PL152195B1 - Plant growth controlling agent - Google Patents

Plant growth controlling agent

Info

Publication number
PL152195B1
PL152195B1 PL1988273851A PL27385188A PL152195B1 PL 152195 B1 PL152195 B1 PL 152195B1 PL 1988273851 A PL1988273851 A PL 1988273851A PL 27385188 A PL27385188 A PL 27385188A PL 152195 B1 PL152195 B1 PL 152195B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
formula
compound
benzamide derivative
agent according
nhco
Prior art date
Application number
PL1988273851A
Other languages
English (en)
Other versions
PL273851A1 (en
Original Assignee
Hodogaya Chemical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hodogaya Chemical Co Ltd filed Critical Hodogaya Chemical Co Ltd
Publication of PL273851A1 publication Critical patent/PL273851A1/xx
Publication of PL152195B1 publication Critical patent/PL152195B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C235/00Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by oxygen atoms
    • C07C235/42Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by oxygen atoms having carbon atoms of carboxamide groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings and singly-bound oxygen atoms bound to the same carbon skeleton
    • C07C235/44Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by oxygen atoms having carbon atoms of carboxamide groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings and singly-bound oxygen atoms bound to the same carbon skeleton with carbon atoms of carboxamide groups and singly-bound oxygen atoms bound to carbon atoms of the same non-condensed six-membered aromatic ring
    • C07C235/56Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by oxygen atoms having carbon atoms of carboxamide groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings and singly-bound oxygen atoms bound to the same carbon skeleton with carbon atoms of carboxamide groups and singly-bound oxygen atoms bound to carbon atoms of the same non-condensed six-membered aromatic ring having the nitrogen atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a six-membered aromatic ring
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N39/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing aryloxy- or arylthio-aliphatic or cycloaliphatic compounds, containing the group or, e.g. phenoxyethylamine, phenylthio-acetonitrile, phenoxyacetone
    • A01N39/02Aryloxy-carboxylic acids; Derivatives thereof
    • A01N39/04Aryloxy-acetic acids; Derivatives thereof

