KR20150102744A - Woorimatori produced by using Korean native pure line duck and producing method thereof - Google Patents

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Abstract

The present invention relates to a method for producing Woorimatori and the Woorimatori produced by the aforesaid method, which are characterized by including the following steps of: (a1) collecting native ducks from a first area; (a2) securing a group of dark brown native ducks by separating the collected native ducks from the first area in accordance with native duck separating criteria; (a3) securing the Woorimatori species ducks originated from the first area including the step of securing the species ducks of A system by hybridizing the secured dark brown native ducks in Step (a2); (b1) collecting the native ducks from a second area apart from the first area, in which no natural hybridizing can be taken place between the native ducks; (b2) securing a group of dark brown native ducks by separating the collected native ducks from the second area in accordance with the native duck separating criteria; (b3) securing the Woorimatori species ducks originated from the second area including the step of securing the species ducks of B system by hybridizing the secured dark brown native ducks in Step (b2); and (c) hybridizing the species ducks of the A system and the species ducks of the B system. The Woorimatori of the present invention may have a higher crude protein content and higher water holding capacity compared to common meat ducks. In addition, the Woorimatori has a delicate flavor, chewy flesh, and especially, a higher content of an arachidonic acid, which is one of essential fatty acids.

Description

국내 토종오리 순종을 이용하여 생산된 우리맛오리 및 이를 생산하는 방법{Woorimatori produced by using Korean native pure line duck and producing method thereof}[0001] The present invention relates to a method for producing duck duck,

본 발명은 특정 토종오리의 순종을 이용하여, 계통간 교배에 의해서 생산된 토종오리 신품종 및 이를 생산하는 방법에 관한 것이다. 구체적으로, 우리 고유의 맛과 특성이 있는 국산 종자를 개발코자, 전국에서 종란을 수집, 부화 발생된 토종오리 유전자원을 기초군으로 하여 순수화도를 제고하며 계통을 조성하고 계통간 교배체계 연구를 통해 개발된 토종 우리맛오리 및 이를 생산하는 방법에 관한 것이다. The present invention relates to a new variety of native ducks produced by cross-breeding, and a method for producing the same, using the obedience of certain native ducks. Specifically, in order to develop domestic seeds with unique flavor and characteristics, we will collect seeds from all over the country, and make native duck genetic resources as a base group to enhance the degree of pureness, establish a system, And the method of producing it.

최근 한국 소비자들은 소득수준의 향상과 더불어 육제품의 선택에 있어서 건강의 기호성은 필수적인 사항으로 자리매김하고 있다. 따라서 오리고기는 건강에 좋은 지방산으로 알려진 단일불포화 지방산의 함량이 소나 돼지, 닭 등의 육제품에 비해 2배 이상 높고 특히 필수지방산인 리놀렌산과 아라키돈산이 함유되어 있어 혈중콜레스테롤 수치를 낮춰주는 역할을 한다. 또한 알칼리성의 성질을 가져 체액이 산성화되는 것을 막을 수 있고 피부노화를 방지해주며, 비타민 등의 광물질이 풍부해 건강한 육제품으로 인식되어 1인당 오리고기의 연간 소비량은 지난 10년간 3배 이상의 성장을 기록하고 있다(농림축산식품부, 2013). 그러나 빠르게 성장하고 있는 오리고기 소비량에 비해 90% 이상의 종 오리는 수입에 의존하고 있는 실정이며 종자주권 확립의 의미에서 한국 고유의 품종 개발 및 보급은 시급히 필요한 실정이다(FAO, 2007).In recent years, Korean consumers have become increasingly demanding for their palatability, along with the improvement of income levels. Therefore, duck meat is known to be a healthy fatty acid, monounsaturated fatty acid content of meat, pork, chicken and other meat products more than twice, especially essential fatty acids such as linolenic acid and arachidonic acid in the blood to reduce the role of cholesterol . It also has alkaline properties to prevent acidification of body fluids, prevents skin aging, and is rich in vitamins and other minerals. As a healthy meat product, the annual consumption of duck meat per person has more than tripled in the past 10 years (Ministry of Food, Agriculture, Forestry and Livestock, 2013). However, more than 90% of ducks depend on imports, compared to the fast-growing duck meat consumption. In the sense of establishing seed sovereignty, it is urgently necessary to develop and distribute native varieties in Korea (FAO, 2007).

우리나라에서 유통되고 있는 오리 품종은 대부분 영국의 Cherry Valley 사와 프랑스의 Grimaud사에서 수입한 종 오리로부터 얻은 Peking 종을 사육하고 있다(김학규 등, 2012). Peking 종은 순백색에 노란색 부리를 가지고 있는 반면 토종오리는 청둥오리를 축화해서 길러온 품종이기 때문에 특징은 청둥오리의 외모를 닮아 암컷의 경우 짙은 밤색을 띠고 있고, 수컷의 경우 머리가 청동색을 띠고 있다(축산기술연구소, 1999). Most of the duck varieties distributed in Korea are breeding Peking species from ducks imported from Cherry Valley of England and Grimaud of France (Kim Hak-gyu et al., 2012). The Peking species has a pure white and yellow beak, while the native duck is a cultivar cultivated with Mallard ducks, so it is characterized by the appearance of a mallard duck, with females having a deep brown color and males with bronze heads (Livestock Research Institute, 1999).

농촌진흥청 국립축산과학원에서는 토종오리의 멸실방지를 위하여 1994년부터 국내 민간에서 토종오리를 수집하여 유지보존을 하였고, 1998년 이후에는 옥색란을 생산하는 오리를 포획 및 추가로 수집하여 가금화된 청둥오리집단을 조성하였으며 이를 통하여 옥색란을 생산하는 계통을 조성하였다.The National Livestock Academy of Rural Development has collected and preserved native ducks from domestic private households since 1994 to prevent the loss of native ducks. After 1998, the ducks which are producing octopus were captured and further collected, In this way, a system of producing oaklan was established.

2008년에는 가금화된 청둥오리 집단을 옥색란과 백색란 생산 계통으로 나누어 조성하였고, 2009년에는 토종오리 생산을 위한 교배체계 연구를 통하여 오리의 소비형태 다양화 및 기능성을 추구하는 경향에 대비코자 하였다. 2011년부터는 민간에서 종자를 추가 수집하여 우리 고유의 맛과 특성이 있고 산육성이 증대된 토종 국산종자를 개발하여 왔다. 육량과 맛이 증대된 신품종 국산종자는 농가의 신소득원 창출 및 외래종과 차별되는 오리산물을 생산함으로써 시장성 확보와 경쟁력을 가질 수 있다.In 2008, a group of poultry mallards were divided into two groups, namely, the yogurans and the white molluscs. In 2009, the mating system for domestic ducks was studied to prepare for the diversification and functioning of duck consumption patterns. Since 2011, we have been developing seeds of domestic native seeds with additional flavor and characteristics and increased cultivation. New species with increased weight and taste Domestic seeds can produce new income sources of farm households and produce duck products that are distinguished from foreign species, thereby securing marketability and competitiveness.

계통간 교배나 품종간 교배에 의한 자손은 성장률, 생존율, 산란수 등 가축의 형질이 그 부모의 품종이나 계통에 비하여 우수한 경향이 있는데 이것을 잡종강세 (heterosis)라고 한다. 일반적으로 잡종강세를 이용한 교배시 육용종은 부계 계통으로 사용되고 난육겸용종은 산육능력 뿐만 아니라 산란능력도 양호하기 때문에 모계 계통으로 사용된다. 국내에서 개발 계통조성된 토종오리 순종을 이용하여, 잡종강세를 통해 육질이 우수하면서 성장이 개선된 토종 실용오리를 생산하기 위한 연구가 추진되고 있다. Growth rates, survival rates, and the number of laying hens tend to be superior to those of their parents' breed or lineage, which is called heterosis. Generally, breeding hybrids are used as a paternal system when hybridization is used. Hybrid breeding pairs are used as maternal systems because they have good ability of spawning as well as spawning ability. Research has been carried out on the production of domestic practical ducks with improved meat quality and improved growth through hybrid densities using domestic duck purebreds developed in Korea.

한편, 지금까지 토종오리의 유전적 정보를 확인한 연구는 전무한 상태이며, 특히 개체식별 및 품종식별에 활용할 수 있는 마커의 개발에 대한 연구도 미미한 실정이다. Jin et al.(2014)은 야생오리의 품종구분에서 청둥오리와 흰뺨검둥오리, 토종오리인 집오리의 품종간의 구분을 할 수 있는 마커를 탐색하는 중에 mtDNA의 COI(Cytochrome c oxidase I) 유전자나 D-loop control region을 이용해 품종구분을 시도한 적은 있지만 청둥오리와 흰뺨검둥오리, 집오리의 명확한 구분에는 어려움이 있음을 확인하였다.In the meantime, there have been no studies that have confirmed the genetic information of native ducks. In particular, there is little research on the development of markers that can be used to identify individuals and identify varieties. Jin et al. (2014) investigated the markers capable of discriminating among the varieties of ducks, white buffalo ducks, and domestic ducks in wild ducks, and found that the mtDNA COI (Cytochrome c oxidase I) gene or D -loop control region, but it is difficult to distinguish between ducks and ducks and ducks.

품종을 정확히 구분할 수 있는 DNA 마커 중에 Microsatellite(MS) 마커는 2~5 bp의 짧은 염기서열이 반복하는 구조로 되어 있으며 genome 상에 널리 분포되어 있어 다른 유전자 마커에 비해서 변이가 많기 때문에 인간의 친자확인이나 소와 돼지, 닭의 생산이력제 등에 매우 유용하게 활용되고 있다(Cheng and Crittenden, 1994; Blott et al., 1999; Lim et al., 2009; Seo et al., 2013). Microsatellite (MS) markers in the DNA markers that can distinguish the breeds accurately have a repeating structure of 2 to 5 bp short nucleotide sequence and are widely distributed on the genome and are more mutated than other gene markers. (Cheng and Crittenden, 1994; Blott et al., 1999; Lim et al., 2009; Seo et al., 2013) have been widely used for the production of pigs and chickens.

따라서 본 연구는 토종오리의 개체식별 및 친자확인과 더불어 실용오리 품종과의 품종구분에 활용할 수 있는 MS 마커를 탐색하여 토종오리 품종의 확립 및 육종전략에 활용하는데 그 의의가 있다.Therefore, this study is meaningful for the identification and identification of native ducks and the identification of MS markers that can be used to classify cultivars with practical ducks and to utilize them for establishment and breeding strategies of native duck varieties.

따라서 본 발명은 위와 같은 문제점을 해결하고, 경제성 및 생산성이 우수하고, 맛과 품질 면에서 외래종보다 풍미가 우수한 토종 우리맛오리를 생산하고자 한다.Accordingly, the present invention has been made to solve the above-mentioned problems, and to produce a native Korean duck duck which is excellent in economy and productivity and superior in taste and quality than alien species.

또한, 육용형 토종오리인 우리맛오리의 생산 체계를 확립하여 대량 생산 체계를 이루고자 한다.In addition, we will establish a mass production system by establishing the production system of domestic dumplings,

본 발명에서는 국내 토종오리 순종의 계통조성 및 조성된 계통을 교잡하여 우리맛오리 및 이러한 새로운 오리 종자의 개발방법에 대하여 제시하고자 한다. In the present invention, a systematic composition of domestic native ducks and hybridization of the established lines are proposed to suggest the development of Korean duck ducks and new duck seeds.

본 발명을 통하여 토종오리의 개체식별 및 친자확인과 더불어 실용오리 품종과의 품종구분에 활용할 수 있는 MS 마커를 탐색하여 토종오리 품종의 확립 및 육종전략에 활용하고자 한다.Through the present invention, MS markers which can be used for the classification of the domestic ducks and the ducks of the practical ducks are searched for in the establishment and breeding strategies of native ducks.

상기 과제를 해결하기 위하여, 본 발명은 서로 다른 계통을 갖는 종오리를 교배시켜 신품종 우리맛오리를 생산하는 방법을 제공한다. In order to solve the above-mentioned problems, the present invention provides a method for producing a new variety of Korean dumpling ducks by crossing species ducks having different strains.

구체적으로 본 발명의 우리맛오리를 생산 또는 개발하는 방법은Specifically, the method for producing or developing the Korean dumpling of the present invention

(a1) 제1지역에서 토종오리를 수집하는 단계;(a1) collecting native ducks in a first area;

(a2) 상기 제1지역에서 수집된 토종오리를 후술하는 토종오리 선별 기준에 따라 선별하여 일군의 흑갈색 토종오리를 확보하는 단계; 및(a2) sorting the native ducks collected in the first area according to a native duck selection criterion described later to secure a group of black-brown native ducks; And

(a3) 상기 (a2) 단계에서 확보된 흑갈색 토종오리를 교배하여 A 계통의 종오리를 확립하는 단계를 포함하는 제1지역으로부터 유래한 우리맛오리 종오리를 확보하는 단계, 및(a3) a step of crossing the black brown native duck obtained in the step (a2) to establish a species duck of line A, securing a duck duck duck originating from a first area, and

(b1) 제1지역과 떨어진, 토종오리 간에 자연 교배가 발생할 수 없는 제2지역에서 토종오리를 수집하는 단계;(b1) collecting native ducks in a second area which is remote from the first area and in which native mating can not occur between native ducks;

(b2) 상기 제2지역에서 수집된 토종오리를 후술하는 토종오리 선별 기준에 따라 선별하여 일군의 흑갈색 토종오리를 확보하는 단계; 및 (b2) sorting native ducks collected in the second area according to a native duck selection criterion to be described later to secure a group of black-brown native ducks; And

(b3) 상기 (b2) 단계에서 확보된 흑갈색 토종오리를 교배하여 B 계통의 종오리를 확립하는 단계를 포함하는 제2지역에서 유래한 우리맛오리 종오리를 확보하는 단계를 포함하며, (b3) a step of crossing the black brown native duck obtained in the step (b2) to establish the species B duck, and securing the duck native duck originating from the second region,

(c) 상기 A 계통 종오리와 B 계통 종오리를 교배시키는 단계를 포함한다.(c) crossing the A species duck and the B species duck.

상기 우리맛오리를 생산하는 방법은 제1지역에서 수집된 토종오리 중에서 선별하여 확립된 A 계통의 종오리와 상기 제1지역과는 멀리 떨어져 제1지역의 토종오리와는 자연발생적으로 교배가 일어날 수 없는 지역에서 수집된 토종오리 중에서 선별하여 확립된 B 계통의 종오리를 교배시키는 단계를 포함한다. In the method for producing the duck duck, the ducks of the system A selected from native ducks collected in the first region and the ducks of the first region are spontaneously mated with the ducks far away from the first region And crossing the established species D of the selected lineage among the native ducks collected in the area where it is not possible.

바람직하게, 상기 A 계통 및 B 계통의 종오리를 확립하기 위한 선별기준은 외모가 흑갈색이고 (흑갈색, 백색, 흑색 및 흑백색으로 구분하여 흑갈색의 범주에 드는 외모를 선별), 4주령 때의 체중이 1000 g 이상, 더욱 바람직하게는 1,100 g 이상, 더욱 더 바람직하게는 1,200 g이다.Preferably, the selection criteria for establishing the longitudinal ducks of the A line and the B line are blackish brown (black, white, black, and black and white, Is at least 1000 g, more preferably at least 1,100 g, even more preferably at least 1,200 g.

