RU2695365C2 - Набор для получения радиофармацевтического препарата - Google Patents

Набор для получения радиофармацевтического препарата Download PDF

Info

Publication number
RU2695365C2
RU2695365C2 RU2016135941A RU2016135941A RU2695365C2 RU 2695365 C2 RU2695365 C2 RU 2695365C2 RU 2016135941 A RU2016135941 A RU 2016135941A RU 2016135941 A RU2016135941 A RU 2016135941A RU 2695365 C2 RU2695365 C2 RU 2695365C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
ligand
vial
buffer
reducing agent
lyophilized
Prior art date
Application number
RU2016135941A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2016135941A3 (ru
RU2016135941A (ru
Inventor
Ян Рейн ЗЕВАРТ
Зольтан СУКС
Джудит ВАГЕНЕР
Original Assignee
Дзе Саут Африкан Ньюклеар Энерджи Корпорейшн Лимитед
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Дзе Саут Африкан Ньюклеар Энерджи Корпорейшн Лимитед filed Critical Дзе Саут Африкан Ньюклеар Энерджи Корпорейшн Лимитед
Publication of RU2016135941A publication Critical patent/RU2016135941A/ru
Publication of RU2016135941A3 publication Critical patent/RU2016135941A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2695365C2 publication Critical patent/RU2695365C2/ru

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/04X-ray contrast preparations
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/06Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • A61K51/02Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
    • A61K51/04Organic compounds
    • A61K51/0491Sugars, nucleosides, nucleotides, oligonucleotides, nucleic acids, e.g. DNA, RNA, nucleic acid aptamers
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • A61K51/12Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by a special physical form, e.g. emulsion, microcapsules, liposomes, characterized by a special physical form, e.g. emulsions, dispersions, microcapsules
    • A61K51/1282Devices used in vivo and carrying the radioactive therapeutic or diagnostic agent, therapeutic or in vivo diagnostic kits, stents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07BGENERAL METHODS OF ORGANIC CHEMISTRY; APPARATUS THEREFOR
    • C07B59/00Introduction of isotopes of elements into organic compounds ; Labelled organic compounds per se
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07BGENERAL METHODS OF ORGANIC CHEMISTRY; APPARATUS THEREFOR
    • C07B59/00Introduction of isotopes of elements into organic compounds ; Labelled organic compounds per se
    • C07B59/005Sugars; Derivatives thereof; Nucleosides; Nucleotides; Nucleic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H13/00Compounds containing saccharide radicals esterified by carbonic acid or derivatives thereof, or by organic acids, e.g. phosphonic acids
    • C07H13/02Compounds containing saccharide radicals esterified by carbonic acid or derivatives thereof, or by organic acids, e.g. phosphonic acids by carboxylic acids
    • C07H13/04Compounds containing saccharide radicals esterified by carbonic acid or derivatives thereof, or by organic acids, e.g. phosphonic acids by carboxylic acids having the esterifying carboxyl radicals attached to acyclic carbon atoms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07BGENERAL METHODS OF ORGANIC CHEMISTRY; APPARATUS THEREFOR
    • C07B2200/00Indexing scheme relating to specific properties of organic compounds
    • C07B2200/05Isotopically modified compounds, e.g. labelled

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Radiology & Medical Imaging (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Настоящая группа изобретений относится к фармацевтической промышлености, а именно: к способу получения смеси для изготовления радиофармацевтического препарата и к способу получения набора для изготовления радиофармацевтического препарата. Способ получения смеси для изготовления радиофармацевтического препарата включает стадии: (i) предоставления флакона, содержащего буфер и восстановитель, при этом содержимое флакона находится в лиофилизированной форме; (ii) добавления лиганда к лиофилизированным компонентам флакона, при этом лиганд способен связываться с радионуклидом, где лиганд является растворимым в неводном растворителе, выбираемом из любого одного или более вариантов, включающих растворители с полярностью в диапазоне от гексана до глицерина; (iii) лиофилизация растворенного лиганда в условиях инертной атмосферы. Способ получения набора для изготовления радиофармацевтического препарата содержит стадии: (i) предоставления первого флакона, содержащего буфер и восстановитель, при этом содержимое флакона 1 находится в лиофилизированной форме; (ii) предоставления второго флакона, содержащего лиганд, при этом лиганд способен связываться с радионуклидом, где лиганд является растворимым в неводном растворителе, выбираемом из любого одного или более вариантов, включающих растворители с полярностью в диапазоне от гексана до глицерина; (iii) лиофилизация содержащегося во флаконе 2 растворенного лиганда в условиях инертной атмосферы. Предлагаемая группа решений поддерживает лиганд в стабильной форме до присоединения радионуклеотида. 2 н. и 17 з.п. ф-лы, 1 ил., 3 пр.

