NO301843B1 - Renset gallesyresulfatsulfatase, fremgangsmåte for fremstilling derav og fremgangsmåte for å måle gallesyre - Google Patents

Renset gallesyresulfatsulfatase, fremgangsmåte for fremstilling derav og fremgangsmåte for å måle gallesyre Download PDF

Info

Publication number
NO301843B1
NO301843B1 NO903342A NO903342A NO301843B1 NO 301843 B1 NO301843 B1 NO 301843B1 NO 903342 A NO903342 A NO 903342A NO 903342 A NO903342 A NO 903342A NO 301843 B1 NO301843 B1 NO 301843B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
bile acid
bile
sulfates
acids
bile acids
Prior art date
Application number
NO903342A
Other languages
English (en)
Other versions
NO903342L (no
NO903342D0 (no
Inventor
Tsunetake Sugimori
Yoji Tsukada
Yasuhiko Tatsuke
Original Assignee
Marukin Shoyu Kk
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Marukin Shoyu Kk filed Critical Marukin Shoyu Kk
Publication of NO903342D0 publication Critical patent/NO903342D0/no
Publication of NO903342L publication Critical patent/NO903342L/no
Publication of NO301843B1 publication Critical patent/NO301843B1/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/16Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/34Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/34Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
    • C12Q1/44Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving esterase
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/90Enzymes; Proenzymes
    • G01N2333/902Oxidoreductases (1.)
    • G01N2333/904Oxidoreductases (1.) acting on CHOH groups as donors, e.g. glucose oxidase, lactate dehydrogenase (1.1)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

