MXPA03003849A - Metodo de obtencion de estructuras antigenicas que potencian la reactividad cruzada especifica. - Google Patents

Abstract

La presente invencion se relaciona con un metodo para la obtencion de estructuras antigenicas de alta reactividad cruzada, capaces de potenciar la respuesta inmune a antigenos peptidicos administrados por via sistemica y/o mucosal, asi como con las estructuras quimicas obtenidas a partir este metodo, y con las formulaciones obtenidas a partir de dichas estructuras y su uso. El metodo describe la obtencion de nuevas estructuras dendrimericas, partiendo de la seleccion y sintesis de dendrimeros, que posteriormente son acoplados a moleculas portadoras. Las estructuras resultantes pueden utilizarse convenientemente adyuvadas o en una formulacion donde pueden introducirse varios antigenos de este tipo, encontrandose un efecto sinergico entre estos componentes con respecto a la reactividad cruzada y la inmunogenicidad de la respuesta obtenida. Ademas la preparacion puede contener, estabilizadores y preservos. Las estructuras antigenicas resultantes son aplicables en la industria farmaceutica como formulaciones vacunales tanto para uso humano como veterinario y como parte de sistemas de diagnostico.

Description

MÉTODO DE OBTENCION DE ESTRUCTURAS ANTIGENICAS QUE POTENCIAN LA REACTIVIDAD CRUZADA ESPECÍFICA Campo Técnico La presente invención está relacionada con la rama de la medicina, particularmente con formulaciones vacunales basadas en nuevas estructuras antigénicas que potencian la reactividad cruzada. Técnica Anterior Los péptidos tienen por si solos muy baja inmunogenicidad por lo que generalmente son conjugados a proteínas portadoras que aportan epitopos para células T auxiliadoras (efecto portador) (Herrington, D.A. et al. 1987 Nature 328:257-259). En el proceso de conjugación los péptidos pueden perder las propiedades antigénicas deseadas debido entre otras cosas a que los métodos de conjugación, al resultar relativamente inespecificos, pueden enlazar al péptido por parte de la secuencia relevante para el reconocimiento del sistema inmune. Para evitar los problemas asociados a la conjugación de péptidos a proteinas portadoras se generó otra forma de presentar secuencias peptidicas al sistema inmune llamada sistemas peptidicos multiantigénicos (M7APs) los cuales se basan en la inclusión de epitopos para células B y T dentro de un núcleo ramificado de Usinas (Tam, J. P.et al. 1988 Proc. Nati. Acad. Sci. 86:5409-54132-5) (Tam, REF. : 146869 J. P. 1989 Methods Enzymol. 168:7-15) (Tam, J. P. 1990 WO 90/11778) (Tam, J. P. 1993 WO 93/03766). Entre las ventajas de este sistema portador de antígenos sobre los conjugados de péptidos a proteínas se encuentran su estructura y composición definidas así como la alta proporción del epitopo de interés respecto del total de la molécula. En algunos estudios se ha mostrado la superioridad en cuanto a inmunogenicidad del sistema portador MAPs sobre los conjugados (Wang, C. Y. et al. 1991 Science 254: 285-288); aunque esto no ha sido siempre consistente pues en otros estudios ha sucedido lo . contrario (Riley, E.M. et al. 1996 Veterinary Immunology and Immunopathology 55: 243-253), lo cual podría ser un fenómeno asociado a la proteína portadora.

La reactividad cruzada es una propiedad que, al igual que la neutralización cruzada, ha sido descrita previamente para péptidos sintéticos (Wang, C. ?. et al. 1991. Science 254: 285-288). Varios investigadores han reportado además que anticuerpos para péptidos del lazo V3 del HIV-1 presentan neutralización cruzada frente a diferentes aislamientos de campo de HIV-1 (Wang, C. Y. et al. 1991 Science 254: 285-288) . En resumen, la neutralización cruzada y por tanto la reactividad cruzada están asociadas a la estructura de péptidos, como por ejemplo péptidos del lazo V3 de VIH-1. La estrategia de MAPs ha sido usada para generar una respuesta anti-V3 neutralizante en humanos (Geoffrey, J. et al. 1996 Journal of Infectious Diseases, 173: 330-3398) . La desventaja de esta estrategia vacunal consistió en que para obtener una inmunogenicidad y efecto neutralizantes mayores fue necesario inocular una cantidad excesivamente alta, 500 µg, de MAP (Kahn, J. et al. 1994 Tenth International Conference on AIDS Yokohama, Japan 7-12 August., Vol . 1) (Li, D. et al. 1997 Asían Pac J Allergy Immunol. 15:105-13). Si se pensara en preparar una mezcla de MAPs basados en la selección de diferentes V3 buscando el más amplio espectro de neutralización de aislamientos clínicos la cantidad necesaria de microgramos totales de MAPs sería incompatible con las prácticas habituales de inmunización. La reactividad cruzada se define como la habilidad que posee un inmunógeno para reaccionar con ligandos relacionados (Paul, W. Fundamental Immunology. 4th edition) . Aunque el fenómeno de la reactividad cruzada se conoce desde los mismos inicios de la inmunología, hasta la fecha ninguna preparación vacunal con probada eficacia se ha basado a priori en la reactividad cruzada. Esto quizás explique en parte por qué la inmensa mayoría de las vacunas en uso actualmente en los programas de inmunización de diferentes países protegen contra patógenos que no presentan una alta variabilidad entre sus diferentes aislamientos clínicos. La reactividad cruzada entre péptidos con secuencias presentando homología es una propiedad particular de cada péptido y ésta puede ser potenciada de acuerdo a diferentes formas de presentación del mismo al sistema inmune. Pudiera considerarse obvio que el aumento de la inmunogenicidad trae consigo una potenciación de la reactividad cruzada, sin embargo, no resulta asi. En un estudio con péptidos T-B se demostró que la inducción de anticuerpos con reactividad y/o neutralización cruzadas no · correlaciona con la inmunogenicidad de los péptidos (Kasmi, K.C, et. al. 1998 Molecular Immunology 35:905-918). Para poder generar una respuesta inmunológica capaz de reconocer un gran número de variantes antigénicas de un patógeno se han generado una serie de ideas. Una de éstas consiste en la inclusión dentro de un polipéptido multiepitópico de todas las variantes de un epitopo o aquellas más importantes. Los polipéptidos multiepitópicos generados a partir de secuencias para epitopos B no han sido siempre una opción viable (Flynn, J.N, et . al. 1997 J Virol 71: 7586-92). En primer término la generación de un polipéptido quimérico implica la producción de una molécula de estructura tridimensional impredecible que no tiene por qué exponer adecuadamente todos los epitopos representados lo cual favorece la respuesta hacia algunos e impide totalmente la respuesta contra otros. Por otro lado, resulta también impredecible la relación de dominancia que se impondrá entre los diferentes epitopos, lo cual puede silenciar incluso aquellos que se encuentran expuestos adecuadamente. Otra estrategia ha sido la generación de bibliotecas peptidicas que representan en si mismas toda o parte de la variabilidad posible. Las bibliotecas peptidicas obtenidas de regiones altamente variables han tenido un éxito relativo dado por la alta representatividad del número de epitopos que se pretende introducir en la formulación vacunal, sin embargo cada epitopo particular queda "diluido" dentro de un cúmulo muy grande de secuencias diferentes lo cual hace impredecible si se obtendrá una respuesta inmune al nivel requerido (Alien, D. et al. 1998 J. of Virol . 27: 651-659) (Jerome, E . et al. 1994 Eur. J. Immunol. 