RU2380409C1 - Nutrient medium for pestilential microbe cultivation - Google Patents
Nutrient medium for pestilential microbe cultivation Download PDFInfo
- Publication number
- RU2380409C1 RU2380409C1 RU2008146523/13A RU2008146523A RU2380409C1 RU 2380409 C1 RU2380409 C1 RU 2380409C1 RU 2008146523/13 A RU2008146523/13 A RU 2008146523/13A RU 2008146523 A RU2008146523 A RU 2008146523A RU 2380409 C1 RU2380409 C1 RU 2380409C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sodium
- nutrient medium
- pestilential
- potato
- microbe
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, именно к получению питательных сред, которые создают оптимальные условия для культивирования чумного микроба.The invention relates to biotechnology, namely to obtain nutrient media that create optimal conditions for the cultivation of plague microbe.
Известна питательная среда для культивирования чумного микроба, для приготовления которой очищенный, мелко нарезанный картофель заливают двойным количеством водопроводной воды, нагревают при 133°С в течение 10 минут, по охлаждении оставляют для просветления на 15 минут, затем верхний слой жидкости сливают и добавляют к нему 0,5% хлористого натрия и 1% пептона или перевара Хоттингера (Питательные среды в медицинской микробиологии. Медгиз. 1950. Козлов Ю.А. 1950. с.106-107).A nutrient medium for cultivating a plague microbe is known, for the preparation of which peeled, finely chopped potatoes are poured with a double amount of tap water, heated at 133 ° C for 10 minutes, left to cool for 15 minutes to cool, then the upper layer of liquid is drained and added to it 0.5% sodium chloride and 1% peptone or Hottinger digest (Culture media in medical microbiology. Medgiz. 1950. Kozlov Yu.A. 1950. p.106-107).
Недостатком данной среды является ее непрозрачность.The disadvantage of this environment is its opacity.
Наиболее близким к изобретению является патент RU 2260620 С2 (опубл. Бюл. №26 20.09.2005), совокупность признаков которого наиболее близка к совокупности существенных признаков предлагаемого изобретения, в котором описана питательная среда для культивирования чумного микроба, включающая, г/л: в качестве питательной основы ферментативный гидролизат бобов сои - 320-420, натрий хлористый - 4,0-6,0, натрий фосфорнокислый двузамещенный - 3,0-5,0, натрий сернистокислый - 0,3-0,5, липоевую кислоту - 0,4-0,6, 20%-ный раствор гидроокиси натрия 2,5-3,5 и дистиллированную воду до 1 л.Closest to the invention is patent RU 2260620 C2 (publ. Bull. No. 26 09/20/2005), the combination of features of which is closest to the set of essential features of the invention, which describes a nutrient medium for cultivation of the plague microbe, including, g / l: as a nutrient base, the enzymatic hydrolyzate of soybeans - 320-420, sodium chloride - 4.0-6.0, sodium disubstituted phosphate - 3.0-5.0, sodium sulfite - 0.3-0.5, lipoic acid - 0 , 4-0.6, 20% sodium hydroxide solution 2.5-3.5 and distilled water up to 1 liter.
Целью изобретения является получение качественной прозрачной питательной среды для культивирования чумного микроба на белковой основе только из растительного сырья - картофеля.The aim of the invention is to obtain high-quality transparent nutrient medium for the cultivation of plague microbe on a protein basis only from plant materials - potatoes.
Сущность изобретения заключается в том, что питательная среда в качестве питательной основы содержит ферментативный гидролизат картофеля и стимулирующую добавку натрий сернистокислый при следующем содержании ингредиентов, г/л:The essence of the invention lies in the fact that the nutrient medium as an nutrient base contains an enzymatic hydrolyzate of potato and a stimulating additive sodium sulfite in the following ingredients, g / l:
Для приготовления питательной основы в качестве исходного сырья используют картофель, содержащий в среднем 2% азотистых веществ, кроме того, картофель богат микроэлементами и витаминами.To prepare a nutrient base, potatoes containing an average of 2% nitrogenous substances are used as feedstock, in addition, potatoes are rich in trace elements and vitamins.
