PL168285B1 - Sposób elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy oraz uklad elektrod czujnikowych do oznaczania oksydoreduktazy PL - Google Patents
Sposób elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy oraz uklad elektrod czujnikowych do oznaczania oksydoreduktazy PLInfo
- Publication number
- PL168285B1 PL168285B1 PL91307225A PL30722591A PL168285B1 PL 168285 B1 PL168285 B1 PL 168285B1 PL 91307225 A PL91307225 A PL 91307225A PL 30722591 A PL30722591 A PL 30722591A PL 168285 B1 PL168285 B1 PL 168285B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- electrode
- substance
- oxidoreductase
- electrically conductive
- determination
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/001—Enzyme electrodes
- C12Q1/004—Enzyme electrodes mediator-assisted
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Quinoline Compounds (AREA)
- Indole Compounds (AREA)
- Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)
- Plural Heterocyclic Compounds (AREA)
- Battery Electrode And Active Subsutance (AREA)
- Measuring Pulse, Heart Rate, Blood Pressure Or Blood Flow (AREA)
- Magnetic Resonance Imaging Apparatus (AREA)
Abstract
1. SPOSÓB ELEKTROCHEMICZNEGO OZNACZANIA OKSYDOREDUKTAZY W OBECNOSCI OD- POWIEDNIEGO SUBSTRATU ENZYMU I ULEGAJACEJ REDUKCJI SUBSTANCJI, KTÓRA JEST W STANIE PRZENIESC ELEKTRONY OKSYDOREDUKTAZY NA ELEKTRODE I TAK PROWADZI DO SYGNALU, KTÓRY JEST MIARA DLA OZNACZANEGO ENZYMU, PRZY CZYM ULEGAJACA REDUKCJI SUBSTANCJA JEST REDUKOWANA ENZYMATYCZNIE, A UTLENIANA JEST NA ELEKTRODZIE, ZNAMIENNY TYM, ZE POWSTAJACA NA ELEKTRODZIE PRZEZ UTLENIENIE SUBSTANCJA JEST RÓZNA OD PIERWOTNIE UZYTEJ SUBSTANCJI ULEGAJACEJ REDUKCJI. 3. UKLAD ELEKTROD CZUJNIKOWYCH DO ELEKTROCHEMICZNEGO OZNACZANIA OKSYDO- REDUKTAZY W CIEKLEJ PRÓBIE, ZAWIERAJACY CO NAJMNIEJ DWA ELEKTRYCZNIE PRZEWODZACE SRODKI, KTÓRE WYSTEPUJA ODIZOLOWANE OD SIEBIE I KTÓRE KAZDORAZOWO ZA POMOCA ELEKTRYCZNIE PRZEWODZACEJ POWIERZCHNI SA EWENTUALNIE DOPROWADZANE DO ELEKTRYCZNEGO KONTAKTU Z BADANA PRÓBA, PRZY CZYM CO NAJMNIEJ JEDNA Z ELEKTRYCZNIE PRZEWODZACYCH POWIERZCHNI KONTAKTUJE SUBSTRAT OKSYDOREDUKTAZY I ULEGAJACA REDUKCJI SUBSTANCJE, KTÓRA JEST W STANIE PRZENIESC ELEKTRONY POMIEDZY OKSYDOREDUKTAZA I ELEKTRYCZNIE PRZEWODZACA POWIERZCH- NIA, ZNAMIENNY TYM, ZE JAKO ULEGAJACA REDUKCJI SUBSTANCJE STOSUJE SIE ZWIAZEK, KTÓRY PO REDUKCJI PRZEZ OKSYDOREDUKTAZE ZOSTAJE UTLENIONY NA ELEKTRYCZNIE PRZEWODZACEJ POWIE- RZCHNI DO SUBSTANCJI, KTÓRA JEST RÓZNA OD PIERWOTNIE UZYTEJ SUBSTANCJI ULEGAJACEJ REDUKCJI. PL
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy oraz układ elektrod czujnikowych do oznaczania oksydoreduktazy w obecności odpowiedniego substratu enzymu i ulegającej redukcji substancji, która jest w stanie przenieść elektrony od oksydoreduktazy na elektrodę i tak prowadzi do sygnału, który jest miarą oznaczanego enzymu, przy czym ulegająca redukcji substancja redukowana jest enzymatycznie, a utleniana na elektrodzie.
Przedmiotem wynalazku jest ponadto układ elektrod czujnikowych do oznaczania oksydoreduktazy, przy czym co najmniej jedna z elektrycznie przewodzących powierzchni kontaktuje substrat oksydoreduktazy i scharakteryzowaną wyżej ulegającą redukcji substancję.
Wobec kolorymetrycznych metod oznaczania analitu w cieczy, którą ocenia się wizualnie albo fotometrycznie, odpowiednie elektrochemiczne oznaczanie wykazuje tę korzyść, że elektrochemiczna reakcja bezpośrednio dostarcza prąd, który można przeliczyć na stężenie. Natomiast w kolorymetrycznych sposobach występuje obieg bateria —> prąd —> światło —> światło resztkowe (remisja albo transmisja) — prąd — wartość mierzona.
Dla elektrochemicznych sposobów oznaczania należy oznaczany analit utlenić albo za pomocą chemicznych lub enzymatycznych metod przeprowadzić w substancję, którą można utlenić. Bezpośrednie elektrochemiczne utlenienie analitu albo pochodzącej od niego substancji na powierzchni elektrody wymaga wysokich napięć, to znaczy potencjałów. Sposób ten jest bardzo nieselektywny. Wiele innych substancji, które mogą być także obecne w badanej próbie, również zostaje utlenionych. Z tego względu taki sposób praktycznie nie nadaje się do stosowania analitycznego. Zazwyczaj dlatego utlenialny analit albo pochodzącą od analitu utlenialną substancję poddaje się reakcji z odpowiednią oksydoreduktazą i ulegającą redukcji substancją, której zredukowana postać ponownie może zostać utleniona na elektrodzie. Przy tym utlenialny analit
168 285 względnie pochodząca od analitu utlenialna substancja zostaje selektywnie utleniona przez enzym. Zredukowany przez to enzym zostaje utleniony przez obecną ulegającą redukcji substancję. a zredukowana substancja ulegająca redukcji zostaje utleniona na elektrodzie. Ulegająca redukcji substancja służy zatem jako przenośnik elektronów od enzymu na elektrodę. Warunkiem jest zatem, żeby ulegającą redukcji substancję wybrać tak, żeby była ona szybko i właściwie przekształcona przez enzym i przez elektrodę.
P.W. Carr i współpracownicy w Theory and applications of enzyme electrodes in analytical and clinical chemistry, wydawnictwo Wiley, Nowy Jork (1980), strony 197 - 310 opisują reakcję glukozy z tlenem jako ulegającą redukcji substancję przy enzymatycznej katalizie przez oksydazę glukozową i wykrycie utworzonego nadtlenku wodoru na elektrodzie. Ale niedogodnością są tu reakcje uboczne nadtlenku wodoru, który sam jest silnym środkiem utleniającym, oraz reakcje uboczne na powierzchni elektrody z powodu zastosowanego wysokiego potencjału dodatniego. Dlatego sposób ten wymaga specjalnych rozdzieleń wstępnych w celu wykluczenia zakłócających składników w badanych próbach. Niedogodnością jest tu poza tym zapotrzebowanie tlenu. Specjalnie w przypadku wysokich stężeń glukozy dyfuzja tlenu z powietrza do próby i w czasie oznaczania szybkości próby ewentualnie fałszuje wyniki metody.
W europejskim opisie patentowym nr EP-A-O 125 137 opisany jest układ elektrod czujnikowych do oznaczania składnika w mieszaninie substancji, który wykazuje co najmniej dwa elektrycznie przewodzące środki, które występują każdorazowo odizolowane od siebie i które można za pomocą elektrycznie przewodzącej powierzchni doprowadzić do kontaktu elektrycznego z badaną próbą, przy czym jedna z elektrycznie przewodzących powierzchni kontaktuje oksydoreduktazę i tak zwany związek pośredniczący, który przenosi elektrony pomiędzy enzymem i elektrycznie przewodzącą powierzchnią. Jako związek pośredniczący stosuje się substancję metaloorganiczną, która wykazuje co najmniej dwa organiczne pierścienie, z których każdy posiada co najmniej dwa sprzężone podwójnie wiązanie i przy czym atom metalu dzieli swoje elektrony z każdym z tych pierścieni. Jako wyróżniające się związki pośredniczące stosuje się również jak w europejskim opisie patentowym nr EP-A-O 078 636 ferrocen albo pochodne ferrocenu. Należy przy tym zwracać uwagę na to, że takie związki muszą być najpierw utlenione na przykład do jonu ferrocyniowego, zanim będą one gotowe do przejęcia elektronów od oksydoreduktazy. To prowadzi do tak zwanych prądów rozruchowych, które występująjuż bez obecności analitu, co działa oczywiście zakłócająco w sposobie amperometrycznym, w którym występujący prąd jest miarą ilości oznaczanego analitu. Dalej niedogodnościąjest trudna rozpuszczalność takich metaloorganicznych związków, gdyż to prowadzi do wyróżnienia tlenu, na przykład przy użyciu oksydaz, jak oksydazy glukozowej, jako oksydoreduktazy i zatem specjalnie przy niskich stężeniach substratów enzymów do małego prądu i do zależności od tlenu. Trudna rozpuszczalność i/albo użycie małych stężeń w przypadku tych przenośników elektronów stosowanych w zredukowanej postaci są podstawą dla jeszcze akceptowalnych prądów rozruchowych.
Znane ze stanu techniki przenośniki elektronów dla elektrochemicznych sposobów oznaczania charakteryzują się tym, że w obecności oznaczanego analitu zostają zredukowane przez oksydoreduktazę i na elektrodzie zostają ponownie utlenione do związku wyjściowego. Jeżeli stężenie służącej jako przenośnik elektronów substancji ulegającej redukcji jest znacznie niższe niż stężenie oznaczanego analitu, można przeprowadzić tylko kinetyczne metody. Dla oznaczenia punktu końcowego potrzeba, aby służąca jako przenośnik elektronów substancja ulegająca redukcji występowała rozpuszczona w nadmiarze wobec oznaczanego analitu i wówczas oznaczany analit reaguje całkowicie. Przy tym ulegająca redukcji substancja reaguje w ilości proporcjonalnej do oznaczanego analitu. Korzyścią wobec kinetycznego pomiaru są szczególnie rozszerzony zakres liniowości stosunku prąd/stężenie w sposobie amperometrycznym oraz lepsza konkurencyjność wyżej stężonej ulegającej redukcji substancji wobec tlenu przy użyciu oksydaz jako oksydoreduktaz. Niedogodnością jest jednak, w celu całkowitej reakcji, konieczność stosowania ulegającej redukcji substancji, to znaczy środka utleniającego jako przenośnika elektronów o potencjale wyraźnie wyższym od potencjału substratu enzymu i dodatkowo przy elektrochemicznym oznaczaniu praca w obecności nadmiar środka utleniającego, co jeszcze dalej zwiększa potrzebny potencjał. Wysokie potencjały robocze sprzyjająjednak niewłaściwym
168 285 reakcjom elektrodowym, szczególnie wówczas, gdy należy badać próby zawierające dużą liczbę skaładników poza oznaczanym analitem.
Dla elektrochemicznego oznaczania analitu na drodze enzymatycznej reakcji redoks nie ma dotychczas jeszcze zadowalających rozwiązań. Brakuje odpowiednich do uniwersalnego stosowaniajako przenośniki elektronów substancji ulegających redukcji, które wykazują zarówno szybką reakcję z oksydoreduktazami, jak również niehamowaną reakcję na powierzchniach elektrod przy niskim potencjale.
Zdaniem omawianego wynalazku było rozwiązanie tego zagadnienia. Należało zwłaszcza wynaleźć ulegające redukcji substancje, które mogą spełniać rolę przenośników elektronów pomiędzy oksydoreduktazą i elektrodą w elektrochemicznym układzie. Zadanie to rozwiązano zgodnie z wynalazkiem określonym zastrzeżeniami patentowymi.
Przedmiotem wynalazku jest sposób elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy w obecności odpowiedniego substratu enzymu i ulegającej redukcji substancji, która jest w stanie przenieść elektrony od oksydoreduktazy na elektrodę i tak prowadzi do sygnału, który jest miarą oznaczanego enzymu, przy czym ulegająca redukcji substancja zostaje enzymatycznie zredukowana, a na elektrodzie utleniona, który to sposób charakteryzuje się tym, że powstająca przez utlenienie na elektrodzie substancja jest różna od pierwotnie użytej substancji ulegającej redukcji.