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Description

RZECZPOSPOLITA OPIS PATENTOWY 152 195 POLSKA
URZĄD
PATENTOWY
RP
Patent dodatkowy do patentu nr--Zgłoszono: 88 07 21 (P. 273851)
Pierwszeństwo: 87 07 23 Japonia
Int. Cl.5 A01N 37/22
Zgłoszenie ogłoszono: 89 09 18
Opis patentowy opublikowano: 1991 12 31
Twórca wynnlaaku-Uprawniony z patentu: Hodogaya Chemical Co., Ltd., Tokio (Japonia)
Środek do regulowania wzrostu roślin
Przedmiotem wynalazku jest środek do regulowania wzrostu roślin zawierający pochodne benzamidu.
W przypadku ryżu lub pszenicy często zdarza się, że wiatr lub deszcz kładą rośliny bezpośrednio przed żniwami, co powoduje zasadniczy spadek wydajności. Proponowano pewne związki chemiczne, które miały regulować rozwój łodygi skracając ją i wzmacniając przeciwko sile wylęgania. Jednakże wystąpiły problemy związane z tym, iż usiłowanie regulowania wzrostu łodyg w kierunku dostatecznego ich wzmocnienia miały wręcz przeciwne działanie na wiechy lub też skuteczność takiego działania w dużym stopniu zależała od pogody, stopnia wzrostu, czasu lub sezonu, w którym przeprowadza się obróbkę.
W przypadku trawników lub żywopłotów, lub traw na polach nierolniczych, rośliny, nawet jeśli są starannie strzyżone lub przycinane, mają tendencję do szybkiego odrastania. Badano skuteczność działania pewnych środków chemicznych, które umożliwiłyby wyeliminowanie strzyżenia lub ścinania. Jednakże nie jest jeszcze dostępny związek o zadowalającym działaniu.
W przypadku drzew owocowych często stosuje się środki przerzedzające, aby zabezpieczyć drzewa owocowe przed zbyt dużą ilością owoców, co wywołuje tendencję do zmniejszania wielkości owoców. Jednakże zakres ich zastosowania jest bardzo wąski, a sposób użycia bardzo trudny.
Z drugiej strony ważne jest także zwiększenie ilości kwiatów lub owoców.
W przypadku upraw korzeniowych jakość korzenia pogarsza się, gdy rozwija się łodyga kwiatowa. A zatem istnieje zapotrzebowanie na związek, który regulowałby rozwój łodygi kwiatowej.
W przypadku trzciny cukrowej usiłowano zwiększyć wydajność zapobiegając kłoszeniu lub zwiększając zawartość cukru przez pewne działanie fizjologiczne.
Dalej, w przypadku ziemniaków lub cebuli ważne jest zahamowanie procesu wypuszczania pędów podczas przechowywania.
Powyższe przypadki stanowią tylko przykłady, może być jednak wiele innych sytuacji, w których pożądane jest regulowanie wzrostu roślin. W każdym przypadku można stosować aktualnie jakieś związki chemiczne, nie jest jednak znany związek, który byłby całkowicie zadowalający. Istnieje zatem zapotrzebowanie na środek o ulepszonych właściwościach.
152 195
Przeprowadzono intensywne badania różnych związków w kierunku ich aktywności chwastobójczej i regulującej wzrost roślin i stwierdzono, że pewne pochodne benzamidu wykazują różne interesujące właściwości, w tym aktywność chwastobójczą wobec różnych roślin, aktywność w skracaniu łodyg, pobudzają krzewienie się, regulują rozwój nowych pączków lub w niektórych przypadkach pobudzają rozwój pączków pachowych. Na podstawie tych spostrzeżeń i dalszych badań opracowano niniejszy wynalazek.
Według wynalazku środek do regulowania wzrostu roślin zawiera skuteczną ilość pochodnej benzamidu o wzorze 1, w którym R oznacza grupę hydroksylową, alkoksylową, alkoksyalkoksylową, alkoksyalkoksyalkoksylową, alkenyloalkoksylową, alkenyloalkoksyalkoksylową, alkinyloalkoksylową, ' alkinyloalkoksyalkoksylową, monoalkiloaminową, dialkiloaminową lub grupę O-kat, w której kat oznacza nieorganiczny lub organiczny kation oraz znane środki pomocnicze (np. nośnik).
Korzystnie pochodną benzamidu stanowią: związek o wzorze 2, związek o wzorze 3, związek o wzorze 4, związek o wzorze 5, związek o wzorze 6, związek o wzorze 7, związek o wzorze 8, związek o wzorze 9, związek o wzorze 10, związek o wzorze 11, związek o wzorze 12, związek o wzorze 13, związek o wzorze 14, związek o wzorze 14, związek o wzorze 15, związek o wzorze 16, związek o wzorze 17, związek o wzorze 18, związek o wzorze 19, związek o wzorze 20, związek o wzorze 21, związek o wzorze 22, związek o wzorze 23, związek o wzorze 24, związek o wzorze 25, związek o wzorze 26, związek o wzorze 27, związek o wzorze 28, związek o wzorze 29, związek o wzorze 30, związek o wzorze 31, związek o wzorze 31, związek o wzorze 32 i związek o wzorze 33.
Pochodną benzamidu o ogólnym wzorze 1 wytwarza się przez reakcję 4-hydroksy-N-/2,3dichlorofenylo/-benzamidu ze związkiem o wzorze XCHgCOR, w którym R ma wyżej określone znaczenie, a X oznacza atom chlorowca lub na reakcji chlorku 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoiio/fenoksyacetylu ze związkiem o wzorze RH, w którym R ma wyżej określone znaczenie.
W tabeli 1 przedstawiono reprezentatywne związki stanowiące substancję czynną w środku według wynalazku, które później będą powoływane przez podanie numeru związku nadanego w tabeli 1.
Tabela 1
Związek nr Wzór chemiczny Temperatura topnienia
1 wzór 2 198-199,5
2 wzór 3 126-129
3 wzór 4 131-135
4 wzór 5 130-132
5 wzór 6 132-136
6 wzór 7 114-118
7 wzór 8 149-150,5
8 wzór 9 158-161
9 wzór 10 153-158
10 wzór 11 87-92
11 wzór 12 65-70
12 wzór 13 124-127
13 wzór 14 135-139
14 wzór 15 95-101
15 wzór 16 196-197,5
16 wzór 17 158-160,5
17 wzór 18 170-171,5
18 wzór 19 159-161,5
19 wzór 20 141-142
20 wzór 21 170-171
21 wzór 22 166-168,5
22 wzór 23 129-131,5
23 wzór 24 136-138
24 wzór 25 145,5-147
25 wzór 26 138-140,5
26 wzór 27 128-130,5
27 wzór 28 140,5-144
28 wzór 29 143,5-146
29 wzór 30 powyżej 230
30 wzór 31 153-157 (rozkład)
31 wzór 32 203-207 (rozkład)
32 wzór 33 150-154 (rozkład)
152195 3
Środek do regulowania wzrostu roślin według wynalazku można wytwarzać w postaci np. proszku zawiesinowego, koncentratu do emulgowania, w postaci cieczy, granulatu, pyłu, płynnego lub wodnego roztworu, przez mieszanie substancji czynnej z różnego rodzaju nośnikami, zależnie od jej własności fizykochemicznych. Wśród takich nośników, jako ciekłe nośniki można stosować konwencjonalne rozpuszczalniki organiczne, a jako stałe nośniki konwencjonalne proszki mineralne.
Ponadto podczas wytwarzania takich postaci można dodawać środka powierzchniowo czynnego w celu nadania zdolności do elmulgowania, dyspergowania i rozlewności. Związki o wzorze 1, mogą w razie potrzeby, być łączone z nawozami, środkami chwastobójczymi, owadobójczymi lub . grzybobójczymi w postaci jednolitej formulacji lub jako mieszanka w zbiorniku.
Jako nośnik można stosować obojętną nieorganiczną substancję taką jak bentonit, glina, zeolit lub talk. Jako organiczny rozpuszczalnik można stosować rozpuszczalnik, w którym różne związki są dobrze rozpuszczalne, taki jak ksylen, toluen, cykloheksanon lub glikol. Jako środek dyspergujący, emulgujący lub utrwalający można stosować anionowy lub niejonowy środek powierzchniowo czynny taki jak lignosulfonian, naftalenosulfonian, dialkilosulfobursztynian, eter nonylowo-fenylowy polioksyetylenowany, eter stearylowy polioksyetylenowany lub eter polioksyeltylenododecylowy.
Gdy środek według wynalazku stosuje się jako środek chwastobójczy, substancję czynną nanosi się w ilości wystarczającej, aby uzyskać żądane działanie chwastobójcze. Dawka substancji czynnej mieści się w zakresie od 1 do 200 g/ar, zwykle korzystnie od 5 do 50 g/ar. Środek może mieć wówczas postać proszku zawiesiniowego, koncentratu do emulgowania, proszku do opylania lub granulatu, który zawiera substancję czynną w ilości od 0,1 do 80% wagowych, korzystnie od 1 do 50% wagowych.
Środek według wynalazku stosowany jako środek chwastobójczy głównie reguluje kiełkowanie i wzrost chwastów, aż do ewentualnego ich zniszczenia. Na zalanych polach ryżowych środek według wynalazku wykazuje doskonałe działanie chwastobójcze nie tylko przeciwko jednorocznym chwastom takim jak chwastnica jednostronna (Echinochloa, ale także przeciwko chwastom wieloletnim takim jak strzałkowate (Sagittaria pygmaea) i turzycowate (Cyperus microiria). Nie zaobserwowano żadnych zasadniczych objawów fitotoksyczności wobec ryżu w uprawach zalanych. Także zastosowany do traktowania ziemi lub liści w uprawach wyżynnych, środek według wynalazku wykazuje selektywne działanie chwastobójcze w uprawie kukurydzy (Zea mays), soi (Glycine max) itp.
Gdy środek według wynalazku stosowany jest jako regulator wzrostu roślin, nanosi się go w takiej ilości, aby dawka substancji czynnej była w zakresie od 0,1 do 100 g/ar, zwykle korzystnie od 1 do 50 g/ar, w zależności od rodzaju uprawianej rośliny, typu związku lub czasu nanoszenia. Środek może mieć wówczas postać proszku zawiesinowego, koncentratu do emulgowania, proszku do opylania lub granulatu, który zawiera od 0,1 do 80% wagowych, korzystnie od 1 do 50% wagowych substancji czynnej.
Środek według wynalazku stosowany jako regulator wzrostu roślin jest głównie absorbowany przez liście roślin, a następnie przenoszony przez całą roślinę i wykazuje aktywność przede wszystkim w tych częściach, gdzie występuje najbardziej aktywny wzrost. Wykazywanie tej aktywności zmienia się w zależności od związku, jego stężenia, typu rośliny lub stopnia rozwoju rośliny. Jednakże ocenia się, że aktywność jest antagonistyczna wobec auksyny lub gibereliny stanowiących hormony roślinne.
