NO303452B1 - Fosfoinositolglykan-peptid med insulinlignende virkning, fremgangsmÕte for fremstilling, legemiddel og anvendelse av forbindelsen for fremstilling av et legemiddel - Google Patents

Fosfoinositolglykan-peptid med insulinlignende virkning, fremgangsmÕte for fremstilling, legemiddel og anvendelse av forbindelsen for fremstilling av et legemiddel Download PDF

Info

Publication number
NO303452B1
NO303452B1 NO923252A NO923252A NO303452B1 NO 303452 B1 NO303452 B1 NO 303452B1 NO 923252 A NO923252 A NO 923252A NO 923252 A NO923252 A NO 923252A NO 303452 B1 NO303452 B1 NO 303452B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
insulin
peptide
phosphoinositol glycan
phosphoinositol
glycan
Prior art date
Application number
NO923252A
Other languages
English (en)
Other versions
NO923252L (no
NO923252D0 (no
Inventor
Guenter Mueller
Dominique Tripier
Stefan Muellner
Original Assignee
Hoechst Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hoechst Ag filed Critical Hoechst Ag
Publication of NO923252D0 publication Critical patent/NO923252D0/no
Publication of NO923252L publication Critical patent/NO923252L/no
Publication of NO303452B1 publication Critical patent/NO303452B1/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/08Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/08Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis
    • A61P3/10Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis for hyperglycaemia, e.g. antidiabetics
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • C07K5/0827Tripeptides containing heteroatoms different from O, S, or N
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/10Tetrapeptides
    • C07K5/1027Tetrapeptides containing heteroatoms different from O, S, or N
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K9/00Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K9/001Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof the peptide sequence having less than 12 amino acids and not being part of a ring structure
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Description

