KR20220169036A - SARS-CoV-2의 N 단백질 특이적인 항체 및 그 응용 - Google Patents
SARS-CoV-2의 N 단백질 특이적인 항체 및 그 응용 Download PDFInfo
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Abstract
본 발명은 사스-코로나바이러스-2의 N 단백질 또는 그 단백질의 일부를 특이적으로 인지하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편에 있어서, 서열번호 1로 기재되는 CDR1 영역, 서열번호 2로 기재되는 CDR2 영역 및 서열번호 3으로 기재되는 CDR3 영역을 포함하는 중쇄 및 서열번호 4로 기재되는 CDR1 영역, 서열번호 5로 기재되는 CDR2 영역 및 서열번호 6으로 기재되는 CDR3 영역을 포함하는 경쇄로 구성되는 단클론 항체 및 그 응용에 관한 것이다.
Description
본 발명은 SARS-CoV-2의 N 단백질 특이적인 항체 및 그 응용에 관한 것이다.
사스-코로나바이러스-2(severe acute respiratory syndrome coronavirus 2, SARS-CoV-2)는 유전적 배열 상 전도 기능(Positive sense) 단일 가닥 RNA(single-stranded RNA) 코로나바이러스로서, 인간에게 전염성이 있고 코로나바이러스감염증-19(coronavirus disease 2019, COVID-19)의 원인이다.
사스-코로나바이러스-2는 세계보건기구(WHO)는 유전자 염기서열 차이로 인한 아미노산 변화를 기준으로 코로나바이러스를 6개 유형으로 분류하고 있다.
먼저 S, L 유형으로 분류되었다가 다시 L, V, G 유형으로 나뉘고 G가 GH와 GR로 나뉘면서 S, L, V, G, GH, GR 의 총 6개 유형으로 분류하고 있다. 코로나19 발생 초기에 중국 우한을 비롯한 아시아 지역에는 S와 V 유형이 유행하였고, 이후 대륙별로 서로 다른 유형이 발견되었다. 이 중 GH 유형이 전파력이 높게 나타날 가능성이 있다고 보고된 바 있다.
국내의 경우 코로나바이러스 감염증 환자에서 채취한 유전자를 분류한 결과, 대부분은 유럽과 미국에서 유행한 G형의 변종인 GH형인 것으로 나타났고, 이 유형은 바이러스 전파력이 높은 것으로 알려져 있다. 이 중 바이러스의 세포 내 침입 시 중요한 역할을 하는 스파이크 단백질의 614번 아미노산을 아스파트산 (D)에서 글리신 (G)로 바뀐 G형의 바이러스는 2020년 3월 이후 유럽과 미국에서 급격히 증가해 현재는 거의 대부분 지역에서 나타나고 있다.
2020년 보고된 바에 따르면 70여개 넘는 코로나바이러스 변이가 발생한 것으로 확인되었고, 전파력이 증가된 변이가 8개 (D614G 등), 중화항체를 회피하는 변이가 10개 (A841V 등), 혈장치료 효과가 낮은 변이 17개 (I472V 등)가 확인되었다.
SARS-CoV-2에 감염된 사람들은 열, 기침, 호흡 곤란, 설사와 같이 경증에서 중증의 증상을 보일 수 있다. 합병증이나 병을 가진 사람들, 노인은 사망할 가능성이 크다.
특히 심장질환 및 당뇨병 등의 기저질환 보유자가 감염에 더 취약하며, 합병증이나 장기 손상 등을 겪기 때문에 조기 발견과 치료가 매우 중요하다.
[선행 특허 문헌]
대한민국 특허 제10-2229225호
본 발명은 상기의 필요성에 의하여 안출된 것으로서 본 발명의 목적은 신규한 사스-코로나바이러스-2(severe acute respiratory syndrome coronavirus 2, SARS-CoV-2)의 N 단백질 또는 그 단백질의 일부를 특이적으로 인지하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편을 제공하는 것이다.
상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 사스-코로나바이러스-2(severe acute respiratory syndrome coronavirus 2, SARS-CoV-2)의 N 단백질 또는 그 단백질의 일부를 특이적으로 인지하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편에 있어서,
상기 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편은 하기의 폴리펩티드 서열로 이루어진 것을 특징으로 하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편:
서열번호 1로 기재되는 CDR1 영역, 서열번호 2로 기재되는 CDR2 영역 및 서열번호 3으로 기재되는 CDR3 영역을 포함하는 중쇄 및
서열번호 4로 기재되는 CDR1 영역, 서열번호 5로 기재되는 CDR2 영역 및 서열번호 6으로 기재되는 CDR3 영역을 포함하는 경쇄로 구성되는 단클론 항체를 제공한다.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 기능적 단편은 단일 측쇄 항체(scFv),항원결합 분절(Fab), 본 발명의 항체의 CDR부위를 포함하는 경쇄 또는 중쇄, 또는 상기 본 발명의 항체의 CDR부위를 포함하는 가변 도메인(Variable domain)인 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기 단클론 항체는 서열번호 7로 기재되는 폴리펩티드 서열을 포함하는 중쇄 및 서열번호 8로 기재되는 폴리펩티드 서열을 포함하는 경쇄인 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
또 본 발명은 리포좀 내에 동시캡슐화된 사스-코로나바이러스-2의 N 단백질 및 CpG-DNA 복합체를 동물에 주사하여 사스-코로나바이러스-2를 인식하는 단클론 항체를 제조하는 방법을 제공한다.
본 발명의 일 구현예에 있어서 상기 사스-코로나바이러스-2의 N 단백질은 서열번호 9에 기재된 서열로 이루어진 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
또 본 발명은 상기 본 발명의 제조방법에 의하여 제조된 사스-코로나바이러스-2를 인식하는 단클론 항체를 제공한다.
또 본 발명은 상기 본 발명의 단클론 항체에 표지 물질을 접합한 컨쥬게이트를 포함하는 사스-코로나바이러스-2 진단용 조성물을 제공한다.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 표지물질은 효소, 루시퍼레이즈, 자성입자, 형광물질 및 방사성 동위원소로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나인 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
또한 본 발명은 샘플과 상기 본 발명의 단클론 항체를 접촉시키는 단계; 및
2) 상기 단클론 항체를 시료 샘플과 접촉시켜 형성된 항원-항체 복합체를 검출하는 단계를 포함하는 대상체의 사스-코로나바이러스-2 감염 여부에 대한 정보제공방법을 제공한다.
또한 본 발명은 1) 상기 본 발명의 단클론 항체; 및 2) 용기를 포함하는 사스-코로나바이러스-2 진단용 키트를 제공한다.
또한 본 발명은 상기 본 발명의 단클론 항체를 유효성분으로 포함하는 사스-코로나바이러스-2 감염 치료용 조성물을 제공한다.
본 발명에서 용어 "항원-항체 복합체"란, 시료 중의 사스-코로나바이러스-2 N 단백질 항원과 이를 인지하는 본 발명에 따른 단일클론 항체 또는 이의 절편의 결합물을 의미하며, 이러한 항원-항체 복합체는 비색법(colormetric method), 전기화학법(electrochemical method), 형광법(fluorimetric method), 발광법(luminometry), 입자계수법(particle counting method), 육안측정법(visual assessment) 및 섬광계수법(scintillation counting method)으로 이루어진 군에서 선택되는 임의의 방법으로 검출할 수 있다. 그러나 반드시 이들로만 제한되지 않고 다양한 응용과 적용이 가능하다.
본 발명에서는 항원-항체 복합체를 검출하기 위한 것으로 여러가지 표지체를 사용할 수 있다. 구체적인 예로는 효소, 형광물, 리간드, 발광물, 미소입자, 방사성 동위원소로 이루어진 그룹 중에서 선택될 수 있으며, 반드시 이들로만 한정되는 것은 아니다.
검출 표지체로서 사용되는 바람직한 효소로는 아세틸콜린에스테라제, 알칼라인 포스파타제, β-D-갈락토시다제,호스래디쉬 퍼옥시다제 또는 β-락타마제가 있으며, 바람직한 형광물로는 플루오레세인, Eu3+, Eu3+ 킬레이트 또는 크립테이트가 있으며, 바람직한 리간드로는 바이오틴 유도체가 있고, 바람직한 발광물로는 아크리디늄 에스테르 또는 이소루미놀 유도체가 있으며, 바람직한 미소입자로는 콜로이드 금 또는 착색된 라텍스가 있고, 바람직한 방사성 동위원소로는 57Co,3H,125I 또는 125I-볼톤(Bolton) 헌터(Hunter) 시약이 있으나, 이에 한정하는 것은 아니다.
항원-항체 복합체를 검출하는 방법은 바람직하게는 효소면역흡착법(ELISA)을 이용하여 검출할 수 있으나, 이에 한정하는 것은 아니다. 효소면역흡착법은 고체 지지체에 부착된 항원을 인지하는 항체를 이용하는 직접적 ELISA, 고체 지지체에 부착된 항원을 인지하는 항체의 복합체에서 포획 항체를 인지하는 표지된 이차 항체를 이용하는 간접적 ELISA, 고체 지지체에 부착된 항체와 항원의 복합체에서 항원을 인지하는 표지된 또 다른 항체를 이용하는 직접적 샌드위치 ELISA, 고체 지지체에 부착된 항체와 항원의 복합체에서 항원을 인지하는 또 다른 항체와 반응시킨 후 이 항체를 인지하는 표지된 이차 항체를 이용하는 간접적 샌드위치 ELISA 등 다양한 ELISA 방법을 포함한다.
상기 단클론항체 또는 이의 절편은 검출 표지체를 가질 수 있으며, 검출 표지체를 가지지 않을 경우는 이들 단일클론 항체 또는 이의 절편을 포획할 수 있고, 검출 표지체를 가지는 또 다른 항체를 처리하여 확인할 수 있다.
본 발명의 검출용 키트는 상기 단클론항체, 기질과 반응하여 발색하는 표지체와 축합된 항체 및 발색기질을 포함한다 본 발명의 검출용 키트에서 상기 단클론항체는 기판에 흡착된 상태로 제공될 수 있다 상기 기판으로는 PVDF 막, 플레이트 및 슬라이드가 사용될 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다 표지체로는 HRP, 발색기질로는 TMB가 바람직하지만 이에 한정되는 것은 아니다 또한, 상기 검출용 키트는 분석방법에 적합한 한 종류 또는 그 이상의 다른 구성성분을 가진 조성물, 용액 또는 장치를 더 포함하여 구성될 수 있다.