상기 제2지역은 상기 제1지역에서 반경 30 km 밖의 지역일 수 있으며, 바람직하게는 상기 제1지역은 장성 지역이고, 상기 제2지역은 함평 지역일 수 있다.
The second area may be an area of a radius of 30 km outside the first area. Preferably, the first area may be a long area and the second area may be a Hampyung area.

즉, 본 발명의 우리맛오리는 다음과 같은 과정을 통해 만들어졌다.That is to say, the present invention was made through the following process.

첫째, 종자수집 단계First,

먼저 여러 농가에서 수집하고 많은 수를 수집하는 것이 필요하였으며 최대한 개발목적에 맞는 종자를 조사하여 수집하였고, 이를 통해 유전적 다양성을 확보하였다. 또한, 매세대 유전자원을 도입하여 집단의 급속한 근교도 상승을 제한하였다.First, it was necessary to collect a large number of seedlings collected from several farms. In addition, the introduction of generations of genetic resources has restricted the rapid rise in proximity of the population.

둘째, 기초집단 조성 단계 Second,

개발목적에 부합하는 집단을 조성하기 위한 계획적 분류 (기준 - 모색, 육량)하였으며, 임의의 자연교배 상태에서 급속한 근교계수 상승 억제를 위한 집단수를 확보하고 목표로 하는 외형적 특성을 분류하여 집단 고정화 진행하였다. 상기 분류 기준에서 모색은 유전현상을 탐색하여 정확성을 제고하였으며, 주요 경제형질에 대한 능력이 배제 되지 않도록 육량 또한 충분한 고려를 하였다.In order to establish a group that meets the development purpose, we planned (classification - standardization, mass). In the natural hybridization state, . In the classification criteria, the search for genetic phenomena has been enhanced to improve the accuracy, and sufficient consideration has been given to the weight to prevent the ability of the major economic traits to be excluded.

셋째, 계통 조성 단계Third,

폭 넓은 기초집단으로부터 가급적 여러 품종을 확보하고, 한 품종에서 부계라인과 모계라인을 분리하여 계통조성 진행하였으며, 이로부터 실용오리 생산 시 잡종강세 효과를 극대화하고 균일성 증대을 도모하였다. 단기검정을 실시하여 세대간격 단축하고 정확한 능력평가 실시하였으며, 계획교배를 통한 근교계통을 육성하되 고도근친에 의한 생산성저하 방지하였다. 능력검정시 토종오리의 맛을 구명할 수 있는 조사항목 포함하여 진행하였다.From the broad base group, various varieties were obtained, and the lineage and the line of mother lines were separated from each other in the same variety, and the hybridization effect was maximized and the uniformity was increased in practical duck production. Short - term tests were carried out to shorten generation intervals and perform accurate assessment of performance. This study was conducted to investigate the taste of domestic ducks during the ability test.

넷째, 종자보급 단계Fourth,

계통간 교잡시험을 통해 결합능력이 우수한 교배조합을 선발하였으며, 결정된 교배조합으로부터 계통의 유지와 증식 및 보급방법 개발하고자 하였다.We have selected crossbred combinations with excellent binding ability through the intergenerational crossing test and developed the maintenance, propagation and propagation method of the crossbred from the determined crossbreeding combination.

국내 토종오리는 기러기목 오리과에 속하는 청둥오리 (Anasplatyrhynchos) 로서 원래 야생의 철새를 오리 농법에 이용하기 위해 축산과학원 (1997) 에서 가금화시킨 품종이다 . Domestic native ducks are mallards (Anasplatyrhynchos) belonging to the geese, which are native to wild ducks for use in duck farming.

상기 방법을 통하여 생산되는 우리맛오리는 토종 실용오리로서 순종 또는 교잡종이다. “우리맛오리”는 종오리간 2원, 3원, 4원 교잡에 의해 생산된다. 즉, 토종오리의 순종 또는 계통간 교배에 의해서 생산된다.The Korean dumplings produced through the above method are purebreds or hybrids as domestic practical ducks. "My Duck Duck" is produced by 2, 3 and 4 circle hybridization of bell ducks. In other words, it is produced by obedience of domestic ducks or crossbreeding.

본 명세서에서 사용된, "순종오리(Pure Line, PL)"라는 용어는 근래 다른 품종과 섞임이 없이 순수혈통을 유지한 재래 품종을 의미한다. As used herein, the term "Pure Line (PL) " refers to a conventional breed that has maintained pure lineage without mixing with other varieties.

“원종오리(Grandparent Stock, GPS)”는 순오리 및 순오리의 2원 교배종으로 종오리(PS)의 생산을 위한 원종오리 세대를 의미한다. "Grandparent Stock (GPS)" is a binary hybrid of pure duck and pure duck, which means a duck generation for production of bell duck (PS).

“종오리(Parent Stock, PS)”는 순오리, 원종오리 및 순오리의 2원∼4원 교배종으로 실용오리(CD)를 생산하기 위한 종오리 세대를 의미한다."Parent Stock (PS)" refers to a genus of ducks for producing practical ducks (CDs) from 2 to 4 hybrid varieties of pure, duck, and pure duck.

“실용오리(Commercial Duck, CD)”는 순오리, 원종오리 및 종오리 간의 교배에 의해 생산된 것으로 일반농가에서 사육되는 육용오리, 산란오리, 겸용오리 등을 의미하는 것으로, 본 발명의 신품종인 우리맛오리를 포함하는 개념이다."Commercial Duck (CD)" is produced by mating between a pure duck, a duck duck and a duck duck. It means a duck, a spawning duck and a combined duck which are raised in a general farmhouse. It is a concept that includes our taste ducks.

본 발명의 또 다른 실시예에 따르면 본 발명은 상기 우리맛오리를 생산하는 방법에 의해 생산된 우리맛오리를 제공한다.According to another embodiment of the present invention, the present invention provides a duck duck produced by the method for producing duck duck.

상기 우리맛오리는 자연 교배가 발생할 수 없을 정도로 지역적으로 멀리 떨어진 곳에서 수집하여 계통이 확립된, 흑갈색 토종 종오리 A 계통의 수컷과 B 계통의 암컷을 교배하거나; 또는 흑갈색 토종 종오리 A 계통의 암컷과 B 계통의 수컷을 교배하여 생산될 수 있다. The above-mentioned mussels are cross-bred from females of the black-brown native species Duck A lineage and females of the B lineage system, which are collected locally distant to such a degree that natural crossing can not occur; Or black-brown native species Duck A females and B male females.

본 발명의 목적상 상기 우리맛오리는 부화 후 21~80 주령 사이의 흑갈색 토종 종오리 A 계통의 수컷과 부화 후 24~80 주령 사이의 흑갈색 토종 종오리 B계통의 암컷을 교배하여 생산될 수 있다. 또한, 본 발명의 목적상 상기 우리맛오리는 부화 후 24~80 주령 사이의 흑갈색 토종 종오리 A 계통의 암컷과 부화 후 21~80 주령 사이의 흑갈색 토종 종오리 B 계통의 수컷을 교배하여 생산될 수 있다.For the purpose of the present invention, the Korean mussel can be produced by crossing a male of a black-brown native species Duck A system between 21 and 80 wks after hatching and a female of a black-brown native duck B system between 24 and 80 wks after hatching . In addition, for the purpose of the present invention, the Korean mussel is produced by mating females of the black-brown native species Duck A from 24 to 80 wks after hatching and males of the black-brown native duck B system between 21 and 80 wks after hatching .

본 발명의 우리맛오리는 일반 육용오리에 비해 조단백질 및 보수력이 높고, 구수함과 쫄깃한 육질감으로 우리 고유의 풍미가 있으며. 가슴육은 다가 불포화지방산의 함량이 높으며, 특히 필수지방산인 아라키돈산의 함량이 높다. The present invention of the present invention is to provide a method for producing the duck meat of the present invention. The content of polyunsaturated fatty acids in breast meat is high, and the content of arachidonic acid, which is an essential fatty acid, is high.

상기 우리맛오리는 가슴육에 포함된 전체 지방산 중에서 아라키돈산의 함량이 지방산 총 중량 대비 6 중량% 이상(바람직하게는 6 내지 10 중량%) 포함되어 있어, 체외로부터 섭취해야만 하는 필수 지방산의 우수한 공급처로 이용될 수 있다. In the above-mentioned Korean dumpling, the content of arachidonic acid is 6 wt% or more (preferably 6 to 10 wt%) based on the total weight of the fatty acids in the total fatty acids contained in the breast meat, . ≪ / RTI >

또한, 본 발명에 따른 우리맛오리는 가슴육을 기준으로 보수력(%)이 40% 이상으로 높아 일반오리와 대비되는 특성을 가진다. Also, according to the present invention, the watery ducks have high water holding capacity (%) of more than 40% on the basis of chest meat and have characteristics comparable to those of general ducks.

본 발명의 우리맛오리는 국립축산과학원에서 혈통을 고정한 종오리를 이용하여 생산된 실용오리로 일반 토종오리의 낮은 산육성을 개선하고 능력을 향상시켰다.The present invention is directed to a practical duck produced by using a species-fixed duck in the National Livestock Academy.

본 발명의 우리맛오리에서, 상기 흑갈색 토종오리 함은 예부터 우리나라에서 사육되어온 오리 중 종자개발 사업을 통하여 균일화된 것으로, 흑갈색, 밤갈색, 회갈색, 회색, 백색의 내종 중 본 발명에서는 흑갈색 계통을 사용한다. 토종오리의 특징으로는 취소부란성(就巢孵卵性)이 약하며, 성질이 활발하다. 상기 토종오리의 외형특징은 체형이 타원형으로 매끈하며 머리 부리 등 전반적으로 균형이 잘 잡혀져 있다. 상기 토종오리의 체중은 2.5~3.5kg 정도이고, 난중은 71 ~ 93 g으로 평균 86g정도이다.In the present invention, the above-mentioned black brown domestic ducks are homogenized through development of seeds among ducks raised in Korea from the past. Among the domestic black-brown, dark brown, gray brown, gray and white domestic species, use. The characteristics of native ducks are weak, hungry, and vigorous. The external dendritic features of the native ducks are oval-shaped, smooth and well-balanced. The weight of the native duck is about 2.5 to 3.5 kg, and the egg weight is about 71 to 93 g, which is about 86 g on average.

본 명세서의 “토종오리”는 농림축산식품부 고시 제2013-305호 축산법 시행규칙 제2조의2 제2항에 따른 토종가축의 인정기준 및 절차 등에 따라 70점 이상을 받은 경우를 의미한다.The term " native duck " in the present specification means a case of receiving at least 70 points according to the criteria and procedure for native livestock according to Article 2-2, Paragraph 2 of the Enforcement Rule of the Ministry of Food, Agriculture, Forestry and Livestock.

상기 토종오리의 계통별 외모 선발 기준은 하기 표 1 및 표 2에 나타낸다.The appearance criteria of the native ducks for each line are shown in Tables 1 and 2 below.

Figure pat00001
Figure pat00001

Figure pat00002
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또한, 개발된 토종 우리맛오리(Korean native Duck, Woorimatori)는 성장과 산란능력이 우수한 난육겸용종이다. 체형은 몸매가 타원형으로 매끈하며 머리, 부리 등 전반적으로 균형이 잘 잡혀져 있다. 부리는 넓적하고 중간정도의 길이를 가지며 색깔은 황색, 흑색 및 청동색을 띄고 있다. 머리는 약간 작은 편이며 수컷의 머리는 번식기에 청동색은 띄며 비번식 계절에는 흑색과 갈색은 띄고, 암컷의 머리는 흑색과 갈색을 띈다. 눈은 둥글고 색깔은 흑색 및 갈색을 띄고 있다. 목은 두부에서 등쪽으로 적당히 이행되어 있고 숫오리에서 머리와 목의 경계지점에 흰색의 띠가 있을 수도 있으며 목의 색깔은 갈색이다. 날개의 깃털에서 바깥쪽은 갈색이나 안쪽은 백색을 띄우며 주익우에 청색 줄무늬와 그 양쪽 가장자리에 백색의 선을 선명하게 가진 경우가 많다. 등은 목에서 꼬리 부분으로 잘 이행되어 있고 색깔은 갈색 및 흑색을 띄고 있다. 꼬리의 색깔은 대체로 흑색 및 갈색을 띄우며 꼬리 끝은 말려 올라가 있다. 몸통은 매끈하고 둥근 형태이고 피부는 밝은 회색이나 옅은 흑갈색을 띄고 있다. 가슴은 딱 벌어져 있고 타원형으로 잘 발달되어 있고 흑갈색 및 회백색을 띄고 있다. 발가락은 4개로 황색 및 흑색이며 발가락 사이에는 물갈퀴가 있다. 귀는 눈 옆에 있으며 외견상 찾아보기가 쉽지 않다. 성질은 온순하고 육량과 육질이 우수한 특징을 갖고 있다. In addition, Korean native Duck (Woorimatori), which is a native Korean duck, has excellent growth and spawning ability. The shape of the body is oval and smooth, and the head and the beak are generally well balanced. The beak is wide and medium in length and has yellow, black and bronze colors. The head is slightly small, and the head of the male is bronze colored at the breeding season, black and brown at the non-commercial season, and the head of the female is black and brown. The eyes are round and the color is black and brown. Necks are moderately shifted from head to toe. Male ducks may have a white band at the border of head and neck. Neck color is brown. The feathers of the wings are brown on the outside, white on the inside, and often have a blue stripe on the wing and a white line on both sides of the wing. The back is well transited from the neck to the tail, and the color is brown and black. The color of the tail is generally black and brown, and the tip of the tail is curled up. The trunk is smooth and round, and the skin is light gray or light dark brown. The chest is wide open, well developed oval, dark brown and grayish white. Four toes are yellow and black, and there are webbing between toes. The ear is next to the eye and is not easy to look at. The properties are gentle, have excellent quality of meat and meat quality.

농업유전자원의 효율적 관리를 위하여 농업유전자원에 관한 농림수산식품부 장관의 권한이 농업유전자원의 보존관리 및 이용에 관한 법률 (시행 2009. 11.28)(법률 제9717호, 2009.5.27, 타법개정) 제18조에 의해 농촌진흥청장에게 위임되었다. 농업유전자원 분양국외반출 및 관리기관 지정 운영에 관한 법률 (농촌진흥청고시 제2009-31호) 제2조 분양신청 방법 및 절차에 의해 분양받으려는 자는 별지 제 1호서식의 분양신청서의 서식으로 농촌진흥청 국립축산과학원장에게 제출하여야 하므로, 상기 품종을 분양받기 위해서는 농촌진흥청장의 허가를 받아야 한다.The Minister of Agriculture, Forestry, and Fisheries of the Ministry of Agriculture, Forestry and Fisheries for the efficient management of agricultural genetic resources has the authority to preserve and preserve agricultural genetic resources in accordance with the Law Concerning the Preservation and Management of Agricultural Genetic Resources (Act No. 200917.27, Article 18 has been entrusted to the Director of the Rural Development Agency. (2) The applicant who wishes to receive a pre-sale by the method and procedure of the pre-sale application shall submit the application form of the pre-sale form of the annexed Form No. 1 to the Rural Development Administration In order to receive the above varieties, it is necessary to obtain permission from the head of the Rural Development Administration.