Jako specyficzne działanie w przypadku roślin trawiastych po potraktowaniu liści obserwuje się skrócenie międzywęźli, a w niektórych przypadkach ułatwienie ukorzeniania się. W odniesieniu do roślin szerokolistnych regulator wzrostu roślin powstrzymuje tworzenie się nowych pączków, zapobiega wzrostowi wrzecionowatemu lub pobudza tworzenie się pączków pachowych lub pączków kwiatowych.
Środki według wynalazku mają szeroki zakres zastosowań, np. jako środki zapobiegające wylęganiu, środki zmniejszające potrzebę strzyżenia żywopłotów, środki zmniejszające wysokość drzew kwiatowych, traw lub dużych chwastów lub jako środki przerzedzające.
152 195
Gdy środek według wynalazku stosuje się jako regulator wzrostu roślin do traktowania liści, dawka zwykle może być mniejsza niż dla środka chwastobójczego. Jednakże dawka zmienia się w zależności od rodzaju rośliny lub celu stosowania środka. Na przykład, gdy środek stosuje się w celu zmniejszania wylęgania roślin można go nanosić w ilości od 0,5 do 3 g związku/ar w przypadku ryżu i od 2 do 10 g/ar w przypadku pszenicy. Gdy jest stosowany w celu skracania roślin, może być użyty w ilości od 3 do 15 g/ar w przypadku traw takich jak trawa bermudzka, od 10 do 40 g/ar w przypadku drzew i od 20 do 50 g/ar w przypadku dużych chwastów w uprawach nierolniczych. W niektórych przypadkach, środek można stosować w ilości wykraczającej poza te zakresy. W przypadku gdy środek jest stosowany jako środek przerzedzający lub indukujący powstawanie pączków kwiatowych, dawka może być na poziomie od 0,1 do 1 g/ar.
Pochodne benzamidu można otrzymać z dobrą wydajnością przez reakcję 4-hydroksy-N-/2,3dichlorofenylo/-benzamidu z różnymi estrami lub amidami kwasu chlorowcooctowego, w organicznym rozpuszczalniku takim jak aceton, toluen, dioksan lub Ν,Ν-dimetyloformamid, w obecności nieorganicznej zasady takiej jak węglan potasu lub węglan sodu lub organicznej zasady takiej jak pirydyna lub trietyloamina.
Pochodne benzamidu można także otrzymać przez reakcję 4-hydroksy-N-/2,3-dichlorofenylo/-benzamidu z kwasem chlorowcooctowym w roztworze wodnym w obecności nieorganicznej zasady, takiej jak wodorotlenek sodu lub potasu w celu wytworzenia kwasu 4-/2,3oddichlorofenylokarbamoilo/-fenoksyoctowego (związek nr 1) i reakcję wytworzonego związku z nieorganicznym halogenkiem, takim jak chlorek tionylu lub z organicznym halogenkiem takim jak fosgen w rozpuszczalniku organicznym, takim jak dioksan lub toluen w celu przeprowadzenia go w chlorek kwasowy, a następnie reakcję chlorku kwasowego z różnymi alkoholami, alkoksyalkoholami, alkoksyalkoksyalkoholami, alkenyloalkoholami, alkenyloalkoksyalkoholami, alkinyloalkoholami, alkinyloalkoksyalkoholami, monoalkiloaminami lub dialkiloaminami, w roztworze wodnym lub w organicznym rozpuszczalniku takim jak aceton, toluen lub dioksan w obecności nieorganicznej zasady takiej jak węglan potasu lub sodu lub organicznej zasady takiej jak pirydyna lub trietyloamina.
Niżej podane przykłady ilustrują wynalazek przy czym przykłady I - V podano jedynie w celach informacyjnych.
Przykład I. (Wytwarzanie związku nr 1).
2,82 g 4-hydroksy-N-/2,3-dichlorofenylo/-benzamidu i 1,67 g kwasu bromooctowego rozpuszczono w 10 ml dioksanu. Do roztworu wkraplano w ciągu 10 minut mieszaninę 0,97 g wodorotlenku sodu i 2 ml wody, w temperaturze 20°C i podczas mieszania. Po wkropleniu roztwór reakcyjny mieszano w temperaturze 80°C przez 2 godziny. Po zakończeniu reakcji roztwór reakcyjny przelano do 50 ml wody i zakwaszono kwasem solnym. Następnie surowy produkt, otrzymany przez odsączenie wytrąconego osadu, rekrystalizowano z układu toluen/metanol i uzyskano 2,5 g żądanego kwasu 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/-fenoksyoctowego, z wydajnością 70,6% o temperaturze topnienia 198-199,5°C.
Przykład II. (Wytwarzanie związku nr 2).
28,2 g 4-hydroksy-N-/2,3-dichlorofenylo/-benzamidu, 20,0 g bromooctanu etylu i 20,7 g węglanu potasu zdyspergowano w 150 ml Ν,Ν-dimetyloformamidu i mieszano dyspersję w temperaturze od 120 do 140°C przez 4 godziny. Po zakończeniu reakcji roztwór reakcyjny przelano do 500 ml 2% wodnego roztworu kwasu solnego. Surowy produkt, otrzymany przez odsączenie wytworzonego osadu, rekrystalizowano z toluenu i uzyskano 34,5 g żądanego 4-/2,3-dichlorofenylo/-karbamoilo/-fenoksyoctanu etylu, z wydajnością 93,4% i o temperaturze topnienia 126- 129°C.
Przykład III. (Wytwarzanie związku nr 5).
Mieszaninę 3,54 g kwasu 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/fenoksyoctowego, 3,57 g chlorku tionylu i 30 ml dioksanu mieszano w temperaturze 80°C przez 4 godziny. Nadmiar chlorku tionylu i rozpuszczony kwas solny, kwas siarkowy i dioksan oddestylowano na wyparce obrotowej jako pozostałość po destylacji otrzymano chlorek 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/-fenoksyacetylu.
Przygotowano roztwór 0,8 g n-butanolu i 2,0 g trietyloaminy w 20 ml dioksanu. Do roztworu tego wkraplano przez 5 minut w temperaturze pokojowej i podczas mieszania roztwór wytworzonego powyżej chlorku 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/-fenoksyacetylu w 5 ml dioksanu. Po zakończeniu wkraplania mieszanie prowadzono w temperaturze pokojowej przez dalsze 5 godzin.
152 195
S
Po zakończeniu reakcji roztwór reakcyjny przelano do 200 ml 2% wodnego roztworu kwasu solnego. Wytrącony osad zebrano przez odsączenie, przemyto rozcieńczonym wodnym roztworem alkalicznym i wodą, po czym wysuszono. Natępnie osad rekrystalizowano z toluenu i otrzymano
4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/-fenoksyoctan n-butylu z wydajnością 80,5%, obliczoną w odniesieniu do kwasu 4-/2,3-dichlorofenylo/karbamoilooctowego, o temperaturze topnienia 132—136°C.
Przykład IV. (Wytwarzanie związku nr 18).
0,71 g izopropyloaminy i 3,0 g trietyloaminy rozpuszczono w 20 ml dioksanu. Do wytworzonego roztworu wkraplano przez 5 minut w temperaturze pokojowej i podczas mieszania, roztwór chlorku 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/-fenoksyacetylu, wytworzonego sposobem jak w przykładzie III w 5 ml dioksanu. Po zakończeniu wkraplania mieszano w temperaturze pokojowej przez dalsze 5 godzin. Po zakończeniu reakcji roztwór reakcyjny poddano obróbce jak w przykładzie III i uzyskano 3,8 g żądanego N-izopropylo-4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/-fenoksyacetamidu z wydajnością 92,5%, obliczoną w odniesieniu do kwasu 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/fenoksyoctowego; temperatura topnienia 159—161,5°C.
PrzykładV. (Wytwarzanie związku nr 30).
l,02g kwasu 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/-fenoksyoctowego rozpuszczono w 5ml metanolu. Do wytworzonego roztworu wkraplano przez 5 minut w temperaturze pokojowej i podczas mieszania 0,33 g trietyloaminy, po czym mieszano dalej w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę. Nadmiar trietyloaminy i metanolu oddestylowano na wyparce obrotowej i uzyskano 1,2 g żądanej soli trietyloaminy i kwasu 4-/2,3-dichlorofenylo-karbamoilo/-fenoksyoctowego, z wydajnością 90,7%, o temperaturze topnienia 153—157°C (z rozkładem).
Środek według wynalazku opisano szczegółowo w poniższych przykładach.
Przykład VI. Wytwarzanie proszku zawiesinowego.
Do 40 części wagowych związku nr 5 dodano 52 części wagowe kaolinu i 3 części wagowe białego węgla, wymieszano i sproszkowano w ugniatarce. Następnie zmieszano z 4 częściami środka powierzchniowo czynnego proszkowego Sorpol 5039 (nazwa handlowa, firmy Toho Kagaku K.K.) i 1 częścią wagową środka powierzchniowo czynnego proszkowego Rapizol BB-75 (nazwa handlowa, z firmy Nippon Oil and Fats Co., Ltd.). Uzyskano proszek zawiesinowy zawierający 40% wagowych związku nr 5.
Przykład VII.Wytwarzanie koncentratu do emulgowania.
części wagowych związku nr 10 rozpuszczono w 42 częściach wagowych ksylenu i 33 częściach wagowych cykloheksanonu, po czym dodano 10 części wagowych Sorpolu 800A i rozpuszczano mieszając do uzyskania koncentratu do emulgowania zawierającego 15% wagowych związku nr 10.
Przykład VIII. Wytwarzanie proszku do opylania.
części wagowych proszku zawiesinowego zawierającego 40% wagowych związku nr 15, wytworzonego takim samym sposobem jak w przykładzie VI, dokładnie wymieszano z 0,3 części wagowej Rapizolu BB-75 i 94,7 częściami wagowymi gliny i uzyskano proszek do opylania zawierający 2% wagowych związku nr 15.
Przykład IX. Wytwarzanie mikrogranulek.
Do 50 części wagowych związku nr 1 dodano 3 części wagowe białego węgla i 47 części wagowych kaolinu, wymieszano i mieszaninę sproszkowano. 2 części wagowe sproszkowanej mieszaniny dodano do 96 części wagowych subtelnie rozdrobnionego zeolitu mieszając w szybkoobrotowej ugniatarce. Mieszanie prowadzono dalej i dolano 2 części wagowe eteru polioksyetylenododecylowego rozcieńczonego wodą. Dalej mieszano z małą ilością wody aż do zaniku proszku. Następnie usunięto mieszaninę z ugniatarki i wysuszono w strumieniu powietrza uzyskując mikrogranulki zawierające 1% wagowy związku nr 1.
Przykład X. Wytwarzanie granulatu.