Poza tym przedmiotem wynalazku jest układ elektrod czujnikowych do elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy w ciekłej próbie, zawierający co najmniej dwa elektrycznie przewodzące środki, które występują odizolowane od siebie i które każdorazowo za pomocą elektrycznie przewodzącej powierzchni mogą być doprowadzone do elektrycznego kontaktu z badaną próbą, przy czym co najmniej jedna z elektrycznie przewodzących powierzchni kontaktuje substrat oksydoreduktazy i ulegającą redukcji substancję, która jest w stanie przenieść elektrony pomiędzy oksydoreduktazą i elektrycznie przewodzącą powierzchnią, który to układ charakteryzuje się tym, że jako ulegającą redukcji substancję stosuje się związek, który po redukcji przez oksydoreduktazę zostaje utleniony na elektrycznie przewodzącej powierzchni do substancji, która jest różna od pierwotnie użytej substancji ulegającej redukcji.
Okazało się, że niedogodności znanych ze stanu techniki sposobów elektrochemicznego oznaczania analitu w obecności oksydoreduktazy i ulegającej redukcji substancji, które spowodowane są przez wymagany wysoki potencjał, zwłaszcza przy stosowaniu nadmiaru służącej jako przenośnik elektronów ulegającej redukcji substancji wobec oznaczanego analitu, można uniknąć po większej części przez nieodwracalną reakcję. Przez to, że na elektrodzie tworzy się inna utleniona substancja niż użyta pierwotnie, ulegająca redukcji substancja, można elektrochemiczne oznaczanie przeprowadzić przy szczególnie niskim potencjale i przez to bez niebezpieczeństwa reakcji zakłócających. Korzyść niskiego potencjału można również wykorzystać wówczas, gdy służącą jako nośnik elektronów ulegającą redukcji substancję stosuje się w porównaniu do oznaczanego analitu tylko w małej ilości, a mianowicie wówczas, gdy zarówno pierwotnie użytą ulegającą redukcji substancję, jak też substancję powstającą na elektrodzie przez utlenienie redukuje się potrzebną dla elektrochemicznego sposobu oksydoreduktazą. Gdy zarówno pierwotnie użytą ulegającą redukcji substancję, jak też substancję powstającą przez utlenienie na elektrodzie zredukuje się oksydoreduktazą do takiej samej substancji, pierwotnie użyta ulegająca redukcji substancja działa jako postać zapasowa dla drugiej prowadzonej w obiegu pomiędzy elektrodą i enzymem ulegającej redukcji substancji, która jest różna od pierwotnie użytej ulegającej redukcji substancji.
Korzyści sposobu według wynalazku uwarunkowane są tym, że jako ulegającą redukcji substancję wybiera się substancje takie, w przypadku których przez enzymatyczną redukcję powstaje związek, który można utlenić na elektrodzie przy niskim napięciu. Mianowicie przy utlenieniu na elektrodzie nie występuje jeszcze żadne znaczne stężenie tej nowej utlenionej substancji. Dotychczas musiano enzymatycznie zredukowany związek z powrotem utlenić na elektrodzie do pierwotnie użytej ulegającej redukcji substancji, która występowała już w wysokim stężeniu. Do tego był potrzebny zwiększony potencjał dodatni.
W sensie wynalazku odpowiednie do stosowania jako ulegające redukcji substancje są takie związki, które przejmują od enzymu elektrony otrzymywane przy utlenianiu substratu
168 285 odpowiedniego do uzyskania oksydoreduktazy i przy tym tworzy się bogata w elektrony aromatyczna amina. Jako bogatą w elektrony aromatyczną aminę rozumie się przy tym związek, który jest bogatszy w elektrony niż anilina i z powodu bagactwa elektronów na elektrodzie może być utleniony przy niskim potencjale. W rachubę wchodzą na przykład wszystkie pochodne aniliny, które w pierścieniu aromatycznym albo przy atomie azotu aniliny zawierają jeden albo więcej podstawników +1 albo/i +M, takich jak grupy hydroksylowe, alkilowe, alkoksylowe, aryloksylowe, alkilotio, arylotio, aminowe, monoalkiioaminowe i dialkiloaminowe.
Grupami alkilowymi, alkoksylowymi, alkilatio, monoalkiloaminowymi i dialkiloaminowymi są grupy, w których część alkilowa oznacza grupę węglowodorową o 1 - 6 atomach węgla, która ze swej strony jest ewentualnie podstawiona przez grupę hydroksylową, przez ewentualnie jedno- -albo kilkakrotnie podstawioną przez grupę PO3H2, SO3H albo CO2H. Reszty kwasowe PO3H2, SO3H i CO2H mogą występować jako takie albo w postaci soli jako sole amonowe, sole metali alkalicznych albo metali ziem alkalicznych.
Grupy aryloksylowe i arylotio są grupami aromatycznymi o 6 - 10 atomach węgla, przy czym szczególnie wyróżniają się grupy fenoksylowe i fenylotio.
Sole amonowe zawierają jon amonowy NH4+ albo występują jako jedno- lub kilkakrotnie podstawione grupami alkilowymi, arylowymi albo aryloalkilowymi kationy amoniowe. Alki! w grupach alkilowych i aryloalkilowych oznacza grupę węglowodorową o 1 - 6 atomach węgla. Aryl w grupach arylowych i aryloalkilowych jest aromatycznym układem pierścieniowym o 6 - 10 atomach węgla, przy czym wyróżnia się fenyl. Wyróżniającą się grupą aryloalkilową jest grupa benzylowa.
Solami metali alkalicznych są przeważnie sole litu, sodu - albo potasu, a solami metali ziem alkalicznych są przważnie sole magnezu i wapnia.
Jako pochodne aniliny rozumie się także związki, które przy aromatycznym układzie pierścieniowym zawierają niepodstawioną albo podstawioną jedno- lub kilkakrotnie przez podstawniki +1 albo/i +M jak na przykład przez grupę alkilową, grupę aminową, przy czym aromatyczny układ pierścieniowy jest skondensowany z jednym albo kilkoma aromatycznymi albo/i alicyklicznymi pierścieniami. Jako aromatyczne pierścienie wchodzą przy tym w rachubę zarówno układy węglowodorów aromatycznych jak też związki heteroaromatyczne. Przykładami są skondensowane pierścienie benzenowy albo naftalenowy, albo skondensowany pierścień pirydynowy.
Jako alicykliczne pierścienie rozumie się nasycone albo nienasycone związki cykloalifatyczne o 5-7 atomach węgla, przeważnie o 5 albo 6 atomach węgla.
Możliwymi podstawnikami alkilowymi grupy aminowej mogą być grupy węglowodorowe o 1 - 6 atomach węgla, które ze swej strony ewentualnie mogą być podstawione przez grupę hydroksylową, przez ewentualnie jedno- albo kilkakrotnie podstawioną przez grupę alkilową o 1 - 6 atomach węgla grupę aminową, PO3H2, SO3H i CO2H. Reszty kwasowe PO3H2, SO3H i CO2H występują jako takie albo w postaci soli jako sole amonowe, sole metali alkalicznych albo metali ziem alkalicznych, których również dotyczy wyżej podana definicja.
Wyżej podanych przykładów podstawników +I albo/i +M nie należy rozumieć jako pełnego wyliczenia. Fachowiec w poszczególnym przypadku będzie wiedział, czy podana grupa jest podstawnikiem +I albo/i +M jak dalece wszystkie te grupy powinny być możliwymi podstawnikami w bogatych w elektrony aromatycznych aminach, które mogą być stosowane według omawianego wynalazku.
Jako ulegające redukcji substancje, które przy przyjmowaniu elektronów od oksydoreduktazy prowadzą do bogatej w elektrony aromatycznej aminy, która potem na elektrodzie zostaje utleniona przy niskim potencjale, wyróżniają się szczególnie związki z grupy związków o wzorze ogólnym 1, w którym R oznacza bogatą w elektrony aromatyczną grupę, a X oznacza grupę NO albo NHOH, oraz związki o wzorze ogólnym 2, w którym Y oznacza chinoidowy układ, który po redukcji w aromatycznym stanie może być określony jako bogaty w elektrony.
Pod bogatą w - elektrony aromatyczną grupą rozumie się przy tym możliwości podane wyżej dla bogatych w elektrony aromatycznych amin.
Takie, ulegające redukcji substancje stosowane w sposobie według wynalazku przy przyjmowaniu elektronów od oksydoreduktazy zostają zredukowane do aromatycznych amin, a
168 285 przy utlenianiu na elektrodzie nie zostają utlenione do pierwotnych ulegających redukcji substancji. Jak wiadomym jest fachowcowi, przy elektrochemicznym utlenianiu bogatych w elektrony aromatycznych amin elektrony usuwane są z grupy arylowej, tak że otrzymuje się rodniki albo chinoidowe układy. Jednak nie powstają chinoidowe oksymy, hydroksyloaminy i związki nitrozowe.
Elektrochemicznie utleniane związki często ze swej strony mogą znowu przyjmować elektrony od oksydoreduktazy i tak ulegać znowu redukcji do bogatych w elektrony aromatycznych amin. Dlatego możliwe jest również stosowanie ulegających redukcji substancji według wynalazku w małym stężeniu, to znaczy w nadmiarze, w stosunku do oznaczanego analitu. Działają one jako postać zapasowa dla bogatych w elektrony aromatycznych amin tworzonych przy przyjmowaniu elektronów od oksydoreduktazy, które mogą być prowadzone w obiegu jako przenośniki elektronów pomiędzy oksydoreduktazą i elektrodą.
Wyróżniającymi się przykładami dla przenośników elektronów według wynalazku są następujące związki:
N-/2-hydroksyetylo/-N’-p-nitrozofenylopiperazyna,
N,N-bis-/2-hydroksyetylo/-p-nitrozoanilina, o-metoksy- [N,N-bis/2-hydroksyetylo/] -p-nitrozoanilina, p-hydroksynitrozobenzen,
N-metylo-n ’ -/4-nitrozofenylo/-piperazyna, p-chinonodioksym,
N,N-dimetylo-p-nitrozoamlina,
N,N-dietylo-p-nitrozoanilina,
N -/4-nitrozofenylo/-morfol ina,
N-benzylo-N-/5’-karboksypentylo/-p-nitiOzoanilina,
N,N-dimetylo-4-nitrozo-1 -naftyloamina,
N,N,3-trimetylo-4-nitrozoanilina,
N-/2-hydroksyetylo/-5-nitrozoindolina,
N,N-bis-/2-hydroksyetylo/-3-chloIΌ-4-nitrozoanilina,
2,4-dimetoksy nitrozobenzen,
N,N-bis-/2-metoksyetylo/-4-nitrozoanilma,
3-metoksy-4-nitrozofenol,
N-/2-hydroksyetylo/-6-nitrozo-1,2,3,4-tetrahydrochinolina,
N,N-dimetylo-3-chloro-4-nitrozoanilina,
N ,N-bis-/2-hydroksyetylo/-3 -fluoro-4-nitrozoanilina,
N,N-bis-/2-hydroksyetylo/-3-metylotio-4-nitrozoanilina,
N-/2-hydroksyetylo/-N-[2-/2-metoksyetoksy/-etylo]-4-nitrozoanilina,
N-/2-hydroksyetylo/-N-/3-metoksy-2-hydroksy-1 -propylo/-4-nitrozoanilina,
N-/2-hydroksyetylo/-N-[3-/2-hydroksyetoksy/-2-hydroksy-1-propylo]-4-nitrozoanilina,
N-/2-hydroksyetylo/-N-[2-/2-hydroksyetoksy/-etylo]-4-nitrozoanilina.
Szczególnie wyróżniającą się według wynalazku substancją ulegającą redukcji jest N,N-bis-/2-hydroksyetylo/-p-nitrozoanilina. Całkiem szczególnie wyróżnia się N-/2-hydroksyetylo/-N-[2-/2-hydroksyetoksy/-etylo]-4-nitrozoanilina.
Wiele związków o wzorze ogólnym 1 odpowiednich do stosowania według wynalazku jest znanych. Nowymi związkami są pochodne nitrozoaniliny o wzorze ogólnym 3, w którym R1 oznacza atom wodoru albo chlorowca, grupę alkoksylową albo alkilotio, R2 oznacza grupę alkilową, a R3 grupę hydroksyalkilową albo R2 i R3 są jednakowe albo różne i oznaczają każdorazowo grupę dialkiloaminoalkilową, ewentualnie podstawioną w części alkilowej przez grupę hydroksylową grupę hydroksyalkoksyalkilową albo alkoksyalkilową, albo grupę polialkoksyalkilową, która ewentualnie w części alkilowej jest podstawiona przez grupę hydroksylową, albo R2 i r3 tworzą grupę alkilenową poprzerywaną przez siarkę lub azot, przy czym atom azotu jest podstawiony przez grupę alkilową, hydroksyalkilową, hydroksyalkoksyalkilową, alkoksyhydroksyalkilową, dioksanylilcalkilcwą albo przez grupę polialkoksyalkilową, która ze swej strony każdorazowo ewentualnie w części alkilowej jest podstawiona przez grupę hydroksylową, albo gdy R1 znajduje się w pozycji orto do grupy NR2R3, r2 także razem z R oznacza
168 285 grupę alkilenową, przy czym R3 oznacza wtedy grupę hydroksyalkilową, albo gdy grupa alkilenowa zawiera 3 atomy węgla, r3 oznacza także grupę alkilową, albo gdy R1 jest różne od atomu wodoru, R2 i r3, które są jednakowe albo różne, oznaczają każdorazowo grupę hydroksyalkilową, albo sole tych pochodnych.
