RU2394905C1 - Nutrient medium for cultivation of plague microbe - Google Patents
Nutrient medium for cultivation of plague microbe Download PDFInfo
- Publication number
- RU2394905C1 RU2394905C1 RU2009102421/13A RU2009102421A RU2394905C1 RU 2394905 C1 RU2394905 C1 RU 2394905C1 RU 2009102421/13 A RU2009102421/13 A RU 2009102421/13A RU 2009102421 A RU2009102421 A RU 2009102421A RU 2394905 C1 RU2394905 C1 RU 2394905C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sodium
- nutrient medium
- cultivation
- meat
- water
- Prior art date
Links
Landscapes
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, а именно к получению питательных сред, которые создают оптимальные условия для культивирования чумного микроба.The invention relates to biotechnology, namely, to obtain nutrient media that create optimal conditions for the cultivation of plague microbe.
Известна питательная среда для культивирования чумного микроба мясо-пептонный бульон для культивирования микроорганизмов, включающий, г/л: агар-агар - 20,0; пептон - 10,0; хлористого натрия - 5,0; 20% едкого натрия до рН 7,2, дистиллированная вода до 1 л (Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. М.О.Биргер. Москва, 1972 г., с.49).Known nutrient medium for cultivation of the plague microbe meat-peptone broth for the cultivation of microorganisms, including, g / l: agar-agar - 20.0; peptone - 10.0; sodium chloride - 5.0; 20% sodium hydroxide to a pH of 7.2, distilled water up to 1 liter (Handbook of microbiological and virological research methods. M.O. Birger. Moscow, 1972, p. 49).
Недостатком данной среды является ее низкая продуктивность.The disadvantage of this environment is its low productivity.
Наиболее близкой к предлагаемому изобретению является питательная среда для выращивания чумного микроба, в которой в качестве питательной основы используют ферментативный гидролизат мясокостного фарша тушек лисицы (20-25 г/л воды), а также агар-агар (15,0-20,0 г/л), NaCl (4,0-5,0), Na2HPO4 (1,0-1,1 г/л) и вода (RU 2083664. Бюллетень №19. Ч.2. 10.07.1997).Closest to the proposed invention is a nutrient medium for growing plague microbe, in which the enzymatic hydrolyzate of meat and bone minced meat of carcasses of foxes (20-25 g / l of water), as well as agar-agar (15.0-20.0 g) are used as a nutrient base / l), NaCl (4.0-5.0), Na 2 HPO 4 (1.0-1.1 g / l) and water (RU 2083664. Bulletin No. 19. Part 2. 10.07.1997).
Недостатком среды можно считать непопулярность питательной основы.The lack of environment can be considered unpopular nutritional basis.
Целью изобретения является получение качественной, прозрачной питательной среды для культивирования чумного микроба на основе 4-часового панкреатического гидролизата свежего говяжьего мяса.The aim of the invention is to obtain a high-quality, transparent nutrient medium for cultivation of the plague microbe based on a 4-hour pancreatic hydrolyzate of fresh beef meat.
Сущность предлагаемого изобретения заключается в том, что питательная среда в качестве питательной основы содержит 4-часовой панкреатический гидролизат свежего мяса и стимулирующую добавку натрий сернистокислый, питьевую воду при следующем содержании ингредиентов, г/л:The essence of the invention lies in the fact that the nutrient medium as a nutrient base contains a 4-hour pancreatic hydrolyzate of fresh meat and a stimulating additive sodium sulfite, drinking water with the following ingredients, g / l:
Для приготовления питательной основы в качестве исходного сырья используют свежее говяжье мясо, содержащее в среднем от 12,7% до 21,71% азотистых веществ, минеральные вещества мяса состоят из солей натрия, калия, кальция, фосфора и железа; общее их количество достигает 1%. Мясо содержит также витамины, микроэлементы. Свежее говяжье мясо содержит больше экстрактивных веществ, чем свежемороженое (Ю.А.Козлов. Питательные среды в медицинской микробиологии. Медгиз, 1950, с.46).To prepare the nutrient base, fresh beef meat is used as a raw material, containing on average from 12.7% to 21.71% of nitrogenous substances, meat minerals consist of sodium, potassium, calcium, phosphorus and iron salts; their total number reaches 1%. The meat also contains vitamins, minerals. Fresh beef meat contains more extractives than fresh frozen meat (Yu.A. Kozlov. Nutrient media in medical microbiology. Medgiz, 1950, p. 46).
