RU2728379C1 - Nutrient medium dense for brucella cultivation - Google Patents

Nutrient medium dense for brucella cultivation Download PDF

Info

Publication number
RU2728379C1
RU2728379C1 RU2019138097A RU2019138097A RU2728379C1 RU 2728379 C1 RU2728379 C1 RU 2728379C1 RU 2019138097 A RU2019138097 A RU 2019138097A RU 2019138097 A RU2019138097 A RU 2019138097A RU 2728379 C1 RU2728379 C1 RU 2728379C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
agar
brucella
cultivation
nutrient medium
birds
Prior art date
Application number
RU2019138097A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Людмила Семеновна Катунина
Александр Николаевич Куличенко
Анна Алексеевна Курилова
Юрий Сергеевич Ковтун
Людмила Дмитриевна Тимченко
Игорь Владимирович Ржепаковским
Марина Николаевна Сизоненко
Светлана Суреновна Аванесян
Валерий Николаевич Вакулин
Виктория Геннадьевна Сафонникова
Екатерина Игоревна Василенко
Елена Борисовна Жилченко
Наталия Сергеевна Сердюк
Ольга Анатольевна Коняева
Ольга Николаевна Белозёрова
Нина Вадимовна Жаринова
Original Assignee
Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" filed Critical Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека"
Priority to RU2019138097A priority Critical patent/RU2728379C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2728379C1 publication Critical patent/RU2728379C1/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/30Nerves; Brain; Eyes; Corneal cells; Cerebrospinal fluid; Neuronal stem cells; Neuronal precursor cells; Glial cells; Oligodendrocytes; Schwann cells; Astroglia; Astrocytes; Choroid plexus; Spinal cord tissue
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Ophthalmology & Optometry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to the field of biotechnology. Invention is represented by a dense nutrient medium for Brucella cultivation, including mixing dry fermentative peptone, sodium chloride, microbiological agar, mixed hydrolyzate of embryo and extraembryonic birds tissues – stimulator C with distilled water, heating to boiling, boiling till complete agar melting, filtration, pH adjustment with hydrochloric acid solution (1:1) to pH 7.2±0.1, pouring finished filtrate into flasks and hermetic sealing, sterilization in autoclave.
EFFECT: use of the given medium enables to grow a sufficient number of colonies of the brucellosis agent early in 24–48 hours.
1 cl, 3 ex

Description

Изобретение относится к биотехнологии и микробиологии, а именно - к разработке питательных сред, которые создают оптимальные условия для культивирования бруцеллезного микроба.The invention relates to biotechnology and microbiology, namely, to the development of nutrient media that create optimal conditions for the cultivation of the brucellosis microbe.

Известна питательная среда - мясопептонный агар для выращивания бруцеллезного микроба, основой которой является мясная вода - до 1000,0 мл; пептон ферментативный - 10,0 г; натрия хлорид - 5,0 г; кровь - 10,0 г; агар микробиологический - 15,0-20,0 г; рН 7,3±0,2. Среду автоклавируют 30 мин при температуре 121°С (М.С.Поляк; В.И. Сухаревич; М.Э. Сухаревич. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СПб.-2008.- С. 64-65.; С. 269).Known nutrient medium - mesopatamia agar for growing brucellosis microbe, the basis of which is meat water - up to 1000.0 ml; enzymatic peptone - 10.0 g; sodium chloride - 5.0 g; blood - 10.0 g; microbiological agar - 15.0-20.0 g; pH 7.3 ± 0.2. The medium is autoclaved for 30 minutes at a temperature of 121 ° C (M.S. Polyak; V.I.Sukharevich; M.E.Sukharevich. Nutrient media for medical and sanitary microbiology.SPb .: ELBI-SPb.-2008.- P. 64 -65; p. 269).

Недостатком данной среды является недостаточная питательная ценность для бруцелл.The disadvantage of this medium is the lack of nutritional value for brucella.

