RU2528101C2 - Nutrient medium for legionella culture - Google Patents
Nutrient medium for legionella culture Download PDFInfo
- Publication number
- RU2528101C2 RU2528101C2 RU2012148029/15A RU2012148029A RU2528101C2 RU 2528101 C2 RU2528101 C2 RU 2528101C2 RU 2012148029/15 A RU2012148029/15 A RU 2012148029/15A RU 2012148029 A RU2012148029 A RU 2012148029A RU 2528101 C2 RU2528101 C2 RU 2528101C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- nutrient medium
- legionella
- potassium phosphate
- substituted
- agar
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, именно к получению питательных сред для культивирования легионелл.The invention relates to biotechnology, namely to obtain nutrient media for the cultivation of Legionella.
Известна питательная среда для выращивания легионелл, основой которой является мясная вода до 1000,0 мл; пептон ферментативный - 10,0 г; натрия хлорид - 5,0 г; кровь - 10, г; агар-агар - 15,0-20,0 г; pH 7,3±0,2. Среду автоклавируют 30 мин при температуре 121°C (М.С. Поляк; В.И. Сухаревич; М.Э. Сухаревич. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СПб. - 2008. - С.64-65; С. - 269).Known nutrient medium for growing Legionella, the basis of which is meat water up to 1000.0 ml; enzymatic peptone - 10.0 g; sodium chloride - 5.0 g; blood - 10 g; agar-agar - 15.0-20.0 g; pH 7.3 ± 0.2. The medium is autoclaved for 30 min at a temperature of 121 ° C (M.S. Polyak; V.I. Sukharevich; M.E. Sukharevich. Nutrient media for medical and sanitary microbiology. St. Petersburg: ELBI-St. Petersburg. - 2008. - P.64 -65; S. - 269).
Недостатком данной среды является недостаточная эффективность. Наиболее близкой к предлагаемой питательной среде является среда, содержащая, г/л: ферментативный гидролизат легкого свиньи - 260,0; калий фосфорнокислый 1 - замещенный - 0,9; калий фосфорнокислый 2 - замещенный 3 - водный - 2,2; активированный уголь - 2,0; L-цистеина гидрохлорид - 0,4; эмбриональный стимулятор роста микроорганизмов - 2,5; агар микробиологический - 8,5; дистиллированная вода до 1 л (Патент РФ №2412240. Опубл. 20.02.2011 г. Бюл. №5).The disadvantage of this environment is the lack of effectiveness. Closest to the proposed nutrient medium is a medium containing, g / l: enzymatic hydrolyzate of a lung of a pig - 260.0; potassium phosphate 1 - substituted - 0.9; potassium phosphate 2 - substituted 3 - aqueous - 2.2; activated carbon - 2.0; L-cysteine hydrochloride - 0.4; embryonic microorganism growth stimulator - 2.5; microbiological agar - 8.5; distilled water up to 1 liter (RF Patent No. 2412240. Publish. February 20, 2011 Bull. No. 5).
Недостатком данной среды является многоступенчатость и сложность получения эмбрионального стимулятора роста микроорганизмов.The disadvantage of this environment is the multistage and complexity of obtaining an embryonic growth stimulator of microorganisms.