Из белковых веществ в свежем говяжьем мясе при ускоренном ферментативном гидролизе образуются следующие аминокислоты, г/л: лизин, метионин, триптофан, цистин, треонин, серин, фенилаланин, пролин, аланин, глицин, валин, лейцин, тирозин, гистидин, по количественному и качественному составу ничем не отличающиеся от аминокислот мясных гидролизатов, проведенных в течение 14 дней.The following amino acids, g / l, are formed from protein substances in fresh beef meat during accelerated enzymatic hydrolysis: lysine, methionine, tryptophan, cystine, threonine, serine, phenylalanine, proline, alanine, glycine, valine, leucine, tyrosine, histidine, by quantitative and the qualitative composition is no different from the amino acids of meat hydrolysates carried out for 14 days.
Питьевая вода - вода, которая предназначена для употребления людьми, не вредит их здоровью и соответствует санитарно-эпидемическим нормам по СанПин 2.1.4.1074-01. Настоящий СанПин, сохраняя преемственность гигиенических критериев СанПин 2.1.4.1074-01, дополнен рядом новых критериев и положений. Методические указания МУ 2.1.4.1184-83, пункт 4.3.1. - на основании ГОСТа 2761 «Источники централизованного хозяйственно-питьевого водоснабжения» и СП 2.1.5.1059-01 «Гигиенические требования к охране подземных вод от загрязнения». В случае использования воды централизованных систем водоснабжения качество исходной (сырьевой) воды должно соответствовать требованиям к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества. Пункт 9 -санитарные правила и нормы «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества. СанПин 2.1.4.1074-01».Drinking water - water that is intended for human consumption, does not harm their health and complies with sanitary and epidemiological standards according to SanPin 2.1.4.1074-01. This SanPin, while maintaining the continuity of hygiene criteria SanPin 2.1.4.1074-01, is supplemented by a number of new criteria and provisions. Guidelines MU 2.1.4.1184-83, paragraph 4.3.1. - based on GOST 2761 "Sources of centralized drinking water supply" and SP 2.1.5.1059-01 "Hygienic requirements for the protection of groundwater from pollution". In the case of using water from centralized water supply systems, the quality of the source (raw) water must comply with the water quality requirements of centralized drinking water supply systems. Quality control. Clause 9 - Sanitary rules and regulations “Drinking water. Hygienic requirements for water quality of centralized drinking water supply systems. Quality control. SanPin 2.1.4.1074-01. "
Приготовление питательной основы предлагаемой питательной среды для выращивания микроорганизмов заключается в следующем.Preparation of the nutrient basis of the proposed nutrient medium for growing microorganisms is as follows.