Den foreliggende oppfinnelse vedrører renset gallesyresulfatsulfatase, dens fremstilling og fremgangsmåter for kvantitativt å bestemme gallesyre.
Enzymet ifølge oppfinnelsen er et anvendbart nytt enzym for kliniske undersøkelser, og kan anvendes for bestemmelse av sulfaterte gallesyrer, såsom gallesyrer hvori OH-gruppen i 3-stilling er sulfatert (heretter referert til som gallesyre-3a-sulfat), og for bestemmelse av gallesyre i blod eller urin.
Det er vel kjent at gallesyre i blod eller urin øker markert p.g.a. hepatobiliære sykdommer. Det er derfor en viktig sak å bestemme gallesyren i blod eller urin for å vurdere lever-funksjonen ved kliniske undersøkelser. Den konvensjonelle metoden for bestemmelse av gallesyre anvender den enzymatiske analyse-metoden hvori 3a-hydroksysteroid-dehydrogenase blir anvendt. Nevnte dehydrogenase oksyderer gallesyrer hvori OH-gruppen i 3-stilling er i a-konfigurasjonen (3a-hydroksy-gallesyre) til 3-oksogallesyrer, og reduserer på samme tid koenzymet /3-NAD til NADH. Ved bestemmelse av NADH blir 3a-hydroksygallesyrene bestemt. Ved den konvensjonelle kliniske undersøkelsen blir mengden av 3a-hydroksygallesyrer betraktet som den totale mengden av gallesyrer.
Gallesyrer i blod er imidlertid tilstede delvis som sulfaterte gallesyrer som er blitt sulfatert, og den hydrofile egenskapen blir forsterket ved sulfateringen, og utskillingen derav blir gjort lettere, slik at forholdet av sulfaterte gallesyrer i urin, spesielt 3a-sulfat-gallesyrer, blir øket ekstremt. Dehydrogenasen i metoden ifølge tidligere teknologi virker bare på 3a-hydroksygallesyrene, og det er derfor umulig, etter metoden ifølge tidligere teknologi å bestemme 3a-sulfat-gallesyrene hvori 3a-hydroksylgruppen er blitt sulfatert. Ved kliniske undersøkelser er det nødvendig å bestemme de totale gallesyre-3a-sulfåtene eller de totale gallesyrene innbefattet disse i urin eller blod, men gallesyresulfatase som er i stand til spesifikt å hydrolysere sulfatestergruppen i 3a-sulfat-gallesyrene, er enda ikke kjent.
Under disse omstendigheter, for å bestemme gallesyre-3a-sulfåtene, må derfor en prøve underkastes kolonnekromatografi for å adskille gallesyre-3a-sulfater, og deretter må sulfatgruppen i gallesyre-3a-sulfåtene hydrolyseres kjemisk ved solvolyse. En slik fremgangsmåte er imidlertid svært omstendelig og kan ikke lett anvendes ved de daglige kliniske undersøkelser.
Det er et formål ifølge oppfinnelsen å tilveiebringe en ny gallesyresulfatsulfatase som er i stand til spesifikt å hydrolysere sulfatestergruppen i gallesyre-3a-sulfater.
Det er et annet formål ifølge oppfinnelsen å tilveiebringe en fremgangsmåte for fremstilling av slik gallesyresulfatsulfatase.
Det er et annet formål ifølge oppfinnelsen å tilveiebringe en fremgangsmåte som er i stand til lett å bestemme de samlede gallesyre-3a-sulfåtene i blod eller urin, som det var umulig å måle ved den konvensjonelle enzymatiske fremgangsmåten.
Det er et ytterligere formål ifølge oppfinnelsen å tilveiebringe en fremgangsmåte som er i stand til lett å bestemme de totale gallesyrene, innbefattet gallesyre-3a-sulfåtene, i blod eller urin.
Andre formål og trekk ifølge oppfinnelsen vil fremkomme fra følgende beskrivelse.
Den foreliggende oppfinnelse tilveiebringer en renset galle-syresulf atsulfatase , dens fremstilling, og fremgangsmåter for bestemmelse av gallesyrer, som definert i 1 til 4 nedenfor. 1. En renset gallesyresulfatsulfatase som har følgende egenskaper: (a) Virkning: Virker på 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer slik at den hydrolyserer sulfatestergruppen i disse, og slik at den forandrer bindingskonfigurasjonen for den resulterende OH-gruppen fra a-konfigurasjon til ^-konfigurasjon, og derved frembringer 3/3-hydroksygallesyrer; (b) Substratspesifisitet: Den virker på 3a-sulfater av ikke-konjugerte 5/3-gallesyrer, og på 3a-sulfater av både glycin-konjugerte og taurin-konjugerte 5/3-gallesyrer; og (c) Optimalt pH-område: pH 8,5 + 0,5 og