24: 2789-2795) . Otra estrategia es la diseñada en el caso del VIH con el objetivo de cubrir un amplio espectro de secuencias V3, es la generación de péptidos consenso. Esta se basa en el estudio de la variabilidad de los epitopos en los aislamientos de campo o clínicos, estableciendo para cada posición al aminoácido más conservado entre todos los aislamientos (Holley, L.H. et al. 1991 Proc. Nati. Acad. Sci. 88: 6800-6804) . Descripción de la Invención El objetivo técnico que se persigue con la invención propuesta es el desarrollo de un método de obtención de estructuras antigénicas de alta reactividad cruzada y capaces de potenciar la respuesta inmune a antígenos peptídicos administrados por vía sistémica y/o mucosal. Este método genera estructuras dendriméricas conjugadas que cuentan con una parte sintética acoplada a proteínas portadoras en proporciones adecuadas. La adición de estructuras semejantes portando otros epítopos B ha permitido incrementar la reactividad cruzada, con lo que se consigue además un incremento de la inmunogenicidad general de los antígenos coadministrados. Otros antígenos y adyuvantes pueden ser adicionados a esta preparación. Por lo tanto, uno de los objetos de la presente invención es un método de obtención de estructuras antigénicas que potencian la reactividad cruzada específica. Dicho método comprende los siguientes pasos: A) Selección del epítopo de interés; B) Obtención de estructuras dendriméricas con los epítopos seleccionados en el paso (A) mediante un método de síntesis, el cual puede ser la síntesis sobre un núcleo de lisinas o ácido aspártico; ó la síntesis sobre núcleos de moléculas orgánicas; la síntesis sobre un núcleo dendrimérico; el acoplamiento de péptidos sobre un núcleo dendrimérico; o mezclas sobre un mismo núcleo de epítopos de células B, de células T o de ambas; (C) Conjugación de una o varias de las estructuras dendriméricas obtenidas en el paso (B) , a una o varias moléculas portadoras mediante un método de conjugación que puede ser la conjugación utilizando glutaraldehido, anhídrido succínico, éster de ácido ß-maleimidopropionico-N hidroxisuccinimida (MPS) o empleando un espaciador sin cadenas laterales aromáticas, ya que se evidenció que la presencia de estas cadenas elimina la reactividad hacia la estructura dendrimérica acoplada. D) Mezcla de los conjugados obtenidos en el paso (C) para la obtención de las formulaciones mediante la adición del péptido del dominio de unión al CD4 o un conjugado que contenga este epítope, lo cual potencia la reactividad cruzada y la inmunogenicidad de la estructura antigénica resultante; y finalmente E.) Adyuvar en alúmina u otro adyuvante apropiado. En el método de la invención, los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) pueden ser regiones del Virus de Inmunodeficiencia Humana 1 ó 2, específicamente regiones variables como la región V3. Igualmente pueden ser empleadas regiones de virus que poseen determinado nivel de variabilidad y diversidad, entre ellos el virus de la Hepatitis C, B y los virus del Dengue. Igualmente pueden ser empleados antígenos que se correspondan con regiones polisacaridicas de Neisseria meningitidis, así como péptidos que raimetizan regiones antigénicas polisacaridicas, o cualquier región de un microorganismo o un patógeno .

De igual modo el método de la invención puede utilizar regiones de antigenos propios o antigenos relevantes en la obtención de vacunas contra el cáncer, como por ejemplo las regiones de la hormona liberadora de la gonadotropina . Entre las moléculas portadoras que pueden emplearse en el, método de la invención se incluyen el antigeno de superficie del virus de la hepatitis B, HbsAg, la proteina p64 de Neisseria meningitidís, el antigeno de la nucleocápsida del HIV, el antigeno de la nucleocápsida del virus de la Hepatitis B. También pueden ser empleadas para este fin moléculas de naturaleza polisacaridica como las partículas de dextrana. El método de la invención también comprende la conjugación de una o varias de las estructuras dendriméricas obtenidas en el paso (B) , a una o varias moléculas portadoras mediante conjugación covalente o asociación electrostática o por hidrofobicidad. Otro objeto de la invención es la estructura antigénica que se obtiene mediante el método anterior, la cual potencia la reactividad cruzada específica de preparados que la contienen, y que comprende los epítopos antigénicos descritos previamente en forma dendrimérica y acoplados a moléculas portadoras en una proporción entre 1 y 30% de la estructura resultante.

Los epitopos seleccionados pueden ser de naturaleza oligosacaridica o peptidica y dentro de esta última pueden utilizarse consensos peptidicos de regiones variables seleccionados por subtipos, subgrupos, serotipos u otra forma de asociación, asi como son bibliotecas de secuencias peptidicas del microorganismo seleccionado, o péptidos miméticos . Particularmente los péptidos que forman parte de la región dendrimérica pueden corresponderse con regiones variables del Virus de Inmunodeficiencia Humana 1 ó 2, y dentro de estas la región V3, y regiones de otros virus que poseen determinado nivel de variabilidad y diversidad, entre ellos el virus de la Hepatitis C, B y los virus del Dengue. Estas estructuras comprenden antigenos que se correspondan con regiones polisacaridicas de Neisseria meningitidis, asi como péptidos que mimetizan regiones antigénicas polisacaridicas, o cualquier región de un microorganismo o un patógeno . De igual modo las partículas pueden contener regiones de antígenos propios o antígenos relevantes en la obtención de vacunas contra el cáncer, como por ejemplo las regiones de la hormona liberadora de la gonadotropina. Entre las moléculas portadoras que conforman estas partículas pueden seleccionarse el antígeno de superficie del virus de la hepatitis B, HbsAg, la proteína p64K de Neisseria meningltidis, el antigeno de la nucleocápsida del HIV, el antigeno de la nucleocápsida del virus de la Hepatitis B. También pueden incluir moléculas de naturaleza polisacaridica como las partículas de dextrana. La invención también se relaciona con el uso de las estructuras antigénicas previamente descritas con fines de diagnóstico o para su inclusión en preparados vacunales profilácticos y terapéuticos en enfermedades infecciosas, autoinmunes, cáncer, así como con las formulaciones vacunales que se obtienen a partir de las mismas, las cuales pueden ser aplicadas por vía sistémica y mucosal. En el caso específico del lazo V3, se demuestra que es posible incrementar aun más la reactividad y la neutralización cruzadas con la adición de conjugados que porten al péptido de unión a CD4, siguiendo el mismo tipo de estructura que se desarrolló para potenciar la reactividad cruzada de los péptidos de regiones variables. La adición de estas estructuras incrementa la reactividad cruzada anti-V3 y la inmunogenicidad de antígenos coadministrados. El hecho de que este método favorezca la reactividad cruzada en estrategias vacunales que lo requieran no excluye que se aplique en otras estrategias vacunales que se puedan favorecer por el incremento de la inmunogenicidad.

La invención proporciona la metodología de obtención de nuevas estructuras químicas, basadas en una diferente presentación al sistema inmunológico de epitopos B de regiones variables de microorganismos en los que la variabilidad está relacionada a su patogenicidad, también de epitopos B de poca variabilidad pero que inducen una respuesta neutralizante o protectora, asi como epitopos B de antigenos propios, todos ellos dispuestos con una estructura dendrimérica sobre proteínas portadoras capaces de potenciar su reactividad cruzada y su inmunogenicidad. El método de obtención propuesto permite obtener antígenos vacunales presentados al sistema inmunológico de manera diferente a los convencionales y con mayor densidad epitópica, lo que incrementa la inmunogenicidad y la reactividad cruzada anti-péptido que se genera al conjugar el péptido multiantigénico a la proteína portadora. El método general descrito permite, además, disminuir las cantidades de las estructuras dendriméricas a utilizar para obtener mejores niveles de anticuerpos así como nuevas propiedades resultantes de esta distinta forma de presentación. Es fundamental destacar que en el caso de péptidos provenientes de regiones variables es posible aumentar la reactividad cruzada sin afectar la inmunogenicidad, como se describe en los ejemplos. Además de potenciarse la inmunogenicidad, se evidenció una potenciación de la reactividad cruzada, esto, además de posibilitar la obtención de mejores respuestas usando menores cantidades de péptidos, es una propiedad adicional que se potencia hasta niveles significativos . Por otra parte, este método permite acoplar diferentes estructuras dendriméricas a una misma molécula portadora. Igualmente se demostró que la combinación de mezclas de este tipo de estructuras, con estructuras semejantes portando el péptido de unión a CD4, permite incrementar la inmunogenicidad y reactividad cruzada de la respuesta anti-péptido V3. La nueva estructura puede contener una parte dendrimérica constituida solamente por los epítopos B ya que la ayuda T proviene del elemento portador, o sea el concepto de ??? usado como subunidad vacunal completamente sintética evadiendo el uso del elemento portador, se flexibiliza con la obtención de macromoléculas mitad natural o recombinante (portador de epitopo T) y mitad sintética y de naturaleza dendrimérica. Esta estrategia permite una mayor accesibilidad y exposición de los epitopos B de interés y brinda al sistema " inmune una variedad de distancias entre los péptidos presentados. Además, con el uso de los conjugados de estructuras dendriméricas a proteínas portadoras, se logra una potenciación de la reactividad cruzada y/o de la inmunogenicidad con dosis mucho más bajas respecto a las dosis de las estructuras dendriméricas (Ej . MAPs) en solución.