Description

Уровень техники изобретения
Данное изобретение относится к содержащему стабилизированные компоненты набору для получения радиоафармацевтического препарата. В частности данное изобретение относится к использованию неводного растворителя для стабилизации входящего в набор компонента, выступающего в роли лиганда.
Радиоафармацевтические препараты следует получать и вводить в организм в течение ограниченного промежутка времени в связи с коротким периодом полураспада большинства радионуклидов, используемых на практике. Обычно их получают из наборов, полученных в условиях надлежащей медицинской практики (GMP). Набор, как правило, содержит подходящий лиганд, с которым радионуклид, такой как 99mTc, дложен образовывать комплекс, достаточное количество восстановителя, буферы для регулирования pH с целью обеспечения оптимальных условий введения меченых атомов, стабилизаторы и вспомогательные вещества. Наборы получают в лиофилизированной или высушенной сублимацией форме, что увеличивает стабильность и срок хранения. Наборы можно легко транспортировать и хранить перед восстановлением с использованием указанного радионуклида. Высушенные сублимацией наборы упрощают введение меченых атомов и обеспечивают более стабильные условия для введения меченых атомов.
Доступность высушенного сублимацией состава для получения в форме набора является выгодной для персонала больницы, обязанного легко приготавливать радиоафармацевтический препарат для введения в организм, поскольку это включает только добавление радионуклида и, при необходимости, нагревание. Таким образом, указанные стадии получения находятся в рамках компетенции ответственного лица в больнице.
Примером радиоафармацевтического препарата является 99mТехнеций-этилендицистеиндезоксиглюкозамин (99mTc-ECDG) 1. 99mTc-ECDG представляет собой визуализирующее средство для однофотонной эмиссионной компьютерной томографии (SPECT)/компьютерной томографии (CT) (SPECT/CT), которое в настоящее время находится на третьей фазе клинических испытания в США на его способность к обнаружению первичных очагов рака легких1. Визуализирующие способности 99mTc-ECDG сопоставимы со способностями 18F-фтордезоксиглюкозы (18F-FDG) 2, визуализирующего средства для позитронно-эмиссионной томографии (PET)/CT, которое широко используется (более 95% сканограмм) для обнаружения гибернирующего миокарда и метаболически активной раковой ткани2. Главная непосредственная причина, обуславливающая потенциальное применение 99mTc-ECDG вместо 18F-FDG, заключается в значительно более низких затратах, связанных с использованием радиоактивного индикатора для SPECT, по сравнению с использованием радиоактивного индикатора для PET, а также в достижении такого же уровня качества и эффективности при визуализации рака легких3.
Figure 00000001
Предложено, что механизм действия 99mTc-ECDG реализуется через гексозаминовый путь метаболизма в результате содержания двух глюкозаминовых заместителей. Глюкозамин проникает в клетки посредством гексозаминового биосинтетического пути, и его регуляторные продукты глюкозамин-6-фосфата служат посредниками в нисходящем сигнальном пути активации инсулином и передают сигнал гликозилирования и роста злокачественной опухоли2. В гексозаминовом пути метаболизма транспортеры глюкозы с повышенным уровнем экспрессии способствуют сверхэкспрессии глутамин:фруктозо-6-фосфатамидотрансферазы (GFAT). Фосфорилированный глюкозамин связывается с уридиндифосфатом (UDP) с образованием UDPN-ацетилглюкозамина (UDP-GLcNAc). Гликозилирование остатков серина и треонина в ядерных и цитозольных белках посредством O-связанного белка N-ацетилглюкозаминтрансферазы (о-GlcNAc) обычно встречается у всех многоклеточных эукариотов. Гликозилирование является частью посттрансляционной модификации и, по всей видимости, модифицирует большое число ядерно-цитоплазматических белков. Активность O-GlcNAc трансферазы сильно восприимчива к внутриклеточным концентрациям UDP-GLcNAc и UDP, которые в свою очередь являются высокочувствительными к концентрациям глюкозы и другим стимулам. Внутри ядра клетки убиквитарный транскрипционный фактор Sp1 в высокой степени модифицируется O-GlcNAc. Sp1 подвергается гипергликозилированию при гипергликемии или повышенном уровне содержания глюкозамина. Поскольку O-GlcNAc вовлечена в гексозаминовый путь метаболизма и активность ядра, она становится привлекательным визуализирующим средством для дифференциального диагноза при опухолях.
Обзор литературы касательно опубликованных синтезов (ссылки [5], [6], [7] и [8]) дает общее представление о нескольких экспериментальных способах в отношении получения ECDG 3. К сожалению, ни одна из указанных опубликованных методик не была успешно воспроизведена, поскольку эти синтезы включают подвергание ECDG воздействию водной среды, что оказалось нецелесообразным, поскольку было показано, что ECDG является чувствительным к воздуху, свету, воде и температуре9. Было описано, что синтез ECDG является сложной задачей с учетом очень нестабильной природы указанного лиганда9. Так как ECDG предназначен для использования в качестве визуализирующего средства, вещество должно иметь фармацевтическую степень чистоты, что означает, что потребуется выполнить стадии очистки без значительного снижения выхода. Это окажется очень трудным из-за низкой стабильности ECDG.
Figure 00000002
Вторым фактором, осложняющим проблему получения 99mTc ECDG, подходящего для использования в качестве радиоафармацевтического препарата в условиях ядерной медицины, является его присутствие в составе для получения в форме набора.
Получение наборов на основе ECDG, неустойчивого в водной среде лиганда, является проблематичным, поскольку стандартная методика работы с набором включает стадию лиофилизации в водной фазе, где чистый активный фармацевтический ингредиент (API) в виде лиганда растворяется в воде/солевом растворе, содержащем по меньшей мере один вариант каждого компонента из восстановителя, добавки и буфера, распределяется по флаконам и подвергается сублимационной сушке. В больнице к набору добавляется 99mTc в солевом растворе и осуществляется восстановление. Затем 99mTc хелатируется лигандом ECDG, и радиоафармацевтический препарат 99mTc-ECDG готов для инъекции. Авторы изобретения обнаружили, что ECDG практически сразу разрушается в воде. Он является стабильным в воде только тогда, когда ион металла хелатирован ECDG, как в случае 99mTc-ECDG.
Таким образом, существует потребность в системе в форме набора, которая включает стабильные компоненты, которая позволяет осуществлять простую, воспроизводимую и устойчивую процедуру введения меченых атомов, подходящую для диагностических, терапевтических или других областей применения изотопного индикатора. Кроме того, существует потребность в эффективном мечении радиоактивным изотопом лигандов при уровнях радиохимической чистоты, которые являются приемлемыми для разрешения контролирующего органа, и в то же время при поддержании высокой стабильности, чистоты и выхода.
Сущность изобретения
Согласно первому аспекту изобретения предлагается набор для получения радиоафармацевтического препарата, при этом набор содержит:
a) лиганд, растворенный в неводном растворителе, при этом лиганд способен связываться с радионуклидом, и где растворитель выбирают исходя из относительной полярности в диапазоне от гексана до глицерина;
b) восстановитель;
c) буферный раствор;
d) и необязательно добавки, такие как слабый хелатирующий агент, антиокислитель, солюбилизатор или наполнитель,
и где каждый из компонентов a), b), c) и d) находится в лиофилизированной форме.
В предпочтительном варианте осуществления изобретения восстановитель представляет собой смесь SnCl2, или SnF2, или тартрата олова (II), соляной кислоты и воды, а буферный раствор представляет собой фосфатный, или лимоннокислый, или ацетатный буферный раствор. В соответствии с другим вариантом буфер представляет собой комбинацию из любых вариантов, включающих фосфатный, лимоннокислый или ацетатный буферный раствор.
Предпочтительно, слабый хелирующий агент выбирают из DTPA, глюкогептоната, тартрата и медроната, или комбинации из любых указанных вариантов. Антиокислитель выбирают из гентизиновой кислоты, аскорбиновой кислоты и пара-аминобензойной кислоты, или их комбинации. Солюбилизатор выбирают из желатина, или циклодекстрина, или их комбинации, а наполнитель выбирают из маннита, инозита, глюкозы и лактозы, или их комбинации.