(d) er aktivt i nærvær av luft.
2. Fremgangsmåte for fremstilling av en renset gallesyresulfatsulfatase omfattende dyrking av Pseudomonas testosteroni i et kulturmedium som inneholder gallesyre, og utvinning av galle-syresulf atsulfatase ifølge krav 1 fra den resulterende
kulturen.
3. Fremgangsmåte for bestemmelse av 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer, som går ut på å bringe en gallesyresulfatsulfatase ifølge krav 1 og/3-hydroksysteroid-dehydrogenase til å virke på en prøve som inneholder 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer i
nærvær av/3-NAD, og bestemmelse av den produserte NADH.
4. Fremgangsmåte for bestemmelse av total gallesyre som går ut på å bringe en gallesyresulfatsulfatase ifølge krav 1,/3-hydroksysteroid-dehydrogenase og 3a-hydroksysteroid-dehydrogenase til å virke på en prøve som inneholder 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer og andre gallesyrer i nærvær av /3-NAD, og bestemmelse av den produserte NADH.
Som et resultat av intensiv forskning lyktes det de her-værende oppfinnere å oppnå en ny gallesyresulfatsulfatase som er i stand til spesifikt å hydrolysere sulfatestergruppen i gallesyre-3a-sulfater, og å oppdage at totale gallesyre-3a-sulfater i blod eller urin som ikke kunne måles ved den konvensjonelle enzymatiske fremgangsmåten, lett kan bestemmes ved kobling av nevnte enzym og /3-hydroksysteroid-dehydrogenase i nærvær av/3-NAD, og også å finne at totale gallesyrer omfattende gallesyre-3a-sulfater i blod eller urin lett kan bestemmes ved kobling av nevnte enzym, /3-hydroksysteroid-dehydrogenase og 3a-hydroksysteroid-dehydrogenase i nærvær av /3-NAD, og derved å fullføre oppfinnelsen.
Gallesyresulfatsulfatase ifølge oppfinnelsen (heretter referert til som det foreliggende enzym) er et enzym som produseres av Pseudomonas testosteroni.
De fysikalsk-kjemiske egenskapene for det foreliggende enzym blir ytterligere beskrevet i det følgende. Aktiviteten av det foreliggende enzym blir målt som følger. D.v.s. av det i en kvarts-celle blir plassert 0,1 ml av 2,5 mM vandig løsning av litocholinsyre-3a-sulfat (Sigma), 0,2 ml av 15 mM vandig løsning av/3-NAD (Oriental Yeast) , 1,0 ml av 0,1 M tris-saltsyre-bufferløsning (pH 8,0) og 1,55 ml destillert vann, og etter ekvilibrering ved 30°C, blir det dertil tilsatt i rekkefølge 0,05 ml av/3-hydroksysteroid-dehydrogenaseløsning (Sigma) (10 U/ml) og 0,1 ml av en løsning av det foreliggende enzym, og omsetningen blir gjennomført ved 30°C, og økningen av absorbansen ved 340 nm i omsetningens begynnelsestrinn blir bestemt. Under disse betingelsene blir den enzymaktiviteten som frembringer 1 uraol NADH/minutt definert som 1 enhet.
(a) Virkning: Virker på 3a-sulfater av gallesyrer slik at det hydrolyserer sulfatestergruppen og inverterer bindingskonfigurasjonen for den resulterende OH-gruppen fra a-konf igurasj on til /3-konf igurasj on, og derved frembringer
3/?-hydroksygallesyrer.
(b) Substratspesifisitet: Virker på 3a-sulfater av ikke-konjugerte gallesyrer, og 3a-sulfater både av glycin-konjugerte og taurin-konjugerte gallesyrer. Detaljene er vist i Tabell 1. (c) Optimal pH: PH 8,5 + 0,5 (Fig. 1). Fig. 1 er et diagram som viser forholdet mellom den relative aktiviteten av det foreliggende enzym og pH. (d) pH-stabilitet: pH 5,6 - 7,6 (Fig. 2). Fig. 2 er et diagram som viser forholdet mellom den relative aktiviteten av det foreliggende enzym og pH, når det foreliggende enzym får stå
ved 30°C i 16 timer.
(e) Optimal temperatur: 35°C + 5°C (Fig. 3). Fig. 3 er et diagram som viser forholdet mellom den relative aktiviteten av det foreliggende enzym og temperaturen. (f) Termisk stabilitet: Når det foreliggende enzym får stå ved pH 7,2 i 10 minutter, forblir aktiviteten på 100% ved en temperatur på 32°C eller lavere, men ved høyere temperaturer synker aktiviteten raskt, og blir 0% ved 50°C (Fig. 4).