Przy tym chlorowiec oznacza fluor, chlor, brom albo jod, a zwłaszcza wyróżnia się fluor i chlor.
Grupy alkilowe, alkoksylowe albo alkilotio wykazują 1-6 atomów węgla, a szczególnie korzystnie 1-3 atomów węgla. Podane wyżej określenia dla grupy alkilowej dotyczą również części alkilowej w grupach hydroksyalkilowych, dialkiloaminoalkilowych, hydroksyalkoksyalkilowych, alkoksyalkilowych, polialkoksyalkilowych, alkoksyhydroksyalkilowych i grup dioksanyliloalkilowych. Grupa dioksanyliloalkilowa jest grupą, w której układ pierścieniowy dioksanu przyłączony jest do grupy alkilowej. Przeważnie chodzi o układ pierścieniowy 1,4-dioksanu o wzorze 5. Grupą polialkoksyalkilowąjest grupa -alkilo-/alkoksy/n-alkoksylowa, przy czym n = 1-10, korzystnie n = 1 - 4, a zwłaszcza n = 1 - 3. Grupa alkilenowa jest prostym albo rozgałęzionym, zwłaszcza prostym, nasyconym albo nienasyconym, zwłaszcza nasyconym łańcuchem węglowodorowym zawierającym 2-5, przeważnie 2-4 atomów węgla, z dwoma wolnymi wiązaniami.
W przypadku, gdy r2 i r3 tworzą poprzerywaną przez siarkę albo azot grupę alkilenową, wyróżnia się utworzona przez włączenie atomu azotu o wzorze ogólnym 3 grupa tiomorfolinowa względnie piperazynowa, przy czym szczególnie wyróżnia się grupa piperazynowa.
Gdy R1 i r2 tworzą grupę alkilenową, wyróżnia się utworzona przez włączenie aromatycznego pierścienia o wzorze ogólnym 3 grupa indolinowa albo 1, :2,3,4-tetrahydrochinolinowa.
Jako sole wytwarzanej sposobem według wynalazku pochodnej nitrozoaniliny o wzorze ogólnym 3 wyróżniają się zwłaszcza sole silnych kwasów, szczególnie kwasów mineralnych, jak kwasu solnego, siarkowego, azotowego i fosforowego. Całkiem szczególnie wyróżniają się chlorowodorki, to znaczy sole kwasu solnego.
Z nowych pochodnych nitrozoaniliny wytworzonych sposobem według wynalazku wyróżniają się przede wszystkim następujące związki
a) 2,2’-[/3-fluoro-4-nitrozofenylo/-imino]bis-etanol,
b) 2,2’-[/3-chloro-4-nitrozofenylo/-imino]bis-etanol,
c) 2,2’ -[/3-metoksy-4-nitrozofenylo/-imino]bis-etan2l,
d) 2,2’ -[/3-metylomerkapto-4-nitrozofenylo/-imino]bis-etanol,
e) 2-[/2-hydroksyetoksy/-etylo-/4-nitrozofenylo/-amino]-etanol,
f) 2-[/2-metoksyetoksy/-etylo-/4-nitrozofenylo/-amino]-etanol,
g) 1 - [N -/2-hy droksy ety lo/-/4-nitrozoanilino/] - 3 -metok sy-2-propanok
h) 1-[N-/2-hydroksyetylo/-/4-mtrozoamlino/]-3-/2-hydroksyetoksy/-2-propanol,
i) 1 -metylo-4-/4-nitrozofenylo/-piperazyna,
j) 4-/4-nitrozofenylo/-1 -piperazynoetanol,
k) 5-nitrozo-1-indolinoetanol,
l) 1 -metylo-6-nitrozo-1,2,3,4-tetrahydrochinolina,
m) 6-nitrozo-3,4-dihydro-1/2H/chinolinoetanol oraz ich sole.
Z powyższych związków szczególnie wyróżniają się związki a/, d/, e/, f/, g/, i h/ oraz ich sole, a całkiem szczególnie wyróżnia się związek e/ względnie jego sole, zwłaszcza chlorowodorek.
Związki o wzorze ogólnym, 3 można wytwarzać przez reakcję związku o wzorze ogólnym 4, w którym R1 r2 i r3 mają takie samo znaczenie jak w związkach o wzorze ogólnym 3, z azotynem. Analogiczny sposób znany jest z J.J. D’Amico i współpracownicy, J. Amer. Chem. Soc. 81, 5957 (1959).
Jako azotyn stosuje się przede wszystkim azotyn metalu alkalicznego, przy czym jako metal alkaliczny w rachubę wchodzi lit, sód, potas rubid albo cez. Korzystnie stosuje się azotyn sodu i potasu, a zwłaszcza azotyn sodu. Reakcję prowadzi się korzystnie w środowisku kwaśnym w niskiej temperaturze, korzystnie poniżej 10°C, a zwłaszcza w temperaturze -10 - +5°C. Reakcję związku o wzorze ogólnym 4 z azotynem prowadzi się korzystnie w środowisku wodnym, przy czym pH powinno wynosić korzystnie poniżej 3, a zwłaszcza poniżej 2.
168 285
Korzystnie postępuje się w ten sposób, że związek o wzorze ogólnym 4 albo jego sól, zwłaszcza sól mineralnego kwasu, jak kwasu solnego, siarkowego, azotowego albo fosforowego umieszcza się w wodnym kwaśnym środowisku i chłodzi. Przy utrzymywaniu niskiej temperatury mieszaniny reakcyjnej dodaje się azotyn, korzystnie w rozpuszczonej postaci. Jako rozpuszczalnik azotynu stosuje się korzystnie środowisko wodne. Po dodaniu azotynu aż do zakończenia reakcji utrzymuje się mieszaninę reakcyjną w niskiej temperaturze. Następnie mieszaninę reakcyjną ekstrahuje się organicznym rozpuszczalnikiem i produkt reakcji wyodrębnia z ekstraktu.
Związki odpowiednie do stosowania w sposobie według wynalazku jako przenośniki elektronów mogą być składowane i stosowane w utlenionej postaci. Przez to unika się prądu rozruchowego, a oznaczania punktu końcowego można przeprowadzić z nadmiarem przenośnika elektronów. Stosowane w sposobie według wynalazku jako przenośniki elektronów związki są trwałe podczas składowania i mogą wchodzić w szybką reakcję z oksyUoreUuktazą. bą one konkurencyjne wobec tlenu przede wszystkim przy użyciu oksydaz i można je stosować także w nadmiarze wobec najwyższego stężenia oznaczanego analitu. bzczególnie wymieniona na końcu właściwość jest możliwa dzięki dobrej rozpuszczalności w środowisku wodnym przenośnika elektronów stosowanego w sposobie według wynalazku. bzczególną korzyścią związków odpowiednich do użycia w sposobie według wynalazku jako przenośnik elektronów jest ich właściwość polegająca na tym, że przy elektrochemicznym oznaczaniu analitów w płynach ustrojowych w ogóle nie albo tylko w nieznacznej mierze występuje nieenzymatyczna redukcja przez działające redukująco substancje w płynach ustrojowych. Nośniki elektronów stosowane w sposobie według wynalazku na powierzchni elektrod zostają szybko utlenione, a w zredukowanej postaci nie są wrażliwe na tlen. Przy zastosowaniu tych związków utlenianie na elektrodzie zachodzi przy niskim potencjale.
Odnośnie analitu zwykle chodzi o składnik mieszaniny substancji. Zgodnie z tym sposób według wynalazku wykazuje korzyści przede wszystkim przy oznaczaniu analitu w płynie ustrojowym, jak we krwi, osoczu, surowicy albo moczu, ponieważ przy tym bardzo mocno zależy na specyficznej reakcji tylko jednego składnika biologicznego wieloskładnikowego układu.
Dla sposobu według wynalazku jako oksyUoreduktazy wyróżniają się oksydazy, niezależnie od NAD/P/ dehydrogenazy albo diaforazy. Sposobem według wynalazku można oznaczać na przykład glukozę oksydazą glukozową, mleczan oksydazą mleczanową, glicerbnofosfotan za pomocą oksydazy glicetbnofosforanowej albo cholesterol za pomocą oksydazy cholesterolowej. Jako niezależną od NAD/P/ dehydrogenazę można stosować na przykład układ glukoza-barwnik-oksydoreduktaza do oznaczania glukozy. Diaforazę, którą można określać również jako NADH: batwnik-oksyUkreUuktaoa, można korzystnie stosować do oznaczania NADH.
W przypadkach, w których należy oznaczyć analit, który nie sam służy jako substrat dla oksydoreduktazy, można ten analit drogą jednej lub kilku wstępnych reakcji, zwłaszcza reakcji enzymatycznych, przeprowadzić w związek, który akceptowany jest jako substrat oksyUoteUuktazy. Na przykład triglicetydy można oznaczać tak, że rozszczepia się je esterazą na reszty glicerynowe i kwasowe, glicerynę za pomocą kinaz glicerynowych i ATP przeprowadza się w glicerynofosforan i ten następnie utlenia się za pomocą oksydazy glicerynofksforanowaj, i otrzymywane przy tym elektrony oddane zostają przez przenośnik elektronów stosowany w sposobie według wynalazku na elektrodę, przy czym wytwarza się prąd, który jest proporcjonalny do ilości triglicetbdów w oznaczanej próbie.
Analogicznie można oznaczyć na przykład również całkowity cholesterol w ten sposób, że ester cholesterolowy rozszczepia się esterazą cholesterolową i tak otrzymany cholesterol można oznaczyć za pomocą oksydazy cholesterolowej. Również tu ilość tak utworzonego cholesterolu oraz ilość uwolnionych przy utlenianiu za pomocą oksydazy cholesterolowej elektronów, które przenosi na elektrodę ulegająca redukcji substancji stosowana w sposobie według wynalazku i tak powstaje prąd, jest proporcjonalna do oznaczanej ilości całkowitego cholesterolu.
Do oznaczania NADH odpowiedni jest enzym d^afo^a. Za pomocą ulegających redukcji substancji stosowanych w sposobie według wynalazku można przenosić elektrony również od Uiafotazy na elektrodę. Ze względu na to, że wiele biologicznych substancji może reagować
168 285 enzymatycznie z utworzeniem NADH, można tą drogą wiele analitów przez enzymatyczne sekwencje reakcji przekształcić w NADH i ten potem oznaczyć na elektrodzie poprzez diaforazę i zastosowana w sposobie według wynalazku substancje ulegaiaca redukcii.
- — - — - - c - χ- - - — ez j j t j j
Sposobem według wynalazku można oczywiście oznaczać także oksydoreduktazy, gdy stosuje się odpowiedni związek, który przyjmuje się jako substrat enzymu, i zgodną ze sposobem według wynalazku substancję ulegającą redukcji. Tak można elektrochemicznie oznaczać na przykład oksydazę glukozową, gdy glukozę i zgodny ze sposobem według wynalazku przenośnik elektronów skontaktuje się z oznaczaną próbą w obecności układu elektrod czujnikowych.
Sposób według wynalazku odznacza się przede wszystkim tym, że stosowana do przenoszenia elektronów od oksydoreduktazy na elektrodę ulegająca redukcji substancja w postaci utlenionej jest trwała podczas składowania i poza tym dobrze rozpuszczalna w wodzie, co jest bardzo ważne dla oznaczania analitów w płynach ustrojowych, jak we krwi, osoczu, surowicy i moczu. Odpowiednie do stosowania według wynalazku ulegające redukcji substancje wykazują szybką reakcję z oksydoreduktazami i są szczególnie konkurencyjne wobec tlenu, zwłaszcza przy reakcji z oksydazami. Na podstawie swej rozpuszczalności można je stosować bardzo dobrze dla amperometrycznych sposobów punktu końcowego, gdzie wymagany jest nadmiar wobec najwyższego stężenia oznaczanego analitu. Ze względu na to, że odpowiednie do stosowania według wynalazku ulegające redukcji substancje w płynach ustrojowych są tylko w pomijalnej mierze redukowane nieenzymatycznie przez obecne tam substancje redukujące, zostają szybko utlenione na powierzchni elektrody, a w zredukowanej postaci są nieznacznie wrażliwe na tlen, substancje te nadają się bardzo dobrze do specyficznych, wolnych od zakłóceń elektrochemicznych oznaczeń analitu. Możliwość wolnych od zakłóceń i specyficznych elektrochemicznych oznaczeń analitu uwarunkowana jest poza tym przede wszystkim tym, że odpowiednie do stosowania według wynalazku ulegające redukcji substancje wymagają tylko małego potencjału elektrod.