한편, 동물에 대한 특허를 받기 위해서는 정부에서 승인한 연구기관에 동물의 수정란이 기탁되어야 한다. 기탁기관에 맡겨지는 대부분의 수정란들은 장기간 보관되어야 하기 때문에 먼저 수정란의 생존 시험을 거쳐 수정란의 상태가 파악되어야 하고, 동결하여 보관하게 된다. 수정란을 동결하는 목적은 특정 동물의 계통을 장기간 보존하고, 필요시 해동한 후 대리모에 이식하여 복원하기 위함이다. 수정란 동결의 기본적인 원리는 세포 내에 존재하는 물 (세포수) 성분을 동결보호제 및 삼투압 현상을 이용해서 제거하여, 세포 내 얼음 결정 형성을 억제하고 융해 후 다시 생존성을 찾을 수 있게 하는 것이다. 그러나 조류의 경우는 수정란이 알 형태이며, 조류의 알은 보호를 위하여 가장 바깥쪽이 난각 (egg-shell)으로 이루어져 있어 동결이 불가능한 실정이다. 따라서 본 발명의 우리맛오리 수정란의 기탁도 불가능하기 때문에 본 발명은 품종 고정된 순종를 이용하여 우리맛오리 생산에 재현성을 가질 수 있도록 하였다.On the other hand, in order to receive patents on animals, animal embryos must be deposited in research institutes approved by the government. Most embryos deposited with the depository should be stored for a long period of time, so they must undergo a viability test before embryos are frozen and stored. The purpose of freezing the embryos is to preserve certain animal lines for a long period of time, to thaw them if necessary, and then transplant them into the surrogate mother. The basic principle of embryo freezing is to remove the water (cell water) components present in the cells by using a cryoprotectant and osmotic phenomenon, to inhibit the formation of ice crystals in the cell and to find survival after fusion. However, in the case of avian eggs, the embryo is in egg form, and the eggs of the outermost eggs are shell-free for protection of the eggs. Therefore, since it is impossible to deposit the embryo of the present invention, the present invention enables reproducibility in the production of the duck duck using the varietal fixed obedience.

본 발명의 다른 실시예에 따르면, 본 발명은 토종오리의 개체식별 및 친자확인과 더불어 실용오리(우리맛오리) 품종과의 구별이 가능하도록 하는 초위성체 유전자좌 조합을 선정, 증폭하여 대립유전자를 검출하고 크기를 분석하여 표준화된 유전자형을 결정하는 우리맛오리 및 토종오리 개체 식별 방법, 식별을 위한 마커 조성물 및 키트를 제공한다.
According to another embodiment of the present invention, the present invention relates to a method for selecting and amplifying a supersatellite locus combination capable of distinguishing between domestic ducks and pseudo-ducks, And identifying a standardized genotype by analyzing the size of the duck and native ducks, and a marker composition and kit for identification.

바람직하게는 (a) 분석하고자 하는 핵산 시료를 얻는 단계; (b) 토종오리와 우리맛오리에 특이적인 프라이머를 이용하여 멀티플렉스 피씨알(multiplex-PCR)로 증폭하는 단계; (c) 상기 (b) 단계의 증폭된 산물의 대립유전자를 검출하여 유전자형을 결정하는 단계; 및 (d) 상기 토종오리와 우리맛오리의 초위성체 유전자좌에 대한 대립유전자 형을 이용하여 대립유전자의 수 및 빈도 분포를 작성하는 단계를 포함하는 우리맛 오리 개체 식별방법을 제공한다. (A) obtaining a nucleic acid sample to be analyzed; (b) amplifying with multiplex PCR using primers specific for native ducks and duck ducks; (c) detecting an allele of the amplified product of step (b) and determining a genotype; And (d) preparing a distribution of the number and frequency of alleles using the allele genotype of the locus of the super-satellites of the native ducks and the wild ducks.

초위성체 유전자좌 선정은 종합적인 증폭조건(프라이머의 어닐링(annealing)온도, 산물의 크기, 표지형광 물질)을 고려하여 선정하며, 농도에 맞게 프라이머를 혼합하여 증폭반응을 위한 반응액을 만든 다음, 초위성체 유전자좌들을 멀티플렉스피씨알(Multiplex PCR)방법으로 증폭한다. 증폭된 산물을 자동 DNA 시퀀서를 이용하여 분리하고, 각 좌위별 대립유전자(allele)의 분포 및 크기 등을 분석하고, 이러한 분석자료를 근거로하여 우리맛오리의 개체식별을 위한 유전자 마커를 선정하고, 우리맛오리의 개체를 식별하는 방법을 제공한다.The selection of the supersatellite loci was made by considering the comprehensive amplification conditions (annealing temperature of the primer, product size, labeling fluorescent material), mixing the primers according to the concentration to prepare the reaction solution for the amplification reaction, The satellite loci are amplified by Multiplex PCR method. The amplified product was isolated using an automatic DNA sequencer, and the distribution and size of the alleles of each locus were analyzed. Based on these analysis data, genetic markers were selected for the identification of the individual of the taste duck , We provide a way to identify the individual of the taste duck.

초위성체 유전자좌로 선정하기 위한 초위성체 유전자좌의 대립유전자의 수는 최소 3개 이상인 것이 바람직하며, 더욱 바람직하게는 4개 이상, 가장 바람직하게는 5개 이상이다.The number of alleles of the supersatellite locus for selecting the supersatellite locus is preferably at least 3, more preferably at least 4, and most preferably at least 5 alleles.

본 발명의 초위성체 유전자좌를 이용한 프라이머의 제조는 어닐링(Annealing) 온도, 증폭산물의 크기 등 멀티플렉스 피씨알(Multiplex PCR)조건을 고려하여 제조해야 한다.Preparation of primers using the supersatellite locus of the present invention should be performed in consideration of multiplex PCR conditions such as annealing temperature and amplification product size.

본 발명의 일 실시예에 따르면, 우리맛오리의 개체 선별을 위해서 CAUD111, AMU68, APH04, APH08, CAUD005, AMU3, CAUD069, CAUD086, APH20, CAUD066, APH24, CAUD040, 및 CAUD048 로 이루어진 초위성체 유전자좌 각각에 특이적으로 결합하는 프라이머 세트를 이용할 수 있다. According to one embodiment of the present invention, in order to select an individual of the taste duck, the locus of each super-satellite locus composed of CAUD111, AMU68, APH04, APH08, CAUD005, AMU3, CAUD069, CAUD086, APH20, CAUD066, APH24, CAUD040 and CAUD048 A specific binding set can be used.

상기 프라이머의 염기서열의 일부를 다른 염기로 치환, 삭제 또는 일부 염기서열의 위치와 방향이 바뀐 염기서열도 본 발명에 따른 프라이머의 범위에 속한다. The nucleotide sequence of the nucleotide sequence of the nucleotide sequence in which some of the nucleotide sequences of the primers are replaced with other nucleotides and / or the positions and orientations of the nucleotide sequences are changed may also be included in the scope of the primer according to the present invention.

본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 마커 조성물을 유효성분으로 포함하는 우리맛오리의 개체 식별을 위한 키트를 또한 제공할 수 있다.According to an embodiment of the present invention, it is also possible to provide a kit for identifying an individual of the taste bud containing the marker composition as an active ingredient.

PCR 후의 증폭된 산물은 ABI-3730 DNA자동 염기서열 분석장치(Applied Biosysytems, USA)를 이용하여 크기 및 형광물질별로 분류되도록 전기영동을 실시하고, GeneMapper version 4.0(Applied Biosystem, USA)을 이용하여 PCR산물의 크기와 표지인자의 종류별로 분류하여 자료를 수집할 수 있다.The amplified product after PCR was electrophoresed using ABI-3730 DNA automatic nucleotide sequencer (Applied Biosysytems, USA) to be classified by size and fluorescent substance, and PCR was performed using GeneMapper version 4.0 (Applied Biosystem, USA) Data can be collected by classifying by product size and type of marker.

최종적으로 결정되어진 초위성체 표지인자(Microsatellite Marker)별 대립 유전자들은 마이크로새틀라이트 툴킷 소프트웨어(microsatellite Toolkit software) (Park, 2000)를 이용하여 분석 집단별 및 개체별로 정리한 후 전체 집단에 대한 기대 이형접합율(expected heterozygosity) 및 관측 이형접합율 (observedAlleles of each microsatellite markers were determined by analysis group and individual using microsatellite toolkit software (Park, 2000) The expected heterozygosity and observed heterozygosity

heterozygosity), 대립유전자빈도 (allele frequency), 각 좌위별 대립유전자수 및 품종 집단별 대립유전자수를 산출할 수 있다.heterozygosity, allele frequency, number of alleles at each locus, and number of alleles per breed population.

본 발명에 따른 우리맛오리의 개체 분석 방법은 초위성체 유전자를 이용하여 대립유전자에 관한 표준화된 통합 데이터베이스 구축을 가능하게 하며, 우리맛오리를 구별하는데 이용할 수 있다. 특히 본 발명의 MS 마커는 우수한 개체 식별력을 보여줄 수 있다.The method of the present invention for analyzing the Mycorrhizae can be used to construct a standardized integrated database of alleles using a supersatellite gene and can be used to distinguish our taste ducks. In particular, the MS markers of the present invention can exhibit excellent individual discrimination.

본 발명의 또 다른 실시예에 따르면, CAUD111, AMU68, APH04, APH08, CAUD005, AMU3, CAUD069, CAUD086, APH20, CAUD066, APH24, CAUD040, 및 CAUD048 으로 이루어진 초위성체 유전자좌 각각에 특이적으로 결합하는 프라이머 세트를 포함하는 우리맛오리의 개체를 식별할 수 있는 마커 조성물을 제공한다. According to another embodiment of the present invention, there is provided a primer set specifically binding to each super-satellite locus consisting of CAUD111, AMU68, APH04, APH08, CAUD005, AMU3, CAUD069, CAUD086, APH20, CAUD066, APH24, CAUD040, And a marker composition capable of identifying an individual of our taste duck.

또한 본 발명의 또 다른 실시예를 통해 상기 마커 조성물을 포함하는 우리맛오리 개체 식별용 키트를 제공한다. In another embodiment of the present invention, there is provided a kit for identifying a taste buds comprising the marker composition.

본 발명에 따른 우리맛오리는 경제성 및 생산성이 우수하고, 맛과 품질 면에서 외래종보다 풍미가 우수하다.The mozzarella according to the present invention is excellent in economical efficiency and productivity, and is superior in flavor and taste to alien species in terms of taste and quality.

또한, 육용형 토종오리인 우리맛오리의 생산 체계를 확립하여 대량 생산 체계를 이룰 수 있다. In addition, the mass production system can be established by establishing the production system of the domestic duck duck weed duck.

본 발명의 우리맛오리는 일반 토종오리의 낮은 산육성이 개선되었으며, 맛과 풍미가 우수하다.In the present invention, the low-acid growth of the common native duck is improved, and the taste and flavor are excellent.

또한 본 발명의 우리맛오리는 일반 육용오리에 비해 조단백질 및 보수력이 높고, 구수함과 쫄깃한 육질감으로 갖는다. 더욱이 상기 우리맛오리의 가슴육은 다가 불포화지방산의 함량이 높으며, 필수지방산인 아라키돈산의 함량이 높다. In addition, the present invention has a higher crude protein and water-holding capacity than that of a common duck, and has a soft texture and a chewy texture. Furthermore, the breast meat of the Korean dumpling has a high content of polyunsaturated fatty acids and a high content of arachidonic acid, which is an essential fatty acid.

일반적으로 한국의 순수 토종오리가 외국 도입 품종에 비해 맛과 육질은 우수하나, 체중이 가볍고 산란수가 적어 육용오리로 이용하기에 경제적으로 불리하다는 단점을 개선하여 체중 및 사료효율 면에서 경제성이 우수한 육용오리를 제공할 수 있다.In general, Korean native ducks are superior in taste and meat quality to foreign introduced varieties. However, since they are light in weight and have fewer layings, they are economically disadvantageous to be used as meat ducks. Therefore, Ducks can be provided.

본 발명의 마이크로새틀라이트 마커 조성물은 우리맛오리의 유전적 차이를 명확하게 구분할 수 있어 개체 식별력을 높일 수 있다. The microsatellite marker composition of the present invention can clearly distinguish the genetic difference between the taste buds of the present invention and thereby improve the individual discrimination ability.

도 1은 우리맛오리의 생산 방법을 도식화한 것이다.
도 2는 24개 마커 유전자형을 이용하여 계통도를 작성한 결과를 보여준다. 도 2를 통하여 본 발명의 마이크로새틀라이트 마커를 이용하여 우리맛오리와 실용오리 집단의 구별이 가능하다는 것을 확인할 수 있었다. KND는 토종 우리맛오리를 의미하며, CD는 실용오리를 의미한다.
도 3은 genotype 들 간의 PI, PI half - sibs PI sibs 값을 나타낸 것이다.
Figure 1 is a schematic representation of the method of producing duck duck.
FIG. 2 shows a result of a schematic drawing using 24 marker genotypes. 2, it was confirmed that the microsatellite markers of the present invention can be used to distinguish between the Korean duck ducks and the practical ducks. KND means native duck duck, and CD means practical duck.
Figure 3 is a PI, PI half between genotype - sibs And PI sibs Lt; / RTI >

이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 실시예 등을 들어 상세하게 설명하기로 한다. 그러나, 본 발명에 따른 실시예들은 여러 가지 다른 형태로 변형될 수 있으며, 본 발명의 범위가 하기 실시예들에 한정되는 것으로 해석되어서는 안 된다. 본 발명의 실시예들은 당업계에서 평균적인 지식을 가진 자에게 본 발명을 보다 완전하게 설명하기 위해 제공되는 것이다.
Hereinafter, embodiments of the present invention will be described in detail to facilitate understanding of the present invention. However, the embodiments according to the present invention can be modified into various other forms, and the scope of the present invention should not be construed as being limited to the following embodiments. Embodiments of the invention are provided to more fully describe the present invention to those skilled in the art.

1. 토종오리의 개발1. Development of native duck

토종오리는 재래오리라고도 불리우며 예전부터 길러 오던 집오리가 철새인 청둥오리와 교잡되어 우리나라의 기후 풍토에 적응된 종자이다. 토종오리의 주종은 주로 청둥오리를 닮았으나 잘 날지 못하는 특성을 가진 가금화된 청둥오리라 할 수 다. 본 발명자들은 우리 고유 종자의 중요성을 인식하여 전국 각지에서 명맥을 유지해오던 토종오리 종자 수집에 나섰고, 수집한 종란 10,000개를 부화 육추하면서 흑갈색 청둥오리 외모 특징을 기준으로 기초 집단을 조성하였다. 이 종자를 바탕으로 외모형태와 능력검정에 의하여 상대적으로 우수하거나 표현형이 고정되어 발현되는 개체를 선발하여 계통을 조성해가면서, 한 계통 내에서도 혈연관계가 형성되는 소그룹의 가계를 만들었다.Domestic ducks are also called traditional ducks. The ducks that have been raised since then have been hybridized with migratory birds and are adapted to the climate of our country. The dominant species of native ducks are mainly poultry mallards that resemble mallards but do not fly well. The present inventors recognized the importance of the native seeds and started collecting native duck seeds which have been maintained throughout the country. The inventors established a basic group based on the features of black brown duck duck appearance while hatching 10,000 collected seeds. Based on these seeds, we created a family of small groups in which relationships are formed within a single line, by selecting individuals whose appearance and ability test are relatively excellent or expressing phenotype fixedly.