Компоненты a), b), c) и d) могут содержаться в одном флаконе. В соответствии с другим вариантом компоненты b), c) и d) содержатся в первом флаконе, и компонент a) содержится во втором флаконе.
Лиганд можно выбирать из ECD, HMPAO, MAG3 и MIBI, или их солей с щелочными металлами или с щелочноземельными металлами. Предпочтительно лиганд представляет собой ECDG или его соль с щелочным металлом. Растворитель выбирают из метанола, этанола, этилацетата, гексана, хлороформа, дихлорметана, толуола, диэтилового эфира, тетрагидрофурана и ацетонитрила, или их комбинации. Предпочтительно, растворитель выбирают из метанола или этанола. Более предпочтительно, растворитель представляет собой метанол.
Радионуклид металла можно выбирать из 99mTc, 188Re, 186Re, 153Sm, 166Ho, 90Sr, 90Y, 89Sr, 67Ga, 68Ga, 111In, 153Gd, 59Fe, 52Fe, 225Ac, 212Bi, 45Ti, 60Cu, 61Cu, 62Cu, 64Cu, 67Cu, 195mPt, 191mPt, 193mPt, 117mSn, 103Pd, 103mRh, 89Zr, 177Lu, 169Er, 44Sc, 155Tb, 140Nd, 140Pr, 198Au, 103Ru, 131Cs, 223Ra, 224Ra и 62Zn.
Предпочтительно радионуклид представляет собой 99mTc, 103Pd, 103mRh, 195mPt, 193mPt, 191Pt. Более предпочтительно радионуклид представляет собой 99mTc.
Набор также содержит инструкции по применению.
Краткое описание чертежей
Фигура 1 представляет собой масс-спектр полученного ECDG
Описание предпочтительных вариантов осуществления
Наборы были получены согласно следующему способу.
Следующие растворы были получены в условиях атмосферы Ar(г), чтобы обеспечить отсутствие CO2 или O2:
a) Необходимый объем ECDG или его соли растворяют в неводном растворителе при относительной полярности в диапазоне от гексана до глицерина.
b) Буферные растворы фосфата/лимонной кислоты при подходящем значении pH для оптимальных условий введения меченых атомов.
c) Раствор соли олова (II) в нейтральной или кислой среде, который выполняет функцию восстановителя пертехнетат-иона (99mTcO4 -), находящегося в степени окисления, соответствующей валентности VII, до степени окисления, соответствующей валентности IV, чтобы обеспечить реакционную способность 99mTc для связывания с лигандом, ECDG.
Для состава для получения в форме набора с распределением компонентов по двум флаконам способ сублимационной сушки при использовании вышеописанных растворов включает следующее:
a) Флакон 1: достаточный объем раствора ECDG добавляют во флакон 1, замораживают и затем высушивают сублимацией в условиях атмосферы Ar(г).
b) Флакон 2: заданный объем полученного буферного раствора фосфата/лимонной кислоты добавляют в заполненный Ar(г) флакон 2, замораживают и высушивают сублимацией в течение ночи, после чего добавляют раствор Sn (60-100 мкг Sn(II)) и затем замораживают и высушивают в условиях атмосферы Ar(г).
Все флаконы хранятся в темных условиях в морозильной камере. Протокол введения меченых атомов предусматривает восстановление или растворение содержимого флакона 1, добавление содержимого флакона 1 к содержимому флакона 2, за которым немедленно следует добавление требуемого количества радиоактивного компонента 99mTc. Реакционную смесь нагревают (60-80°C) в течение ограниченного промежутка времени, чтобы обеспечить введение меченых атомов. Контроль качества с помощью методов TLC и HPLC должен регистрировать введение меченых атомов на уровне >90% и радиохимическую чистоту более 95%.
Для состава для нанесения в форме набора с содержанием компонентов в одном флаконе способ сублимационной сушки при использовании вышеописанных растворов включает следующее:
a) Сначала заданный объем полученного фосфатного/лимоннокислого буфера замораживают и высушивают сублимацией. Затем в заполненный Ar(г) флакон добавляют раствор Sn (60-100 мкг Sn (II)) и замораживают, после чего высушивают сублимацией в условиях атмосферы Ar(г).
b) В конце чистый ECDG растворяют в неводном растворителе на верхней поверхности высушенного сублимацией материала согласно пункту a), замораживают и высушивают сублимацией. Данный протокол введения меченых атомов предусматривает восстановление только путем добавления достаточного количества радиоактивного компонента 99mTc. Реакционную смесь нагревают (60-80°C) в течение ограниченного промежутка времени, чтобы обеспечить введение меченых атомов. Контроль качества с помощью методов TLC и HPLC должен регистрировать введение меченых атомов на уровне >90% и радиохимическую чистоту более 95%. После добавления в набор радиоактивного компонента составленный препарат готов для инъекции.
При получении наборов ECDG был получен Заявителем синтетическим путем. Способ синтеза для получения ECDG был успешно осуществлен при пяти стадиях синтеза, исходя из коммерчески доступного L-тиазолидин-4-карбоновой кислоты. Способ синтеза можно кратко изложить следующим образом.
Со структурной точки зрения можно считать, что 99mTc-ECDG состоит из трех компонентов, а именно: (i) L,L- этилендицистеинового (EC) лиганда в его центре, (ii) двух D-глюкозаминовых групп, нацеленных на злокачественную опухоль, и (iii) радионуклида 99mTc. EC можно получить посредством реакции димеризации по радикальному механизму коммерчески доступной L-4-тиазолидинкарбоновой кислоты [10]. Тиольные и вторичные аминные функциональные группы EC представляют собой реакционноспособные центры и, как показано, успешно и эффективно защищаются бензильной (Bn) [11] и бензилхлорформиатной (Cbz) защитными группами соответственно. Две D-глюкозаминовые группы теоретически могут быть присоединены к кислотным фрагментам EC путем реакции сочетания с участием смешанного ангидрида при использовании этилхлорформиата в качестве реагента. Затем ECDG можно получить путем полного снятия защитных групп у продукта реакции сочетания в растворе натрия/аммиака [8]. Эту реакцию можно гасить фенилацетатом аммония, который должен давать растворимую в 2-пропаноле натриевую соль фенилуксусной кислоты, что может создать возможность для достаточной очистки ECDG от побочных продуктов реакции. Указанный синтезированный ECDG можно затем пометить радиоактивным изотопом 99mTc и использовать по назначению.
Синтез EC 4
Figure 00000003
из L-тиазолидин-4-карбоновой кислоты проводили точно в соответствии с условиями, указанными в литературе [10], и получили целевой продукт с выходом 38%. По завершении реакции аммиак быстро испаряется (температура кипения -33°C), и полученный остаток растворяется в воде с получением сильноосновного (pH=12,0) раствора. По этой причине добавляют 5M HCl для протонирования превращенного в основание лиганда EC и осаждения молекулы в виде ее дигидрохлоридной соли, что достигается при pH 3,0-2,0. Исходное вещество, L-тиазолидин-4-карбоновая кислота, является растворимым в кислой среде и остается в растворе, и поэтому данная стадия служит в качестве первой стадии очистки EC 4. Осажденный EC 4 затем отфильтровывают, и было обнаружено, что непосредственная перекристаллизация указанного неочищенного EC 4 в кипящем этаноле, за которой следует сушка вещества под высоким вакуумом, приводит к получению чистого EC 4 в виде порошкообразного белого твердого вещества. Анализ ЯМР для EC 4 проводили в D2O при необходимости добавления 6,0 эквивалентов K2CO3 для (i) нейтрализации дигидрохлоридной соли и (ii) депротонирования тиольных и кислотных функциональны групп, что позволяет растворить и проанализировать EC 4. Данные протонного и углеродного спектров ЯМР EC 4 точно соответствовали литературным данным, так же как и определенная температура плавления. Указанные данные также показали, что чистота EC 4 составляла более 99%.
EC 4 подвергали бензилированию согласно информации по ссылке [10], при этом не наблюдались какие-либо отклонения от указанной информации. Данная стадия защиты была необходимой, поскольку тиольные группы также могут участвовать в запланированной реакции сочетания с глюкозамином и поэтому требуют наличия защиты. Однако отсутствуют какие-либо доступные литературные данные по данным протонного или углеродного спектров ЯМР для EC-Bn 5
Figure 00000004