Do 50 części wagowych związku nr 3 dodano 3 części wagowe białego węgla i 47 części wagowych gliny i sproszkowano mieszaninę w ugniatarce. 2 części wagowe sproszkowanej mieszaniny, 40 części wagowych bentonitu, 43 części wagowe gliny, 5 części wagowych tripolifosforanu sodu i 2 części wagowe sproszkowanego środka powierzchniowo czynnego Rapizol BB-75 (nazwa
152 195 handlowa, Nippon Oil and Fats Co., Ltd.) załadowano do ugniatarki i mieszaninę dokładnie wymieszano. Następnie dodano wody i mieszaninę dokładnie ugniatano, zgranulowano w granulatorze i wysuszono w strumieniu powietrza uzyskując granulat o zawartości 5% Wagowych związku nr 3.
Test nr 1. Doniczkę 400 cm2 wypełniono ziemią z pola ryżowego. W warstwie powierzchniowej ziemi wysiano równomiernie nasiona chwastnicy jednostronnej (Echinochloa oryzicola), Monochoria vaginalis i Scirpus juncoides i zasadzono bulwy Sagittaria pygmaea i turzycy Cyperus serotinus. Doprowadzono wodę na głębokość 3 cm. Następnie przesadzono dwie siewki ryżu na etapie 2-go liścia. Następnie nakroplono rozcieńczony roztwór proszku zawiesinowego wytworzonego z każdego z badanych związków, nanosząc je w uprzednio określonej ilości. 20-go dnia po naniesieniu oceniono działanie chwastobójcze przeciwko chwastom i odpowiedź przesadzonych roślin - ryżu na badane związki. Wyniki przedstawiono w tabeli 2.
Oceny dokonano według następującej skali:
Działanie chwastobójcze; 0: efekt taki jak w próbie nietraktowanej; 1: 20% zniszczenia; 2:40% zniszczenia; 3: 60% zniszczenia; 4: 80% zniszczenia; 5: całkowite zniszczenie.
Fitoksyczność wobec uprawianych roślin: -: nie jest fitotoksyczny; ±: znikoma fitotoksyczność; +: nieznaczna fitotoksyczność; + +: średnia fitotoksyczność; + + +: silna fitotoksyczność. (Według powyższej skali dokonywano oceny w następnych testach).
Tabela 2
Związek nr Postać użytkowa środka Dawka substancji czynnej g/lOa Fitotoksyczność wobec ryżu Efekt chwastobójczy
BAR MON BUL SAG CYP
1 2 3 4 5 6 7 8 9
40% proszek zawiesinowy 200 + 4,5 5 4 4 4,5
1 100 - 4 4 3 4 4
50 - 3,5 3,5 2 2 3,5
40%proszek zawiesinowy 200 + 5 5 4 4 4,5
2 100 - 4 4 3 4 4
50 - 3,5 3,5 2,5 3 3,5
40% proszek zawiesinowy 200 - 5 5 5 5 5
3 100 - 5 5 4,5 4,5 4,5
50 - 4,5 4 3 4 4
20% proszek zawiesinowy 200 + 5 5 4 4,5 5
7 100 - 4 4 4 4 4
50 - 3 3 3 2 3
15% koncentrat do 200 5 4,5 4 4,5 5
10 emulgowania 100 - 5 4 4 4 4,5
50 - 4,5 3 3 3 3
20% proszek zawiesinowy 200 + 5 5 4,5 5 5
12 100 - 4 4,5 4 4 4
50 - 3 4 3 3 2
20% proszek zawiesinowy 200 - 5 4 4 4 4,5
14 100 - 4 4 3 4 4
50 - 3 3,5 3 2 3
40% proszek zawiesinowy 200 + 5 5 4,5 4,5 4
16 100 - 4 3,5 4 4 4
. 50 - 4 3 3 3 3,5
40% proszek zawiesinowy 200 + 5 5 5 5 5
20 100 - 5 5 4,5 4,5 4,5
50 - 4,5 4,5 3 3,5 3
40% proszek zawiesinowy 200 - 5 5 5 5 5
22 100 - 4,5 4 4 4,5 4,5
50 - 4 4 3 3 2
40% proszek zawiesinowy 200 - 5 5 5 5 5
28 100 - 5 5 5 4,5 4,5
50 - 5 5 4 4 102
152 195
Ί
1 2 3 4 5 6 7 8 9
wodny roztwór 200 + 5 5 4,5 4 4,5
29 100 - 4 4,5 4 3 4
50 - 3 4 3 2 3
40% proszek zawiesinowy 200 ' - 5 5 5 5 5
31 100 - 4,5 5 4 4 4
50 - 4 4 3 2 3
5% granulat 200 - 5 5 5 5 5
3 100 - 5 5 4 3,5 3,5
50 - 4,5 3,5 3 5 5
5% granulat 200 - 5 5 5 5 5
20 100 - 5 4,5 4,5 4 4,5
50 - 4 4 3 3 3
5% granulat 200 - 5 5 5 5 5
28 100 - 5 5 4,5 4,5 4,5
50 - 4,5 4,5 4 3 3
Uwaga: BAR: chwastnica jednostronna (Echinochloa oryzicola);MON: Monochoria vaginalis; BUL: Scirpus juncoides; SAG: Segittaria pygmaea; CYP: turzyca (Cyperus serotinus).
Test nr 2: Działanie na ziemię w uprawach wyżynnych.
Doniczkę 400 cm2 wypełniono ziemią z upraw wyżynnych i powierzchniową warstwę ziemi wymieszano z nasionami szarłatu nitkowatego (Amaranthus viridis), komosy białej (Chenopodium album) i palusznika krwawego (Digitaria sanguinalis), a nasiona pszenicy (Triticum aestivum), kukurydzy (Zea mays) i soi (Glycine max) wysiano na głębokości 3 cm.
Po siewie, powierzchnię ziemi opryskano rozcieńczonym roztworem każdego badanego związku nanosząc określoną uprzednio ilość związku. 30-go dnia po oprysku oceniano efekty chwastobójcze wobec chwastów i odpowiedź roślin uprawnych na każdy badany środek chwastobójczy, według skali określonej w teście nr 1. Wyniki przedstawione są w tabeli 3.
Tabela 3
Fitotoksyczność
Związek nr Dawka substancji czynnej g/lOa dla roślin uprawnych Efekt chwastobójczy
WHF COR SOY SLF LAM LAR
1 2 3 4 5 6 7 8
500 + 5 5 5
1 250 - - - 4,5 4 4
125 - - - 4 4 3,5
500 + - + 5 5 5
2 250 - - - 5 5 4,5
125 - - - 4 4 3
500 + 5 5 5
4 250 - - - 5 5 5
125 - - - 4,5 4 4
500 - - 5 5 4
10 250 - - - 4 4 4
125 - - - 3 3,5 3,5
500 + 5 5 5
15 250 - - - 5 5 5
125 - - - 5 4,5 4
500 + + 5 5 5
17 250 - - - 4,5 5 5
125 - - - 4,5 4 4
500 + 5 5 4
22 250 - - - 4 4 4
125 - - - 4 3 3,5
152 195
1 2 3 4 5 6 7 8
500 - - - 5 5 5
23 250 - - - 5 5 5
125 - - - 4,5 4,5 4
500 - - 5 5 4,5
29 250 ' - ' ' ' - • - , , 4,5 4 3
125 ' - · ' - . 3 3 2
500 . . - ' - . . · , 4,5 4,5 4
30 250 - - - 4 4 4
125 - - - 3,5 3 3
Uwaga: WHE: pszenica (Triticum aestivum); COR: kukurydza (Zea mays); SOY: soja (Glycine max); SLF: szarłat (Amarantnus viridis); LAM: komosa biała (Chenopodium album); LAR: palusznik krwawy (Digitaria sanguinaiis).
Test nr 3: Traktowanie liści różnych roślin (regulator wzrostu roślin).
Ryż (Oryza sativa), jęczmień (Hordeum vulgare), fasolę zwykłą (Phaseolus vulgaris L.) i sałatę hodowano o^dzielnie w porowatych doniczkach 60 cm2 i przerywano w zatefrośd od wteltośd roślin. Wzrost doprowadzono do etapu 2—3 liścia i na liście roślin naniesiono rozcieńczony roztwór każdego badanego związku w ilości 101/a opryskując pistoletem do opryskiwania. 30-go dnia po Oprysku oceniono zahamowanie wzrostu. Wyniki przedstawiono w tabeli 4. Oceny dokonano według następującej skali:
Zahamowanie wzrostu na wysokość: 0: efekt taki sam jak w próbie nietraktowanej; 1: zahamownie wzrostu w około 20% w porównaniu z próbą nietraktowaną; 2: zahamowanie wzrostu . w około ' 40% w porównaniu z próbą ' nietraktowaną; 3: zahamowanie wzrostu w około 60% w porównaniu z próbą nietraktowaną; 4: zahamowanie wzrostu w około 80% w porównaniu z próbą nietraktowaną; 5: od potraktowania nie zaobserwowano żadnego postępu we wzroście.
Efekt działania: G: pogłębienie zieleni; T: ukorzenienie; M: zniekształcone liście; B: spalenie liści.
Tabela 4
Związek nr Stężenie (%) Odpowiedz badanych roślin
RI BA FR LF
1 2 3 4 5 6
0,1 5 5 4,5MB 5
1 0,05 4T 5T 4 5
0,025 3 4 4 4
1 5 4T 5B 5
2 0,05 4T 3 5 5
0,025 3,5 3 4 4
0,1 4,5T 4T 4,5MB 5
4 0,05 4,5T 4T 4,5M 5
0,025 4 3,5 4 4,5
0,1 5 4T 4,5M 4
5 0,05 5 4 4 4
0,025 4T 3 3,5 3
0,1 4T 3 4 4
7 0,05 3 3 3 3
0,025 2 2 o 2
0,1 4 3 4 4
8 0,05 3 2 4 3,5
0,025 2 1,5 3 2
0,1 4T 4.5 5MB 5
10 0,05 4T 4T 4,5M 5
0,025 3,5 3,5 4 4,5
0,1 4,5T 4T 5MB 4
12 0,05 4,5T 4 4,5 4
0,025 4 3,5 4 3,5
152 195
1 2 3 4 5 6
0,1 4 3 4 4
13 0,05 3 3 3 3,5
0,025 2 2 2 2,5
0,1 4T 4T 4 3
14 0,05 4 4 3,5 3
0,025 3 3 3 2
0,1 5 5 5MB 5
15 0,05 4,5T 4T 4,5M 5
0,025 3,5 3 4 4
0,1 5 4T 5MB 5
17 0,05 4,5T 4T 4,5 5
0,025 4T 3,5 4 4
0,1 5 4T 4 4
19 0,05 5 4 4 4
4 0,025 4T 3,5 3 3,5
0,1 5T 4 5MB 5
23 0,05 5T 4 4,5 5
0,025 4 3,5 4 4,5
0,1 3 3 3 3
25 0,05 3 2,5 3 2
0,025 2 2 2 1,5
0,1 5T 5T 5MB 4
29 0,05 4 4 4 4
0,025 3 4 4 4
0,1 5 5 5MB 4
30 0,05 4T 4,5 4,5 4
0,025 3,5 4 4 3,5
Uwaga: RI: ryż, BA: jęczmień, FR: fasola zwykła, LF: sałata.
Test nr 4: Traktowanie liści azalii.
Na młode sadzonki azalii (Rhododendron indicum) o wysokości 25—30 cm, rosnące w porowatych doniczkach 200 cm2, naniesiono rozcieńczony roztwór każdego badanego związku tak, aby całe sadzonki były dostatecznie zwilżone (251/a). Siedem dni później azalie przycięto i w 2 miesiące później przeprowadzono ocenę według skali stosowanej w teście nr 3. Wyniki przedstawiono w tabeli 5.
Tabela 5 Traktowanie liści azalii
Związek nr Stężenie (%) Zahamowanie wzrostu Inna odpowiedź
1 0,1 4 G
0,05 3
2 0,1 5 GB
0,05 4
5 0,1 4 M
0,05 3
10 0,1 4,5 G
0,05 4
15 0,1 4
0,05 3,5
24 0,1 4 G
0,05 3
29 0,1 4 M
0,05 3
30 0,1 3,5
0,05 3
152 195
Test nr 5: Traktowanie liści pszenicy.
Pole pszenicy (Norin nr 61) wysianej w rzędach wczesnym listopadem podzielono na poletka 5 m X 2 m. Całą powierzchnię poletka opryskiwano każdym związkiem rozcieńczonym do określonego stężenia, w ilości odpowiadającej K)L/a za pomocą ręcznego opryskiwacza, na 14 dni przed kłoszeniem, tj. w późnych dniach kwietnia. Proszek do opylania i mikrogranulki naniesiono ręcznie.
W środku czerwca określono długość łodygi, długość i ilość wiech i ciężar ziarna najednostkę powierzchni, biorąc pod uwagę . 50 łodyg, które wykazywały średni wzrost. Stopień wylęgania' na poletkach nietraktowanych był umiarkowany, a poletka, na których wylęganie było wyraźnie, zmniejszone, ' oznaczono O. Wyniki przedstawiono w tabeli 6.
Wartości liczbowe podane są w procentach w odniesieniu do powierzchi nietraktowanej, a w nawiasach podano rzeczywiste wartości zmierzone.
Tabela 6-.
Test na traktowanie liści pszenicy
Związek Nanoszona ilość Długość łodygi Długość wiechy Dość wiech Ciężar ziarna Zmniejszenie
nr (g/ar) (%) (%) nam* (%) wylęgania
10 76 92 90 95 o
1 5 83 95 93 103 o
2 92 99 95 104
10 84 96 96 99 o
2 5 88 102 101 104 0
2 ; 97 105 99 101
10 80 95 95 94 Q
15 5 83 104 95 100 0
2 90 101 101 103
10 85 93 98 102 o
29 5 90 105 102 101
2 102 104 100 99
10 86 98 103 105 o
30 5 92 104 101 103
2 96 98 104 103
2% proszek do 10 82 97 100 96 o
opylania 5 85 100 98 100 o
(zw.nr 15) 2 93 102 105 101
1% mikrogra- 10 87 100 101 102 o