В варочный котел заливали 15 л питьевой воды и доводили до кипения. Предварительно нарезанное свежее говяжье мясо в количестве 10 кг загружали в кипящую воду и кипятили 15 мин, в процессе кипения снимали жир. Затем подогрев прекращали и оставляли для отстаивания на 20 мин. Мясо измельчали мясорубкой, мясную воду охлаждали до температуры 45±1°С, корректировали величину рН до значения 8,5±0,1 натрием углекислым. Мясной фарш в количестве 2 кг, мясную воду 5 л и поджелудочную железу крупного рогатого скота в количестве 0,2 кг помещали в 10 литровые бутыли, закрывали ватно-марлевыми пробками накрывали пергаментной бумагой, укрепляли резиновыми кольцами. В качестве консерванта в бутыли добавляли хлороформ до конечной концентрации 1%.15 liters of drinking water were poured into the digester and brought to a boil. Freshly chopped fresh beef meat in the amount of 10 kg was loaded into boiling water and boiled for 15 minutes, and the fat was removed during boiling. Then the heating was stopped and left to settle for 20 minutes. The meat was minced with a meat grinder, the meat water was cooled to a temperature of 45 ± 1 ° C, the pH was adjusted to a value of 8.5 ± 0.1 with sodium carbonate. Minced meat in the amount of 2 kg, meat water 5 l and the pancreas of cattle in the amount of 0.2 kg were placed in 10 liter bottles, covered with cotton gauze plugs, covered with parchment paper, strengthened with rubber rings. Chloroform was added to the bottle as a preservative to a final concentration of 1%.
Процесс гидролиза вели в термокамере при температуре 37°С. Смесь перемешивали вручную через каждые 15 мин в течение 4 ч. Динамику процесса гидролиза контролировали путем определения аминного азота и по достижении 0,5-0,7% подогрев прекращали, перевар отстаивали. Отстоявшийся верхний слой гидролизата сливали в котел и выдерживали при температуре 100°С в течение 10 мин. Затем вручную фильтровали через тканевые фильтры. Сбор фильтрата вели в стеклянные баллоны емкостью 10 л. Для консервации добавляли хлороформ в количестве 1% к объему фильтрата, закрывали резиновыми пробками, этикетировали и транспортировали в холодовую камеру, где хранили при температуре от 2-8°С.The hydrolysis process was carried out in a heat chamber at a temperature of 37 ° C. The mixture was manually stirred every 15 minutes for 4 hours. The dynamics of the hydrolysis process was monitored by determination of amine nitrogen and, upon reaching 0.5-0.7%, the heating was stopped, and the digest was defended. The settled upper hydrolyzate layer was poured into a boiler and kept at a temperature of 100 ° С for 10 min. Then manually filtered through fabric filters. The filtrate was collected in 10 liter glass containers. For preservation, chloroform was added in an amount of 1% to the volume of the filtrate, closed with rubber stoppers, labeled and transported to a cold chamber, where it was stored at a temperature of 2-8 ° C.
Питательную среду на основе 4-часового панкреатического гидролизата свежего говяжьего мяса для выращивания микроорганизмов готовят следующим способом. Берут 4-часовой панкреатический гидролизат свежего говяжьего мяса, разбавленного питьевой водой до показания аминного азота 0,12% - 200,0 мл; натрий хлористый - 5,0 г; натрий фосфорнокислый двузамещенный - 4,0 г. Для осветления полученной жидкости используют активированный уголь марки «УО-А» в количестве 2% к объему среды, который ссыпают в эмалированную кастрюлю, доливают питьевую воду до 1 л, среду тщательно перемешивают до образования однородной массы. Подогревают до 56°С, затем устанавливают рН до 8,2±0,1 с помощью 20% раствора гидроокиси натрия в количестве 8,0 мл, кипятят в течение 5 мин. Фильтруют через полотно и 8-16 слоев фильтровальной бумаги, сбор фильтрата проводят в эмалированную кастрюлю. В готовый фильтрат светло-желтого цвета добавляют агара микробиологического 12 г/л. Смесь доводят до 100°С и кипятят до полного расплавления агара в течение 10 мин. рН корректируют раствором соляной кислоты (1:1) до рН 7,2±0,1, добавляют натрий сернистокислый в концентрации 0,4 г/л.A nutrient medium based on a 4-hour pancreatic hydrolyzate of fresh beef meat for growing microorganisms is prepared in the following way. Take a 4-hour pancreatic hydrolyzate of fresh beef meat diluted with drinking water to an amine nitrogen reading of 0.12% - 200.0 ml; sodium chloride - 5.0 g; sodium phosphate disubstituted - 4.0 g. To clarify the obtained liquid, activated carbon of the UO-A brand is used in an amount of 2% by volume of the medium, which is poured into an enameled pan, the drinking water is added to 1 liter, the medium is thoroughly mixed until a homogeneous mass is formed . Heated to 56 ° C, then set the pH to 8.2 ± 0.1 using a 20% solution of sodium hydroxide in an amount of 8.0 ml, boiled for 5 minutes Filter through a cloth and 8-16 layers of filter paper, collecting the filtrate is carried out in an enameled pan. Microbiological agar 12 g / l is added to the finished pale yellow filtrate. The mixture was brought to 100 ° C and boiled until the agar was completely melted for 10 minutes. The pH is adjusted with a solution of hydrochloric acid (1: 1) to a pH of 7.2 ± 0.1, sodium sulfite is added at a concentration of 0.4 g / L.