и таким образом необходимо было определить систему растворителей и способ анализа. Экспериментально было обнаружено, что EC-Bn 5 полностью растворяется в смеси D2O и дейтерированного ДМФА в соотношении 6:4 об./об. при добавлении 4,0 эквивалентов K2CO3, который служил для нейтрализации дигидрохлоридной соли EC-Bn 5 и депротонирования двух кислотных фрагментов. Это обеспечило получение данных ЯМР для EC-Bn 5, которые служили в качестве первых опубликованных протонного и углеродного ЯМР спектров для данного соединения. Протонный спектр в значительной степени совпадает со спектром исходного соединения EC 4, но содержит бензильные протоны CH2 в виде синглета при 4,69 м.д. и десять ароматических протонов, проявляющихся при 7,16 м.д. в виде мультиплета. Углеродный спектр ЯМР согласуется с результатами протонного спектра ЯМР, поскольку атомы углерода CH2 наблюдаются при 35,9 м.д., а сигналы при 127,1 м.д., 128,6 м.д., 128,8 м.д. и 138,6 возникают в результате наличия ароматического кольца. Указанные данные наряду с определенной температурой плавления, которая вписывается в ожидаемый согласно литературным данным диапазон, подтверждают, что было успешно достигнуто введение бензильной защитной группы.
Вторичные аминные фрагменты EC-Bn 5 были защищены бензилхлорформиатными защитными группами. Так же как и тиольные группы, указанные вторичные аминные группы также могут реагировать при запланированной реакции сочетания с глюкозамином, и поэтому их тоже необходимо защитить. Защиту EC-Bn Cbz изначально проводили в течение 2 ч при 0°C, а затем в течение 16 ч при комнатной температуре (RT). Для удаления всего непрореагировавшего CbzCl требовалась стадия промывки диэтиловым эфиром, за которой следовало подкисление водной среды до pH 3,0 для протонирования карбоксигруппы EC-Bn-Cbz 6,
Figure 00000005
которое привело к осаждению продукта в виде белого твердого вещества. Было обнаружено, что растворение продукта в большом объеме органического растворителя и экстракция подкисленного раствора этилацетатом позволяет выделить EC-Bn-Cbz 6. Разделение и последующее удаление растворителя из органической фазы привело к получению целевого продукта в виде аморфного твердого вещества. Необходимо было полностью высушить EC-Bn-Cbz 6 при высоком вакууме, чтобы обеспечить то, чтобы вещество совсем не содержало следов растворителя или воды. Продукт в виде EC-Bn-Cbz 6 быстро разлагался на силикагеле и поэтому не представлялось возможности для его дополнительной очистки, что, как обнаружено, противоречило опубликованным данным [12]. Невозможно было определить систему растворителей для анализа ЯМР EC-Bn-Cbz 6, и это также не соответствовало информации в литературе, в которой указаны данные ЯМР в CDCl3. LC-MS анализ данного продукта также оказался неудачным из-за бензильных защитных групп, которые, как известно, являются проблематичными для определения с помощью метода MS. Таким образом неочищенный EC-Bn-Cbz 6 сразу использовали на следующей стадии.
Реакцию сочетания EC-Bn-Cbz 6 и тетра-ацетилглюкозамина проводили при использовании этилхлорформиата в качестве связующего реагента. Условия реакции и обработки соответствовали условиям, найденным в предшествующем уровне техники, но была установлена новая система растворителей для очистки с помощью колоночной хроматографии. Было обнаружено, что комбинация из трех растворителей, состоящая из метанола (MeOH), этилацетата (EtOAc) и гексана при соотношении в диапазоне (1-5):(10-90):(10-80), позволяет выделить полностью защищенный ECDG 7 при более высокой степени чистоты.
Figure 00000006
Последняя стадия представляла собой стимулируемое натрием/аммиаком полное снятие защиты у полностью защищенного ECDG 7 с получением ECDG 3. Полностью защищенный ECDG 7 реагировал с 20,0 эквивалентами металлического натрия, чтобы полностью удалить ацетатные, Cbz и Bn защитные группы. Затем реакцию гасили путем добавления 12,0 эквивалентов фенилацетата аммония, что привело к образованию фенилацетата натрия в качестве побочного продукта. После того как жидкий аммиак был выпарен в атмосфере газообразного аргона, фенилацетат натрия был удален из реакционной смеси посредством стадии промывки 2-пропанолом. Фенилацетат натрия хорошо растворим в 2-пропаноле, в то время как ECDG 3 не имеет такого свойства, поэтому органическую среду отфильтровали в инертной атмосфере с получением ECDG 3 в виде сильно пахнущего твердого вещества кремового цвета. Затем указанный ECDG 3 промыли диэтиловым эфиром, после чего сушили под высоким вакуумом в течение 1ч при отсутствии света. Идентификация и определение чистоты указанного ECDG были осуществлены с помощью MS (фигура 1), при этом требуемый пик MS для ECDG 3 наблюдался при 591,1 единицах. ECDG 3 хранили под аргоном при отсутствии света при -20°C.
Примеры
Пример 1 - набор с содержанием компонентов в двух флаконах.
Протокол лиофилизации
a) К раствору двухосновного фосфата натрия (0,284 г, 0,002 моль) в воде (бескислородной) добавили лимонную кислоту (0,201 г, 0,001 моль), для получения Фосфатного/лимоннокислого буферного раствора с pH 5,5. 855 мкл полученного фосфатного/лимоннокислого буферного раствора добавили в первый заполненному аргоном флакон, закрыли и заморозили перед сублимационной сушкой в течение ночи.
b) К раствору дигидрата хлорида олова (II) (0,01 г, 0,04 ммоль) добавили соляную кислоту (0,10 мл, 0,1 M) и разбавили водой (бескислородной) до 10 мл. Затем 100 мкл раствора Sn (=60 мкг Sn (II)) добавили во флакон 1, заморозили и затем подвергли сублимационной сушке.
c) Метанол (1,5 мл) добавили во второй заполненный аргоном флакон, содержащий ECDG (10 мг, 0,017 ммоль). Флакон погрузили в жидкий азот для заморозки раствора и сублимационной сушки. Флакон необходимо хранить в темноте и в морозильной камере.
Необходимо отметить, что все флаконы должны быть заполнены Ar для обеспечения отсутствия CO2 или O2.
Протокол введения меченых атомов
a) Добавляют 355 мкл H2O во флакону с высушенным сублимацией ECDG.
b) Переносят во флакон, содержащий высушенный сублимацией буфер/Sn, и добавляют небольшой якорь для магнитного перемешивающего устройства. Перемешивают для растворения буферных солей.
c) Затем следует немедленное добавление 500 мкл TcO4-(или эквивалентного объема для получения активности, составляющей приблизительно 40 мКи).
d) Помещают на электрическую плитку и перемешивают в течение 15 мин при 70°C.
e) Проводят TLC и HPLC-QC.
Пример 2 - Набор с содержанием компонентов в одном флаконе
Протокол лиофилизации
a) К раствору двухосновного фосфата натрия (0,284 г, 0,002 моль) в воде (бескислородной) добавили лимонную кислоту (0,201 г, 0,001 моль) для получения фосфатного/лимоннокислого буферного раствора с pH 5.5. 855 мкл полученного фосфатного/лимоннокислого буферного раствора добавили в первый заполненный аргоном флакон, закрыли и заморозили перед сублимационной сушкой в течение ночи.
b) К раствору дигидрата хлорида олова (II) (0,01 г, 0,04 ммоль) добавили соляную кислоту (0,10 мл, 0,1 M) и разбавили водой (бескислородной) до 10 мл. Затем 100 мкл раствора Sn (=60 мкг Sn (II)) добавили во флакон 1, заморозили и затем высушили сублимацией.
c) Во второй заполненный аргоном флакон с ECDG (10 мг, 0,017 ммоль) добавили метанол (1,5 мл). Данную смесь количественно перенесли во флакон 1, содержащий Sn/буфер. Флакон погрузили в жидкий азот, чтобы заморозить растворитель и осуществили сублимационную сушку. Флакон должен храниться в темноте и в морозильной камере.
Необходимо отметить, что все флаконы должны быть заполнены Ar для обеспечения отсутствия CO2 или O2.
Протокол введения меченых атомов
a) Добавляют 500 мкл TcO4-(или эквивалентный объем для получения активности, составляющей приблизительно 40 мКи) во флакон, содержащий ECDG, Sn и буфер.
b) Помещают на электрическую плитку и перемешивают в течение 15 мин при 70°C.
c) Проводят TLC и HPLC-QC.
Пример 3 - Синтез ECDG
Синтез L,L-этилендицистеина . 2HCl
Figure 00000003