Наиболее близким к заявляемому изобретению является способ получения питательной среды-заменителя «Альбими»-агара для культивирования бруцелл, содержащей, на 1 л: 20,0 г сухого пептона, 20 мл дрожжевой воды, 5 г химически чистого хлористого натрия и 20 г агар-агара, рН 7,3. Указанные ингредиенты растворяют в автоклаве под текучим паром и фильтруют через ватно-марлевый фильтр (предварительно смоченный теплой водой и хорошо отжатый). Затем добавляют 1 г глюкозы и 0,1 г бисульфита натрия, устанавливают рН 7,2-7,3. Разливают в необходимую посуду и стерилизуют 40 минут под текучим паром, а потом при 110°С в течение 20 мин. Дрожжевая вода: 1 кг хлебных дрожжей и 1 л дистиллированной воды кипятят до растворения. Затем фильтруют через полотно. Хранить нужно под хлороформом в темноте не более двух недель (Эпидемиологический надзор и лабораторная диагностика бруцеллеза. Методические указания МУ 3.1.7. 3402-16. Издание официальное. Минздрав России, Москва. 2017 г. с. 58).Closest to the claimed invention is a method of obtaining a nutrient medium-substitute for "Albimi" -agar for the cultivation of brucella, containing, per 1 liter: 20.0 g of dry peptone, 20 ml of yeast water, 5 g of chemically pure sodium chloride and 20 g of agar agar, pH 7.3. These ingredients are dissolved in an autoclave under flowing steam and filtered through a cotton-gauze filter (pre-moistened with warm water and well wrung out). Then add 1 g of glucose and 0.1 g of sodium bisulfite, adjust the pH to 7.2-7.3. It is poured into the necessary dishes and sterilized for 40 minutes under flowing steam, and then at 110 ° C for 20 minutes. Yeast water: 1 kg of bread yeast and 1 liter of distilled water are boiled until dissolved. Then filtered through a web. It should be stored under chloroform in the dark for no more than two weeks (Epidemiological surveillance and laboratory diagnosis of brucellosis. Guidelines MU 3.1.7. 3402-16. Official edition. Ministry of Health of Russia, Moscow. 2017, p. 58).

Недостатком питательной среды, полученной данным способом, является медленный рост возбудителя.The disadvantage of the nutrient medium obtained by this method is the slow growth of the pathogen.

Целью изобретения является разработка способа получения питательной среды плотной для культивирования бруцелл, обеспечивающей рост колоний возбудителя через 24 и 48 ч, что имеет существенное значение для диагностики инфекции и производства биопрепаратов.The aim of the invention is to develop a method for producing a dense nutrient medium for the cultivation of brucella, providing the growth of pathogen colonies after 24 and 48 hours, which is essential for the diagnosis of infection and the production of biological products.

Достигаемый технический результат заключается в том, что в технологию изготовления питательной среды вводится получение стимулятора С, который является смешанным гидролизатом подвергшихся специальной обработке эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц. В качестве питательной основы и источника азота среда содержит ферментативный сухой пептон, а также включает: натрий хлористый, агар микробиологический и дистиллированную воду.The achieved technical result consists in the fact that the production of a stimulator C is introduced into the technology of manufacturing a nutrient medium, which is a mixed hydrolyzate of embryonic and extraembryonic tissues of birds subjected to special treatment. As a nutrient base and a source of nitrogen, the medium contains enzymatic dry peptone, and also includes: sodium chloride, microbiological agar and distilled water.

Сущность изобретения заключается в применении стимулятора С, который в составе питательной среды для культивировании возбудителя бруцеллеза обеспечивает значительное сокращение времени роста колоний бруцелл, образующихся в ранние сроки - через 24 и 48 ч, на пластинках питательной среды, содержащей следующие ингредиенты:The essence of the invention lies in the use of stimulant C, which, in the composition of the nutrient medium for the cultivation of the pathogen of brucellosis, provides a significant reduction in the growth time of Brucella colonies formed in the early stages - after 24 and 48 hours, on plates of the nutrient medium containing the following ingredients:

пептон сухой ферментативныйpeptone dry enzymatic 20,0 г;20.0 g; натрий хлористыйsodium chloride 5,0 г;5.0 g; агар микробиологическийmicrobiological agar 9,0 г;9.0 g; стимулятор С (смешанный гидролизат эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц)stimulator C (mixed hydrolyzate of embryonic and extraembryonic tissues of birds) 35,0 мл;35.0 ml; дистиллированная водаdistilled water до 1 лup to 1 l

В качестве исходного сырья для получения стимулятора С используют эмбриональные и внеэмбриональные ткани птиц. После многостадийной предварительной обработки сырья путем сначала кислотного, затем ферментативного гидролиза получают смешанный гидролизат (Rzhepakovsky I.V., Timchenko L.D., Areshidze D.A., Avanesyan S.S., Budkevich E.V., Piskov S.I., Mannino S., Lodygin A.D., Kovalev D.A., Kochergin S.G. Antioxidant activity of chicken embryo tissues powder obtained by different methods of hydrolysis /Journal of Hygienic Engineering and Design (Македония, электронный.). - 2019. - Vol. 27. - pp. 127-133. E-ISSN:1857-8489 http://www.jhed.mk/categories/view/478/457.Embryonic and extraembryonic tissues of birds are used as a raw material for obtaining stimulator C. After multi-stage pretreatment of raw materials by first acidic, then enzymatic hydrolysis, a mixed hydrolyzate is obtained (Rzhepakovsky IV, Timchenko LD, Areshidze DA, Avanesyan SS, Budkevich EV, Piskov SI, Mannino S., Lodygin AD, Kovalev DA, Kochergin SG Antioxidant activity of chicken embryo tissues powder obtained by different methods of hydrolysis / Journal of Hygienic Engineering and Design (Macedonia, electronic.). - 2019. - Vol. 27. - pp. 127-133. E-ISSN: 1857-8489 http: // www .jhed.mk / categories / view / 478/457.