이러한 과정을 여러 세대 반복하여 순수성이 고정된 특정한 계통으로 육종하였다. 순종 세대 유지는 1계통 당 암오리 1,500수, 수오리 1,500수 내외를 검정하여 30% 정도를 선발하였으며, 선발된 1계통 내에는 20개의 소집단을 구성하여 교배할 때 근교도가 상승되는 것을 방지하였다. 선발은 외모 및 체중 등 주요형질에 대하여 개체별로 조사한 검정성적을 기준으로 개체선발을 하였고, 외모선발은 부화발생시, 육성기 및 배웅 선발 시기에 맞춰 계통별로 상기 표 1 및 표 2의 특징에 의거하여 선발하였다. 능력개량 및 선발을 위한 능력검정은 초기세대 검정을 통한 단축검정으로 210일간 실시하였고, 부화성적과 육성기 및 산란기별로 주요형질에 대하여 계통별 개체별로 조사하였으며, 검정결과는 순종관리 프로그램에 의하여 세대, 계통, 개체별로 처리되고 누적된 자료를 통하여 혈통관리, 선발 및 배웅으로 세대를 유지하였다.
This process was repeated several generations to breed a specific strain with a fixed purity. For the generation of purebred genera, about 1,500 male ducks and 1,500 male ducks were selected, and about 30% of them were selected. In the selected line, 20 subgroups were constructed to prevent the increase in the degree of crossing when crossing . Selection was made on the basis of the test results of individual traits of major traits such as appearance and weight, and appearance selection was made according to the characteristics of Tables 1 and 2 for each line in accordance with the hatching, Respectively. The results of this study were as follows: 1) The ability to improve and select the ability was tested for 210 days by the initial generation test, and the major traits by hatching, breeding, Lineage, and individual, and maintained the generation through lineage management, selection, and isolation.

2. 2. 우리맛오리Our taste duck 생산방법 및 보급체계 Production method and distribution system

부화 후 21~80 주령 사이의 육용형 토종 종오리 수컷과 육용형 토종 종오리 암컷을 교배하여 토종 실용오리인 우리맛오리를 생산한다. 이 토종 우리맛오리는 기존 토종오리의 낮은 산육능력을 개선하여 생산능력을 향상시켰으며, 이렇게 생산된 토종 우리맛오리는 산육능력이 개선되어 경제성을 갖추고 8주령이내에 탕 및 백숙용 등으로 이용할 수 있고, 사육기간 56일 정도에는 2.8 kg이상으로 백숙용, 훈제용, 구이용 및 볶음탕용 오리로 이용할 수 있다. 이로써 산업화가 가능한 종오리-실용오리의 생산형태가 이루어지며, 우리맛오리가 생산될 수 있다.
After the hatching, male domesticated species between 21 and 80 weeks old are crossed with domesticated domestic domesticated duck female to produce domestic domesticated ducklings. This native Korean duck duck improved the production ability by improving the low duck ability of the existing domestic duck. The domestic native duck duck produced in this way has economic efficiency because it has improved economic ability and it can be used within 8 weeks for tang, , About 56 days for rearing period, it can be used as duck for bakery, smoked, roasted and fried dumplings of 2.8 kg or more. As a result, a production form of duck-practical duck that can be industrialized is achieved, and our duck duck can be produced.

3. 3. 우리맛오리의Our taste duck 사육방법 How to breed

본 발명에서 생산된 우리맛오리 병아리들을 육추사로 옮겨 처음 1주일 동안 32℃ 정도(±2℃)의 계사 내 온도를 유지시켜 준다. 육추 초기 고온으로 실내가 건조하면 식욕감퇴, 성장부진, 폐사 등을 보이기 때문에 60~70% 정도의 적당한 습도를 유지해준다. 축사 내 지나친 밀사는 성장지연과 폐사의 원인이 되므로 계절에 따라 사육밀도를 조절해야 한다. 물은 오리의 체온조절, 신진대사, 호흡과 같은 생리기전에 필수적이므로 급수기를 반경 2m 내에 설치하였다. 첫 모이는 비타민제 등을 희석한 물로 사료를 버무린 후 2시간 정도 불려서 급여하였다. The weed duck chicks produced in the present invention are transferred to a broiler farm and maintained at a temperature of about 32 ° C (± 2 ° C) for the first week. When the cabbage is dried at room temperature in the initial high temperature, the appetite declines, growth stagnation, and mortality are maintained, thus maintaining proper humidity of about 60 ~ 70%. Excessive marsupiality in the house causes delays in growth and mortality, so we have to adjust the breeding density according to the season. Since water is essential for physiological mechanisms such as duck temperature control, metabolism and respiration, the water dispenser is installed within a 2 m radius. The first gathering of vitamins, etc., was diluted with water and the feed was boiled for 2 hours and then fed.

우리맛오리는 육용으로 이용하기 때문에 육용오리 사료의 영양소 함량을 유지하는 것이 원칙이다. 성장이 빠르기 때문에 사료 영양소 함량을 높게 해주는 것이 바람직하며, 표 3과 같은 사료 영양소 함량이 적당하다. 하기 표 3은 사육단계별 우리맛오리 사료의 영양소 함량을 나타낸다.Because our duck duck is used for meat, it is a principle to maintain the nutrient content of the duck forage. It is desirable to increase the feed nutrient content because the growth is rapid, and the feed nutrient content as shown in Table 3 is appropriate. Table 3 below shows the nutrient content of the Korean dumpling diets by breeding stages.

영양소nutrient 주령Weekly 0 ~ 30 to 3 3 ~ 83 to 8 ME (kcal/kg)ME (kcal / kg) 2,9002,900 3,0003,000 CP (%)CP (%) 22.022.0 18.018.0 리신 (%)Lee Sin (%) 0.900.90 0.730.73 메티오닌+시스틴 (%)Methionine + cystine (%) 0.700.70 0.600.60

ME: 대사 에너지 (Metabolism energy)ME: Metabolism energy

CP: 조단백 (crude protein)CP: Crude protein

상기 영양소 함량의 ± 10% 범위가 바람직함.
A range of ± 10% of the above nutrient content is preferred.

우리맛오리 종오리는 수정란을 생산하는 산란용 토종오리이기 때문에 산란오리에 준하는 관리를 해주고 평생동안 산란을 유도하는 관리를 해주어야 한다.Because the duck ducks are native breeds for egg production, they should be managed in accordance with the ducks and managed to induce spawning throughout their lives.

사육단계별 우리맛오리 종오리 사료의 영양소 함량Nutrient content of Korean duck duck species duck


영양소

nutrient
주령Weekly
0 ~ 40 to 4 4 ~ 204 to 20 20주령이후After 20 weeks ME (kcal/kg)ME (kcal / kg) 2,9002,900 2,9002,900 2,9002,900 CP (%)CP (%) 2222 1616 1515 칼슘 (%)calcium (%) 0.650.65 0.600.60 3.03.0 인 (%)sign (%) 0.400.40 0.300.30 0.280.28

상기 영양소 함량의 ± 10% 범위가 바람직함.
A range of ± 10% of the above nutrient content is preferred.

실시예Example 1:  One: 우리맛오리의Our taste duck 외모특성Appearance characteristics  And 산육능력Ability of the child , 오리고기 특성, Duck meat characteristics

우리맛오리는 흑갈색 토종 종오리(Black&brown Korean native Breeding Duck) 수컷과, 흑갈색 토종 종오리(Black&brown Korean native Breeding Duck) 암컷을 교배하여 생산하였다. Korean duck ducks were produced by crossing male black and brown Korean native breeding ducks and female black and brown Korean native breeding ducks.

또한, 이것은 부화 후 21~80 주령 사이의 흑갈색 토종오리 A계통의 수컷과 부화 후 24~80 주령 사이의 흑갈색 토종오리 B계통의 암컷을 교배하거나, 부화 후 24~80 주령 사이의 상기 흑갈색 토종오리 A계통의 암컷과 부화 후 21~80 주령 사이의 흑갈색 토종오리 B계통의 수컷을 교배하여 생산한다(도 1).It is also possible to cross a male of a black-brown native duck A strain between 21 and 80 weeks of age after hatching and a female of a black-brown native duck B line between 24 and 80 weeks after hatching, or between the above- A female of the system A and a male of the black-brown native duck B strain between the ages of 21 and 80 weeks after hatching are produced by mating (Fig. 1).

1) 외모특성1) Appearance characteristics

우리맛오리는 유전형질이 순종에 기반하고 있기 때문에 외모적인 특징이 균일하다. 사용되는 순종에 따라 외모 형태에 차이가 있으며, 주로 흑갈색이나 회갈색의 깃털색이 발현되며, 정강이색은 황색이거나 흑색을 나타내며 일반 육용오리의 흰색 외모와 외형적으로 쉽게 구분할 수 있다.Our taste ducks are homogeneous in appearance because their genetic traits are based on obedience. There are differences in appearance depending on the obedience used, and mainly blackish brown or grayish brown color is expressed. The dichromatic yellow color is yellow or black, and it can be easily distinguished from the white appearance of the general duck duck.

2) 발육2) Development

토종 우리맛오리의 발육속도 (growth rate)가 빠르면 출하체중에 도달하는 데 소요되는 일수가 빠르고 증체에 요구되는 사료의 양이 적어 경제적이다. 우리맛오리는 사육기간을 56일 정도로 하면 2.8kg으로 백숙용, 구이용 및 훈제용 오리로 이용할 수 있어서 매우 효율적이라고 사료되며, 사료의 이용성이 높아서 경제적으로 유리하다. 우리맛오리의 교배조합별 증체량은 표 5와 같다. 우리맛오리의 주령별 평균체중 (단위 : g) If the growth rate of native duck duck is fast, it takes a long time to reach the shipment weight, and it is economical because the amount of feed required for the gland is small. It is considered to be very efficient because it can be used as white duck, roasted and smoked duck with 2.8kg when the raising period is about 56 days, and it is economically advantageous because of high availability of feed. Table 5 shows the gross weight gain for each mating combination of duck duck. Average weight of each dumpling by weight (unit: g)

교배조합Mating combination 주령Weekly 00 22 44 66 88 AA*AA * 52.3±0.65ab 52.3 ± 0.65 ab 613.8±11.9613.8 ± 11.9 1,626±11.1ab 1,626 ± 11.1 ab 2,441±22.4bc 2,441 ± 22.4 bc 2,762±30.5b 2,762 ± 30.5 b ABAB 50.1±0.88b 50.1 ± 0.88 b 633.1±7.77633.1 + - 7.77 1,575±16.3b 1,575 ± 16.3 b 2,376±15.1c 2,376 ± 15.1 c 2,807±40.3ab 2,807 ± 40.3 ab BBBB 52.0±1.05ab 52.0 ± 1.05 ab 632.7±2.49632.7 ± 2.49 1,644±7.82a 1,644 ± 7.82 a 2,573±9.51a 2,573 ± 9.51 a 2,949±42.5a 2,949 ± 42.5 a BABA 53.7±0.12a 53.7 ± 0.12 a 621.0±16.1621.0 + - 16.1 1,621±22.5ab 1,621 ± 22.5 ab 2,474±48.2b 2,474 ± 48.2 b 2,830±55.1ab 2,830 ± 55.1 ab 평균Average 52.1±0.51A 52.1 ± 0.51 A 625.2±5.22B 625.2 ± 5.22 B 1,617±10.1C 1,617 ± 10.1 C 2,466±24.5D 2,466 ± 24.5 D 2,837±27.8E 2,837 ± 27.8 E

*AA: A(암컷)× A(수컷), BB: B× B, AB: A× B, BA: B× A
AA: A (female) x A (male), BB: B x B, AB: A x B, BA: B x A

3) 사료요구율3) Feeding rate

토종오리 생산비 중 사료비가 차지하는 비율이 약 70%나 되기 때문에 증체에 소요되는 사료요구율(feed requirement)이 낮은 오리를 선택하는 것은 매우 중요하다. 전기간에 걸처 우리맛오리의 교배조합들 간의 사료요구율은 AB, BA 교배조합이 낮게 나타났다. 우리맛오리의 주령별 사료요구율It is very important to select ducks that have low feed requirement for growth because the ratio of feed cost to domestic duck production cost is about 70%. The feed conversion ratios between the mating combinations of Korean dumplings were lower than those of AB and BA matings. Feed conversion ratio

교배조합Mating combination 주령Weekly 평균
(0~8주령)
Average
(0 to 8 weeks old)
0~20 to 2 2~42 to 4 4~64 to 6 6~86 to 8 AAAA 1.20±0.031.20 ± 0.03 1.92±0.051.92 ± 0.05 3.47±0.023.47 ± 0.02 10.6±0.3710.6 ± 0.37 3.26±0.053.26 ± 0.05 ABAB 1.13±0.031.13 + 0.03 1.86±0.021.86 ± 0.02 3.34±0.113.34 0.11 8.01±0.668.01 + - 0.66 3.07±0.013.07 ± 0.01 BBBB 1.15±0.011.15 ± 0.01 1.90±0.041.90 + 0.04 3.25±0.063.25 ± 0.06 9.75±1.429.75 + 1.42 3.15±0.113.15 ± 0.11 BABA 1.20±0.031.20 ± 0.03 1.74±0.081.74 ± 0.08 3.21±0.193.21 ± 0.19 9.12±0.619.12 + -0.61 3.01±0.113.01 ± 0.11 평균Average 1.17±0.011.17 ± 0.01 1.86±0.031.86 + 0.03 3.32±0.063.32 ± 0.06 9.37±0.469.37 ± 0.46 3.13±0.043.13 + 0.04

4) 토종오리 고기의 물리학적 특성4) Physical properties of native duck meat

우리맛오리의 물리학적 성상 (육색, 가열감량 및 전단력)은 표 7에 나타냈다. 6, 7 및 8주령에서 육색의 명도(L*)와 가열감량은 주령이 많아질수록 더 낮게 나타났다. 육색의 적색도(a*) 및 황색도(b*)는 6~8주령에서 차이가 없었다. The physical properties (meat color, heat loss and shear force) of our duck duck are shown in Table 7. At 6, 7, and 8 weeks of age, the lightness (L *) and heat loss decreased with age. The redness (a *) and yellowness (b *) of meat color were not different between 6 and 8 weeks old.

우리맛오리 오리육의 6, 7 및 8주령에서 화학적 성상은 주령이 지날수록 수분는 줄어들고 단백질은 증가하였다. At 6, 7, and 8 weeks of age, the chemical properties decreased with the passage of time and protein increased.

우리맛오리 고기의 물리화학적 특성Physico-chemical properties of our duck meat

구분division 6주령6 weeks old 7주령7 weeks old 8주령8 weeks old CIE CIE L(명도)  L (brightness) 41.8±0.78a 41.8 ± 0.78 a 39.0±0.51b 39.0 ± 0.51 b 38.1±0.21b 38.1 ± 0.21 b a(적색도)   a (redness) 17.9±0.6217.9 ± 0.62 17.8±0.2917.8 ± 0.29 17.6±0.4617.6 + - 0.46 b(황색도)  b (yellow degree) 6.50±0.236.50 ± 0.23 6.52±0.256.52 ± 0.25 6.57±0.416.57 + - 0.41 가열감량, %Heat loss,% 31.6±0.48a 31.6 ± 0.48 a 27.9±0.31b 27.9 ± 0.31 b 25.4±0.29c 25.4 ± 0.29 c 전단력, kg/0.5inch2 Shear force, kg / 0.5inch 2 3.45±0.263.45 ± 0.26 3.13±0.153.13 ± 0.15 2.98±0.232.98 ± 0.23 수분, %moisture, % 78.2±0.09a 78.2 ± 0.09 a 76.4±0.18b 76.4 ± 0.18 b 75.1±0.11c 75.1 + - 0.11 c 지방, %Fat, % 0.82±0.13b 0.82 + 0.13 b 1.06±0.08b 1.06 + 0.08 b 1.88±0.16a 1.88 ± 0.16 a 단백질, %protein, % 19.0±0.11c 19.0 ± 0.11 c 20.3±0.13b 20.3 ± 0.13 b 20.9±0.07a 20.9 ± 0.07 a 조회분, %View minutes,% 1.06±0.01b 1.06 + - 0.01 b 1.13±0.01a 1.13 + 0.01 a 1.10±0.02a 1.10 ± 0.02 a

1)CIE (Commision Internationale de Leclairage): L*=명도, a*=적색도, b*=황색도.1) CIE (Commision Internationale de Leclairage): L * = brightness, a * = redness, b * = yellowness.