L-Тиазолидин-4-карбоновую кислоту (30,0 г, 225 ммоль) медленно добавили к жидкому аммиаку (150 мл) в двухгорлой круглодонной колбе, оборудованной обратным холодильником (заполненным жидким азотом), впуском газообразного аргона и заполненной маслом ловушкой на выпуске. Смесь интенсивно перемешивали до полного растворения всего L-тиазолидин-4-карбоновой кислоты, после чего порциями в течение 15 минут добавляли очищенный металлический натрий (8,00 г, 349 ммоль, 1,50 эквивалента). По завершении добавления металлического натрия наблюдался темно-синий цвет, и данный раствор перемешивали в течение 20 минут при комнатной температуре. Затем аккуратно добавляли хлорид аммония порциями, помещенными на кончике шпателя, пока смесь не стала иметь белый цвет, и погасили весь непрореагировавший металлический натрий. Затем аммиаку, использованному в качестве растворителя, дали испариться, и полученный остаток реакционной смеси растворили в воде (200 мл) и довели pH до уровня 3,0 с помощью концентрированной HCl, что привело к осаждению дигидрохлоридной соли этилендицистеина в виде белого твердого вещества. Продукт собрали путем вакуумной фильтрации, перекристаллизовали из кипящего этанола и высушили под высоким вакуумом с получением 14,7 г (38%) этилендицистеина.2HCl 4.
Т.пл.: 252-254°C (в литературе указано 251-253°C [10]);
ЯМР-1H (400 МГц, D2O и 6,0 эквивалентов K2CO3):
δH=3,27 (2H, т, 2×CH-COOH), 2,70-3,00 (8H, м, перекрывающиеся сигналы 2×CH2-N и 2×CH2-SH), 2,62 (2H, м, 2×NH)2.
ЯМР-13C (400 МГц, D2O и 6,0 эквивалентов K2CO3):
δC=177,9 (COOH), 65,6 (CH-N), 44,8 (CH2-Н), 26,8 (CH2-SH).
Синтез S,Sʹ-дибензилэтилендицистеина . 2HCl 5
Figure 00000007
Этилендицистеин.2HCl 4 (2,0 г, 6,0 ммоль) растворили в 2M NaOH (30 мл) при комнатной температуре и добавили этанол (40 мл), и полученный раствор интенсивно перемешивали в течение 20 мин. Бензилхлорид (1,48 г, 11,7 ммоль, 2,0 эквивалента) в диоксане (20 мл) добавили по каплям в раствор этилендицистеина, после чего перемешивали еще 30 мин по завершении добавления. Затем этанол и диоксан удалили под вакуумом, после чего значение pH полученной водной смеси было доведено до уровня pH 3,0 путем подкисления 5M HCl. Это привело к осаждению гидрохлоридной соли S,Sʹ-дибензилэтилендицистеина 5, которую отфильтровали под вакуумом и высушил под высоким вакуумом с получением выхода 85% (2,7 г).
Т.пл.: 227-228°C (в литературе указано 251-253°C);
ЯМР-1H (400 МГц, D2O/DMF (соотношение 6:4 об./об.) и 4,0 эквивалента K2CO3):
δH=7,16 (10H, м, 2×CH2-C6H5), 3,8 (4H, c, 2×CH2-C6H5), 3,14 (2H, т, CH-COOH), 2,44-2,85 (10H, м, перекрывающиеся сигналы 2×CH2-Н, 2×CH2-SH и 2×NH);
ЯМР-13C (400 МГц, D2O/DMF (соотношение 6:4 об./об.) и 4,0 эквивалента K2CO3):
δC=179,5 (COOH), 138,6 (Ar-C), 128,0 (Ar-C), 128,6 (Ar-C), 127,1 (Ar-C), 62,7 (CH-N), 46,6 (CH2-Н), 35,9 (CH2-C6H5), 34,4 (CH2-SH).
Синтез полностью защищенного этилендицистеиндезоксиглюкозамина 7
S,S'-дибензилэтилендицистеин 5 (6,0 г, 11,5 ммоль) растворили в 10% растворе K2CO3 (150 мл) и охладили до 0°C в ледяной бане. После этого смесь бензилхлорформиата в диоксане (150 мл) быстро добавили в раствор, который затем перемешивали в течение 2 часов при 0°C. Затем охлаждающую баню удалили, и смесь перемешивали в течение 16 ч при комнатной температуре перед экстракцией диэтиловым эфиром (2×50 мл). Затем водный слой аккуратно подокислили до pH 3,0 с помощью 1 М HCl, что привело к осаждению белого соединения. Добавили этилацетат (200 мл), и осажденное твердое вещество растворили в указанном органическом слое при интенсивном перемешивании. Органический слой отделили, высушили над безводным сульфатом магния, отфильтровали, и удалили растворитель на роторном испарителе. Полученный бесцветный остаток затем высушили под высоким вакуумом с получением 5,75 г (выход 70%) неочищенного N,Nʹ-дибензилоксикарбонил-S,S'-дибензилэтилендицистеина 6 в виде аморфного твердого вещества. Это соединение являлось нестабильным для очистки и нерастворимым в испытанных растворителях для ЯМР и поэтому сразу использовалось в следующей реакции.
Figure 00000008
EC-Bn-CBz 6 (1,34 г, 1,87 ммоль) растворили в сухом хлороформе (30 мл) с триэтиламином (0,378 г, 3,74 ммоль, 2,0 эквивалента), и раствор охладили до -15°C в охлаждающей бане, содержащей суспензию хлорид натрия/лед, в атмосфере аргона. Добавили по каплям этилхлорформиат (0,406 г, 3,74 ммоль, 2,0 эквивалента), и перемешивали полученную смесь еще 15 мин. К указанной реакционной смеси добавили раствор тетраацетилглюкозамина (1,58 г, 4,11 ммоль, 2,2 эквивалента) и триэтиламина (0,416 г, 4,11 ммоль, 2,0 эквивалента) в сухом хлороформе (30 мл), при этом объединенную реакционную смесь перемешивали в течение 1 ч при 0°C, а затем 12 ч при комнатной температуре. Затем раствор последовательно промыли 1М HCl. (2×25 мл), 5% раствором K2CO3 (2×25 мл), H2O (50 мл), высушили над безводным сульфатом магния, отфильтровали и удалили растворитель под вакуумом. Остаток очистили с помощью колоночной хроматографии (силикагель 60; подвижная фаза: MeOH/EtOAc/гексан) с получением 1,80 г (выход 70%) полностью защищенного этилендицистеиндезоксиглюкозамина 7 в виде белого кристаллического твердого вещества.
Figure 00000009
ЯМР-1H (400 МГц, CDCl3):
δH=8,62 (2H, с, 2×NH), 7,48-7,40 (20H, м, 2×OCH2-C6H5, 2×SCH2-C6H5), 6,04 (2H, д, тетрагидропирановый протон), 5,45-5,20 (6H, м, 2×OCH2-C6H5, 2× перекрывающихся сигнала протонов тетрагидропирана), 4,48-4,07 (6H, м, 2×CH-CONH, 4× перекрывающихся сигнала протонов тетрагидропирана), 3,72-3,48 (12H, перекрывающиеся сигналы 4× протонов тетрагидропирана, 4× CH2-N-, 2× CH2-S-), 2,20-1,92 (24H, 8× OCH3).
Синтез этилендицистеиндезоксиглюкозамина 3
Полностью защищенный этилендицистеиндезоксиглюкозамин 7 (1,00 г, 0,73 ммоль) растворили в жидком аммиаке (100 мл) в атмосфере аргона и добавили небольшими порциями очищенный металлический натрий (0,334 г, 14,5 ммоль, 20,0 эквивалентов). Реакционная смесь стала темно-синей, и ее перемешивали в течение 15 мин при комнатной температуре перед добавлением небольших количеств фенилацетата аммония, чтобы погасить непрореагировавший металлический натрий. Полученный молочно-белый раствор высушили в потоке газообразного аргона с получением сильно пахнущего твердого вещества кремового цвета. Неочищенный продукт обрабатывали в инертной атмосфере при отсутствии света. К веществу добавили 2-пропанол (200 мл) и интенсивно перемешивали в течение 10 мин перед вакуумной фильтрацией. Полученный осадок кремового цвета промыли диэтиловым эфиром и затем сушили в течение 2 часов под высоким вакуумом с получением 0,230 г (выход 53%) натриевой соли этилендицистеиндезоксиглюкозамина (ECDG) 3. Строение продукта было подтверждено данными ЯМР-1H, HPLC и MS анализов, которые соответствовали литературным данным. C20H38O12N4S2 требует наличия пика 590,665, в отношении которого наблюдался пик 591,1.
Список литературы
1. http://clinicaltrials.gov/show/NCT01394679, 20/08/2013
2. Zhang, Y.H., Bryant, J., Kong, F.L., Yu, D.F., Mendez, R., Kim, E.E. & Yang, D.J., 2012, Molecular Imaging of Mesothelioma with 99mTc-ECG and 68Ga-ECG, Journal of Biomedicine and Biotechnology, 2012.
3. Zaman, M., 2007, 99mTc-EC-deoxyglucose - a poor manʹs 18F-FDG: what will be the future of PET in molecular imaging?, European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging, 34, 427-428.
4. http://www.health24.com/Medical/Cancer/Facts-and-figures/South-Africa-78-increase-in-cancer-by-2030-20120721, 20/08/2013.
5. Yang, D., Kim, C., Schechter, N.R., Azhdarinia, A., Yu, D., Oh, C., Bryant, J.L., Won, J., Kim, E. & Podoloff, D.A., 2003, Imaging with 99mTc-ECDG targeted at the multifunctional glucose transport system: feasibility study with rodents, Radiology, 226, 465-473.
6. Zhang, Y., Mendez, R., Kong, F., Bryant, J., Yu, D., Kohanim, S., Yang, D. & Kim, E., 2011, Efficient synthesis of 99mTc-ECDG for evaluation of mesothelioma, Journal of Nuclear Medicine, 52 (Suppl. 1), 1532
7. Ebrahimabadi, H., Lakouraj, M.M., Johari, F., Charkhlooie, G.A., Sadeghzadeh, M., 2006, Synthesis, characterization and biodistribution of 99mTc-(EC-DG), a potential diagnostic agent for imaging of brain tumors, Iranian Journal of Nuclear Medicine, 14 (Suppl. 1), 36-37
8. Yang, D.J., 2008, US Patent Application US20080107598
9. Blondeau, P., Berse, C., Gravel, D., 1967, Dimerization of an intermediate during the sodium in liquid ammonia reduction of L-thizolidine-4-carboxylic acid, Canadian Journal of Chemistry, 45, 49-52
10. Assad, T., 2011, Synthesis and Characterization on novel benzovesamicol analogues, Turkish Journal of Chemistry, 35, 189-200.
11. Mangʹera, K.O & Verbruggen, A., 1999, Synthesis and Evaluation of β-Homocysteine Derivatives of 99mTc-L,L-EC and 99mTc-L,L-ECD, Journal of Labelled Compounds and Radiopharmaceuticals, 42, 683-699.