Характеристика получаемого гидролизата: стерильная, прозрачная жидкость коричневого цвета, без консервантов; содержание сухого вещества (35,0±3,0) г/л, рН гидролизата 7,0-7,5, реакция с сульфосалициловой кислотой на протеины - отрицательная, общий азот (0,37±0,03) %, аминный азот (0,11±0,02) %, степень гидролиза (30,8±3,0) %.Characteristics of the resulting hydrolyzate: sterile, transparent brown liquid, without preservatives; dry matter content (35.0 ± 3.0) g / l, hydrolyzate pH 7.0-7.5, reaction with sulfosalicylic acid for proteins - negative, total nitrogen (0.37 ± 0.03)%, amine nitrogen (0.11 ± 0.02)%, degree of hydrolysis (30.8 ± 3.0)%.

Схема получения смешанного гидролизата (стимулятора С):The scheme for obtaining a mixed hydrolyzate (stimulant C):

- предварительная обработка эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц в процессе инкубирования 9-10 суточных куриных эмбрионов для стимуляции обменных процессов;- preliminary processing of embryonic and extraembryonic tissues of birds during incubation of 9-10 day old chicken embryos to stimulate metabolic processes;

- выдерживание в холодильной камере в течение 7 суток;- keeping in a refrigerator for 7 days;

- гомогенизация тканей;- tissue homogenization;

- наноструктурирование массы в гомогенизаторе высокого давления;- nanostructuring of the mass in a high-pressure homogenizer;

- замораживание и лиофилизация полученной массы;- freezing and lyophilization of the resulting mass;

- фракционирование полученного белоксодержащего порошка на белки, пептиды, аминокислоты, углеводы, нуклеиновые кислоты, минеральные соединения и т.п.;- fractionation of the obtained protein-containing powder into proteins, peptides, amino acids, carbohydrates, nucleic acids, mineral compounds, etc .;

- кислотный гидролиз;- acid hydrolysis;

- ферментативный гидролиз;- enzymatic hydrolysis;

- очистка субстанции;- substance purification;

- автоклавирование.- autoclaving.

Натрий хлористый - хч, ГОСТ 4233-77, партия 24. Произведен в г. Барнаул. Дата изготовления 06.2017 г. Срок годности 3 года. Бактерии нуждаются в минимальном количестве солей. Будучи растворены в питательной среде и находясь в состоянии электролитического распада, ионизируемые минеральные соединения являются одновременно катализаторами различных химических процессов, происходящих в микробной клетке. Натрий хлористый необходим для поддержания изотоничности среды и окислительно-восстановительного потенциала.Sodium chloride - chemically pure grade, GOST 4233-77, batch 24. Produced in Barnaul. Date of manufacture 06.2017 Expiry date 3 years. Bacteria need a minimum amount of salt. Dissolved in a nutrient medium and being in a state of electrolytic decay, ionizable mineral compounds are simultaneously catalysts for various chemical processes occurring in the microbial cell. Sodium chloride is necessary to maintain the isotonicity of the medium and the redox potential.

Пептон сухой ферментативный для бактериологических целей - ГОСТ 13805-76. Производитель ООО «НПО «Порт-Петровск». Дата изготовления 05.2018 г. Годен до 05.2021 года. Пептон представляет собой смесь разнообразных частиц распада белка, не свертывающихся при нагревании (пептоны, пептиды, аминокислоты и т.д.). Пептон ферментативный в своем составе содержит 16 аминокислот, мг %: аспарагиновая кислота 0,40±0,03; треонин 0,30±0,01; серии 0,40±0,03; глутаминовая кислота 0,50±0,03; глицин 0,50±0,01; аланин 1,0±0,02; валин 0,80±0,02; метионин 0,40±0,02; изолейцин 0,70±0,01; лейцин 2,40±0,06; тирозин 0,40±0,01; фенилаланин 1,30±0,01; лизин 1,30±0,05; гистидин 0,20±0,02; аргинин 1,70±0,09; триптофан 0,06±0,01 (Шепелин А.П., Дятлов И.А. Питательные среды для энтеробактерий. Оболенск 2017. С. 43; с. 232).Dry enzymatic peptone for bacteriological purposes - GOST 13805-76. Producer LLC NPO Port-Petrovsk. Date of manufacture 05.2018 Expiry date 05.2021. Peptone is a mixture of various protein breakdown particles that do not coagulate when heated (peptones, peptides, amino acids, etc.). Enzymatic peptone contains 16 amino acids, mg%: aspartic acid 0.40 ± 0.03; threonine 0.30 ± 0.01; series 0.40 ± 0.03; glutamic acid 0.50 ± 0.03; glycine 0.50 ± 0.01; alanine 1.0 ± 0.02; valine 0.80 ± 0.02; methionine 0.40 ± 0.02; isoleucine 0.70 ± 0.01; leucine 2.40 ± 0.06; tyrosine 0.40 ± 0.01; phenylalanine 1.30 ± 0.01; lysine 1.30 ± 0.05; histidine 0.20 ± 0.02; arginine 1.70 ± 0.09; tryptophan 0.06 ± 0.01 (Shepelin A.P., Dyatlov I.A. Nutrient media for enterobacteria. Obolensk 2017, p. 43; p. 232).

