PL239136B1 - Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Colletotrichum sp. oraz sposób jego wykrywania - Google Patents

Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Colletotrichum sp. oraz sposób jego wykrywania Download PDF

Info

Publication number
PL239136B1
PL239136B1 PL431986A PL43198619A PL239136B1 PL 239136 B1 PL239136 B1 PL 239136B1 PL 431986 A PL431986 A PL 431986A PL 43198619 A PL43198619 A PL 43198619A PL 239136 B1 PL239136 B1 PL 239136B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
colletotrichum
detection
molecular probe
oligonucleotide primers
detecting
Prior art date
Application number
PL431986A
Other languages
English (en)
Other versions
PL431986A1 (pl
Inventor
Jacek Panek
Magdalena Frąc
Dominika Malarczyk
Original Assignee
Inst Agrofizyki Im Bohdana Dobrzanskiego Polskiej Akademii Nauk
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Agrofizyki Im Bohdana Dobrzanskiego Polskiej Akademii Nauk filed Critical Inst Agrofizyki Im Bohdana Dobrzanskiego Polskiej Akademii Nauk
Priority to PL431986A priority Critical patent/PL239136B1/pl
Publication of PL431986A1 publication Critical patent/PL431986A1/pl
Publication of PL239136B1 publication Critical patent/PL239136B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/6895Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for plants, fungi or algae
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2531/00Reactions of nucleic acids characterised by
    • C12Q2531/10Reactions of nucleic acids characterised by the purpose being amplify/increase the copy number of target nucleic acid
    • C12Q2531/113PCR

