těchto analýz dovolil určit stav molekuly RG-II po každý odebraný vzorek a tedy sledovat jeho degradaci v závislosti na čase. Tyto výsledky ukazují, že docházelo k enzymatické degradaci molekuly v průběhu času.
• e
2. Provedeni kinetiky degradace RG-II pomocí Penicillium daleae
Pro sledování degradace RG-II kmenem P. daleae LaV2 bylo nejprve 500 mg monomerického RG-II nejprve zmýdelněno (2 hodiny při 4°C v NaOH 50 mM) , poté redukováno (6 hodin při 4°C v přítomnosti 2,5 g NaBH4) , aby byla označena extrémní redukční schopnost molekuly. Kmen P. daleae LaV2 byl kultivován v Erlenmeyerově baňce při 25 °C v 6 ml kultivačního prostředí s 5 mg/ml zmýdelněného a redukovaného RG-II. V okamžicích 0, 72, 120, 168, 240, 264, 336 a 384 hodin byly odebrány frakce 0,6 ml. Každý vzorek byl analyzován pomocí CES-HP (obr. degradaci v průběhu růstu hub. odsoleny na koloně (1 x 30 cm)
11), což dovolilo sledovat Různé odebrané frakce byly Superdex-75 HR vyvážené při
0,6 ml/min pufrem mravenčanem amonným 30 mM na pH 5,2.
Po každé inkubačni době byla provedena úplná strukturální analýza frakce RG-II v procesu degradace. Tato analýza zahrnovala:
- Kvantifikativní určeni poměru degradace RG-II.
- Určení složení vzhledem k neutrálním glycidům a uronovým kyselinám ve formě trimethylsilylovaných derivátů po methanolýze.
- Určení typu vazeb mezi residuy, vytvářejícími molekulu analýzou methylace zahrnující redukci uronových kyselin lithium triethylborodeuteridem (Pellerin a kol., 1995 Carbohydr. Res. 277, str. 135-143).
- Určení délky homo-galakturonického řetězce.
Soubor těchto analýz dovolil určit stav molekuly RG-II po každý odebraný vzorek a tedy sledovat jeho degradaci v závislosti na čase. Tyto výsledky ukazují, že docházelo k
3. Mechanismus degradace RG-II
Analýza složeni (tabulky 4 a 5) a typů vazeb pro každé residuum, nacházející se v molekule (tabulky 6 a 7( dovoluje sledovat stav residuální molekuly RG-II v průběhu času. Vyplývá z ní, že RG-II je v případě použití dvou kmenů Penicillium sérií enzymů, které působí sekvenčním způsobem:
a) První etapa degradace spočívá v přerušení vazeb mezi residuem trojnásobně substituované β-L-rhamnosy a residuy aL-fukosy a β-D-apiosy, což vede ke ztrátě řetězce A (obr. 12), který je asimilován houbou. Tato etapa se odehrává v průběhu prvního dne kultivace souběžně se slabým zkrácením homo-galakturonického řetězce, který se mění v průměru z 8-9 residuí na 7 residuí a s částečnou ztrátou koncových residuí arabinofuranosy (B7 a D2) a rhamnopyranosy (Č2).
b) Úplná eliminace residuí A2 až A5 v řetězci A neseném residuem β-D-apiosy se zdá zvyšovat odolnost molekuly RG-II vůči enzymatické degradaci, neboť je pozorována druhá fáze degradace, která se vyznačuje:
- Silným zkrácením homo-galaktoronického řetězce, který se zmenší na v průměru 4 residua kyseliny galakturonové.
- Ztrátou residua Al.
Modifikacemi týkajícími se neredukujícího ’ zakončení řetězce B, stále vázaného ke homo-galakturonickému řetězci prostřednictvím β-D-apiosy, jmenovitě kvantitativní ztrátou koncového arabinofuranosového residua a ztrátou residuí a-Lrhamnosy (residua B6 a B7).
Residua Kdo a Dha se zdají být částečně ovlivněny enzymatickou degradací.
Všechny pozorované degradace v průběhu této druhé fáze mohou být získány pomocí známých enzymů: β-D-apiosidasy, β-Larabinosidasy, oc-L-rhamnosidasy, endo- nebo exopolygalakturonasy.
Residuální molekula na konci růstu hub odpovídá kvantitativně řetězci B (residua Bx až B5) , residuím Kdo (Cl) a Dha (Dl) neseným kyselým oligosacharidem středního stupně polymerace 4 a představuje 20 až 30 % původní molekuly RG-II (obr. 13).
První etapa, ve které dochází ke dvěma enzymatickým účinkům typu endo- je tedy klíčová etapa, která dovoluje degradaci molekuly RG-II. Kvantitativní uvolnění řetězce A činí ve skutečnosti molekulu citlivou na působení enzymů se známými způsoby působení, které jsou často nalézány v komerčních enzymatických přípravcích.
Produkce enzymů s účinkem typu endo- β-L-rhamnopyranosyl(1—»3')-D-apiofuranosyl hydrolasy (1) a endo- a-Lfukopyranosyl-(1—>4)-L-rhamnopyranosyl hydrolasy (2) kmenem P. daleae LaV2 a P. simplicissimum IPV1 je tedy rozhodující etapa, která houbám dovoluje zajistit si. svůj růst použitím
RG-II. Je to tedy použití těchto rhamnopyranosyl- (l-»3')-D-apiofuranosyl enzymů endo- β-Lhydrolasy a endo- aL-fukopyranosyl-(1—>4) -L-rhamnopyranosyl dovoluje zesílenou enzymatickou degradaci účinku (1) je silnější, neboť řetězec B hydrolytickým účinkem, zatímco je galakturonickému řetězci prostřednictvím apiosidové vazby stejného typu. Tento rozdíl řetězci hydrolasy, které
RG-II. Specificita není ovlivněn jeho vázán k homorhamnosylv chování účinku (1) vzhledem k řetězcům A a B může být vysvětlen:
• · · ί ······· ·· *
- buď rozdílem mezi substituenty rhamnosy: jeden řetězec vázaný v C3 v případě B, jeden řetězec vázaný v C4 a dva monosacharidy vázané v C2 a C3 v případě A, nebo rozdílnou lokalizací těchto dvou řetězců uvnitř molekuly RG-II.