Агар микробиологический - агар бактериологический (европейский тип). Производитель: «Pronadisa» Испания. Партия LF 15130184. Дата изготовления: октябрь 2017 г. Срок годности: до 10.2022 г. Порошок светло-кремового цвета сероватого оттенка, запах без постороннего, свойственный студню с массовой долей сухого агара 0,85%. Температура плавления студня с массовой долей сухого агара 0,85% не ниже 80°С, температура застудневания 30-37°С, прочность студня не менее 350±40 г. Главная особенность агара - его желирующая способность при 90°С.Microbiological agar - bacteriological agar (European type). Manufacturer: "Pronadisa" Spain. Lot LF 15130184. Date of manufacture: October 2017 Expiry date: until 10.2022 Powder of light creamy grayish color, odor without foreign matter, characteristic of jelly with a mass fraction of dry agar 0.85%. The melting point of jelly with a mass fraction of dry agar of 0.85% is not lower than 80 ° C, the gelation temperature is 30-37 ° C, the strength of the jelly is not less than 350 ± 40 g. The main feature of agar is its gelling ability at 90 ° C.

Дистиллированная вода - ГОСТ 6709-72, отвечает всем санитарно-гигиеническим требованиям. Внешний вид - прозрачная жидкость, хлориды, мг/дм нет, нитраты, мг/дм нет. Удельная электропроводимость при 20°С, См/м - 0,38, рН - 6,5. Вода составляет 80-90% от клеточной массы микроорганизмов и играет важнейшую роль в их физиологических функциях, а также входит в состав структурных элементов клетки, служит средой для биохимических реакций, источником кислорода в процессах метаболизма, непосредственно участвует в метаболических реакциях, например, в реакциях гидролиза.Distilled water - GOST 6709-72, meets all sanitary and hygienic requirements. Appearance - transparent liquid, chlorides, no mg / dm, nitrates, no mg / dm. Specific electrical conductivity at 20 ° C, S / m - 0.38, pH - 6.5. Water makes up 80-90% of the cell mass of microorganisms and plays an important role in their physiological functions, and is also part of the structural elements of the cell, serves as a medium for biochemical reactions, a source of oxygen in metabolic processes, directly participates in metabolic reactions, for example, in reactions hydrolysis.

Получение смешанного гидролизата из эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц (стимулятора С).Obtaining a mixed hydrolyzate from embryonic and extraembryonic tissues of birds (stimulant C).