nulki (zw.nr 1) 5 93 98 102 104
2 100 101 99 102
Nie traktowano 100 100 100 100
(95 cm) (8,5 cm) (450/m2) 450g/m2
Test nr 6: Traktowanie liści trawy bermudzkiej.
Pole z trawą bermudzką (odmiana T-328) podzielono na poletka 1m X 1 m. W 5 dni po siewie na każde poletko naniesiono . równomiernie rozcieńczony roztwór każdego związku w ilości odpowiadającej 101/a, za pomocą ręcznego opryskiwacza. 10-go i 20-go dnia po opryskaniu ' dokonano oceny według tej samej skali wartości, jak w teście ' nr 3.
Zmianę w kolorze liści oceniono według następującej skali:
Kolor liści
Brązowiejące: nieznacznie B-l
trochę B-2
wyraźnie B-3
Ciemnozielone: nieznacznie G-l
trochę G-2
wyraźnie G-3
152 195
Wyniki przedstawiono w tabeli 7.
Tabela 7
Zahamowanie wzrostu po potraktowaniu liści w teście z trawą bermudzką
Związek nr Substancja czynna (g/a) 10 dni później 20 dni później
Zahamowanie Kolor liści Zahamowanie Kolor liści
1 2 3 4 5 6
10 5 G-l 5 G-l
1 5 5 4,5
2,5 4 3
10 5 5 G-l
2 5 4,5 4
2,5 4 3
10 5 5
6 5 4,5 4
2,5 4 3
10 5 4,5
9 5 4,5 3
2,5 4 2
10 5 G-2 5 G-l
10 5 5 G-l 4,5
2,5 4 3
10 5 G-l 5 G-l
11 5 5 4
2,5 4 3
10 5 4,5
18 5 4 3
2,5 3,5 2
10 5 B-l 4,5
21 5 4,5 3
2,5 3 2
10 5 B-l 4,5
26 5 4,5 3
2,5 2 1
10 5 B-2 4,5 B-l
27 5 4 B-l 3
2,5 2 1
10 5 G-l 5 G-l
29 5 5 4
2,5 4,5 2
10 5 G-l 4,5
32 5 5 3
2,5 4 2
Test nr 7: Działanie na liście ryżu na zalanych wodą polach.
Pole ryżowe, na które przesadzono za pomocą transplantera sadzonki ryżu (Koshihikari), podzielono na poletka obejmujące 6 rzędów X 3 m. Na 7 dni przed kłoszeniem równomiernie opryskano .za pomocą opryskiwacza każdym ze środków regulujących wzrost, rozcieńczonych wodą do określonego stężenia, w ilości odpowiadającej 101/ar. (Do proszku zawiesinowego i wodnego roztworu dodano środka utrwalającego). Po zbiorach zmierzono długość łodygi, długość wiechy i ciężar wiechy, biorąc pod uwagę 20 roślin. Wyniki przedstawiono w tabeli 8.
Wartości liczbowe przedstawiają procenty w odniesieniu do nietraktowanego poletka i są zaokrąglone do miejsca dziesiątek. Obserwowany stopień wylęgania przedstawiono według 5stopniowej skali od 0 do 4. Ponadto, na przedstawionych poletkach zmierzono długość między węzłami. Wyniki przedstawiono w tabeli 9.
152 195
Tabela 8
Test na traktowanie liści ryżu
W stosunku do nietraktowanych (%)
Związek nr Substancja czynna g/ar Długość łodygi Długość wiechy Poletko nr
Ciężar wiechy wylęgania
1 81 100 98 0 1
1 0,5 88 102 106 1 2
0,25 98 105 103 2 3
1 87 101 106 0 4
2 0,5 96 99 98 2 5
0,25 101 100 99 3 6
1 78 99 105 0 7
10 0,5 85 107 110 0 8
0,25 92 104 109 1 9
1 88 100 103 0 10
16 0,5 95 102 104 2 11
0,25 102 99 100 6 12
1 79 98 109 0 13
29 0,5 86 102 108 0 14
0,25 94 106 104 1 15
1 83 99 108 0 16
30 0,5 87 97 105 0 17
0,25 96 106 103 2 18
Nie- 100 100 100 3
trak- (80,5 cm) (18,7 cm) (3,41 g)
towane
Tabela 9
Długość między węzłami łodyg ryżu
Długość między węzłami w stosunku do nietraktowanych
nr No Ni n2 N3 N4
1 94 46 86 91 97
2 98 56 95 96 100
4 97 55 97 90 98
10 97 57 96 94 102
7 93 43 83 86 98
13 92 43 91 85 100
16 93 47 95 93 96
Nietrak- 100 100 100 100 100
towane (3,45) (18,5) (13,7) (9,7) (3,8 cm)
Test nr 8: Traktowanie liści drzew.
Roztwór koncentratu do emulgowania zawierający związek nr 10 o określonym stężeniu, nanoszono na różne drzewa rosnące w doniczkach 200 cm2 i 400 cm2 za pomocą pistoletu do opryskiwania, w ilości 151/ar, wówczas gdy nowe gałęzie odrosły do długości kilku centymetrów, po uprzednim przycięciu gałęzi. Do oprysku doniczkę umieszczono w pudełku 40 X 50 cm i mieszaninę równomiernie rozpryskano w pudełku. Trzy miesiące później oceniono wzrost nowych gałęzi, posługując się skalą jak w teście nr 3. Wyniki przedstawiono w tabeli 10.
Wysokość każdego drzewa w czasie oprysku była następująca:
Azalia (Rhododendron indicum) 25—30 cm
Bukszpan (Buxus microphylla) 20—255 cm
Głóg (Photinia glabra) 35—40 cm
Abelia serrata 40—50 cm
Trzmielina (Euonymus japonicus) 50—60 cm
152 195
Enkianthus perulatus 30—35 cm
Granat właściwy (Punica granatum) 30—0— cm
Juniperus chinensis 50—60 cm
Tabela 10
Zahamowanie wzrostu nowych gałęzi drzew
Związek nr 10
Drzewa Stężenie substancji czynnej (%)
0,05 0,1 0,2
Rhododendron indicum 3,5 4,5 5
Buxus microphylla 2 4 4,5
Photinia glabra 3 4,5 5
Abelia serrata 3 4 5
Euonymus japonicus 2 4 5
Enkianthus perulatus 3,5 4,5 5
Punica granatum 3 4 5
Juniperus chinensis 0 2 4
Test nr 9: Traktowanie liści rzodkwi zwyczajnej.
W celu zbadania działania hamującego rozwój łodygi kwiatowej rzodkwi, pole z wcześnie dojrzewającą rzodkwią (Raphanus sativus) wysianą wiosną i wyhodowaną do etapu bezpośrednio przed rozwinięciem się łodygi, kwiatowej, . podzielono na poletka, z których każde obejmowało 6 roślin. Do proszku zawiesinowego i wodnego roztworu o określonym stężeniu dodano niejonowego środka powierzchniowo czynnego w takiej ilości, aby stosowane stężenie wynosiło 500 ppm i mieszaninę naniesiono na poletka w ilości odpowiadającej 10L/ar za pomocą opryskiwacza, a ' mikrogranulki nanoszono ręcznie. Miesiąc później przeprowadzono ocenę każdej rośliny tak ' samo jak w teście nr 3. Wyniki przedstawiono w tabeli 11. (Wartość liczbowa jest średnią z 6 roślin i jest zaokrąglona do pierwszego miejsca po przecinku).
Tabela nr 11
Zahamowanie rozwoju łodygi kwiatowej rzodkwi
Związek nr Postać użytkowa i zawartość Nanoszona ilość g/a Zahamowanie
środka substancja czynna
mikrogranulki 1% 500 5 4
1 250 2,5 3,2
125 1,25 1,5
proszek zawiesinowy 50% 10 5 4,7
5 5 2,5 3,3
2,5 1.25 22
koncentrat do emulgowania 20 5 5
11 25% 10 2,5 4,1
5 1,25 32
proszek zawiesinowy 50% 10 5 4,
16 5 2,5 3,3
2,5 1,25 2,0
wodny ' roztwór 100% 5 5 4,7
29 2,5 2,5 3,5
1,25 1,25 2,7
Test nr 10: Opryskiwanie pola nierolniczego.
Aby ocenić działa nie hamujące wzrost dużych chwastów pole z wybujałą Miscanthus sinensis i nawłocią (Solidago altissima) podzielono na poletka 2,5 X 4m. Konewką polano równomiernie poletka rozcieńczonym roztworem proszku zawiesinowego zawierającego związek nr 1 (i 0,1% środka utrwalającego) i koncentratu do emulgowania zawierającego związek nr 10, w ilości odpowiadającej 301/a.
152 195
W czasie traktowania i 3 miesiące później zmierzono średnią wysokość i maksymalną wysokość Miscanthus i nawłoci na poletkach. Wyniki przedstawiono w tabeli 12.
Tabela 12
Zahamowanie wzrostu chwastów na polu nierolniczym
Wysokość chwastów (cm)
Związek nr Substancja czynna Miscanthus Solidago
podczas traktowania 3 miesiące później podczas traktowania 3 miesiące później
1 50 70-110 70 - 120 50-80 60-100
25 60-100 80-140 50-70 70 - 120
10 50 70-110 80 - 120 60-80 60-110
25 60-110 90-140 50-80 80-120
Poletko 60- 110 170-220 50-70 150-190
nietraktowane
Test nr 11: Przerzedzanie związków jabłoni.
Wśród gałęzi jabłoni (Fuji) 25-letniej wybrano podobne gałęzie i 20 dnia po pełnym kwitnieniu całe gałęzie opryskano za pomocą opryskiwacza roztworem każdego związku o określonym stężeniu w takiej ilości, aby naniesiony roztwór nie skapywał z gałęzi. Dwa miesiące później określono ilość i średnicę owoców. Wyniki przedstawiono w tabeli 13.
Tabela 13
Test na przerzedzanie jabłoni
Związek nr Stężenie (ppm) Ilość badanych owoców Wyniki testu w stosunku do próby nietraktowanej (%)
owoce środkowe owoce zewnętrzne Stosunek ilości owoców (%) Średnia _ średnica owocu Stosunek do nietraktowanej gałęzi (%)
owoce środkowe owoce zewnętrzne
50 39 120 71,8 8,3 111
1 25 32 101 87,5 9,9 114
12,5 37 113 86,5 11,5 109
50 35 108 71,4 7,4 106
11 25 37 110 86,5 10,0 112
12,5 30 99 90,0 12,1 110
Próba
nietraktowana 34 102 82,4 27,5 100 (35,9 mm)
Test nr 12: Test na traktowanie liści trzciny cukrowej.
Pole z trzciną cukrową, wychodowaną do początkowego stadium dojrzewania, podzielono na poletka, z pięcioma roślinami na każdym i za pomocą ręcznego opryskiwcza naniesiono 30 ml roztworu zawierającego substancję czynną o określonym stężeniu, u nasady wierzchołkowych liści na każdej łodydze.
Dwa miesące później, tj. w czasie zbiorów, na nietraktowanym poletku obserwowano kłoszenie w pewnym zakresie, podczas gdy nie zaobserwowano kłoszenia na żadnym z traktowanych poletek. Rośliny zebrano i wyciśnięto i zmierzono zawartość cukru w wyciśniętym soku polarymetrycznym miernikiem zawartości cukru. Wyniki przedstawiono w tabeli 14.
Test 13: Test na traktowanie liści soi.
W szklarni hodowano soję (Enrei) w doniczkach 200 cm2 (1 roślina/doniczkę). Na początku etapu 3-go liścia naniesiono związek rozcieńczony do określonego stężenia i zawierający 500 ppm niejonowego środka powierzchniowo czynnego, w ilości odpowiadającej Kl^a. Test przeprowadzono na 3 roślinach w każdej próbie. Dwa miesiące później policzono ilość strąków, które wyrosły. Wyniki przedstawiono w tabeli 15. (Wartości liczbowe są średnią z wartości dla 3 roślin i zostały zaokrąglone do pierwszego miejsca po przecinku).
152 195
Tabela 14
Wyniki pomiaru zawartości cukru w trzcinie cukrowej
Związek nr Substancja czynna (%) Średma zawartość cukru (%)
0,2 13,83
1 0,1 13,57
0,2 14,21
10 0,1 13,84
0,2 12,98
29 0,1 11,95
Poletko ' — 10,39
nietraktowane
Tabela 15
Związek nr Substancja czynna (ppm) Ilość strąków
30 31,0
1 100 35,3
300 33,3
30 28,3
11 100 39,7
300 38,0
30 25,0
29 100 35,5
300 37,3
30 26,0
30 100 36,3
300 32,7
Próba 24,7
nietraktowana