Oppfinnelsen angår fosfoinositolglykan-peptider med insulin-lignende virkning, fremgangsmåte for deres fremstilling og anvendelse, for fremstilling av et legemiddel for behandling av diabetes mellitus eller ikke insulinavhengig diabetes.
Insulin utøver en lang rekke virkninger på insulinsensitivt vev. En fremtredende effekt er den raske reduksjon av glukosenivået i pattedyr, når insulin blir anvendt. Dette blir bevirket ved et raskt opptak av glukose fra blod gjennom muskel- og fettceller. Insulin aktiverer videre glykogen-syntetase og hemmer lipolysen. Insulin fremmer proteinsyntese av aminosyrer og forsterker induksjon av pyruvatdehydrogenase og fosfofruktokinase og hemmer dannelse av bestemte enzymer i glukoneogenesen, som pyruvatkarboksylase og fruktose 1,6-bifosfatase.
Diabetes type II, ikke insulinavhengig diabetes, innledes med en insulinresistens i perifert vev som muskel- eller fettvev. Den derigjenom reduserte glukoseutnyttelsen blir forårsaket av manglende insulinstimulering av glukosetransport og etterfølgende metabolske prosesser (glukogenese, lipogenese). Denne multiple resistensen viser tydelig en effekt som ligger på reseptor- eller post-reseptor-planet, dvs. før oppnåelse av "second messenger", (Garvey, Diabetes/Metabolism Reviews, 5, (1989), 727-742).
Inntil nå er det ikke kjent noen virkestoffer, som omgår insulinreseptoren og til tross for det viser en insulin-lignende virkning.
Det er nå funnet at fosfoinositolglykanpeptider, som kan bli utvunnet fra adenosin-3',5'-cyklisk-monofosfat (cAMP)-bindeprotein, viser in vitro insulinlignende virkning og viser også insulinlignende virkning på insulin-resistent vev.
Oppfinnelsen angår således fosfoinositolglykan-peptider
med insulin-lignende virkning, kjennetegnet ved at det inneholder en aminosyrerest eller en tripeptidrest som er kovalent bundet til fosfoinositolglykan eller etanolamin og/eller fysiologisk godtagbare salter av fosfoinositol-glykan-peptid.
Under begrepet insulin-resistent vev forstår man f.eks. rotte-fettceller, som ikke lenger besitter noen insulin-reseptor. cAMP-bindeprotein er proteinet, som besitter den egenskapen at den kan binde adenosin-3',5'-cyklisk monofos-fat.
De til nå kjente strukturdata på fosfoinositolglykanpeptider ifølge oppfinnelsen oppviser en fosfoinositol med en glykandel, som inneholder galaktose, glukosamin og mannose, som er koplet over en f osf oryletanolaminrest med en amidbinding på karboksylenden til et peptid. Dette finnes igjen på den som membrananker tjenende kovalent bundede glykolipi-det i lignende struktur i plasmamembranprotein i høyere eukaryoter (Roberts et al., J. Biol. Chem, 263, (1983), 18776-18784). Glykanresten inneholder glukosamin, galaktose, mannose og minst to fosfatrester/mol. Peptidet besitter en sekvens -Asn-Cys-Tyr- og er med karboksylenden i asparaginsyre bundet over en amidbinding til aminogruppen i f os-foinositolglykan. Fosfoinositolglykandelen er nødvendig for aktivitet. Peptidet forsterker den insulinlignende virk-ningen. Videre viser det seg at ikke bare det fullstendig fosfoinositolglykanpeptidet viser insulinlignende virkning, men også delstrukturer, f.eks. vist ved forkortede peptid-sekvenser, som er bundet på fosfoinositolglykan har insulin-lignende virkning eller bare fosfoinositolglykan uten peptid.
Egnede fysiologisk godtagbare salter av fosfoinositolglykan-peptid ifølge oppfinnelsen er f.eks. alkali-, jordalkali-eller ammoniumsalter, så vel som slike fysiologisk godtagbare, organiske ammonium- eller trietylaminbaser.
Fremstilling av fosfoinositolglykanpeptidene ifølge oppfinnelsen foregår ved at man
a) anvender gjærceller, som inneholder adenosin-3',5'-cyklisk-monofosfat-bindende protein, b) isolerer adenosin-3',5'-cyklisk-monofosfat-bindende protein, c) avspalter proteindelen fra adenosin-3',5'-cyklisk-monofos-fat-bindende protein og eventuelt renser det dannede
glykosyl-fosfatidylinositolpeptid
d) avspalter fra det i fremgangsmåtetrinn c) dannede produkt et mono- eller diacylglyserin og e) isolerer det i fremgangsmåtetrinn d) dannede fosfoinositolglykan-peptid og omdanner eventuelt til tilsvarende
fysiologisk godtagbare salter.
cAMP-bindeproteiner kan bli utvunnet fra tallrike organismer, f.eks. av mikroorganisme, planter, sopp eller dyreorganer. Det er f.eks. også egnet med gjæren Saccharomyces cerevisiae, særlig DSM 6649.
Fremstilling av cAMP-bindeprotein ved Saccharomyces cerevisiae foregår ved fermentering i en næringsoppløsning, som inneholder en .karbon- og en nitrogenkilde, så vel som vanlige uorganiske salter. cAMP-bindeprotein blir fortrinnsvis anriket i plasmamembran i gjær.
I f remgangsmåtetrinn a) går man på beste måte frem som følger. Dannelse av cAMP-bindeprotein i Saccharomyces cerevisiae forløper godt i vanlige næringsoppløsninger for Saccharomyces cerevisiae. Dyrkingen foregår aerobt, f.eks. under risting eller omrøring i ristekolber eller fermentorer, eventuelt under innføring av luft eller oksygen. Den kan bli gjennomført i et temperaturområde fra ca. 18 til 35° C, fortrinnsvis ved ca. 25 til 30°C, særlig 28 til 30°C. pH-området bør ligge mellom 2 og 8, fortrinnsvis mellom 3 og 7. Man dyrker gjær under disse betingelsene generelt inntil ca. IO<7>celler/ml næringsoppløsning.
I fremgangsmåtet r inn b) går man frem på beste måte ved at gjærcellene for isolering av cAMP-bindeprotein blir adskilt fra næringsmedium og vasket med buffer. Isoleringen foregår f.eks. som beskrevet av Muller og Bandlow (Biochemistry, 28,
(1989), 9957-9967). Her blir gjærcellene enzymatisk (zymolyase) omdannet i sferoplaster og oppdelt med en homogenisa-tor i nærvær av proteasehemmere under avkjøling (0-4°C). Gjærlysatet blir sentrifugert og cellebunnfallet blir vasket med buffer og sentrifugert på nytt. Supernatantene blir blandet og renset i en percoll-gradient (28% percoll) og sakkarosegradienter (15 til 28% sakkarose). Gjennom dette sentrifugeringstrinnet blir cytoplasma, plasmamembran, mikrosomer og mitokondrier adskilt fra hverandre.
Fra plasmamembranfraksjonen blir cAMP-bindeprotein bundet f.eks. ved en N^-(2-aminoetyl)-cAMP-sefarose-søyle og cAMP-bindeprotein blir eluert og avsaltet med cAMP fra søylen.
I fremgangsmåtet r inn c) går man frem på beste måten ved at proteindelen i cAMP-bindeprotein blir enzymatisk avspaltet. Til enzymatisk, spalting anvender man f.eks proteaser, som pronase, endoprotease Lys-C (Lysobacter enzymogenes) eller V8 protease (Staphylococcus aureus). Dermed oppnår man nedbryting av proteindelene. Med protease V8 oppnår man en glykosyl-fosfatidylinositol med peptidsekvensen Asn-Cys-Tyr; inkubasjon med proteasen pronase gir et glykosyl-fosfatidylinositol-peptid, der peptiddelen bare består av aminosyren Asn.
Proteasen blir f.eks. utfelt med syrer som trikloreddiksyre. Glyosyl-fosfatidylinositol-peptider blir renset ved sentrifugering fra protease, konsentrert ved hjelp av en fenylse-farose-søyle og renset ved tynnsjiktkromatografi.