Из сублимата эмбриональных и внеэмбриональных тканей 9-10-суточных куриных эмбрионов (Инкубатор для яиц ИЛБ-0,5, Россия и Лиофильная сушилка ЛС-500, Проинтех, Россия) удаляют липиды петролейным эфиром (Роторный испаритель RV 10 Basic V, IKA, Германия) с последующим высушиванием обезжиренного белоксодержащего остатка (Лиофильная сушилка ЛС-500, Проинтех). Берут 500 мл дистиллированной воды (дистиллятор, Liston, Россия) вносят в 20 г белоксодержащего порошка, перемешивают и помещают в шейкер-термостат ES 20/60 (Biosan, Латвия) для выдерживания при 50°С в течение 30 мин и при встряхивании 100 об./мин. Затем к раствору добавляют 35% HC1 до ее концентрации 0,5% и выдерживают при 50°С в течение 60 мин и при встряхивании 100 об./мин в шейкер-термостате ES 20/60 (Biosan, Латвия). Затем полученную массу автоклавируют при 125°С 60 мин в стерилизаторе паровом СПВА-75-1НН (Транс-сигнал, Россия). Охлажденный до 37°С автоклават нейтрализуют 1 М NaOH до рН 7,0-7,5, вносят трипсин 25 мкг/мл, выдерживают при перемешивании 120 мин при 37°С в шейкер-термостате ES 20/60 (Biosan, Латвия) при встряхивании 100 об./мин. Ферментацию останавливают нагревом до 90°С в течение 10 мин на термобане ЛАБ-ТЖ-ТБ-01/26 (Медлаб, Россия). Полученный гидролизат центрифугируют (центрифуга с охлаждением SL40R (Thermo fisher scientific, США) при 4000-5000 g в течение 120 минут при температуре 4°С.Полученную после центрифугирования жидкость последовательно фильтруют с помощью фильтрационной системы Vivaflow 50 (Sartorius, Франция) с применением ПЭС кассет (размеры пор 0,2 мкм, 30 kDa и 10 kDa) и автоклавируют при 120°С 10 мин в стерилизаторе паровом СПВА-75-1НН (Транс-сигнал, Россия).Lipids are removed from the sublimate of embryonic and extraembryonic tissues of 9-10-day-old chicken embryos (Incubator for eggs ILB-0.5, Russia and Lyophilic dryer LS-500, Prointech, Russia) with petroleum ether (Rotary evaporator RV 10 Basic V, IKA, Germany ) with subsequent drying of the defatted protein-containing residue (Lyophilic dryer LS-500, Prointech). Take 500 ml of distilled water (distiller, Liston, Russia), add to 20 g of protein-containing powder, mix and place in a shaker-thermostat ES 20/60 (Biosan, Latvia) for incubation at 50 ° C for 30 min and with shaking 100 vol. ./min. Then 35% HC1 is added to the solution to its concentration of 0.5% and kept at 50 ° C for 60 min and with shaking at 100 rpm in an ES 20/60 shaker thermostat (Biosan, Latvia). Then the resulting mass is autoclaved at 125 ° C for 60 min in a steam sterilizer SPVA-75-1NN (Trans-signal, Russia). The autoclavate cooled to 37 ° C is neutralized with 1 M NaOH to pH 7.0-7.5, trypsin is added 25 μg / ml, kept with stirring for 120 min at 37 ° C in an ES 20/60 shaker thermostat (Biosan, Latvia) at shaking 100 rpm. Fermentation is stopped by heating to 90 ° C for 10 min on a thermoban LAB-TZh-TB-01/26 (Medlab, Russia). The resulting hydrolyzate is centrifuged (SL40R refrigerated centrifuge (Thermo fisher scientific, USA) at 4000-5000 g for 120 minutes at 4 ° C. The liquid obtained after centrifugation is successively filtered using a Vivaflow 50 filtration system (Sartorius, France) using PES cassettes (pore sizes 0.2 μm, 30 kDa and 10 kDa) and autoclaved at 120 ° C for 10 min in a steam sterilizer SPVA-75-1NN (Trans-signal, Russia).

Приготовление питательной среды плотнойPreparation of a dense nutrient medium

Для приготовления питательной среды плотной на весах взвешивают пептон сухой ферментативный - 20,0 г, натрий хлористый - 5,0 г, агар микробиологический - 9,0 г, мерно набирают смешанный гидролизат эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц (стимулятор С) - 35,0 мл (из расчета по сухому остатку (из расчета содержания сухих веществ 35,2 г/л). Все ингредиенты вносят в эмалированную кастрюлю, туда же вливают дистиллированную воду до 1 л. Затем все нагревают до кипения, кипятят в течение двух минут до полного расплавления агара, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, рН корректируют раствором соляной кислоты (1:1) до рН 7,2±0,1. Готовый фильтрат светло-желтого цвета разливают в градуированные флаконы объемом 450 мл по 250,0 мл, которые закрывают ватно-марлевыми пробками и бумагой Крафт, герметично закрепляют резиновыми кольцами, стерилизуют в автоклаве при 121°С в течение 20 мин.To prepare a dense nutrient medium, dry enzymatic peptone is weighed on the scales - 20.0 g, sodium chloride - 5.0 g, microbiological agar - 9.0 g, a mixed hydrolyzate of embryonic and extraembryonic tissues of birds (stimulant C) - 35.0 ml (based on the dry residue (based on the dry matter content of 35.2 g / l). All ingredients are introduced into an enamel pan, distilled water is poured into the pan up to 1 l. Then everything is heated to a boil, boiled for two minutes until complete melting the agar, filter through a cotton-gauze filter, adjust the pH with a solution of hydrochloric acid (1: 1) to pH 7.2 ± 0.1.The finished light yellow filtrate is poured into graduated 450 ml vials of 250.0 ml, which closed with cotton-gauze plugs and Kraft paper, hermetically fixed with rubber rings, sterilized in an autoclave at 121 ° C for 20 minutes.

Готовую питательную среду плотную остужают до (53±3)°С, разливают в чашки Петри по 35-40 мл. Используют для культивирования бруцелл.The prepared solid nutrient medium is cooled to (53 ± 3) ° С, poured into Petri dishes, 35-40 ml each. Used for the cultivation of brucella.