Fig. 4 er et diagram som viser den termiske stabiliteten for
det foreliggende enzym.
(g) Molekylvekt: Som et resultat av måling ved høytrykksvæske-kromatografi ved anvendelse av gelfiltreringskolonne Shim-pack Diol-300 (Shimadzu), blir molekylvekten beregnet til å
være ca. 100.000.
(h) Km-verdi: Km-verdien for litocholinsyre-3a-sulfat:
6 x 10'<6>M. (i) Inhibering og aktivering: Aktivert av Mn<++>og inhibert av stoffer som virker på metallioner, såsom EDTA og o-fenan-trolin, etc. Knapt inhibert av SH-reagenser såsom p-klor-kvikksølvbenzoat og monojodeddiksyre. Detaljene er vist i Tabell 2.
Det foreliggende enzym er oppsamlet fra kulturen av Pseudomonas testosteroni. Pseudomonas testosteroni (heretter kalt denne organismen) er ikke spesielt begrenset, og en hvilken som helst kjent stamme kan anvendes. Fremfor alt foretrekkes Pseudomonas testosteroni ATCC 11996 registrert i American Type Culture Collection katalog over "Bacteria Phages rDNA vectors, 16th Ed., 1985, eller lignende.
Kulturmediet for anvendelse til kultivering av denne organismen er ikke spesielt begrenset, og et hvilket som helst kulturmedium kan anvendes så lenge som bakteriene av slekten Pseudomonas kan vokse deri, og eksempler på disse omfatter de som inneholder gjærekstrakt, pepton, kjøttekstrakt eller lignende som den organiske næringskilden, ammoniumfosfat, ammoniumnitrat, kaliumfosfat, natriumfosfat, magnesiumklorid og manganklorid som de uorganiske næringskildene. Dessuten er det essensielt for å frembringe det foreliggende enzym å tilsette en gallesyre til kulturmediet. Anvendbare gallesyrer innbefatter f.eks. cholin-syre, deoksycholinsyre, kenodeoksycholinsyre, litocholinsyresulfat og deres salter, og disse kan anvendes enkeltvis eller i det minste to av dem kan anvendes i kombinasjon. Mengden gallesyre som skal anvendes er ikke spesielt begrenset, men er vanligvis ca. 0,01 til 2,0 vekt-%, fortrinnsvis ca. 0,05 til 1,0 vekt-%.
Dyrkingen utføres fortrinnsvis under aerobe betingelser. Dyrkingstiden og temperaturen er ikke spesielt begrenset, men dyrkingstemperaturen er vanligvis ca. 22 til 35°C, fortrinnsvis ca. 26 til 30°C, og dyrkingstiden er vanligvis ca. 8 til 30 timer, fortrinnsvis ca. 12 til 24 timer. Ved dyrking i ca. 12 til 24 timer oppnår enzymaktiviteten sitt maksimum.
Fra bakteriecellene høstet etter dyrkingen kan det foreliggende enzymet oppnås ved f.eks. ekstraksjon. Ekstraksjonen gjøres ifølge konvensjonelle ekstraksjonsmetoder av enzymer i bakterieceller. F.eks. blir bakteriecellene ødelagt ved ultralyd-behandling, forskjellig mekanisk bearbeiding eller enzym-behandling, og deretter sentrifugert for å fraskille det uløselige stoffet, hvorved det oppnås en supernatant som inneholder det foreliggende enzym (rå enzymløsning). Ved rensing av denne rå enzymløsningen ved passende valg og kombinasjon av vanlig anvendte enzymrensemetoder, såsom behandling for å fjerne nukleinsyrer, ammoniumsulfatutsalting, ionebyttekromatografi, hydrofob kromatografi og gelfiltrering, kan det foreliggende enzym isoleres.
Det foreliggende enzym oppnådd på denne måten og/3-hydroksysteroid-dehydrogenase bringes til å virke på en prøve som inneholder gallesyre-3a-sulfater i nærvær av /3-NAD, og derved bestemmes gallesyre-3a-sulfåtene. D.v.s. at det foreliggende enzym omdanner gallesyre-3a-sulfåtene til 3/3-hydroksygallesyrer, og deretter omdanner/3-hydroksysteroid-dehydrogenasen 3/3-hydroksygallesyrene til 3-oksogallesyrer og reduserer samtidig NAD som er koenzymet for nevnte dehydrogenase til NADH. Når derfor den mengde NAD som er omdannet til NADH er bestemt, er gallesyre-3a-sulfatene bestemt.
/3-Hydroksysteroid-dehydrogenasen er ikke spesielt begrenset, og hvilke som helst kjente kan anvendes.