Por otra parte, ha sido probado el efecto sinérgico que puede obtenerse sobre la inmunogenicidad y sobre la reactividad cruzada con mezclas de estos conjugados. La presente invención se puede aplicar por via mucosal, y aún más, facilita por primera vez a la metodología de inmunización con MAPs alcanzar su uso por esta vía, una de las rutas de mayor interés en la actualidad. EJEMPLOS DE MODALIDADES Ejemplo 1. Método de obtención de las estructuras antigénicas. Las estructuras antigénicas pueden ser obtenidas a partir de la unión de estructuras dendriméricas a proteínas portadoras. La unión de estas se llevó a cabo utilizando el anhídrido succínico ' (AS) como agente espaciador. Este espaciador enlaza covalentemente a ambos antígenos a través de sus grupos aminos. Para esto, primeramente se pusieron a reaccionar las proteínas portadoras en buffer tampón pH 8.5 con el AS durante 30 minutos aproximadamente. El AS se activa en condiciones básicas formando el acilo correspondiente que reaccionará con los grupos aminos de la proteína. Posteriormente, los restos de AS son eliminados mediante el proceso de diálisis para evitar los entrecruzamientos de las moléculas dendriméricas (???) y péptido-péptido no deseados. La conjugación de los antígenos sintéticos a las proteínas portadoras se lleva a cabo activando previamente los grupos carboxilos con ECDI (una carbodiimida soluble) durante 5 minutos y adicionando seguidamente la macromolécula sintética (MAPs) . La separación de los conjugados se realizó mediante cromatografía de filtración en gel. Finalmente, estos fueron caracterizados por ELISA y Western Blotting empleando anticuerpos monoclonales (AcM) y sueros de ratones. Ejemplo 2. Método de obtención de las estructuras antigénicas empleando diferentes agentes espaciadores. La obtención de las estructuras antigénicas se realizó utilizando diferentes agentes espaciadores. Un requisito deseable para obtener un conjugado de buena calidad inmunológica es que la unión a la proteína se realice lo más lejos posible de los residuos que forman parte del epítopo o epítopos relevantes. Para evitar este fenómeno, fueron empleados diferentes agentes espaciadores: glutaraldehído, éster de M-maleimidobenzoyl-N-hidroxisuccinimida (MBS), éster de ácido ß-maleimidopropionico-N-hidroxisuccinimida (MPS) y anhídrido succínico (AS) . Idealmente, un buen agente espaciador no debe generar respuesta de anticuerpos contra sí mismo. En los estudios realizados se encontró que los títulos generados contra el epítopo JY1 por los diferentes conjugados de HBsAg-MAP utilizando diferentes agentes espaciadores fueron altos, excepto para el conjugado de MBS en el cual la respuesta fue nula, siendo alta la respuesta anti-espaciador cuando se inmunizaron los ratones -con conjugados que difirieron en agente acoplante. Este hecho demuestra que todos los agentes espaciadores reportados en la literatura no se comportan de igual manera, lo cual indica que en la obtención de este tipo de estructuras no es obvio el uso de cualquier agente acoplante previamente descrito en el estado del arte. Ejemplo 3. Diseño, síntesis y conjugación de nuevas estructuras dendriméricas al HBsAg. Teniendo en cuenta que las estructuras antigénicas (conjugados ???-proteínas) generaron altos títulos contra péptidos de interés. Se realizó la síntesis individual de nuevas estructuras dendriméricas, pero esta vez sin necesidad de incluir en su secuencia péptidos T auxiliadores producto de la presencia de los epítopos T de la proteína portadora. Este hecho facilita la síntesis de este tipo de estructuras, posibilita la incorporación de epítopos B de mayor tamaño y evita la formación de estructuras extrañas que se generan por la secuencia lineal T-B. Una vez sintetizado los dendrímeros fueron conjugados individualmente al HBsAg como fue descrito en el ejemplo 1. La síntesis de estos MAPs se realizó como fue descrito por J. Tam et. al. (1988). Posteriormente, los conjugados son separados de las estructuras dendriméricas por cromatografía de filtración en gel y la concentración se determinó por Comassie.

Ejemplo 4. Estudio de potenciación de la inmunogenicidad y la reactividad cruzadas. Con el objetivo de estudiar el efecto de la conjugación del MAP a una proteina portadora sobre la inmunogenicidad y la reactividad cruzada se inmunizaron por via subcutánea en ACF/AIF, 2 grupos de 10 ratones Balb/c hembras entre 6-8 semanas cada uno. Los grupos fueron: 1, MAP8 (TT-JY1) y 2, HBsAg-MAP8 (TT-JY1) . Las dosis fueron de 50 y 10 g respectivamente. El esquema de inmunización fue de 0-14-28-40 dias y se desangró a los ratones en los días 36 y 51. El conjugado HBsAg-MAP8 (TT-JY1) se obtuvo utilizando como agente espaciador al anhídrido succínico como fue descrito en el ejemplo 1. El MAP8 (TT-JYl) contiene 8 copias del epítopo para células T, que pertenece a la región 830-844 del toxoide tetánico (TT) y contiene 8 copias para células B, que comprende la región central del lazo V3 de la- gpl20 del aislamiento JYl del HIV-1 (Cruz, L.J. et al. 2000 Journal of Peptide Science 6: 217-224). Después de la tercera y cuarta dosis se estudió la respuesta anti-JYl por ELISA y la reactividad cruzada. La respuesta de anticuerpos se cuantificó por ensayo inmuno-enzimático (ELISA) para la determinación de IgG anti-péptido JYl en suero. El estudio de la reactividad cruzada se hizo por ELISA indirecto recubriendo con los diferentes péptidos V3 conjugados a BSA (Gómez, CE. et al. 1998 J. Virol . Methods . 71: 7-1618). Las mezclas de los sueros fueron ensayadas a una dilución 1/100. El análisis estadístico de los resultados se realizó por el test de Student: p<0.05 se consideró diferencia significativa y p<0.01 altamente significativa. Después de la tercera dosis no hubo diferencias en cuanto a inmunogenicidad entre los grupos aunque se puso 5 veces menos cantidad en cuanto a masa del conjugado respecto del MA.P lo cual evidencia la ventaja en cuanto a economía de antígeno de esta estrategia (Fig. 1A) . En el grupo inmunizado con el conjugado se observa una reactividad cruzada hacia otros péptidos V3 que no aparecen en el grupo inmunizado con el MAP incluso con similares niveles de inmunogenicidad (Fig. IB) . Luego de cuatro dosis si existen diferencias significativas entre los grupos en cuanto a inmunogenicidad anti-JYl, además se produjo un incremento de la reactividad cruzada en ambos inmunógenos siendo más intensa y amplia en el caso del conjugado (Fig. IB) . El resultado del aumento de la inmunogenicidad es muy interesante pues en la literatura se reportan experimentos donde se inoculan mezclas de MAPs para lograr un reconocimiento amplio de varios epítopos; pero la masa que se necesita poner de cada MAP para lograr el efecto deseado hace en ocasiones que la masa total que resulta de la suma de cada uno sea tan grande que no es posible inocularla a humanos por los efectos secundarios que provoca. De lo dicho resulta que es muy importante lograr alta inmunogenicidad con la menor masa a inocular posible. Lo que demuestra la superioridad de las estructuras resultantes de la metodología que se describe. Si tomamos en cuenta que esa menor masa tiene a la vez la propiedad de tener mayor reactividad cruzada esto implica que la cantidad de regiones variables correspondientes a un epítopo, necesarias para inocular un coctel, son menores. Además, el uso de conjugados da la posibilidad de generar vacunas bivalentes si la proteína portadora tiene per se capacidad protectora como es el caso del antígeno de superficie del virus de la hepatitis B. Ejemplo 5. Estudio de la respuesta humoral de ratones inmunizados con MAP8 (TT-JY1) y TAB9. Con el objetivo de estudiar las diferencias en cuanto a presentación del epítopo JY1 al sistema inmune entre los grupos inmunizados con la proteína recombinante TAB9 (Duarte, C.A. et al. 1994 AIDS Res Hum Retroviruses .10 : 235-243), que incluye dentro de su secuencia 6 péptidos de 15 aminoácidos cada uno de la región V3 del VIH-1 de los aislamientos LR150, JY1, RF, MN, BRVA, IIIB) y el MAP8 (TT-JY1) , se realizó un experimento para estudiar el reconocimiento de los diferentes péptidos V3 presentes en TAB9 y establecer las diferencias en el reconocimiento del epítopo JY1 a través del mapeo en papel con péptidos sustituidos por el aminoácido alanina en cada posición de la secuencia del epitopo JY1. Se inmunizaron por vía subcutánea en ACF/AIF, 2 grupos de 10 ratones Balb/c hembras entre 6-8 semanas cada uno con 100 g de la proteina TAB9 y 16.4 g de ???8 (TT-JY1) (la masa de ambos inmunógenos equivale a igual molaridad de epitopos JY1) . El esquema de inmunización fue de 0, 14, 28, 56 días y se desangró a los ratones en el día 67. La respuesta de anticuerpos se cuantificó por ensayo inmuno-enzimático (ELISA) para la determinación de IgG anti-péptido JY1 en suero. El análisis estadístico de los resultados se realizó por el test de Student: p<0.05 se consideró diferencia significativa y p<0.01 altamente significativa. El estudio de la reactividad cruzada se hizo por ELISA indirecto recubriendo con los diferentes péptidos V3 conjugados a BSA (Gómez, CE. et al. 1998 J. Virol. Methods . 