Ростовые свойства полученной среды оценивают в соответствии с методическими указаниями МУ 3.3.2.2124-06 «Контроль диагностических питательных сред по биологическим показателям для возбудителей чумы, холеры, сибирской язвы, туляремии, бруцеллеза, легионеллеза», Москва, 2007 г., используя тест-штаммы Brucella abortus 19 ВА и В. melitensis Rev I. Испытуемые культуры тест-штаммов выращивают на поверхности скошенного агара, рН 7,2±0,1, при температуре 37°С в течение 48 ч. Из двухсуточных культур тест-штаммов бруцелл, смытых с поверхности скошенного агара 0,9% раствором натрия хлорида, готовят взвеси концентрацией 10 единиц по оптическому стандарту мутности бактериальных взвесей ОСО 42-28-85-2018 ФГБУ «Научный центр экспертизы средств медицинского применения» Минздрава России, эквивалентную 1,7×109 бруцелл в 1 мл. Полученные микробные взвеси тест-штаммов разводят сначала до концентрации 1×109 м.к./мл, затем, серийными десятикратными разведениями, - до 1×103 м.к./мл. В процессе разведения перенос взвеси в следующую пробирку производят стерильной пипеткой объемом 1 мл, меняя пипетку для каждого разведения. По 0,1 мл каждой культуры В. abortus 19 ВА и В. melitensis Rev I из разведений 10-6 (100 м.к.) высевают на 3 чашки Петри с испытуемой средой и равномерно распределяют покачиванием по всей поверхности. Посевы инкубируют при температуре (37±1)°С.The growth properties of the resulting medium are assessed in accordance with the methodological instructions MU 3.3.2.2124-06 "Control of diagnostic nutrient media by biological indicators for causative agents of plague, cholera, anthrax, tularemia, brucellosis, legionellosis", Moscow, 2007, using test strains Brucella abortus 19 BA and B. melitensis Rev I. The test cultures of the test strains are grown on the surface of a slant agar, pH 7.2 ± 0.1, at a temperature of 37 ° C for 48 hours. From two-day cultures of test strains of Brucella, washed away from the surface of the slanting agar with 0.9% sodium chloride solution, suspensions are prepared with a concentration of 10 units according to the optical turbidity standard of bacterial suspensions OSO 42-28-85-2018 FSBI Scientific Center for the Expertise of Medicinal Products of the Ministry of Health of Russia, equivalent to 1.7 × 10 9 brucella in 1 ml. The resulting microbial suspensions of the test strains are first diluted to a concentration of 1 × 10 9 mc / ml, then, by serial tenfold dilutions, up to 1 × 10 3 mc / ml. In the process of dilution, the suspension is transferred to the next tube using a sterile 1 ml pipette, changing the pipette for each dilution. 0.1 ml of each culture of B. abortus 19 BA and B. melitensis Rev I from dilutions 10-6 (100 m.c.) are sown on 3 Petri dishes with the test medium and evenly distributed by rocking over the entire surface. Crops are incubated at a temperature of (37 ± 1) ° C.

Учет результатов. Оценку ростовых свойств питательной среды плотной для культивирования бруцелл проводят путем подсчета количества выросших колоний тест-штаммов В. abortus 19 ВА и В. melitensis Rev I через 24, 48 и 72 ч. В качестве контроля используют агар Альбими.Accounting for results. Evaluation of the growth properties of the nutrient medium dense for the cultivation of brucella is carried out by counting the number of grown colonies of test strains B. abortus 19 BA and B. melitensis Rev I after 24, 48 and 72 hours. Albimi agar is used as a control.

Пример 1. Культуры тест-штаммов В. abortus 19 ВА и В. melitensis REV I выращивали на питательной среде плотной для культивирования бруцелл, содержащей следующие ингредиенты: пептон сухой ферментативный - 10,0 г, натрий хлористый - 4,0 г, агар микробиологический - 8,0 г, смешанный гидролизат эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц (стимулятор С) - 30,0 мл, дистиллированную воду до 1 л.Example 1. Cultures of test strains B. abortus 19 BA and B. melitensis REV I were grown on a dense nutrient medium for the cultivation of brucella containing the following ingredients: dry enzymatic peptone - 10.0 g, sodium chloride - 4.0 g, microbiological agar - 8.0 g, mixed hydrolyzate of embryonic and extraembryonic tissues of birds (stimulator C) - 30.0 ml, distilled water up to 1 liter.

При таком соотношении ингредиентов в испытуемой среде при культивировании на ней тест-штаммов В. abortus 19 ВА и В. melitensis REV I из посевов по 100 м.к. колонии начинали формироваться появился видимый рост колоний через 24 часа, а через 48 ч количество колоний со средним диаметром 1,3 мм для обоих штаммов было в среднем 87 и 126, соответственно, тогда как на контрольном агаре Альбими рост при посеве 100 м.к. составил в среднем 71 и 99 колоний, соответственно, со средним диаметром 1,3 мм через 72 ч.With this ratio of ingredients in the test medium during cultivation on it of the test strains B. abortus 19 BA and B. melitensis REV I from crops of 100 m.k. colonies began to form, a visible growth of colonies appeared after 24 hours, and after 48 hours the number of colonies with an average diameter of 1.3 mm for both strains averaged 87 and 126, respectively, while on the control Albimi agar, growth at 100 m.k. averaged 71 and 99 colonies, respectively, with an average diameter of 1.3 mm after 72 hours.