W sposobie według wynalazku można tu stosować na przykład układy elektrod czujnikowych ze stanu techniki. Do oznaczania analitu w ciekłej próbie odpowiednie są zasadniczo układy elektrod czujnikowych, które jako elektrody zawierają co najmniej dwa elektrycznie przewodzące środki, które występują odizolowane od siebie i które każdorazowo można doprowadzić do elektrycznego kontaktu z badaną próbą za pomocą elektrycznie przewodzącej powierzchni. Przy tym możliwe jest także stosowanie dwu elektrod, a mianowicie elektrody roboczej i elektrody odniesienia. Możliwe jest także urządzenie pomiarowe bez elektrody odniesienia, to znaczy tylko z elektrodą roboczą i przeciwelektrodą. Przy tym należy jedynie na zewnątrz utrzymać stałe napięcie. Ale możliwe jest również zastosowanie trzech elektrod, a mianowicie elektrody odniesienia, roboczej i przeciwelektrody. Odpowiednie układy elektrod czujnikowych znane są ze stanu techniki, na przykład z G. Henze i R. Neeb, Elektrochemische Analytik, wydawnictwo Springer (1986).
Ważne jest, że dla elektrochemicznego oznaczania analitu jak również oksydoreduktazy (co najmniej) jedna elektroda, to znaczy elektrycznie przewodząca powierzchnia kontaktuje oksydoreduktazę i ulegającą redukcji substancję, która jest w stanie przenosić elektrony pomiędzy oksydoreduktazą i elektrycznie przewodzącą powierzchnią. Przy tym możliwa jest taka sytuacja, że wszystkie potrzebne odczynniki znajdują się razem z badaną próbą w roztworze, albo że część odczynników, przeważnie oksydoreduktaza i/albo przenosząca elektrony substancjaulegająca redukcji są unieruchomione najednej elektrodzie, areszta znajduje się w roztworze, albo że wszystkie potrzebne do oznaczania odczynniki są unieruchomione najednej elektrodzie. Zasadniczo dla funkcji układu elektrod czujnikowych nie jest decydujące, czy elektroda robocza kontaktuje oksydoreduktazę i służącą jako przenośnik elektronów ulegającą redukcji substancję jako substancje rozpuszczone, albo czy te substancje nanoszone są na elektrodę jako stała substancja i ewentualnie przy skontaktowaniu z oznaczaną ciekłą próbą rozpuszczają się, albo także po skontaktowaniu z oznaczaną ciekłą próbą pozostają unieruchomione na elektrodzie.
Przy oznaczaniu oksydoreduktazy należy zwrócić uwagę na to, że układ elektrod czujnikowych kontaktuje substrat oksydoreduktazy i stosowaną w sposobie według wynalazku ulegającą redukcji substancję.
168 285
Załączone figury objaśniają bliżej wynalazek, przy czym
Figura 1 przedstawia w części a/ schemat funkcjonalny odpowiednich do stosowania według wynalazku ulegaj ących redukcji substancji w sposobie i układach elektrod czujnikowych według wynalazku, gdy stężenie nośnika elektronów jest większe albo równe stężeniu oznaczanego analitu.
Figura 1 w części b/ przedstawia schemat funkcji substancji przenoszących elektrony w sposobie i układach elektrod czujnikowych stanu techniki.
Figura 2 w części a/ przedstawia schemat funkcji odpowiednich do stosowania w sposobie według wynalazku ulegających redukcji substancji w zgodnym z wynalazkiem sposobie i układach elektrod czujnikowych, gdy stężenie substancji przenoszącej elektrony jest bardzo dużo mniejsze niż stężenie oznaczanego analitu.
Figura 2 w części b/ przedstawia schemat funkcji substancji przenoszących elektrony w sposobie i układach elektrod czujnikowych stanu techniki.
Figura 3 przedstawia układ elektrod czujnikowych dla przeprowadzenia sposobu według wynalazku, w którym potrzebne substancje występują w roztworze.
Figura 4 przedstawia układ elektrod czujnikowych do przeprowadzenia sposobu według wynalazku, który pomyślany jest jako czujnik jednorazowy.
Figura 5 przedstawia wykres z otrzymanymi z cyklowoltammogramu wartościami dla maksimów gęstości prądu anodowego przy różnych stężeniach glukozy z N,N-bis-/2-hydroksyetylo/-p-nitrozoanilinąjako substancją przenoszącą elektrony w zgodnym z wynalazkiem elektrochemicznym teście glikozowym.
Figura 6 przedstawia wykres stosunku między gęstością prądu i stężeniem NADH w zgodnym z wynalazkiem teście NADH.
Figura 7 przedstawia cyklowoltammogram dla N-/2-hydroksyetylo/-N’-p-nitrozofenylopiperazyny i N,N-bis-/2-hydroksyetylo/-p-nitrozoaniliny.
Figura 8 przedstawia wykres zależności gęstości prądu od stężenia glukozy według sposobu zgodnego z wynalazkiem z N-metylo-N’-/4-nitrozofenylo/-piperazyną jako substancją przenoszącą elektrony w obecności i nieobecności tlenu powietrza.
Figura 9 przedstawia wykres zależności gęstości prądu od stężenia glukozy według sposobu stanu techniki z tetratiafulwalenem jako substancją przenoszącą elektrony w obecności i w nieobecności tlenu powietrza.
Figura 10 przedstawia wykres zależności gęstości prądu od stężenia LDH według sposobu zgodnego z wynalazkiem z N,N-bis-/-2-hydroksyetylo/-p-nitrozoaniliną jako substancją przenoszącą elektrony przy różnych czasach po rozpoczęciu reakcji oznaczania przez dehydrogenezę mleczanową.
Figura 11 przedstawia krzywe prąd-czas dla sposobu według wynalazku z jednorazową elektrodą według fig. 4 po 10 sekundach reakcji.
Figura 12 przedstawia wykres zależności prądu od stężenia glukozy według sposobu zgodnego z wynalazkiem przy użyciu jednorazowej elektrody według fig. 4 po 10 minutach reakcji.
Na figurach 1 i 2 przedstawione są różnice pomiędzy sposobem według wynalazku a/ i sposobem stanu techniki b/ przy zastosowaniu nadmiaru substancji przenoszącej elektrony powyżej oznaczany analit (fig. 1) i przy użyciu substancji przenoszącej elektrony w ilości bardzo małej w porównaniu ze stężeniem analitu (fig. 2). Według sposobu stanu techniki z fig. 1 b/ substancja przenosząca elektrony (Eoxi) w obecności oznaczanego analitu albo pochodzącej od analitu substancji (Sred), która jest utleniana enzymatycznie do (Sox), jest przeprowadzana w postać zredukowaną (Ered). Na elektrodzie zredukowany nośnik elektronów (Ered) zostaje przez oddanie elektronów utleniony znowu do pierwotnie użytej ulegającej redukcji substancji (ΕΌΧ i).
Natomiast w sposobie według wynalazku zgodnie z fig. 1a/ służąca jako przenośnik elektronów ulegająca redukcji substancja (El)X i) przy enzymatycznym utlenianiu oznaczanego analitu względnie pochodzącej od analitu substancji (Sred) do (Sl)x) zostaje przeprowadzona w zredukowaną postać (Ered). Przy anodowym utlenianiu na elektrodzie tworzy się wówczas utleniona postać przenośnika elektronów (Eox 2), która jest różna od pierwotnie zastosowanej ulegającej redukcji substancji (Eox 1). Ze względu na całkowitą nieobecność R(,x 2 na początku
168 285 elektrochemicznego utleniania można utleniać Ered przy szczególnie niskim potencjale. Stosowaną w sposobie według wynalazku przenoszącą elektrony ulegającą redukcji substancję (Eox 1) można wybrać tak, że dla anodowego utleniania enzymatycznie utworzonej zredukowanej postaci (Ered) wystarcza względnie niski potencjał. Przez to można uniknąć zakłócających reakcji ubocznych, które powstają, gdy przy przyłożeniu wysokiego potencjału do elektrod zostają utlenione występujące w badanej próbie substancje towarzyszące, co prowadzi do przepływu prądu, a zatem do fałszywie dodatniego wyniku. W przypadku sposobu według stanu techniki zgodnie z fig. 1b/ do ponownego utlenienia enzymatycznie utworzonej zredukowanej postaci przenośnika elektronów (Ered) z powodu nadmiaru Eox 1 wymagany jest wyższy potencjał niż potencjał pierwotnie stosowanej ulegającej redukcji substancji (Eox 1).
Jeżeli służącą jako przenośnik elektronów ulegającą redukcji substancję (E(,xj) stosuje się w niedomiarze w stosunku do oznaczanego analitu względnie pochodzącej od oznaczanego analitu substancji (Sred), wówczas w sposobie według stanu techniki (fig. 2b) ulegającą redukcji substancję można prowadzić w obiegu pomiędzy elektrodą i enzymem, ponieważ zredukowana postać (Ered) zostaje znowu anodowo utleniona na pierwotnie użytą ulegającą redukcji substancję (Eox 1).
Sposobem według wynalazku (fig. 2a), gdy utworzona na elektrodzie utleniona postać przenośnika elektronów (Eox 2) jest redukowana przez zredukowany enzym równie jak pierwotnie użyta ulegająca redukcji substancja (Eox 1), wówczas Eox 1 może służyć na przykład jako trwała postać zapasowa dla układu przenoszenia elektronów Eox 2/Ered·
Dla sposobu według wynalazku można stosować zasadniczo wszystkie układy elektrod czujnikowych, które odpowiednie są również do przeprowadzania sposobów stanu techniki. Tak można stosować układ elektrod czujnikowych według fig. 3, jaki znany jest na przykład z G. Henze i R. Neeb Elektrochemische Analytik, wydawnictwo Springer (1986).
Elektrodę roboczą 1, przeciwelektrodę 2 i elektrodę odniesienia 3 zanurza się w oznaczanej ciekłej próbie 4. Na elektrody można stosować zwykłe materiały. Elektrodę roboczą 1 i przeciwelektrodę 2 mogą stanowić korzystnie metale szlachetne albo wytwarza się je przy współstosowaniu takich metali. Wyróżniającymi się materiałami na elektrodę roboczą 1' i przeciwelektrodę 2 jest na przykład złoto i platyna. Elektrodę odniesienia 3 można wykonać również ze stosowanych do tego układów, korzystnie na przykład z układu srebro/chlorek srebra. Elektroda odniesienia 3 jest w kontakcie z pozostałym układem elektrod (1, 2) w oznaczanej ciekłej próbie 4 korzystnie przez klucz elektrolityczny na przykład roztwór chlorku potasu.
Potrzebna dla sposobu według wynalazku oksydoreduktaza względnie układ oksydoreduktazy (w zależności od tego, czy ma być oznaczany analit czy oksydoreduktaza) i służąca jako przenośnik elektronów ulegająca redukcji substancja mogą występować w oznaczanej próbie 4 w postaci rozpuszczonej albo mogą one w całości albo częściowo znajdować się na elektrodzie roboczej 1. Dla fachowca jest oczywiście zrozumiałe jak należy elektrody elektrycznie łączyć ze sobą i regulować, zależnie od mierzonego sygnału elektrycznego.
Na figurze 4 przedstawiona jest konstrukcja jednorazowej elektrody, jaką stosuje się na przykład do oznaczania glukozy.