Přítomnost jednoho nebo druhého z těchto účinků v enzymatickém přípravku dovoluje uvolnění řetězce A RG-II a řeší tedy problém nedegradovatelnosti RG-II obvyklými enzymy z pektinolytických přípravků. Ostatní enzymy, dovolující ještě více zesílenou degradaci RG-II totiž zasahují až po oddělení řetězce A účinkem výše jmenovaných enzymů. V této druhé etapě degradace zasahují enzymy s účinky:
- β-D-apiosidasy,
- cc-L-arabinosidasy,
- oc-L-rhamnosidasy,
- endo-polygalakturonasy,
- exo-polygalakturonasy.
PŘÍKLAD 9 ZÍSKÁNÍ PŘÍPRAVKU DIMERICKÉHO RG-II A DEGRADACE POMOCÍ Penicillium daleae:
Kmen P. daleae byl kultivován v prostředí obsahujícím 5 mg/ml přípravku RG-II, získaného průchodem koncentrátů vina špatné kvality přes pryskyřici Relite® DIAION® (příklad 2) . Tento přípravek obsahoval zhruba 60 % RG-II, který se nachází v dimerické podobě, jak ukazuje analýza na koloně Superdex-75 HR. Sledování kultivačního prostředí houby chromatografií CLHP (obr. 14) ukazuje silnou degradaci RG-
II. Nečistoty o nej vyšší molekulární hmotnosti (hlavně mannany, přítomné v koncentrátu vína špatné kvality) nejsou degradovány.
Kmeny Penicillium isolované na monomerickém RG-II tedy vykazují schopnost degradovat RG-II ve formě dimeru. Enzymy, které představuji předmět vynálezu, jsou tedy účinné na obě formy molekuly.
PŘÍKLAD 10 ZÍSKÁNÍ ENZYMATICKÉHO PŘÍPRAVKU DEGRADUJÍCÍHO RGII
Enzymatický přípravek obsahující účinek degradace RG-II, speciálně účinky endo- β-L-rhamnopyranosyl-(1—»3') -Dapiofuranosyl hydrolasy a endo- α-L- fukopyranosyl-(1—>4)-Lrhamnopyranosyl hydrolasy, byl získán z kultury P. simplicissimum IPV1 získané následujícím způsobem:
120 ml kultivačního prostředí, obsahujícího 6 mg/ml čištěného RG-II bylo rozmístěno do 8 Petriho misek. Kmen P. simplicissimum IPV1 byl kultivován při 25 °C po dobu 6 dní. Mycelium (v čerstvém stavu 1,2 g) bylo potom získáno centrifugací následovanou rozdrcením, jak bylo popsáno výše (příklad 3) v pufru MES/KOH 50 mM nastaveném na pH 6, obsahujícím 1 mM PMSF a DTT. Celkový enzymatický extrakt (6 ml) byl nakonec získán centrifugací a použit v následujících příkladech.
PŘÍKLAD 11 DEGRADACE ČIŠTĚNÉHO RG-II ENZYMATICKÝM EXTRAKTEM P. simplicissimum IPV1:
Následující směs byla ponechána na inkubaci při teplotě 25°C v přítomnosti 0,02 % NaN3:
- 500 μΐ pufru octanu sodného 50 mM, pH 4,8,
- 12,5 μΐ roztoku čištěného RG-II (tabulka 1, frakce II) 200 ml/ml,
- 25 μΐ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum • ·
IPV1 získaného podle příkladu 5.
Odebírání 25 μΐ byla prováděna po 0, 72, 120 a 148 hodinách a vzorky byly analyzovány pomocí CES-HP. Přítomnost enzymů s účinkem endo- β-L-rhamnopyranosyl-(1—»3')-D-apiofuranosyl hydrolasy nebo endo-a-L-fukopyranosyl-(1—>4)-Lrhamnopyranosyl hydrolasy byla potvrzena degradací RG-II (obr. 15). Degradační profil je ostatně srovnatelný s profilem, získaným sledováním supernatantu kultury P. simplicissimum (obr. 10). Produkty degradace molekuly RG-II se objevují ve frakcionační oblasti nízkých molekulových hmotností (obr. 15).
PŘÍKLAD 12 DEGRADACE POLYSACHARIDU VÍNA ENZYMATICKÝM EXTRAKTEM P. simplicissimum IPV1:
Úplný enzymatický extrakt, obsahující enzymy degradace RGII, speciálně účinky typu endo- β-L-rhamnopyranosyl-(1—»3')D-apiofuranosyl hydrolasy nebo endo- α-L- fukopyranosyl(1—>4)-L-rhamnopyranosyl hydrolasy byl zkoumán na svoji schopnost degradovat RG-II, přítomný ve víně.
Úplné polysacharidy červeného vína (réva Carignan noir) byly získány ultrafiltrací vína (2 ml) na membráně Centrikon 30 (Amicon, USA) . Filtrát (100 μΐ) byl vyjmut 1,9 ml pufru octanu 50 mM pH 4,8. Následující vzorky byly ponechány na inkubaci při 25°C v přítomnosti 0,02 % NaN3:
a: 200 μΐ filtrátu obsahujícího úplné polysacharidy vína, μΐ vody, μΐ pufru MES drcení b: 200 μΐ filtrátu obsahujícího úplné polysacharidy vína, μΐ vody, μΐ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum
IPV1, získaného podle přikladu 9,
C: 200 μΐ filtrátu obsahujícího úplné polysacharidy vína, μί Pectinex® Ultra Sp-L (Novo Ferment, Švýcarsko), μΐ pufru MES drcení, d: 200 μΐ filtrátu obsahujícího úplné polysacharidy vína, μΐ Pectinex® Ultra Sp-L, μΐ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1, získaného podle příkladu 9,
Po 48 hodinách bylo odebráno 25 μΐ každého vzorku a analyzováno pomocí chromatografie CES-HP. Z analýzy výsledků (obr. 16 a 17) vychází:
- Degradace RG-II vína (charakteristický vrchol, vymývání po 18,2 minutách) enzymatickým extraktem P. simplicissimum IPV1 (obr. 16) .