Пример 2. Культуры тест-штаммов В. abortus 19 ВА и В. melitensis REV I выращивали на питательной среде плотной для культивирования бруцелл, содержащей следующие ингредиенты: пептон сухой ферментативный - 20,0 г; натрий хлористый - 5,0 г; агар микробиологический - 9,0 г; смешанный гидролизат эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц (стимулятор С) - 35,0 мл, дистиллированная вода до 1 л.Example 2. Cultures of test strains B. abortus 19 BA and B. melitensis REV I were grown on a dense nutrient medium for the cultivation of brucella containing the following ingredients: dry enzymatic peptone - 20.0 g; sodium chloride - 5.0 g; microbiological agar - 9.0 g; mixed hydrolyzate of embryonic and extraembryonic tissues of birds (stimulator C) - 35.0 ml, distilled water up to 1 liter.

При таком соотношении ингредиентов в испытуемой среде при культивировании на ней тест-штаммов В. abortus 19 ВА и В. melitensis REV I из посевов по 100 м.к. колонии начинали формироваться через 24 часа, а через 48 ч количество колоний со средним диаметром 1,5 мм для обоих штаммов было в среднем 115 и 157, соответственно, тогда как на контрольном агаре Альбими рост при посеве 100 м.к. составил в среднем 71 и 99 колоний, соответственно, со средним диаметром 1,3 мм через 72 ч.With this ratio of ingredients in the test medium during cultivation on it of the test strains B. abortus 19 BA and B. melitensis REV I from crops of 100 m.k. colonies began to form after 24 hours, and after 48 hours the number of colonies with an average diameter of 1.5 mm for both strains averaged 115 and 157, respectively, while on the control Albimi agar, the growth at seeding 100 m.k. averaged 71 and 99 colonies, respectively, with an average diameter of 1.3 mm after 72 hours.

Пример 3. Культуры тест-штаммов В. abortus 19 ВА и В. melitensis REV I выращивали на питательной среде плотной для культивирования бруцелл, содержащей следующие ингредиенты: пептон сухой ферментативный - 30,0 г; натрий хлористый - 6,0 г; агар микробиологический - 10,0 г; смешанный гидролизат эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц (стимулятор С) - 40,0 мл, дистиллированная вода до 1 л.Example 3. Cultures of test strains B. abortus 19 BA and B. melitensis REV I were grown on a dense nutrient medium for the cultivation of brucella containing the following ingredients: dry enzymatic peptone - 30.0 g; sodium chloride - 6.0 g; microbiological agar - 10.0 g; mixed hydrolyzate of embryonic and extraembryonic tissues of birds (stimulator C) - 40.0 ml, distilled water up to 1 liter.

При таком соотношении ингредиентов в испытуемой среде при культивировании на ней тест-штаммов В. abortus 19 ВА и В. melitensis REV I из посевов по 100 м.к. колонии начинали формироваться через 24 часа, а через 48 ч количество колоний со средним диаметром 1,3 мм для обоих штаммов было в среднем 75 и 116, соответственно, тогда как на контрольном агаре Альбими рост при посеве 100 м.к. составил в среднем 71 и 99 колоний, соответственно, со средним диаметром 1,3 мм через 72 ч.With this ratio of ingredients in the test medium during cultivation on it of the test strains B. abortus 19 BA and B. melitensis REV I from crops of 100 m.k. colonies began to form after 24 hours, and after 48 hours the number of colonies with an average diameter of 1.3 mm for both strains averaged 75 and 116, respectively, while on control Albimi agar, growth at 100 m.k. averaged 71 and 99 colonies, respectively, with an average diameter of 1.3 mm after 72 hours.

Таким образом, заявленный способ получения питательной среды плотной для культивирования бруцелл с использованием смешанного гидролизата эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц (стимулятора С) (пример №2) является оптимальным по количеству подобранных ингредиентов, что позволяет выращивать достаточное количество колоний в максимально ранние сроки - через 24-48 ч.Thus, the claimed method of obtaining a dense nutrient medium for cultivating brucella using a mixed hydrolyzate of embryonic and extraembryonic tissues of birds (stimulator C) (example No. 2) is optimal in terms of the number of selected ingredients, which allows growing a sufficient number of colonies as early as possible - after 24 -48 hrs

Claims (2)