본 발명의 제조방법에 따라 제조된 사스-코로나바이러스-2의 N 단백질에 특이적인 단클론 항체를 이용하여 사람에서 사스-코로나바이러스-2를 진단하기 위한 검출용 키트를 제공한다 검출용 키트의 최종 검출방법으로는 면역크로마토그래피법 래피드 진단법, 효소면역흡착법(ELISA) 또는 웨스턴 블롯이 이용될 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다.
바람직하게는 본 발명의 검출용 키트에 사용되는 검출방법은 면역크로마토그래피법(immunochromatography) 및 효소면역흡착법일 수 있다.
상기 면역크로마토그래피법을 이용한 사스-코로나바이러스-2 검출용 키트는 시료를 주입하는 시료 주입부; 상기 시료 주입부로부터 일정 간격이 이격된 지점에 위치하는 사스-코로나바이러스-2 N 단백질에 특이적으로 결합할 수 있는 단클론항체가 결합된 금 축합체를 포함하는 결합부; 상기 결합부로부터 일정 간격이 이격된 위치에 사스-코로나바이러스-2 N 단백질에 특이적으로 결합할 수 있는 단클론항체가 고정된 검사선(test line); 및 항-마우스 IgG가 고정된 대조선(control line)이 순차적으로 구비되는 것이 바람직하지만 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 일 구현예에서, 상기 검출용 키트는 스트립 형태의 나이트로셀룰로오스 멤브레인에 유리섬유(glass fiber), 코튼(cotton) 또는 셀룰로오스 재질의 패드를 결합시켜서 시료를 투입할 수 있는 시료주입부이 구비되고, 상기 시료 주입부로부터 일정 간격을 유지하면서 콜로이드 골드(Colloidal gold)-사스-코로나바이러스-2 항체가 축합된 복합체가 건조된 축합 패드, 상기 사스-코로나바이러스-2 항체와 동일한 항원을 검출할 수 있는 다른 항체가 고정된 검사선 및 상기 축합 패드에 존재하는 단클론항체를 검출할 수 있는 이차 항체가 고정된 대조선이 순차적으로 구비된 면역스트립일 수 있다.
상기 면역크로마토그래피법 진단법은 상기 사스-코로나바이러스-2 검출용 건조 조성물을 적용한 키트를 제작하여 사용하는 것으로 안정하여 장기간 보관하는 것이 가능하다.
상기 사스-코로나바이러스-2 검출용 키트에 사스-코로나바이러스-2를 함유하는 것으로 의심되는 시료를 투입하여 상기 테스트 스트립의 검사선과 대조선에 붉은 자주빛띠가 나타나면 사스-코로나바이러스-2 감염을 양성으로 판정하고, 대조선에만 붉은 자주빛띠가 나타나면 사스-코로나바이러스-2 감염을 음성으로 판정할 수 있다.
또한, 교차반응(cross reaction) 검사에서 타호흡기바이러스 바이러스를 적용하여 검사결과가 음성으로 나오는 것을 판독하여, 검사가 타호흡기바이러스와 얼마나 교차성이 없는지를 확인할 수 있다.
효소면역항체법을 이용한 키트의 경우, 본 발명의 단클론 항체가 코팅된 플레이트의 각 웰에 사스-코로나바이러스-2 의심환자로부터 채취된 검체를 반응시키고, HRP(Horseradish peroxidase)-축합 사스-코로나바이러스-2 N 항원 특이 단클론항체를 첨가한 후, TMB(3,3',5,5'-tetramethylbenzidine) 기질용액을 각 웰에 처리하여 발색반응을 흡광도로 측정하는 것으로 구성된다 바람직하게는, 본 발명의 검출용 키트는 사람 코로나바이러스로부터 사스-코로나바이러스-2 감별진단을 위한 특이적인 단클론 항체를 이용하며 양성대조군 및 정량적 분석이 가능하도록 재조합 사스-코로나바이러스-2 N 항원을 추가로 포함할 수 있다.
본 발명에 따른 상기 진단용 조성물은 본 발명의 단클론 항체 및 면역학적 분석에 사용되는 시약이 포함될 수 있다. 면역학적 분석에 사용되는 시약으로는 항원-항체 결합을 원리로 하는 공지의 모든 정량분석방법에 사용되는 적합한 담체, 검출 가능한 신호를 생성할 수 있는 표지, 용해제, 세정제가 포함된다. 상기 정량분석방법의 예로는 이에 한정되지는 않으나, 면역블롯팅, 면역침전법, 효소면역분석법, 단백질 칩, 래피트 어세이 및 마이크로 어레이 방법 등이 있다.
상기에서 적합한 담체로는 이에 한정되지는 않으나 가용성 담체, 예컨대 당 분야에 공지된 생리학적으로 허용되는 완충액들 중 어느 한 가지(예를 들어, PBS) 또는 불용성 담체, 예컨대 폴리스틸렌, 폴리에틸렌, 폴리프로필렌, 폴리에스테르, 폴리아크릴로니트릴, 불소수지, 가교덱스트란, 폴리사카라이드, 유리, 금속, 아가로스 및 이들의 조합일 수 있다.
검출 가능한 신호를 생성할 수 있는 표지로는 효소, 형광물질, 발광물질 및 방사성 물질 등을 사용할 수 있다. 효소로는 과산화효소(peroxidase), 알카라인 포스파타제(alkaline phosphatase), β-D-갈락토시다아제, 글루코스 옥시다아제, 말레이트 디하이드로게나아제, 글루코스-6-인산디하이드로게나아제, 인버타아제 등을사용할 수 있으며, 형광물질로는 플루오르신 이소티옥시아네이트(fluorescein isothiocyanate), 피코빌린(phycobilin) 단백질, 로다민(rhodamine), 피코에리트린(phycoerythrin), 피코시아닌(phycocyanin) 및 오르토프탈릭 알데히드(orthophthalic aldehyde)등을 사용할 수 있다. 발광물질로는 이소루미놀(isolumino), 루시게닌(lucigenin) 등을 사용할 수 있으며, 방사성 물질로는 131I, 14C, 3H 등을 사용할 수 있다. 그러나, 상기 예시된 것들 외에 면역학적 분석법에 사용할 수 있는 것이라면 어느 것이라도 사용할 수 있다.
본 발명의 기능적 항체 단편으로는 경쇄, 중쇄, 가변 영역, Fab, Fab', F(ab')2 , scFv, Diabody, Tribody, dsFv, CDR을 함유하는 펩타이드 등을 들 수 있다.
Fab는 IgG를 단백질 분해효소 파파인으로 처리하여 수득되는 단편중(H쇄의 224번째의 아미노산 잔기로 절단된다),H쇄의 N 말단측 약 절반과 L쇄 전체가 디설파이드 결합(S-S 결합)으로 결합된 분자량 약 5만의 항원결합 활성을 갖는 항체 단편이다.
본 발명의 Fab는 본 발명의 항체를 단백질 분해효소 파파인으로 처리하여 수득할 수 있다. 또는 당해 항체의 Fab를 암호화하는 DNA를 원핵생물용 발현 벡터 또는 진핵생물용 발현 벡터에 삽입하고, 당해 벡터를 원핵생물 또는 진핵생물로 도입함으로써 발현시켜 Fab를 제조할 수 있다.
F(ab')2는 IgG를 단백질 분해효소 펩신으로 처리하여 수득되는 단편중(H쇄의 234번째의 아미노산 잔기로 절단된다), Fab가 힌지영역의 S-S 결합을 개재하여 결합된 것보다 약간 큰 분자량 약 10만의 항원 결합 활성을 갖는 항체 단편이다.
본 발명의 F(ab') 2 는 본 발명의 항체를 단백질 분해효소 펩신으로 처리하여 수득할 수 있다. 또는 하기의 Fab'를 티오에테르 결합 또는 S-S 결합시켜 작제할 수 있다.Fab'는 상기 F(ab') 2 의 힌지영역의 S-S 결합을 절단한 분자량 약 5만의 항원 결합 활성을 갖는 항체 단편이다.
scFv는 1개의 VH와 1개의 VL을 12잔기 이상의 적당한 펩타이드 링커(P)를 사용하여 연결한 VH-P-VL 내지는 VL-P-VH 폴리펩타이드로, 항원 결합 활성을 갖는 항체 단편이다.
본 발명의 scFv는 본 발명의 항체의 VH 및 VL을 암호화하는 cDNA를 수득하고, scFv를 암호화하는 DNA를 작제하며 당해 DNA를 원핵생물용 발현 벡터 또는 진핵생물용 발현 벡터에 삽입하여 당해 발현 벡터를 원핵생물 또는 진핵생물로 도입함으로써 발현시켜 제조할 수 있다.
Diabody는 항원 결합 특이성이 동일하거나 상이한 scFv가 이량체를 형성한 항체 단편이고, 동일한 항원에 대한 2가의 항원 결합 활성 또는 상이한 항원에 대한 2특이적인 항원 결합 활성을 갖는 항체 단편이다.
본 발명의 Diabody는 예를 들면, 본 발명의 항체의 VH 및 VL을 암호화하는 cDNA를 수득하고, 3 내지 15 잔기의 폴리펩타이드 링커를 갖는 scFv를 암호화하는 DNA를 작제하며 당해 DNA를 원핵생물용 발현 벡터 또는 진핵생물용 발현 벡터에 삽입하여 당해 발현벡터를 원핵생물 또는 진핵생물로 도입함으로써 Diabody를 발현시켜 제조할 수 있다.
또한, linker P 길이가 3-10 일 때는 tribody가 형성되어, tribody로 포함할 수 있다.
dsFv는 VH 및 VL 중 각각 하나의 아미노산 잔기를 시스테인 잔기로 치환한 폴리펩타이드를 당해 시스테인 잔기 간의 S-S 결합을 개재하여 결합시킨 것을 말한다. 시스테인 잔기로 치환되는 아미노산 잔기는 Reiter 등에 의해 기재된 방법[참조: Protein Engineering, 7, 697(1994)]에 따라서 항체의 입체구조 예측에 근거하여 선택할 수 있다.