Целью настоящего изобретения является конструирование качественной и простой в приготовлении питательной среды растительного происхождения, которая обеспечивает ростовые свойства легионелл через 48 ч.The aim of the present invention is the construction of high-quality and easy to prepare nutrient medium of plant origin, which provides the growth properties of legionella after 48 hours
Поставленная цель достигается тем, что питательная среда в качестве питательной основы содержит ферментативный гидролизат сои бобов; 0,01 М калий фосфатный буфер (состав калий фосфатного буфера: калий фосфорнокислый 1 - замещенный; калий фосфорнокислый 2 - замещенный - 3 - водный), а также уголь активный, L-цистеина гидрохлорид; дистиллированную воду, агар микробиологический с добавлением в среду в качестве стимулятора роста ферментативного гидролизата желтка куриного яйца при следующем соотношении ингредиентов, г/л:This goal is achieved in that the nutrient medium as a nutrient base contains an enzymatic hydrolyzate of soybeans; 0.01 M potassium phosphate buffer (composition of potassium phosphate buffer: potassium phosphate 1 - substituted; potassium phosphate 2 - substituted - 3 - aqueous), as well as active carbon, L-cysteine hydrochloride; distilled water, microbiological agar with the addition of chicken egg yolk enzymatic hydrolyzate to the medium as a growth promoter in the following ratio of ingredients, g / l:
В качестве сырья используют сою, плоды которой - бобы содержат в среднем 40% белка, кроме того, соя богата микроэлементами и витаминами. Как известно (Y.P. Yupta, 1987) соевые белки характеризуются повышенным содержанием глютаминовой и аспарагиновой кислот, поставляющих макроэргические связи. Соевые белки содержат также большое количество таких незаменимых аминокислот как лизин, лейцин, аргинин. Имеются также сведения о способности лейцина, как аминокислоты с разветвленной белковой цепью, инициировать синтез белка (Е.И. Чазов, X.С. Морган, /США/ 1989).Soy is used as a raw material, the fruits of which - beans contain an average of 40% protein, in addition, soy is rich in trace elements and vitamins. As is known (Y.P. Yupta, 1987) soy proteins are characterized by an increased content of glutamic and aspartic acids, which supply macroergic bonds. Soy proteins also contain a large number of such essential amino acids as lysine, leucine, arginine. There is also information about the ability of leucine, as branched chain amino acids, to initiate protein synthesis (E.I. Chazov, H.S. Morgan, / USA / 1989).
Приготовление ферментативного гидролизата желтка куриного яйцаPreparation of Enzymatic Hydrolyzate of Chicken Egg Yolk
Биологическая ценность желтка куриного яйца состоит в наличии в среднем 50% воды, белка 16,2%, аминокислот, макроэлементов в мг на 100 г: калия - 129; кальция - 129; магния - 15; серы - 170; хлора - 146,8; фосфора - 542; натрия - 51, микроэлементов в мкг на 100 г: железа - 6700; йода - 23; кобальта - 23; марганца - 37; меди - 139; молибдена - 11,8; хрома - 7,8; цинка - 3105. Содержание витаминов мг в кг: витамина А - 0,35; каротина - 0,06; витамина B1 - 1,6; витамина Д - 4,70; витамина Е - 2,0; пантотеновой кислоты - 1,3; витамина B5 - 3,0; В6 - 0,14; ниацина - 0,19; рибофлавина - 0,44; фолацина - 7,0; холина - 251,7. Коэффициент пересчета незаменимых аминокислот в г/кг составляет 6558 из них: валина - 937; изолейцина - 907; лейцина - 1381; лизина - 1156; метионина - 415; треонина - 830; триптофана - 236 и фенилаланина - 696. Коэффициент пересчета заменимых аминокислот составляет 9331 в том числе: аланина - 854; аргинина - 1156; аспарагиновой кислоты - 1339; гистидина - 383; глицина - 514; глютаминовой кислоты - 2051; пролина - 695; серина - 1365; тирозина - 699; цистина - 275. Микроэлементов мг в кг: цинка - 14,0; марганца - 0,8; меди - 0,8; кобальта - 0,07. Органических веществ: протеина - 93% (белка); жира - 94%. (М.Ф. Нестерин, И.М. Скурихин. Химический состав пищевых продуктов. Москва. «Пищевая промышленность». 1979. 247 с.).The biological value of the yolk of a chicken egg is the presence of an average of 50% water, protein 16.2%, amino acids, macronutrients in mg per 100 g: potassium - 129; calcium - 129; magnesium - 15; sulfur - 170; chlorine - 146.8; phosphorus - 542; sodium - 51, trace elements in micrograms per 100 g: iron - 6700; iodine - 23; cobalt - 23; Manganese - 37; copper - 139; molybdenum - 11.8; chromium - 7.8; zinc - 3105. The content of vitamins mg in kg: vitamin A - 0.35; carotene - 0.06; vitamin B 1 - 1.6; Vitamin D - 4.70; vitamin E - 2.0; pantothenic acid - 1.3; Vitamin B 5 - 3.0; B 6 - 0.14; niacin - 0.19; riboflavin - 0.44; folacin - 7.0; choline - 251.7. The conversion factor of essential amino acids in g / kg is 6558 of them: valine - 937; isoleucine - 907; leucine - 1381; lysine - 1156; methionine - 415; threonine - 830; tryptophan - 236 and phenylalanine - 696. The conversion factor for non-essential amino acids is 9331 including: alanine - 854; arginine - 1156; aspartic acid - 1339; histidine - 383; glycine - 514; glutamic acid - 2051; proline - 695; serine - 1365; tyrosine - 699; cystine - 275. Micronutrients mg in kg: zinc - 14.0; Manganese - 0.8; copper - 0.8; cobalt - 0.07. Organic matter: protein - 93% (protein); fat - 94%. (M.F. Nesterin, I.M. Skurikhin. Chemical composition of food products. Moscow. "Food Industry". 1979. 247 p.).