I fremgangsmåtetrinn d) går man på beste måten frem ved at den på glykosylfosfatidylinositol-peptidet hengende mono-eller dlacylglyserlnrest enzymatisk spaltes av og på den måten frisetter fosfolnositolglykan-peptidet. For enzymatisk avspalting anvender man f.eks. fosfolipaser som fofatidylino-sitol spesifikk fosfolipase C (Bacillus cereus). Således oppnår man avspalting av mono- eller diacylglyserinrester, som over fosfatgruppen er bundet til myo-inositol. Den glyserinholdige resten blir ved proteasebehandling i fremgangsmåtetrinn c) ikke avspaltet. Fremgangsmåtetrinnene c) og d) kan også bli gjennomført i en omvendt rekkefølge.
Den enzymatiske reaksjonen i fremgangsmåtetrinnene c) og d)
blir gjennomført under betingelser som er gunstig for den enzymatiske reaksjonen. På grunn av de kjente reaksjonsbetingelsene for de nevnte enzymene, vil det ikke være vanskelig for en person innenfor fagområdet å finne de optimale reaksjonsbetingelsene.
I f remgangsmåtetrinn e) går man frem på beste måten ved at fosfolipaser blir utfelt med syrer som trikloreddiksyre. Fosfoinositolglykan-peptid blir adskilt gjennom sentrifugering av fosfolipase, renset med en biogel P-4 søyle og konsentrert gjennom tynnsjiktkromatografi.
Fosfoinositolglykan-peptidene ifølge oppfinnelsen og deres fysiologisk godtagbare salter tjener i første rekke som virkestoffer for farmasøytiske tilberedninger for behandling av diabetes mellitus eller ikke-insulinavhengig diabetes.
Oppfinnelsen angår derfor også et legemiddel, som er kjennetegnet ved et virksomt innhold av fosfoinositolglykan-peptid .
Legemidlet er fortrinnsvis en oppløsning eller suspensjon til injeksjonsf ormål med en pH-verdi mellom ca. 3,0 og 9,0, fortrinnsvis mellom 5,0 og 8,5 og inneholder et egnet isotonisk middel, et egnet konserveringsmiddel og eventuelt en egnet buffer, så vel som eventuelt også et depotprinsipp, alle i steril vandig oppløsning eller suspensjon. Samtlige tilberedningsbestanddeler foruten virkestoffet danner tilberedningsbaereren.
Oppfinnelsen er også rettet mot en anvendelse av fosfoinositolglykan-peptid for fremstilling av et legemiddel for behandling av diabetes mellitus eller ikke-insulinav-hengige diabetes.
Egnede isotoniske midler er f.eks. glycerin, glukose, mannit, NaCl, kalisum- eller magnesium-forbindelser som f.eks. CaClg eller MgCl2.
Egnede konserveringsmidler er f.eks. fenol, m-cresol, benzylalkohol og/eller p-hydroksybenzosyreester.
Når det gjelder buffersubstanser, særlig til innstilling av en pH-verdi mellom ca. 5,0 og 8,5 kan det f.eks. bli anvendt natriumacetat, natriumcitrat eller natriumfosfat. Ellers er det til innstilling av pH-verdi også egnet med fysiologisk godtagbare fortynnede syrer (typisk HC1) hhv. lut (typisk NaOH).
Når formålet er variasjon av virkningsprofilen til legemidlet ifølge oppfinnelsen kan også modifiserte (sml. EP-B 132 769 og EP-B 132 770) og/eller umodifiserte insuliner, fortrinnsvis kalv-, svin- eller humaninsulin, særlig humaninsulin blir blandet til.
Legemidlet blir fremstilt ved at man bringer fosfoinositol-glykan-peptidet og/eller minst en av dens fysiologisk godtagbare salter, eventuelt sammen med modifiserte og/eller umodifiserte insulin(derivat)er, med en fysiologisk godtagbar bærer så vel som eventuelt med egnede tilsats- og hjelpe-stoffer i egnet administreringsform.
Oppfinnelsen blir i de følgende eksemplene nærmere forklart.
Eksempel 1
Fermentering av Saccharomyces cerevisiae DSM 6649
Saccharomyces cerevisiae DSM blir dyrket aerobt i en fermentor. Følgende mediumsbestanddeler er inneholdt i en liter vann:
pH blir innstilt med KOH til 5,5. Luftingen foregår med luft 1 1/1 fermentorvolum. Cellene blir dyrket til en celletett-het på 1 x 10^ celler/ml dyrkingsoppløsning; utbytte ca. 3 g fuktvekt pr. 1. dyrkingsoppløsning. Cellene blir samlet ved sentrifugering (5 min 3000 x g) og vasket med f osf atbuf fer, pH 6.
Eksempel 2
Isolering av cAMP-bindeprotein
Cellene fra eksempel 2 blir enzymatisk omdannet (zymolyase, 2000, Seikagaku Kogyolo, Tokio) i sferoplaster, og oppdelt med en glasshomogenisator (Arthur H. Thomas og Co.) ved 0°C. Følgende isolasjonstrinn foregår i nærvær av proteasehemmere (fenylmetansulfonylfluorid (PMSF), leupeptin, aprotinin, makroglobulin, trypsin-hemmer; Boehringer Mannheim). Cellelysatet blir sentrifugert (1000 x g, 3 min, 4°C), cellesedimentet blir vasket med SEM-buffer (0,25 M sakkarose, 0,5 mM etylendiamintetraeddiksyre (EDTA), 20 mM 3-[N-morfolino]-propansulfonsyre (M0PS)/K0H, pH 7,4) og sentrifugert på nytt. Supernatantene blir blandet og sentrifugert i en percoll-gradient (Pharmacia, Freiburg; 28% percoll, SEM-buffer, 0,5 mg protein/ml) (18000 x g, 15 min, 4<0>C). I denne gradienten blir cytoplasma, plasmamembran, mikrosomer og mitokondrier adskilt fra hverandre. Plasmamembranen floterer i den øvre tredjedelen av gradienten. De blir tatt ut av gradienten med en sprøyte, fortynnet med fem gangers volum til SEM-buffer og sentrifugert (48000 x g, 30 min, 4°C). Sedimentet blir suspendert i MPOS-buffer (5 mg protein/ml) og inkubert med N-[<3>H]acetyl-konkanavalin A (Amersham Buchler, Braunschweig; 1 mg protein med 55 pCi, i 500 jjI MOPS-buffer (Boehringer Mannheim), 20 mM, pH 7,4, 0,5 mM EDTA, 50 mM KC1, 5 mM CaClg. 200 jjg kalveserumalbumin; Behring Werke, Marburg) i ultralydbad i 60 minutter, 4°C. Binding av konkanavalin A tjener som markør. Suspensjonen blir pipitert på en sakka-rosegradient (15 til 28% sakkarose i MOPS-buffer) og sentrifugert (25000 omdreininger pr. minutt, 90 min, 4°C, Beckmann SW 27 Rotor). Sakkarosegradienten blir fraksjonert og de radioaktive fraksjonene (ca. 23% sakkarose) blir blandet sammen, fortynnet tre ganger med en MOPS-buffer (50 mM konkanavalin A; Sigma Deisenhofen, 250 mM KC1) og sentrifugert (200000 x g, 60 min, 4°C, Beckmann TL-100-rotor). Sedimentet blir vasket med SEM-buffer (250 mM KC1), sentrifugert og suspendert på nytt i SEM-buffer uten KC1 (2,5 mg protein/ml).
Ca. 500 jjg av plasmamembranproteinet blir gjort oppløselig i buffer (25 mM MOPS/KOH, pH 7,0, 150 mM NaCl, 4 mM MgCl2, 0,4 mM EGTA (etylenglykol-bis-(p-aminoetyleter)tetraeddiksyre), 0,5 mM DTT (dit iotrei tol), 0,5% desoksycholat, 0,1 mM IBMX (isobutylmetylxantin), 0,1 mM PMSF, 50 jjM leupeptin, 0,1 mM aprotinin (2 mg/ml). Oppløsningen blir påført en 2 ml N<6->(2-aminoetyl)-cAMP-Sepharose-søyle (Pharmacia, Freiburg) ved 4°C, og blir ekvilibriert med samme buffer. Søylen blir vasket fem ganger med 2 ml buffer hver gang (25 mM MOPS/KOH, pH 7,2, 100 mM Na-citrat, 5 mM DTT, 5 mM MgCl2, 150 mM NaCl, 250 mM sakkarose, 7,5% etylenglykol (Merck, Darmstadt), 10% glycerln, 1 mg/ml kalveserumalbumin, 1 mM IBMX). Det blir eluert ved 4°C med 2 ml av samme buffer som inneholder ytterligere 100 jjM cAMP. De første 250 pl av eluatet blir avsaltet ved sentrifugering i en 1 ml Sephadex G-25-søyle, som var blitt ekvilibriert med en buffer (25 mM MOPS/KOH, pH 7,0, 50 mM KC1, 5 mM MgCl2, 10 mM DTT, 50 jjM EDTA, 50 jjM PMSF, 0,1% desoksycholat, 5% glyserin). Det avsaltede materialet blir inkubert med samme volum 8% polyetylenglykol 4000 (Pharmacia, Freiburg) i buffer (10 mM MOPS/KOH, pH 7,2, 1 mM EDTA) i 30 minutter ved 4°C. Etter 15 minutters sentrifugering blir sedimentet oppløst i en buffer (20 mM MOPS/KOH, pH 7,2, 1 mM EDTA, 100 jjM PMSF, 0,5% desoksycholat)
(2 mg protein/ml).
Eksempel 3
Fremstilling av fosfolykan-peptider
a) Spalting med pronase (Streptomyces griseus; Boehringer Mannheim): 100 pg cAMP-bindeprotein blir inkubert i 10