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku są startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania patogenów grzybowych należących do rodzaju Colletotrichum z zastosowaniem reakcji łańcuchowej polimerazy z detekcją w czasie rzeczywistym (qPCR), a także sposób wykrywania obecności tych patogenów.
Grzyby z rodzaju Colletotrichum należą do fitopatogenów powodujących antraknozę, prowadzącą do strat ekonomicznych w uprawach owoców, w tym truskawek. Grzyby z rodzaju Colletotrichum mogą atakować prawie wszystkie części roślin, prowadząc do poważnych strat w plonach i obniżenia jakości wielu upraw, a zwłaszcza owoców. Objawami chorobowymi dojrzałych owoców są brązowe lub czarne jędrne plamy zatopione w owocu, które mogą się powiększać dopóki nie pokryją całego owocu (Chen Y. Y., Conner R. L., Gillard C. L., Boland G. J., Babcock C., Chang K. F., Hwang S. F., Balasubramanian P. M., 2007. A specific and sensitive method for the detection of Colletotrichum lindemuthianum in dry bean tissue. Plant Disease, 91, 1271-6). Antraknoza wywoływana przez grzyby z rodzaju Colletotrichum wpływa nie tylko na owoce, ale także na korony, ogonki, liście, pąki i części kwiatowe, co stanowi poważne zagrożenie dla uprawianych roślin (Howard C. M., Maas J. L., Chandler C. K., Afbregts E. E., 1992. Anthracnose of strawberry caused by the Colletotrichum complex in Florida. Plant Disease, 76, 976-981).
Wykrycie grzybów z rodzaju Colletotrichum na wczesnych etapach zakażenia jest bardzo istotne dla utrzymania wydajności i jakości owoców, a także dla kontroli rozprzestrzeniania się patogenów (Mararczyk D., Panek .J., Frąc M., 2019. Alternative Molecular-Based Diagnostic Methods of Plant Pathogenic Fungi Affecting Berry Crops-A Review. Molecules, 24, 1200, doi: 10.3390/molecules).
Do metod najczęściej wykorzystywanych w detekcji grzybów z rodzaju Colletotrichum należą tradycyjne metody diagnostyczne oparte o izolację patogenu z zakażonej tkanki roślinnej, a następnie na identyfikacji grzyba, co jest długotrwałe i czasochłonne (Xie L., Zhang J., Wan Y., Hu D., 2010. Identification of Colletotrichum spp. isolated from strawberry in Zhejiang Province and Shanghai City, China, Biomed & Biotechnology, 11,1, 61-70). Chociaż rozwijane są również molekularne metody wykrywania i diagnostyki grzybów z rodzaju Colletotrichum, to dotyczą one pojedynczych gatunków, a patogeny z rodzaju Colletotrichum często występują wspólnie, atakując różne części roślin (Gadaga S. J. C., Siqueira C. S., Machado J. C., 2018. Molecular detection of Colletotrichum lindemuthianum in bean seed samples. Journal of Seed Science, 40, 4, 370-377). Wśród metod opracowanych do diagnostyki grzybów z rodzaju Colletotrichum należą te oparte o konwencjonalną łańcuchową reakcję polimerazy (PCR) (Tapia-Tussell R., Qujano-Ramayo A., Cortes-Velazquez A., Lappe P., Larque-Saavedra A., Perez-Brito D., 2008. PCR-Based Detection and Characterization of the Fungal Pathogens Colletotrichum gloeosporioides and Colletotrichum capsici Causing Anthracnose in Papaya (Carica papaya L.) in the Yucatan Peninsula. Molecular Biotechnology, 40, 3, 293-298), ilościową łańcuchową reakcję polimerazy (qPCR) (Chen Y. Y., Conner R. L., Gillard C. L., McLaren D. L., Boland G. J., Balasubramanian P. M., Stasolla C., Zhou Q. X., Hwang S. F., Chang K. F., Babcock C., 2013. A quantitative real-time PCR assay for detection of Colletotrichum lindemuthianum in navy bean seeds. Plant Pathology, 62, 900-907. Yang H. C., Haudenshield J. S., Hartman G. L., 2015. Multiplex Realtime PCR Detection and Differentiation of Colletotrichum Species Infecting Soybean. Plant Diseas, 99, 11, 1559-1568), oraz metody izotermicznej amplifikacji wykorzystującej zapętlenie (LAMP) (Wang S., Ye W., Tian Q., Dong S., Zheng X., 2017. Rapid detection of Colletotrichum gloeosporioides using a loop-mediated isothermal amplification assay. Australasian