L-цистеин гидрохлорид - аминокислота (Panreac 15 В512/ Партия Lot 0000054464), которая ускоряет рост легионелл.L-cysteine hydrochloride is an amino acid (Panreac 15 B512 / Lot Lot 0000054464) that accelerates the growth of Legionella.
Соляная кислота ГОСТ - 3118-77 (чда, хч) используют для установления pH. Массовая доля основного вещества, % 35-38.Hydrochloric acid GOST - 3118-77 (bhd, hch) is used to establish pH. Mass fraction of the main substance,% 35-38.
Агар микробиологический - агар бактериологический (европейский тип). Производитель: «Pronadisa» Испания. Партия LF 15110173. Дата изготовления: апрель 2012 г.Microbiological agar - bacteriological agar (European type). Producer: "Pronadisa" Spain. Lot LF 15110173. Date of manufacture: April 2012
Уголь активный древесный порошкообразный, марки ОУ-А. Тонкодисперсный порошок, черного цвета. Без посторонних включений, соответствует ГОСТу 4453-74. Абсорбирует на себя отработанные продукты обмена легионелл.Powdered active charcoal, OU-A brand. Fine powder, black. Without foreign matter, complies with GOST 4453-74. Absorb on itself the legionella metabolic waste products.
Легионеллы являются факультативными внутриклеточными паразитами, поэтому растут в желточном мешке куриных эмбрионов, в культуре клеток животных и человека (фибробласты легкого). (Медицинская микробиология, вирусология и иммунология: Учебник для студентов медицинских вузов / Под редакцией А.А. Воробьева. - 2-е изд., испр. и доп. - М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2008. - С. - 400).Legionella are facultative intracellular parasites; therefore, they grow in the yolk sac of chicken embryos, in the culture of animal and human cells (lung fibroblasts). (Medical Microbiology, Virology, and Immunology: A Textbook for Students of Medical Universities / Edited by A.A. Vorobyov. - 2nd ed., Rev. And add. - M.: Medical Information Agency LLC, 2008. - P. - 400).
Включение в состав среды калий фосфатного буфера 0,01 М (состав калий фосфатного буфера: калий фосфорнокислый 1 замещенный; калий фосфорнокислый 2 - замещенный - 3 - водный) обосновано широким использованием фосфатов при приготовлении питательных сред, т.к. это единственные неорганические соединения, обладающие буферным действием в физиологически важном диапазоне pH, они малотоксичны (Методические рекомендации по изготовлению и использованию питательных сред и растворов для микробиологических целей, культивирования клеток и вирусов - М., 1989). (М.С. Поляк; В.И. Сухаревич; М.Э. Сухаревич. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ-СП6. - 2008. - С.37-38).The inclusion in the medium of potassium phosphate buffer 0.01 M (composition of potassium phosphate buffer: potassium phosphate 1 substituted; potassium phosphate 2 - substituted - 3 - aqueous) is justified by the widespread use of phosphates in the preparation of nutrient media, because these are the only inorganic compounds that have a buffering effect in a physiologically important pH range, they are low toxic (Guidelines for the manufacture and use of nutrient media and solutions for microbiological purposes, the cultivation of cells and viruses - M., 1989). (M.S. Polyak; V.I. Sukharevich; M.E. Sukharevich. Nutrient media for medical and sanitary microbiology. St. Petersburg: ELBI-SP6. - 2008. - P.37-38).
При приготовлении питательной среды допускается применение только дистиллированной воды без применения растворов, содержащих ионы натрия, в виду их губительного действия.When preparing a nutrient medium, it is allowed to use only distilled water without the use of solutions containing sodium ions, in view of their destructive effect.