Na izolowany nośnik 8, na przykład folię poliwęglanową, można nanieść odpowiednimi metodami potrzebne elektrody i przynależne doprowadzenia. Odpowiednimi metodami są np. sposób sitodruku, sposób wstrzykiwania, naparowywania albo technika cienkowarstwowa. Na fig. 4 odnośnik 5 oznacza elektrodę roboczą, 55 oznacza przynależne elektrycznie przewodzące doprowadzenia, 6 oznacza elektrodę odniesienia z doprowadzeniem 66, a 7 oznacza przeciwelektrodę z odpowiednią szyną przewodzącą 77. Na elektrody i szyny przewodzące można stosować znane elektrycznie przewodzące materiały; na przykład do wytworzenia elektrycznie przewodzących doprowadzeń do elektrod można stosować handlowe pasty grafitowe do druków. Elektrody zawierają przeważnie szlachetne metale, jak srebro, złoto albo platynę. W zgodnym z wynalazkiem układzie elektrod czujnikowych według fig. 4 elektroda robocza zawiera odczynniki potrzebne do przeprowadzenia elektrochemicznego oznaczenia analitu względnie oksydoreduktazy. W celu oznaczenia glukozy na przykład oksydazą glukozową, miesza się stosowaną w sposobie według wynalazku przenoszącą elektrony substancję ulegającą redukcji, substancję
168 285 buforową, która optymalizuje wartość pH badanej próby dla enzymatycznej reakcji, oraz ewentualnie detergent i środek spęczniający, aby z materiałem tworzącym przewodzącą mieszaninę uzyskać konsystencję potrzebną do wytworzenia elektrody i otrzymać mieszaninę w postaci przerabialnej pasty. Jako materiał czyniący mieszaninę przewodzącą dodaje się na przykład proszek grafitowy. Elektrodę odniesienia 6 i przeciwelektrodę 7 można wytwarzać jak i odpowiednie doprowadzenia 66 i 77 na przykład ze znajdujących się w handlu srebrowych past przewodzących, które zawierają sproszkowany chlorek srebra. Układ elektrod czujnikowych według fig. 4 wytwarza się o wymiarach około 10 x 30 mm. Badany roztwór można nanieść na powierzchnie elektrod albo w badanym roztworze zanurza się tak testowy nośnik, że powierzchnie elektrod pokryte są cieczą. W przypadku pomiaru amperometrycznego można do elektrod przyłożyć potencjał i zmierzyć prąd, który jest proporcjonalny do ilości oznaczanego analitu.
Do tego pomiędzy przeciwelektrodą 7 i elektrodą roboczą 5 prąd jest mierzony i regulowany tak, żeby pomiędzy elektrodą odniesienia 6 i elektrodą roboczą 5 utrzymać podane wyżej napięcie. Pomiar napięcia pomiędzy elektrodą roboczą 5 i elektrodą odniesienia 6 następuje bezprądowo, tak, że oporności szyny przewodzącej nie odgrywają żadnej roli. W przypadku mniejszego wymagania odnośnie dokładności potencjałów elektrodowych można zrezygnować również z bezprądowego pomiaru napięcia albo elektrodę odniesienia 6 eksploatować jednocześnie jako przeciwelektrodę 7.
Poniższe przykłady objaśniają bliżej wynalazek.
Przykład I. Próba glukozowa
Stosuje się tu układ elektrod czujnikowych według fig. 3. Elektroda robocza 1 wykonana jest ze złotego drutu o powierzchni 0,1 cm2. Przeciwelektroda 2 wykonana jest z platynowego drutu o powierzchni 0,1 cm2, a elektrodę odniesienia 3 stanowi układ srebro/chlorek srebra firmy Orion Research Inc. (Boston, Massachusetts, Stany Zjedn. Am.),
W naczyniu reakcyjnym znajduje się roztwór złożony z 0,1 mola/l buforu fosforanu potasu i 0,1 mola/l chlorku potasu, pH 7,0;
mmoli/l N,N-bis-/2-hydroksyetylo/-p-nitrozoaniliny i glukozy w stężeniu 0-100 mmoli/l.
Reakcję oznaczania wywołuje się przez dodanie do mieszaniny reakcyjnej oksydazy glikozowej (EC 1.1.3.4) i następne mieszanie. Oksydazy glikozowej dodaje się tyle, żeby stężenie jej w mieszaninie reakcyjnej wynosiło 0,5 mg/ml (125 U/ml). Minutę po dodaniu oksydazy glikozowej za pomocą potencjostatu (Mod. 273 EG G, Princeton Applied Research, Princeton Applied Research, Pronceton, New Jersey, USA) mierzy się cyklowoltammogram przy szybkości badania 100 mV/s. Ocenia się prądy pierwszego maksimum utleniania przy 150 mV. Otrzymane wyniki przedstawione są na fig. 5. Odpowiednie pomiary po upływie 5 minut od dodania oksydazy glikozowej albo przy wykluczeniu tlenu (pod argonem) nie dają żadnej znacznej zmiany.
Jak widać na wykresie według fig. 5, aż do stężenia glikozy wynoszącego około 30 mmoli/l okazuje się liniowa zależność maksimum gęstości prądu anodowego od stężenia glikozy. Przy stężeniu glikozy wyższym niż 30 mmoli/l zastosowana jako substancja przenosząca elektrony N,N-bi:^-^/ź^^lh;^y^ir^o<syt^tylo/-p-nitro2^(^;^nniilinprzereagowuje całkowicie do odpowiedniej fenylenodiaminy. Dlatego stężenia glikozy wyższe niż 30 mmoli/l nie prowadzą do dalszego podwyższenia prądu. Ze względu na to, że dla wytworzenia jednej cząsteczki fenylenodiaminy potrzebne są dwie cząsteczki glikozy, a tylko około dwie trzecie całkowitej glikozy występuje w odmianie β i zatem jest do dyspozycji dla reakcji przemiany za pomocą oksydazy glikozowej, znaleziona całkowita przemiana 10 mmoli/l substancji przenoszącej elektrony przez 30 mmoli/l glikozy odpowiada dokładnie teoretycznej stechiometrii.
W przypadku zastosowania układu glikoza-barwnik-oksydoreduktaza (EC 1.1.99.17) zamiast oksydazy gl ikozowej (EC 1.1.3.4) w 0,1 mola/l bufom tris, 0,1 mola/l chlorku potasu, pH 7 przy dodaniu 1 % albuetjiny surowicy bydlęceij otrzymuje się porównrw/llne wyniki.
Przyldład U. Ozuaczanie NADH
Budowa i układ pomiarowy, jak opisane w przykładzie I.
Naczynie reakcyjne zawiera
0,1 mola/l buforu fosforanu potasu, 0,1 mola/l chlorku potasu, pH 7,0;
mmoli/l N,N-bis-/2-hrdI'of.sr'etylo/-p-ritrozoanilirr i NADH w stężeniach 0-10 mmoli/l.
168 285
Pomiar rozpoczyna się przez dodanie i wymieszanie d^afo^y (NADH: barwnik-oksydoreduktaza) z mikroorganizmów i wymieszanie enzymu z mieszaniną reakcyjną. Enzymu dodaje się tyle, żeby stężenie jego w mieszaninie reakcyjnej wynosiło 0.2 mg/ml (3 U/ml). Pomiar gęstości prądu po czasie reakcji wynoszącym 1 minutę daje przedstawioną na fig. 6 liniową zależność gęstość prądu-stężenie.
Przykład III. Oznaczanie mleczanu
Mleczan można oznaczać za pomocą takiego samego doświadczalnego układu i takiego samego przenośnika elektronów jak w przykładzie I. Jako enzym stosuje się oksydazę mleczanową (EC 1.1.3.2), ajako bufor 0,1 mola/l buforu cytrynianowego, 0,1 mola/l chlorku potasu, pH 5,5.
Przykład IV. Oznaczanie glicerynofosforanu
Jeżeli w przykładzie I enzym oksydazę glukozową zastąpi się oksydazą glicerynofosforanową (EC 1.1.3.21), a bufor zastąpi się przez 0,1 mola/l buforu tris, 0,1 mola/l chlorku potasu, pH 8,0, można analogicznie oznaczyć glicerynofosforan.
Przykład V. Oznaczanie cholesterolu
Jeżeli w przykładzie I oksydazę glukozową zastąpi się przez oksydazę cholesterolową ze btreptomyces (EC 1.1.3.6), akceptor elektronów zastąpi się przez 10 mmoli/l N-metblk-N‘-/4-nilrkzof^nyM-piperazynę, zaś bufor zastąpi się przez 0,1 mola/l buforu fosforanu potasu, 0,1 mol/l chlorku potasu, pH 5,5 z 2% Triton X 100R, można analogicznie do przykładu I oznaczyć cholesterol.
Przykład VI. Stosowane w sposobie według wynalazku przenoszące elektrony substancje ulegające redukcji.
Wymienione w poniższej tablicy I związki poddaje się reakcji w stężeniu wynoszącym 10 mmoli/l w 0,1 mola/l buforu fosforanu potasu, 0,1 mola/l chlorku potasu, pH 7,0, z 50 mmolami/l glukozy i 0,5 mg/ml oksydazy glukozowej (125 U/ml). Stosuje się przy tym układ pomiarowy jak opisany w przykładzie I. Odpowiednie cyklowoltammogramy podają piki potencjałów w mV, wobec normalnej elektrody wodorowej, przenośnika elektronów redukowanego przez oksydazę glukozową i glukozę.
Jako miara szybkości reakcji podany jest w tabeli 1 stosunek prądu utleniającego przy potencjale najwyższego piku utleniania po jednej i 10 minutach.
Tabela 1
| Przenośnik elektronów | Piki potencjałowa | Szybkość reakcji |
| 1 | 2 | 3 |
| N-/2-hbUroksyetblk/-N’-p-nitroaofenblkpiperazyna | 340 | 97 |
| N,N-bis-/2-hbdrkksyetblo/-‘p-nitroakanilina | 210 | 94 |
| k-metkksb-[N,N-bis-/2-hyUrkksbatylk/]-p-nitrozkanilina | 170 | 35 |
| p-nitrkakfenol | 220 | 62 |
| p-chinknkUikksymc | 250 | 35 |
| N,N-Uimatylk-4-nitrozk- 1-naftylkamina | 175 | 25 |
| N,N,3-trimetblk-4-nitrkakanilina | 220 | 56 |
| N-/2-hbUrkksbatblk/-5-nitrozkinUolina | 80 | 86 |
| N,N-bis-/2-hbdrkksyetblo/-3-chlkrk-4-nitrkzoanilina | 315 | 72 |
| 2,4-dimatoksbnitrkaobanaan | 130 | 95 |
| N,N-bis-/2-metoksyetylk/-4-nitrkakanilina | 245 | 68 |
| 3-matkksb-4-nitrkakafnkl | 140 | 30 |
| N72-hbUroksyctyίo/-ó-nitrozo-1,2,3,4-tatrahyUrkchinklina | 95 | 82 |
| N,N-dimetblk-3-chlork-4-nitrozoanilina | 275 | 27 |
| N,N-bis-/2-hbdroksyatblo-3-flukrk-4-nitrkaoanilina | 260 | 74 |
| N,N-bis-/2-hbdrkksyetblk/-3-matblotik-4-nitrkzkanilina | 195 | 21 |
| N-/2-hbUroksyetylo/-N-2-/2-metok.syet,kksy/-etylo-4-nitrozoanilina | 210 | 59 |
| N-ZT-hydr-oksy ety 1 o/-N-/3-m etoksy-2-hy droksy-1 -propyloM-ni- | ||
| trkakanilina | 225 | 65 |
| N-/2-hbUroksy ety lo/-N-/3-/2-hy droksy etoksy^-hydrok sy-1 -pro- | ||
| Pblk/-4-nitrkakanilina | 210 | 54 |
168 285 a: Pierwszy pik potencjału zredukowanego oksydazą glikozową i glukozą przenośnika elektronów w mV wobec Ag/AgCl.
b: Prąd pierwszego maksimum w cyklowoltammogramie przy czasie reakcji 1 minuta: prąd przy 10 minutach w % c: stężenie 5x10’4 mola/l.
Na figurze przedstawione są cyklowoltammogramy dla N-/2-hydroksyetylo/-N’-p-nitrozofenylopiperazyny i N,N-bis-/2-hydroksyetylo/-p-nitrozoaniliny. Cyklowoltammogramy mierzono za pomocą 10 mmoli/l glikozy, aby uniknąć wpływów przez reakcje resztkowej glikozy podczas ustalania cyklowoltammogramu.
Przykład VII. Porównanie nośnika elektronów stosowanego w sposobie według wynalazku z nośnikiem elektronów według stanu techniki
a) W układzie doświadczalnym jaki opisany jest w przykładzie I stosuje się N-metylo-N74-nitrozofenylo/-piperazynę w stężeniu 10^ mola/l w buforze fosforanowym o pH 7,0. Pomiar cyklowoltammogramu przy stężeniu glikozy 0-3 mmoli/l daje zależność gęstości prądu od stężenia glikozy, jak przedstawione jest na fig. 8. Przy małych stężeniach stwierdza się wpływ tlenu powietrza, który można uniknąć przez pomiar pod argonem. Taki sam wynik jak przy stosowaniu argonu jako gazu ochronnego uzyskuje się przez zastosowanie przenośnika elektronów w wyższym stężeniu (10’2 mola/l). Wpływu tlenu na pomiar można również uniknąć przez użycie dehydrogenazy glukozowej zamiast oksydazy glikozowej.
b) Jeżeli zamiast N-metylo-N’-/4-nitrozofenylo/-piperazyny jako stosowanego w sposobie według wynalazku przenośnika elektronów użyje się tetratiafulwalen jako przenośnik elektronów stanu techniki, zależności gęstości prądu od stężenia glukozy przedstawia się, jak to jest pokazane na fig. 9. Tetratiafulwalen wykazuje znacznie większe zakłócenia tlenem niż w przypadku przenośnika elektronów stosowanego w sposobie według wynalazku. Poza tym mierzy się znacznie mniejsze gęstości prądu.