Degradace dalších polysacharidů vína (mannoproteinů, arabinanů a arabinogalaktananů) komerčním enzymatickým přípravkem Pectinex® Ultra Sp-L, zatímco charakteristický vrchol RG-II zůstává neporušen (obr. 17).
Komplementární účinek dvou enzymatických přípravků byl potvrzen (obr. 17) degradací souboru polysacharidů vína ve vzorku c.
Úplný enzymatický extrakt P. simplicissimum IPV1 obsahující enzymy typu endo- β-L-rhamnopyranosyl-(1—>3 ')-D-api‘ofuranosyl hydrolasy nebo endo- α-L- fukopyranosyl-(1—»4)-Lrhamnopyranosyl hydrolasy tedy obsahuje enzymatické účinky, které chybějí v komerčních enzymatických přípravcích vyráběných z Aspergillus aculeatus a je bohatý na účinky celulolytické, hemicelulasické a pektinolytické, speciálně účinek rhamnogalakturonasy (Schols a kol., 1990, Carbohydr.
• ·
Res., 206, str. 105-115).
Přidání enzymů podle předkládaného vynálezu spolu s dalšímu pektinolytickými účinky vede na zesílenou degradaci polysacharidů vína a dovoluje tedy zlepšení filtrovatelnosti a zabraňuje vytváření problémů s koloidy a precipitáty.
PŘÍKLAD 13 DEGRADACE POLYSACHARIDŮ JABLEČNÉHO MOŠTU ENZYMATICKÝM EXTRAKTEM P. simplicissimum IPV1:
Ovocná šťáva z jablka byla připravena z 1 kg jablek (odrůda Starking): celá jablka byla rozsekána na plátky o tloušťce 1 cm, byl přidán 1 g kyseliny askorbové a 500 μΐ enzymatického přípravku Rapidase® Liq (Gist Brocades, Francie) a ponechány 2 hodiny za míchání při 50°C. Ovoce potom bylo ztekuceno působením komerčního enzymatického přípravku a šťáva je nakonec získána centrifugací. Přípravek Rapidase® Liq obsahuje zvýšené množství účinků typu pektinasy (pektin, lyasa, endo- a exo-polygalakturonasa, rhamnogalakturonasa, arabanasa, ...), hemicelulasy (galaktanasy, xylanasy, .. . ) a celulasy.
1,5 ml čiré jablečné šťávy bylo ultrafiltrováno na membráně Centricon 30 (Amicon, USA) .. Filtrát (100 μΐ) byl vyjmut 1,4 ml pufru octanu 50 mM pH 4,8 a následující vzorky byly ponechány k inkubaci při 25°C v přítomnosti 0,02 % NaN3:
a: 200 μΐ filtrátu obsahujícího úplné polysacharidy jablečné šťávy, μΐ vody, b: 200 μΐ filtrátu obsahujícího úplné polysacharidy jablečné šťávy, μΐ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum
IPV1 .
Po 48 hodinách bylo z každého vzorku odebráno 25 μΐ k provedeni analýzy chromatografií CES-HP.
Analýza výsledků (obr. 18) ukazuje komplementární účinek enzymů degradace RG-II, neboť přidání enzymatického extraktu
P. simplicissimum IPV1 dovoluje zesílenou degradaci residuálních polysacharidů po zpracování jablek přípravkem Rapidase® Liq. Speciálně charakteristický vrchol RG-II (vymývání po 18,2 min) je podroben silné degradaci. Navíc degradace struktur o nejvyšších molekulárních hmotnostech, odolných na účinek enzymů, přítomných v Rapidase® Liq naznačuje, že tyto frakce také obsahují fragmenty RG-II.
Úplný enzymatický extrakt P. simplicissimum IPV1, ve kterém byly prokázány účinky typu endo- β-L-rhamnopyranosyl-(1—>3 ' ) D-apiofuranosyl hydrolasy nebo endo- α-L- fukopyranosyl(1—>4)-L-rhamnopyranosyl hydrolasy, obsahuje tedy enzymatické účinky, které nejsou přítomny v komerčních enzymatických přípravcích vyráběných z Aspergillus niger a popsaných jako přípravky, mající soubor známých celulolytických, hemicelulasických a pektinolytických účinků (v to počítaje účinky rhamnogalakturonasy). Komplementární a doplňující účinek enzymů degradace RG-II je tedy tímto pokusem dostatečně prokázán.
PŘÍKLAD 14 MACERACE OVOCE A ZELENINY ENZYMATICKÝM EXTRAKTEM
P. simplicissimum IPV1:
Účinek disociace rostlinných tkání u úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1 byl prokázán na následujícím ovoci a zelenině:
• · • · · t · · · · · • ····· · « · ··· · • 9 · · · · · • · α · ······· · · ·
- červená řepa,
- mrkev,
- brambory „Bintge
- jablka Golden.
Fragmenty o rozměrech 158 x 4 x 2 mm každého ovoce nebo zeleniny byly umístěny v 2 ml pufru octanu 50 mM pH 4,8 a k nim bylo přidáno:
- 200 μΐ pufru MES drcení pro srovnávací pokusy,
- 200 μΐ úplného enzymatického extraktu P. simplicissimum IPV1 pro enzymatické pokusy.