본 발명의 약제학적 조성물에 포함되는 약제학적으로 허용되는 담체는 제제시에 통상적으로 이용되는 것으로서,락토스, 덱스트로스, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 전분, 아카시아 고무, 인산 칼슘, 알기네이트, 젤라틴, 규산칼슘, 미세결정성 셀룰로스, 폴리비닐피롤리돈, 셀룰로스, 물, 시럽, 메틸 셀룰로스,메틸히드록시벤조에이트,프로필히드록시벤조에이트, 활석, 스테아르산 마그네슘 및 미네랄 오일 등을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 약제학적 조성물은 상기 성분들 이외에 윤활제, 습윤제, 감미제,향미제, 유화제, 현탁제,보존제 등을 추가로 포함할 수 있다. 적합한 약제학적으로 허용되는 담체 및 제제는 Remington's Pharmaceutical Sciences(19th ed, 1995)에 상세히 기재되어 있다.
본 발명의 약제학적 조성물은 경구 또는 비경구로 투여할 수 있고, 바람직하게는 비경구 투여이고, 비경구 투여인 경우에는 정맥내 주입, 피하 주입, 근육 주입, 복강 주입, 경피 투여 등으로 투여할 수 있다.
본 발명의 약제학적 조성물의 적합한 투여량은 제제화 방법, 투여 방식, 환자의 연령, 체중, 성, 병적 상태, 음식, 투여 시간, 투여 경로, 배설 속도 및 반응 감응성과 같은 요인들에 의해 다양하게 처방될 수 있다. 한편, 본 발명의 약제학적 조성물의 투여량은 바람직하게는 1일 당 0001-10,000 mg/kg(체중)이다.
본 발명의 약제학적 조성물은 당해 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자가 용이하게 실시할 수 있는 방법에 따라, 약제학적으로 허용되는 담체 및/또는 부형제를 이용하여 제제화함으로써 단위 용량 형태로 제조되거나 또는 다용량 용기내에 내입시켜 제조될 수 있다. 이때 제형은 오일 또는 수성 매질중의 용액, 현탁액 또는 유화액 형태이거나 엑스제, 분말제, 과립제, 정제 또는 캅셀제 형태일 수도 있으며, 분산제 또는 안정화제를 추가적으로 포함할 수 있다.
이하 본 발명을 설명한다.
SARS-CoV-2 감염은 전 세계적으로 인간 대 인간 전파로 인해 여전히 빠르게 확산되고 있다. 따라서 고감도 SARS-CoV-2를 신속하게 검출 할 수있는 방법을 개발할 필요가 있다.
본 발명에서 본 발명자들은 SARS-CoV-2의 N 단백질을 특이적으로 검출하는 단클론 항체를 생산했다. 항체는 SARS-CoV-2 (S 클레이드)에 감염된 Vero 세포의 세포 용해물에서 단백질 밴드를 인식했지만 MERS-CoV- 또는 HCoV-OC43에 감염된 Vero 세포의 세포 용해물에서는 인식하지 못했다.
또한 항체는 다른 두 개의 SARS-CoV-2 클레이드 GR 및 GH의 N 단백질도 인식했다. 중요한 것은 항체가 서로 다른 SARS-CoV-2 클레이드의 N 단백질을 약 300pfu의 하한까지 인식했다.
본 발명에서 본 발명자들은 재조합 융합 단백질을 사용하여 SARS-CoV-2 Spike protein C-terminal Domain (Spike CD)와 N 단백질의 상호 작용을 입증하는 ELISA 기반 Bait & Prey 시스템을 구축했다. 또한, 재조합 Spike CD 융합 단백질과 N 단백질 특이적 항체에 의해 포획 된 바이러스 N 단백질 간의 상호 작용을 모니터링하여 감염된 세포의 배양 배지에서 SARS-CoV-2를 정량적으로 검출하도록 시스템을 수정할 수 있다.
따라서 본 발명자들은 단클론 항체와 상호 작용 특이적인 검출 방법이 SARS-COV-2에 대한 새로운 진단에 적용될 수 있다고 제안한다.
본 발명에서
이전에 기재(Kim, D., Kwon, S., Rhee, J. W., Kim, K. D., Kim, Y. E., Park, C. S., Choi, M. J., Suh, J. G., Kim, D. S., Lee, Y., and Kwon, H. J. (2011). BMC Immunol. 12, 29. doi: 10.1186/1471-2172-12-29)된 내용을 이용하여 포스파티딜-β-올레오일-γ-팔미토일 에탄올아민 (DOPE):콜레스테롤 헤미숙시네이트 (CHEMS) 복합체 내 CpG-DNA와 함께 캡슐화된 SARS-CoV-2 N 단백질 복합체로 마우스를 면역화하여 SARS-CoV-2의 N 단백질에 대한 단클론 항체를 생산했다
또한 SARS-CoV-2 스파이크 CD 및 Fc 도메인 (SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc)으로 구성된 융합 단백질이 SARS-CoV-2의 N 단백질을 인식하는 능력을 평가했다. 또한 본 발명자들은 SARS-CoV-2 Spike CD-Fc 융합 단백질과 anti-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체를 결합한 신속한 SARS-CoV-2 검출 방법을 제안한다.
본 발명에서 알 수 있는 바와 같이, 본 발명자들은 SARS-CoV-2의 N 단백질에 대한 단클론 항체를 생산하고 특성화했으며, anti-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체가 Western blotting 및 immunoprecipitation에 의해 SARS-CoV-2에는 특이 적으로 결합하지만 MERS-CoV 또는 HCoV-OC43에는 결합하지 않음을 확인했다.
또한 웨스턴 블롯팅 및 공 초점 이미지를 통해 항체가 S, GH 및 GR과 같은 SARS-CoV-2 clade와 교차 반응하는 것을 증명했다. SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체는 역가가 최저 약 300pfu에 도달할 때 SARS-CoV-2 입자의 단백질 밴드를 인식 할 수 있다는 점을 고려할 때, 본 발명의 항체는 속도 및 높은 민감도 측면에서 진단 가치를 향상시키는 데 사용될 수 있다.
도 1은 비오틴 펩타이드-6xHis 태그 SARS-CoV-2 N 단백질 및 비오틴 펩타이드 -6xHis 태그 MERS-CoV N 단백질 정제를 나타낸 그림으로,
(A) 비오틴 펩티드-6xHis 태그가 붙은 SARS-CoV-2 N 단백질(SARS-CoV-2 N-Bio-His6)의 발현. 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질을 ExpiCHO 세포에서 발현시키고 Ni-NTA- 아가로스 크로마토그래피를 사용하여 세포 배양 상층액으로부터 정제하였다. 정제된 재조합 단백질은 SDS-PAGE (왼쪽) 및 peroxidase-conjugated streptavidin (중간) 및 anti-His-tag 항체 (오른쪽)를 사용한 웨스턴 블롯 분석으로 분석되었다. R, 환원 조건; NR, 비 환원 조건.
(B) 비오틴 펩티드-6xHis- 태그된 MERS-CoV N 단백질 (MERS-CoV N-Bio-His6)의 발현. 정제된 재조합 단백질은 SDS-PAGE로 분석하였다. 정제된 재조합 단백질은 SDS-PAGE (왼쪽) 및 peroxidase-conjugated streptavidin (중간) 및 anti-His-tag 항체 (오른쪽)를 사용한 웨스턴 블롯 분석으로 분석되었다. R, 환원 조건; NR, 비 환원 조건.
도 2는 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체(1G10C4)를 생산하는 하이브리도마 클론의 스크리닝을 나타낸 그림으로,
(A) 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 및 CpG-DNA를 DOPE : CHEMS 복합체로 제형화하고 그 제형화된 복합체를 BALB/c 마우스 (n = 4)에 3 회 복강 내 주사 하였다. ELISA를 혈청으로 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 특이적 항체의 존재를 확인하기 위하여 수행하였다.
(B) ELISA는 SARS-CoV-2 N 단백질-비오틴 펩티드-6xHis 면역화된 마우스의 비장 세포를 사용한 세포 융합 실험의 초기 스크리닝 (HAT 배지)의 결과.
(C) 하이브리도마 클론은 HT 배지에서 제한 희석 방법에 의해 서브 클로닝 을 수반하는 단클론 항체의 생산을 위하여 선택되었다.
도 3은 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체의 생산 및 특성화를 나타낸 그림으로,
(A) 클로닝된 하이브리도마 세포 (1G10C4)를 주사한 마우스로부터 복수를 수집하였다. ELISA는 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 특이적 항체의 분석을 위해 그 복수를 이용하여 수행되었다.
(B) 단백질 A 컬럼 크로마토그래피를 사용하여 복수 액으로부터 단클론 항체를 정제하고 SDS-PAGE를 사용하여 분석하였다.
(C) ELISA에 의해 정제된 단클론 항체의 서브 클래스를 결정하였다.
(D) 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질에 대한 정제된 단클론 항체(클론 1G10C4 mAb)의 결합 능력을 ELISA로 측정하였다.
도 4는 하이브리도마 세포 클론 1G10C4에서 분리된 중쇄 및 경쇄의 가변 도메인에 대한 cDNA 서열로,
(A) 중쇄 가변 도메인의 서열.
(B) 경쇄 가변 도메인의 서열. 예측된 아미노산 서열은 cDNA 서열 아래에 표시됨.
도 5는 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체의 특이성을 나타내는 그림으로,
(A) 단클론 항체 특이성 분석. 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 또는 재조합 MERS-CoV N-Bio-His6 단백질을 스트렙타비딘 코팅 96 웰 면역 플레이트에 포획한 다음 항-SARS-CoV-2 N 단백질 모노클로날 항체와 함께 배양했다. 각 재조합 단백질에 대한 단클론 항체의 반응성은 ELISA 분석에 의해 결정되었다.
(B) MERS-CoV-, SARS-CoV-2- 또는 HCoV-OC43- 감염 및 비감염 Vero 세포 용 해물을 항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체(클론 1G10C4 mAb)로 면역 블롯팅했다. β- 액틴 단백질의 양은 로딩 컨트롤로 사용되었다.
(C) MERS-CoV-, SARS-CoV-2- 또는 HCoV-OC43- 감염 및 비감염 Vero 세포 용 해물을 정상 마우스 IgG 또는 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체 (클론 1G10C4 mAb)로 면역침전하였다. 그 면역 복합체는 토끼 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 항체를 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 받았다.