timer ved 50°C i 1 ml 0,1 M N-2-hydroksyetylpiperazin-N-2-etansulfonsyre .(HEPES)/K0H (pH 8,0), 15 mM CaCl2, 1% triton X-100 (Boehringer Mannheim) med 450 pg/ml pronase. Etter tilsetning av 1% SDS (natriumdodecylsulfat) blir inkubasjonen fortsatt med en annen prøve pronase i 7 timer ved 50° C. Automatisert Edmann-nedbryting viser at proteasenedbrytingen fører til fosfoinositolglykan med amidlignende bundet asparagin til aminoenden i etanolamin. Dette fosfoinositol-glykan-peptidet blir i det følgende betegnet med PIG-N.
b) Spalting med endoproteinase Glu-C, EC 3.4.21.19, (V8 protease) (Stafylococcus aureus; Boehringer Mannheim): 100
jjg cAMP-bindeprotein blir i 18 timer ved 37°C inkubert i 1 ml 20 mM (NH4)2C03(pH 7,8), 0,5% oktylglykosid (Boehringer Mannheim) med 300 jjg V8 protease.
Automatisert Edmann-nedbryting viser at V8 protease-spalting fører til fosfoinositolglykan med peptidet Asn-Cys-Tyr. Aminosyren asparaginsyre er med karboksyterminalen bundet til fosfoinositolglykan. Forbindelsen fosfoinositolglykan med tripeptid Asn-Cys-Tyr blir i det følgende betegnet med PIG-NCY.
c) Spalting med endoprotease Lys-C (Lysobacter enzymogenes; Boehringer Mannheim): 100 jjg cAMP-bindeprotein blir i18timer ved 37°C inkubert i 0,5 ml 50 mM (NH4)2C03(pH 8,2), 0,5% oktylglykosid med 55 pg endoprotease Lys-C.
Automatisert Edmann-nedbryting viser at endopoteasen Lys-C fører til fosfoinositolglykan med peptidet Asn-Cys-Tyr-Glu. Bindingen av peptidet til fosfoinositolglykan foregår over karboksyenden til asparagin. Den blir i det følgende betegnet med PIG-NCYE.
d) Fjerning av karboksy-terminal aminosyre: pronase-spaltet cAMP-bindeprotein (se a) blir underkastet en manuell
Edmann-nedbryting. Det dannede aminosyre-frie fosfoinositol-glykan blir i det følgende betegnet med PIG.
Etter proteolytisk spalting blir proteasen fjernet ved utfelling med 5% trikloreddiksyre (TCA). Etter sentrifugering (15 min, 10000 x g) blir de i supernatanten inneholdende fosfoinositolglykan-peptidderivatene og også fosfoinositol-glykan fra Edmann-nedbrytingen konsentrert og renset ved binding til en fenylsepharose-søyle. Etter eluering med 2% oktylfenol(etylenglykoleter) (TX-100) blir fosfoinositol-glykan-peptidderivatene renset ved tynnsjiktkromatografi med to forskjellige oppløsningsmiddelsystemer. Etter det første forløp i et surt system (kloroform/aceton/metanol/iseddik/- vann 10 : 4 : 2 : 2 : 1) blir fosfoinositolglykan-peptidene nær påføringsstedet eluert med metanol på en silikagelplate (type 60) og deretter kromatograf ert på nytt i et annet forløp i et basisk system (kloroform/metanol/ammoniakk/vann 45 : 45 : 3,5 : 10). Fosfoinositolglykan-peptidderivatene blir eluert på nytt fra platen (Rf = 0,45) og ekstrahert med kloroform/metanol (2 : 1). Den organiske fasen blir vasket og inndampet og materialet blir suspendert i fosfatbuffer med 0,5% TX-100.
e) De i a) til d) oppnådde fosfoinositolglykanene eller fosfoinositolglykan-peptidene blir inkubert med 10 enheter
fosfatidylinositol-spesifikk fosfolipase C, EC 3.1.1.5, (Bacillus cereus; Sigma, Deisenhofen) i 0,2 ml 0,2 M kaliumfosfat (pH 7,2), 2 mM DTT, 10 mM MgCl2, 50 mM NaCl, 0,05% TX-100 i 2 timer ved 37°C. Etter tilsetning av 10 mM EDTA blir spaltningsproduktet ved tynnsjiktkromatografi skilt fra hverandre i basis løpemiddelsystem (se d). Materialet i umiddelbar nærhet av påføringsstedet blir eluert fra platen og blandet med 2% poly(etylenglykol)g-mono-(oktylfenyleter)
(TX-114). Ved oppvarming og sentrifugering blir det innledet en faseadskillelse. Den vandige fasen blir konsentrert i Speedvac konsentrator.
f) For standardisering av fosfoglykan-peptidene blir nitrogenet i de frie glukosaminene fra materialet fra
fremgangsmåtetrinn a) til d) overført ved permetylering i et radioaktivt markert trimetylammonium-kation. Videre blir prøven tørket i vakuum og blandet med 100 pl dimetylsulfok-sid. Etter ultralydbehandling (1 min) blir 10 mg NaOH og 40 pl [<125>J]metyljodid (0,2 pCi; NEN-Dupont, Dreieich) tilsatt. Etter omrøring i 45 minutter ved 25°C blir oppløsningsmidlet fjernet i Speedvac og 400 pl H20 blir tilført. Prøven blir vasket tre ganger med kloroform og kloroform-ekstraktet tre ganger med H20. Kloroformen blir avdampet under N2. Permety-leringen foregår lineært og kvantitativt over et vidt konsentrasjonsområde. I testene på insulinaktig virkning blir ekvivalente volumer (lik dpm-verdi) anvendt til fosfoinositolglykan-peptider (1-100 "arbitrary units"). g) Inkubering av det oppnådde materialet fra a) til d) med salpetersyre fører til spalting av fosfoinositolglykaner.
Eksempel 4
Strukturtrekk ved fosfoinositolglykan-peptider
a) Gjærceller blir påvist som i eksempel 1 i nærvær av radioaktivt markerte substrater (Firma NEN-Dupont, Dreieich):
stearinsyre
myo-inositol
glucosamin eller
mannose.
De samlede plasmamembranfunksjonene eller det rensede cAMP-bindeprotein ved affinitetskromatografi (se eksempel 2) blir underkastet en SDS-polyakrylmidgelelektroforese. Farging med coomassi blå eller ved autoradiografi av komponentene viser at alle ovenfornevnte radioaktive komponenter blir bygget inn i fosfoinositolglykan-peptidet. b) Det oppnådde fosfoinositolglykan-peptidet fra eksempel 3a) blir videre spaltet kjemisk og enzymatisk. Spaltingsproduktet blir analysert ved tynnsjiktkromatografi og måling av .radioaktivitetsfordeling ([<3>H]stearinsyre og [<14>c]myo-inositol). Den blivende radioaktive markerte strukturen blir eluert fra platen og underkastet den neste spaltingsreaksjonen. Fra den oppstående struktur etter pronase-spalting blir det ved deaminering med salpetersyre frisatt fosfatidylinositol (PI). Dette blir omdannet ved fosfolipase D til fosfatidylsyre eller ved fosfolipase C til diacylglyserol. Med dette går myo-inositol-markeringen tapt, men den radioaktive markeringen ved stearinsyre blir imidlertid beholdt. Fosfatidylsyre blir deretter overført ved acetolyse i diglyseridacetat. Fra denne struktur og også fra diacylglycerol blir stearinsyre endelig frisatt ved alkalisk hydrolyse.
c) Den etter eksempel 3a) og 3e) oppnådde struktur blir tørket og behandlet med HF (60% 1 vann, 16 timer, 0°C) og de
oppnådde oligosakkaridene blir hydrolysert med 2M trifluor-eddiksyre (4 timer, 100°C). Deretter blir reaksjonsoppløs-ningen tørket og det foreliggende sukkeret redusert (1% NaBH4, i 0,1 M ammoniumhydroksid, 1 time, 37°C) og deretter acetylert (1:1 blanding av pyridin og eddiksyreanhydrid, 1 time, 60°C). Gasskromatografi foregår med en gasskromatograf fra firma Packard, modell 428; søyle 100/120 supelcoport (Supelco, Bellefonte, USA) ved 60°C. Det ga den følgende kvalitative sammensetningen:
Mannose, galaktose, myo-inositol og glukosamin.
d) Den etter eksempel 3a) og 3e) oppnådde struktur ble som i c) hydrolysert med HF (60° C i vann) og 4 M HCL i 16
timer ved 100°C. En adskillelse i en aminosyreanalysator (Biotronic, LC 6001) ga følgende bestanddeler:
Asparginsyre, NH3, etanolamin og glukosamin.
Med henblikk på hydrolysebetingelsene, er forholdet av asparaginsyre og NH3, så vel som resultatene etter eksempel 3a) som den i nativ fosfoinositolglykan-peptid foreliggende aminosyre.
Eksempel 5
Biologisk aktivitet til fosfoinositolglykan-peptidene (PGP) ifølge oppfinnelsen blir bestemt ved hjelp av preparativ isolerte fettceller og difragma-stykker fra rotte.