В отличие от прототипа, сочетанное применение указанных компонентов обеспечивает получение чистых культур уже за 2-е суток.Unlike the prototype, the combined use of these components provides pure crops for 2 days.
Приготовление ферментативного гидролизата сои бобов.Preparation of enzymatic hydrolyzate of soybeans.
Питательную среду на ферментативной основе сои бобов для культивирования легионелл готовят следующим способом. Берут ферментативный гидролизат из сои бобов, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,12% - 110,0 мл; ферментативный гидролизат желтка куриного яйца - 20,0 мл калий фосфорнокислый 1 - замещенный - 0,9; калий фосфорнокислый 2 - замещенный 3 - водный - 2,2; уголь активный древесный - 2,0; агар микробиологический - 0,9; дистиллированную воду до - 1 л. Смесь доводят до кипения и кипятят до полного расплавления агара в течение 2 мин, pH корректируют раствором соляной кислоты (1:1) до 6,9±0,1 в количестве 5 мл. Приготовленную питательную среду разливают в градуированные флаконы по 200±0,5 мл, которые герметично укупоривают ватно-марлевыми пробками и бумагой Крафт. Стерилизуют при 1 атм в течение 15 мин. После расплавления в кипящей водяной бане в остуженный до 56°C агар добавляют стерильного раствора L-цистеина гидрохлорида в количестве 0,4 г в 10 мл дистиллированной воды, затем разливают в стерильные чашки Петри. Просушивают в течение 30 минут и используют для посева.The nutrient-based nutrient medium of soybeans for the cultivation of Legionella is prepared in the following way. Take an enzymatic hydrolyzate from soybeans diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.12% - 110.0 ml; enzymatic hydrolyzate of egg yolk - 20.0 ml of potassium phosphate 1 - substituted - 0.9; potassium phosphate 2 - substituted 3 - aqueous - 2.2; activated charcoal - 2.0; microbiological agar - 0.9; distilled water to - 1 liter. The mixture is brought to a boil and boiled until the agar is completely melted for 2 minutes, the pH is adjusted with a solution of hydrochloric acid (1: 1) to 6.9 ± 0.1 in an amount of 5 ml. The prepared nutrient medium is poured into graduated bottles of 200 ± 0.5 ml, which are hermetically sealed with cotton gauze plugs and Kraft paper. Sterilized at 1 atm for 15 minutes. After melting in a boiling water bath, a sterile solution of L-cysteine hydrochloride in an amount of 0.4 g in 10 ml of distilled water is added to the agar cooled to 56 ° C, then it is poured into sterile Petri dishes. Dry for 30 minutes and use for sowing.
Приготовление ферментативного гидролизата желтка куриного яйца.Preparation of enzymatic hydrolyzate of chicken yolk.
Желтки куриного яйца в количестве 30 штук, что составляет 550 мл, вливают в 3-литровый стеклянный баллон, заливают подогретой до 42±1°C питьевой водой до 1,5 л, подщелачивают 20% раствором гидроокиси калия в количестве 13 мл до pH 8,2 по фенолфталеину, затем добавляют коммерческие ферменты: трипсин в количестве - 31,0 г и панкреатин - 10,0 г. В качестве консерванта добавляют хлороформ в количестве 1% к объему жидкости. Баллон закрывают ватно-марлевой пробкой, тщательно перемешивают и помещают в термокамеру при температуре 42°C. Содержимое баллона в течение первых суток перемешивают через 20±1 мин по 5 мин, в последующие - через 1,5-2,0 ч по 5 мин. Ежедневно ведется измерение pH среды и нарастания аминного азота. Через двое суток, в виду резкого падения pH до 5 ед, добавляют - 30 мл 20% гидроокиси калия до pH 8,2 по фенолфталеину. Динамику процесса гидролиза контролируют путем определения аминного азота. Об окончании гидролиза судят по достижению аминного азота 0,7%-0,8%. После этого подогрев и перемешивание прекращают, гидролизат отстаивают в течение 2-х суток. Отстоявшийся верхний слой гидролизата декантируют с помощью резинового шланга и фильтруют через