도 6은 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체로 SARS-CoV-2 clades- 감염 세포에서 N 단백질 검출을 나타낸 그림으로,
(A, B) SARS-CoV-2 클레이드로 감염된 세포에서 N 단백질의 검출을 위한 웨스턴 블롯 분석. 0.01 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드(S, GH, GR)를 Vero 세포(A) 및 Calu-3 세포 (B)에서 72 시간 동안 감염시키고 그 세포 용해물을 anti-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체 (클론 1G10C4 mAb)를 사용한 웨스턴 블롯팅으로 분석했다. β- 액틴 단백질의 양은 로딩 컨트롤로 사용되었다.
(C) 공 초점 이미지에 의한 SARS-CoV-2 클레이드 감염 세포에서 N 단백질 검출. Vero 세포를 12 웰 플레이트의 커버 유리에서 배양하고 0.1 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드 (S, GH, GR)로 48 시간 동안 감염시켰다. 감염된 Vero 세포를 4 % 파라포름알데히드로 고정하고 0.1 % 트리톤 X-100으로 투과화했다. 세포를 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체 또는 정상 IgG와 함께 배양한 다음 Alexa488- 접합 염소 항-마우스 IgG와 함께 배양했다. Hoechst 33258은 핵 염색에 사용되었다. 공 초점 현미경을 사용하여 이미지를 얻었다. 스케일 바, 10 μm.
도 7은 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체를 사용하여 SARS-CoV-2 클레이드의 바이러스 입자에서 N 단백질 검출을 나타낸 그림으로,
(A) 웨스턴 블롯 분석. 0.01 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드(S, GH, GR)를 Vero 세포에서 72 시간 동안 감염시키고 세포 배양 상층액을 수집했다. 세포 배양 상층액을 세포 용해 완충액으로 용해하고 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체(클론 1G10C4 mAb)를 사용한 웨스턴 블롯팅으로 분석했다. 샘플의 바이러스 역가는 플라크 분석으로 측정되었다.
(B) 면역 침강 분석. 0.01 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드 (S, GH, GR)를 Vero 세포에서 72 시간 동안 감염시키고 세포 배양 상층액을 수집했다. 세포 배양 상층액을 세포 용해 완충액으로 용해시키고 정상 마우스 IgG 또는 항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체 (클론 1G10C4 mAb)로 면역 침전시켰다. 면역 복합체는 토끼 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 항체를 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 받았다.
도 8은 SARS-CoV-2 클레이드 바이러스 입자의 N 단백질과 SARS-CoV-2 스파이크 CD의 상호 작용을 나타낸 그림으로,
(A) SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc의 발현. 재조합 Fc 대조군과 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc를 ExpiCHO 세포에서 발현시키고, 단백질 A 컬럼 크로마토그래피를 사용하여 세포 배양 상층액으로부터 정제하고, SDS-PAGE 및 쿠마시 블루 염색으로 분석하였다.
(B) 바이러스 입자 내 N 단백질과 SARS-CoV-2 스파이크 CD의 상호 작용. 0.01 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드 (S, GH, GR)를 Vero 세포에서 72 시간 동안 감염시키고 세포 배양 상층액을 수집했다. 세포 배양 상층액을 세포 용해 완충액으로 용해시키고 Fc 또는 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 함께 배양하였다. Fc- 결합된 단백질을 단백질 A 비드로 풀다운하고 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체 (클론 1G10C4 mAb)를 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 수행했다. 인풋 바이러스 용 해물은 컨트롤로 표시됨.
도 9는 SARS-CoV-2 Spike CD-Fc와 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 재조합 단백질 간의 상호 작용을 나타낸 그림으로,
(A) Prey & Bait 분석 시스템의 개략도.
(B) 스트렙타비딘을 96- 웰 면역 플레이트에 코팅한 다음 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질을 각 웰에 첨가하였다. 각각의 코로나 바이러스 스파이크 CD- 인간 Fc 융합 단백질(MERS-CoV Spike CD-Fc, SARS-CoV-2 Spike CD-Fc)을 첨가한 후, 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질에 결합하는 코로나 바이러스 스파이크 CD- 인간 Fc 융합 단백질의 양을 ELISA로 측정하였다.
(C) SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 재조합 단백질 간의 상호 작용 특이성. 연속 희석된 비-비오틴화된-재조합 SARS-CoV-2 N-His6 단백질을 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 함께 배양한 다음 웰에서 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 코팅된 스트렙타비딘에 첨가했다. 경쟁 정도는 양고추냉이 과산화 효소와 접합된 항-인간 IgG Fc 항체를 사용하여 ELISA로 측정되었다.
도 10은 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체와 재조합 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc 단백질을 사용한 세포 배양 배지에서 SARS-CoV-2 검출을 나타낸 그림으로
(A) ELISA의 개략도.
(B) SARS-CoV-2 클레이드 S 및 HCoV-OC43,
(C) 세포 배양 상층액의 SARS-CoV-2 클레이드 GH 및 클레이드 GR을 세포 용해 완충액으로 용해시키고 PBST에서 연속 희석하였다. 바이러스 용해물을 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체로 코팅된 96 웰 면역 플레이트에 첨가했다. 상온에서 2 시간 동안 배양한 후 재조합 SARS-CoV-2 Spike CD-Fc 단백질을 첨가한 다음 HRP가 결합된 항-인간 IgG Fc 항체를 각 웰에 첨가하였다. 각 웰에서 SARS-CoV-2 N 단백질의 양은 ELISA에 의해 결정되었다.
(A) 비오틴 펩티드-6xHis 태그가 붙은 SARS-CoV-2 N 단백질(SARS-CoV-2 N-Bio-His6)의 발현. 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질을 ExpiCHO 세포에서 발현시키고 Ni-NTA- 아가로스 크로마토그래피를 사용하여 세포 배양 상층액으로부터 정제하였다. 정제된 재조합 단백질은 SDS-PAGE (왼쪽) 및 peroxidase-conjugated streptavidin (중간) 및 anti-His-tag 항체 (오른쪽)를 사용한 웨스턴 블롯 분석으로 분석되었다. R, 환원 조건; NR, 비 환원 조건.
(B) 비오틴 펩티드-6xHis- 태그된 MERS-CoV N 단백질 (MERS-CoV N-Bio-His6)의 발현. 정제된 재조합 단백질은 SDS-PAGE로 분석하였다. 정제된 재조합 단백질은 SDS-PAGE (왼쪽) 및 peroxidase-conjugated streptavidin (중간) 및 anti-His-tag 항체 (오른쪽)를 사용한 웨스턴 블롯 분석으로 분석되었다. R, 환원 조건; NR, 비 환원 조건.
도 2는 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체(1G10C4)를 생산하는 하이브리도마 클론의 스크리닝을 나타낸 그림으로,
(A) 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 및 CpG-DNA를 DOPE : CHEMS 복합체로 제형화하고 그 제형화된 복합체를 BALB/c 마우스 (n = 4)에 3 회 복강 내 주사 하였다. ELISA를 혈청으로 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 특이적 항체의 존재를 확인하기 위하여 수행하였다.
(B) ELISA는 SARS-CoV-2 N 단백질-비오틴 펩티드-6xHis 면역화된 마우스의 비장 세포를 사용한 세포 융합 실험의 초기 스크리닝 (HAT 배지)의 결과.
(C) 하이브리도마 클론은 HT 배지에서 제한 희석 방법에 의해 서브 클로닝 을 수반하는 단클론 항체의 생산을 위하여 선택되었다.
도 3은 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체의 생산 및 특성화를 나타낸 그림으로,
(A) 클로닝된 하이브리도마 세포 (1G10C4)를 주사한 마우스로부터 복수를 수집하였다. ELISA는 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 특이적 항체의 분석을 위해 그 복수를 이용하여 수행되었다.
(B) 단백질 A 컬럼 크로마토그래피를 사용하여 복수 액으로부터 단클론 항체를 정제하고 SDS-PAGE를 사용하여 분석하였다.
(C) ELISA에 의해 정제된 단클론 항체의 서브 클래스를 결정하였다.
(D) 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질에 대한 정제된 단클론 항체(클론 1G10C4 mAb)의 결합 능력을 ELISA로 측정하였다.
도 4는 하이브리도마 세포 클론 1G10C4에서 분리된 중쇄 및 경쇄의 가변 도메인에 대한 cDNA 서열로,
(A) 중쇄 가변 도메인의 서열.
(B) 경쇄 가변 도메인의 서열. 예측된 아미노산 서열은 cDNA 서열 아래에 표시됨.
도 5는 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체의 특이성을 나타내는 그림으로,
(A) 단클론 항체 특이성 분석. 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 또는 재조합 MERS-CoV N-Bio-His6 단백질을 스트렙타비딘 코팅 96 웰 면역 플레이트에 포획한 다음 항-SARS-CoV-2 N 단백질 모노클로날 항체와 함께 배양했다. 각 재조합 단백질에 대한 단클론 항체의 반응성은 ELISA 분석에 의해 결정되었다.
(B) MERS-CoV-, SARS-CoV-2- 또는 HCoV-OC43- 감염 및 비감염 Vero 세포 용 해물을 항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체(클론 1G10C4 mAb)로 면역 블롯팅했다. β- 액틴 단백질의 양은 로딩 컨트롤로 사용되었다.
(C) MERS-CoV-, SARS-CoV-2- 또는 HCoV-OC43- 감염 및 비감염 Vero 세포 용 해물을 정상 마우스 IgG 또는 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체 (클론 1G10C4 mAb)로 면역침전하였다. 그 면역 복합체는 토끼 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 항체를 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 받았다.
도 6은 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체로 SARS-CoV-2 clades- 감염 세포에서 N 단백질 검출을 나타낸 그림으로,
(A, B) SARS-CoV-2 클레이드로 감염된 세포에서 N 단백질의 검출을 위한 웨스턴 블롯 분석. 0.01 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드(S, GH, GR)를 Vero 세포(A) 및 Calu-3 세포 (B)에서 72 시간 동안 감염시키고 그 세포 용해물을 anti-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체 (클론 1G10C4 mAb)를 사용한 웨스턴 블롯팅으로 분석했다. β- 액틴 단백질의 양은 로딩 컨트롤로 사용되었다.