Claims (25)

1. Способ получения смеси для изготовления радиофармацевтического препарата, при этом способ включает стадии:
(i) предоставления флакона, содержащего буфер и восстановитель, при этом содержимое флакона находится в лиофилизированной форме;
(ii) добавления лиганда к лиофилизированным компонентам флакона, при этом лиганд способен связываться с радионуклидом, где лиганд является растворимым в неводном растворителе, выбираемом из любого одного или более вариантов, включающих растворители с полярностью в диапазоне от гексана до глицерина;
(iii) лиофилизация растворенного лиганда в условиях инертной атмосферы.
2. Способ получения набора для изготовления радиофармацевтического препарата, при этом способ содержит стадии:
(i) предоставления первого флакона, содержащего буфер и восстановитель, при этом содержимое флакона 1 находится в лиофилизированной форме.
(ii) предоставления второго флакона, содержащего лиганд, при этом лиганд способен связываться с радионуклидом, где лиганд является растворимым в неводном растворителе, выбираемом из любого одного или более вариантов, включающих растворители с полярностью в диапазоне от гексана до глицерина;
(iii) лиофилизация содержащегося во флаконе 2 растворенного лиганда в условиях инертной атмосферы.
3. Способ по п. 1, в котором стадия (i) также включает предоставление флакона, содержащего буфер, при этом буфер лиофилизируют в условиях инертной атмосферы; добавление к лиофилизированному буферу восстановителя, при этом содержимое флакона затем дополнительно лиофилизируют в условиях инертной атмосферы.
4. Способ по п. 1, в котором стадия (i) также включает предоставление флакона, содержащего восстановитель, при этом восстановитель лиофилизируют в условиях инертной атмосферы; добавление к лиофилизированному восстановителю буфера, при этом содержимое флакона затем дополнительно лиофилизируют в условиях инертной атмосферы.
5. Способ по п. 2, в котором стадия (i) также включает предоставление первого флакона, содержащего буфер, при этом буфер лиофилизируют в условиях инертной атмосферы; добавление к лиофилизированному буферу восстановителя, при этом содержимое первого флакона затем дополнительно лиофилизируют в условиях инертной атмосферы.
6. Способ по п. 2, в котором стадия (i) также включает предоставление первого флакона, содержащего восстановитель, при этом восстановитель лиофилизируют в условиях инертной атмосферы; добавление к лиофилизированному восстановителю буфера, при этом содержимое флакона затем дополнительно лиофилизируют в условиях инертной атмосферы.
7. Способ по любому из пп. 1-6, в котором способ осуществления стадии (i) по п. 1 или 2 также включает предоставление добавок, выбираемых из любого одного или более вариантов, включающих слабый хелирующий агент, антиокислитель, солюбилизатор или наполнитель, при этом указанные добавки также присутствуют в лиофилизированной форме.
8. Способ по п. 1 или 2, в котором восстановитель до лиофилизации содержит смесь SnCl2, или SnF2, или тартрата олова (II), соляную кислоту и воду.
9. Способ по любому из пп. 1 или 2, в котором буфер до лиофилизации выбирают из любого одного или более вариантов, включающих фосфатный, лимоннокислый и ацетатный буферные растворы.
10. Способ по п. 7, в котором слабый хелирующий агент выбирают из любого одного или более вариантов, включающих DTPA, глюкогептонат, тартрат и медронат.
11. Cпособ по п. 7, в котором антиокислитель выбирают из любого одного или более вариантов, включающих гентизиновую кислоту, аскорбиновую кислоту и пара-аминобензойную кислоту.
12. Способ по п. 7, в котором солюбилизатор выбирают из желатина, или циклодекстрина, или их комбинация.
13.Способ по п. 7, в котором наполнитель выбирают из любого одного или более вариантов, включающих маннит, инозит, глюкозу и лактозу.
14. Способ по любому из пп. 1 или 2, в котором в качестве лиганда выбирают любой вариант из ECDG, ECD, HMPAO, MAG3 и MIBI; или их солей со щелочными металлами или щелочноземельными металлами.
15. Способ по любому из пп. 1 или 2, в котором растворитель выбирают из любого одного или более вариантов, включающих метанол, этанол, этилацетат, гексан, хлороформ, дихлорметан, толуол, диэтиловый эфир, тетрагидрофуран и ацетонитрил.
16. Способ по п. 15, в котором растворитель представляет собой метанол.
17. Способ по любому из пп. 1 или 2, в котором радионуклид выбирают из 99mTc, 188Re, 186Re, 153Sm, 166Ho, 90Sr, 90Y, 89Sr, 67Ga, 68Ga, 111In, 153Gd, 59Fe, 52Fe, 225Ac, 212Bi, 45Ti, 60Cu, 61Cu, 62Cu, 64Cu, 67Cu, 195mPt, 191mPt, 193mPt, 117mSn, 103Pd, 103mRh, 89Zr, 177Lu, 169Er, 44Sc, 155Tb, 140Nd, 140Pr, 198Au, 103Ru, 131Cs, 223Ra, 224Ra и 62Zn.
18. Способ по п. 17, в котором радионуклид представляет собой 99mTc, 103Pd, 103mRh, 195mPt, 193mPt, 191Pt.
19. Способ по п. 18, в котором радионуклид представляет собой 99mTc.
RU2016135941A 2014-02-07 2015-02-06 Набор для получения радиофармацевтического препарата RU2695365C2 (ru)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB201402132A GB201402132D0 (en) 2014-02-07 2014-02-07 A method of producing ethylenedicysteine deoxyglucosamine (ECDG) or a salt thereof and its application in a kit
GB1402132.3 2014-02-07
PCT/IB2015/050915 WO2015118498A1 (en) 2014-02-07 2015-02-06 A kit for preparing a radiopharmaceutical