Různé vzorky byly umístěny k inkubaci při 25°C v přítomnosti NaN3 po dobu 72 hodin a potom byly intenzivně míchány vírem (2 x 10 vteřin) a fotografovány. Z analýzy výsledků vyplynulo:
- Téměř úplná rozpad tkáně u červené řepy a mrkve (obr. 19).
Maceračni účinek, doprovázený objevením se buněk v suspensi u brambor a jablek (obr. 20).
Úplný enzymatický extrakt extraktu P. simplicissimum IPV1 obsahující účinky typu endo-p-L-rhamnopyranosyl-(1—>3' )-Dapiofuranosyl hydrolasy nebo endo-a-L- fukopyranosyl(1—»4)-L-rhamnopyranosyl hydrolasy má tedy schopnost disociace rostlinných tkání.
Průmyslová využitelnost
Enzymatický účinek degradace RG-II může tedy být použit buď jako takový a nebo v kombinaci s dalšími enzymy v tekuté fázi a nebo na pevných nosičích a dovoluje:
- degradaci zvýšeného stupně, například na 70 %, RG-II ve šťávách ovoce, zeleniny a jejich derivátech, čímž se dosáhne lepší filtrovatelnosti, usnadní se příprava koncentrátů šťáv a usnadňují se fenomény čištění a zajišťuje se dobrá stabilita výsledných produktů,
- čištění nosičů mikro- a ultrafiltrace, používaných při filtraci šťáv ovoce, zeleniny a jejich derivátů.
Tyto enzymatické účinky usnadňují degradaci buněčných stěn rostlin a jsou tedy použitelné buď samy o sobě a nebo v kombinaci s ostatními enzymy ve všech aplikacích, které vyžadují maceraci, ztekucení nebo úplnou nebo částečnou hydrolýzu rostlinných tkání, obzvláště:
v přípravě produktů typu maceras, jako jsou ovocné nektary, pyré, želé a ovocné a zeleninové koncentráty a jejich deriváty, v to počítaje i víno,
- v přípravě šťáv a aromatických bází ovoce, zeleniny a jejich derivátů ztekucováním, v to počítaje i víno a přípravu piva,
- ve výrobě pektinů vycházejíce z rostlinných residuí jako jsou bulvy červené řepy, z pevných residuí po lisování ovoce a podobně,
- ve výrobě potravy pro zvířata z rostlinných materiálů ve výrobě celulózy z rostlin pro textilní průmysl (obzvláště s bavlnou jako výchozím materiálem) a ve výrobě papíru, ve výrobě oligosacharidů s elicitickým účinkem vyvolávajícím obrannou reakci rostlin, přičemž tyto oligosacharidy mohou být použity jako fytosanitární produkty.
Zastupuj e:
Dr. Miloš Všetečka v.r.
JUDr. Miloš Všetečka advokát 120 00 Praha 2, Hálkova 2
TABULKA I
Složeni dvou frakcí RG-II isolovaných z vina
Frakce II
Frakce III
Stav molekuly monomer dimer
Proteiny® 0,6 0,6
Uronové kyseliny® 36, 9 39
Neutrální cukry® 27,3 24, 9
Methanol® 1,4 1,3
Kyselina octová3 1,6 1,8
Rhamnosab 31,8 35,4
2-O-CH3~f ukosab 6,3 6,5
Fukosab 3,7 5,2
2-0-CH3-xylosab 4,8 4,8
Apiosab 7,4 7,5
Arabinosab 25 23,7
Galaktosab 19,1 15, 8
Kyselina acerováb 1,2 2,2
Kyselina galakturonováb 38,2 37,2
Kyselina glukuronováb 3,3 3,4
Kdob 4,4 5
Dhab 2, 6 '2,5
a %sušiny b%molárních
Kultivační prostředí vláknitých hub
JUDr. Miloš Všetečka advokát
120 00 Praha 2, Hálkova 2
TABULKA 3
Minerální prostředí
NH4NO3 2 g/1 k2hpo4 1 g/1
MgSO4, 7 H2O KC1 Síran železitý Hellerův roztok 0,5 g/1
0,5 g/1
10 mg/1
ZnSO4 1 g/1
MnSO4, H2O 0,1 g/1
CuSO4, 5 H20 0,03 g/1
A1C12 0,03 g/1
NíC12, 6 H2O 0.03 g/1
KJ 0,01 g/1
Kys. boritá Vitaminový roztok 1 g/1
Vit Bl 0,08 g/1
Vit H 0,08 g/1
Provedení kultivačního prostředí
minerální prostředí 1 ml
Hellerův roztok 1 μι
Vitaminový roztok 1 μι
Streptomycin (50 mg/ml) 2 μι
Tetracyklin (5 mg/ml) 2 μΐ
Penicilín (10000 J/ml) 10 μΐ
Polysacharid 5 mg/ml
Kultura realizována při teplotě o kolí (25°C),
Tabulka 4 Složeni (v % výchozí sušiny) RG-II v průběhu kinetiky degradace pomocí