2)전단력(Warner-Bratzler shear force)
2) Warner-Bratzler shear force

하기 표 8은 우리맛오리 고기의 육질특성을 나타낸다.Table 8 below shows the meat quality characteristics of the dumplings.

우리맛오리 고기는 조단백질 및 보수력이 비교적 높고, 구수함과 졸깃한 육질감으로 우리 고유의 풍미가 있으며, 가슴육은 다가 불포화지방산의 함량이 높으며, 특히 필수지방산인 아라키돈산의 함량이 높았다.Our taste duck meat is relatively high in crude protein and water holding capacity, and has a unique flavor due to its fleshy texture. The content of polyunsaturated fatty acid in chest meat is high, and especially the content of arachidonic acid, which is an essential fatty acid, is high.

구분division 단백질
(%)
protein
(%)
보수력
(%)
Water holding capacity
(%)
풍미zest 향미Flavor 조직감Texture 기호성Purity 다가 불포화지방산Polyunsaturated fatty acid 아라키돈산Arachidonic acid
토종오리Native duck 21.8a 21.8 a 48.2a 48.2 a 7.4a 7.4 a 6.46.4 7.2a 7.2 a 7.6a 7.6 a 32.1a 32.1 a 7.5a 7.5 a 일반오리A common duck 20.2b 20.2 b 36.5b 36.5 b 6.0b 6.0 b 5.85.8 5.8b 5.8 b 6.4b 6.4 b 30.8b 30.8 b 5.4b 5.4 b

실시예Example 2:  2: 우리맛오리Our taste duck 종오리의Bellied 외모특성Appearance characteristics 및 산란능력 And scattering ability

1) 외모특성1) Appearance characteristics

우리맛오리 종오리는 유전형질이 순종에 기반하고 있기 때문에 외모적인 특징이 균일하다. 사용되는 순종에 따라 외모 형태에 차이가 있으며, 흑갈색이나 회갈색의 깃털색이 발현되며, 정강이색은 황색이거나 흑색을 나타내며 일반 육용오리의 흰색 외모와 외형적으로 쉽게 구분할 수 있다. 산육능력도 있고 비교적 산란능력이 우수하다. 우리맛오리 종오리 A, B 2계통의 교배를 통하여 실용오리인 우리맛오리를 생산한다.
Because the genetic traits are based on obedience, the duck ducks are uniform in appearance. Depending on the obedience used, there is a difference in appearance, blackish brown or grayish-brown feathery color is expressed, dichromatic yellow is yellow or black, and it is easily distinguishable from the white appearance of a common duck. It has the ability to raise and has a relatively good spawning ability. Through our mating of two kinds of duck ducks A, B, we produce practical duck, our duck duck.

2) 발육2) Development

일반적으로 산란을 목적으로 하는 종오리는 체중이 적은 것이 경제적으로 유리하다. 육용을 목적으로 하는 토종 우리맛오리 종오리는 체중이 높으면서도 산란수가 많은 쪽으로 육종이 되어야 한다. 따라서 우리맛오리 생산용 종오리는 20주령 체중이 약 3,000g 이상이다.Generally, it is economically advantageous that the weight of the duck for the purpose of scattering is small. The native duck for the purpose of meat must be breed to the side with high weight and high egg production. Therefore, the ducks for producing duck ducks weigh more than 3,000 g at 20 weeks of age.

계통system 체중(g/수)Weight (g / h) 0주령0 weeks old 4주령4 weeks old 8주령8 weeks old 12주령12 weeks 16주령16 weeks 20주령20 weeks old A(♀)A (♀) 51.8±0.2551.8 ± 0.25 1,203±26.4ab 1,203 ± 26.4 ab 2,505±22.7c 2,505 ± 22.7 c 2,969±50.2c 2,969 ± 50.2 c 3,068±81.7b 3,068 ± 81.7 b 3,098±79.3b 3,098 + - 79.3 b A(♂)A (♂) 50.2±0.3750.2 ± 0.37 1,145±15.4b 1,145 ± 15.4 b 2,713±61.4b 2,713 + - 61.4 b 3,398±31.3b 3,398 ± 31.3 b 3,492±34.4a 3,492 ± 34.4 a 3,302±50.1a 3,302 ± 50.1 a B(♀)B (♀) 50.5±0.3850.5 ± 0.38 1,268±31.4a 1,268 ± 31.4 a 2,617±59.8bc 2,617 ± 59.8 bc 3,101±48.7c 3,101 ± 48.7 c 3,164±51.6b 3,164 ± 51.6 b 3,277±46.9ab 3,277 ± 46.9 ab B(♂)B (♂) 50.4±0.1550.4 ± 0.15 1,201±49.4ab 1,201 ± 49.4 ab 2,927±31.8a 2,927 ± 31.8 a 3,613±60.7a 3,613 ± 60.7 a 3,676±51.7a 3,676 ± 51.7 a 3,457±37.4a 3,457 ± 37.4 a

A : korean Native Duck A StrainA: korean Native Duck A Strain

B : korean Native Duck B Strain
B: korean Native Duck B Strain

하기 표 10은 우리맛오리의 산란기 주령별 평균 체중 (단위 : g) 을 나타낸다.Table 10 below shows the average body weight (unit: g) of each wet weight of each spawning season of the Korean dumpling.

계통system 장 기간 (주령)Length (weeks) 2424 3232 4040 4848 5656 6464 7272 8080 AA 3,2153,215 3,0573,057 2,7672,767 2,7392,739 3,2963,296 3,4043,404 3,1683,168 3,1113,111 BB 3,1973,197 2,9792,979 2,7272,727 2,6502,650 3,2053,205 3,4703,470 3,3283,328 3,2733,273 평균Average 3,2063,206 3,0183,018 2,7472,747 2,6952,695 3,2513,251 3,4373,437 3,2483,248 3,1923,192

* 40~48 주령 : 하절기 사료섭취량 저하, 64주령 : 동절기 산란량 저하
* 40 to 48 weeks: lowered feed intake in summer, 64 weeks: lowered in winter

우리맛오리 종오리의 계통별 시산일령, 시산시 난중 및 시산시 체중은 표 11에 나타내었다. 우리맛오리 종오리의 계통별 초산일령, 난중 및 체중Table 11 shows the distribution of body weight, body weight, body weight, Our Taste Ducks Ducks Systematic Starters Ages, Lanterns & Weights

계통system 초산시의 능력Ability of acupuncture 일령 (일)Day (Sun) 난중 (g)Lunar (g) 체중 (g)Weight (g) AA 175.8a 175.8 a 75.275.2 3,2453,245 BB 171.5b 171.5 b 74.974.9 3,2253.225 평균Average 173.7173.7 75.175.1 3,2353,235

초산일령은 각 반복별로 연속 2일간 50%이상 산란을 시작한 첫날의 일령을 조사하여 반복별로 평균치를 산출하여 계통별로 평균한 일령(일)으로 나타냈으며, A 및 B 계통에서 각각 175.8일 및 171.5일로서 A계통이 빨랐으며, 평균 173.7일 이였고, 초산시 평균난중은 75.1g 평균체중은 3,235g이었다.
The mean age of the first day of the first day of egg laying was found to be more than 50% for 2 consecutive days for each repetition. The average age of the eggs for each repetition was 175.8 days and 171.5 days The average egg weight was 75.1g and the mean weight was 3,235g.

3) 산란능력3) Spawning ability

시산시부터 시험종료시까지 각 반복별로 4주 간격으로 연 수수에 대한 산란수의 비율로 계산하여 4주 간격으로 집계하여 표 12에 나타냈다. 우리맛오리 종오리의 산란기 주령별 산란율 (단위 : %)From the time of the test to the end of the test, the ratio of the number of eggs to the number of eggs per year was calculated at intervals of 4 weeks. The egg production rate by the age of the spawning period of the duck ducks in Korea (Unit:%)

계통system 주 령Mainland 20~8020 to 80 20~2420 to 24 24~2824-28 28~3228 ~ 32 32~3632 to 36 36~4036-40 40~4440 to 44 44~4844 ~ 48 48~5248-52 52~5652-56 56~6056 to 60 60~6460 to 64 64~6864 to 68 68~7268 ~ 72 72~7672 ~ 76 76~8076 to 80 AA 11.111.1 68.368.3 82.782.7 83.483.4 81.581.5 72.872.8 71.571.5 64.264.2 63.663.6 60.060.0 52.452.4 46.446.4 49.249.2 63.363.3 71.371.3 62.862.8 BB 14.514.5 84.484.4 88.088.0 86.686.6 85.785.7 77.277.2 80.380.3 81.281.2 74.774.7 63.063.0 61.861.8 51.651.6 55.355.3 68.568.5 81.181.1 70.370.3 평균Average 12.812.8 76.376.3 85.385.3 85.085.0 83.683.6 75.075.0 75.975.9 72.772.7 69.169.1 61.561.5 57.157.1 49.049.0 52.252.2 65.965.9 76.276.2 66.566.5

우리맛오리 종오리의 주령별 산란율은 28~32주령에서 85.3% 정도로 산란 최고점을 보이며 32~36주령까지 지속되었고, 40주령 이후 산란율이 떨어지는 경향을 보였다. 80주령까지 산란율은 A계통 및 B계통이 각각 62.8 및 70.3%로 B계통이 높았고 평균적으로 66.5%를 나타냈다. 64~68주령시에는 동절기로 산란율이 49%를 보였으나, 해빙기가 되면서 산란율이 점차 증가하여 봄철에 해당하는 76~80주령에는 산란율이 76.2%로 상승하였다. 이상의 결과로 보아 토종오리는 점등 자극뿐만 아니라 온도 역시 산란에 많은 영향을 주는 것으로 보인다. The egg - laying rate of duckweed ducklings dweller ranged from 32 to 36 wks with a maximum of 85.3% at 28 ~ 32 wks, and the egg - laying rate tended to decrease after 40 wks. The egg production rate of A and B strains was 62.8 and 70.3%, respectively, up to 80 weeks of age. The egg production rate was 49% at the age of 64 ~ 68 weeks in winter, but the egg production rate gradually increased with the wintering season and the egg production rate increased to 76.2% at 76 ~ 80 weeks of spring. These results suggest that the domestic duck has a great influence on the spawning as well as the lighting stimulus.

산란수는 매 4주 간격으로 각 반복별로 시산시부터 80주령 말까지 산란한 산란수를 반복별, 계통별로 집계하여 표시하였다. 우리맛오리 종오리의 계통별 주령별 산란수는 표 13에 나타냈다. 우리맛오리 종오리의 주령별 산란수 (단위 : 개)The number of spawning was ranged from 4 weeks to 80 weeks of age. Table 13 shows the number of laying eggs per dwelling system of the duck ducks. The number of laying eggs per dwelling species of ducklings (unit: dogs)

계통system 성장 기간 (주령)Growth period (weeks) 20~2420 to 24 20~2820 to 28 20~3220 to 32 20~3620 to 36 20~4020 to 40 20~4420 to 44 20~4820 to 48 20~5220 ~ 52 20~5620 ~ 56 20~6020 to 60 20~6420 to 64 20~6820 to 68 20~7220 to 72 20~7620 ~ 76 20~8020 to 80 AA 3.43.4 15.415.4 38.738.7 60.360.3 82.482.4 103.7103.7 121.8121.8 137.9137.9 152.7152.7 168.0168.0 180.5180.5 193.4193.4 204.7204.7 218.7218.7 235.5235.5 BB 5.55.5 21.721.7 45.045.0 67.067.0 89.989.9 110.4110.4 131.1131.1 152.8152.8 172.7172.7 190.0190.0 205.1205.1 219.2219.2 232.7232.7 248.6248.6 267.5267.5 평균Average 4.44.4 18.618.6 41.941.9 63.763.7 86.286.2 107.0107.0 126.4126.4 145.3145.3 162.7162.7 179.0179.0 192.8192.8 206.3206.3 218.7218.7 233.7233.7 251.5251.5

40주령까지의 산란수는 A 및 B 계통이 각각 82.4 및 89.9개로 평균 86.2개를 나타냈고, 72주령까지는 A 및 B 계통이 각각 204.7 및 232.7개로 평균 218.7개를 나타냈으며, 80주령까지는 A 및 B 계통이 각각 235.5 및 267.5개로 평균 251.5개를 나타냈다. 그리고 전기간에 있어서 B계통이 A계통보다 산란수가 많은 경향을 보였다. 이상의 결과로 보아 우리맛오리 생산을 위하여는 B계통은 암컷라인으로 A계통은 수컷라인으로 이용이 효율적일 것으로 사료된다.
The average number of spawning of the A and B strains was 86.2 and 82.4 and 89.9, respectively. The A and B strains were 204.7 and 232.7, respectively, with a mean of 218.7 strains at 72 weeks of age. 235.5 and 267.5, respectively, representing an average of 251.5. In addition, the B strain tended to have more spawning than the A strain. From the above results, it is considered that for the production of the duck duck, the system B would be a female line and the system A would be used as a male line.

4) 난중4) Lanzhou

시산시부터 시험종료시까지 매주 중간에 반복별로 산란한 총 난중(기형란, 연파란 제외)을 총산란수로 나누어 조사한 후 4주 간격으로 집계하여 표시하였다. 계통별 우리맛오리 종오리의 주령에 따른 평균난중을 표 14에 나타내었다. 28~32주령의 난중은 A 및 B계통에서 각각 80.4 및 78.2g으로 80g이상 되는 알을 산란하기 시작였으며, 52~56주령부터는 A 및 B계통에서 각각 90.1 및 90.9g으로 90g이상 되는 알을 생산하였다. 20~80주령까지 평균 난중은 A 및 B계통에서 각각 86.5 및 85.6g을 나타냈다.The total egg weight (except for the anomalies and open waves) scattered by the repetition of each week from the time of the test to the end of the test was divided by the total number of eggs, Table 14 shows the average egg weight according to the age of the ducks of the Korean mussel ducks. Eggs from 28 to 32 weeks old started egg laying of 80g or more at 80.4 and 78.2g in A and B strains and 90.1 and 90.9g in eggs A and B at 52-56 weeks respectively Respectively. Mean egg weight was 86.5 and 85.6g in the A and B strains from 20 to 80 weeks of age, respectively.