Приготовленную среду разливают в градуированные флаконы по 200±0,5 мл, которые герметично укупоривают ватно-марлевыми пробками и бумагой крафт. Стерилизуют при 0,5 атм в течение 30 мин. Стерильную среду после расплавления в кипящей бане разливают в стерильные чашки Петри, просушивают в течение 30 мин и используют для посева.The prepared medium is poured into graduated bottles of 200 ± 0.5 ml, which are hermetically sealed with cotton gauze plugs and Kraft paper. Sterilized at 0.5 atm for 30 minutes. After melting in a boiling bath, the sterile medium is poured into sterile Petri dishes, dried for 30 minutes and used for inoculation.
В качестве примера испытывали культуру вакцинного штамма чумного микроба ЕВ, выращенную на пластинках 2% агара Хоттингера, рН 7,2 при температуре 28°С в течение 24 ч. Из суточной агаровой культуры тест-штамма чумного микроба готовят взвесь в 0,9% растворе хлористого натрия густотой 1,0·109 м.к./мл по стандартному образцу мутности ГИСК им. Л.А.Тарасевича, ОСО 422859-86 П, - 10 единиц и делают 10-кратные последовательные разведения, перенося 0,5 мл взвеси в 4,5 мл 0,9% раствора хлористого натрия до разведения 10-7 (1·102 м.к./мл), тщательно перемешивая, меняя стерильную пипетку после каждого разведения. Культуру из разведения 10-6 (1000 м.к./мл) и 10-7 (100 м.к./мл) наносят по 0,1 мл на 3 свежеприготовленные и хорошо просушенные агаровые пластинки. Распределяют посеянную культуру по поверхности агара покачиванием чашки Петри. Учет результатов скорости роста культуры в каждом разведении микробной взвеси производят через 48 ч инкубации при 28°С. Показатель скорости роста определяют по минимальному времени инкубации посевов, за которое при соответствующем разведении обеспечен отчетливо видимый рост культуры во всех засеянных чашках с плотной средой и формирование типичных, легко дифференцируемых при микроскопии колоний на чашках с плотной средой.As an example, a culture of the plague microbe vaccine strain EB was grown on 2% Hottinger agar plates, pH 7.2, at 28 ° C. for 24 hours. A suspension in a 0.9% solution was prepared from the daily agar culture of the plague microbe test strain. sodium chloride with a density of 1.0 · 10 9 MK / ml according to the standard sample turbidity GISK them. L.A. Tarasevich, OCO 422859-86 P, - 10 units and do 10-fold sequential dilutions, transferring 0.5 ml of suspension to 4.5 ml of 0.9% sodium chloride solution before dilution of 10 -7 (1 · 10 2 mk / ml), mixing thoroughly, changing the sterile pipette after each dilution. A culture from a dilution of 10 -6 (1000 m.k. / ml) and 10 -7 (100 m.k. / ml) is applied 0.1 ml per 3 freshly prepared and well-dried agar plates. The seeded culture is distributed over the surface of the agar by shaking the Petri dish. The results of the culture growth rate in each dilution of the microbial suspension are taken into account after 48 hours of incubation at 28 ° C. The rate of growth rate is determined by the minimum incubation time of crops, during which, with appropriate dilution, a clearly visible growth of the culture is ensured in all seeded cups with a dense medium and the formation of typical colonies on cups with a dense medium that are easily differentiable by microscopy.