Plant Pathology, 46, 493-498). Jednakże wymienione dostępne w literaturze metody umożliwiające identyfikację grzybów z rodzaju Colletotrichum oparte są o inne markery lub startery i charakteryzują się zmienną specyficznością i czułością. Ponadto, testy detekcji wymienionych grzybów opracowywane są najczęściej dla czystych kultur bez oceny ich przydatności do detekcji na próbkach środowiskowych, w których występują inne grzyby towarzyszące uprawom roślin w danej lokalizacji lub kontaminowanych różnymi patogenami, albo sprawdzane są na pojedynczych specyficznych matrycach środowiskowych.
Startery oraz sonda zostały zaprojektowane w oparciu o sekwencje genu kodującego region D2 dużej podjednostki rybosomalnego RNA, uzyskane z izolatów grzybów należących do rodzaju Colletotrichum pochodzących z części nadziemnych roślin, owoców i korzeni truskawki oraz z gleby spod upraw truskawek.
PL 239 136 B1
Istotę wynalazku stanowią startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania patogenów grzybowych należących do rodzaju Colletotrichum o sekwencjach nr 1, 2 i 3, przedstawionych na liście sekwencji.
Istotą sposobu wykrywania patogenów grzybowych należących do rodzaju Colletotrichum jest zastosowanie w reakcji qPCR, pary starterów oligonukleotydowych o sekwencjach nr 1 i 2 oraz sondy molekularnej o sekwencji nr 3, przedstawionych na liście sekwencji, w wyniku której dochodzi do amplifikacji określonego fragmentu DNA, po czym dokonuje się specyficznej detekcji otrzymanego produktu amplifikacji poprzez odczyt fluorescencji o długości fali 576 nm, po wzbudzeniu światłem o długości fali 544 nm.
Zastosowanie wymienionych starterów oligonukleotydowych oraz sondy molekularnej do przeprowadzenia reakcji łańcuchowej polimerazy z detekcją w czasie rzeczywistym, przebiegającej w ściśle określonych warunkach według wynalazku, umożliwia amplifikację produktu o długości 321 par zasad. Podstawową zaletą opracowanego systemu detekcji jest fakt, że został on zwalidowany nie tylko na czystych szczepach grzybów, ale również na próbkach środowiskowych, w szczególności glebie oraz fragmentach roślin, korzeniach i owocach truskawki, w których stwierdzono obecność grzyba patogenicznego z rodzaju Colletotrichum.
Wynalazek jest bliżej pokazany w przykładzie wykonania i zamieszczonym poniżej rysunku, na którym:
- Fig. 1 przedstawia sekwencję nukleotydową fragmentu DNA amplifikowanego w reakcji qPCR przeprowadzonej z zastosowaniem oligonukleotydów o sekwencjach nr 1 i 2;
- Fig. 2 przedstawia wykres wzrostu fluorescencji w wyniku amplifikacji materiału genetycznego Colletotrichum sp. w obecności starterów o sekwencjach nr 1 i 2 oraz sondy molekularnej o sekwencji nr 3.
Materiał biologiczny wykorzystywany w procesie detekcji stanowi gleba, korzenie, fragmenty roślin, owoce, fragmenty grzybni lub zarodniki mikroorganizmu. DNA uzyskane w wyniku przeprowadzenia procedury izolacji stosowane jest jako matryca do amplifikacji. Reakcję qPCR przeprowadza się w mieszaninie reakcyjnej o następującym składzie: woda dejonizowana wolna od nukleaz, master mix do reakcji qPCR zawierający w składzie polimerazę Taq DNA typu HotStart, kofaktor enzymu - jony Mg2+, dNTP oraz bufor, matrycowe DNA oraz parę oligonukleotydowych starterów (0,3 μM) o sekwencjach nr 1 i 2, sondę molekularną (0,15 μM) o sekwencji nr 3 i termolabilną uracyl-N-gikozylazę (0,01 U/μl). Amplifikację przeprowadza się z zastosowaniem następującego profilu termicznego: UNG - 37°C przez 2 minuty, wstępna denaturacja, dezaktywacja UNG i aktywacja polimerazy Taq DNA: 95°C przez 12 minut, następnie 40 cykli: denaturacja - 95°C przez 5 sekund, przyłączanie starterów, elongacja i odczyt fluorescencji - 60°C przez 2 minuty lub innego profilu termicznego umożliwiającego uzyskanie powielania DNA i detekcji z oligonukleotydami stanowiącymi przedmiot tego wynalazku. Sekwencja zamplifikowanego fragmentu DNA przedstawiona jest na Rysunku 1.