Claims (33)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Środek do regulowania wzrostu roślin zawierający substancję czynną i znane środki pomocnicze, znamienny tym, że jako substancję czynną zawiera efektywną ilość pochodnej benzamidu o wzorze 1, w którym R oznacza grupę hydroksylową, alkoksylową, alkoksyalkoksylową, alkoksyalkoksyalkoksylową, alkenyloalkoksylową, alkenyloalkoksyalkoksylową, alkinyloalkoksylową, alkinyloalkoksyalkoksylową, monoalkiloaminową, dialkiloaminową lub grupę O-kat, w której kat oznacza nieorganiczny lub organiczny 1, tion.
  2. 2. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 2.
  3. 3. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 3.
  4. 4. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako ' pochodną ' benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 4.
  5. 5. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 5.
  6. 6. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 6.
  7. 7. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 7. .
  8. 8. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 8.
    16 152 195
  9. 9. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 9.
  10. 10. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 10.
  11. 11. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 11.
  12. 12. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 12.
  13. 13. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 13.
  14. 14. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 14.
  15. 15. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 15.
  16. 16. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 16.
  17. 17. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 17.
  18. 18. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 18.
  19. 19. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 19.
  20. 20. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 20.
  21. 21. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 21.
  22. 22. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 22.
  23. 23. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 23.
  24. 24. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 24.
  25. 25. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 25.
  26. 26. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 26.
  27. 27. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 27.
  28. 28. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 28.
  29. 29. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 29.
  30. 30. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 30.
  31. 31. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 31.
  32. 32. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 32.
  33. 33. Środek według zastrz. 1, znamienny tym, że jako pochodną benzamidu o wzorze 1 zawiera związek o wzorze 33.
    Cl Cl
    NHCO
    OCH2COR
    Wzór 1
    Cl Cl
    Wzór 2
    Wzór 3
    Cl Cl
    NHCO-^^^^— OCH2COOC3 Ηγ- π Wzór k
    Cl Cl ^-NHCO^g/
    O^COOC^Hg-iso
    Wzór 7
    Cl Cl ^-NHCO-<Ó^
    OHH2COOC4h9-t
    Wzór 8
    Cl Cl ^NHCO^O>OCH2COOC6Ht3 -n
    Wzór 9
    Cl Cl
    NHCO-^Ο^ OCH2COOCtt>H25-n
    Wzór 10
    Cl Cl <O> nhco-/o\och2 cooch 2CH2OC4H9-n
    Cl Cl
    Wzór tt
    NHCO COOCH 2CH2 OCH2CH2OC4H9-n
    Wzór 12
    Cl Cl ^NHCO^OCH2COOCH2CH=CH;
    Wzór 13
    Cl Cl ^Ο^-NHCO och2 COOCH2CH =
    CHCH2CH3
    Wzór 14
    Cl Cl
    NHHO^^-OCH^OOCH·^ 5 CH
    Wzór 15
    Cl Cl
    NHCC O^5^CC H2CONHCH3
    Wzór 16
    Cl Cl
    NHCO <XH 2 CONHO 2H5
    Wzór 17
    O Cl <O^NHC0^O> OCH2 CONHC 3H7 -n
    Wzór 1Θ a ci
    OCH2CONHC3H7-i
    Wżór 19
    Cl Cl \(j)- NHCO-^^-OCH2 CONHC4 Hg-n
    Wzór 20
    Cl Cl NHCO -(O)-<CH 2 CONH° Hg - iso
    Wzór 21
    Cl Cl
    NHCO (O) OCH2 CONHC4 HgWzór 22 a Cl
    NHCO-^^-OCH2CONHC12H25-n
    Wzór 23
    Cl Cl
    Wzór 24
    Cl }-NHCO OCHRON C2H5 c2h5
    Wzór 25
    Cl Cl
    33 mio^OY och2coi<^’_ Wzór 26
    Cl Cl nhcoh@>-och2con<^
    Wzór 27
    C4H9-n C4Hg-n
    Cl y NHCO -©- OCH2CON ^C^Hg-Kc:
    Wzór 29
    Cl Cl
    NHCO ~<O> OCH2COOH · NICjH 5 )3
    Wzór 31
    Cl Cl
    OC^COOH-N^C^HgWzór 33
PL1988273851A 1987-07-23 1988-07-21 Plant growth controlling agent PL152195B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP62182369A JPH0725725B2 (ja) 1987-07-23 1987-07-23 ベンズアミド誘導体