(C) 공 초점 이미지에 의한 SARS-CoV-2 클레이드 감염 세포에서 N 단백질 검출. Vero 세포를 12 웰 플레이트의 커버 유리에서 배양하고 0.1 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드 (S, GH, GR)로 48 시간 동안 감염시켰다. 감염된 Vero 세포를 4 % 파라포름알데히드로 고정하고 0.1 % 트리톤 X-100으로 투과화했다. 세포를 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체 또는 정상 IgG와 함께 배양한 다음 Alexa488- 접합 염소 항-마우스 IgG와 함께 배양했다. Hoechst 33258은 핵 염색에 사용되었다. 공 초점 현미경을 사용하여 이미지를 얻었다. 스케일 바, 10 μm.
도 7은 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체를 사용하여 SARS-CoV-2 클레이드의 바이러스 입자에서 N 단백질 검출을 나타낸 그림으로,
(A) 웨스턴 블롯 분석. 0.01 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드(S, GH, GR)를 Vero 세포에서 72 시간 동안 감염시키고 세포 배양 상층액을 수집했다. 세포 배양 상층액을 세포 용해 완충액으로 용해하고 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체(클론 1G10C4 mAb)를 사용한 웨스턴 블롯팅으로 분석했다. 샘플의 바이러스 역가는 플라크 분석으로 측정되었다.
(B) 면역 침강 분석. 0.01 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드 (S, GH, GR)를 Vero 세포에서 72 시간 동안 감염시키고 세포 배양 상층액을 수집했다. 세포 배양 상층액을 세포 용해 완충액으로 용해시키고 정상 마우스 IgG 또는 항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체 (클론 1G10C4 mAb)로 면역 침전시켰다. 면역 복합체는 토끼 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 항체를 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 받았다.
도 8은 SARS-CoV-2 클레이드 바이러스 입자의 N 단백질과 SARS-CoV-2 스파이크 CD의 상호 작용을 나타낸 그림으로,
(A) SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc의 발현. 재조합 Fc 대조군과 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc를 ExpiCHO 세포에서 발현시키고, 단백질 A 컬럼 크로마토그래피를 사용하여 세포 배양 상층액으로부터 정제하고, SDS-PAGE 및 쿠마시 블루 염색으로 분석하였다.
(B) 바이러스 입자 내 N 단백질과 SARS-CoV-2 스파이크 CD의 상호 작용. 0.01 MOI의 SARS-CoV-2 클레이드 (S, GH, GR)를 Vero 세포에서 72 시간 동안 감염시키고 세포 배양 상층액을 수집했다. 세포 배양 상층액을 세포 용해 완충액으로 용해시키고 Fc 또는 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 함께 배양하였다. Fc- 결합된 단백질을 단백질 A 비드로 풀다운하고 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체 (클론 1G10C4 mAb)를 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 수행했다. 인풋 바이러스 용 해물은 컨트롤로 표시됨.
도 9는 SARS-CoV-2 Spike CD-Fc와 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 재조합 단백질 간의 상호 작용을 나타낸 그림으로,
(A) Prey & Bait 분석 시스템의 개략도.
(B) 스트렙타비딘을 96- 웰 면역 플레이트에 코팅한 다음 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질을 각 웰에 첨가하였다. 각각의 코로나 바이러스 스파이크 CD- 인간 Fc 융합 단백질(MERS-CoV Spike CD-Fc, SARS-CoV-2 Spike CD-Fc)을 첨가한 후, 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질에 결합하는 코로나 바이러스 스파이크 CD- 인간 Fc 융합 단백질의 양을 ELISA로 측정하였다.
(C) SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 재조합 단백질 간의 상호 작용 특이성. 연속 희석된 비-비오틴화된-재조합 SARS-CoV-2 N-His6 단백질을 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 함께 배양한 다음 웰에서 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 코팅된 스트렙타비딘에 첨가했다. 경쟁 정도는 양고추냉이 과산화 효소와 접합된 항-인간 IgG Fc 항체를 사용하여 ELISA로 측정되었다.
도 10은 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체와 재조합 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc 단백질을 사용한 세포 배양 배지에서 SARS-CoV-2 검출을 나타낸 그림으로
(A) ELISA의 개략도.
(B) SARS-CoV-2 클레이드 S 및 HCoV-OC43,
(C) 세포 배양 상층액의 SARS-CoV-2 클레이드 GH 및 클레이드 GR을 세포 용해 완충액으로 용해시키고 PBST에서 연속 희석하였다. 바이러스 용해물을 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체로 코팅된 96 웰 면역 플레이트에 첨가했다. 상온에서 2 시간 동안 배양한 후 재조합 SARS-CoV-2 Spike CD-Fc 단백질을 첨가한 다음 HRP가 결합된 항-인간 IgG Fc 항체를 각 웰에 첨가하였다. 각 웰에서 SARS-CoV-2 N 단백질의 양은 ELISA에 의해 결정되었다.
이하 비한정적인 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세하게 설명한다. 단 하기 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 의도로 기재한 것으로서 본 발명의 범위는 하기 실시예에 의하여 제한되는 것으로 해석되지 아니한다.
실시예 1:세포 배양 및 바이러스
아프리카 녹색 원숭이 신장 Vero 세포와 인간 기도 상피 Calu-3 세포는 한국 세포주 은행 (서울, 한국)에서 구입했다. 세포는 10 % 소 태아 혈청 (FBS, Thermo Fisher Scientific), 25mM HEPES, 100U/ml 페니실린 및 100μg/ml 스트렙토마이신 을 포함하는 Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM, Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA)에서 37 °C, 5 % CO2 인큐베이터에서 유지하였다.
MERS-CoV (MERS-CoV/KOR/KNIH/002_05_2015), SARS-CoV-2 S clade (BetaCoV/Korea/KCD03/2020, NCCP43326), GR clade (hCoV-19/Korea/KDCA51463/2021, NCCP43381) 및 GH clade (hCoV-19/Korea/KDCA55905/2021, NCCP43382)는 National Culture Collection for Pathogens (Osong, Korea)에서 제공했다.
HCoV-OC43 (KBPV-VR-8)은 한국 병원성 바이러스 은행 (고려대학교 의과 대학, 서울)에서 입수했다. 바이러스 증폭은 다른 곳에서 설명한대로 수행되었다 (Park, B. K., 등 (2019). BMB Rep. 52, 397-402. doi: 10.5483/BMBRep.2019.52.6.185; Park, B. K., 등 (2021a). Theranostics 11, 3853-67. doi: 10.7150/thno.55647; Park, B. K., 등 (2021b). Biomol. Ther (Seoul). 29, 273-81. doi: 10.4062/biomolther.2020.226).
요약하면, 2 × 105 개의 Vero 세포 (6 웰 플레이트, 미국 뉴욕 주 코닝 소재의 6 웰 플레이트)를 CO2 인큐베이터에서 밤새 배양한 다음 MOI 0.01의 PBS 내 SARS-CoV-2를 각 웰에 접종했다. 1 시간 감염 후, 세포는 CO2 인큐베이터에서 37℃에서 2 % FBS (2ml)를 포함하는 DMEM에서 배양되었다. 3 일 배양 후, 세포 배양 상층액을 수확하고 바이러스 역가를 이전에 설명한 바와 같이 플라크 분석으로 정량화하고 (Kandeel 등, (2020). Biomol Ther (Seoul). 28, 311-9. doi: 10.4062/biomolther.2019.202; Kim 등 (2021). BMB Rep. 2021 Apr 9:5300. Epub ahead of print. PMID: 33832550) -70℃에 보관했다.
MERS-CoV 및 SARS-CoV-2 증폭 및 세포 배양 절차는 한림대학교 생물안전위원회의 권고에 따라 한림중개의과학연구원에서 생물 안전성 수준 3 (BSL-3) 조건에 따라 수행되었다.
실시예 2:비오틴 펩타이드-6xHis 태그가 붙은 코로나 바이러스 N 단백질의 구축 및 발현
재조합 비오틴 펩티드-6xHis 태그가 붙은 코로나 바이러스 (MERS-CoV 및 SARS-CoV-2) N 단백질 (재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질 및 재조합 MERS-CoV N-Bio-His6 단백질)을 얻기 위해, SARS-CoV-2 (또는 MERS-CoV) N 단백질-비오틴 펩티드 (NSGSLHHILDAQKMVWNHR;서열번호 9)-6xHis(DRNLPPLAPLGPHHHHHH; 서열번호 10)를 암호화하는 융합 유전자를 합성하고 클로닝했다.
비오틴 펩티드 서열은 대장균 비오틴 홀로엔자임 합성 효소인 BirA에 의해 인식되었다(Altman, J. D., Moss, P. A., Goulder, P. J., Barouch, D. H., McHeyzer-Williams, M. G., Bell, J. I., McMichael, A. J., and Davis, M. M. (1996). Science 274, 94-6. doi: 10.1126/science.274.5284.94;Brown, M. H., Boles, K., van der Merwe, P. A., Kumar, V., Mathew, P. A., and Barclay, A. N. (1998). J. Exp. Med. 188, 2083-90. doi: 10.1084/jem.188.11.2083;Schatz, P. J. (1993). Biotechnology 11, 1138-43. doi: 10.1038/nbt1093-1138).
N 단백질에 대한 뉴클레오티드 서열은 SARS-CoV-2 N 단백질의 경우 GeneBank : MN908947.3(뉴클레오티드 번호 28274-29530) 및 MERS-CoV N 단백질의 경우 KT029139.1(뉴클레오티드 번호 28566-29804)에서 얻었다.
SARS-CoV-2 N 단백질-Bio-His6 및 MERS-CoV N 단백질-Bio-His6를 코딩하는 융합 유전자를 각각 5 '및 3' 말단에 제한 효소 부위 Not I 및 Kpn I을 포함하여 합성하였다(Bioneer, Korea).
합성된 융합 유전자를 포유류 세포 발현을 위해서 IL-2 신호 서열 (pcDNA3.4-MERS-CoV N-Bio-His6 및 pcDNA3.4-SARS-CoV-2 N-Bio -His6)을 포함하는 변형된 pcDNA 3.4 발현 벡터(Thermo Fisher Scientific)에 삽입했다.