71: 7-16). Las mezclas de sueros fueron ensayadas a una dilución de 1/100. El mapeo epitópico sobre soporte de celulosa se realizó según fue descrito por Ronald Frank (Frank, R. 1992 Tetrahedron 48: 9217-9232) . El análisis del reconocimiento de varios péptidos V3 de las mezclas de sueros después de cuatro dosis de los diferentes grupos, mostró que los ratones inmunizados con el MAP8 (TT- JY1) son capaces de reconocer 4 (LR150, RF, MN, BRVA) de los 5 péptidos analizados para la reactividad cruzada (Fig. 2A) . Entre los péptidos que fueron reconocidos 3 de estos (RF, MN, BRVA) dieron valores de densidad óptica mayores de 1.25 D.O. lo que implica una fuerte reactividad. En el caso particular de RF la reactividad cruzada fue muy elevada (D.O 2.5). Lo anterior evidencia la gran reactividad cruzada que se genera por esta manera de presentación del epitopo al sistema inmune. En el caso de la proteina TAB9, que presenta los 6 epitopos en su secuencia, no se reconocieron dos de los péptidos V3 (RF y BRVA) . Además fueron débilmente reconocidos (< 0.75 D.O.) los péptidos MN y IJIB. Solamente los péptidos JYl y LR150 dieron valores de DO muy elevados. Este experimento permite concluir que la presentación del epitopo JYl al sistema inmune por el MAP hace posible el reconocimiento por reactividad cruzada de otros péptidos V3 lo cual es, evidentemente, una cualidad que optimiza la cantidad de antigenos dentro de una estrategia encaminada a la búsqueda del mayor reconocimiento posible en un universo de secuencias peptidicas con homologías. El resultado obtenido para la proteína TAB9 evidencia que la solución técnica de incluir un conjunto de secuencias dentro de una construcción para generar respuesta contra todas estas no es siempre viable. De hecho, en este sentido el MAP8 (TT-JY1) mostró un comportamiento muy superior.

Como es posible que las diferencias encontradas en cuanto al reconocimiento de péptidos V3 estén dadas por las diferentes formas de presentación de los epitopos al sistema inmune, se llevó a cabo un mapeo epitópico y un barrido con alanina de las mezclas de los sueros de ambos grupos para determinar sus diferencias. En el caso del mapeo se encontró que ambos grupos reconocen la misma zona del péptido, LGQALY. Sin embargo, en el barrido con alanina se observó una pequeña diferencia. Para el grupo del ???8 (TT-JY1) , los aminoácidos involucrados en el reconocimiento fueron LXQXXY. Mientras que para el grupo de TAB9 fueron importantes LXQXLY. Esta ligera diferencia genera diferentes patrones de reconocimientos hacia los péptidos V3. Aunque es posible especular que la estructura tridimensional que adopta el péptido dentro de la estructura MAP sea la responsable de la reactividad cruzada encontrada. En el caso de la proteina TAB9 la forma en que los péptidos V3, presentes en su secuencia, son expuestos al sistema inmune es diferente con respecto a los MAPs . Este experimento demuestra que esta exposición es responsable de la reactividad cruzada observada. Ejemplo 6. Comparación de la inmunogenicidad de diferentes formas de presentación de péptidos sintéticos al sistema inmune. Con el objetivo de evaluar la inmunogenicidad de diferentes formas de presentación de péptidos sintéticos al sistema inmune, por vía subcutánea, se inocularon 9 grupos de 8 ratones Balb/c hembras. El esquema de inmunización fue de 0-14-28 días y se desangró a los ratones 10 días después de la última dosis. Los grupos inmunizados, las dosis y los adyuvantes utilizados se presentan en la figura 3A. El ???4 (TT-JY1) contiene 4 epítopos de células B (JY1) repetidos, y 4 epítopos para células T (TT) . El péptido (TT-JY1) contiene dos epítopos B (JY1) y T (TT) situados consecutivamente. El polímero se obtuvo por polimerización de las cisteínas colocadas en los extremos C y N terminal del péptido anteriormente señalado (Cruz, L.J. et al. 2000 Biotecnología Aplicada 17:35-38) . El péptido también fue sintetizado sobre micropartículas de dextrana. Las variantes HBsAg-péptido (TT-JY1), HBsAg-MAP4 (TT-JY1) y HBsAg-MAP8 (TT-JY1) se obtuvieron por conjugación a través del agente espaciador anhídrido succínico como fue descrito en el ejemplo 1. El grupo inmunizado con HBsAg (grupo 9) se tomó como placebo. La respuesta de anticuerpos se cuantificó por ensayo inmuno-enzimático (ELISA) para la determinación de IgG anti-péptido JY1 en suero . El análisis estadístico de los resultados se realizó por el test de Student: p<0.05 se consideró diferencia significativa y p<0.01 altamente significativa. Se demostró que con el uso de MAP conjugados al HBsAg (grupo 7 y 8) fue posible incrementar significativamente la respuesta inmune al péptido JYl respecto a los MAPs sin conjugar y el polímero (grupos 1, 2 y 3), entre los MAPs y el polímero no se observó diferencias significativas y estos fueron superiores estadísticamente al péptido (grupo 4) . La única variante que no difirió en cuanto a inmunogenicidad de los conjugados HBsAg-MAP fue la del péptido acoplado a dextrana (grupo 5) (Fig. 3B) . Sin embargo, debe señalarse que la cantidad de proteína inoculada en el grupo del conjugado fue 4 veces menor. Este experimento demuestra que la potenciación de la respuesta inmune contra el epitopo JYl después de la conjugación de los MAPs al HBsAg es altamente significativa respecto de los MAPs. Aunque los MAPs fueron creados para evitar la conjugación a proteínas portadoras, no obstante, luego de la conjugación de los mismos a estas últimas la respuesta inmune se potencia a niveles muy elevados con 4 veces menos cantidad de proteína total inoculada. Este experimento permite concluir que la mejor variante, dentro de las ensayadas, es la conjugación de los MAPs a una proteína portadora (en este caso HBsAg) . Ejemplo 7. Estudio de reactividad cruzada para las diferentes formas de presentación de péptidos sintéticos al sistema inmune. Con el objetivo de evaluar la reactividad cruzada de diferentes formas de presentación del epitopo JYl, se tomaron mezclas de sueros correspondientes a diferentes esquemas de inmunización, se igualaron en títulos anti-péptido JY1 (aproximadamente 1/105) y se evaluó su reactividad frente a un panel de 5 péptidos V3 correspondientes a diferentes aislamientos del VIH-1. En todos los esquemas de inmunización comparados se inocularon ratones Balb/c hembras por vía subcutánea en grupos de 10 en un volumen final de 100 µ]1? . El esquema de inmunización fue de: 0, 14, 28, 56, 99 días desangrándose a los ratones 10 días después de la última dosis. En todos los esquemas no se completaron las cinco inoculaciones. Los datos correspondientes a cada grupo aparecen en la figura 4A. Los grupos que tienen igual número de esquema de inmunización pertenecen al mismo esquema. De este experimento se evidenció que la reactividad cruzada está asociada a la estructura del péptido V3 ya que en mayor o menor grado existe para todas las formas en que se presenta