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2016135941A RU2016135941A (ru) 2018-03-15
RU2016135941A3 RU2016135941A3 (ru) 2018-09-20
RU2695365C2 true RU2695365C2 (ru) 2019-07-23

Family

ID=50390627

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2016135941A RU2695365C2 (ru) 2014-02-07 2015-02-06 Набор для получения радиофармацевтического препарата

Country Status (13)

Country Link
US (1) US20160346412A1 (ru)
EP (1) EP3102588A1 (ru)
JP (1) JP2017505783A (ru)
KR (1) KR20160144352A (ru)
CN (1) CN106414471A (ru)
AU (1) AU2015213553B2 (ru)
BR (1) BR112016018011A8 (ru)
CA (1) CA2938930A1 (ru)
GB (1) GB201402132D0 (ru)
MX (1) MX2016010207A (ru)
RU (1) RU2695365C2 (ru)
WO (1) WO2015118498A1 (ru)
ZA (1) ZA201605769B (ru)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA3075795C (en) * 2018-10-06 2023-01-24 Jubilant Generics Limited Pharmaceutical compositions of sulfur colloid and processes thereof
GB202005282D0 (en) 2020-04-09 2020-05-27 Blue Earth Diagnostics Ltd Pharmaceutical Formulations

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5961952A (en) * 1996-01-24 1999-10-05 Dupont Pharmaceuticals Company 99m Tc-tertiary-butyl isonitrile as breast tumor imaging agents
WO2008053285A1 (en) * 2006-10-30 2008-05-08 Draximage Limited Methods for preparing 2-methoxyisobutylisonitrile and tetrakis(2-methoxyisobutylisonitrile)copper(i) tetrafluoroborate
US20080230705A1 (en) * 2004-11-09 2008-09-25 Spectrum Dynamics Llc Radioimaging
WO2008115337A1 (en) * 2007-03-19 2008-09-25 Mallinckrodt Inc. Sulfur-protected mercaptoacetylglycylglycylglycine