Оценку ростовых свойств питательной среды для культивирования чумного микроба проводят путем подсчета количества выросших колоний на пластинках агара.Assessment of the growth properties of the nutrient medium for cultivation of the plague microbe is carried out by counting the number of grown colonies on agar plates.
Пример 1Example 1
Тест-штамм выращивали на питательной среде, содержащей, г/л: 4-часовой панкреатический гидролизат свежего говяжьего мяса - 100,0; натрий хлористый - 4,0; натрий фосфорнокислый двузамещенный - 3,0; натрий сернистокислый - 0,3; агар микробиологический - 10,0; питьевая вода - до 1 л.The test strain was grown on a nutrient medium containing, g / l: 4-hour pancreatic hydrolyzate of fresh beef meat - 100.0; sodium chloride - 4.0; disubstituted sodium phosphate - 3.0; sodium sulfite - 0.3; microbiological agar - 10.0; drinking water - up to 1 liter.
При таком соотношении ингредиентов наблюдался типичный рост колоний, выросших на пластинках агара, для чумного микроба при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило через 48 ч соответственно 55 и 5 диаметром 1,0 мм.With this ratio of ingredients, a typical growth of the colonies grown on agar plates was observed for the plague microbe at a sowing dose of 100 and 10 mk. after 48 h, respectively, 55 and 5 with a diameter of 1.0 mm.
Пример 2Example 2
Тест-штамм выращивали на питательной среде, содержащей, г/л: 4-часовой панкреатический гидролизат свежего говяжьего мяса - 200,0; натрий хлористый - 5,0; натрий фосфорнокислый двузамещенный - 4,0; натрий сернистокислый - 0,4; агар микробиологический - 12,0; питьевая вода - до 1 л.The test strain was grown on a nutrient medium containing, g / l: 4-hour pancreatic hydrolyzate of fresh beef meat - 200.0; sodium chloride - 5.0; disubstituted sodium phosphate - 4.0; sodium sulfite - 0.4; microbiological agar - 12.0; drinking water - up to 1 liter.
При таком соотношении ингредиентов наблюдался типичный рост колоний, выросших на пластинках агара, для чумного микроба при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило через 48 ч соответственно 65 и 6 диаметром 1,5 мм.With this ratio of ingredients, a typical growth of the colonies grown on agar plates was observed for the plague microbe at a sowing dose of 100 and 10 mk. after 48 h, respectively, 65 and 6 with a diameter of 1.5 mm.
Пример 3Example 3
Тест-штамм выращивали на питательной среде, содержащей, г/л: 4-часовой панкреатический гидролизат свежего говяжьего мяса - 300,0; натрий хлористый - 6,0; натрий фосфорнокислый двузамещенный - 5,0; натрий сернистокислый - 0,5; агар микробиологический - 14,0; питьевая вода - до 1 л.The test strain was grown on a nutrient medium containing, g / l: 4-hour pancreatic hydrolyzate of fresh beef meat - 300.0; sodium chloride - 6.0; disubstituted sodium phosphate - 5.0; sodium sulfite - 0.5; microbiological agar - 14.0; drinking water - up to 1 liter.
При таком соотношении ингредиентов наблюдался типичный рост колоний чумного микроба, при посевной дозе 100 и 10 м.к. составило через 48 ч соответственно 50 и 5 диаметром 1,0 мм.With this ratio of ingredients, a typical growth of plague microbe colonies was observed, with a sowing dose of 100 and 10 mk. after 48 h, respectively, 50 and 5 with a diameter of 1.0 mm.