полотняный фильтр. Сбор фильтрата ведут в стеклянный баллон емкостью 3 л, для консервации добавляют хлороформ в количестве 1% к объему содержимого баллона, закрывают резиновой пробкой и транспортируют в холодовую камеру, где хранят при температуре от +2 до +8°C.30 yolks of chicken eggs, which is 550 ml, are poured into a 3-liter glass bottle, poured with drinking water heated to 42 ± 1 ° C to 1.5 l, made alkaline with a 20% potassium hydroxide solution in an amount of 13 ml to pH 8 , 2 for phenolphthalein, then commercial enzymes are added: trypsin in an amount of 31.0 g and pancreatin in an amount of 10.0 g. Chloroform in an amount of 1% by volume of liquid is added as a preservative. The cylinder is closed with a cotton-gauze plug, mixed thoroughly and placed in a heat chamber at a temperature of 42 ° C. The contents of the balloon during the first day are stirred after 20 ± 1 min for 5 minutes, and in the next - after 1.5-2.0 hours for 5 minutes. Daily measurements are made of the pH of the medium and the growth of amine nitrogen. After two days, in view of a sharp drop in pH to 5 units, add - 30 ml of 20% potassium hydroxide to a pH of 8.2 for phenolphthalein. The dynamics of the hydrolysis process is controlled by determining amine nitrogen. The end of hydrolysis is judged by the achievement of amino nitrogen of 0.7% -0.8%. After this, the heating and stirring are stopped, the hydrolyzate is defended for 2 days. The settled upper layer of the hydrolyzate is decanted with a rubber hose and filtered through a linen filter. The filtrate is collected in a glass container with a capacity of 3 l, chloroform is added in an amount of 1% to the volume of the contents of the container for preservation, closed with a rubber stopper and transported to a cold chamber where it is stored at a temperature of +2 to + 8 ° C.
Эффективность полученной питательной среды оценивали в соответствии с методическими указаниями «Контроль диагностических питательных сред по биологическим показателям для чумы, холеры, сибирской язвы, туляремии, бруцеллеза, легионеллеза» (Москва, 2006) с использованием в качестве тест-культур легионелл Legionella pneumophila АТСС 33155 Bloomington, Legionella pneumophila ATCC 33152 Philadelphia.The effectiveness of the obtained culture medium was evaluated in accordance with the guidelines “Monitoring of diagnostic culture media by biological indicators for plague, cholera, anthrax, tularemia, brucellosis, legionellosis” (Moscow, 2006) using Legionella pneumophila ATCC 33155 Bloomington as test cultures Legionella pneumophila ATCC 33152 Philadelphia.
Испытуемые культуры выращивали на пластинках плотного агара pH 6,8 при температуре 37°C 24 ч. Из суточных культур готовили 1 млрд. взвесь м.к. тест-штаммов, равной 10 ед. по оптическому стандарту мутности ОСО ГИСК им. Л.А. Тарасовича, затем серийными десятикратными разведениями в физиологическом растворе в объеме 4,5 мл доводили до содержания в 1 мл 100 м.к. Из данных разведении взвесей культур высевали по - 0,1 мл на 3 чашки Петри разлитого подсушенного агара. Посевы инкубировали при 37°C в течение 5 суток при ежедневном просмотре. Через 24-120 ч учитывали результаты путем подсчетов выросших колоний.The test cultures were grown on solid agar plates, pH 6.8, at 37 ° C for 24 hours. From daily cultures, 1 billion m.c. test strains equal to 10 units according to the optical turbidity standard OSO GISK im. L.A. Tarasovich, then serial ten-fold dilutions in physiological saline in a volume of 4.5 ml were brought to a content of 1 ml 100 mk From the dilution of the suspension of cultures, 0.1 ml was sown in 3 Petri dishes of spilled dried agar. Crops were incubated at 37 ° C for 5 days with daily viewing. After 24-120 hours, the results were taken into account by counting the grown colonies.