Как правило, растительные продукты, в отличие от животных, содержат в своем составе больше углеводов, чем белков и жиров. Исключение составляют богатые белками растения. Так картофель содержит в среднем, г/л: белка 2,6; глюкозы 5,41; калия 0,7; натрия 1,01; кальция 0,02; железа 2,51, водорастворимые витамины (Козлов Ю.А., 1950). Из белковых веществ в картофеле при гидролизе образуются аминокислоты: лизин, метионин, триптофан, цистин, треонин, серин, аланин, глицин, валин, лейцин, тирозин, гистидин, по количественному и качественному составу мало отличающиеся от аминокислот мясных гидролизатов. В клубнях картофеля содержится 12-20% крахмала, представляющего собой смесь амилозы 15-25% (с молекулярной массой от 100 000 до 600 000) и амилопектина 75-85% (вещества оболочки с молекулярной массой около 1000 000). Кроме этого, картофельные белки характеризуются повышенным содержанием углеводов, которые тесно связаны с углеводным обменом через цикл трикарбоновых кислот, поставляющих макроэргические связи (Y.P.Ypta, 1987).As a rule, plant foods, unlike animals, contain more carbohydrates than proteins and fats. The exception is protein-rich plants. So potato contains an average of g / l: protein 2.6; glucose 5.41; potassium 0.7; sodium 1.01; calcium 0.02; iron 2.51, water-soluble vitamins (Kozlov Yu.A., 1950). Amino acids are formed from protein substances in potatoes during hydrolysis: lysine, methionine, tryptophan, cystine, threonine, serine, alanine, glycine, valine, leucine, tyrosine, histidine, which differ little in quantity and quality from amino acids of meat hydrolysates. Potato tubers contain 12–20% starch, which is a mixture of amylose 15–25% (with a molecular weight of 100,000 to 600,000) and amylopectin 75–85% (shell material with a molecular weight of about 1,000,000). In addition, potato proteins are characterized by an increased content of carbohydrates, which are closely related to carbohydrate metabolism through a cycle of tricarboxylic acids that supply macroergic bonds (Y.P. Ypta, 1987).
Приготовление питательной основы предлагаемой питательной среды для выращивания микроорганизмов заключается в следующем.Preparation of the nutrient basis of the proposed nutrient medium for growing microorganisms is as follows.
Берут 1,0±0,05 кг клубней картофеля, моют его щеткой в проточной воде, чистят, режут на кусочки размером 2×2 см, ссыпают в эмалированную кастрюлю, заливают питьевой водой в количестве 3 л, варят в течение 5 мин, остужают до 46°С. Отвар картофеля сливают в пятилитровый стеклянный баллон. Добавляют поджелудочную железу крупного рогатого скота, пропущенную через мясорубку дважды из расчета 100 г/л, в баллон с отваром картофеля. Устанавливают рН до 8,2±0,1 фенолфталеином до слабо-розового цвета с помощью натрия углекислого в количестве 5,0 г/л. В качестве консерванта добавляют хлороформ в количестве 1% к объему жидкости. Баллон закрывают ватно-марлевой пробкой, сверху пергаментом, тщательно перемешивают и помещают в термокамеру при температуре 37±1°С. Содержимое баллона в течение суток перемешивают через каждые 20±1 мин, в последующие сутки - через каждые 2 часа.Take 1.0 ± 0.05 kg of potato tubers, wash it with a brush in running water, peel it, cut it into 2 × 2 cm slices, pour it into an enameled pan, pour 3 l of drinking water, boil for 5 minutes, cool up to 46 ° C. A decoction of potatoes is poured into a five-liter glass bottle. The cattle pancreas, passed through a meat grinder twice at the rate of 100 g / l, is added to a bottle with a potato broth. Set the pH to 8.2 ± 0.1 phenolphthalein to a slightly pink color with sodium carbonate in an amount of 5.0 g / L. Chloroform is added as a preservative in an amount of 1% to the volume of liquid. The cylinder is closed with a cotton-gauze stopper, parchment on top, mixed thoroughly and placed in a heat chamber at a temperature of 37 ± 1 ° С. The contents of the balloon during the day are stirred every 20 ± 1 min, the next day - every 2 hours.