Mengdene av enzymene som skal anvendes, er ikke spesielt begrenset, men vanligvis blir det foreliggende enzym anvendt i en mengde på ca. 0,04 til 2,0 enheter, fortrinnsvis 0,1 til 1,0 enheter, og /3-hydroksysteroid-dehydrogenasen blir vanligvis anvendt i en mengde på ca. 0,05 til 2,0 enheter, fortrinnsvis 0,1 til 1,0 enheter. Mengden av/3-NAD som skal anvendes, er heller ikke spesielt begrenset, men den kan tilsettes slik at/3-NAD-konsentrasjonen i omsetningssystemet vanligvis er ca. 0,1 til 10 mM, fortrinnsvis ca. 0,5 til 5 mM. Enzymomsetningen blir vanligvis utført ved en temperatur på ca. 2 0 til 40°C, fortrinnsvis ca. 25 til 37°C, og i ca. 5 til 60 minutter, fortrinnsvis ca. 10 til 3 0 minutter.
NADH kan bestemmes ved en kjent fremgangsmåte såsom UV-
(340 nm) absorpsjonsmåling, fluorescensintensitetsmåling, reduktiv fargekolorimetri, eller den kolorimetriske fremgangsmåten hvor NADH-oksidase bringes til å virke på NADH, slik at det fra NADH kvantitativt utvikles hydrogenperoksyd som i sin tur bestemmes kolorimetrisk ved oksydativ farging.
I denne oppfinnelsen kan dessuten totale gallesyrer innbefattet gallesyre-3a-sulfat bestemmes ved å bringe 3a-hydroksysteroid-dehydrogenase, i tillegg til det foreliggende enzym og/3-hydroksysteroid-dehydrogenase, til å virke i nærvær av /3-NAD på en prøve inneholdende gallesyre-3a-sulfater og andre gallesyrer. Når urin eller blod anvendes som prøven som inneholder gallesyre-3a-sulfater og andre gallesyrer, bestemmes de totale gallesyrene i blod eller urin.
3a-hydroksysteroid-dehydrogenasen er ikke spesielt begrenset, og hvilke som helst kjente kan anvendes. Mengden av dehydrogenasen som skal anvendes, er ikke spesielt begrenset, men den er vanligvis ca. 0,04 til 2,0 enheter, fortrinnsvis ca. 0,1 til 1,0 enhet. Mengdene av andre enzymer (det foreliggende enzym og /3-hydroksysteroid-dehydrogenase) og/3-NAD, omsetningsbetingelser, og fremgangsmåten ved bestemmelse av det produserte NADH kan være de samme som når det gjelder bestemmelse av gallesyre-3a-sulfater.
EKSEMPEL
Eksempler er gitt nedenfor, i eksemplene skal "%" bety "vekt-%".
Eksempel 1
En 3 00 ml mengde av et kulturmedium (pH 6,9) omfattende 0,1% ammoniumdihydrogenfosfat, 0,1% diammoniumhydrogenfosfat, 0,2% kaliumdihydrogenfosfat, 0,01% magnesiumklorid, 0,01% manganklorid og 1,0% gjærekstrakt ble plassert i en 2-liter Erlenmeyer-flaske, og sterilisert i autoklav. Pseudomonas testosteroni ATCC 11996 ble inokulert, og ble dyrket i 24 timer ved 28°C under omrysting. Denne utsæd-kulturen ble inokulert i 30 liter sterilisert kulturmedium av samme sammensetning som ovenfor i en 50 liters krukke-fermentor, og på samme tid ble aseptisk tilsatt dertil 1,2 liter av 10% natriumcholat vandig løsning separat sterilisert, og dyrkingen ble fortsatt i 15 timer ved 28°C under omlufting og omrøring.
Kulturvellingen ble sentrifugert, og de oppnådde bakteriecellene ble oppslemmet i 30 mM fosfatbufferløsning (pH 7,2), og denne oppslemmingen ble tilført til en DYNO-laboratoriemølle (Willy A. Bachofen Machienenfabrik) for å rive cellene istykker. De resulterende sedimentene ble fjernet ved sentrifugering, og rå enzymløsning ble oppnådd. Den rå enzymløsningen ble behandlet med protaminsulfat for å fjerne nukleinsyre, etterfulgt av utsalting ved anvendelse av ammoniumsulfat. Fraksjonen utfelt under ammoniumsulfatfraksjoneringen ved 3 5 til 7 0% metning ble oppsamlet, og dialysert mot 10 mM fosfatbufferløsning (pH 7,2). Dialysatet ble ledet gjennom en kolonne av DEAE-cellulose (Whatman) ekvilibrert med 10 mM fosfatbufferløsning (pH 7,2).