Пример 1. Тест-штаммы выращивали на питательной среде содержащей, г/л: ферментативный гидролизат из сои бобов, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,100% - 60,0 мл; ферментативный гидролизат желтка куриного яйца - 10,0 мл; калий фосфорнокислый 1 - замещенный - 0,7; калий фосфорнокислый 2 - замещенный 3 - водный - 1,2; угол активный - 1,0; L-цистеина гидрохлорида - 0,2; агар микробиологический - 7,0; дистиллированную воду до - 1 л. При таком соотношении ингредиентов накопительный эффект был меньше чем 50%, плоско-выпуклых, серовато-желтоватых колоний диаметром 1,0-2,0 мм через 48 ч, тогда как на контрольной среде СЭЛ рост наблюдался только через 72 ч, на агаре Хоттингера роста не наблюдалось.Example 1. Test strains were grown on a nutrient medium containing, g / l: enzymatic hydrolyzate from soybeans, diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.100% - 60.0 ml; enzymatic hydrolyzate of egg yolk - 10.0 ml; potassium phosphate 1 - substituted - 0.7; potassium phosphate 2 - substituted 3 - water - 1.2; active angle - 1.0; L-cysteine hydrochloride 0.2; microbiological agar - 7.0; distilled water to - 1 liter. With this ratio of ingredients, the cumulative effect was less than 50% of flat-convex, grayish-yellowish colonies with a diameter of 1.0-2.0 mm after 48 hours, while on the SEL control medium growth was observed only after 72 hours, on the Hottinger growth agar not observed.
Пример 2. Тест-штаммы выращивали на питательной среде содержащей, г/л: ферментативный гидролизат из сои бобов, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,120% - 110,0 мл;Example 2. Test strains were grown on a nutrient medium containing, g / l: enzymatic hydrolyzate from soybeans diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.120% - 110.0 ml;
ферментативный гидролизат желтка куриного яйца - 20,0 мл; калий фосфорнокислый 1 - замещенный - 0,9; калий фосфорнокислый 2 - замещенный 3 - водный - 2,0; уголь активный древесный - 2,0; L-цистеина гидрохлорида - 0,4; агар микробиологический - 9,0; дистиллированную воду до - 1 л. При таком соотношении ингредиентов накопительный эффект превышает 50%, плоско-выпуклых, желтовато-серых колоний диаметром 1,0-2,0 мм через 48 ч, тогда как на контрольной среде СЭЛ рост наблюдался только через 72 ч, на агаре Хоттингера роста не наблюдалосьenzymatic hydrolyzate of egg yolk - 20.0 ml; potassium phosphate 1 - substituted - 0.9; potassium phosphate 2 - substituted 3 - aqueous - 2.0; activated charcoal - 2.0; L-cysteine hydrochloride - 0.4; microbiological agar - 9.0; distilled water to - 1 liter. With this ratio of ingredients, the cumulative effect exceeds 50% of plano-convex, yellowish-gray colonies with a diameter of 1.0-2.0 mm after 48 hours, while on the SEL control medium growth was observed only after 72 hours, on the Hottinger agar no growth was observed
Пример 3. Тест-штаммы выращивали на питательной среде содержащей, г/л: ферментативный гидролизат из сои бобов, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,140% - 140,0 мл; ферментативный гидролизат желтка куриного яйца - 30,0 мл; калий фосфорнокислый 1 - замещенный - 1,1; калий фосфорнокислый 2 - замещенный 3 - водный - 3,2; уголь активный древесный - 3,0; L-цистеина гидрохлорида - 0,6; агар микробиологический - 11,0; дистиллированную воду до - 1 л. При таком соотношении ингредиентов накопительный эффект наблюдался менее 50%, плоско-выпуклых, желтовато-серых колоний диаметром 1,0-2,0 мм через 48 ч, тогда как на контрольной среде СЭЛ рост наблюдался только через 72 ч, на агаре Хоттингера роста не наблюдалось.Example 3. Test strains were grown on a nutrient medium containing, g / l: enzymatic hydrolyzate from soya beans, diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.140% - 140.0 ml; enzymatic hydrolyzate of chicken yolk - 30.0 ml; potassium phosphate 1 - substituted - 1.1; potassium phosphate 2 - substituted 3 - aqueous - 3.2; activated charcoal - 3.0; L-cysteine hydrochloride - 0.6; microbiological agar - 11.0; distilled water to - 1 liter. With this ratio of ingredients, the cumulative effect was observed in less than 50% of plano-convex, yellowish-gray colonies with a diameter of 1.0-2.0 mm after 48 hours, whereas on the SEL control medium growth was observed only after 72 hours, on the Hottinger agar there was no growth observed.
Полученные результаты позволили определить оптимальный вариант питательной среды на ферментативной основе сои бобов (пример 2).The results obtained allowed us to determine the optimal variant of the nutrient medium on an enzymatic basis of soybeans (example 2).