Таким образом, заявленная питательная среда для культивирования чумного микроба (пример 2), приготовленная на 4-часовом панкреатическом гидролизате свежего говяжьего мяса, может заменить по ростовым качествам питательную среду на ферментативной основе мясного гидролизата, приготовленную за 14 дней.Thus, the claimed nutrient medium for cultivation of the plague microbe (example 2), prepared on a 4-hour pancreatic hydrolyzate of fresh beef meat, can replace the growth quality of the nutrient medium on the enzymatic basis of meat hydrolyzate prepared in 14 days.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2009102421/13A RU2394905C1 (en) | 2009-01-26 | 2009-01-26 | Nutrient medium for cultivation of plague microbe |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2009102421/13A RU2394905C1 (en) | 2009-01-26 | 2009-01-26 | Nutrient medium for cultivation of plague microbe |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2394905C1 true RU2394905C1 (en) | 2010-07-20 |
Family
ID=42685983
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2009102421/13A RU2394905C1 (en) | 2009-01-26 | 2009-01-26 | Nutrient medium for cultivation of plague microbe |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2394905C1 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2626568C1 (en) * | 2016-06-14 | 2017-07-28 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain |
| RU2648153C1 (en) * | 2016-12-22 | 2018-03-22 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Solid nutrient medium cultivation of a plague microbe |
-
2009
- 2009-01-26 RU RU2009102421/13A patent/RU2394905C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| ВИКИПЕДИЯ http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%9F%D0%B8%D1%82%D1%8C%D0%B5%D0%B2%D0%B0%D1%8F-%D0%B2%D0%BE%D0%B4%D0%B0. Найдено в Интернет 30.11.09 г. * |
| ТЕЛИШЕВСКАЯ Л.Я. Белковые гидролизаты. - М.: Аграрная наука, 2000, с.125-126. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2626568C1 (en) * | 2016-06-14 | 2017-07-28 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain |
| RU2648153C1 (en) * | 2016-12-22 | 2018-03-22 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Solid nutrient medium cultivation of a plague microbe |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2433170C1 (en) | Nutrient liquid medium for culturing plague microbe of vaccine strain eb | |
| RU2412240C1 (en) | Culture medium for growing legionella | |
| RU2394905C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of plague microbe | |
| RU2626568C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain | |
| RU2681285C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of brucella neotomae species cultivation | |
| RU2415923C1 (en) | Method for production of fermentative hydrolysate of fresh white cabbage and nutritive medium for cultivation lactobacteria based thereon | |
| RU2460774C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
| RU2702174C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe yersinia pestis ev | |
| RU2435842C1 (en) | Transport nutrient medium (liquid) for cultivation of brucellous microbe | |
| RU2415922C1 (en) | Nutrient medium for lactic acid bacilli cultivation | |
| RU2460768C1 (en) | Solid nutrient medium for legionella cultivation | |
| RU2380409C1 (en) | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation | |
| RU2366448C2 (en) | Method for making preparation used for treatment of radiation injuries in animals and treatment method of radiation injuries in animals | |
| RU2518282C1 (en) | Nutrient medium for submerged cultivation of tularemia microbe | |
| RU2301256C1 (en) | Liquid nutrient medium for culturing cholera vibrio | |
| RU2348686C2 (en) | Nutrient medium for microorganism cultivation | |
| RU2644248C2 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and growing of tularemic microbe | |
| RU2425871C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
| RU2528101C2 (en) | Nutrient medium for legionella culture | |
| RU2688335C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation of brucellosis agent | |
| RU2510828C1 (en) | Nutrient medium for growing legionella | |
| RU2648153C1 (en) | Solid nutrient medium cultivation of a plague microbe | |
| RU2708029C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of yersinia pestis ev | |
| RU2525637C2 (en) | Nutrient medium for cultivation of listeriosis causative agent | |
| RU2792438C1 (en) | Selective nutrient medium with mannitol, bile and polymyxin to detect bacteria of the genera proteus, morganella, providencia, dry |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20110127 |