De oppnådde ikke-adsorberte fraksjonene ble ledet gjennom en kolonne av DEAE-sefarose CL-6B (Pharmacia) ekvilibrert med 5 mM tris-saltsyrebufferløsning (pH 8,0). De oppnådde ikke-adsorberte fraksjonene ble konsentrert ved utsaltingsbehandling ved anvendelse av ammoniumsulfat, og ble adsorbert på oktylsefarose CL-4B- (Pharmacia) kolonne. Gjennom denne kolonnen ble ledet 50 mM fosfatbufferløsning, og de eluerende aktive fraksjonene ble konsentrert ved ultrafiltrering, etterfulgt av gelfiltrering ved å ledes gjennom en kolonne av sefakryl S-2 00 (Pharmacia) ekvilibrert med 50 mM fosfatbufferløsning inneholdende 0,15 M natriumklorid. De aktive fraksjonene ble avsaltet og konsentrert ved ultrafiltrering, og ga derved 480 enheter av gallesyresulfatsulfatase. Det rensede produktet ga et enkelt bånd i slab-gelelektroforese ved anvendelse av 7,5% akrylamid (pH 8,9).
Eksempel 2
Ved anvendelse av gallesyresulfatsulfatasen fremstilt i Eksempel 1, ble gallesyre-3a-sulfat bestemt.
Hver av de vandige løsningene (0,1 ml hver) av litocholin-syre-3a-sulfat, natriumsalt (Sigma) eller glykolitocholinsyre-3a-sulfat, natriumsalt (Sigma) med forskjellige konsentrasjoner ble tilsatt som substrat til 2,9 ml av 35 mM tris-saltsyrebuffer-løsning (pH 8,0) inneholdende 3 jitmol av/3-NAD (Oriental Yeast) , 0,5 enheter av/?-hydroksysteroid-dehydrogenase (Sigma) og 0,2 enheter av gallesyresulfatsulfatase, og blandingen fikk omsette seg i 10 minutter ved 30°C, og deretter ble målt absorbansen ved 340 nm. Resultatene er vist i Fig. 5, hvorifra det kan sees at konsentrasjonen av substratet og absorbansen er i positiv korrelasjon, hvilket viser at gallesyre-3a-sulfåtene kan bestemmes.
Eksempel 3
Reagens (1): 25,2 mg av /3-NAD (Oriental Yeast) , 7,6 mg av nitro-blå-tetrazolium (Dojin Kagaku Kenkyusho), og 10 enheter av diaforase (Sigma) ble løst i 25 ml av 50 mM tris-saltsyrebuffer-løsning (pH 8,0) inneholdende 0,3% NOIGEN ET-189 (ikke-ionisk overflateaktivt middel, fremstilt av Daiichi Kogyo Seiyaku).
Reagens (2): 0,4N saltsyre.
Måling: En 1,2 5 ml mengde av reagens (1) ble tilsatt til hver av de vandige løsningene (0,35 ml hver) av litocholinsyre-3a-sulfat, natriumsalt (Sigma) som hadde forskjellige konsentrasjoner, og holdt ved 37 °C i 5 minutter. Til denne blandingen ble tilsatt 0,05 ml av/S-hydroksysteroid-dehydrogenase (Sigma) løsning (10 enheter/ml) og 0,1 ml av gallesyresulfatsulfatase (2 enheter/ml) i den nevnte rekkefølgen og blandet sammen. Den resulterende blandingen ble holdt ved 37°C i 10 minutter for å utvikle farge. Deretter ble tilsatt 1,25 ml av Reagens (2) for å stoppe omsetningen, og absorbansen ved 560 nm ble målt. Utmerkede resultater som vist i Fig. 6 ble oppnådd.
Eksempel 4
Serumet med tilsetning av glykolitocholinsyre-3a-sulfat (GLCA-S) ble fortynnet med tilsetningsfritt serum til forskjellige konsentrasjoner, hvilket ga testsera.
Til 0,2 ml av testserumet ble tilsatt 0,15 ml destillert vann og 1,25 ml Reagens (1) anvendt i Eksempel 3, og GLCA-S ble bestemt på samme måten som i Eksempel 3. Resultatene er vist i Tabell 3.
Eksempel 5
Serumet med tilsetning av GLCA-S og glykolitocholinsyre (GLCA) ble fortynnet til forskjellige konsentrasjoner med tilsetningsfritt serum, hvilket ga testsera.
Til 0,2 ml av testserum ble tilsatt 0,15 ml destillert vann og 1,25 ml av Reagens (1) fra Eksempel 3. Deretter ble GLCA-S og GLCA bestemt på samme måten som i Eksempel 3, unntatt at en blanding av /?-hydroksysteroid-dehydrogenase og 3a-hydroksteroid-dehydrogenase (Sigma) (10 enheter/ml hver) ble anvendt istedenfor /3-hydroksysteroid-dehydrogenaseløsning. Resultatene er vist i Tabell 4.
Kort beskrivelse av tegningene
Fig. 1 er et diagram som viser den optimale pH for det foreliggende enzym. Fig. 2 er et diagram som viser pH-stabiliteten for det foreliggende enzym. Fig. 3 er et diagram som viser den optimale temperaturen for det foreliggende enzym. Fig. 4 er et diagram som viser den termiske stabiliteten for det foreliggende enzym. Fig. 5 og Fig. 6 er diagrammer som viser forholdet mellom konsentrasjonen av substratet (gallesyre-3a-sulfat) og absorbansen oppnådd ved utførelse av fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen.