Begrepet "PIG" betyr fosfoinositolglykan uten peptid, oppnådd fra eksempel 3d) og 3e); "PIG-N" betyr fosfoinositolglykan med asparagin, oppnådd fra eksempel 3a) og 3e); "PIG-NCY" betyr fosfoinositolglykan med peptidet Asn-Cys-Tyr, oppnådd etter eksempel 3b) og 3e); "PIG-NCYE" betyr fosfoinositolgly kan med peptidet Asn-Cys-Tyr-Glu, oppnådd fra eksempel 3c) og 3e); "PIG-NCY (na)" betyr materialet som blir oppnådd fra eksempel 3b) og 3e), og som blir spaltet med salpetersyre (se eksempel 3g). Begrepet "basal" står for aktivitet uten stimulering, insulin står for humaninsulin og dpm står for radioaktiv spalting pr. minutt.
Prepareringen av fettceller fra rotte foregår som følger: Fettvev fra bitekstiklene (Wistar-rotte, 160-180 g, ingen forinnskrenkning) blir spaltet med kollagenase og de enkelte fettcellene blir vasket flere ganger ved flotasjon.
Preparering av diafragma-stykker fra rotte:
Fra flere ganger vaskede hemi-diafragma (Wistar-rotte, 60-70 g, ingen forinnskrenkning) blir det stanset ut små vevstykker (5 mm diameter).
For inaktivering av insulinreseptorer fra rotte-fettceller blir cellene behandlet med 10 til 40 pg/ml trypsin. Etter tilsetning av proteasehemmere blir cellene vasket tre ganger ved flotasjon og inkubering fortsatt i 15 minutter ved 37°C. Disse cellene blir deretter benyttet for test av stimulering av lipogenese med fosfoinositolglykan-peptider. En kontroll-inkubering med insulin viser at de trypsin-behandlede cellene bare oppviser en mindre insulin-stimulerbar lipogenese og dermed bare et begrenset antall funksjonelle insulinreseptorer .
For inaktivering av insulinreseptoren fra rottediafragma blir vevsstykkene under jevn gassbehandling med Og inkubert i KRH-buffer (0,1 mM glukose i nærvær av 50 jig/ml forbolester tetradekanoylforbolacetat) i 90 minutter ved 25 "C. Deretter blir vevsstykkene vasket to ganger med KRH-buffer og anvendt for de aktuelle testene.
I de etterfølgende forsøkene blir forsøksresultater som er målt med vev eller celler, der insulinreseptoren er blitt inaktivert, angitt i parantes. Ved ingen av de etterfølgende testene viste PIG-NCYE noen virkning.
a) Glykogenese
Denne testen bestemmer insulin-stimulerbar glykogensyntese i
muskelceller, som omfatter glukosetransport over plasmamembran og omdannelse av glukose til glykogen inkludert den funksjonelle insulin-signaloverføringskaskaden.
Diafragmastykker blir inkubert i KRH-buffer med 50 jjM D-[U-<14>C]glukose i nærvær eller fravær av insulin og PGP i 15 minutter ved 37°C. Etter avsuging av medium blir vevsstykkene vasket intensivt, innfrosset ved -70°C og deretter homogenisert ved 2°C i polytron-spalter. Homogenatet blir sentrifugert (2000 g) og supernatanten blir pipettert på filterpapir. For bestemmelse av dannede glykogener blir filteret overført i TCA (5%), vasket med etanol og aceton, tørket og radioaktivitet blir bestemt over scintillasjonsmåling ([<14>C]glykogen [dpm<*>10-<3>]). Enhetene for fosfoinositolglykan-peptider er arbitary units, definert som i eksempel 3f).
b) Glykogensyntese
Testen bestemmer insulin-stimulerbar omdannelse av aktiv
glukose (UPD-glukose) i glykogen (glykogensyntase-aktivitet) inkludert en funksjonell insulin-signaloverføringskaskade. Glukose-transport og aktivering av glukose blir omgått (til forskjell fra måling av glykogensyntese, se a).
Diafragmastykker blir inkubert med D-glukose (0,1 mM) i nærvær eller fravær av insulin og PGP i 30 minutter ved 37°C. Et homogenat blir fremstilt og sentrifugert (20000 x g). Supernatanten blir inkubert med U-[<14>C]UDP-glukose (0,3 mM) i nærvær av enten 0,1 mM eller 10 mM glukose-6-fosfat i 60 minutter ved 37°C. Blandingen blir overført på filterpapir og filteret blir behandlet som over. Glykogensyntase-aktiviteten blir beregnet som fraksjonell hastighet mellom l-form av enzym (uavhengig av glukose-6-fosfat, defosforylert, tilsvarer mengden av aktivert enzym i homogenat) og D-form av enzym (avhengig av glukose-6-fosfat, fosforylert, tilsvarer samme mengde av aktiverbart enzym i homogenat) ([<14>C]glykogen [dpm*10-3] ).
c) Lipogenese
Denne testen bestemmer insulin-stimulerbar omdannelse av
glukose i toluol-oppløselige produkter (triglyserider, fosfolipider, fettsyrer), som krever glukose-transport og triglyserid (glyserin-3-P-syntese, forestring)-/fosfolipid-/fettsyre-syntese inkludert insulin-signaloverføringskaskade.
Rotte-fettceller i KRH-buffer blir inkubert med D-[3-<3>H]glukose (0,2 mM eller 1 mM konsentrasjon) i nærvær eller fravær av insulin og PGP i 90 minutter ved 37 °C. Ved tilsetning av en toluol-oppløselig scintillasjonsblanding blir cellene utelukket og lipidene av vannoppløselige produkter og inkubasjonsmedium adskilt. Etter faseskillelse blir den i lipid inkorporerte radioaktivitet bestemt ved scintillasjonsmåling direkte uten fjerning av vandig fase ([<3>H]lipid [dpm<*>10-<3>]).
d) Intrinsisk glukosetransportaktivitet
Isolerte plasmamembranvesikler blir utvunnet fra rottefett-celler (se eksempel 5), der fettcellene blir vasket to ganger i homogen!seringsbuffer (20 mM trihydroksyaminometan (tris)/HCl, pH 7,4, 1 mM, EDTA, 0,25 M sakkarose) og deretter homogenisert ved 4°C i 20 ml med samme buffer (glasshomogenisator med teflon-stempel).
Homogenisatet blir sentrifugert (16000 x g, 15 min), sedimentet blir suspendert i den samme bufferen og sentrifugert på nytt. Sedimentet blir suspendert i 5 ml homogeni-ser ingsbuf f er og lagt på en sakkarose-pute (1,12 M sakkarose, 20 mM tris/HCl, pH 7,4, 1 mM EDTA), etter sentrifugering (100000 x g, 70 min) blir interfasen tatt ut med plasmamembranvesikler med en sprøyte, fortynnet med 45 ml buffer og sentrifugert på nytt (48000 x g, 45 min). Sedimentet blir suspendert i 10 ml buffer, sentrifugert på nytt og suspendert på nytt i 3 ml buffer.
Isolerte plasmamembranvesikler blir inkubert i nærvær eller fravær av insulin/PGP i 30 min. ved 25° C. Deretter blir vesiklene inkubert med 50 pM D-[3-<3>H]-glukose og L-[l-<14>C]glukose med samme spesifikke radioaktivitet i 90 sekunder ved 25°C. Blandingen blir raskt suget av over nitrocellulose-filter. Filteret blir grundig vasket og tørket. Radio-aktiviteten blir bestemt ved væskescintillasjonsmåling. Spesifikk transport (D-[<3>H]glukose/L-<14>C]glukose [dpm*10~<3>] blir beregnet som differanse mellom [<3>H]- og [<14>C]-radioak-tiviteten .
e) Proteinsyntese
Til forskjell fra den foregående bestemmelsen av den målte
metabolske insulinvirkningen hører stimulering av proteinsyntese til langtidsvirkning av insulin (som veksthor-mon). Analysen inkluderer insulin-signalkaskaden.
Rotte-fettceller blir inkubert i "Dulbecco's modified essential medium" (DMEM), fattig på leusin, i primærkultur med 50 pM L-[<3>H]-leusin i nærvær av insulin og PGP i 4 timer ved 37"C. Cellene blir adskilt ved oljesentrifugerings-teknikken fra omgivende medium og blandet med vannforlikelig scintillasjonsblanding. Etter sentrifugering blir protein-bunnfallet vasket i aceton, suspendert i 1% SDS og blandet med scintillasjonsblanding. Celleassosiert radioaktivitet, bestemt ved scintillasjonsmåling tjener som et mål på proteinsyntese og aminosyretransport gjennom plasmamembranen ([<3>H]leucin [dpm^lO-<4>]).