Tetratiafulwalen jest rzeczywiście trudno rozpuszczalny. Aby uzyskać stężenie jego wynoszące 10 4 mola/l w buforze fosforanowym o pH 7,0, należy dodać 2,5% Tween 20Rjako detergentu.
Ustawienie znacznie większych stężeń tetratiafulwenu w celu zmniejszenia zakłóceń tlenem, jak to jest możliwe w przypadku przenośnika elektronów stosowanego w sposobie według wynalazku, nie wchodzi tu w rachubę z powodu trudnej rozpuszczalności.
Przykład VIII. Oznaczanie enzymu
a) Próba dehydrogenezy mleczanowej
Analogicznie do układu testowego według przykładu I stosuje się następujące roztwory:
0,1 mola/l buforu fosforanu sodu, 0,1 mola/l chlorku potasu, pH 9,0 mmoli/l N,N-bis72-hydroksyetylo/-p-nitrozoanilmy
0,1 mola/l D,L-mleczanu (sól sodowa)
U/nil diaforaay z rmkroorganizmdw mmoli/l NAD+.
Podczas silnego mieszania (mieszadło magnetyczne, 1000 obr./minutę) przy stałym potencjale wynoszącym 75 mV mierzy się prąd wobec srebro/chlorek srebra. Doświadczenie rozpoczyna się przez dodanie dehydrogenazy mleczanowej (EC 1.1.1.27). Dodaje się różne ilości dehydrogenazy mleczanowej i wykonuje pomiar każdorazowo po 100,20(0 300,400,500 i 600 sekundach. Otrzymane krzywe prąd/czas przedstawione są na fig. 10. Podane na rzędnej aktywności dehydrogenazy mleczanowej ustalano według zwykłego testu redukcji pirogronianu.
b) Próba dehydrogenazy glukozowej
Analogicznie jak opisano pod a), w 0,1 mola/l buforu fosforanu potasu, 0,1 mola/l chlorku potasu, pH 7,0 można przeprowadzić próbę na zależną od NAD dehydrogenazę glukozową z 10 mmolami/l NAD+, 10 mmolami/l przenośnika elektronów stosowanego w sposobie według wynalazku, 1 U/ml diaforazy i 0,1 mola/l glukozy.
Odpowiednio można oznaczać oksydazy, diaforazy albo niezależne od NAD dehydrogenazy.
Przykład IX. Układ jednorazowej elektrody do oznaczania glikozy
1.68285
Układ elektrod czujnikowych według fig. 4 wytwarza się tak, że na folię poliwęglanową 8 nanosi się za pomocą sitodruku przy użyciu odpowiednich past drukarskich elektrodę roboczą 5. elektrodę odniesienia 6. przeciwelektrodę 7 i szyny przewodzące 55. 66. 77. Szyny przewo' *Z Z Ł » «I >. *. » Z J X dzące wykonane są ze znajdującej się w handlu drukarskiej pasty grafitowej (Acheson 421 SS, Deutsche Acheson Colloids, Uh RFN). Elektroda odniesienia 6 i przeciwelektroda 7 wykonane są ze znajdującej się w handlu srebrowej pasty przewodzącej, która zawiera 20% wagowych sproszkowanego chlorku srebra (Acheson SS 24566, Deutsche Acheson Colloids, Ulm, RFN).
Dla elektrody roboczej 5 w spęcznionych 2% wagowych hydroksyetylocelulozy (Natrosol 250 G, Hercules BV, Rijswijk, Niderlandy) w 0,05 mola/l buforu fosforanu sodu (pH 7,0) homogenizuje się 3 mmole/l N,N-bis-hydroksyetylo-p-nitrozoaniliny, 500 KU oksydazy glikozowej (oksydaza glikozowa, stopień czystości Π, Boehringer Mannheim GmbH, Mannheim, RFN) na 100 g mieszaniny, 30% wagowych proszku grafitowego (UF 296/97 Graphitwerke Kropfmuhl, RFN) i 4% wagowe glikolu etylenowego.
Wielkości powierzchni elektrod są następujące: elektroda rolbocza 5: 4x6 mmo = 24 mm? elektroda odniesienia 6: 1x1,5 mm2 =1,5 mm2, a przeciwelektroda 7: 1x1,5 mm2 =1,5 mm2
Wytworzony za pomocą sitodruku układ elektrod czujnikowych zanurza się w badanym roztworze, zawierającym 0,05 mola/l buforu fosforanu sodu (pH 7,0), 0,1 mola/l chlorku sodu i 0-45 mmoli/l glukozy, tak żeby powierzchnie elektrod były przykryte przez badaną ciecz. Przy potencjalne 200 mV wobec zintegrowanej elektrody odniesienia srebro/chlorek srebra 6 sporządza się krzywe prąd/czas, które przedstawione są na fig. 11. Naniesienie wartości prądu po 10-sekundowym czasie pomiaru daje pokazaną na fig. 12 krzywą wzorcowania, która podaje zależność przepływu prądu od stężenia glukozy.
168 285
X t ι->
Λ - K
WZÓR 1
HO-N=Y
WZÓR 2
0= N R1
O \=J
R
WZÓR 3
WZÓR 4
0.
- Alkil
WZÓR 5
168 285
Fig.1
a) Eox1 ^-Sred Enzym ox red
Elektroda
b)
ΕΟχ2 ^οχΐ r
Enzym
Sred ωχ :red .0
Elektroda
Εοχΐ
Fig. 2
168 285
Fig.4
168 285
Fig.5
168 285
Fig. 7 akceptory elektronów (10 mM)z glukozą (10 mM) i GOD po 10 min.
| 120 | |
| no | |
| 100 . | |
| 90 . | |
| 80 . | |
| 70 . | |
| 60 . | |
| < | 50 - |
| *0 | |
| 30 - | |
| TJ | 20 - |
| 2Γ | 10 |
| CL | 0· |
| -10 · | |
| -20 · | |
| '30 - | |
| -40 · | |
| *50 | |
| -60 |
| r/h / / X ) 1//N-(hydroksyetyl) / N-p-nitrozotenylo- piperazyna | |
| / N,N -Bis42-hydro-ksyetylo)-p/ nitrozoanilina V .-.— ----- |
-200 potencjał w nrM^wobec Ag^AgCl (CM) eoo
Fig. 8
168 285
Fig. 10 próba LDH
1618285
Fig. 11
czas (sek)
Fig. 1
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 1,50 zł
Claims (3)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy w obecności odpowiedniego substratu enzymu i ulegającej redukcji substancji, która jest w stanie przenieść elektrony oksydoreduktazy na elektrodę i tak prowadzi do sygnału, który jest miarą dla oznaczanego enzymu, przy czym ulegająca redukcji substancja jest redukowana enzymatycznie, a utleniana jest na elektrodzie, znamienny tym, że powstająca na elektrodzie przez utlenienie substancja jest różna od pierwotnie użytej substancji ulegającej redukcji.
- 2. Sposób według zastrz. 1 i 2, znamienny tym, że jako ulegającą redukcji substancję stosuje się taki związek, który przyjmuje otrzymywane podczas przebiegu reakcji oznaczania elektrody od oksydoreduktazy z utworzeniem bogatej w elektrony aromatycznej aminy.
- 3. Układ elektrod czujnikowych do elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy w ciekłej próbie, zawierający co najmniej dwa elektrycznie przewodzące środki, które występują odizolowane od siebie i które każdorazowo za pomocą elektrycznie przewodzącej powierzchni są ewentualnie doprowadzane do elektrycznego kontaktu z badaną próbą, przy czym co najmniej jedna z elektrycznie przewodzących powierzchni kontaktuje substrat oksydoreduktazy i ulegającą redukcji substancję, która jest w stanie przenieść elektrony pomiędzy oksydoreduktazą i elektrycznie przewodzącą powierzchnią, znamienny tym, że jako ulegającą redukcji substancję stosuje się związek, który po redukcji przez oksydoreduktazę zostaje utleniony na elektrycznie przewodzącej powierzchni do substancji, która jest różna od pierwotnie użytej substancji ulegającej redukcji.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE4003194A DE4003194A1 (de) | 1990-02-03 | 1990-02-03 | Verfahren und sensorelektrodensystem zur elektrochemischen bestimmung eines analyts oder einer oxidoreduktase sowie verwendung hierfuer geeigneter verbindungen |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL168285B1 true PL168285B1 (pl) | 1996-01-31 |
Family
ID=6399348
Family Applications (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL91288920A PL168023B1 (pl) | 1990-02-03 | 1991-02-01 | Sposób elektrochemicznego oznaczania analitu i uklad elektrod czujnikowych do elektrochemicznego oznaczania analitu PL |
| PL91307225A PL168285B1 (pl) | 1990-02-03 | 1991-02-01 | Sposób elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy oraz uklad elektrod czujnikowych do oznaczania oksydoreduktazy PL |
Family Applications Before (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL91288920A PL168023B1 (pl) | 1990-02-03 | 1991-02-01 | Sposób elektrochemicznego oznaczania analitu i uklad elektrod czujnikowych do elektrochemicznego oznaczania analitu PL |
Country Status (23)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5122244A (pl) |
| EP (1) | EP0441222B1 (pl) |
| JP (1) | JP2708281B2 (pl) |
| KR (1) | KR940008083B1 (pl) |
| CN (1) | CN1026248C (pl) |
| AT (1) | ATE146524T1 (pl) |
| AU (2) | AU632659B2 (pl) |
| BG (1) | BG60694B1 (pl) |
| CA (1) | CA2035630A1 (pl) |
| CS (1) | CS26191A2 (pl) |
| DE (2) | DE4003194A1 (pl) |
| ES (1) | ES2097767T3 (pl) |
| FI (1) | FI910498A7 (pl) |
| HU (1) | HUT59756A (pl) |
| IE (1) | IE910343A1 (pl) |
| IL (1) | IL97121A (pl) |
| MX (1) | MX24356A (pl) |
| NO (1) | NO910394L (pl) |
| NZ (1) | NZ236931A (pl) |
| PL (2) | PL168023B1 (pl) |
| PT (1) | PT96636A (pl) |
| YU (1) | YU17191A (pl) |
| ZA (1) | ZA91757B (pl) |
Families Citing this family (166)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5593852A (en) * | 1993-12-02 | 1997-01-14 | Heller; Adam | Subcutaneous glucose electrode |
| US5236570A (en) * | 1992-03-10 | 1993-08-17 | University Of Michigan | Heparin-selective polymeric membrane electrode |
| DE4311464A1 (de) * | 1993-04-08 | 1994-10-13 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur kolorimetrischen Bestimmung eines Analyten mit einer PQQ-abhängigen Dehydrogenase |
| DE4311460A1 (de) * | 1993-04-08 | 1994-10-13 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur kolorimetrischen Bestimmung eines Analyten mittels Benzylalkoholdehydrogenase und einem chromogenen Redoxindikator |
| EP0663446B1 (en) * | 1993-12-29 | 2000-03-22 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | Electrochemical assay method and novel p-phenylenediamine compound |
| AUPM506894A0 (en) * | 1994-04-14 | 1994-05-05 | Memtec Limited | Novel electrochemical cells |
| AUPN239395A0 (en) * | 1995-04-12 | 1995-05-11 | Memtec Limited | Method of defining an electrode area |
| DE19521019A1 (de) * | 1995-06-13 | 1996-12-19 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und Mittel zur gleichzeitigen kolorimetrischen und elektrochemischen Messung eines Analyten |
| US6413410B1 (en) | 1996-06-19 | 2002-07-02 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
| AUPN363995A0 (en) | 1995-06-19 | 1995-07-13 | Memtec Limited | Electrochemical cell |
| DE19534925C2 (de) * | 1995-09-20 | 2001-05-17 | Kurt Schwabe Inst Fuer Mes Und | Bezugselektrode für elektrochemische Messungen und Verfahren zu ihrer Herstellung |
| US6638415B1 (en) * | 1995-11-16 | 2003-10-28 | Lifescan, Inc. | Antioxidant sensor |
| US6521110B1 (en) | 1995-11-16 | 2003-02-18 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
| US6863801B2 (en) * | 1995-11-16 | 2005-03-08 | Lifescan, Inc. | Electrochemical cell |
| AUPN661995A0 (en) * | 1995-11-16 | 1995-12-07 | Memtec America Corporation | Electrochemical cell 2 |
| US5653862A (en) * | 1996-04-15 | 1997-08-05 | Dade Chemistry Systems Inc. | Biochemical sensor device and method |
| US6632349B1 (en) | 1996-11-15 | 2003-10-14 | Lifescan, Inc. | Hemoglobin sensor |
| AUPO855897A0 (en) * | 1997-08-13 | 1997-09-04 | Usf Filtration And Separations Group Inc. | Automatic analysing apparatus II |
| US6036924A (en) | 1997-12-04 | 2000-03-14 | Hewlett-Packard Company | Cassette of lancet cartridges for sampling blood |
| US7390667B2 (en) | 1997-12-22 | 2008-06-24 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for analyte measurement using AC phase angle measurements |
| US7494816B2 (en) | 1997-12-22 | 2009-02-24 | Roche Diagnostic Operations, Inc. | System and method for determining a temperature during analyte measurement |
| US8071384B2 (en) | 1997-12-22 | 2011-12-06 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Control and calibration solutions and methods for their use |
| US7407811B2 (en) | 1997-12-22 | 2008-08-05 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for analyte measurement using AC excitation |
| US6134461A (en) | 1998-03-04 | 2000-10-17 | E. Heller & Company | Electrochemical analyte |
| US6475360B1 (en) | 1998-03-12 | 2002-11-05 | Lifescan, Inc. | Heated electrochemical cell |
| US6878251B2 (en) * | 1998-03-12 | 2005-04-12 | Lifescan, Inc. | Heated electrochemical cell |
| US6652734B1 (en) * | 1999-03-16 | 2003-11-25 | Lifescan, Inc. | Sensor with improved shelf life |
| US6391005B1 (en) | 1998-03-30 | 2002-05-21 | Agilent Technologies, Inc. | Apparatus and method for penetration with shaft having a sensor for sensing penetration depth |
| EP2042610A1 (fr) * | 1999-02-23 | 2009-04-01 | Asulab S.A. | Système électrochimique pour la détermination d'un temps de coagulation du sang |
| US20050103624A1 (en) | 1999-10-04 | 2005-05-19 | Bhullar Raghbir S. | Biosensor and method of making |
| US6444115B1 (en) | 2000-07-14 | 2002-09-03 | Lifescan, Inc. | Electrochemical method for measuring chemical reaction rates |