Claims (12)

1. Renset gallesyresulfatsulfatase, karakterisert vedfølgende egenskaper: (a) Virkning: Virker på 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer slik at den hydrolyserer sulfatestergruppen i disse og slik at den forandrer bindingskonfigurasjonen for den resulterende OH-gruppen fra a-konf igurasj onen til /3-konf igurasj onen, og derved frembringer 3/3-hydroksygallesyrer; (b) Substratspesifisitet: Virker på 3a-sulfater av ikke-konjugerte 5/3-gallesyrer, og på 3a-sulfater av både glycin-konjugerte og taurinkonjugerte 5/3-gallesyrer; (c) Optimalt pH-område: pH 8,5 ± 0,5 og (d) er aktivt i nærvær av luft.
2. Fremgangsmåte ved fremstilling av renset gallesyresulfatsulfatase ifølge krav1,karakterisert veddyrking av Pseudomonas testosteroni i et dyrkingsmedium inneholdende gallesyre, og utvinning av gallesyresulfatsulfatasen fra den resulterende kulturen.
3. Fremgangsmåte ifølge krav 2, karakterisert vedat Pseudomonas testosteroni er Pesudomonas testosteroni ATCC 11996.
4. Fremgangsmåte ved bestemmelse av 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer,karakterisert vedå bringe en gallesyre-sulf atsulfatase ifølge krav 1, og /?-hydroksysteroid-dehydrogenase til å virke på en prøve inneholdende 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer i nærvær av /3-NAD, og bestemmelse av den produserte NADH.
5. Fremgangsmåte ifølge krav 4, karakterisert vedat prøven inneholdende 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer er blod eller urin.
6. Fremgangsmåte ifølge krav 4, karakterisert vedat mengden av gallesyre-sulf atsulfatasen som skal anvendes, er 0,04 til 2,0 enheter/ml.
7. Fremgangsmåte ifølge krav 4, karakterisert vedat mengden av /3-hydroksysteroid-dehydrogenasen som skal anvendes, er 0,05 til 2,0 enheter/ml.
8. Fremgangsmåte ved bestemmelse av total gallesyre,karakterisert vedtrinn for å bringe en gallesyre-sulf atsulfatase ifølge krav 1, /3-hydroksysteroid-dehydrogenase og 3a-hydroksystéroid-dehydrogenase til å virke på en prøve som inneholder 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer og andre gallesyrer i nærvær av /3-NAD, og bestemmelse av det produserte NADH.
9. Fremgangsmåte ifølge krav 8, karakterisert vedat prøven som inneholder 3a-sulfater av 5/3-gallesyrer og andre gallesyrer, er blod eller urin.
10. Fremgangsmåte ifølge krav 8, karakterisert vedat mengden av gallesyre-sulf atsulfatase som skal anvendes, er 0,04 til 2,0 enheter/ml.
11. Fremgangsmåte ifølge krav 8, karakterisert vedat mengden av /3-hydroksysteroid-dehydrogenase som skal anvendes, er 0,05 til 2,0 enheter/ml.
12. Fremgangsmåte ifølge krav 8, karakterisert vedat mengden av 3a-hydroksysteroid-dehydrogenase som skal anvendes, er 0,04 til 2,0 enheter/ml.
NO903342A 1988-11-28 1990-07-27 Renset gallesyresulfatsulfatase, fremgangsmåte for fremstilling derav og fremgangsmåte for å måle gallesyre NO301843B1 (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP63301415A JP2719709B2 (ja) 1988-11-28 1988-11-28 胆汁酸硫酸サルファターゼ、その製造法及び胆汁酸の定量法
PCT/JP1989/001186 WO1990006360A1 (en) 1988-11-28 1989-11-21 Bile acid sulfate sulfatase, process for its preparation and method for assaying bile acid