Claims (9)

1. Fosfoinositolglykan-peptid med insulin-lignende virkning,karakterisert vedat det inneholder en aminosyrerest eller en tripeptidrest som er kovalent bundet til fosfoinositolglykan eller etanolamin og/eller fysiologisk godtagbare salter av fosfoinositol-glykan-peptid.
2. Fosfoinositolglykan-peptid ifølge krav 1,karakterisert vedat det inneholder minst en glykosamin-, galaktose-, mannose-, myoinositol-, fosforsyre—, etanolamin-rest og peptidrest med sekvensen Asn-Cys-Tyr.
3. Fosfoinositolglykan-peptid ifølge krav 1 eller 2,karakterisert vedat det minst inneholder fosfoinositolglykan eller fosfoinositolglykan og asparagin som peptidrest.
4. Fremgangsmåte for fremstilling av fosfoinositolglykanpeptid ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 3,karakterisert vedat den omfatter at man a) anvender gjærceller, som inneholder adenosin-35'-cyklisk-monofosfat-bindende protein, b) isolerer adenosin-3',5'-cyklisk-monofosfat-bindende protein, c) avspalter proteindelen fra adenosin-3',5'-cyklisk-monofos-fat-bindende protein og eventuelt renser det dannede glykosyl-fosfatidylinositolpeptid d) avspalter fra det i fremgangsmåtetrinn c) dannede produkt et mono- eller diacylglyserin og e) isolerer det i fremgangsmåtetrinn d) dannede fosfoino sitolglykan-peptid og omdanner eventuelt til tilsvarende fysiologisk godtagbare salter.
5. Fremgangsmåte ifølge krav 4,karakterisertved at rekkefølgen i fremgangsmåtetrinn c) og d) blir ombyttet.
6. Fremgangsmåte ifølge et eller flere av kravene 4 til 5,karakterisert vedat det blir anvendt Sacharromyces cerevisae DSM 6649, endoproteinase Glu-C, EC 3.4.21.19 og/eller fosfolipase C, EC 3.1.1.5.
7. Legemiddel.karakterisert vedat det har et virksomt innhold av fosfoinositolglykan-peptid ifølge et eller flere av kravene 1 til 3.
8. Legemiddel ifølge krav 7,karakterisertved at det inneholder et insulin, fortrinnsvis kalv-, svin- eller humaninsulin.
9. Anvendelse av fosfoinositolglykan-peptid ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 3 for fremstilling av et legemiddel for behandling av diabetes mellitus eller ikke-insulinav-hengige diabetes.
NO923252A 1991-08-20 1992-08-19 Fosfoinositolglykan-peptid med insulinlignende virkning, fremgangsmÕte for fremstilling, legemiddel og anvendelse av forbindelsen for fremstilling av et legemiddel NO303452B1 (no)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE4127495 1991-08-20