P. simplicissimum
x: o O 10,3 o Ch 20,2 Ο CM Ch CM o o O o LO !-----1 i—1 LO CM LO 00 0 0 'T <0 CM
x: to 'ťT Ch t—1 t—1 o LO CM 'xT CM CM <0 í—1
CM •s *. v K. LO
Ch co kO CM lO o o CM CM LO O
t—1 r—| r-l 00 i—1
x: r*H r-1 CM Ο 'TT 1—1 i—1 o r- Ch CO
co k. K. O. ·< o. <K K. 1 lO
kO Ch CO Γ- CM kO o o lO CM CM co 0 kD
?—1 r—1 ΟΟ t—1
x: t—1 σ\ o t—i CM kO CM LO LO LO LO co t~~- r-J
CM X K s. s. v <0. s. s. Γ-
co co LO Ch CM r- o t—1 LO co 00 o r-H
τ—1 CM CM r-H
x: LO 00 CO 1------1 r*H kO O Γ- o CM O 00 ΟΟ
kD K. ·». X v 1 Ch
Ch CO lO 00 CM Ch !------1 <—1 kO OJ LO co
CM CO MO CM
Ή CM CO í—1 i—1 CM CM LO CO CM σ> 0
N «Κ K X. K. 1 0
O CO o co CM Ch t—1 rH kO CM LO 00 00 co r—1
r CM 'xT kO CM
o
>
<
1—1 Φ
CM fd u
ί>Ί 0 0 N
α XV
Η ε kO CM 4->
ι—Η 2 CQ O 1—1 (V
Φ 2 K 0
ω 75 CM r- t—1
Ή CQ £Q m ω O
ω K. K X. ř x:
Φ CM 00 CO lO t—1 LO CM '(V
ít m < < < m < < >
> O
Ό ο c
Ή C CM <5
kj ο < Id 1--------1
Φ kj
3 'íú +J
O 4- > Φ
cd >1 0 '(Ú 75 r—1
ω C χ: α > 1—1 0
0 •H ο 0 0 75 E
α i—1 φ >. cd cd c tP
o (1) CC 75 cn cn 73 0 O Ή
E ω ο Ή 0 o kj ε α
>1 C U r—| α o Γ—1
Ή 0 75 cd <d r >75
C Ε Uj Φ X ω ω r~H 3 b
1—1 υ CO 1 0 0 Φ <—J Cl 75
'<υ > 75 Φ O 75 φ c cd JO CO Cn 75
0 kJ c cn 2 •H cn X cn
4-> c -U 0 E 0 1 0 rd Φ
b 0 C O rd X O Π5 Ή <—1 cn cn >Sd !a
Φ kj φ 0 -C b 1 kj d 03 Ξ>ί 4-)
Z ζ 2 CM 0 Ul OJ < < 0 cn o\°
• · · ·
x:
oo co
OJ i—1 tO cx CX Oxl o OJ tO LD co LO
V. s. <s. H.
o o o o o o o o o to CO
LO
OJ
Složeni v počtu residuí RG/II v průběhu kinetiky degradace pomocí P. daleae o: to co co oj
O O O CO o!
r—icoocoLO^axr-cotooxtOrH C\lOrHOr-lt—IOC--OOOOCO o
tO
LO tO
£1 to 00 o- LT) o- co LO on to LO co co lD to
O s. K. ·. s. to
OJ o o o γΉ 1-----1 r-4 o o O o co
OJ i—I
x: co to x: o OJ
Ή N o x: o
XX >
OOOOCOOJCOCO
CO «—I t-1 r—4 í—I OJ t—I Oco o
<0 o
σχ o
co o o <-1
OJ
O co
CO o-
OJ o o o o to co LO to co t—i o o
·» K. <S, s. K.
co i—1 «-Η i—1 OJ OJ i—i o rH v—4 o ,--------1 t—1 o θ'- oj co
o o o o o o o LO o to σχ r- > LO
•w v. S. S.
r4 r-4 rH cx co cx O 1—1 o o o θ' co
!-----1 Cti
<ϋ ω o λ: c 05 ca 0 ι—1 ω π5
<0 d X ω
cn 1 1 ο 0
0 φ φ φ ο5 C 4J
c S ω Σ ω • r-4
E 1 ο I ο Ό 05
05 Ο Ο •Η ο5 1—I
£. 1 3 1 d Sx Π3
Λ cx Id ΟΧ < < Ο
4J Λί rO
'05 ι—1
> 05
Ο '05 CH Φ
C > Ο Ο
0 0 ε Ν
S-: C ο
0 0 '05 d 4J
d >-ι > Φ
X 0 d »-Ι
05 i-l 73
r—1 3 Φ Ο
05 <—4 Ο Ή χ:
ÍJ1 Cn 05 > C
0 73 >
d Φ 0
ω ω Ο 05 ,—I »4 α
^>Ί >, Ό η φ 4-J 0
d X Q ο >-ι
σϊ residuální molekuly 100
φ
o 3 TS <0 >-l Cn Φ Ό JZ
3 O o
X xT
>Φ -Q »3 Gl X
Csl
> <n !------i
HH M 1 O x:
íX. o
3 X) «—1
<—1 3 Λί Φ r—1 x:
O CM
E m
r o Ή o Ή 5—1 x:
•Γ-ι <O
Φ O
X '05 > 4—> Ή
N
> o
Ή X U
3
Ό >
Ή CO Φ 3 -Q E 3
Φ 3
N TS
05 H
> co
05 Φ
Φ υ <3 1-------------1 5>i
>1 5 n
x 3 N
4-) E o5
φ Ή >
Ξ CO
co O.
05 3 >1
N CJ ř-i
'3
1—1 —5
05 Q.
C E
< •3
<0 í-l
Φ
XI x
X. X
o φ
X Ή i—1
r—í U X
3 O x
X E 4J
3 o φ
E-i £b s
o o o r-4
o o —r o vi oo 1 a o X oí 1 00 T 3 3 Φ υ o
<3 O O_ Ό Ό
O *-* O • r—I o
co Φ u Ό
X ω
3SS i—1 X Ό 3 X ><u X Π5 I-------------1
E 0
Φ »3 XJ
T5 •H
Φ £L c
tn O r—| X M > E (Ό x
o *—· >
X c c 1 1—1
o >1
E x
ctí •3
d íÉ ctí -q d jQ O X3 Um ‘H. ctí <J ·? ň. >s >< o > 73 73
4 2 á • O ZJ < C ''T O O
en xr • Ctí X. -A en Ix en en tt “í cn en
CM en CM* ÍX CM~ CM CM* cm en «4 CM* CM* en cm“
··
Tabulka 7. Analýza methylace a vazeb residuí vytvářejících molekulu RG-II v průběhu degradace pomocí Penicillium daleae
Methylether Vazba Výchozí 72 h
120 h 163 h 240 h 264 h
2.3.4- Rha
3.4- Rlia
2.4- RJia
3- Rha
Rha
2.3.4- Fuc
2- Fuc
2.3.4- Xyl
2.3- Api
2.3.5- Ani
3.4- Ara
4- Ara
2.3.4.6- Gal
2.6- Gal. .