el epítopo B (JY1) , pero su intensidad depende de la forma en que es presentado el mismo al sistema inmune (grupos 2, 3, 8 y 9) . Además, se demuestra que la reactividad cruzada inducida puede llegar a ser incluso superior a la respuesta generada con un inmunógeno .que presenta todos los péptidos analizados en el estudio (grupos 1, 2, 3, 8 y 9) (Fig. 4B) . Cuando se compara la reactividad cruzada entre los grupos inmunizados con ???4 (TT-JYl) y MAP8 (TT-JY1) con los grupos HBsAg-MAP8 (TT-JY1) y HBsAg-MAP4 (TT-JY1), se encuentran niveles semejantes. Sin embargo, es importante notar que los grupos inmunizados con los conjugados recibieron una menor cantidad de proteina y a su vez tienen una inoculación menos que los grupos inmunizados con MAPs. El análisis de la reactividad cruzada de los MAPs con solo cuatro dosis (ejemplo 4) evidenció una reactividad cruzada mucho menor, evidenciándose la potenciación de la reactividad cruzada luego de la conjugación. Por tanto, este experimento corrobora el resultado obtenido en el ejemplo 4. Ejemplo 8. Evaluación inmunológica de nuevos conjugados de dendrímeros con HBsAg. Análisis del reconocimiento de los sueros frente a un panel de péptidos V3. Con el objetivo de evaluar las interacciones entre diferentes conjugados previendo el uso de una multiplicidad de este tipo de estructura en las vacunas que describimos y con el objetivo de demostrar la actividad potenciadora sobre la inmunogenicidad y la reactividad cruzada de la mezcla de conjugados MAP-HBsAg por via subcutánea, se ensayaron los siguientes grupos de inmunización: 1, HBsAg-MAP (péptido consenso de V3) ; 2, HBsAg-MAP4 (CD4) ; 3, Mezcla de los conjugados HBsAg-MAP4 (péptido consenso) y HBsAg-MAP4 (CD4) ; 4, HBsAg-MAP4 (péptido librería de V3) ; 5, Mezcla de los conjugados HBsAg-MAP4 (péptido librería de V3) y HBsAg-MAP4 (CD4) . La secuencia de los péptidos aparece resumido en la figura 5A-2. Se inmunizaron ratones Balb/c hembras por vía subcutánea en grupos de 10 en un volumen final de 100 µ?.. Las dosis fueron de 10 g para los grupos 1, 2 y 4; los grupos 3 y 5 se inmunizaron con 5 g de cada conjugado en la mezcla. El esquema de inmunización fue: 0, 14, 28, 56, 84 dias, desangrándose los ratones 10 dias después de la última dosis. Un resumen del esquema de inmunización se presenta en la figura 5A-1. Se evaluó la reactividad cruzada frente a un panel de 50 péptidos V3 sintetizados sobre membrana de celulosa correspondientes a diferentes aislamientos del VIH-1. Además, se evaluó la reactividad cruzada por ELISA frente a los 5 péptidos V3 mencionados en el ejemplo de la figura 1A-1C. Siempre se usaron las mezclas de sueros de cada grupo diluidas 1/100. La respuesta de anticuerpos se cuantificó por ensayo inmuno-enzimático (ELISA) para la determinación de IgG anti-péptidos consenso de V3, CD4 y librería de V3 en suero. El análisis estadístico de los resultados se realizó por el test de Student: p<0.05 se consideró diferencia significativa y p<0.01 altamente significativa. En el caso de los grupos HBsAg-MAP4 (librería) y HBsAg-MAP4 (consenso) se observa una respuesta de anticuerpos muy débil contra péptidos homólogos aún después de cinco dosis (figura 5A-3) . Es notable que la mezcla de los sueros de los animales inmunizados con MAP librería no reconoce ningún péptido V3 de los ensayados en el estudio de la reactividad cruzada, ni siquiera fue capaz de reconocer al MAP homólogo, ni al péptido consenso conjugado a BSA. Sin embargo, en el grupo inmunizado con la mezcla de conjugados conteniendo los MAPs para CD4 y librería aparecen altas reactividades para el péptido consenso así como para el MAP librería lo cual no puede atribuírsele al MAP CD4 puesto que en el grupo inmunizado con este no aparece ninguna reactividad contra alguno de estos antígenos . Del último resultado se puede concluir que existió un efecto sinérgico en la mezcla de los conjugados que resultó en una potenciación muy elevada de las respuestas humorales anticonsenso y anti-librería . 0 sea, el MAP CD4 tiene un efecto inmunopotenciador apreciable sobre la respuesta anti-V3 que se manifiesta muy potente usando dosis de inmunógenos 2 veces menor en la mezcla respecto a los conjugados inoculados individualmente. El mismo efecto sinérgico se observa en el grupo de la mezcla CD4 y consenso. En este experimento se demostró que en los ratones inmunizados con las mezclas de los conjugados (grupos 3 y 5) se obtuvo una respuesta hacia ambos epítopos B incluidos en la formulación (figura 5A-3) . Estos conjugados fueron preparados de forma independiente y luego mezclados en la formulación para evitar la dificultad de las proporciones de uno con respecto al otro. Esto se reflejó en las tres mezclas utilizadas donde se obtuvieron niveles de respuesta anti-péptido similares para cada péptido. La respuesta anti-péptido consenso y anti-libreria fue significativamente superior cuando ambos se inmunizaron en la mezcla con el péptido CD4 con respecto a la respuesta contra ellos mismos inmunizados como conjugados individuales. La respuesta anti-consenso se incrementó y la respuesta anti-libreria apareció a un alto nivel como se aprecia en la figura 5b-l y 5b-2. No obstante que en la mezcla se inoculó la mitad de la dosis que se administra con los conjugados individuales . Este resultado evidencia que es posible potenciar la respuesta anti-V3 con la formulación de mezclas conteniendo al péptido CD4 conjugado (Figura 5b-l y 5b-2) . El incremento en la reactividad cruzada se evidenció por ELISA anti-péptidos del V3. Se tomaron los péptidos presentes en la proteina TAB9, previamente descritos en la figura 1A-1C y se evaluaron los sueros de este esquema. Con respecto a la interacción entre los péptidos consenso y CD4 se observó que la mezcla generó altos títulos de respuesta por reactividad cruzada propia del CD4 y por la reactividad normal del consénso incrementada por el efecto potenciador de la adición del conjugado HBsAg- MAP4 (CD4) . Además las mezclas de los sueros de los grupos 3 y 5 después de cuarta y quinta dosis fueron analizadas frente a un panel de 50 péptidos V3. En el caso del grupo 5 (mezcla CD4 y librería) se reconocen luego de cuatro dosis el 26% (13/50) de los péptidos ensayados, llegando hasta un 30% (15/50) después de 5 dosis. En cuarta dosis un 53% (7/13) de los péptidos reconocidos tuvieron una elevada reactividad y luego de 5 dosis un 46% (7/15) de estos. Para el caso de la mezcla del grupo 3 (mezcla CD4 y consenso) cuando fue analizada frente al mismo panel de péptidos se obtuvo un reconocimiento del 72% (36/50) luego de cuatro dosis y un 92% (46/50) después de cinco dosis. El 50% (18/36) de los péptidos reconocidos luego de cuatro dosis tuvieron una alta reactividad y luego de 5 dosis fue del 48% (22/46) . De este experimento podemos concluir que con la mezcla HBsAg-M2\P4 (consenso) y HBsAg-MAP (CD4) se obtuvo un mayor espectro de reconocimiento que en el caso de la librería. Como el péptido consenso se generó a partir de la selección de los aminoácidos más frecuentes para cada posición dentro del conjunto del panel de péptidos ensayados y la librería a su vez también fue generada a partir del mismo panel podemos concluir que la estrategia más aceptada para generar el mayor espectro de reconocimiento consiste en la inmunización de un ??? conteniendo el péptido consenso conjugado a una proteina y mezclado con otro conjugado que ejerce un efecto sinérgico. Ejemplo 9. Comparación de la respuesta inmunológica del péptido V3 (JY1) en forma lineal y de MAP, acoplado a diferentes proteínas portadoras. Con el objetivo de estudiar el efecto de la conjugación de la estructura dendrimérica (en este caso MAP) a diferentes proteínas portadoras sobre la inmunogenicidad y la reactividad cruzada, el péptido JY1 en forma lineal y de estructura dendrimérica MAP se acopló a diferentes proteínas portadoras (HBsAg, KLH y P64k) . La conjugación del péptido y el MAP a los diferentes portadores se efectuó por el método del anhídrido succínico en los grupos del 