재조합 MERS-CoV N-Bio-His6 및 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질은 Gibco ™ ExpiCHO ™ Expression System Kit (카탈로그 번호 A29133, Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 대장균 비오틴 리가아제, BirA (카탈로그 번호 32408; Addgene, Watertown, MA, 미국)을 포함하는 변형된 발현벡터로 ExpiCHO 세포에사 발현되었다.
비오틴화가 없는 재조합 단백질 (SARS-CoV-2 N-His6)을 얻기 위해 대장균 비오틴 리가아제 인 BirA 벡터없이 발현시켰다. 32℃에서 14 일 동안 세포 배양한 후 Ni-NTA-agarose (Qiagen, Hilden, Germany) 크로마토그래피 및 크기 배제 겔 크로마토그래피를 사용하여 세포 배양 상층액으로부터 재조합 단백질을 정제했다. 재조합 단백질의 발현은 anti-His-tag 항체 (카탈로그 번호 MA1-21315, Thermo Fisher Scientific) 및 peroxidase-conjugates streptavidin (카탈로그 번호 S5512, Sigma-Aldrich, Saint Louis, MO, 미국)을 사용한 웨스턴블롯 분석에 의해 확인되었다.
실시예 3:마우스 면역화
BALB/c (4 주령, 암컷, H-2b) 마우스는 Nara-Biotec (서울, 한국)에서 구입했다. 50μg의 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질과 50μg의 CpG-DNA를 포스파티딜-β-올레오일-γ-팔미토일 에탄올아민 (DOPE):콜레스테롤 헤미숙시네이트 (CHEMS) 복합체 (1 : 1 몰 비율) 이전에 설명한대로 (Kim, D., Kwon, S., Rhee, J. W., Kim, K. D., Kim, Y. E., Park, C. S., Choi, M. J., Suh, J. G., Kim, D. S., Lee, Y., and Kwon, H. J. (2011). BMC Immunol. 12, 29. doi: 10.1186/1471-2172-12-29) 제형화하였다.
SARS-CoV-2 N 단백질의 혼합물을 10 일 간격으로 3 회 BALB / c 마우스에 복강 내 (i.p.) 면역화시켰다. 동물 실험은 한림대학교 동물실험윤리위원회 (HallymR12020-26, 한림 2021-12)의 승인을 받았다.
실시예 4: SARS-CoV-2의 N 단백질에 대한 마우스 단클론 항체 생산
SARS-CoV-2 N 단백질 면역화된 마우스의 비장 세포를 폴리에틸렌 글리콜 용액 (PEG, Sigma Aldrich, St. Louis, MO, USA)에서 마우스 SP2/0 골수종 세포와 융합시켰다. 융합 후, 하이브리도마 세포는 앞서 기술(Kim, D., Kwon, S., Rhee, J. W., Kim, K. D., Kim, Y. E., Park, C. S., Choi, M. J., Suh, J. G., Kim, D. S., Lee, Y., and Kwon, H. J. (2011). BMC Immunol. 12, 29. doi: 10.1186/1471-2172-12-29)된 표준 하이브리도마 생산 방법에 따라 HAT 배지 (Sigma-Aldrich) 및 HT 배지 (Sigma-Aldrich)에서 클로닝되었다. 클론된 하이브리도마 세포를 BALB/c 마우스의 복강에 주입한 다음 단클론 항체를 포함하는 복수를 수집하였다. SARS-CoV-2의 N 단백질에 대한 단클론 항체는 Protein-A 컬럼 크로마토그래피를 사용하여 복수 액에서 정제되었다.
실시예 5: 항원 특이적 Ig ELISA 분석
Streptavidin (5μg / well)을 96-well 면역 플레이트 (Thermo Fisher Scientific)에 4 °C에서 밤새 코팅한 다음 3 % 소 혈청 알부민 (BSA)을 함유하는 PBST (0.1 % Tween-20으로 보충된 PBS)로 차단했다. 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질을 각 웰에 첨가한 다음 마우스 혈청, 하이브리도마 배양 상층액, 복수 및 정제된 단클론 항체 용액에서 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 항체 수준은 이전에보고(Kim, D., Kwon, S., Rhee, J. W., Kim, K. D., Kim, Y. E., Park, C. S., Choi, M. J., Suh, J. G., Kim, D. S., Lee, Y., and Kwon, H. J. (2011). BMC Immunol. 12, 29. doi: 10.1186/1471-2172-12-29)된 표준 ELISA 방법을 사용하여 측정되었다. 단클론 항체의 이소타입을 확인하기 위해 양고추냉이 과산화 효소(HRP)-접합된 항-마우스 IgG (각 이소 타입) 항체(Southern Biotech, Birmingham, AL, USA)를 사용했다.
실시예 6: ELISA에 의한 결합 능력 측정
SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체의 결합 친화도는 앞서 설명(Park, B. K., Maharjan, S., Lee, S. I., Kim, J., Bae, J. Y., Park, M. S., and Kwon, H. J. (2019). BMB Rep. 52, 397-402. doi: 10.5483/BMBRep.2019.52.6.185)한대로 ELISA에 의해 측정되었다.
요약하면, 스트렙타비딘(5μg / 웰)을 96 웰 면역 플레이트 (Thermo Fisher Scientific)에 코팅한 다음 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질을 각 웰에 첨가하였다. 연속 희석된 단클론 항체(1 : 5)를 PBST의 각 플레이트에 첨가했다. 실온에서 2 시간 동안 배양한 후, HRP- 접합된 항-마우스 IgG 항체를 각 웰에 첨가 하였다. 테트라메틸벤지딘(TMB) 퍼옥시다제 기질(Kirkegaard and Perry Laboratories, Gaithersburg, MD, USA)으로 현상한 후, Spectra Max 250 마이크로 플레이트 리더 (Molecular Devices, San Jose, CA, USA). )를 사용하여 405 nm에서 흡광도를 측정하여 각 웰의 항체 양을 결정했다.항체의 양은 EC50 값을 결정하기 위해 SigmaPlot 프로그램으로 계산되었다.
실시예 7:항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체의 가변 중쇄 및 경쇄 도메인 클로닝
SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체를 생산하는 하이브리도마 클론 (1G10C4)은 CO2 인큐베이터에서 배양되었다. RNeasy Mini Kit (Qiagen)를 이용하여 하이브리도마 세포(1G10C4)에서 총 RNA를 추출하여 cDNA를 생성했다. 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체 (1G10C4)의 가변 중쇄 및 경쇄 도메인 (VH 및 VL)에 대한 서열을 클로닝하기 위해, 생성된 cDNA를 다음 프라이머 세트와 함께 벤트 중합 효소 (NEB)를 사용하여 증폭했다.
중쇄 프라이머의 경우, IGG2A (5'- GGA AGA TCT CTT GAC CAG GCA TCC TAG AGT CA-3 ';서열번호 11) 및 5'MH2 (5'-CTT CCG GAA TTC SAR GTN MAG CTG SAG SAG TCW GG-3';서열번호 12)를 사용하였고.
카파 사슬 프라이머의 경우, 3'Kc (5'-GGT GCA TGC GGA TAC AGT TGG TGC AGC ATC-3 ';서열번호 13) 및 5'Mk (5'-GG GAG CTC GAY ATT GTG MTS ACM CAR WCT MCA-3';서열번호 14)를 사용하였다.
표준 PCR 반응은 25주기 동안 수행되었다. PCR 산물은 pGEM-T easy vector (Promega)에 직접 연결되었다. 클로닝된 마우스 Ig 삽입물은 DNA 시퀀싱에 의해 분석되었다.
실시예 8:웨스턴 블롯팅 및 면역 침전
SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체의 특이성을 확인하기 위해, SARS-CoV-2-, MERS-CoV- 또는 HCoV-OC43에 감염된 Vero 세포 (또는 Calu-3 세포) 및 SARS-CoV-2 세포 배양 상층액의 입자를 10mM HEPES, 150mM NaCl, 5mM EDTA, 100mM NaF, 2mM Na3VO4, 프로테아제 억제제 칵테일 및 1 % NP-40을 함유하는 세포 용해 완충액으로 용해시켰다.
용해물을 4-12 % Bis-Tris 구배 겔(Thermo Fisher Scientific)로 분리한 다음 니트로셀룰로오스 막으로 옮겼다. 막을 5 % 탈지유 및 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체를 포함하는 PBST로 실온에서 2 시간 동안 차단했다. 막을 PBST로 3 회 세척하고 5 % 탈지유를 함유하는 PBST에서 항-HRP-접합 염소 항-마우스 IgG 항체 (1 : 5000, Jackson ImmunoResearch Laboratories)와 함께 배양했다. 면역 복합체는 ECL 용액으로 검출되었다.
면역 침전을 분석하기 위해 SARS-CoV-2-, MERS-CoV- 또는 HCoV-OC43에 감염된 Vero 세포 용해물을 4℃에서 2 시간 동안 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체와 함께 배양했다. 면역 복합체를 Protein-A 비드 (Repligen, Waltham, MA, USA)로 분리한 다음 면역 침전된 SARS-CoV-2 N 단백질을 SDS-PAGE 및 토끼 anti-SARS-CoV-2 N 단백질 다 클론 항체 (카탈로그 번호 40588-T62, Sino Biological, 비엔나, 오스트리아)로 웨스턴 블롯팅으로 분석했다.
실시예 9: 공 초점 이미지
Vero 세포 (5 x 104 세포)를 12 웰 배양 플레이트의 커버 유리 위에 배양하고 0.1 MOI의 SARS-CoV-2로 48 시간 동안 감염시켰다. 세포를 4 % 파라포름알데히드로 고정하고 3 % BSA 및 0.1 % 트리톤 X-100을 포함하는 PBS로 30 분 동안 투과시켰다. 세포를 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체와 함께 2 시간 동안 배양한 다음 Alexa Flour 488- 접합 염소 항-마우스 IgG와 함께 1 시간 동안 배양했다. 핵을 Hoechst 33258 (Thermo Fisher Scientific)로 염색한 다음 Carl Zeiss LSM710(Carl Zeiss, Oberkochen, DE)로 세포를 관찰했다.