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO923252D0 NO923252D0 (no) 1992-08-19
NO923252L NO923252L (no) 1993-02-22
NO303452B1 true NO303452B1 (no) 1998-07-13

Family

ID=6438668

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO923252A NO303452B1 (no) 1991-08-20 1992-08-19 Fosfoinositolglykan-peptid med insulinlignende virkning, fremgangsmÕte for fremstilling, legemiddel og anvendelse av forbindelsen for fremstilling av et legemiddel

Country Status (22)

Country Link
US (1) US5624903A (no)
EP (1) EP0532915B1 (no)
JP (1) JP3361126B2 (no)
KR (2) KR100264623B1 (no)
AT (1) ATE147407T1 (no)
AU (1) AU656396B2 (no)
CA (1) CA2076424C (no)
CZ (1) CZ290341B6 (no)
DE (1) DE59207835D1 (no)
DK (1) DK0532915T3 (no)
ES (1) ES2096686T3 (no)
FI (1) FI102842B (no)
GR (1) GR3022895T3 (no)
HR (1) HRP940834B1 (no)
HU (1) HU210431B (no)
IL (1) IL102859A (no)
NO (1) NO303452B1 (no)
SG (1) SG46639A1 (no)
SK (1) SK281333B6 (no)
TW (1) TW224104B (no)
YU (1) YU66892A (no)
ZA (1) ZA926232B (no)

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE184611T1 (de) * 1991-11-29 1999-10-15 Hoechst Ag Peptide mit insulinartiger wirkung
ES2159283T3 (es) * 1992-02-29 2001-10-01 Aventis Res & Tech Gmbh & Co Complejos que contienen glicosil-fosfatidilinositol-proteinas y derivados de acido colanico, procedimiento para su preparacion y su utilizacion.
US5652221A (en) * 1994-11-07 1997-07-29 The University Of Virginia Patent Foundation Method of treating defective glucose metabolism using synthetic insulin substances
GB9618929D0 (en) 1996-09-11 1996-10-23 Univ London Metal containing carbohydrates from human tissue which regulate glycogen metabolism
GB9618934D0 (en) * 1996-09-11 1996-10-23 Univ London Inositol phosphoglycans for therapeutic use in the treatment of diabetes and obesity
GB9618930D0 (en) 1996-09-11 1996-10-23 Univ London Metal containing carbohydrates from human tissue which regulate lipogenic activity
DE19649350A1 (de) * 1996-11-28 1998-06-04 Hoechst Ag Inositolglykane mit insulinartiger Wirkung
KR100481746B1 (ko) * 1996-11-28 2005-08-10 훽스트 악티엔게젤샤프트 인슐린-유사작용을갖는이노시톨글리칸및이를포함하는약제학적제제
EP2158923B1 (en) 1998-08-06 2013-02-27 Mountain View Pharmaceuticals, Inc. Peg-urate oxidase conjugates and use thereof
CH697081A5 (de) * 2002-01-22 2008-04-30 Andreas F Dr Schaub Zusammensetzung für die Unterstützung der Geburt eines menschlichen Föten.
EP1378517A1 (en) * 2002-07-05 2004-01-07 Aventis Pharma Deutschland GmbH Phosphoinositolglycan (PIG) binding protein from adipocytes
CA2491555C (en) * 2002-07-10 2012-09-11 Massachusetts Institute Of Technology Solid-phase and solution-phase synthesis of glycosylphosphatidylinositol glycans
ITMI20030237A1 (it) * 2003-02-11 2004-08-12 Indena Spa Uso della conglutina di lupino per il trattamento del
DE102004054552A1 (de) * 2004-11-11 2006-05-18 Hcb Happy Child Birth Holding Ag Neue Zusammensetzung zur Erleichterung der Humangeburt
RU2435847C2 (ru) 2005-04-11 2011-12-10 Савиент Фармасьютикалз, Инк. Вариантная форма урат-оксидазы и ее использование
PL3321359T3 (pl) 2005-04-11 2021-06-28 Horizon Pharma Rheumatology Llc Wariantowe postacie oksydazy moczanowej i ich zastosowanie
US8148123B2 (en) 2005-04-11 2012-04-03 Savient Pharmaceuticals, Inc. Methods for lowering elevated uric acid levels using intravenous injections of PEG-uricase
KR101861547B1 (ko) 2009-06-25 2018-07-02 크레알타 파마슈티칼스 엘엘씨 페길화된 유리카아제 치료 중에 혈청 요산을 모니터링하여 주입 반응의 위험성 및 반응의 항체­매개 상실을 예측하는 방법 및 키트
CN102270762B (zh) * 2010-06-03 2014-08-20 清华大学 锂离子电池电极浆料及应用该电极浆料制备的电极片