Динамику процесса гидролиза контролируют ежедневно путем определения аминного азота. Об окончании гидролиза судят по достижении аминного азота 0,3%-0,4%. После этого подогрев и перемешивание прекращают, гидролизат отстаивают двое суток. Отстоявшийся верхний слой гидролизата декантируют с помощью резинового шланга и фильтруют через полотняный фильтр. Сбор фильтрата ведут в стеклянный баллон емкостью 5 л, для консервации добавляют хлороформ в количестве 1% к объему баллона, закрывают стерильной резиновой пробкой и транспортируют в холодовую камеру, где хранят при температуре от +2 до +8°С.The dynamics of the hydrolysis process is monitored daily by determining amine nitrogen. The end of hydrolysis is judged by the achievement of amino nitrogen of 0.3% -0.4%. After this, heating and stirring are stopped, the hydrolyzate is left to stand for two days. The settled upper layer of the hydrolyzate is decanted with a rubber hose and filtered through a linen filter. The filtrate is collected in a glass container with a capacity of 5 l, chloroform is added in an amount of 1% to the volume of the container for preservation, closed with a sterile rubber stopper and transported to a cold chamber where it is stored at a temperature of +2 to + 8 ° С.
Питательную среду на основе картофельного ферментативного гидролизата для выращивания микроорганизмов готовят следующим способом. Берут ферментативный гидролизат из картофеля, разбавленного дистиллированной водой до показания аминного азота 0,12%-360,0 мл; натрий хлористый - 5,0 г; натрий фосфорнокислый двузамещенный - 4,0 г. Для осветления полученной жидкости используют активированный уголь марки «УО-А» в количестве 2% к объему среды, который ссыпают в эмалированную кастрюлю, доливают дистиллированную воду - до 1 л, среду тщательно перемешивают до образования однородной массы. Подогревают до 56°С, затем устанавливают рН до 8,2±0,1 с помощью 20% раствора гидроокиси натрия в количестве 8,0 мл, кипятят в течение 5 мин. Фильтруют через полотно и 8-16 слоев фильтровальной бумаги, сбор фильтрата проводят в эмалированную кастрюлю. В готовый фильтрат светло-желтого цвета добавляют агар микробиологический - 12 г/л. Смесь доводят до 100°С и кипятят до полного расплавления агара в течение 10 мин. рН корректируют раствором соляной кислоты (1:1) до рН 7,2±0,1, добавляют натрий сернистокислый в концентрации 0,4 г/л.A nutrient medium based on a potato enzymatic hydrolyzate for growing microorganisms is prepared in the following way. Take an enzymatic hydrolyzate from potatoes diluted with distilled water to an amine nitrogen reading of 0.12% -360.0 ml; sodium chloride - 5.0 g; sodium phosphate disubstituted - 4.0 g. For clarification of the obtained liquid, activated carbon of the UO-A brand is used in an amount of 2% by volume of the medium, which is poured into an enameled pan, distilled water is added - up to 1 liter, the medium is thoroughly mixed until a uniform masses. Heated to 56 ° C, then set the pH to 8.2 ± 0.1 using a 20% solution of sodium hydroxide in an amount of 8.0 ml, boiled for 5 minutes Filter through a cloth and 8-16 layers of filter paper, collecting the filtrate is carried out in an enameled pan. Microbiological agar, 12 g / l, is added to the ready-made light yellow filtrate. The mixture was brought to 100 ° C and boiled until the agar was completely melted for 10 minutes. The pH is adjusted with a solution of hydrochloric acid (1: 1) to a pH of 7.2 ± 0.1, sodium sulfite is added at a concentration of 0.4 g / L.
Приготовленную среду разливают в градуированные флаконы по 200±0,5 мл, которые герметично укупоривают ватно-марлевыми пробками и бумагой крафт. Стерилизуют при 0,5 атм в течение 30 мин. Стерильную среду после расплавления в кипящей бане разливают в стерильные чашки Петри, просушивают в течение 30 мин и используют для посева.The prepared medium is poured into graduated bottles of 200 ± 0.5 ml, which are hermetically sealed with cotton gauze plugs and Kraft paper. Sterilized at 0.5 atm for 30 minutes. After melting in a boiling bath, the sterile medium is poured into sterile Petri dishes, dried for 30 minutes and used for inoculation.