Предлагаемая среда растительного происхождения обеспечивает рост легионелл. Рентабельность производства составляет 27,3%.The proposed environment of plant origin provides the growth of legionella. Profitability of production is 27.3%.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012148029/15A RU2528101C2 (en) | 2012-11-12 | 2012-11-12 | Nutrient medium for legionella culture |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012148029/15A RU2528101C2 (en) | 2012-11-12 | 2012-11-12 | Nutrient medium for legionella culture |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2012148029A RU2012148029A (en) | 2014-05-27 |
RU2528101C2 true RU2528101C2 (en) | 2014-09-10 |
Family
ID=50774930
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2012148029/15A RU2528101C2 (en) | 2012-11-12 | 2012-11-12 | Nutrient medium for legionella culture |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2528101C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2580227C1 (en) * | 2015-04-22 | 2016-04-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Medium for isolation of legionella pneumophila |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2245362C2 (en) * | 2002-12-15 | 2005-01-27 | Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт | Nutrient medium for culturing plague microorganism vaccine strain |
RU2412240C1 (en) * | 2009-12-01 | 2011-02-20 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Culture medium for growing legionella |
-
2012
- 2012-11-12 RU RU2012148029/15A patent/RU2528101C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2245362C2 (en) * | 2002-12-15 | 2005-01-27 | Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт | Nutrient medium for culturing plague microorganism vaccine strain |
RU2412240C1 (en) * | 2009-12-01 | 2011-02-20 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Culture medium for growing legionella |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Шулюпин О.К. Комплексная технология переработки немытых битых куриных яиц и яичного порошка технического для микробиологии и фармакологии. Стр. 1 абзац 2. Перечень данных [он-лайн] 11.09.2011 [найдено 2013.10.15 ] - найдено в Интернете: http://ptica-ru.ru/per-prod-ptic/740-pererabotka-jaic.html. М.С.Поляк; В.И.Сухаревич; М.Э.Сухаревич. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. СПб.: ЭЛБИ - СП6. - 2008. - С.268-270 * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2580227C1 (en) * | 2015-04-22 | 2016-04-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Medium for isolation of legionella pneumophila |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2012148029A (en) | 2014-05-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP4771379B2 (en) | Fermentation and culture method, plant fermented extract, plant fermented extract powder and blended plant fermented extract | |
KR102084350B1 (en) | Method of preparing lava seawater mineral coating probiotics and lava seawater mineral coating probiotics thereby | |
CN102329763A (en) | Lactobacillus helveticus H9 and application of Lactobacillus helveticus H9 to preparation of fermented milk | |
RU2433170C1 (en) | Nutrient liquid medium for culturing plague microbe of vaccine strain eb | |
RU2412240C1 (en) | Culture medium for growing legionella | |
RU2626568C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain | |
RU2415923C1 (en) | Method for production of fermentative hydrolysate of fresh white cabbage and nutritive medium for cultivation lactobacteria based thereon | |
RU2528101C2 (en) | Nutrient medium for legionella culture | |
RU2681285C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of brucella neotomae species cultivation | |
KR101547922B1 (en) | Method for producing a sulfur-functional rice prepared using Admiral sulfur and Uses | |
RU2415922C1 (en) | Nutrient medium for lactic acid bacilli cultivation | |
RU2012109115A (en) | METHOD FOR PRODUCING A BIOLOGICAL PRODUCT BASED ON TRICHODERMA STRAINS AND BIOLOGICAL PRODUCT | |
RU2366448C2 (en) | Method for making preparation used for treatment of radiation injuries in animals and treatment method of radiation injuries in animals | |
RU2460768C1 (en) | Solid nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2460774C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2510828C1 (en) | Nutrient medium for growing legionella | |
RU2702174C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe yersinia pestis ev | |
RU2525637C2 (en) | Nutrient medium for cultivation of listeriosis causative agent | |
RU2425871C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2681499C1 (en) | Nutrient medium on basis of secondary product of beef hydrolyzate for cultivation of microorganisms | |
RU2688335C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation of brucellosis agent | |
KR101083143B1 (en) | The cultivating method of functional mushroom calcium reinforced | |
RU2644248C2 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and growing of tularemic microbe | |
RU2380409C1 (en) | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation | |
RU2301256C1 (en) | Liquid nutrient medium for culturing cholera vibrio |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20151113 |