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3326473A1 (de) * 1983-07-22 1985-01-31 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Pharmazeutisches mittel zur behandlung des diabetes mellitus
DE3326472A1 (de) * 1983-07-22 1985-02-14 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Neue insulin-derivate, verfahren zu deren herstellung und deren verwendung sowie pharmazeutische mittel zur behandlung des diabetes mellitus
US4906468A (en) * 1986-04-11 1990-03-06 The Rockefeller University Insulin activity messengers, their antibodies, and thereof
US4839466A (en) * 1986-04-11 1989-06-13 The Rockefeller University Insulin activity messengers

Also Published As

Publication number Publication date
ATE147407T1 (de) 1997-01-15
SG46639A1 (en) 1998-02-20
NO923252L (no) 1993-02-22
AU656396B2 (en) 1995-02-02
AU2110992A (en) 1993-02-25
DE59207835D1 (de) 1997-02-20
FI923702A (fi) 1993-02-21
EP0532915B1 (de) 1997-01-08
JP3361126B2 (ja) 2003-01-07
HRP940834B1 (en) 2000-08-31
CA2076424A1 (en) 1993-02-21
GR3022895T3 (en) 1997-06-30
JPH05301891A (ja) 1993-11-16
EP0532915A2 (de) 1993-03-24
FI923702A0 (fi) 1992-08-18
YU66892A (sh) 1995-10-24
IL102859A0 (en) 1993-01-31
HUT62013A (en) 1993-03-29
DK0532915T3 (da) 1997-07-07
TW224104B (no) 1994-05-21
ZA926232B (en) 1993-04-28
CZ255392A3 (en) 1993-03-17
CZ290341B6 (cs) 2002-07-17
KR100318706B1 (ko) 2001-12-28
ES2096686T3 (es) 1997-03-16
HRP940834A2 (en) 1997-04-30
EP0532915A3 (en) 1994-05-18
IL102859A (en) 1998-12-27
SK255392A3 (en) 1995-02-08
FI102842B1 (fi) 1999-02-26
NO923252D0 (no) 1992-08-19
FI102842B (fi) 1999-02-26
KR930004327A (ko) 1993-03-22
SK281333B6 (sk) 2001-02-12
CA2076424C (en) 2003-06-03
US5624903A (en) 1997-04-29
KR100264623B1 (ko) 2000-09-01
HU210431B (en) 1995-04-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO303452B1 (no) Fosfoinositolglykan-peptid med insulinlignende virkning, fremgangsmÕte for fremstilling, legemiddel og anvendelse av forbindelsen for fremstilling av et legemiddel
CA1172978A (en) .alpha.-AMYLASE INACTIVATOR, A PROCESS FOR ITS PREPARATION, AN AGENT BASED ON THIS INACTIVATOR AND ITS USE
Cordella-Miele et al. Transglutaminase-catalyzed incorporation of polyamines into phospholipase A2
AU638701B2 (en) Glycosylated insulins
JPS60152500A (ja) α−アミラ−ゼ抑制作用を有する新規ポリペプチドおよびそれらの製法
EP0119650A2 (en) Galactosyl-insulin conjugates useful in treating diabetics
Visser et al. Peptide substrates for chymosin (rennin). Interaction sites in κ-casein-related sequences located outside the (103-108)-hexapeptide region that fits into the enzyme's active-site cleft
Geschwind et al. The guanidination of some biologically active proteins
Fiat et al. The Amino‐Acid and Carbohydrate Sequences of a Short Glycopeptide Isolated from Bovine κ‐Casein
Gould et al. Participation of Aminoacyl Transfer Ribonucleic Acid in Aminoacyl Phosphatidylglycerol Synthesis: II. Specificity of Alanyl Phosphatidylglycerol Synthetase
EP0017938B1 (en) Process for preparing a b30-threonine insulin
US4401757A (en) Semi-synthesis of human insulin
Welch et al. Uptake of glycine from L-alanylglycine into renal brush border vesicles
Tsuru et al. Studies on Bacterial Protease: Part XVIII. Proteolytic Specificity of Neutral Protease of Bacillus subtilis var. amylosacchariticu s
Buston et al. Synthesis of β-linked glucosaccharides by extracts of Chaetomium globosum
Haneda et al. Chemo-enzymatic synthesis and structure-activity study of artificially N-glycosylated eel calcitonin derivatives with a complex type oligosaccharide
Jacquemin Glycosyl phosphatidylinositol in thyroid: cell signalling or protein anchor?
JP2891023B2 (ja) ランチオニン含有物の製造方法
JP2842613B2 (ja) フォスフォリパーゼa▲下2▼阻害物質
Brdiczka et al. Mitochondrial matrix granules in soft tissues: II. Isolation and initial characterization of a calcium-precipitable, soluble lipoprotein subfraction from brown fat and liver mitochondria
Lew et al. Incorporation of carbohydrate residues into peroxidase isoenzymes in horseradish roots
OGATA et al. Chemical identification of lipid components in the membranous form of rat liver alkaline phosphatase
Jonczyk et al. Preparation and biological properties of [LeuB24, LeuB25] human insulin
Chin et al. Studies on Nα-acylated proteins: The N-terminal sequences of two muscle enolases
DD141323A1 (de) Verfahren zur herstellung eines prolylpeptidspaltenden enzyms

Legal Events

Date Code Title Description
MK1K Patent expired