5 al 9. El grupo 10 fue un control de conjugado HBsAg-MAP utilizando MPS como agente espaciador. Se inocularon 9 grupos de 8 ratones Balb/c hembras por vía subcutánea. El esquema de inmunización fue de 0-14-28-56 días y se desangró a los ratones 10 días después de la última dosis. Los grupos inmunizados, las dosis y los adyuvantes utilizados se presentan en la figura 6A. La respuesta de anticuerpos se cuantificó por ensayo inmuno-enzimático (ELISA) para la determinación de IgG anti-péptido JY1 en suero. La reactividad cruzada también fue evaluada por ELISA empleando un panel de péptidos descritos en el ejemplo 5, además se utilizó como control un péptido no relacionado . El análisis estadístico de los resultados se realizó por el test de Student: p<0.05 se consideró diferencia significativa y p<0.01 altamente significativa. La respues a de anticuerpos de los conjugados de proteínas-MAP fue en todos los casos superior a la respuesta inmunológica de los conjugados de péptido-proteina (Fig. 6B) . La respuesta del conjugado HBsAg-MAP8 (TT-JY1) fue similar a la respuesta de la KLH-MAP8 (TT-JY1) y estas a la vez fueron superiores estadísticamente a la obtenida con el conjugado P64k-MAP8 (TT-JY1) . Por otra parte, la respuesta de anticuerpos obtenida por los conjugados de MAPs a proteínas portadoras fue significativamente superior (p<0.05) a la del MAP8 JY1 per se excepto para el caso del conjugado de P64k-MAP8 (TT-JY1) aunque es importante señalar que se inoculó una masa total inferior. Estos resultados demuestran que el empleo de los conjugados de estructuras dendriméricas a proteínas portadoras optimiza la cantidad total de inmunogeno a utilizar. Se observó reactividad cruzada inmunizando con todos los conjugados contra más de dos péptidos V3 heterologos como mínimo y fue en aumento de tercera a cuarta dosis (Fig. 6C-1 y 6C-2) . Además se pudo evidenciar que la reactividad cruzada fue significativamente superior en las variantes en que los dendrímeros (MAPs) se acoplan a los conjugados con respecto a los MAPs sin acoplar y a los conjugados de péptidos (Fig. 6C-1 y 6C-2) . Ejemplo 10. Determinación de la inmunogenicidad y reactividad cruzada de los sueros generados por estructuras dendriméricas del péptido del lazo V3 del aislamiento RF. Con el objetivo de demostrar que el efecto de potenciación de la inmunogenicidad y de la reactividad cruzada encontrada es independiente de la secuencia del péptido V3 usada, se determinaron ambas en los sueros generados por estructuras dendriméricas de otro péptido del lazo V3 -diferente al JY1-. Se tomó al péptido del aislamiento RF, cuya secuencia se corresponde con la descrita en la figura 1C. El esquema de inmunización se realizó en ratones Balb/c hembras de 8 a 10 semanas de edad y tuvo inoculaciones los dias 0, 14 y 28, las extracciones se realizaron preinmune y luego de tercera dosis. Los antigenos inoculados fueron el MAP8 (TT-RF) , obtenido de acuerdo a lo descrito por James Tam et al. 1988 y la estructura dendrimérica obtenida cuando se conjugó este ??? al HBsAg empleando el método del anhídrido succinico como fue descrito previamente en el ejemplo 1. Las dosis empleadas fueron de 40 y 10 µg respectivamente. Como se puede observar en la figura 7, la estructura dendrimérica acoplada al HBsAg como el MAP, generaron reactividad cruzada, y luego del análisis estadístico se demostró que se incrementaron significativamente la inmunogenicidad y la reactividad cruzada de los sueros obtenidos inmunizando con el conjugado dendrimérico HBsAg-MAP8 (TT-RF) . Ejemplo 11. Análisis inmunológico de diferentes MAPs conjugados a proteínas portadoras. Con el objetivo de estudiar el efecto de la potenciación de la inmunogenicidad de diferentes MAPs unidos covalentemente a proteínas portadoras, se realizó la síntesis de diferentes MAPs en forma tetramérica y el péptido correspondiente. El MAP4- (NM) y el péptido- ( M) contienen un epítopo derivado del lazo 4 de la proteína de membrana externa P1.15 de la cepa B385 de Neisseria meningitidis (HYTRQ NADVFVPAWG) . El MAP4- (D) y el péptido-D contienen un epítopo derivado de la proteína pre-M/M del virus Dengue-2 (LTTRNGEPHMIVSRQE GKSLLFKTGDGVG) . Estos fueron sintetizados según fue descrito por James Tam et al.1988. El MAP4- (NM) y el péptido-NM fueron conjugados a las proteínas portadoras KLH y P64k empleando el método específico del éster de ácido ß-maleimidopropionico-N-hidroxisucciniiuida (MPS) . La reacción de conjugación se llevó a cabo derivatizando cada una de las proteínas con exceso de este espaciador en tampón fosfato 50 mmol/L en DMF a pH 6 durante 30 min. Posteriormente, las proteínas derivatizadas fueron dializadas con el fin de eliminar el exceso de MPS. Al MAP4- (NM) y el péptido-NM se le añadió durante la síntesis en su extremo C-terminal una cisterna que contiene el grupo -SH. Las proteínas derivatizadas con la función maleimida reaccionaron espontáneamente con los tioles libres de cada uno de estos MAPs respectivamente durante 3 a TA. La purificación de estos conjugados se realizó de forma similar a los de los ejemplos anteriores. En el caso del MAP4- (D) y el péptido-D fueron conjugados a las proteínas KLH y P64k utilizando el método directo de la carbodiimida soluble. El MAP4- (D) y el péptido-D contienen en el extremo C-terminal de su secuencia un grupo carboxilo, que permite la unión directa a los grupos aminos de las proteínas portadoras (KLH y P64k) . Para evaluar la inmunogenicidad de los diferentes MAPs conjugados a las proteínas KLH y -P64k, por vía subcutánea, se inocularon 12 grupos de 8 ratones Balb/c hembras. El esquema de inmunización fue de 0-14-28 días y se desangró a los ratones 10 días después de la última dosis. Los grupos inmunizados, las dosis y los adyuvantes utilizados se presentan en la figura 6A La respuesta de anticuerpos se cuantificó por ensayo inmuno-enzimático (ELISA) para la determinación de IgG anti-péptido en suero. El análisis estadístico de los resultados se realizó por el test de Student: p<0.05 se consideró diferencia significativa y p<0.01 altamente significativa. Como se puede observar en la figura 8B. Los mayores títulos correspondieron a los conjugados de KLH-MAP4- (D) y P64k-MAP4- (D) . En todos los casos los títulos de los conjugados de proteínas-MAPs fueron significativamente superiores a los conjugados de proteinas-péptidos . Para estos últimos, se obtuvieron títulos similares a los correspondientes MAPs . De este experimento se puede concluir que la conjugación de moléculas dendriméricas conteniendo secuencias de patógenos diferentes a proteínas portadoras permite un incremento significativo de la inmunogenicidad. Ejemplo 12. Estudio de inmunización nasal utilizando dendrímeros conjugados. Con el objetivo de demostrar la generación de respuestas de anticuerpos con alta reactividad cruzada luego de inmunizaciones nasales, un grupos de 8 ratones de 10 a 12 semanas fue inoculado con 10 ]ig de HBsAg acoplado al MAP8 (TT-JY1), como control se utilizó un grupo de 8 ratones a los que se le administraron 40 ig del MAP8 (TT-JY1) , la respuesta de anticuerpos contra ambos inmunógenos se evaluó por ELISA para la determinación de IgG anti-JYl y se realizó el análisis de la reactividad cruzada contra un panel de 5 péptidos V3. El grupo control no generó respuesta detectable anti-JYl, en cambio, el grupo inmunizado con el conjugado HBsAg-MAP8 (TT-JY1), generó fuertes respuestas contra el péptido homólogo y en el 100% de los casos, se pudo encontrar reactividad cruzada contra los péptidos heterólogos . Este resultado evidenció el papel crítico de la conjugación para la obtención de respuestas contra el dendrímero, además de que demostró la generación de una fuerte reactividad cruzada contra diferentes péptidos V3 por vía mucosal. Otros dendrímeros que tuvieron idéntico resultado fueron los preparados de acuerdo al ejemplo 2, utilizando como elementos portadores a los antígenos de nucleocápsida de los virus de Hepatitis B, de Hepatitis C y de Dengue Virus. Asimismo utilizando como