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL273851A1 PL273851A1 (en) 1989-09-18
PL152195B1 true PL152195B1 (en) 1990-11-30

Family

ID=16117106

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1988273851A PL152195B1 (en) 1987-07-23 1988-07-21 Plant growth controlling agent
PL88279477A PL279477A1 (en) 1987-07-23 1988-07-21 Method of obtaining benzamide derivatives

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL88279477A PL279477A1 (en) 1987-07-23 1988-07-21 Method of obtaining benzamide derivatives

Country Status (22)

Country Link
US (1) US4878942A (pl)
EP (1) EP0300454B1 (pl)
JP (1) JPH0725725B2 (pl)
KR (1) KR950006895B1 (pl)
CN (1) CN1015624B (pl)
AU (1) AU600379B2 (pl)
BG (3) BG47341A3 (pl)
BR (1) BR8803667A (pl)
CA (1) CA1297894C (pl)
DD (1) DD283995A5 (pl)
DE (1) DE3867743D1 (pl)
DK (1) DK414188A (pl)
ES (1) ES2038251T3 (pl)
HU (2) HUT49565A (pl)
IN (1) IN169558B (pl)
NZ (1) NZ225491A (pl)
PH (1) PH25340A (pl)
PL (2) PL152195B1 (pl)
RO (3) RO102513B1 (pl)
SU (1) SU1788881A3 (pl)
YU (1) YU135488A (pl)
ZA (1) ZA885347B (pl)