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO903342D0 NO903342D0 (no) 1990-07-27
NO903342L NO903342L (no) 1990-09-21
NO301843B1 true NO301843B1 (no) 1997-12-15

Family

ID=17896604

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO903342A NO301843B1 (no) 1988-11-28 1990-07-27 Renset gallesyresulfatsulfatase, fremgangsmåte for fremstilling derav og fremgangsmåte for å måle gallesyre

Country Status (5)

Country Link
US (2) US5091305A (no)
JP (1) JP2719709B2 (no)
DE (1) DE3991428C2 (no)
NO (1) NO301843B1 (no)
WO (1) WO1990006360A1 (no)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0564598A (ja) * 1991-09-06 1993-03-19 Sanwa Kagaku Kenkyusho Co Ltd Nadh及びnadphの測定法
JP3113947B2 (ja) * 1992-02-28 2000-12-04 マルキン忠勇株式会社 胆汁酸硫酸サルファターゼ遺伝子、新規な組み換え体dna及び胆汁酸硫酸サルファターゼの製造法
JP3864191B2 (ja) * 1994-09-13 2006-12-27 アークレイ株式会社 硫酸抱合型胆汁酸測定一体型多層分析用具
JP3760250B2 (ja) * 1995-12-21 2006-03-29 マルキンバイオ株式会社 硫酸抱合型胆汁酸の定量法及びそのキット

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0687777B2 (ja) * 1986-07-08 1994-11-09 第一化学薬品株式会社 3α―ヒドロキシステロイドオキシダーゼ組成物及びこれを用いる3α―ヒドロキシステロイドの定量法

Also Published As

Publication number Publication date
JP2719709B2 (ja) 1998-02-25
US5100795A (en) 1992-03-31
JPH02145183A (ja) 1990-06-04
DE3991428C2 (de) 1996-10-10
NO903342L (no) 1990-09-21
WO1990006360A1 (en) 1990-06-14
US5091305A (en) 1992-02-25
NO903342D0 (no) 1990-07-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0204283B1 (en) Uricase and a method for the preparation thereof
EP0012446A1 (en) Acidic uricase, its production and its use for the determination of uric acid
Lillis et al. Initiation of activation of a preemergent herbicide by a novel alkylsulfatase of Pseudomonas putida FLA
JPH0364105B2 (no)
KR960015263B1 (ko) 신규의 모노글리세라이드 리파제를 이용한 모노글리세라이드의 분석방법
US5068190A (en) N-acetylhexosamine-dehydrogenase, process for producing same, method for the quantitative analysis of N-acetylglucosamine or N-acetylgalactosamine using same and kit for use in the quantitative analysis
NO301843B1 (no) Renset gallesyresulfatsulfatase, fremgangsmåte for fremstilling derav og fremgangsmåte for å måle gallesyre
JP3041840B2 (ja) 新規なグリセロールデヒドロゲナーゼ、その製法及びその用途
JP4511655B2 (ja) ソルビトール脱水素酵素、それを産生する微生物およびその製造方法
JPH07170979A (ja) 新規なクレアチンアミジノハイドロラーゼ及びその製造法
JP2647684B2 (ja) トリグリセリドの分析用試薬および分析方法
US5385829A (en) Method of assaying for acyl-L-carnitines and short-chain acyl-carnitines
JP5470906B2 (ja) カタラーゼ
JP2017158441A (ja) カタラーゼ
JPH0284177A (ja) L―フコースデヒドロゲナーゼ
JP3152855B2 (ja) 新規なソルビトールデヒドロゲナーゼ、その製造方法並びに該酵素を用いたソルビトールの定量のための試薬及び方法
NO171458B (no) 3alfa-hydroksysteroid-oksydase, kvantitativ analyse av 3alfa-hydroksysteroid ved bruk derav, og et reagens for denne kvantitative analyse
JP3031517B2 (ja) 新規アスコルビン酸オキシダーゼ、その製法およびその用途
JP2827002B2 (ja) アシルカルニチンの測定法
JP3035685B2 (ja) ステロイドβ−硫酸サルファターゼ、その製造法及び胆汁酸3β−硫酸エステルの定量法
JP2929100B2 (ja) アシルカルニチンの高感度測定法
JP2508828B2 (ja) アシルポリアミンアミドヒドロラ―ゼおよびその製造法
JPH07265074A (ja) 新規なクレアチンアミジノハイドロラーゼおよびその用途
JPH0556798A (ja) α−アミラーゼ測定方法
JPH0775542B2 (ja) 新規なアシルポリアミンアミドヒドロラーゼ

Legal Events

Date Code Title Description
MK1K Patent expired