Obecność oczekiwanego produktu o długości 321 par zasad potwierdza się poprzez zastosowanie dowolnego termocyklera typu real-time PCR umożliwiającego wzbudzenie mieszaniny reakcyjnej światłem o długości fali 544 nm i odczyt fluorescencji o długości fali 576 nm.
Sposób stwierdzania obecności materiału genetycznego patogenów grzybowych należących do rodzaju Colletotrichum w badanej próbce według wynalazku ilustruje zamieszczony poniżej przykład.
A. Izolacja DNA z fragmentów roślin, korzeni i owoców truskawki, grzybni oraz gleby
Izolację DNA przeprowadzono w wykorzystaniem komercyjnego zestawu do izolacji DNA z próbek środowiskowych (FastDNA Spin Kit for Faeces - MP Biomedicals).
250 mg tkanki roślinnej/grzybowej lub 500 mg gleby wprowadzano do probówek o pojemności 2 ml, zawierających matrycę złożoną z kulek ceramicznych o średnicy 1,4 mm, kulek krzemionkowych o średnicy 0,1 mm oraz 1 kulki szklanej o średnicy 4 mm. Próby następnie płukano w buforze fosforanowo-sodowym (825 μl) z odczynnikiem PLS (275 μl). Następnie wirowano (5 minut, 14 000 x g) i zlewano supernatant. Dodano bufor fosforanowo-sodowy (978 μl) i bufor MT (122 μl), po czym próbki homogenizowano w aparacie FastPrep24 w warunkach: 40 s, 6 m/s. Próbki następnie wirowano (15 minut, 14 000 x g), a supernatant przenoszono do nowych probówek zawierających bufor PPS (250 μl). Próbki mieszano poprzez odwracanie i inkubowano (10 minut w temperaturze 4°C). Mieszaninę wirowano (2 minuty, 14 000 x g), a następnie supernatant przenoszono do nowej probówki o pojemności 5 ml, zawierającej odczynnik Binding Matrix Solution (1 ml). Próbki następnie mieszano na rotatorze (5 minut), wirowano (2 minuty, 14 000 x g) i zlewano supernatant. Osad płukano buforem płuczącym (Wash
PL239 136 Β1
Buffer #1, 1 ml). Otrzymaną zawiesinę dwukrotnie przenoszono na kolumnę separacyjną (SPIN Filter), wirowano (1 minutę, 14 000 x g) i wylewano przesącz. Filtr następnie płukano drugim buforem płuczącym (Wash Buffer #2, 500 μΙ), wirowano (2 minuty, 14 000 x g) i wylewano przesącz. Filtr ponownie wirowano (2 minuty, 14 000 x g) a następnie przenoszono filtr do nowej probówki. Na filtr nanoszono bufor elucyjny (TES, 100 μΙ) i wirowano (2 minuty, 14 000 x g). Uzyskany przesącz, zawierający wyekstrahowane DNA, rozcieńczano 10-krotnie wodą dejonizowaną wolną od nukleaz.
B. Przygotowanie próbek do amplifikacji
DNA wyizolowane według powyższej procedury wykorzystano jako matrycę dla reakcji qPCR. Do probówki o pojemności 0,1 ml dodano 4 μΙ wyizolowanego DNA.
Reakcje przeprowadzono w termocyklerze 7500 FAST (AppliedBiosystems) w objętości 20 μΙ mieszaniny reakcyjnej zawierającej: wodę dejonizowaną wolną od nukleaz, master mix MP qPCR Master Mix (2x) (EURx), parę oligonukleotydowych starterów (0,3 μΜ) o sekwencjach nr 1 i 2, sondę molekularną o sekwencji nr 3 (0,15 μΜ), termolabilną uracyl-N-gikozylazę (0,1 U/μΙ). Ponadto, ze względu na wykorzystany termocykler, mieszanina reakcyjna zawierała barwnik referencyjny ROX (30 nM). Probówki wprowadzono na blok termocyklera stosując następujący profil termiczny: 37°C przez 2 minuty, 95°C przez 12 minut, następnie 40 cykli: 95°C przez 5 sekund, 60°C przez 2 minuty.
C. Wizualizacja wyników amplifikacji za pomocą detekcji fluorescencji w trakcie trwania reakcji
W trakcie trwania reakcji, po każdym cyklu aparat zbierał dane dotyczące fluorescencji mieszaniny reakcyjnej. Pozytywny wynik reakcji obserwowano jako wystąpienie wzrostu fluorescencji ponad poziom bazowy i pojawienie się krzywej amplifikacji. Uzyskany dla badanego materiału wynik identyfikacji z zastosowaniem oligonukleotydów, sondy molekularnej i metody stanowiącej przedmiot wynalazku przedstawia Fig. 2.
LISTA SEKWENCJI
Sekwencja nr 1
D2LSUF: 5’ AGA CCG ATA GCG MAC AAG 3'
Sekwencja nr 2
D2LSUR: 5’ CTT GGT CCG TGT TTC AAG 3’
Sekwencja nr 3
ColletotrichumTamra: Tamra(R)5’ TGTGACCAGACTTGCGTCCGGTGAA 3’
BHQ-2.