3.6- Gal
3- Acer
2.3.4- GalA
2,3-GaJA
2- GalA
3- CralA
GaJA
1.2.3.5- GalA
2.3.4- GlcA
3,4GlcA
Rlmp—> —>2-Rhap-> ->3-Rhap-+ —>2,4-Rhnp—> —>2,3,4-Rh ap—>
2-O-CH3-Fuc->
—>3,4-Fuc—>
2-G-CH3-Xyl->
->3‘-Api—>
Ara/->
—>2-Arap->
—>2,3-Arap—>
Galp—>
->3,4-Galp-> ->2,4-Galp->
—>2-AccrA—>
Galp A—>
—>4-GalpA—> ->3,4-GalpA-> ->2,4'GalpA->
—>2,3,4-GalpA—> —>4-GalpA rčduit
GIcpA—> —>2-GlcpA—>
1.4 1.2
1.1 0.7
1 1
0.4 0.1
1.2 1.2
0.8 0.7
0.6 0.7
0.6 0.6
2.2 2.2
11.2
0.50.4
1I
0.3
1.21.1
0.70.8
0.70.6
0.50.5
2.32.2
1.2 1.2
0.3 0.4
1 1
0.8 0.3
0.7 0.8
0.3 0.2
0.3 0,1
2,2 1.8
1.6 1.4 1.1 1.3 0.8 0.8
0.3 0.3 0.3 0.3 0.5
0.6 0.7 0.6 0.6 0.4 0.2
0.5 0.5 0.5 0.4 0.3 0.2
0.6 0.6 0.5 0.5 0.4 0.3
1.0 1.2 1.1 1.1 1.0 0.9
0.5 0.5 0.3 0.5 0.6 0.6
2.6 3.0 3.0 2.6 1.9 1.4
2.0 2.3 2.1 1.8 1.7 1 1.5
1.5 1.5 1.5 1.5 1.3 1.3
1.1 1.2 1.3 1.3 1.8 1.6
0.8 0.9 0.8 0.7 0.3 0.2
1.0 0.9 0.8 0.7 0.7 0.8
0.2
1.1 1.4 1.3 1.1 0.6 0.4
Výsledky jsou dány v molárních poměrech vypočtených vzhledem k 1 residuu —»3) -Rhap->, residuu B2 v molekule RG-II, které zůstává neměnné v průběhu degradace
2,3,4-Me3-Rha = 1,5-di-O-acetyl-2,3,4-tri-O-methyl-rhamnitol, atd.

Claims (27)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY 1. Enzym, vyznačující se tím, že vykazuje degradační účinek na rhamnogalaktoronanu II (RG-II) a jeho deriváty. 2 . Enzym podle nároku 1, vyznačující se tím, že
    vykazuje účinek typu endo-hydrolasy.
  2. 3. Enzym podle nároků 1 a 2, vyznačující se tím, že vykazuje účinek endo-p-L-rhamnopyranosyl-(1—»3' )-Dapiofuranosyl hydrolasy.
  3. 4. Enzym podle nároků 1 a 2, vyznačující se tím, že vykazuje účinek endo-a-L-fukopyranosyl-(1—>4)-Lrhamnopyranosyl hydrolasy.
  4. 5. Mikroorganismus, obzvláště houba, vyznačující se tím, že vykazuje degradační účinek na RG-II a jeho deriváty.
  5. 6. Houba podle nároku 5, vyznačující se tím, že je druhu Penicillium.
    7. Kmen hub podle některého z nároků 5 a 6, vyznačující se tím, že je deponován u CNCM pod číslem 1-1578 (LAV2). 8. Kmen hub podle některého z nároků 5 a 6, vyznačující se tím, že je deponován u CNCM pod číslem 1-1577
    (IPV1).
  6. 9. Enzym podle některého z nároků 1 až 4, vyznačující se tím, že může být produkován kmenem podle některého z • · · ·
    nároků 5 až 8 . • · · • · · · • · ······· ·· 10. Enzymatický přípravek, vyznačující se tím, že obsahuj e enzym podle některého z nároků 1 až 4 a 9. 11. Způsob výroby enzymu nebo enzymatického přípravku podle některého z nároků 1 až 4 a 9 a 10, zahrnuj ící
    následující etapy:
    - kultivace mikroorganismů podle některého z nároků 5 až 8 v kultivačním prostředí upraveném k produkci enzymů podle některého z nároků 1 až 4, získání enzymů nebo enzymatického přípravku ze supernatantu kultury nebo ze supernatantu drti mikroorganismů.
  7. 12. Způsob podle nároku 11, vyznačující se tím, že zahrnuje následující etapy:
    - kultivaci mikroorganismů podle některého z nároků 5 až 8 v kultivačním prostředí upraveném pro mikroorganismy obsahující RG-II nebo některý z jeho derivátů,
    - získáni mikroorganismů,
    - rozdrcení mikroorganismů,
    - eliminace nerozpustného materiálu, a získání supernatantu obsahujícího enzym nebo enzymový přípravek.
  8. 13. Způsob získání RG-II z extraktu rostlinného původu, zahrnující následující etapy:
    - separace makromolekul obsahujících uvedený extrakt a
    - chromatografie iontovou výměnou při pH vyšším než 4.