la parte sintética de la estructura dendrimérica a péptidos de la hormona liberadora de la gonadotropina sobre los antigenos anteriormente mencionados, se pudo comprobar una reducción en el tamaño de las gónadas significativamente respecto al control de los péptidos solos y de los ratones sin inmunizar. Ejemplo 13. Análisis de la neutralización cruzada a diferentes aislamientos del HIV-1 de sueros con reactividad cruzada . Con el objetivo de evaluar la neutralización cruzada de sueros que reconocen a diferentes péptidos del lazo V3 de la gp 120 del HIV-1, se realizó un ensayo ín vitro usando diferentes aislamientos de laboratorio del HIV-1 (M , RF, IIIB y un asilamiento similar a JY1) . Para esto se tomaron pooles de los sueros de aquellos grupos cuyos inmunógenos tuvieron mayor capacidad de reactividad cruzada: HBsAg-MAP8 (TT-JY1) (ejemplo 4), HBsAg-???d (TT-RF) (ejemplo 10) y la mezcla HBsAg-MAP4 (CD4) con HBsAg-MAP4 (consenso) (ejemplo 8) . Estos estudios mostraron que dentro de la respuesta de anticuerpos inducida por cada inmunógeno hay capacidad para ejercer un efecto neutralizante sobre aislamientos heterólogos. Se demostró que los sueros de ratones inmunizados con conjugados dendri éricos conteniendo un epitopo de un solo aislamiento fueron capaces de generar neutralización cruzada frente a diferentes aislamientos del HIV-1 mencionados más arriba. Se evidenció además que los sueros de ratones inmunizados con la mezcla HBsAg-MAP4 (CD4) con HBsAg-MA 4 (consenso) tuvieron un alto nivel de neutralización cruzada. Ejemplo 14. Síntesis de estructuras dendriméricas empleando diferentes núcleos. Con el objetivo de incrementar la amplificación de los epítopos B por unidad molecular. Se realizó la síntesis indirecta la cual consiste en sintetizar el núcleo y los péptidos de forma separada. Este sistema evita los errores inherentes en la síntesis de secuencias largas y permite una mayor incorporación de epítopos B o T dentro de una misma matriz adecuadamente funcionalizada . La síntesis del núcleo dendrimérico se llevo a cabo por reacción de los grupos aminos del 1, 6 diaminohexano con los grupos carboxilos del aminoácido Boc-Lys (Boc)-OH empleando diciclohexilcabodiimida (DCC) como activador.

Luego, se realizó la desprotección con trifluoroácetico (TFA) al 37% en diclorometano (DCM) , obteniéndose un núcleo con 4 extremos reactivos para producir una estructura dendrimérica tetravalente, después hay un segundo y un tercer nivel de acoplamiento de Boc-Lys (Boc)-OH, empleando el mismo ciclo de reacciones para obtener un núcleo que contiene 16 grupos amino reactivos. Posteriormente, se ponen a reaccionar estos grupos aminos con el grupo carboxilo del anhídrido del ácido bromo acético. El núcleo es purificado por RP-HPLC empleando una columna C8. El péptido JY1 fue sintetizado previamente conteniendo una cisteina en el extremo C-terminal el cual se pone a reaccionar en proporciones adecuadas con el núcleo obtenido. La formación del tioéter debido a la interacción entre el grupo heteroátomo del núcleo y el grupo tiol de la cisteina del péptido se llevo a cabo en condiciones básicas (pH, 8-9) (Fig.9). El grado de incorporación fue determinado por SDS-PAGE y filtración por gel. Se obtuvieron moléculas dendriméricas entre 40 y 50 kD. Esta estructura dendrimérica fue acoplada a diferentes proteínas portadoras utilizando los espaciadores anteriormente descritos en el ejemplo 2. Las estructuras antigénicas obtenidas fueron utilizadas en diferentes esquemas de inmunización donde fue demostrada la superioridad inmunológica de estas. Este sistema ofrece diversas ventajas; varios péptidos antigénicos B o T preparados separadamente pueden ser incorporados dentro de una única matriz adecuadamente funcionalizada (4-6H), los péptidos antigénicos pueden ser conjugados por el C o N-terminal según las características del epítopo del interés. Además, permitiendo la purificación de los determinantes individuales, evitando errores inherentes en la síntesis de secuencias largas. Breve descripción de las figuras . Figura 1A: Estudio de la inmunogenicidad después de tres y cuatro dosis. Grupos: 1, MAP8 (TT-JY1) y 2, HBsAg-MAP8 (TT-JYl) . Las dosis fueron de 50 y 10 g respectivamente. Figura IB: Estudio de la reactividad cruzada. Después de tres y cuatro dosis. Se ensayaron pooles de sueros de ambos grupos a una dilución fija de 1/100. Se realizó un ELISA indirecto recubriendo con los diferentes péptidos V3 conjugados a BSA. Figura 1C: Secuencias de aminoácidos de los péptidos V3 del VIH-1 ensayados. Figura 2A: Estudio del reconocimiento hacia varios péptidos V3 de las mezclas de sueros después de cuatro dosis. Grupos: 1, MAP8 (TT-JYl); 2, TAB9. Las dosis fueron de 16,4 y 100 µg respectivamente. Figura 3A: Grupos inmunizados. Figura 3B: Estudio comparativo de la inmunogenicidad de las diferentes formas de presentación del péptido JY1 al sistema inmune. Figura 4A: Resumen del esquema de inmunización. Figura 4B: Estudio de reconocimiento de los diferentes péptidos V3 de sueros obtenidos a partir de diferentes formas de presentación del péptido JY1 al sistema inmune . Figura 5A-1: Resumen del esquema de inmunización. Figura 5A-2 : Secuencias de aminoácidos de los péptidos CD4, consenso y composición de la librería del VIH-1 ensayados . Figura 5A-3 ¡Resultados de inmunogenicidad después de cuatro y cinco dosis. Figura 5B-1 : Estudio de la reactividad cruzada después de cinco dosis con. los sueros de los grupos 2, 3 y 6 descritos en la figura 4A. Figura 5B-2: Estudio de la reactividad cruzada después de cinco dosis con los sueros de los grupos 4, 5 y 6 descritos en la figura 4A. Figura 5C: Estudio del reconocimiento frente a un panel de péptidos V3 sintetizados sobre soporte de celulosa. El patrón cualitativo refleja las intensidades relativas de las respuestas de los pooles de sueros de cuarta y quinta dosis. 1 y 2, mezcla (HBsAg-MAP4 (librería), HBsAg-MAP4 (CD4) ) 3 y 4, mezcla (HBsAg-MAP4 (consenso), HBsAg-MAP4 (CD4) ) ; 5, HBsAg quinta dosis; 6, HBsAg-MAP (CD4) (quinta dosis) . Cuatro intensidades de color representan la respuesta contra los péptidos . Blanco: respuesta negativa, gris claro: respuesta ligeramente positiva, gris oscuro: respuesta positiva, negro: respuesta muy positiva. Figura 5D-1 a 5D-6: Fotos correspondientes a los resultados presentados en la figura 5A-2. Fotos: 1 y 2 , mezcla (HBsAg-MAP4 (librería), HBsAg-MAP4 (CD4) ) ; 3 y 4, mezcla (HBsAg-MAP4 (consenso), HBsAg-MAP4 ( CD ) ) ; de cuarta y quinta dosis respectivamente. 5, HBsAg quinta dosis; 6, HBs g-MAP4 (CD4) quinta dosis. Todos los sueros fueron ensayados a una dilución 1: 100. Figura 6A y 6B : Resumen del esquema de inmunización. Determinación de la inmunogenicidad de los diferentes grupos luego de tres dosis. Figura 6C-1: Estudio de la reactividad cruzada después de tres dosis con los sueros de los grupos 4, 5, 6, 7, 8, 9 y 10 descritos en la figura 4A. Se ensayaron pooles de sueros de cada grupo a una dilución fija de 1/100. Se realizó un ELISA indirecto recubriendo con los diferentes, péptidos V3 conjugados a BSA. Figura 6C-2 : . Estudio de la reactividad cruzada después de cuatro dosis con los sueros de los grupos 4, 5, 6, 7, 8, 9 y 10 descritos en la figura 4A. Se ensayaron pooles de sueros de cada grupo a una dilución fija de 1/100. Se realizó un ELISA indirecto recubriendo con los diferentes péptidos V3 conjugados a BSA. Figura : Estudio del reconocimiento hacia varios péptidos V3 de las mezclas de sueros después de tres dosis. Grupos: 1, MAP8 (TT-RF) ; 2, HBsAg-MAP8 (TT-RF) . Las dosis fueron de 40 y 10 µg respectivamente. Figura 8A: Resumen del esquema de inmunización. Figura 8B: Evaluación por ELISA de la inmunogenicidad después de tres dosis Figura 9: Esquema de reacción para la obtención de péptidos dendriméricos y estructuras antigénxcas Se hace constar que con relación a esta fecha, el mejor método conocido por la solicitante para llevar a la práctica la citada invención, es el que resulta claro de la presente descripción de la invención.