В качестве примера испытывали культуры вакцинного штамма чумного микроба ЕВ и вирулентные №№ С-802; С-803; 461; С-740; С-739, выращенные на пластинках 2% агара Хоттингера, рН 7,2 при температуре 28°С в течение 24 ч. Из суточных агаровых культур тест-штаммов чумного микроба готовят взвесь в 0,9% растворе хлористого натрия густотой 1,0·109 м.к./мл по стандартному образцу мутности ГИСК им. Л.А.Тарасовича ОСО 422859-86 П-10 единиц и делают 10-кратные последовательные разведения, перенося 0,5 мл взвеси в 4,5 мл 0,9% раствора хлористого натрия до разведения 10-7 (1.102 м.к./мл), тщательно перемешивая, меняя стерильную пипетку после каждого разведения. Культуру из разведения 10-6 (1000 м.к./мл) и 10-7 (100 м.к./мл) наносят по 0,1 мл на 3 свежеприготовленных и хорошо просушенных агаровых пластинки. Распределяют посеянную культуру по поверхности агара покачиванием чашки Петри. Учет результатов скорости роста культуры в каждом разведении микробной взвеси производят через 48 ч инкубации при 28°С.As an example, cultures of the plague microbe vaccine strain EB and virulent No. C-802 were tested; S-803; 461; S-740; C-739 grown on plates of 2% Hottinger agar, pH 7.2 at 28 ° C for 24 hours. From daily agar cultures of plague microbe test strains, a suspension is prepared in a 0.9% sodium chloride solution with a density of 1.0 · 10 9 MK./ml according to the standard sample turbidity GISK them. L.A. Tarasovich OSO 422859-86 P-10 units and do 10-fold serial dilutions, transferring 0.5 ml of suspension in 4.5 ml of 0.9% sodium chloride solution to a dilution of 10 -7 (1.10 2 m.k. ./ml), mixing thoroughly, changing the sterile pipette after each dilution. A culture from a dilution of 10 -6 (1000 m.k. / ml) and 10 -7 (100 m.k. / ml) is applied 0.1 ml per 3 freshly prepared and well-dried agar plates. The seeded culture is distributed over the surface of the agar by shaking the Petri dish. The results of the culture growth rate in each dilution of the microbial suspension are taken into account after 48 hours of incubation at 28 ° C.
Показатель скорости роста определяют по минимальному времени инкубации посевов, за которое при соответствующем разведении обеспечен отчетливо видимый рост культуры во всех засеянных чашках с плотной средой и формирование типичных, легко дифференцируемых при микроскопии колоний на чашках с плотной средой.The rate of growth rate is determined by the minimum incubation time of crops, during which, with appropriate dilution, a clearly visible growth of the culture is ensured in all seeded cups with a dense medium and the formation of typical colonies on plates with dense medium that are easily differentiable by microscopy.
Оценку ростовых свойств питательной среды для культивирования чумного микроба проводят путем подсчета количества выросших колоний на пластинках агара.Assessment of the growth properties of the nutrient medium for cultivation of the plague microbe is carried out by counting the number of grown colonies on agar plates.
Пример 1Example 1
Тест-штаммы выращивали на питательной среде, содержащей, г/л: ферментативный гидролизат картофеля - 310,0; натрий хлористый - 4,0; натрий фосфорнокислый двузамещенный - 3,0; натрий сернистокислый - 0,3; агар микробиологический - 10,0; дистиллированная вода - до 1 л.Test strains were grown on a nutrient medium containing, g / l: enzymatic potato hydrolyzate - 310.0; sodium chloride - 4.0; disubstituted sodium phosphate - 3.0; sodium sulfite - 0.3; microbiological agar - 10.0; distilled water - up to 1 liter.
При таком соотношении ингредиентов наблюдался типичный рост колоний, выросших на пластинках агара, для чумного микроба при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило через 48 ч соответственно 50 и 5 диаметром 1,0 мм.With this ratio of ingredients, a typical growth of the colonies grown on agar plates was observed for the plague microbe at a sowing dose of 100 and 10 mk. after 48 h, respectively, 50 and 5 with a diameter of 1.0 mm.
Пример 2Example 2
Тест-штаммы выращивали на питательной среде, содержащей г/л: ферментативный гидролизат картофеля - 360,0; натрий хлористый - 5,0; натрий фосфорнокислый двузамещенный - 4,0; натрий сернистокислый - 0,4; агар микробиологический - 12,0; дистиллированная вода - до 1 л.Test strains were grown on a nutrient medium containing g / l: enzymatic potato hydrolyzate - 360.0; sodium chloride - 5.0; disubstituted sodium phosphate - 4.0; sodium sulfite - 0.4; microbiological agar - 12.0; distilled water - up to 1 liter.
При таком соотношении ингредиентов наблюдался типичный рост колоний, выросших на пластинках агара, для чумного микроба при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило через 48 ч соответственно 57 и 6 диаметром 1,5 мм.With this ratio of ingredients, a typical growth of the colonies grown on agar plates was observed for the plague microbe at a sowing dose of 100 and 10 mk. after 48 h, respectively 57 and 6 with a diameter of 1.5 mm.