Питательная среда плотная для культивирования бруцелл, включающая смешивание пептона сухого ферментативного, натрия хлористого, агара микробиологического, смешанного гидролизата эмбриональных и внеэмбриональных тканей птиц - стимулятора С с дистиллированной водой, нагревание до кипения, кипячение до полного расплавления агара, фильтрование, корректирование рН раствором соляной кислоты (1:1) до рН 7,2±0,1, разливание готового фильтрата во флаконы и герметичное укупоривание, стерилизацию в автоклаве при следующем соотношении исходных ингредиентов:Dense nutrient medium for the cultivation of brucella, including mixing of dry enzymatic peptone, sodium chloride, microbiological agar, mixed hydrolyzate of embryonic and extraembryonic tissues of birds - stimulator C with distilled water, heating to a boil, boiling until the agar is completely melted, filtering, adjusting the pH with a solution of hydrochloric acid (1: 1) to pH 7.2 ± 0.1, pouring the finished filtrate into vials and hermetically sealing, sterilizing in an autoclave with the following ratio of starting ingredients:
Figure 00000001
Figure 00000001
RU2019138097A 2019-11-25 2019-11-25 Nutrient medium dense for brucella cultivation RU2728379C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019138097A RU2728379C1 (en) 2019-11-25 2019-11-25 Nutrient medium dense for brucella cultivation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019138097A RU2728379C1 (en) 2019-11-25 2019-11-25 Nutrient medium dense for brucella cultivation

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2728379C1 true RU2728379C1 (en) 2020-07-29

Family

ID=72086083

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019138097A RU2728379C1 (en) 2019-11-25 2019-11-25 Nutrient medium dense for brucella cultivation

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2728379C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2748808C1 (en) * 2020-09-21 2021-05-31 Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Dense universal nutrient medium for growing brucella biomass

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Rzhepakovsky I.V., et al., Antioxidant activity of chicken embryo tissues powder obtained by different methods of hydrolysis /Journal of Hygienic Engineering and Design (Македония, электронный.). - 2019. - Vol. 27. - pp. 127-133. E-ISSN:1857-8489 http://www.jhed.mk/categories/view/478/457. *
М.С.Поляк, и др., Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СПб.-2008.- С. 64-65. *
Эпидемиологический надзор и лабораторная диагностика бруцеллеза. Методические указания МУ 3.1.7. 3402-16. Издание официальное. Минздрав России, Москва. 2017 г. с. 58. *
Эпидемиологический надзор и лабораторная диагностика бруцеллеза. Методические указания МУ 3.1.7. 3402-16. Издание официальное. Минздрав России, Москва. 2017 г. с. 58. М.С.Поляк, и др., Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СПб.-2008.- С. 64-65. ;Rzhepakovsky I.V., et al., Antioxidant activity of chicken embryo tissues powder obtained by different methods of hydrolysis /Journal of Hygienic Engineering and Design (Македония, электронный.). - 2019. - Vol. 27. - pp. 127-133. E-ISSN:1857-8489 http://www.jhed.mk/categories/view/478/457. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2748808C1 (en) * 2020-09-21 2021-05-31 Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Dense universal nutrient medium for growing brucella biomass

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2017271491A1 (en) Composition and methods for microbiota therapy
RU2728379C1 (en) Nutrient medium dense for brucella cultivation
CN104745665A (en) Collagen peptide with function of promoting bone growth as well as preparation method and application thereof
RU2412240C1 (en) Culture medium for growing legionella
RU2580028C1 (en) Heavy nutrient medium for the cultivation of brucella
RU2626568C1 (en) Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain
KR20100079362A (en) Preparation of low molecular weight hualuronic acid by acid treatment
RU2415923C1 (en) Method for production of fermentative hydrolysate of fresh white cabbage and nutritive medium for cultivation lactobacteria based thereon
CN110872573B (en) Novel method for separating and culturing primary cardiomyocytes of zebra fish
RU2688335C1 (en) Dense nutrient medium for cultivation of brucellosis agent
RU2245362C2 (en) Nutrient medium for culturing plague microorganism vaccine strain
RU2702174C1 (en) Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe yersinia pestis ev
RU2681499C1 (en) Nutrient medium on basis of secondary product of beef hydrolyzate for cultivation of microorganisms
RU2756601C1 (en) Enriched solid nutrient medium for cultivating brucella biomass
RU2415922C1 (en) Nutrient medium for lactic acid bacilli cultivation
RU2644248C2 (en) Dense nutrient medium for cultivation and growing of tularemic microbe
RU2460768C1 (en) Solid nutrient medium for legionella cultivation
RU2425871C1 (en) Nutrient medium for legionella cultivation
RU2525637C2 (en) Nutrient medium for cultivation of listeriosis causative agent
RU2748492C1 (en) Dense nutrient medium for monitoring the number of live microbial cells of the vaccine strain of the plague microbe y.pestis ev
RU2534355C1 (en) Method of production of hydrolyzate from fruit and skin of bananas as growth stimulator for cultivation of leptospira
RU2213779C2 (en) Nutrient medium for isolation of lactobacilli
RU2764139C1 (en) Dense nutrient medium with kombucha hydrolysate, stimulating the accumulation of bacterial mass of brucella
RU2301256C1 (en) Liquid nutrient medium for culturing cholera vibrio
RU2528101C2 (en) Nutrient medium for legionella culture