우리맛오리 종오리의 산란기 주령별 평균 난중 (단위 : g) The average egg weight per spawning season of the duck ducks ducks (g)

계통system 성장 기간 (주령)Growth period (weeks) 20~8020 to 80 20~2420 to 24 24~2824-28 28~3228 ~ 32 32~3632 to 36 36~4036-40 40~4440 to 44 44~4844 ~ 48 48~5248-52 52~5652-56 56~6056 to 60 60~6460 to 64 64~6864 to 68 68~7268 ~ 72 72~7672 ~ 76 76~8076 to 80 AA 73.873.8 75.175.1 80.480.4 84.884.8 86.486.4 86.786.7 85.985.9 88.588.5 90.190.1 92.792.7 91.691.6 93.193.1 89.989.9 89.989.9 89.389.3 86.586.5 BB 68.468.4 77.277.2 78.278.2 79.579.5 81.281.2 84.384.3 84.484.4 88.988.9 90.990.9 92.492.4 92.592.5 92.692.6 91.691.6 90.090.0 92.292.2 85.685.6 평균Average 71.171.1 76.276.2 79.379.3 82.182.1 83.883.8 85.585.5 85.185.1 88.788.7 90.590.5 92.592.5 92.092.0 92.992.9 90.790.7 90.090.0 90.890.8 86.186.1

실시예Example 3.  3. 우리맛Our taste 오리 개체 식별을 위한  For identification of ducks 마커Marker 조성물 개발 Composition development

(1) 공시재료 및 (1) Disclosure materials and DNADNA 추출 extraction

우리맛오리 20수, 실용오리(commercial duck; CD) 20수의 익정맥으로부터 혈액을 채혈하여 EDTA가 첨가된 튜브에 보관된 상태로 공시 받았다. 각각의 혈액샘플은 20 ㎕씩 분주하여 PrimePrep™ Genomic DNA isolation kit for blood kit(GeNet Bio, 대한민국)을 이용하여 DNA를 추출하였다. 추출한 DNA는 Agarose gel을 이용한 전기영동 및 NanoDrop 2000C 분광 광도계(Thermo Scientific, 미국)를 이용하여 농도 및 DNA 상태를 확인한 후 MS 마커 유전자형 분석이 수행될 때까지 20℃에 보관하였다.
Blood was collected from 20 juvenile duck ducks, commercial duck (CD) 20 juvenile veins and stored in tubes containing EDTA. 20 μl of each blood sample was fractionated and DNA was extracted using PrimePrep ™ Genomic DNA isolation kit for blood kit (GeNet Bio, Korea). The extracted DNA was analyzed by electrophoresis using agarose gel and DNA and NanoDrop 2000C spectrophotometer (Thermo Scientific, USA), and then stored at 20 ° C until MS marker genotype analysis was performed.

(2) (2) 후보마커의Of the candidate marker 선정 및  Selection and 마커Marker 제작 making

유전자형 분석이 가능한 후보마커 탐색은 Peking 오리의 개체식별 및 다양성 연구를 위해 MS 마커 변이를 확인한 Maak 등(2003)의 연구와, Yinhua(2005;2006)의 연구결과를 토대로 NCBI의 데이터 분석을 통해 총 100개의 후보마커를 선정 하였으며 각각의 마커는 PCR 증폭 여부를 확인하기 위해 fluorescence dye가 부착되지 않은 정방형 및 역방형 프라이머를 제작해 전기영동으로 토종오리 및 우리맛오리 집단에서 밴드의 크기와 개수 확인으로 마커의 변이 유무를 확인하였다. 이렇게 확인한 마커들 중 PCR 증폭이 잘 되고 변이가 확인되는 마커 29개를 선정하였다. MS 마커 유전자형 분석을 위해 각각의 마커 정방형 프라이머는 GA3130xl(ABI, USA)를 이용한 Fragment analysis를 수행하였고, 유전자형 확보를 위해 fluorescence dye를 부착한 정방형 프라이머를 다시 제작하여 증폭에 이용하였다(표 15). Based on the results of Maak et al. (2003) and Yinhua (2005; 2006) who confirmed MS marker mutations for studying individual identification and diversity of Peking ducks, 100 candidate markers were selected. To confirm the amplification of each marker, a square and reverse primer with no fluorescence dye was prepared and electrophoresis was performed to confirm the size and number of bands in native duck and Korean duck group. The presence or absence of the marker was confirmed. Among the identified markers, 29 markers were selected for PCR amplification and mutation confirmation. For analysis of MS marker genotypes, each marker square primer was subjected to Fragment analysis using GA3130xl (ABI, USA), and a square primer with fluorescence dye was prepared for amplification and used for amplification (Table 15).

NoNo MarkerMarker NameName GenebankGenebank IDID chromosomechromosome ForwardForward PrimerPrimer ReverseReverse PrimerPrimer SizeSize ( ( bpbp )) DyeDye 1One 1CAUD111 1 CAUD111 AY587030AY587030 CAU5CAU5 CTGACATTACACACCCAAACAGCCTGACATTACACACCCAAACAGC CTTGACAAACTTTGGGAACAAGGCTTGACAAACTTTGGGAACAAGG 101101 FAMFAM 22 1CAUD127 1 CAUD127 AY587046AY587046 CAU1CAU1 CAAGCAATCTCACCTTCCTGCCAAGCAATCTCACCTTCCTGC CCAGATAAAACAATAGATCCAGATGCCAGATAAAACAATAGATCCAGATG 204204 FAMFAM 33 1CAUD132 1 CAUD132 AY587051AY587051 CAU12CAU12 GCAGGAACTCCCAGGAAAGGCAGGAACTCCCAGGAAAG CTTGTAGCCGTAGGATTGAGACCTTGTAGCCGTAGGATTGAGAC 308308 FAMFAM 44 1AMU52 1 AMU52 AB180534AB180534 CAU10CAU10 CTGAGTTTCTCACTGCCCAAGTGCTGAGTTTCTCACTGCCCAAGTG CTTCGAGTTAAGACAACAGCAGACCTTCGAGTTAAGACAACAGCAGAC 189189 NEDNED 55 1CAUD044 1 CAUD044 AY493289AY493289 CAU10CAU10 GCTCTAGGGTGAACTCTGTATCTCAGCTCTAGGGTGAACTCTGTATCTCA GTGCTCTACCTACTAGTCATGACACTGTGCTCTACCTACTAGTCATGACACT 271271 NEDNED 66 1AMU68 1 AMU68 AB180549AB180549 CAU9CAU9 CACGAGGAACAGGACTACACACGAGGAACAGGACTACA GAGCATACGATCCATGTCGGGAGCATACGATCCATGTCGG 371371 NEDNED 77 CAUD076CAUD076 AY493321AY493321 CAU7CAU7 CCTGGAACAAGGAATTAGAAGCCTGGAACAAGGAATTAGAAG GCTGTTGGGAAGAGTTCAGTGGCTGTTGGGAAGAGTTCAGTG 123123 PETPET 88 1CAUD009 1 CAUD009 AY493254AY493254 NANA CACATCGGGAGGGATTTTGGACACATCGGGAGGGATTTTGGA GGAAATGCGGCTTAATGACAGCGGAAATGCGGCTTAATGACAGC 248248 PETPET 99 CAUD049CAUD049 AY493294AY493294 CAU2CAU2 CCTGTAGTTTAGTTGCTGGATACCTGTAGTTTAGTTGCTGGATA CATTCCACAATACTTAGAGCAGATGGAGCATTCCACAATACTTAGAGCAGATGGAG 341341 PETPET 1010 1APH04 1 APH04 AJ515884AJ515884 CAU6CAU6 GCTGCCTTCCACAACACTACGCTGCCTTCCACAACACTAC CGTCATGGTGCAGCTATCGCGTCATGGTGCAGCTATCG 132132 VICVIC 1111 1AMU123 1 AMU123 AB180602AB180602 NANA GAATCACCGAGTGGTGTTCAGGGAATCACCGAGTGGTGTTCAGG CAAATGGTGATAAATGAAACCTCACAGGCAAATGGTGATAAATGAAACCTCACAGG 231231 VICVIC 1212 AMU63AMU63 AB180545AB180545 NANA GCGCAGATAAAGGCGGAGGGCGCAGATAAAGGCGGAGG GATCTCCGAAAGAGAGGAGGGATCTCCGAAAGAGAGGAGG 323323 VICVIC 1313 1APH08 1 APH08 AJ515887AJ515887 CAU6CAU6 CTGTGAAGCGAGCTAATTCAGCCTGTGAAGCGAGCTAATTCAGC GTGTGCATCTGGGTGTGTATGGTGTGCATCTGGGTGTGTATG 107107 FAMFAM 1414 1CAUD005 1 CAUD005 AY493250AY493250 CAU1CAU1 CTGGCTGCTTCATTGCTGACTGGCTGCTTCATTGCTGA CACATCTCAGGTCCTACAAGACCACATCTCAGGTCCTACAAGAC 216216 FAMFAM 1515 1CAUD128 1 CAUD128 AY587047AY587047 NANA GGCTGCTCCATGACAGGAGGGCTGCTCCATGACAGGAG CTAGTTGTCCAGCAAAGACAATGCCTAGTTGTCCAGCAAAGACAATGC 399399 FAMFAM 1616 CAUD109CAUD109 AY587028AY587028 CAU4CAU4 GGGACTTTGCTGTTAACATTGCGGGACTTTGCTGTTAACATTGC CTCCTCAGGTGTTTCCACACCTCCTCAGGTGTTTCCACAC 188188 NEDNED 1717 CAUD001CAUD001 AY493246AY493246 CAU11CAU11 ACAGCTTCAGCAGACTTAGAACTGACAGCTTCAGCAGACTTAGAACTG TGAGCTTCAGGTGAAATCCATGTTGAGCTTCAGGTGAAATCCATGT 303303 NEDNED 1818 1AMU3 1 AMU3 AB180488AB180488 NANA CTGAACCTGGCGGTATAAAGTGACTGAACCTGGCGGTATAAAGTGA CTTCTTGGCAATGTCTTGAAGTGGCTTCTTGGCAATGTCTTGAAGTGG 231231 PETPET 1919 1CAUD069 1 CAUD069 AY493314AY493314 CAU1CAU1 CTACTCAGTGTGCCTAATACCTCCTACTCAGTGTGCCTAATACCTC GGTTAGTGAGTGAAGGGAGTTGGTTAGTGAGTGAAGGGAGTT 349349 PETPET 2020 1CAUD086 1 CAUD086 AY493331AY493331 CAU1CAU1 CTGCATCCAAACTAGGCAGACCTGCATCCAAACTAGGCAGAC CAGACACCTACGGATATCGCTCCAGACACCTACGGATATCGCTC 187187 VICVIC 2121 1APH20 1 APH20 AJ515895AJ515895 NANA CTGCGTTCATGACATTGTGAAGTGCTGCGTTCATGACATTGTGAAGTG GAGGCTTTAGGAGAGATTGAAAAAGTACGAGGCTTTAGGAGAGATTGAAAAAGTAC 277277 VICVIC 2222 1CAUD066 1 CAUD066 AY493311AY493311 CAU1CAU1 GCAGGAAAGGAAGTGAGCCGCAGGAAAGGAAGTGAGCC GCTCTGTTGCTCTTGTAACGAGGCTCTGTTGCTCTTGTAACGAG 179179 FAMFAM 2323 1APH24 1 APH24 AJ515899AJ515899 CAU3CAU3 ACTAATCAACCAGTGGTCAGAGAACTAATCAACCAGTGGTCAGAGA CTGGAAACACTCTTGCGAATTCAGCTGGAAACACTCTTGCGAATTCAG 282282 FAMFAM 2424 1CAUD039 1 CAUD039 AY493284AY493284 CAU1CAU1 CAGAGAGTGAAAGCTGCTGCCAGAGAGTGAAAGCTGCTGC ACATGCCACTTGAACTTAATCAGGAAACATGCCACTTGAACTTAATCAGGAA 249249 NEDNED 2525 1CAUD040 1 CAUD040 AY493285AY493285 CAU12CAU12 CTTGACGTTTCCTCACTGGAGACTTGACGTTTCCTCACTGGAGA GTTTACGCTGTGCGTGACTCGTTTACGCTGTGCGTGACTC 350350 NEDNED 2626 1CAUD011 1 CAUD011 AY493256AY493256 NANA CAGGCTTCCTTACAGTTGTGTGCAGGCTTCCTTACAGTTGTGTG TCCAAGCCACCTACAGAGGTTCCAAGCCACCTACAGAGGT 284284 PETPET 2727 1CAUD031 1 CAUD031 AY493276AY493276 CAU1CAU1 GGTAACTGTGTGCAGTGGTTTCGGTAACTGTGTGCAGTGGTTTC CCTCCTGTCAAACAGGATCACCTCCTGTCAAACAGGATCA 373373 PETPET 2828 1CAUD035 1 CAUD035 AY493280AY493280 CAU6CAU6 GCTTCACTGCAGAACCAACTGGCTTCACTGCAGAACCAACTG CAAGCAGGTTGGCTTCCAGCAAGCAGGTTGGCTTCCAG 217217 VICVIC 2929 1CAUD048 1 CAUD048 AY493293AY493293 CAU11CAU11 CTGGACATCATTGCACAGACATAGTCTGGACATCATTGCACAGACATAGT GACCTCAGAAATCTGCTGTTAGCTGACCTCAGAAATCTGCTGTTAGCT 336336 VICVIC

*NA: not available; 1analyzed markers
* NA: not available; 1 analyzed markers

(3) (3) PCRPCR 증폭 및  Amplification and FragmentFragment analysis분석

변이확인을 통해 확보한 마커의 PCR 증폭에는 2.5 mM 의 dNTPs(GenetBio, 대한민국)와 10X reaction buffer(GenetBio, 대한민국), 2.5 unit의 prime Taq DNA polymerase(GenetBio, 대한민국)를 사용하여 총 20 ㎕의 볼륨으로 PCR 증폭을 수행하였다. 증폭 조건은 최초 95℃에서 10분간 pre-denaturation을 한 후 95℃에서 30초간 denaturation, 63℃에서 30초간 annealing, 72℃에서 30초간 extension을 35회 반복 후 72℃에서 10분간 final-extension을 수행하여 증폭산물을 확보하였다. 확보된 증폭산물은 마커별로 10~20X의 희석배율로 희석하여 1 ㎕의 희석된 증폭산물에 HI-DITMFormamide (ABI, USA) 10 ㎕와 500LIZTM sizestandard (ABI, USA) 0.1 ㎕를 첨가하였고, GA3130xl (ABI, USA)를 이용하여 Fragment analysis를 수행하였다.
PCR amplification of the markers obtained by mutation confirmation was performed using 2.5 mM dNTPs (GenetBio, Korea), 10X reaction buffer (GenetBio, Korea) and 2.5 units of prime Taq DNA polymerase (GenetBio, Korea) PCR amplification was performed. The amplification conditions were pre-denaturation at 95 ° C for 10 minutes, followed by denaturation at 95 ° C for 30 seconds, annealing at 63 ° C for 30 seconds, extension at 72 ° C for 30 seconds, and final extension at 72 ° C for 10 minutes To obtain an amplified product. The obtained amplified products were diluted with 10 ~ 20X dilutions per marker, and 10 μl of HI-DI Formamide (ABI, USA) and 1 μl of 500LIZ 0.1 ㎕ of sizestandard (ABI, USA) was added and Fragment analysis was performed using GA3130xl (ABI, USA).

(4) (4) MSMS 마커Marker 유전자형 확보 및 통계분석 Genotyping and statistical analysis

확보된 마커의 유전자형 정보는 Genemapper 4.1(ABI, USA) 프로그램을 사용하여 각각의 유전자형에 대한 binary 정보를 설정하여 유전자형 정보를 산출하였다. 유전자형 정보를 이용하여 대립유전자의 수(N) 및 이형접합도(expected heterozygosity; Hexp), 다형성(polymorphism information content; PIC) 분석을 위해 Cervus 3.0.6 (Marshall et al., 1998)을 사용하였으며 품종의 계통분석 및 집단의 관계를 확인하기 위하여 PowerMarker 3.25(Liu and Muse, 2005)를 사용하여 두 집단의 genetic distance 및 Neighbor-Joining(NJ) 계통도를 확인하였다. 또한, 임의의 집단에서의 동일개체출현빈도를 계산하기 위하여 API_CALC ver 1.0(Ayres and Overall, 2004)을 사용하여 확보된 MS 마커의 개체식별률을 확인하였다.
Genomic information of the acquired markers was generated by setting binary information for each genotype using Genemapper 4.1 (ABI, USA) program. Cervus 3.0.6 (Marshall et al., 1998) was used to analyze the number of alleles (N), expected heterozygosity (Hexp) and polymorphism information content (PIC) (Liu and Muse, 2005) were used to confirm the genetic distance and Neighbor-Joining (NJ) systematics of the two groups. In addition, we used API_CALC ver 1.0 (Ayres and Overall, 2004) to determine the frequency of occurrence of the same species in arbitrary populations.