Пример 3 Тест-штаммы выращивали на питательной среде, содержащей, г/л: ферментативный гидролизат картофеля - 410,0; натрий хлористый - 6,0; натрий фосфорнокислый двузамещенный - 5,0; натрий сернистокислый - 0,5; агар микробиологический - 14.0; дистиллированная вода - до 1 л.Example 3 Test strains were grown on a nutrient medium containing, g / l: enzymatic potato hydrolyzate - 410.0; sodium chloride - 6.0; disubstituted sodium phosphate - 5.0; sodium sulfite - 0.5; microbiological agar - 14.0; distilled water - up to 1 liter.
При таком соотношении ингредиентов наблюдался типичный рост колоний чумного микроба при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило через 48 ч соответственно 50 и 5 диаметром 1,0 мм.With this ratio of ingredients, a typical growth of plague microbe colonies was observed at a sowing dose of 100 and 10 mk. after 48 h, respectively, 50 and 5 with a diameter of 1.0 mm.
Таким образом, заявленная питательная среда для культивирования чумного микроба (пример 2), приготовленная на основе ферментативного гидролизата картофеля, вполне может заменить питательную среду на основе из говяжьего мяса.Thus, the claimed nutrient medium for cultivation of the plague microbe (example 2), prepared on the basis of an enzymatic hydrolyzate of potato, may well replace the nutrient medium based on beef meat.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008146523/13A RU2380409C1 (en) | 2008-11-25 | 2008-11-25 | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008146523/13A RU2380409C1 (en) | 2008-11-25 | 2008-11-25 | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2380409C1 true RU2380409C1 (en) | 2010-01-27 |
Family
ID=42122105
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008146523/13A RU2380409C1 (en) | 2008-11-25 | 2008-11-25 | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2380409C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2648153C1 (en) * | 2016-12-22 | 2018-03-22 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Solid nutrient medium cultivation of a plague microbe |
-
2008
- 2008-11-25 RU RU2008146523/13A patent/RU2380409C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
КОЗЛОВ Ю.А. Питательные среды в медицинской микробиологии. Медгиз, 1950, с.165, 166. * |
Санитарные правила СП 11.2.731-99. Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами. Минздрав России. - М., 1999, с.98, 99. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2648153C1 (en) * | 2016-12-22 | 2018-03-22 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Solid nutrient medium cultivation of a plague microbe |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2433170C1 (en) | Nutrient liquid medium for culturing plague microbe of vaccine strain eb | |
RU2412240C1 (en) | Culture medium for growing legionella | |
CN111394280A (en) | Culture medium suitable for growth of bacillus licheniformis and application thereof | |
CN109234334A (en) | A kind of method of fermenting and producing tremella polysaccharides and fermentation medium used | |
RU2626568C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain | |
RU2380409C1 (en) | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation | |
RU2415923C1 (en) | Method for production of fermentative hydrolysate of fresh white cabbage and nutritive medium for cultivation lactobacteria based thereon | |
RU2681285C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of brucella neotomae species cultivation | |
RU2394905C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of plague microbe | |
RU2702174C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe yersinia pestis ev | |
RU2415922C1 (en) | Nutrient medium for lactic acid bacilli cultivation | |
RU2460774C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2245362C2 (en) | Nutrient medium for culturing plague microorganism vaccine strain | |
RU2301256C1 (en) | Liquid nutrient medium for culturing cholera vibrio | |
RU2410424C1 (en) | Culture medium for growing microorganism | |
RU2260620C1 (en) | Liquid nutrient medium for culturing plague microorganism of vaccine strain eb | |
RU2518282C1 (en) | Nutrient medium for submerged cultivation of tularemia microbe | |
RU2748492C1 (en) | Dense nutrient medium for monitoring the number of live microbial cells of the vaccine strain of the plague microbe y.pestis ev | |
RU2460768C1 (en) | Solid nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2528101C2 (en) | Nutrient medium for legionella culture | |
RU2708029C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of yersinia pestis ev | |
RU2425871C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
RU2348686C2 (en) | Nutrient medium for microorganism cultivation | |
RU2728217C1 (en) | Liquid nutrient medium for cultivation of vibrio cholerae in matrasses and bottles | |
RU2757428C1 (en) | Liquid nutrient medium for deep cultivation of vaccine strain of plague microbe y. pestis ev |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20101126 |