실시예 10: SARS-CoV-2 Spike CD와 N 단백질의 상호 작용 평가
5μg/웰의 스트렙타비딘을 96 웰 면역 플레이트에 4 °C에서 밤새 코팅한 다음 3 % BSA를 포함하는 PBST로 차단했다. 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질(5μg/웰)을 각 웰에 첨가하고 실온에서 2 시간 동안 배양했다. PBST로 세척한 후, 각 코로나 바이러스 CD- 인간 Fc 융합 단백질(MERS-CoV Spike CD-Fc, SARS-CoV-2 Spike CD-Fc)을 PBST에서 1:3의 연속 희석으로 각 웰에 첨가한 다음, 실온에서 2 시간 동안 배양하였다. PBST로 세척한 후 양고추냉이 과산화효소가 결합된 항-인간 IgG Fc 항체를 각 웰에 첨가하였다. 웰에서 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질에 결합된 Spike CD-인간 Fc 융합 단백질의 양은 TMB 퍼옥시다제 기질로 현상하여 결정했다.
재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질과 SARS-CoV-2 Spike CD-Fc, streptavidin (5 μg/well) 간의 상호 작용에 대한 재조합 SARS-CoV-2 N-His6 단백질의 경쟁을 확인하기 위해서, 5 μg/웰의 스트렙타비딘을 96-웰 면역 플레이트에 코팅한 다음 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질을 각 웰에 첨가하였다. 연속 희석된 재조합 SARS-CoV-2 N-His6 단백질(1:3)을 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc(5μg/well)와 함께 2 시간 동안 배양한 다음 PBST에서 각 플레이트에 첨가했다. 실온에서 2 시간 배양한 후, 플레이트를 PBST로 세척한 다음 양고추냉이 퍼옥시다아제와 결합된 항-인간 IgG Fc 항체를 각 웰에 첨가하여 웰의 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질에 결합하는 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc 단백질의 양을 결정했다.
실시예 11: ELISA에 의한 세포 배양 배지에서 SARS-CoV-2 검출
5 μg / 웰의 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체를 96- 웰 면역 플레이트(Thermo Fisher Scientific)에 4 °C에서 밤새 코팅한 다음 3 % BSA를 포함하는 PBST로 차단했다.
세포 배양 상층액의 SARS-CoV-2를 세포 용해 완충액으로 용해하고 PBST (1 : 3)에 연속 희석된 SARS-CoV-2를 각 플레이트에 첨가했다. 실온에서 2 시간 동안 배양한 후, 재조합 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc 단백질을 첨가한 다음 HRP-접합된 항-인간 IgG 항체를 각 웰에 첨가하였다. TMB 퍼옥시다제 기질 (Kirkegaard and Perry Laboratories)로 현상한 후, Spectra Max 250 마이크로 플레이트 리더 (Molecular Devices)를 사용하여 405nm에서 흡광도를 측정하여 각 웰의 SARS-CoV-2 N 단백질 양을 결정했다.
상기 실시예의 결과를 하기에서 상술한다.
SARS-CoV-2 N 단백질 정제
SARS-CoV-2 N 단백질에 대한 단클론 항체를 생산하기 위해 비오틴 펩티드 -6xHis 태그가 붙은 SARS-CoV-2 N 단백질(SARS-CoV-2 N-Bio-His6)을 ExpiCHO 세포에서 비오틴화된 형태로 발현하고 Ni-NTA 컬럼을 사용하여 정제했다.
정제된 재조합 단백질은 SDS-PAGE로 조사하고 peroxidase-conjugated streptavidin과 anti-His tag 항체를 사용하여 western blotting으로 확인하였다 (그림 1A).
또한 ExpiCHO ™ Expression System Kit에서 재조합 MERS-CoV N-Bio-His6 단백질을 생산하여 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체의 특이성을 분석했다 (그림 1B).
항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체의 생산 및 특성화
본 발명자들은 정제된 재조합 SARS-CoV-2 N 단백질과 CpG-DNA의 복합체를 리포솜 (DOPE : CHEMS)에 공동 캡슐화한 다음 BALB/c 마우스에서 면역화했다. 4 마리의 면역화된 마우스로부터 마우스 혈청을 수집하고 재조합 SARS-CoV-2 N 단백질에 대한 항체 생산을 확인하였다(도 2A).
SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체 생성을 위하여 재조합 SARS-CoV-2 N 단백질 인식 항체를 생산한 마우스로부터 비장 세포를 채취한 다음, 비장 세포를 SP2/0와 융합시켰다.
본 발명자들은 HAT 배지(그림 2B)와 HT 배지(그림 2C) 선택을 통해 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 항체를 생산하는 하나의 클론 하이브리도마 세포(1G10C4)를 선택했다. 하이브리도마 세포 (1G10C4)를 마우스 복강에 주입하고 수집된 복수는 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체를 포함하였다(그림 3A).
SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체는 Protein A 크로마토 그래피로 정제되었다(그림 3B). 정제된 단클론 항체의 IgG 서브 클래스는 IgG2a였다(그림 3C). 재조합 펩타이드-6xHis- 태그가 붙은 SARS-CoV-2 N 단백질에 대한 단클론 항체의 결합 능력은 ELISA에 의해 측정되었고 항체의 EC50 값은 ~ 24 nM이었다(도 3D).
SARS-CoV-2 N 단백질 특이 적 단클론 항체의 가변 도메인 클로닝
중쇄 및 경쇄(VH 및 VL)의 가변 도메인을 코딩하는 cDNA 서열은 일반적인 중쇄 및 경쇄 프라이머를 사용하여 SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체를 생산하는 하이브리도마 세포(1G10C4)에서 클로닝되었다.
DNA 시퀀싱에 의해 확인된 서열은 그림 4에 나와 있다. 서열은 단백질 BLAST 프로그램 (http://www.ncbi.nlm.nih.gov)에 의해 알려진 서열과의 상동성에 대해 분석되었다.
항 -SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체의 특이성
항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체가 SARS-CoV-2의 N 단백질을 특이적으로 인식하는지 확인하기 위해 스트렙타비딘 코팅된 96- 웰 면역 플레이트를 사용하여 ELISA를 수행하였다.
도 5A에 나타난 바와 같이 항체는 농도 의존적으로 재조합 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 단백질에 반응했다. 그러나 재조합 MERS-CoV N-Bio-His6 단백질에 대한 중요한 신호는 없었다.
항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적인 단클론 항체가 SARS-CoV-2- 감염된 세포에서 N 단백질을 특이적으로 인식하는지 여부를 추가로 조사하기 위해 웨스턴 블롯 분석을 수행했다. 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체는 SARS-CoV-2 (S 클레이드)에 감염된 Vero 세포의 세포 용해물에서 분자량이 약 50kDa인 단백질 밴드를 인식했지만 MERS-CoV- 또는 HCoV-OC43- 감염된 Vero 세포의 세포 용해물에서는 인식하지 못했다(도 5B).
면역 침전 및 SARS-CoV-N을 인식하는 상업적으로 이용 가능한 항체로 웨스턴 블롯팅 수행은 SARS-CoV-2의 N 단백질에 대한 생산된 항체의 특이적 반응성이 추가로 밝혀졌다(도 5C). 이러한 결과는 단클론 항체가 SARS-CoV-2-감염 세포의 N 단백질을 인식하는 특이적인 특성을 가지고 있음을 확인시켜 준다.
항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체를 사용한 SARS-CoV-2 클레이드의 N 단백질 검출
anti-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체가 SARS-CoV-2의 다른 clade의 N 단백질을 인식하는지 알아보기 위해, 본 발명자들은 SARS-CoV-2 클레이 드 S, GR 또는 GH로 Vero 세포와 Calu-3 세포를 감염시킨 후 웨스턴 블롯 분석을 수행했다(그림 6A, B). 항체는 SARS-CoV-2 클레이드 S, GR 또는 GH로 감염된 Vero 세포 (그림 6A) 및 Calu-3 세포 (그림 6B)의 세포 용해물에서 모든 클레이드의 N 단백질을 인식했다.
다음, 공 초점 현미경으로 SARS-CoV-2- 감염 세포에서 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적인 단클론 항체의 결합 특성을 조사하였다. SARS-CoV-2- 감염 또는 비감염 Vero 세포의 S, GR 및 GH 클레이드를 정상 마우스 IgG 또는 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체로 염색했다. 공 초점 현미경 이미지는 SARS-CoV-2의 각 클레이드에 감염된 세포 내에서 항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체로 염색 된 형광 신호를 명확하게 보여주었다. 정상적인 마우스 IgG와 함께 배양된 세포에서는 염색이 관찰되지 않았다(그림 6C).
항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체가 SARS-CoV-2 클레이드의 바이러스 입자에서 N 단백질을 인식하는지 여부를 추가로 조사하기 위해 감염된 세포의 세포 배양 상층액에 있는 바이러스를 세포 용해 완충액으로 용해한 후 웨스턴 블로팅이 수행되었다.
도 7A에 나타난 바와 같이, 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체는 S clade SARS-CoV-2 입자에서 약 300 pfu의 하한까지 N 단백질을 인식했다. 항 -SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체는 또한 유사한 민감도로 GH 및 GR 클레이드의 SARS-CoV-2 입자에서 유래된 N 단백질을 인식했다.
다음으로, 면역 침전 분석을 수행한 결과, 항-SARS-CoV-2 N 단백질 단클론 항체가 각 클레이드의 바이러스 입자에 있는 천연 N 단백질에 반응하는 것으로 확인되었다(그림 7B).
이 결과는 항-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적 단클론 항체가 SARS-CoV-2 감염 세포의 S, GR 및 GH clade에서 발현되고 각 클레이드의 바이러스 입자에 조립된 N 단백질을 인식하는 특이적인 특성을 가지고 있다는 결론을 내렸다. .
재조합 SARS-CoV-2 Spike CD 융합 단백질과 SARS-CoV-2 입자의 N 단백질 간의 상호 작용
인 비트로 상호 작용을 확인하기 위해 정제된 대조군 Fc 도메인과 SARS-CoV-2 Spike CD 및 Fc 도메인(SARS-CoV-2 Spike CD-Fc)으로 구성된 융합 단백질을 생산 및 정제했다(그림 8A).
SARS-CoV-2 Spike CD-Fc 또는 Fc 대조군과 배양된 S, GR 및 GH clade의 바이러스 샘플을 Protein A-agarose beads의 도움으로 끌어 내렸을 때, 각 clade의 N 단백질은 Fc 대조군과 비교하여 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 우선적으로 관련되었다(도 8B). 이 결과는 SARS-CoV-2 스파이크 CD가 S, GR 및 GH 클레이드의 SARS-CoV-2 N 단백질과 상호 작용함을 뒷받침한다.