| RU2278612C2 (ru) * | 2000-07-14 | 2006-06-27 | Лайфскен, Инк. | Иммуносенсор |
| US8641644B2 (en) | 2000-11-21 | 2014-02-04 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Blood testing apparatus having a rotatable cartridge with multiple lancing elements and testing means |
| US6572745B2 (en) | 2001-03-23 | 2003-06-03 | Virotek, L.L.C. | Electrochemical sensor and method thereof |
| ATE494837T1 (de) | 2001-06-12 | 2011-01-15 | Pelikan Technologies Inc | Integriertes system zur blutprobenanalyse mit mehrfach verwendbarem probennahmemodul |
| US7344507B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-03-18 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for lancet actuation |
| JP4209767B2 (ja) | 2001-06-12 | 2009-01-14 | ペリカン テクノロジーズ インコーポレイテッド | 皮膚の性状の一時的変化に対する適応手段を備えた自動最適化形切開器具 |
| WO2002100254A2 (en) | 2001-06-12 | 2002-12-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for lancet launching device integrated onto a blood-sampling cartridge |
| US7041068B2 (en) | 2001-06-12 | 2006-05-09 | Pelikan Technologies, Inc. | Sampling module device and method |
| US9795747B2 (en) | 2010-06-02 | 2017-10-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Methods and apparatus for lancet actuation |
| EP1404232B1 (en) | 2001-06-12 | 2009-12-02 | Pelikan Technologies Inc. | Blood sampling apparatus and method |
| US8337419B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-12-25 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| WO2002100461A2 (en) | 2001-06-12 | 2002-12-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for improving success rate of blood yield from a fingerstick |
| JP4149911B2 (ja) | 2001-06-12 | 2008-09-17 | ペリカン テクノロジーズ インコーポレイテッド | 電気式ランセットアクチュエータ |
| US7981056B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-07-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Methods and apparatus for lancet actuation |
| US9226699B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-01-05 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Body fluid sampling module with a continuous compression tissue interface surface |
| US20030036202A1 (en) * | 2001-08-01 | 2003-02-20 | Maria Teodorcyzk | Methods and devices for use in analyte concentration determination assays |
| US10539561B1 (en) * | 2001-08-30 | 2020-01-21 | Customarray, Inc. | Enzyme-amplified redox microarray detection process |
| CN1702456A (zh) | 2001-10-10 | 2005-11-30 | 生命扫描有限公司 | 电化学电池 |
| US7344894B2 (en) | 2001-10-16 | 2008-03-18 | Agilent Technologies, Inc. | Thermal regulation of fluidic samples within a diagnostic cartridge |
| US20050186652A1 (en) * | 2002-02-22 | 2005-08-25 | Wong Luet L. | Electrochemical detection |
| GB0204232D0 (en) * | 2002-02-22 | 2002-04-10 | Isis Innovation | Assay |
| US20030180814A1 (en) * | 2002-03-21 | 2003-09-25 | Alastair Hodges | Direct immunosensor assay |
| US20060134713A1 (en) | 2002-03-21 | 2006-06-22 | Lifescan, Inc. | Biosensor apparatus and methods of use |
| US7258693B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-08-21 | Pelikan Technologies, Inc. | Device and method for variable speed lancet |
| US7374544B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-05-20 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7563232B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-07-21 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7976476B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-07-12 | Pelikan Technologies, Inc. | Device and method for variable speed lancet |
| US7547287B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-06-16 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7410468B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-08-12 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US9795334B2 (en) | 2002-04-19 | 2017-10-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7331931B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-02-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8267870B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-09-18 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for body fluid sampling with hybrid actuation |
| US8702624B2 (en) | 2006-09-29 | 2014-04-22 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Analyte measurement device with a single shot actuator |
| US7291117B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-11-06 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8360992B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-01-29 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7909778B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-03-22 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7524293B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-04-28 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7582099B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-09-01 | Pelikan Technologies, Inc | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7141058B2 (en) | 2002-04-19 | 2006-11-28 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a body fluid sampling device using illumination |
| US7491178B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-02-17 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7892183B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-02-22 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing |
| US7244265B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-07-17 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7901362B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-03-08 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US9314194B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-04-19 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| US7648468B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-01-19 | Pelikon Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7297122B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-11-20 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8372016B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-02-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing |
| US7674232B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-03-09 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7232451B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-06-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8784335B2 (en) | 2002-04-19 | 2014-07-22 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Body fluid sampling device with a capacitive sensor |
| US7229458B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-06-12 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8579831B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-11-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7371247B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-05-13 | Pelikan Technologies, Inc | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8221334B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-07-17 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7717863B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-05-18 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7708701B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-05-04 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a multi-use body fluid sampling device |
| US7485128B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-02-03 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| CN100392385C (zh) * | 2002-12-03 | 2008-06-04 | 博奥生物有限公司 | 亲和反应的化学放大电化学检测方法及其试剂盒 |
| US8574895B2 (en) | 2002-12-30 | 2013-11-05 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus using optical techniques to measure analyte levels |
| DE10303265A1 (de) | 2003-01-28 | 2004-07-29 | Roche Diagnostics Gmbh | Fluorimetrische Bestimmung von Analyten durch ein intramolekulares Quencher-Fluorophor-Konjugat |
| DE10304448A1 (de) | 2003-02-04 | 2004-08-12 | Roche Diagnostics Gmbh | Fluorimetrische Bestimmung von Analyten durch Amin-N-Oxide als Redoxindikatoren |
| DE602004028463D1 (de) | 2003-05-30 | 2010-09-16 | Pelikan Technologies Inc | Verfahren und vorrichtung zur injektion von flüssigkeit |
| ES2490740T3 (es) | 2003-06-06 | 2014-09-04 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Aparato para toma de muestras de fluido sanguíneo y detección de analitos |
| WO2006001797A1 (en) | 2004-06-14 | 2006-01-05 | Pelikan Technologies, Inc. | Low pain penetrating |
| WO2004112602A1 (en) | 2003-06-13 | 2004-12-29 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a point of care device |
| US8206565B2 (en) | 2003-06-20 | 2012-06-26 | Roche Diagnostics Operation, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
| US7604721B2 (en) | 2003-06-20 | 2009-10-20 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
| US7488601B2 (en) | 2003-06-20 | 2009-02-10 | Roche Diagnostic Operations, Inc. | System and method for determining an abused sensor during analyte measurement |
| US8679853B2 (en) | 2003-06-20 | 2014-03-25 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Biosensor with laser-sealed capillary space and method of making |
| US7452457B2 (en) | 2003-06-20 | 2008-11-18 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for analyte measurement using dose sufficiency electrodes |
| US8071030B2 (en) | 2003-06-20 | 2011-12-06 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Test strip with flared sample receiving chamber |
| US7718439B2 (en) | 2003-06-20 | 2010-05-18 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
| US7597793B2 (en) | 2003-06-20 | 2009-10-06 | Roche Operations Ltd. | System and method for analyte measurement employing maximum dosing time delay |
| US8058077B2 (en) | 2003-06-20 | 2011-11-15 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Method for coding information on a biosensor test strip |
| US7645373B2 (en) | 2003-06-20 | 2010-01-12 | Roche Diagnostic Operations, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
| ES2675787T3 (es) | 2003-06-20 | 2018-07-12 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Método y reactivo para producir tiras reactivas estrechas y homogéneas |
| US7645421B2 (en) | 2003-06-20 | 2010-01-12 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for coding information on a biosensor test strip |
| US8148164B2 (en) | 2003-06-20 | 2012-04-03 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for determining the concentration of an analyte in a sample fluid |
| GB0316075D0 (en) * | 2003-07-09 | 2003-08-13 | Molecular Sensing Plc | Protease detection assay |
| US8282576B2 (en) | 2003-09-29 | 2012-10-09 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for an improved sample capture device |
| US20050067277A1 (en) * | 2003-09-30 | 2005-03-31 | Pierce Robin D. | Low volume electrochemical biosensor |
| DE10346863A1 (de) * | 2003-10-09 | 2005-05-04 | Roche Diagnostics Gmbh | On-Board-Kontrolle für Analyseelemente |
| US9351680B2 (en) | 2003-10-14 | 2016-05-31 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for a variable user interface |
| US20050121826A1 (en) * | 2003-12-03 | 2005-06-09 | Kiamars Hajizadeh | Multi-sensor device for motorized meter and methods thereof |
| US8668656B2 (en) | 2003-12-31 | 2014-03-11 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for improving fluidic flow and sample capture |
| US7822454B1 (en) | 2005-01-03 | 2010-10-26 | Pelikan Technologies, Inc. | Fluid sampling device with improved analyte detecting member configuration |
| AU2005212396A1 (en) | 2004-02-06 | 2005-08-25 | Bayer Healthcare Llc | Oxidizable species as an internal reference for biosensors and method of use |
| GB2426826B (en) * | 2004-02-23 | 2008-06-25 | Joel S Douglas | Strip electrode with conductive nano tube printing |
| US8828203B2 (en) | 2004-05-20 | 2014-09-09 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Printable hydrogels for biosensors |
| US9775553B2 (en) | 2004-06-03 | 2017-10-03 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for a fluid sampling device |