실시예Example 4.  4. MSMS 마커의Marker 유전자형 확인 및 다형성 Genotype identification and polymorphism

(1) (One) MSMS 마커Marker 유전자형 확인 Genotype identification

우리맛오리와 실용오리의 MS 마커 유전자형을 확인한 결과 선발된 29개의 마커 중에서 24개의 마커에서만 정확한 유전자형을 확인할 수 있었고 CAUD001, CAUD019, CAUD049, CAUD076, 및 AMU62의 다섯 개 마커에서는 분석하기 난해한 유전자형 peak가 나타나 유전자형 확보에서 제외하였다. 5개의 마커를 제외한 총 24개의 MS 마커 유전자형에서 두 집단의 대립유전자수(N)와 이형접합도(Hexp), 다형성(PIC) 값은 우리맛오리에서 각각 4.7, 0.554, 0.495로 나타났다. 이러한 결과는 하기 표 16에 나타냈다. The genotypes of MS markers in duck and practical ducks were confirmed. Of the 29 markers selected, only 24 markers showed correct genotypes. In the five markers CAUD001, CAUD019, CAUD049, CAUD076, and AMU62, And were excluded from genotype assurance. The total number of alleles (N), heterozygosity (Hexp), and polymorphism (PIC) of the two groups were 4.7, 0.554 and 0.495 in the total of 24 MS marker genotypes except 5 markers. These results are shown in Table 16 below.

Marker
Name
Marker
Name
우리맛오리 (KND)Our taste duck (KND) 실용오리 (CD)Practical Duck (CD)
NN HObsHObs HExpHExp PICPIC NN HObsHObs HExpHExp PICPIC CAUD111CAUD111 66 0.7890.789 0.7940.794 0.7390.739 77 0.80.8 0.7490.749 0.6990.699 CAUD127CAUD127 22 0.2110.211 0.2730.273 0.2310.231 55 0.550.55 0.5240.524 0.4550.455 CAUD132CAUD132 22 0.2110.211 0.2730.273 0.2310.231 33 0.20.2 0.2680.268 0.2380.238 AMU52AMU52 1One 00 00 00 1One 00 00 00 CAUD044CAUD044 44 0.4210.421 0.4040.404 0.3650.365 44 0.450.45 0.3870.387 0.3510.351 AMU68AMU68 33 0.7370.737 0.610.61 0.5280.528 55 0.80.8 0.6580.658 0.5920.592 CAUD009CAUD009 22 00 0.1140.114 0.1050.105 33 0.050.05 0.1880.188 0.1740.174 APH04APH04 55 0.1580.158 0.7270.727 0.6660.666 44 0.250.25 0.5010.501 0.4380.438 AMU123AMU123 44 0.2630.263 0.4050.405 0.3680.368 22 0.20.2 0.1850.185 0.1640.164 APH08APH08 77 0.5790.579 0.7480.748 0.6960.696 55 0.550.55 0.5460.546 0.4550.455 CAUD005CAUD005 55 0.7650.765 0.7540.754 0.6920.692 66 0.70.7 0.6560.656 0.6030.603 CAUD128CAUD128 33 0.3680.368 0.3170.317 0.2750.275 33 0.350.35 0.3120.312 0.2820.282 AMU3AMU3 44 0.2940.294 0.6060.606 0.5130.513 44 0.550.55 0.5650.565 0.5040.504 CAUD069CAUD069 1313 0.7220.722 0.8840.884 0.8470.847 1212 0.80.8 0.8530.853 0.8150.815 CAUD086CAUD086 55 0.7890.789 0.7550.755 0.690.69 44 0.550.55 0.7580.758 0.690.69 APH20APH20 33 0.5260.526 0.6470.647 0.5530.553 33 0.60.6 0.5650.565 0.4610.461 CAUD066CAUD066 44 0.5260.526 0.6430.643 0.5680.568 44 0.4120.412 0.5940.594 0.5050.505 APH24APH24 55 0.4210.421 0.6060.606 0.5090.509 33 0.2350.235 0.4690.469 0.3750.375 CAUD039CAUD039 44 0.5790.579 0.5580.558 0.4750.475 55 0.650.65 0.6420.642 0.5530.553 CAUD040CAUD040 1212 0.7890.789 0.8110.811 0.770.77 1212 0.850.85 0.8830.883 0.8470.847 CAUD011CAUD011 44 0.6320.632 0.5850.585 0.4780.478 22 0.40.4 0.4310.431 0.3320.332 CAUD031CAUD031 44 0.5790.579 0.5520.552 0.4410.441 22 0.40.4 0.3280.328 0.2690.269 CAUD035CAUD035 55 0.5260.526 0.4820.482 0.4430.443 44 0.550.55 0.5730.573 0.5180.518 CAUD048CAUD048 66 0.8330.833 0.7430.743 0.6860.686 77 0.60.6 0.7150.715 0.650.65 AverageAverage 4.74.7 0.4880.488 0.5540.554 0.4950.495 4.64.6 0.4790.479 0.5150.515 0.4570.457

우리맛오리 집단에서는 CAUD069 마커가 13개의 대립유전자, 0.884의 이형접합도, 0.847의 다형성이 나타나 최대치를 나타내었고(표 16), 우리맛오리 집단에서는 2개의 대립유전자형을 가진 CAUD009 마커가 0.114의 이형접합도, 0.105의 다형성이 나타나 최소치를 나타내었다. 우리맛오리 집단과 실용오리집단의 대립유전자수 및 이형접합도, 다형성 값은 근소하게 차이가 났지만, 대부분의 마커는 같은 수준의 대립유전자수 및 이형접합도, 다형성을 각각 나타내었다. 특히, AMU52 마커는 우리맛오리 집단과 실용오리 집단 모두에서 대립유전자가 1개로 변이가 없는 것으로 확인이 되었다(표 16). 위의 결과는, Botstein et al.(1980)이 각 마커의 이형접합도(Hexp)가 0.6보다 크게 나타나며, 다형성(PIC)이 0.5보다 크게 나타날 때 생산물 이력제에 활용할 수 있다는 결과를 대입하였을 때, 우리맛오리 집단에서는 13개의 마커가 이용이 가능하고, 실용오리 집단에서는 8개의 마커가 이용이 가능한 것을 알 수 있었다. 따라서, 이러한 마커들을 우선적으로 선발하여 조합 했을 때 개체나 품종식별, 생산물 이력제에 사용이 가능할 것으로 사료된다. 이와 같은 결과는 MS 마커를 이용한 개체식별 및 품종 구분에 대한 문헌들에서도 사용가능성을 확인할 수 있었다(Seo et al., 2013; Choi et al., 2013).
In the taste duck population, the CAUD069 marker showed 13 alleles, 0.884 heterozygosity, and 0.847 polymorphism (Table 16). In our taste duck population, CAUD009 marker with two alleles was 0.114 The polymorphism of 0.105 showed the minimum value. The number of alleles, heterozygosity, and polymorphism in our duck and practical ducks were slightly different, but most markers showed the same level of alleles, heterozygosity, and polymorphism. In particular, the AMU52 markers were confirmed to be mutated in one allele in both the taste duck group and the utility duck group (Table 16). The results show that Botstein et al. (1980) showed that when the heterozygosity (Hexp) of each marker is greater than 0.6 and the polymorphism (PIC) is greater than 0.5, It was found that 13 markers were available in our taste duck group and 8 markers were available in the practical duck group. Therefore, when these markers are preferentially selected and combined, it is considered that they can be used for identification of individuals, breed identification, and product registration. These results indicate the possibility of using MS markers in identification of individual species and classification of cultivars (Seo et al., 2013; Choi et al., 2013).

(2) 품종 계통도 분석 및 동일개체 출현 빈도, 친자확인율 분석(2) Analysis of varietal lineage and frequency of occurrence of the same species, paternity identification rate analysis

확보된 마커의 유전자형을 PowerMarker 3.25 프로그램으로 Neighbor-Joining (NJ) 계통도를 분석하기 위해 24개 마커를 이용하여 두 집단의 유전적 거리를 계산해 본 결과 우리맛오리 집단과 실용오리 집단의 유전적 거리는 0.0560으로 나타나 비교적 집단이 가까운 것으로 확인이 되었다. 하지만 개체간의 유전적 거리 차이를 비교해 보았을 때, 실용오리 35번 샘플과 36번 샘플이 0.1774의 유전적 거리로 가장 가까운 거리를 나타내고, 우리맛오리 16번 샘플과 실용오리 40번 샘플이 0.7351로 비교적 먼 유전적 거리를 나타내는 것으로 나타났기 때문에 집단의 유사성이 확인이 되지만 특정개체의 차이가 뚜렷하게 나타나는 것으로 사료된다. 각각의 개체들의 24개 마커 유전자형을 이용하여 계통도를 작성한 결과 도 2와 같이 3개의 그룹이 형성되는 것을 확인할 수 있었고, 이들 그룹은 우리맛오리와 실용오리 샘플들이 혼재되어 나타났지만 2개의 소그룹은 실용오리가 주요하게 포함된 소그룹을 형성하였고, 한 개의 그룹은 우리맛오리가 주요하게 포함된 그룹이 형성되는 것을 확인할 수 있었다. 이러한 결과는 선발된 마커들의 유전정보를 이용해 선발을 통한 품종구분의 가능성을 확인할 수 있었다. Genetic distances of the two groups were calculated using 24 markers to analyze the Neighbor-Joining (NJ) scheme of the obtained marker genome by PowerMarker 3.25 program. And it was confirmed that the groups were relatively close to each other. However, when we compare genetic distance differences between individuals, the practical ducks 35 and 36 samples show the closest distance to the genetic distance of 0.1774, and the samples of our duck duck 16 and practical duck 40 are 0.7351 Because it was shown to show distant genetic distance, the similarity of the group was confirmed but it seems that the difference of specific individuals is apparent. As shown in Fig. 2, 3 groups were formed by using the 24 markers genotypes of each individual. As a result, these groups were found to contain a mixture of Korean duck ducks and practical duck samples. However, We found that the group containing mainly ducks was formed, and that one group formed the group containing mainly the duck ducks. These results confirmed the possibility of breed classification through selection using genetic information of selected markers.

확보된 마커의 개체식별률을 확인하기 위해 동일개체 출현빈도를 계산해 본 결과 임의 집단(PI)에서 1.64× 10-16, 임의 형매 집단(PI sib )에서 2.60× 10-7, 임의 반형매 집단(PI half - sib )에서 1.30× 10-12으로 모든 집단에서 0에 수렴하는 동일개체출현빈도를 나타내기 때문에 개체식별률이 매우 높아 본 연구에서 이용된 마커들은 개체식별 마커로는 충분히 활용할 수 있을 것으로 사료된다. 마커의 효율성 및 경제적인 마커조합을 위해 이형접합도와 다형성이 높은 마커를 선발하여 개체식별률이 0에 수렴하는 최소개수의 마커를 확인해 본 결과 본 발명의 13개의 마커만을 사용하였을 때부터 충분한 개체식별률이 나타나는 것을 확인할 수 있었다(도 3 참조). 더불어 이들의 친자확인율 또한 0.999975로 100%에 근접하는 친자확인율을 나타내기 때문에 본 연구에서 확보한 마커들이 개체식별 및 친자확인 마커로는 유용하게 활용될 수 있을 것으로 판단된다. To determine the rate of the individual identification marker secured to the same object, the calculated occurrence frequency results in any group (PI) 1.64 × 10 -16, 2.60 × 10 -7, any group at any hyeongmae (PI sib) half hyeongmae group ( PI half - sib ) to 1.30 × 10 - 12 , indicating the frequency of occurrence of the same individuals converging to zero in all groups, so that the markers used in this study can be fully utilized as individual identification markers . In order to combine the efficiency of the markers and the economical markers, the markers having high heterozygosity and polymorphism were selected and the minimum number of markers converging on the identification rate of 0 was checked. As a result, from the use of only the 13 markers of the present invention, (See FIG. 3). In addition, since their paternity confirmation rate is 0.999975, it shows paternity confirmation rate close to 100%. Therefore, the markers obtained in this study can be useful as individual identification and paternity markers.