Families Citing this family (37)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH06683B2 (ja) * 1987-03-05 1994-01-05 保土谷化学工業株式会社 植物生長調節剤
JPH0742259B2 (ja) * 1988-12-23 1995-05-10 保土谷化学工業株式会社 ベンズアミド誘導体
US5042980A (en) * 1989-05-26 1991-08-27 C. R. Bard, Inc. Optical fiber diffusion tip for uniform illumination
US6331318B1 (en) 1994-09-30 2001-12-18 Emisphere Technologies Inc. Carbon-substituted diketopiperazine delivery systems
US5629020A (en) 1994-04-22 1997-05-13 Emisphere Technologies, Inc. Modified amino acids for drug delivery
US5578323A (en) 1992-06-15 1996-11-26 Emisphere Technologies, Inc. Proteinoid carriers and methods for preparation and use thereof
US5693338A (en) * 1994-09-29 1997-12-02 Emisphere Technologies, Inc. Diketopiperazine-based delivery systems
US6099856A (en) * 1992-06-15 2000-08-08 Emisphere Technologies, Inc. Active agent transport systems
US6221367B1 (en) 1992-06-15 2001-04-24 Emisphere Technologies, Inc. Active agent transport systems
US5714167A (en) * 1992-06-15 1998-02-03 Emisphere Technologies, Inc. Active agent transport systems
CA2090283A1 (en) * 1992-02-28 1993-08-29 Nobuyuki Hamanaka Phenoxyacetic acid derivatives
US5401516A (en) * 1992-12-21 1995-03-28 Emisphere Technologies, Inc. Modified hydrolyzed vegetable protein microspheres and methods for preparation and use thereof
US5958457A (en) * 1993-04-22 1999-09-28 Emisphere Technologies, Inc. Compositions for the delivery of antigens
US5643957A (en) * 1993-04-22 1997-07-01 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US6610329B2 (en) 1993-04-22 2003-08-26 Emisphere Technologies Inc. Compositions for the delivery of antigens
WO1997036480A1 (en) 1996-03-29 1997-10-09 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US5965121A (en) * 1995-03-31 1999-10-12 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US5989539A (en) * 1995-03-31 1999-11-23 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US6090958A (en) * 1995-03-31 2000-07-18 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US6001347A (en) * 1995-03-31 1999-12-14 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
BR9604880A (pt) * 1995-03-31 1998-05-19 Emisphere Tech Inc Composto composição forma de unidade de dosagem métodos para administração de um agente biologicamente ativo para preparar uma composição para administração de um agente ativo e para preparar um composto e composição farmacológica
US5750147A (en) * 1995-06-07 1998-05-12 Emisphere Technologies, Inc. Method of solubilizing and encapsulating itraconazole
US6051258A (en) * 1995-06-07 2000-04-18 Emisphere Technologies, Inc. Proteinoid emulsions and methods for preparation and use thereof
DE19681560T1 (de) * 1995-09-11 1998-08-20 Emisphere Tech Inc Verfahren zur Herstellung von omega-Aminoalkansäure-Derivaten aus Cycloalkanonen
EP0904065A4 (en) 1996-06-14 2000-06-14 Emisphere Tech Inc MICRO-ENCLOSED FRAGRANCES AND PRODUCTION METHOD
US6358504B1 (en) 1997-02-07 2002-03-19 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US6060513A (en) * 1997-02-07 2000-05-09 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US5876710A (en) * 1997-02-07 1999-03-02 Emisphere Technologies Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US6313088B1 (en) 1997-02-07 2001-11-06 Emisphere Technologies, Inc. 8-[(2-hydroxy-4-methoxy benzoyl) amino]-octanoic acid compositions for delivering active agents
US5990166A (en) * 1997-02-07 1999-11-23 Emisphere Technologies, Inc. Compounds and compositions for delivering active agents
US5962710A (en) * 1997-05-09 1999-10-05 Emisphere Technologies, Inc. Method of preparing salicyloylamino acids
US6335459B1 (en) 1998-12-23 2002-01-01 Syntex (U.S.A.) Llc Aryl carboxylic acid and aryl tetrazole derivatives as IP receptor modulators
ES2235854T3 (es) * 1999-04-05 2005-07-16 Emisphere Technologies, Inc. Sales disodicas, monohidratos y solvatos etanolicos para aportar agentes activos.
US7279597B1 (en) 1999-11-05 2007-10-09 Emisphere Technologies, Inc. Phenyl amine carboxylic acid compounds and compositions for delivering active agents
US7129274B1 (en) 1999-11-05 2006-10-31 Emisphere Technologies Inc. Phenoxy carboxylic acid compounds and compositions for delivering active agents
ATE387430T1 (de) 1999-12-16 2008-03-15 Emisphere Tech Inc Verbindungen und zusammensetzungen zur abgabe aktiver wirkstoffe
RU2705284C1 (ru) * 2018-09-17 2019-11-06 Александр Георгиевич Ляшенко Комплексное средство защиты растений на базе активированных (дегидратированных) природных цеолитов

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1077936A (en) * 1964-09-08 1967-08-02 Smith & Nephew Substituted benzanilides
US3549689A (en) * 1967-05-23 1970-12-22 Sandoz Ag Phenoxy-alkanoic acids
JPS5576851A (en) * 1978-12-05 1980-06-10 Hodogaya Chem Co Ltd Benzamide derivative and herbicide containing the same
JPS5673055A (en) * 1979-11-20 1981-06-17 Hodogaya Chem Co Ltd Benzamide derivative and herbicide containing the same
FR2598146B1 (fr) * 1986-04-30 1989-01-20 Rech Ind Nouveau procede de preparation de fibrates.
ES2051843T3 (es) * 1987-05-11 1994-07-01 Ono Pharmaceutical Co Un proceso para la preparacion de un derivado del acido benzoilaminofenoxibutanico.

Also Published As

Publication number Publication date
ES2038251T3 (es) 1993-07-16
DD283995A5 (de) 1990-10-31
PL273851A1 (en) 1989-09-18
NZ225491A (en) 1990-02-26
YU135488A (en) 1990-02-28
BG47341A3 (en) 1990-06-15
DE3867743D1 (de) 1992-02-27
BG47495A3 (en) 1990-07-16
EP0300454B1 (en) 1992-01-15
AU600379B2 (en) 1990-08-09
BR8803667A (pt) 1989-02-14
US4878942A (en) 1989-11-07
PH25340A (en) 1991-05-13
KR950006895B1 (ko) 1995-06-26
AU1972388A (en) 1989-01-27
EP0300454A2 (en) 1989-01-25
JPH0725725B2 (ja) 1995-03-22
PL279477A1 (en) 1989-10-16
CA1297894C (en) 1992-03-24
EP0300454A3 (en) 1989-04-12
IN169558B (pl) 1991-11-09
BG47496A3 (en) 1990-07-16
CN1015624B (zh) 1992-02-26
DK414188A (da) 1989-01-24
KR890001955A (ko) 1989-04-06
RO104332B1 (en) 1993-01-10
CN1030751A (zh) 1989-02-01
JPS6429348A (en) 1989-01-31
RO102513B1 (en) 1992-11-02
SU1788881A3 (ru) 1993-01-15
ZA885347B (en) 1989-04-26
HUT49565A (en) 1989-10-30
RO104331B1 (en) 1993-04-15
DK414188D0 (da) 1988-07-22
HU202829B (en) 1991-04-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL152195B1 (en) Plant growth controlling agent
JP2001513809A (ja) アセトクロルに対してコメを毒性緩和するための組成物
JPS6230184B2 (pl)
EP0070089A1 (en) 1,2,4-Triazole derivatives having herbicidal activity
JP2913214B2 (ja) 植物の生長を調節するための相乗作用組成物
EP0256128B1 (en) Indoleacetic acid derivatives and use thereof as plant growth regulators
JPS6254108B2 (pl)
EP0281120B1 (en) Plant growth regulant
JP6902748B2 (ja) 植物成長調整剤
EP0374736B1 (en) Benzamide derivatives and plant growth regulants containing them
JPH045012B2 (pl)
JPS6053023B2 (ja) 選択性殺草剤
JP2516384B2 (ja) ペンズアミド誘導体
JP2634068B2 (ja) ベンズアミド誘導体
JPH04275201A (ja) 除草剤組成物
US6514913B1 (en) Weed growth inhibitory compositions
JPH0142262B2 (pl)
JPH0314802B2 (pl)
JPH03167164A (ja) ベンズアミド誘導体
HU181582B (en) Cereal weed killer preparation
JPS62111979A (ja) 2,4−ジクロル−3−メチルフエノキシプロピオン酸エステル誘導体
JPS6030307B2 (ja) 置換フエニル尿素誘導体、その製造法および該化合物からなる除草剤
JPS58192868A (ja) 2−フェニル−4,5,6,7−テトラヒドロ−2h−イソインド−ル誘導体、その製造法およびそれを有効成分とする除草剤
JPS60246367A (ja) テトラヒドロフタルイミド類およびこれを有効成分とする除草剤
JPS625424B2 (pl)