| EP1765194A4 (en) | 2004-06-03 | 2010-09-29 | Pelikan Technologies Inc | METHOD AND DEVICE FOR A LIQUID DETECTION DEVICE |
| US7556723B2 (en) | 2004-06-18 | 2009-07-07 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Electrode design for biosensor |
| US7569126B2 (en) | 2004-06-18 | 2009-08-04 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | System and method for quality assurance of a biosensor test strip |
| US8652831B2 (en) | 2004-12-30 | 2014-02-18 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for analyte measurement test time |
| EP1853598B1 (en) | 2005-03-01 | 2012-11-21 | Life Technologies Corporation | Chemical probe compounds that become fluorescent upon reduction, and methods for their use |
| UY29681A1 (es) | 2005-07-20 | 2007-02-28 | Bayer Healthcare Llc | Amperometria regulada |
| WO2007040913A1 (en) | 2005-09-30 | 2007-04-12 | Bayer Healthcare Llc | Gated voltammetry |
| US8529751B2 (en) | 2006-03-31 | 2013-09-10 | Lifescan, Inc. | Systems and methods for discriminating control solution from a physiological sample |
| BRPI0717620A2 (pt) | 2006-10-24 | 2013-10-22 | Bayer Healthcare Llc | Amperometria de decaimento transitório |
| CA2694045C (en) * | 2007-07-26 | 2016-06-21 | Agamatrix, Inc. | Electrochemical analyte detection apparatus and method |
| US8778168B2 (en) | 2007-09-28 | 2014-07-15 | Lifescan, Inc. | Systems and methods of discriminating control solution from a physiological sample |
| WO2009076302A1 (en) | 2007-12-10 | 2009-06-18 | Bayer Healthcare Llc | Control markers for auto-detection of control solution and methods of use |
| US8513371B2 (en) * | 2007-12-31 | 2013-08-20 | Bridgestone Corporation | Amino alkoxy-modified silsesquioxanes and method of preparation |
| US8603768B2 (en) | 2008-01-17 | 2013-12-10 | Lifescan, Inc. | System and method for measuring an analyte in a sample |
| US8008037B2 (en) * | 2008-03-27 | 2011-08-30 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Matrix composition with alkylphenazine quaternary salt and a nitrosoaniline |
| US9386944B2 (en) | 2008-04-11 | 2016-07-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for analyte detecting device |
| US8551320B2 (en) | 2008-06-09 | 2013-10-08 | Lifescan, Inc. | System and method for measuring an analyte in a sample |
| US9375169B2 (en) | 2009-01-30 | 2016-06-28 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Cam drive for managing disposable penetrating member actions with a single motor and motor and control system |
| DE102009023035A1 (de) * | 2009-05-28 | 2010-12-02 | Siemens Aktiengesellschaft | Diagnosegerät |
| DE102009014902A1 (de) * | 2009-03-25 | 2010-10-07 | Siemens Aktiengesellschaft | Helicobacter pylori-Sensor |
| EP2281900A1 (en) * | 2009-08-03 | 2011-02-09 | Roche Diagnostics GmbH | Fructosyl peptidyl oxidase and sensor for assaying a glycated protein |
| US8965476B2 (en) | 2010-04-16 | 2015-02-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| WO2012010308A1 (en) | 2010-07-23 | 2012-01-26 | Roche Diagnostics Gmbh | Zwitterion buffer containing compositions and uses in electroanalytical devices and methods |
| EP2656058A1 (en) | 2010-12-22 | 2013-10-30 | Roche Diagnostics GmbH | Systems and methods to compensate for sources of error during electrochemical testing |
| US8888973B2 (en) | 2011-07-29 | 2014-11-18 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Encoded biosensors and methods of manufacture and use thereof |
| KR101609083B1 (ko) * | 2011-09-28 | 2016-04-04 | 에프. 호프만-라 로슈 아게 | 아조 매개체 |
| CA2891285C (en) | 2013-01-28 | 2021-05-04 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Novel glucose oxidases derived from aspergillus niger |
| WO2014140164A1 (en) | 2013-03-15 | 2014-09-18 | Roche Diagnostics Gmbh | Methods of using information from recovery pulses in electrochemical analyte measurements as well as devices, apparatuses and systems incorporating the same |
| CN105247357B (zh) | 2013-03-15 | 2017-12-12 | 豪夫迈·罗氏有限公司 | 在电化学测量期间检测高抗氧化剂水平和从中对分析物浓度防故障的方法及结合其的设备、装置和系统 |
| PL2972268T3 (pl) | 2013-03-15 | 2017-10-31 | Hoffmann La Roche | Sposoby zabezpieczenia przed błędem w elektrochemicznym pomiarze analitu, przyrządy i urządzenia oraz układy je zawierające |
| CA2949906C (en) | 2013-03-15 | 2019-04-02 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Methods of scaling data used to construct biosensor algorithms as well as devices, apparatuses and systems incorporating the same |
| US10287619B2 (en) | 2014-04-18 | 2019-05-14 | Dojindo Laboratories | Measurement method for dehydrogenase and substrate concentration thereof, electron mediator, and measurement reagent for dehydrogenase including said electron mediator and for substrate thereof |
| WO2016049557A1 (en) | 2014-09-26 | 2016-03-31 | Abbott Point Of Care Inc. | Ellagic acid formulations for use in coagulation assays |
| ES2911898T3 (es) | 2014-09-26 | 2022-05-23 | Abbott Point Of Care Inc | Dispositivo de cartucho de canal único para ensayos de coagulación de sangre en muestras de fluidos |
| US10048282B2 (en) | 2014-09-26 | 2018-08-14 | Abbott Point Of Care Inc. | Cartridge device with fluidic junctions for coagulation assays in fluid samples |
| WO2016049506A1 (en) | 2014-09-26 | 2016-03-31 | Abbott Point Of Care Inc. | Sensors for assaying coagulation in fluid samples |
| US10048281B2 (en) | 2014-09-26 | 2018-08-14 | Abbott Point Of Care Inc. | Cartridge device with segmented fluidics for assaying coagulation in fluid samples |
| CN107107057B (zh) | 2014-09-26 | 2020-12-15 | 雅培医护站股份有限公司 | 用于流体样本中的凝结测定的盒设备识别 |
| US10247741B2 (en) | 2014-09-26 | 2019-04-02 | Abbott Point Of Care Inc. | Microfabricated device with micro-environment sensors for assaying coagulation in fluid samples |
| WO2016073395A1 (en) | 2014-11-03 | 2016-05-12 | Roche Diabetes Care, Inc. | Electrode arrangements for electrochemical test elements and methods of use thereof |
| EP3523639B1 (en) | 2016-10-05 | 2024-12-18 | F. Hoffmann-La Roche AG | Detection reagents and electrode arrangements for multi-analyte diagnostic test elements, as well as methods of using the same |
| JP6923647B2 (ja) | 2016-10-24 | 2021-08-25 | エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft | バイオセンサの導電性エレメントの未補償抵抗の補正方法および装置とシステム |
| WO2021138405A1 (en) | 2019-12-30 | 2021-07-08 | Roche Diabetes Care, Inc. | Temperature compensated biosensors and methods of manufacture and use thereof |
| JP7781686B2 (ja) * | 2022-03-17 | 2025-12-08 | アークレイ株式会社 | バイオセンサを用いた酸化還元酵素の電気化学的測定方法及びそれに用いるバイオセンサ |
| WO2025114544A1 (en) | 2023-12-01 | 2025-06-05 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Means and methods for determining fibrinogen using an assay based on a competitive mechanism |
Family Cites Families (17)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4093806A (en) * | 1973-06-22 | 1978-06-06 | L'oreal | Indoanilines |
| US4045297A (en) * | 1975-12-15 | 1977-08-30 | Monsanto Company | Triglycerides determination method |
| JPS5912135B2 (ja) * | 1977-09-28 | 1984-03-21 | 松下電器産業株式会社 | 酵素電極 |
| US4220503A (en) * | 1978-04-28 | 1980-09-02 | The Yellow Springs Instrument Co., Inc. | Stabilization of activated galactose oxidase enzyme |
| DE3061860D1 (en) * | 1979-04-24 | 1983-03-17 | Marcel Jozefonvicz | Process for the determination of proteases and antiproteases |
| US4297173A (en) * | 1980-05-22 | 1981-10-27 | Ajinomoto Company, Incorporated | Method for determining ammonia and sensor therefor |
| JPS5837395B2 (ja) * | 1981-01-21 | 1983-08-16 | 工業技術院長 | N,N−ジ置換−p−フエニレンジアミン誘導体の製造方法 |
| EP0076266B1 (en) * | 1981-04-08 | 1988-11-09 | GORTON, Lo | Electrode for the electrochemical regeneration of co-enzyme, a method of making said electrode, and the use thereof |
| EP0078636B2 (en) * | 1981-10-23 | 1997-04-02 | MediSense, Inc. | Sensor for components of a liquid mixture |
| CA1223638A (en) * | 1983-05-05 | 1987-06-30 | Graham Davis | Assay systems utilising more than one enzyme |
| CA1219040A (en) * | 1983-05-05 | 1987-03-10 | Elliot V. Plotkin | Measurement of enzyme-catalysed reactions |
| US4948727A (en) * | 1984-10-12 | 1990-08-14 | Medisense, Inc. | Chemical sensor |
| JPS61118427A (ja) * | 1984-11-15 | 1986-06-05 | Bridgestone Corp | 隣接したゴム部材間のゴム流れを防止する方法 |
| CA1254945A (en) * | 1986-02-27 | 1989-05-30 | Marco F. Cardosi | Application of tetrathiafulvalenes in bioelectrochemical processes |
| JPS636451A (ja) * | 1986-06-27 | 1988-01-12 | Terumo Corp | 酵素センサ |
| AU2342488A (en) * | 1987-10-05 | 1989-05-11 | Arden Medical Systems, Inc. | Sensor for measurement of enzyme hydrogenatable/dehydrogenatable chemical species in aqueous solutions |
| DE3826922A1 (de) * | 1988-08-09 | 1990-02-22 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur kolorimetrischen bestimmung eines analyten mittels enzymatischer oxidation |
-
1990
- 1990-02-03 DE DE4003194A patent/DE4003194A1/de not_active Withdrawn
-
1991
- 1991-01-29 NZ NZ236931A patent/NZ236931A/en unknown
- 1991-01-29 DE DE59108414T patent/DE59108414D1/de not_active Expired - Lifetime
- 1991-01-29 ES ES91101114T patent/ES2097767T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1991-01-29 EP EP91101114A patent/EP0441222B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1991-01-29 AT AT91101114T patent/ATE146524T1/de not_active IP Right Cessation
- 1991-01-30 BG BG93747A patent/BG60694B1/bg unknown
- 1991-01-31 MX MX2435691A patent/MX24356A/es unknown
- 1991-01-31 YU YU17191A patent/YU17191A/sh unknown
- 1991-01-31 IL IL9712191A patent/IL97121A/en not_active IP Right Cessation
- 1991-02-01 ZA ZA91757A patent/ZA91757B/xx unknown
- 1991-02-01 HU HU91367A patent/HUT59756A/hu unknown
- 1991-02-01 PL PL91288920A patent/PL168023B1/pl unknown
- 1991-02-01 FI FI910498A patent/FI910498A7/fi not_active Application Discontinuation
- 1991-02-01 NO NO91910394A patent/NO910394L/no unknown
- 1991-02-01 PL PL91307225A patent/PL168285B1/pl unknown
- 1991-02-01 IE IE034391A patent/IE910343A1/en unknown
- 1991-02-01 AU AU70183/91A patent/AU632659B2/en not_active Ceased
- 1991-02-01 PT PT96636A patent/PT96636A/pt unknown
- 1991-02-02 JP JP3012339A patent/JP2708281B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1991-02-02 CN CN92100931A patent/CN1026248C/zh not_active Expired - Lifetime
- 1991-02-04 KR KR1019910001848A patent/KR940008083B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 1991-02-04 CA CA002035630A patent/CA2035630A1/en not_active Abandoned
- 1991-02-04 US US07/650,265 patent/US5122244A/en not_active Expired - Lifetime
- 1991-02-04 CS CS91261A patent/CS26191A2/cs unknown
-
1992
- 1992-08-18 AU AU21086/92A patent/AU638899B2/en not_active Ceased
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| PL168285B1 (pl) | Sposób elektrochemicznego oznaczania oksydoreduktazy oraz uklad elektrod czujnikowych do oznaczania oksydoreduktazy PL | |
| US5286362A (en) | Method and sensor electrode system for the electrochemical determination of an analyte or an oxidoreductase as well as the use of suitable compounds therefor | |
| EP0846948B1 (en) | Mediators useful in an electrochemical biosensor | |
| US6214612B1 (en) | Cholesterol sensor containing electrodes, cholesterol dehydrogenase, nicotinamide adenine dinucleotide and oxidized electron mediator | |
| JP5486111B2 (ja) | 改善された分析物特異性を有するバイオセンサー | |
| US5858691A (en) | Method and agent for the simultaneous colorimetric and electrochemical measurement of an analyte | |
| US11905547B2 (en) | Reagents for electrochemical test strips | |
| RU2114914C1 (ru) | Способ, средство, тест-система для колориметрического определения аналита и нитрозоанилиновые соединения | |
| JP5453314B2 (ja) | 電気化学的検出に用いる改良型試薬組成物 | |
| PL166907B1 (pl) | Sposób oznaczania analitu przez wytwarzanie heteropoliblekitu i srodek do oznaczaniaanalitu przez wytwarzanie heteropoliblekitu PL PL | |
| EP3242129B1 (en) | Electrochemical biosensor | |
| JP7449691B2 (ja) | 電気化学測定用の試薬組成物及びその用途 | |
| HK1197432B (en) | Reagents for electrochemical test strips | |
| AU2015258165A1 (en) | Reagents for electrochemical test strips |