Claims (1)

1. REIVINDICACIONES Habiéndose descrito la invención como antecede, se reclama como propiedad lo contenido en las siguientes reivindicaciones: 1. Método de obtención de estructuras antigénicas que potencian la reactividad cruzada especifica caracterizado por que comprende los siguientes pasos: A) Selección del epítopo de interés; B) Obtención de estructuras dendriméricas con los epitopos seleccionados en el paso (A) mediante un método de síntesis seleccionado dentro del grupo consistente en síntesis sobre un núcleo de lisinas o ácido aspártico; síntesis sobre núcleos de moléculas orgánicas; síntesis sobre un núcleo dendrimérico; acoplamiento de péptidos sobre un núcleo dendrimérico; y mezclas sobre un mismo núcleo de epitopos de células B, de células T o de ambas; C) Conjugación de una o varias de las estructuras dendriméricas obtenidas en el paso (B) , a una o varias moléculas portadoras mediante un método de conjugación seleccionado dentro del grupo consistente en: conjugación utilizando glutaraldehído, anhídrido succínico, éster de ácido ß-maleimidopropionico-N -hidroxisuccinimida (MPS) y un espaciador sin cadenas laterales aromáticas; D) Mezcla de los conjugados obtenidos en el paso (C) para la obtención de las formulaciones mediante la adición del péptido del dominio de unión al CD4 o un conjugado que lo contenga; y E) Adyuvar en alúmina u otro adyuvante apropiado. 2. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones del Virus de Inmunodeficiencia Humana 1 ó 2. 3. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 2, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones variables del Virus de la Inmunodeficiencia Humana 1 ó 2. . Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 3, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con región variable V3 del Virus de la Inmunodeficiencia Humana 1 ó 2. 5. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones del virus de la Hepatitis B. 6. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones del virus de la Hepatitis C. 7. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones de los Virus del Dengue. 8. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los antigenos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones polisacaridicas de Neisseria meningitidis. 9. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) mimetizan regiones antigénicas polisacaridicas. 10. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones de un microorganismo o un patógeno . 11. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones de antígenos propios o auto-antígenos . 12. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 11, caracterizado porque los péptidos que forman parte de las estructuras obtenidas en el paso (B) se corresponden con regiones de la hormona liberadora de la gonadotropina . 13. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque la molécula portadora del paso (C) es el antigeno de superficie del virus de la hepatitis B, HBsAg. 14. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque la molécula portadora del paso (C) es la proteína p64K de Neisseria meningitidis. 15. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque la molécula portadora del paso (C) es el antígeno de la nucleocápsida del HIV. 16. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque la molécula portadora del paso (C) es el antígeno de la nucleocápsida del virus de la Hepatitis B o C. 17. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque la molécula portadora del paso (C) es de naturaleza polisacaridica. 18. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque la molécula portadora del paso (C) es una dextrana. 19. Método de obtención de estructuras antigénicas según la reivindicación 1, caracterizado porque los componentes del paso (C) se conjugan covalentemente, se asocian por hidrofobicidad o electrostáticamente. 20. Estructura antigénica que potencia la reactividad cruzada específica caracterizada porque comprende epítopos antigénicos dendriméricos acoplados a moléculas portadoras. 21. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque los epítopos de la región dendrimérica es de naturaleza peptídica u oligosacarídica . 22. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque los epítopos de naturaleza peptídica son consensos peptídicos de regiones variables seleccionados por subtipos, subgrupos, serotipos u otra forma de asociación. 23. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque los epítopos de naturaleza peptídica son bibliotecas de secuencias peptídicas del microorganismo seleccionado, o péptidos miméticos . 24. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica se corresponden con regiones del Virus de Inmunodeficiencia Humana 1 ó 2. 25. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendriiaérica se corresponden con regiones variables del Virus de la Inmunodeficiencia Humana 1 ó 2. 26. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendriiaérica se corresponden con la región variable V3 del Virus de la Inmunodeficiencia Humana 1 ó 2. 27. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica se corresponden con regiones del virus de la Hepatitis B. 28. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica se corresponden con regiones del virus de la Hepatitis C. 29. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica se corresponden con regiones de los Virus del Dengue . 30. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica se corresponden con regiones polisacaridicas de Neisseria meningitidis. 31. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica mimetizan regiones antigénicas polisacaridicas o proteicas. 32. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica se corresponden con regiones de un microorganismo o un patógeno. 33. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica se corresponden con regiones de antigenos propios o auto-antigenos. 34. Estructura antigénica según la reivindicación 21 caracterizada porque los péptidos que forman parte de la región dendrimérica se corresponden con regiones de la hormona liberadora de la gonadotropina . 35. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque la molécula portadora es el antigeno de superficie del virus de la Hepatitis B, HBsAg. 36. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque la molécula portadora es la proteina p64K de Neisseria meningitidis . 37. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque la molécula portadora es el antigeno de la nucleocápsida del HIV. 38. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque la molécula portadora es el antigeno de la nucleocápsida del virus de la Hepatitis B. 39. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque la molécula portadora es de naturaleza polisacaridica. 40. Estructura antigénica según la reivindicación 20 caracterizada porque la molécula portadora es una dextrana. 41. Uso de la estructura antigénica de las reivindicaciones 20 a 40 en un sistema de diagnóstico, 42. Uso de la estructura antigénica de las reivindicaciones 20 a 40 en vacunas profilácticas y terapéuticas . 43. Formulación vacunal caracterizada porque comprende la estructura antigénica de cualquiera de las reivindicaciones de la 20 a la 40, asi como un adyuvante apropiado . 44. Formulación vacunal según la reivindicación 43 caracterizada porque es de aplicación sistémica o mucosal 45. Uso de las formulaciones vacunales de las reivindicaciones 43 y 44 para la prevención de enfermedades infecciosas, autoinmunes y cáncer. 46. Uso de las formulaciones vacunales de las reivindicaciones 43 y 44 para la terapia de enfermedades infecciosas, autoinmunes y cáncer.