<110> REPUBLIC OF KOREA(MANAGEMENT : RURAL DEVELOPMENT ADMINISTRATION) <120> Woorimatori produced by using Korean native pure line duck and producing method thereof <130> P15-048 <150> 10-2014-0024557 <151> 2014-02-28 <160> 58 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD111_Forward Primer <400> 1 ctgacattac acacccaaac agc 23 <210> 2 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD111_Reverse Primer <400> 2 cttgacaaac tttgggaaca agg 23 <210> 3 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD127_Forward Primer <400> 3 caagcaatct caccttcctg c 21 <210> 4 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD127_Reverse Primer <400> 4 ccagataaaa caatagatcc agatg 25 <210> 5 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD132_Forward Primer <400> 5 gcaggaactc ccaggaaag 19 <210> 6 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD132_Reverse Primer <400> 6 cttgtagccg taggattgag ac 22 <210> 7 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU52_Forward Primer <400> 7 ctgagtttct cactgcccaa gtg 23 <210> 8 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU52_Reverse Primer <400> 8 cttcgagtta agacaacagc agac 24 <210> 9 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD044_Forward Primer <400> 9 gctctagggt gaactctgta tctca 25 <210> 10 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD044_Reverse Primer <400> 10 gtgctctacc tactagtcat gacact 26 <210> 11 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU68_Forward Primer <400> 11 cacgaggaac aggactaca 19 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU68_Reverse Primer <400> 12 gagcatacga tccatgtcgg 20 <210> 13 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD076_Forward Primer <400> 13 cctggaacaa ggaattagaa g 21 <210> 14 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD076_Reverse Primer <400> 14 gctgttggga agagttcagt g 21 <210> 15 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD009_Forward Primer <400> 15 cacatcggga gggattttgg a 21 <210> 16 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD009_Reverse Primer <400> 16 ggaaatgcgg cttaatgaca gc 22 <210> 17 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD049_Forward Primer <400> 17 cctgtagttt agttgctgga ta 22 <210> 18 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD049_Reverse Primer <400> 18 cattccacaa tacttagagc agatggag 28 <210> 19 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD049_Forward Primer <400> 19 cctgtagttt agttgctgga ta 22 <210> 20 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD049_Reverse Primer <400> 20 cgtcatggtg cagctatcg 19 <210> 21 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU123_Forward Primer <400> 21 gaatcaccga gtggtgttca gg 22 <210> 22 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU123_Reverse Primer <400> 22 caaatggtga taaatgaaac ctcacagg 28 <210> 23 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU63_Forward Primer <400> 23 gcgcagataa aggcggagg 19 <210> 24 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU63_Reverse Primer <400> 24 gatctccgaa agagaggagg 20 <210> 25 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH08_Forward Primer <400> 25 ctgtgaagcg agctaattca gc 22 <210> 26 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH08_Reverse Primer <400> 26 gtgtgcatct gggtgtgtat g 21 <210> 27 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD005_Forward Primer <400> 27 ctggctgctt cattgctga 19 <210> 28 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD005_Reverse Primer <400> 28 cacatctcag gtcctacaag ac 22 <210> 29 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD128_Forward Primer <400> 29 ggctgctcca tgacaggag 19 <210> 30 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD128_Reverse Primer <400> 30 ctagttgtcc agcaaagaca atgc 24 <210> 31 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD109_Forward Primer <400> 31 gggactttgc tgttaacatt gc 22 <210> 32 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD109_Reverse Primer <400> 32 ctcctcaggt gtttccacac 20 <210> 33 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD001_Forward Primer <400> 33 acagcttcag cagacttaga actg 24 <210> 34 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD001_Reverse Primer <400> 34 tgagcttcag gtgaaatcca tgt 23 <210> 35 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU3_Forward Primer <400> 35 ctgaacctgg cggtataaag tga 23 <210> 36 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU3_Reverse Primer <400> 36 cttcttggca atgtcttgaa gtgg 24 <210> 37 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD069_Forward Primer <400> 37 ctactcagtg tgcctaatac ctc 23 <210> 38 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD069_Reverse Primer <400> 38 ggttagtgag tgaagggagt t 21 <210> 39 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD086_Forward Primer <400> 39 ctgcatccaa actaggcaga c 21 <210> 40 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD086_Reverse Primer <400> 40 cagacaccta cggatatcgc tc 22 <210> 41 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH20_Forward Primer <400> 41 ctgcgttcat gacattgtga agtg 24 <210> 42 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH20_Reverse Primer <400> 42 gaggctttag gagagattga aaaagtac 28 <210> 43 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD066_Forward Primer <400> 43 gcaggaaagg aagtgagcc 19 <210> 44 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD066_Reverse Primer <400> 44 gctctgttgc tcttgtaacg ag 22 <210> 45 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH24_Forward Primer <400> 45 actaatcaac cagtggtcag aga 23 <210> 46 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH24_Reverse Primer <400> 46 ctggaaacac tcttgcgaat tcag 24 <210> 47 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD039_Forward Primer <400> 47 cagagagtga aagctgctgc 20 <210> 48 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD039_Reverse Primer <400> 48 acatgccact tgaacttaat caggaa 26 <210> 49 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD040_Forward Primer <400> 49 cttgacgttt cctcactgga ga 22 <210> 50 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD040_Reverse Primer <400> 50 gtttacgctg tgcgtgactc 20 <210> 51 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD011_Forward Primer <400> 51 caggcttcct tacagttgtg tg 22 <210> 52 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD011_Reverse Primer <400> 52 tccaagccac ctacagaggt 20 <210> 53 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD031_Forward Primer <400> 53 ggtaactgtg tgcagtggtt tc 22 <210> 54 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD031_Reverse Primer <400> 54 cctcctgtca aacaggatca 20 <210> 55 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD035_Forward Primer <400> 55 gcttcactgc agaaccaact g 21 <210> 56 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD035_Reverse Primer <400> 56 caagcaggtt ggcttccag 19 <210> 57 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD048_Forward Primer <400> 57 ctggacatca ttgcacagac atagt 25 <210> 58 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD048_Reverse Primer <400> 58 gacctcagaa atctgctgtt agct 24 <110> REPUBLIC OF KOREA (MANAGEMENT: RURAL DEVELOPMENT ADMINISTRATION) <120> Woorimatori produced by Korean native pure line duck and          producing method thereof <130> P15-048 <150> 10-2014-0024557 <151> 2014-02-28 <160> 58 <170> Kopatentin 2.0 <210> 1 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD111_Forward Primer <400> 1 ctgacattac acacccaaac agc 23 <210> 2 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD111_Reverse Primer <400> 2 cttgacaaac tttgggaaca agg 23 <210> 3 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD127_Forward Primer <400> 3 caagcaatct caccttcctg c 21 <210> 4 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD127_Reverse Primer <400> 4 ccagataaaa caatagatcc agatg 25 <210> 5 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD132_Forward Primer <400> 5 gcaggaactc ccaggaaag 19 <210> 6 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD132_Reverse Primer <400> 6 cttgtagccg taggattgag ac 22 <210> 7 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU52_Forward Primer <400> 7 ctgagtttct cactgcccaa gtg 23 <210> 8 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU52_Reverse Primer <400> 8 cttcgagtta agacaacagc agac 24 <210> 9 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD044_Forward Primer <400> 9 gctctagggt gaactctgta tctca 25 <210> 10 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD044_Reverse Primer <400> 10 gtgctctacc tactagtcat gacact 26 <210> 11 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU68_Forward Primer <400> 11 cacgaggaac aggactaca 19 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU68_Reverse Primer <400> 12 gagcatacga tccatgtcgg 20 <210> 13 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD076_Forward Primer <400> 13 cctggaacaa ggaattagaa g 21 <210> 14 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD076_Reverse Primer <400> 14 gctgttggga agagttcagt g 21 <210> 15 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD009_Forward Primer <400> 15 cacatcggga gggattttgg a 21 <210> 16 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD009_Reverse Primer <400> 16 ggaaatgcgg cttaatgaca gc 22 <210> 17 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD049_Forward Primer <400> 17 cctgtagttt agttgctgga ta 22 <210> 18 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD049_Reverse Primer <400> 18 cattccacaa tacttagagc agatggag 28 <210> 19 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD049_Forward Primer <400> 19 cctgtagttt agttgctgga ta 22 <210> 20 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD049_Reverse Primer <400> 20 cgtcatggtg cagctatcg 19 <210> 21 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU123_Forward Primer <400> 21 gaatcaccga gtggtgttca gg 22 <210> 22 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU123_Reverse Primer <400> 22 caaatggtga taaatgaaac ctcacagg 28 <210> 23 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU63_Forward Primer <400> 23 gcgcagataa aggcggagg 19 <210> 24 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU63_Reverse Primer <400> 24 gatctccgaa agagaggagg 20 <210> 25 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH08_Forward Primer <400> 25 ctgtgaagcg agctaattca gc 22 <210> 26 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH08_Reverse Primer <400> 26 gtgtgcatct gggtgtgtat g 21 <210> 27 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD005_Forward Primer <400> 27 ctggctgctt cattgctga 19 <210> 28 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD005_Reverse Primer <400> 28 cacatctcag gtcctacaag ac 22 <210> 29 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD128_Forward Primer <400> 29 ggctgctcca tgacaggag 19 <210> 30 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD128_Reverse Primer <400> 30 ctagttgtcc agcaaagaca atgc 24 <210> 31 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD109_Forward Primer <400> 31 gggactttgc tgttaacatt gc 22 <210> 32 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD109_Reverse Primer <400> 32 ctcctcaggt gtttccacac 20 <210> 33 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD001_Forward Primer <400> 33 acagcttcag cagacttaga actg 24 <210> 34 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD001_Reverse Primer <400> 34 tgagcttcag gtgaaatcca tgt 23 <210> 35 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU3_Forward Primer <400> 35 ctgaacctgg cggtataaag tga 23 <210> 36 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> AMU3_Reverse Primer <400> 36 cttcttggca atgtcttgaa gtgg 24 <210> 37 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD069_Forward Primer <400> 37 ctactcagtg tgcctaatac ctc 23 <210> 38 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD069_Reverse Primer <400> 38 ggttagtgag tgaagggagt t 21 <210> 39 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD086_Forward Primer <400> 39 ctgcatccaa actaggcaga c 21 <210> 40 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD086_Reverse Primer <400> 40 cagacaccta cggatatcgc tc 22 <210> 41 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH20_Forward Primer <400> 41 ctgcgttcat gacattgtga agtg 24 <210> 42 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH20_Reverse Primer <400> 42 gaggctttag gagagattga aaaagtac 28 <210> 43 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD066_Forward Primer <400> 43 gcaggaaagg aagtgagcc 19 <210> 44 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD066_Reverse Primer <400> 44 gctctgttgc tcttgtaacg ag 22 <210> 45 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH24_Forward Primer <400> 45 actaatcaac cagtggtcag aga 23 <210> 46 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> APH24_Reverse Primer <400> 46 ctggaaacac tcttgcgaat tcag 24 <210> 47 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD039_Forward Primer <400> 47 cagagagtga aagctgctgc 20 <210> 48 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD039_Reverse Primer <400> 48 acatgccact tgaacttaat caggaa 26 <210> 49 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD040_Forward Primer <400> 49 cttgacgttt cctcactgga ga 22 <210> 50 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD040_Reverse Primer <400> 50 gtttacgctg tgcgtgactc 20 <210> 51 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD011_Forward Primer <400> 51 caggcttcct tacagttgtg tg 22 <210> 52 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD011_Reverse Primer <400> 52 tccaagccac ctacagaggt 20 <210> 53 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD031_Forward Primer <400> 53 ggtaactgtg tgcagtggtt tc 22 <210> 54 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD031_Reverse Primer <400> 54 cctcctgtca aacaggatca 20 <210> 55 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD035_Forward Primer <400> 55 gcttcactgc agaaccaact g 21 <210> 56 <211> 19 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD035_Reverse Primer <400> 56 caagcaggtt ggcttccag 19 <210> 57 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD048_Forward Primer <400> 57 ctggacatca ttgcacagac atagt 25 <210> 58 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> CAUD048_Reverse Primer <400> 58 gacctcagaa atctgctgtt agct 24

Claims (9)

(a1) 제1지역에서 토종오리를 수집하는 단계;
(a2) 상기 제1지역에서 수집된 토종오리를 토종오리 선별 기준에 따라 선별하여 일군의 흑갈색 토종오리를 확보하는 단계; 및
(a3) 상기 (a2) 단계에서 확보된 흑갈색 토종오리를 교배하여 A 계통의 종오리를 확립하는 단계를 포함하는 제1지역으로부터 유래한 우리맛오리 종오리를 확보하는 단계, 및
(b1) 제1지역과 떨어진, 토종오리 간에 자연 교배가 발생할 수 없는 제2지역에서 토종오리를 수집하는 단계;
(b2) 상기 제2지역에서 수집된 토종오리를 토종오리 선별 기준에 따라 선별하여 일군의 흑갈색 토종오리를 확보하는 단계; 및
(b3) 상기 (b2) 단계에서 확보된 흑갈색 토종오리를 교배하여 B 계통의 종오리를 확립하는 단계를 포함하는 제2지역에서 유래한 우리맛오리 종오리를 확보하는 단계를 포함하며,
(c) 상기 A 계통 종오리와 B 계통 종오리를 교배시키는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는
신품종 우리맛오리를 생산하는 방법.
(a1) collecting native ducks in a first area;
(a2) sorting the native ducks collected in the first area according to native duck selection criteria to secure a group of blackish brown native ducks; And
(a3) a step of crossing the black brown native duck obtained in the step (a2) to establish a species duck of line A, securing a duck duck duck originating from a first area, and
(b1) collecting native ducks in a second area which is remote from the first area and in which native mating can not occur between native ducks;
(b2) sorting the native ducks collected in the second area according to native duck selection criteria to secure a group of blackish brown native ducks; And
(b3) a step of crossing the black brown native duck obtained in the step (b2) to establish the species B duck, and securing the duck native duck originating from the second region,
(c) crossing the A-species duck and the B-species duck
How to produce our new taste duck duck.
제1항에 있어서, 상기 A 계통 및 B 계통의 종오리를 확립하기 위한 선별기준은 외모가 흑갈색이고, 4주령 때의 체중이 1000 g 이상인 것을 특징으로 신품종 우리맛오리를 생산하는 방법. [3] The method according to claim 1, wherein the selection criteria for establishing the longitudinal ducks of the A-line and the B-line are blackish-brown in appearance and have a body weight of 1000 g or more at 4 weeks of age. 제1항에 있어서, 상기 제1지역은 장성 지역이고, 상기 제2지역은 함평 지역인 것을 특징으로 하는 방법.2. The method of claim 1, wherein the first area is a wall area and the second area is a hamping area. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항의 방법에 의해 생산된, 신품종 우리맛오리.A new variety produced by the method of any one of claims 1 to 3. 제4항에 있어서, 상기 우리맛오리는 가슴육에 포함된 전체 지방산 중에서 아라키돈산의 함량이 지방산 총 중량 대비 6 내지 10 중량%인 것을 특징으로 하는 신품종 우리맛오리.[Claim 5] The method according to claim 4, wherein the flavored duck meat comprises 6 to 10% by weight of arachidonic acid in the total fatty acids contained in the breast meat, based on the total weight of fatty acids. 제4항에 있어서, 상기 우리맛오리는 보수력(%)이 40% 이상인 것을 특징으로 하는 신품종 우리맛오리.[Claim 5] The novelty taste duck according to claim 4, wherein the taste duck has a water holding capacity (%) of not less than 40%. 제4항에 있어서, 상기 우리맛오리는 부리의 색깔이 황색, 흑색 또는 청동색이고; 수컷의 머리는 번식기에 청동색을 띄며; 비번식 계절에는 흑색, 갈색 또는 흑갈색을 띄고; 암컷의 머리는 흑색, 갈색 또는 흑갈색을 띄며; 눈은 둥글고 색깔은 흑색 및/또는 갈색을 띄고; 목은 두부에서 등쪽으로 이행되어 있고; 숫오리에서 머리와 목의 경계지점에 흰색의 띠가 있을 수 있으며 목의 색깔은 갈색이고; 날개의 깃털에서 바깥쪽은 갈색이나 안쪽은 백색을 띄우며; 등은 목에서 꼬리 부분으로 이행되어 있고 색깔은 갈색 및/또는 흑색을 띄고 있고; 꼬리의 색깔은 대체로 흑색 및/또는 갈색을 띄고; 꼬리 끝은 말려 올라가 있고; 몸통은 매끈하고 둥근 형태이고; 피부는 밝은 회색이나 옅은 흑갈색을 띄고 있으며; 가슴은 흑갈색 및/또는 회백색을 띄고 있고; 발가락은 4개로 황색 및/또는 흑색이며; 발가락 사이에는 물갈퀴가 있는 것을 특징으로 하는 신품종 우리맛오리.5. The method of claim 4, wherein the weed duck has a yellow, black or bronze color of the beak; The head of the male is bronze colored at the breeding season; It is black, brown or dark brown in the non-season; The head of a female is black, brown or dark brown; The eyes are round and the color is black and / or brown; Neck is shifted from head to back; The male duck may have a white band at the border of the head and neck, and the neck color is brown; The feathers of the wing are brown on the outside and white on the inside; The back is transited from neck to tail, the color is brown and / or black; The color of the tail is generally black and / or brown; The tip of the tail is curled up; The trunk is smooth and rounded; The skin is light gray or light dark brown; The chest is dark brown and / or grayish white; Four toes are yellow and / or black; There is a webbed between the toes. CAUD111, AMU68, APH04, APH08, CAUD005, AMU3, CAUD069, CAUD086, APH20, CAUD066, APH24, CAUD040, 및 CAUD048 으로 이루어진 초위성체 유전자좌 각각에 특이적으로 결합하는 프라이머 세트를 포함하는 우리맛오리 개체 식별용 마커 조성물.A locus for identification of our taste duck object comprising a primer set that specifically binds to each of the supersatellite loci consisting of CAUD111, AMU68, APH04, APH08, CAUD005, AMU3, CAUD069, CAUD086, APH20, CAUD066, APH24, CAUD040, Composition. 제8항에 따른 마커 조성물을 포함하는 우리맛오리 개체 식별용 키트. 9. A kit for identifying a taste bud of a mussels comprising the marker composition according to claim 8.
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