Claims (2)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania patogenów grzybowych należących do rodzaju Colletotrichum o sekwencjach nr 1, 2 i 3, przedstawionych na liście sekwencji.
  2. 2. Sposób wykrywania fitopatogenicznego grzyba z rodzaju Colletotrichum, w którym w reakcji qPCR z zastosowaniem pary starterów i sondy molekularnej dochodzi do amplifikacji określonego fragmentu DNA, objawiającej się pojawieniem się krzywej amplifikacji, potwierdzając detekcję powstałego produktu, znamienny tym, że parę starterów i sondę stanowią startery oligonukleotydowe i sonda molekularna jak określono w zastrz. 1.
PL431986A 2019-11-28 2019-11-28 Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Colletotrichum sp. oraz sposób jego wykrywania PL239136B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL431986A PL239136B1 (pl) 2019-11-28 2019-11-28 Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Colletotrichum sp. oraz sposób jego wykrywania

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL431986A PL239136B1 (pl) 2019-11-28 2019-11-28 Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Colletotrichum sp. oraz sposób jego wykrywania

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL431986A1 PL431986A1 (pl) 2021-05-31
PL239136B1 true PL239136B1 (pl) 2021-11-08

Family

ID=76133057

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL431986A PL239136B1 (pl) 2019-11-28 2019-11-28 Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Colletotrichum sp. oraz sposób jego wykrywania

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL239136B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL431986A1 (pl) 2021-05-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Böhm et al. Real‐time quantitative PCR: DNA determination in isolated spores of the mycorrhizal fungus Glomus mosseae and monitoring of Phytophthora infestans and Phytophthora citricola in their respective host plants
Osman et al. Real-time RT-PCR (TaqMan®) assays for the detection of Grapevine Leafroll associated viruses 1–5 and 9
Almasi et al. Development of colorimetric loop-mediated isothermal amplification assay for rapid detection of the tomato yellow leaf curl virus
CN111206106B (zh) 一种用于检测甘薯腐烂茎线虫的rpa引物、试剂盒及检测方法
KR101624026B1 (ko) 사과갈색무늬병균 검출을 위한 등온증폭반응용 프라이머 세트 및 이의 용도
Herath et al. Detection of elm yellows phytoplasma in elms and insects using real-time PCR
KR20230112858A (ko) 키위 무름병균 검출용 프라이머 세트, 이를 포함하는 검출키트 및 이를 이용한 검출방법
PL239136B1 (pl) Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Colletotrichum sp. oraz sposób jego wykrywania
KR101424101B1 (ko) 벼 도열병균 검출용 조성물 및 이를 이용한 벼 도열병균의 정량적 검출방법
KR100744699B1 (ko) 인삼점무늬병균 알타나리아 파낙스 동정 및 검출용 특이적프라이머
CN105039331B (zh) 一种荔枝霜疫霉菌lamp引物及其快速检测方法和应用
PL239138B1 (pl) Startery oligonukleotydowe oraz sondy molekularne do jednoczesnego wykrywania fitopatogenicznych grzybów Botrytis sp., Colletotrichum sp., Verticillium sp. oraz sposób ich wykrywania
CN105039560A (zh) 一种荔枝炭疽菌lamp引物及其快速检测方法和应用
PL239137B1 (pl) Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Verticillium sp. oraz sposób jego wykrywania
PL239135B1 (pl) Startery oligonukleotydowe oraz sonda molekularna do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Botrytis sp. oraz sposób jego wykrywania
CN113789401B (zh) 环介导等温扩增法检测烟草疫霉菌的引物及其检测方法
PL242988B1 (pl) Startery oligonukleotydowe do wykrywania fitopatogenicznych mikroorganizmów Phytophthora SPP. oraz sposób ich wykrywania
KR101457275B1 (ko) 사탕무황화바이러스를 검출하기 위한 등온증폭 반응용 프라이머 조성물, 및 이의 이용
JP7578608B2 (ja) ビルベリーの識別のための方法とキット
KR102926935B1 (ko) 빌베리의 확인을 위한 방법 및 키트
JP7349149B2 (ja) サツマイモ基腐病菌を検出するための核酸、プライマーセット、キットおよび方法
PL248973B1 (pl) Para starterów oligonukleotydowych do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Colletotrichum acutatum oraz sposób jego wykrywania
KR20200048622A (ko) 박과 작물 바이러스 검출용 프라이머 세트 및 이를 이용한 박과 작물 바이러스병 진단방법
PL242987B1 (pl) Startery oligonukleotydowe do wykrywania fitopatogenicznych mikroorganizmów Phytophthora cactorum oraz sposób ich wykrywania
PL239141B1 (pl) Startery oligonukleotydowe do wykrywania fitopatogenicznego grzyba Phytophthora sp. oraz sposób jego wykrywania