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4500507A (en) * 1981-10-30 1985-02-19 Wong Dennis W Diagnostic composition for radiologic imaging of neoplasms in the body and method of preparation
US4670545A (en) * 1984-05-11 1987-06-02 University Patents, Inc. Chelating agents for technetium-99M
EP0427360B1 (de) * 1989-10-30 1994-06-15 Verein für Kernverfahrenstechnik und Analytik Rossendorf e.V. Kit (nichtradioaktive Vorstufe) zur Herstellung einer enantiomeren Form des Nierenfunktionsdiagnostikums Technetium-99m-Mercaptoacetyltriglycin (99m-Tc-MAG-3) und Verfahren zur Herstellung des Kits
EP0639082B1 (en) * 1990-04-17 1998-09-09 Mallinckrodt Medical, Inc. Method and kit for preparing technetium-99m complexes
JP2860157B2 (ja) * 1990-10-31 1999-02-24 日本メジフィジックス株式会社 腎機能測定用の既放射能標識テクネチウムキレート注射剤の製造方法
ATE196609T1 (de) * 1993-07-28 2000-10-15 Diatide Inc Radiomarkierte glukane
CN1223264A (zh) * 1993-08-03 1999-07-21 杜邦药品公司 制备放射性核素配合物用的硫酸三异腈亚铜
US5980861A (en) * 1996-03-12 1999-11-09 University Of Massachusetts Chelator compositions and methods of synthesis thereof
ATE389029T1 (de) * 2001-11-08 2008-03-15 Tibotec Pharm Ltd Protease assay zur kontrolle medikamentöser therapie
WO2003092743A1 (en) * 2002-05-03 2003-11-13 Bracco Imaging S.P.A. Radiopharmaceutical formulations
CA2555953A1 (en) * 2004-02-13 2005-09-01 Mallinckrodt Inc. Improvement in the ligand protection for mercaptoacetyl triglycine
US10925977B2 (en) * 2006-10-05 2021-02-23 Ceil>Point, LLC Efficient synthesis of chelators for nuclear imaging and radiotherapy: compositions and applications
CN102028962A (zh) * 2010-12-09 2011-04-27 北京欣科思达医药科技有限公司 99mTc-MIBI标记冻干品药盒及其制备方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5961952A (en) * 1996-01-24 1999-10-05 Dupont Pharmaceuticals Company 99m Tc-tertiary-butyl isonitrile as breast tumor imaging agents
US20080230705A1 (en) * 2004-11-09 2008-09-25 Spectrum Dynamics Llc Radioimaging
WO2008053285A1 (en) * 2006-10-30 2008-05-08 Draximage Limited Methods for preparing 2-methoxyisobutylisonitrile and tetrakis(2-methoxyisobutylisonitrile)copper(i) tetrafluoroborate
WO2008115337A1 (en) * 2007-03-19 2008-09-25 Mallinckrodt Inc. Sulfur-protected mercaptoacetylglycylglycylglycine

Also Published As

Publication number Publication date
RU2016135941A3 (ru) 2018-09-20
GB201402132D0 (en) 2014-03-26
KR20160144352A (ko) 2016-12-16
BR112016018011A2 (pt) 2017-08-08
AU2015213553A1 (en) 2016-09-01
CA2938930A1 (en) 2015-08-13
WO2015118498A1 (en) 2015-08-13
RU2016135941A (ru) 2018-03-15
MX2016010207A (es) 2017-04-13
AU2015213553B2 (en) 2019-01-31
JP2017505783A (ja) 2017-02-23
BR112016018011A8 (pt) 2018-04-17
US20160346412A1 (en) 2016-12-01
CN106414471A (zh) 2017-02-15
ZA201605769B (en) 2021-01-27
EP3102588A1 (en) 2016-12-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP2921482B1 (en) Labeled inhibitors of prostate-specific membrane antigen (psma), biological evaluation, and use as imaging agents
KR100650506B1 (ko) 방사성 의약품용 레늄-트리카보닐 착물 및 그 전구체의제조방법
EP3663307B1 (en) Production method for radiolabeled aryl compound
JPH0764802B2 (ja) エステル置換ジアミンジチオール類およびそれらの放射線標識錯化合物
EP1888125A2 (en) Poly(peptide) as a chelator: methods of manufacture and uses
CN108290924B (zh) 肽硫脲衍生物、含有其的放射性同位素标记化合物、和含有该化合物作为活性成分的用于治疗或诊断前列腺癌的药物组合物
EP2468760B1 (en) Bisphosphonic acid derivative and compound thereof labeled with radioactive metal nuclide
CN115260160B (zh) 一种靶向成纤维细胞活化蛋白fap的化合物及其制备方法和应用
EP1813607A2 (en) Tetraaza- or N2S2- complexants, and their use in radiodiagnostics or radiotherapy
AU2022328455A1 (en) Radiopharmaceuticals, methods for the production thereof, and uses in treatment, diagnosis and imaging diseases
RU2695365C2 (ru) Набор для получения радиофармацевтического препарата
CA3205844A1 (en) Ligands and their use
AU2015203742B2 (en) Labeled inhibitors of prostate specific membrane antigen (psma), biological evaluation, and use as imaging agents
RU2684289C1 (ru) Способ получения комплекса технеция-99м с рекомбинантными адресными молекулами белковой природы для радионуклидной диагностики онкологических заболеваний с гиперэкспрессией HER-2/neu
CN114031652B (zh) 一种含环己烷的葡萄糖衍生物及其应用
PL239934B1 (pl) Pochodne inhibitorów PSMA do znakowania ⁹⁹ᵐTc poprzez HYNIC, zestaw radiofarmaceutyczny, preparat radiofarmaceutyczny oraz ich zastosowanie w diagnostyce raka prostaty
CN101891791A (zh) 一种标记胆汁酸衍生物及其参照化合物、制备方法和应用
US20120065367A1 (en) Radioactively Labeled Substance
US20220402951A1 (en) Radioisotope labeled compound for imaging or treatment of prostate cancer
KR101427292B1 (ko) 허혈성 조직 영상을 위한 플루오르―18 표지 트리아자노난 유도체 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염
Arane Synthesis and characterization of H5decapa and related ligands
WO2020028825A1 (en) Method for extraction and purification of 68ga
JP2023523226A (ja) Psma結合リガンドを放射標識するための方法及びそのキット
Pasquali et al. Country report: Italy (Duatti). Development of a Kit Formulation for Labeling Biotin-Derived Ligands with the Re-188 Nitrido Core
Aleshin et al. COMPLEXES OF 65 Zn and Phe-D-Trp-Lys-Thr TETRAPEPTIDE CONJUGATES WITH AZACROWN ETHERS: SYNTHESIS, IN VITRO AND IN VIVO STABILITY