  9. 14. Způsob podle nároku 13, vyznačující se tím, že separace je prováděna precipitací nebo ultrafiltrací.
  10. 15. Způsob podle některého z nároků 13 a 14, ·· ··· · vyznačující se tím, že chromatografie iontovou výměnou je následována sférickou vylučovací chromatografií.
  11. 16. Způsob získání RG-II z extraktů rostlinného původu zahrnující alespoň jednu adsorpční chromatografii na nosiči, zadržujícím RG-II.
  12. 17. Způsob podle nároku 16 vyznačující se tím, že adsorpční chromatografie je prováděna na aktivním uhlí nebo na polystyren/divinylbenzenové pryskyřici.
  13. 18. Přípravek podle některého z obsahuje alespoň 95
    RG-II, který může nároků 13 až 17 být získán vyznačující způsobem se tím, z
  14. 19. Přípravek podle některého obsahuje alespoň
    % monomerů RG-II. : RG-II, který může být získán způsobem nároků 13 až 17 vyznačující se tím, %, výhodně více než 95% dimerů RG-II.
  15. 20. Způsob selekce mikroorganismů, obzvláště hub, na jejich schopnost degradovat RG-II vyznačující se tím, že uvedené mikroorganismy se nechají růst na přizpůsobeném kultivačním prostředí obsahujícím RG-II, přičemž uvedený RGII je možno získat způsobem podle některého z nároků 13 až 17 .
  16. 21. Kultivační prostředí pro mikroorganismy, vyznačující se tím, že obsahuje RG-II, získaný způsobem podle některého z nároků 13 až 17.
  17. 22. Způsob podle některého z nároků 11 nebo 12 vyznačující se tím, že RG-II je získán způsobem podle některého z nároků 13 až 17.
  18. 23. Použiti enzymu nebo enzymatického přípravku podle některého z nároků 1 až 4, 9 a 10 nebo získaného způsobem podle některého z nároků 11 a 12 pro degradaci nebo modifikaci RG-II nebo jeho derivátů.
  19. 24. Použití enzymu nebo enzymatického přípravku podle některého z nároků 1 až 4, 9 a 10 nebo získaného způsobem podle některého z nároků 11 a 12 pro zlepšení filtrovatelnosti a usnadnění přípravy koncentrované šťávy nebo pro usnadnění čištění.
  20. 25. Použití enzymu nebo enzymatického přípravku podle některého z nároků 1 až 4, 9 a .10 nebo získaného způsobem podle některého z nároků 11 a 12 pro čištění filtračních nosičů použitých pro filtraci ovocných nebo zeleninových šťáv a jejich derivátů.
  21. 26. Použití enzymu nebo enzymatického přípravku podle některého z nároků 1 až 4, 9 a 10 nebo získaného způsobem podle některého z nároků 11 a 12 pro maceraci, ztekucení nebo úplnou nebo částečnou hydrolýzu rostlinné tkáně.
  22. 27. Použití podle nároku 26 v macerační přípravě pro výrobu ovocných nektarů, pyré, želé a ovocných a zeleninových koncentrátů a jejich derivátů, v to počítaje i víno.
  23. 28. Použití podle nároku 26 při ztekucování pro přípravu ovocných a zeleninových šťáv a aromatických bází a jejich derivátů, v to počítaje i víno a při výrobě piva.
  24. 29. Použití podle nároku 26 pro výrobu pektinů z rostlinných residuí jako jsou bulvy červené řepy a pevných resíduí vzniklých lisováním ovoce.
  25. 30. Použiti podle nároku 26 pro přípravu potravy pro zvířata z rostlinných látek.
  26. 31. Použití podle nároku 26 pro výrobu celulózy z rostlin, výhodně z bavlny, pro textilní průmysl a ve výrobě papíru,
  27. 32. Použití podle nároku 26 pro výrobu oligosacharidů s elicitickým účinkem vyvolávajícím obrannou reakci rostlin, přičemž tyto oligosacharidy jsou vyráběny z rostlinných residuí a mohou být použity jako fytosanitární produkty.
CZ973701A 1995-05-23 1996-05-21 Enzym degradující rhamnogalakturonan II a jeho deriváty, způsob výroby tohoto enzymu a rhamnogalakturonanu II a použití enzymu CZ370197A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9506142A FR2734578B1 (fr) 1995-05-23 1995-05-23 Enzyme degradant le rhamnogalacturonane ii, procedes d'obtention de cette enzyme et du rhamnogalacturonane ii et utilisation de cette enzyme

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ370197A3 true CZ370197A3 (cs) 1998-03-18

Family

ID=9479302

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ973701A CZ370197A3 (cs) 1995-05-23 1996-05-21 Enzym degradující rhamnogalakturonan II a jeho deriváty, způsob výroby tohoto enzymu a rhamnogalakturonanu II a použití enzymu

Country Status (20)

Country Link
US (1) US6103506A (cs)
EP (1) EP0827533B1 (cs)
JP (1) JPH11508127A (cs)
AR (1) AR002067A1 (cs)
AT (1) ATE330006T1 (cs)
AU (1) AU6006796A (cs)
BR (1) BR9608812A (cs)
CA (1) CA2222193A1 (cs)
CZ (1) CZ370197A3 (cs)
DE (1) DE69636247D1 (cs)
FR (1) FR2734578B1 (cs)
HU (1) HUP9900744A2 (cs)
IL (1) IL118404A (cs)
PL (1) PL323529A1 (cs)
RU (1) RU2220203C2 (cs)
SK (1) SK156697A3 (cs)
TR (1) TR199701421T1 (cs)
UA (1) UA64696C2 (cs)
WO (1) WO1996037604A2 (cs)
ZA (1) ZA964107B (cs)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7132119B1 (en) 1997-04-08 2006-11-07 Pall Corporation Method for producing beer
WO1999038956A2 (en) * 1998-01-30 1999-08-05 Institut National De La Recherche Agronomique Enzyme modifying rhamnogalacturonane ii, dna encoding for said enzymes and method for producing the enzyme
FR2980800B1 (fr) * 2011-09-30 2014-01-10 Agronomique Inst Nat Rech Procede de preparation d'un produit alimentaire liquide enrichi en oligosaccharides et en polysaccharides
JP6539400B1 (ja) * 2018-10-24 2019-07-03 株式会社アンチエイジング・プロ Lps高含有組成物の製造方法
CN117204574B (zh) * 2023-11-09 2024-02-02 北京市农林科学院 促进肠道菌群发酵平衡的果胶基膳食补充剂及其制备方法

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3541945A1 (de) * 1985-11-27 1987-06-04 Lomapharm Rudolf Lohman Gmbh K Immunstimulierend wirkende polysaccharide aus zellkulturen von echinacea purpurea (l.) moench und echinacea angustifolia, d.c. verfahren zu ihrer herstellung und sie enthaltende pharmazeutische zubereitungen
DE3934304A1 (de) * 1989-10-13 1991-04-18 Lohmann Rudolf Lomapharm Polysaccharide mit antiphlogistischer wirkung, verfahren zu ihrer gewinnung und sie enthaltende arzneimittel
JPH06506831A (ja) * 1991-05-02 1994-08-04 ノボザイムス アクティーゼルスカブ ラムノガラクツロナーゼ、対応するdna配列、ラムノガラクツロナーゼ含有酵素調製物および該酵素調製物の用途
EP0570075A3 (en) * 1992-05-15 1995-02-15 Quest Int Cloning and expression of DNA encoding a ripening form of a polypeptide having rhamnogalacturonase activity.