재조합 SARS-CoV-2 Spike CD 융합 단백질과 재조합 SARS-CoV-2 N 융합 단백질 간의 상호 작용 평가
Streptavidin, SARS-CoV-2 N-Bio-His6, SARS-CoV-2 Spike CD-Fc 및 HRP와 결합된 항-인간 IgG Fc 항체를 사용하는 Bait & Prey 분석 시스템을 그림 9A와 같이 설계했다.
ELISA 결과는 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc가 농도 의존적으로 SARS-CoV-2 N-Bio-His6에 결합되어 있음을 보여준다(그림 9B). 대조적으로, Fc 도메인 및 PBS 대조군에는 결합이 없었다.
MERS-CoV-2 Spike CD-Fc는 고농도(30μg/ml)에서만 약한 결합을 나타냈다. SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 SARS-CoV-2 N-Bio-His6 간의 상호 작용 특이성을 추가로 조사하기 위해 비-비오틴화된 재조합 SARS-CoV-2 N-His6 단백질과의 사전 배양을 사용하여 경쟁 분석을 수행했다. 비-비오틴화-재조합 SARS-CoV-2 N-His6 단백질은 농도 의존적으로 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc 및 SARS-CoV-2 N-Bio-His6의 상호 작용을 감소시켰다(도 9C).
비-비오틴화-재조합 SARS-CoV-2 N-His6 단백질의 부재하에 Fc 도메인은 SARS-CoV-2 N-Bio-His6와 상호 작용이 없었다. 이러한 결과는 SARS-CoV-2 스파이크 CD와 SARS-CoV-2의 N 단백질이 특이적이고 직접적으로 상호 작용한다는 것을 뒷받침하며, 재조합 융합 단백질을 사용하는 우리의 Bait & Prey 시스템이 상호 작용을 인 비트로에서 정량적으로 평가하는 도구로 사용될 수 있음을 시사한다.
SARS-CoV-2 입자 유래 N 단백질 및 재조합 SARS-CoV-2 Spike CD 융합 단백질 간의 상호작용을 이용한 SARS-CoV-2의 검출
본 발명자들은 anti-SARS-CoV-2 N 단백질 특이적인 단클론 항체를 가지고 있고 N 단백질은 Spike CD와 상호 작용하기 때문에 그림 10A에 표시된 것과 같이 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc 및 anti-SARS-CoV-2 N 단백질 항체를 사용하여 SARS-CoV-2 바이러스에 대한 검출 시스템을 설계했다.
SARS-CoV-2 입자의 N 단백질은 항-SARS-CoV-2 N 단백질 항체에 의해 포획된 후 SARS-CoV-2 스파이크 CD-Fc와 상호 작용하도록 허용되었다. ELISA 시스템은 농도 의존적으로 HCoV-OC43이 아닌 SARS-CoV-2 클레이드 S의 바이러스 입자를 검출했다 (그림 10B).
이 시스템은 또한 농도 의존적으로 다른 SARS-CoV-2 클레이드 GR 및 GH를 검출했다(그림 10C).
따라서 바이러스 N 단백질과 SARS-CoV-2 Spike CD Fc 융합 단백질의 상호 작용이 새로운 SARS-CoV-2 검출 시스템에 적용될 수 있음을 확인했다. 이 시스템이 우리가 예상한대로 작동한다는 점을 고려할 때, 항체에 의해 검출된 N 단백질의 에피토프는 스파이크 CD와 N 단백질의 상호 작용에 관여하지 않을 가능성이 높다.
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<213> Artificial Sequence
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Gly Phe Thr Phe Ser Asp Tyr Trp Met Asn
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<213> Artificial Sequence
<220>
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Glu Ile Arg Leu Lys Ser Asp Asn Tyr Ala Thr His Tyr Thr Glu Ser
1 5 10 15
Val Lys Gly
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<220>
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Ala
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<213> Artificial Sequence
<220>
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<220>
<223> CDR3 of Light chain
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<213> Artificial Sequence
<220>
<223> VH
<400> 7
Glu Val Gln Leu Gln Glu Ser Gly Gly Gly Leu Val Gln Pro Gly Gly
1 5 10 15
Ser Met Lys Leu Ser Cys Val Asp Ser Gly Phe Thr Phe Ser Asp Tyr
20 25 30
Trp Met Asn Trp Val Arg Gln Ser Pro Glu Lys Gly Leu Glu Trp Val
35 40 45
Ala Glu Ile Arg Leu Lys Ser Asp Asn Tyr Ala Thr His Tyr Thr Glu
50 55 60
Ser Val Lys Gly Arg Phe Thr Ile Ser Arg Asp Asp Ser Lys Ser Ser
65 70 75 80
Val Tyr Leu Gln Met Asn Asn Leu Arg Ala Glu Asp Thr Gly Ile Tyr
85 90 95
Tyr Cys Thr Arg Ser Ala Met Asp Tyr Trp Gly Gln Gly Thr Ser Val
100 105 110
Thr Val Ser Ser Ala
115
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<211> 125
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> VL
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Asp Ile Val Met Thr Gln Ser Pro Ser Ser Leu Ala Val Ser Val Gly
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Glu Lys Val Thr Met Ser Cys Lys Ser Ser Gln Ser Leu Leu Tyr Ser
20 25 30
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35 40 45
Ser Pro Lys Leu Leu Ile Phe Trp Ala Ser Thr Arg Glu Ser Gly Val
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Pro Asp Arg Phe Thr Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe Thr Leu Thr
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Ile Ser Ser Val Lys Ala Glu Asp Leu Ala Val Tyr Tyr Cys His Gln
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Tyr Tyr Thr Tyr Pro Arg Thr Phe Gly Gly Gly Thr Lys Leu Glu Ile
100 105 110
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<210> 9
<211> 19
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> N PROTEIN
<400> 9
Asn Ser Gly Ser Leu His His Ile Leu Asp Ala Gln Lys Met Val Trp
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Asn His Arg
<210> 10
<211> 18
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 6XHis
<400> 10
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1 5 10 15
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<213> Artificial Sequence
<220>
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
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<211> 32
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Primer
<400> 14
gggagctcga yattgtgmts acmcarwctm ca 32
Claims (14)
- 사스-코로나바이러스-2(severe acute respiratory syndrome coronavirus 2, SARS-CoV-2)의 N 단백질 또는 그 단백질의 일부를 특이적으로 인지하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편에 있어서,
상기 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편은 하기의 폴리펩티드 서열로 이루어진 것을 특징으로 하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편:
서열번호 1로 기재되는 CDR1 영역, 서열번호 2로 기재되는 CDR2 영역 및 서열번호 3으로 기재되는 CDR3 영역을 포함하는 중쇄 및
서열번호 4로 기재되는 CDR1 영역, 서열번호 5로 기재되는 CDR2 영역 및 서열번호 6으로 기재되는 CDR3 영역을 포함하는 경쇄로 구성되는 단클론 항체. - 제1항에 있어서, 상기 기능적 단편은 단일 측쇄 항체(scFv)인 것을 특징으로 하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편.
- 제1항에 있어서, 상기 기능적 단편은 항원결합 분절(Fab)인 것을 특징으로 하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편.
- 제1항에 있어서, 상기 기능적 단편은 제1항의 CDR부위를 포함하는 경쇄 또는 중쇄인 것을 특징으로 하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편.
- 제1항에 있어서, 상기 기능적 단편은 제1항의 CDR부위를 포함하는 가변 도메인(Variable domain)인 것을 특징으로 하는 단클론 항체, 또는 그 기능적 단편.
- 제1항에 있어서, 상기 단클론 항체는 서열번호 7로 기재되는 폴리펩티드 서열을 포함하는 중쇄 및 서열번호 8로 기재되는 폴리펩티드 서열을 포함하는 경쇄인 것을 특징으로 하는 단클론 항체.
- 리포좀 내에 동시캡슐화된 사스-코로나바이러스-2의 N 단백질 및 CpG-DNA 복합체를 동물에 주사하여 사스-코로나바이러스-2를 인식하는 단클론 항체를 제조하는 방법.
- 제7항에 있어서, 상기 사스-코로나바이러스-2의 N 단백질은 서열번호 9에 기재된 서열로 이루어진 것을 특징으로 하는 단클론 항체를 제조하는 방법.
- 제9항의 제조방법에 의하여 제조된 사스-코로나바이러스-2를 인식하는 단클론 항체.
- 제1항의 단클론 항체에 표지 물질을 접합한 컨쥬게이트를 포함하는 사스-코로나바이러스-2 진단용 조성물.
- 제10항에 있어서, 상기 표지물질은 효소, 루시퍼레이즈, 자성입자, 형광물질 및 방사성 동위원소로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 사스-코로나바이러스-2 진단용 조성물.
- 1) 샘플과 제1항, 또는 제9항의 단클론 항체를 접촉시키는 단계; 및
2) 상기 단클론 항체를 시료 샘플과 접촉시켜 형성된 항원-항체 복합체를 검출하는 단계를 포함하는
대상체의 사스-코로나바이러스-2 감염 여부에 대한 정보제공방법. - 1) 제1항 또는 제9항의 단클론 항체; 및
2) 용기를 포함하는 사스-코로나바이러스-2 진단용 키트. - 제1항의 단클론 항체를 유효성분으로 포함하는 사스-코로나바이러스-2 감염 치료용 조성물.
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN116675765A (zh) * | 2023-06-02 | 2023-09-01 | 保定国兰生物技术有限公司 | 冠状病毒n蛋白单克隆抗体及其应用 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN112079920A (zh) * | 2020-09-18 | 2020-12-15 | 北京华大蛋白质研发中心有限公司 | 一种用于检测SARS-CoV-2病毒N蛋白的单克隆抗体及其应用 |
-
2021
- 2021-06-17 KR KR1020210078681A patent/KR102623999B1/ko active IP Right Grant
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN112079920A (zh) * | 2020-09-18 | 2020-12-15 | 北京华大蛋白质研发中心有限公司 | 一种用于检测SARS-CoV-2病毒N蛋白的单克隆抗体及其应用 |
Cited By (2)
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| CN116675765B (zh) * | 2023-06-02 | 2023-11-24 | 保定国兰生物技术有限公司 | 冠状病毒n蛋白单克隆抗体及其应用 |
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