DE4221753C2 (de) * 1992-07-02 1994-11-24 Plantamed Arzneimittel Gmbh Immunologisch und antiphlogistisch wirksame Polysaccharide aus Sedum telephium, Verfahren zu ihrer Gewinnung und diese enthaltende Arzneimittel
DK24493D0 (cs) * 1993-03-05 1993-03-05 Novo Nordisk As

Also Published As

Publication number Publication date
AR002067A1 (es) 1998-01-07
CA2222193A1 (fr) 1996-11-28
US6103506A (en) 2000-08-15
WO1996037604A2 (fr) 1996-11-28
IL118404A0 (en) 1996-09-12
PL323529A1 (en) 1998-03-30
UA64696C2 (en) 2004-03-15
ATE330006T1 (de) 2006-07-15
WO1996037604A3 (fr) 1997-01-23
SK156697A3 (en) 1998-09-09
TR199701421T1 (xx) 1998-02-21
AU6006796A (en) 1996-12-11
EP0827533B1 (fr) 2006-06-14
DE69636247D1 (de) 2006-07-27
EP0827533A2 (fr) 1998-03-11
ZA964107B (en) 1996-12-03
HUP9900744A2 (hu) 1999-06-28
FR2734578B1 (fr) 1997-08-14
FR2734578A1 (fr) 1996-11-29
RU2220203C2 (ru) 2003-12-27
BR9608812A (pt) 1999-02-17
JPH11508127A (ja) 1999-07-21
IL118404A (en) 2006-10-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Vidal et al. Polysaccharides from grape berry cell walls. Part I: tissue distribution and structural characterization of the pectic polysaccharides
Tapre et al. Pectinases: Enzymes for fruit processing industry
Shet et al. Pectinolytic enzymes: classification, production, purification and applications
US5591620A (en) Methods of detecting and isolating a ripening form of a polypeptide having rhamnogalacturonase activity
NZ202876A (en) Enzymes for degradation of carbohydrates
AU662327B2 (en) Rhamnogalacturonase, corresponding DNA sequence, rhamnogalacturonase containing enzyme preparation and use of the enzyme preparation
Vidal et al. Soluble polysaccharide content at initial time of experimental must preparation
US8563276B2 (en) Method of enzyme cleavage of polysaccharides derived from algae
CZ370197A3 (cs) Enzym degradující rhamnogalakturonan II a jeho deriváty, způsob výroby tohoto enzymu a rhamnogalakturonanu II a použití enzymu
DE10019076A1 (de) Verwendung von Polygalakturoniden als Lebensmittelzusatzstoffe
EP2618686A2 (en) Methods of juice production
FR2736359A1 (fr) Beta-glucosidase de champignons filamenteaux, et ses utilisations
Bassim Atta et al. Chapter Fungal Pectinases in Food Technology
EP0570075A2 (en) Cloning and expression of DNA encoding a ripening form of a polypeptide having rhamnogalacturonase activity
Vidal et al. Penicillium daleae, a soil fungus able to degrade rhamnogalacturonan II, a complex pectic polysaccharide
Konno et al. Degradation of pectic polysaccharides extracted from suspension cultures of carrot by purified exo‐polygalacturonase
Ortiz-Basurto et al. Presence of rhamnogalacturonan II in the juices produced by enzymatic liquefaction of Agave pulquero stem (Agave mapisaga)
Jeong et al. Production of an anti-complement exo-polymer produced by Auricularia auricula-judae in submerged culture
Angelova Microbial pectinases: application in horticultural industries
CN1189185A (zh) 降解鼠李半乳糖醛酸聚糖ⅱ的酶和微生物
KR100945717B1 (ko) 고추 추출물을 발효공법에 의해 변형시킨 변형고추펙틴과 그 제조방법 및 용도
Gewali et al. Studies on polygalacturonase from Aspergllus flavus
Mgbede et al. Pectinase production from a local isolate of Aspergillus niger using orange bagasse as a carbon source
JPH0779769A (ja) 新規培地およびそれを用いた微生物による可食性セルロースゲルの製造方法
Herweijer et al. Endo-xylogalacturonan hydrolase: a novel enzyme for fruit processing

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic