KR20150090107A - 중피종의 치료 방법 - Google Patents

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세이지 야노
유스케 마치노
유이 스즈키
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도쿠리츠다이가쿠호징 가나자와다이가쿠
교와 핫꼬 기린 가부시키가이샤
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Abstract

본 발명은, 강글리오시드 GM2 항원에 결합하는 항체를 이용한 치료 방법 및 진단 방법, 및 강글리오시드 GM2 항원에 결합하는 항체를 유효 성분으로서 함유하는 치료제 및 진단제에 관한 것이다.

Description

중피종의 치료 방법{THERAPEUTIC METHOD FOR MESOTHELIOMA}
본 발명은, 강글리오시드 GM2 항원에 결합하는 항체를 이용한 치료 방법 및 진단 방법에 관한 것이다. 본 발명은 또한 강글리오시드 GM2 항원에 결합하는 항체를 유효 성분으로서 함유하는 치료제 및 진단제에 관한 것이다.
강글리오시드는, 세포 밖의 시알산을 포함하는 당쇄 부분과 지질 이중층 중의 세라미드로 이루어지는 당지질의 일종으로, 그 발현 패턴은, 세포의 종류, 기관 및 동물종에 따라 여러가지이다(비특허문헌 1). 강글리오시드는, 세포간 인식, 세포외 기질과의 상호 작용을 통해 세포 증식, 분화의 제어 등의 여러가지 생물학적 기능을 갖고 있는 것이 밝혀져 있다(비특허문헌 2 및 3).
또한, 강글리오시드는, 시알산의 결합형, 결합수, 및 비환원 말단에 결합하는 N-아세틸갈락토사민(GalNAc) 및 갈락토오스(Gal)의 유무에 의해 분류된다. GM2는, GalNAcβ1-4(SAα2-3)Galβ1-4Glcβ1-1 세라미드의 당쇄 구조를 갖는 강글리오시드 중 하나이다.
강글리오시드의 발현은, 암세포의 진행에 따라, 양적으로 또한 질적으로 변화하는 것이 보고되어 있다(비특허문헌 4). GM2는, 정상 세포에서 거의 발현이 확인되지 않지만, 폐암, 신경아종, 신경교종 등의 종양에서의 고발현이 또한 알려져 있다(비특허문헌 4 및 5). 그 때문에, GM2는 암 치료 항체의 매력적인 표적 항원으로 생각되고 있다.
중피종(mesothelioma)은, 피복 세포종 또는 장막 세포종(mesothelial tumor)이라고도 불리며, 중배엽을 기원으로 하는 중피(흉막, 복막, 심막 등)로부터 발생하는 종양이고, 국한성의 양성 종양과 미만성 악성 종양으로 분류된다. 이 중 흉막에 발생하여 악성인 것이, 악성 흉막 중피종(malignant plural mesothelioma ; MPM, 이하 MPM이라고 약기하는 경우가 있음)이다.
MPM은 흉강에 존재하는 중피 세포로부터 발생하는 암으로, 증식이 빠르고, 흉수가 확인되는 경우도 많다(비특허문헌 6). MPM에서는 호흡 곤란이나 숨이 참, 흉통과 같은 소견이 확인되어, 환자의 삶의 질(Quality of Life ; QOL)의 저하를 가져온다. MPM을 야기하는 원인 물질로는, 석면, 철 및 원숭이 바이러스 40(SV40) 등이 알려져 있다(비특허문헌 7 및 8).
특히, 석면에 대한 노출은 MPM의 발증과 깊이 관련되어 있는 것으로 여겨지며, 석면 노출력이 있는 사람은 MPM 발증 리스크가 현저히 높은 것이 알려져 있다. 1970년부터 1980년에 걸쳐, 일본에는 대량의 석면이 수입되어 사용되어 왔다(비특허문헌 9). 석면의 노출로부터 MPM 발생까지의 잠복 기간은 30 내지 40년으로 생각되고 있는 점에서, 2010년부터 2020년에 걸쳐, 일본에서의 MPM의 이환율은 급격히 증가할 것이 예상되고 있다.
MPM의 유일한 치료법은 발증 초기의 암의 절제이지만, 임상 현장에서는 진행된 단계에서 발견되는 경우가 많다. 또한, MPM은 통상의 화학 요법이나 방사선 요법이 듣지 않아, 발병으로부터의 평균 생존 기간은 약 1년으로 예후가 매우 나쁘다. 그 때문에, 본 질환의 예후를 개선시키는 치료 방법이 요구되고 있다.
비특허문헌 1 : J. Neurochem., 10,613(1963) 비특허문헌 2 : Curr. Opin. Immunol., 3,646(1991) 비특허문헌 3 : Biochem. Biophys. Res. Commun., 192,214(1993) 비특허문헌 4 : Cancer Res., 45,2405(1985) 비특허문헌 5 : Cancer Res., 50,7444(1990) 비특허문헌 6 : Cancer Sci., 97,183(2006) 비특허문헌 7 : Cell Mol. Biol., 17,657(1997) 비특허문헌 8 : Am. J. Respir. Crit. Care Med., 153,711(1996) 비특허문헌 9 : Industrial Health, 39,65(2001)
중피종의 치료법은 발증 초기의 암의 절제이다. 그러나, 임상 현장에서는 진행된 단계에서 발견되는 경우가 많고, 중피종은 통상의 화학 요법 및 방사선 요법에 잘 반응하지 않는다. 따라서, 예후를 개선시키는 치료 방법, 치료제 및 진단 방법이 요구되고 있다.
따라서, 본 발명은, 중피종의 진단 및 치료에 유효하여, 중피종 환자의 예후를 개선할 수 있는 치료법, 치료제 및 진단 방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 발명은, 이하의 (1)∼(13)에 관한 것이다.
(1) 강글리오시드 GM2에 결합하는 항체 또는 이의 단편을 유효 성분으로서 포함하는, 중피종의 치료제 또는 진단제.
(2) 상기 중피종이, 흉막 중피종, 복막 중피종 및 심막 중피종으로부터 선택되는 어느 하나의 중피종인, (1)에 기재된 치료제 또는 진단제.
(3) 상기 흉막 중피종 또는 복막 중피종이, 악성 흉막 중피종 또는 악성 복막 중피종인, (2)에 기재된 치료제 또는 진단제.
(4) 상기 항체가, GM2의 α2-3 결합된 시알산(SA)에 결합하는 항체인, (1)∼(3) 중 어느 하나에 기재된 치료제 또는 진단제.
(5) 상기 항체가, 모노클로날 항체인, (1)∼(4) 중 어느 하나에 기재된 치료제 또는 진단제.
(6) 상기 항체가, 재조합 항체인, (1)∼(5) 중 어느 하나에 기재된 치료제 또는 진단제.
(7) 상기 재조합 항체가, 키메라 항체, 인간화 항체 및 인간 항체로부터 선택되는 어느 하나의 항체인, (6)에 기재된 치료제 또는 진단제.
(8) 상기 항체가, 각각 서열 번호 1∼3의 아미노산 서열을 포함하는 중쇄(이하, "H쇄")의 상보성 결정 영역(complementarity determining region ; CDR, 이하 "CDR"이라고 약기함) 1∼3 및 각각 서열 번호 4∼6의 아미노산 서열을 포함하는 경쇄(이하, "L쇄") CDR 1∼3을 포함하는 항체인, (1)∼(7) 중 어느 하나에 기재된 치료제 또는 진단제.
(9) 상기 항체가,
서열 번호 7의 아미노산 서열을 포함하는 H쇄 가변 영역(이하, "VH"라고 기재함) 및 서열 번호 8의 아미노산 서열을 포함하는 L쇄 가변 영역(이하, "VL"이라고 기재함)을 포함하는 항체;
서열 번호 7의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 9의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 항체;
서열 번호 10의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 8의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 항체; 및
서열 번호 10의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 11의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 항체
로부터 선택되는 어느 하나의 항체인, (1)∼(8) 중 어느 하나에 기재된 치료제 또는 진단제.
(10) 적어도 하나의 병용제(combination drug)를 포함하는, (1)∼(9) 중 어느 하나에 기재된 치료제 또는 진단제.
(11) 상기 병용제가 화학 요법제 및 단백질 의약(protein drug)으로부터 선택되는 적어도 하나인, (10)에 기재된 치료제 또는 진단제.
(12) 강글리오시드 GM2에 결합하는 항체 또는 이의 단편을 유효 성분으로서 이용하는, 중피종의 치료 방법 또는 진단 방법.
(13) 중피종의 치료제를 제조하기 위한, 강글리오시드 GM2에 결합하는 항체 또는 이의 단편의 용도.
본 발명에 의하면, 항강글리오시드 GM2 항체를 유효 성분으로서 포함하는 진단제 및 치료제에 의해, GM2 양성 중피종 환자를 진단 및 치료함으로써, 중피종 환자의 예후를 개선할 수 있다.
도 1은, 악성 중피종 세포주에서 GM2 발현을 플로우 사이토메트리로 해석한 히스토그램의 결과를 도시한다. 횡축은 GM2 발현량, 종축은 세포수를 나타낸다. 또한, 흑선 및 회색 히스토그램은, 각각 항GM2 항체 및 음성 대조 항체를 반응시켰을 때의 히스토그램이다.
도 2의 (a) 및 (b)는, 악성 중피종 세포주 MSTO-211H에 대한 항GM2 항체의 ADCC 활성을 평가한 결과를 도시한다. 종축은 세포 상해 활성(%), 횡축은 항체 농도(㎍/mL)를 나타낸다. ●는 항GM2 항체를 작용시킨 경우, ○는 음성 대조 항체(항DNP 항체)를 작용시킨 경우를 나타낸다. PBMC 도너 A[도 2의 (a)] 및 도너 B[도 2의 (b)]의 2명의 결과를 나타낸다.
도 3은, 악성 중피종 세포주 MSTO-211H를 이용한 SCID 마우스 동소 이식 모델에서의 항GM2 항체의 항종양 효과를 평가한 결과를 도시한다. 종축은 흉부 종양의 질량(mg), 횡축은 투여한 샘플의 종류를 나타낸다. ●는 개체의 흉부 종양의 질량(mg)을 나타내고, 가로 막대는 평균치를 나타내고 있다. 통계적 유의차는 더넷(Dunnett)의 다중 비교 검정에 의해 구했다.
도 4는, 인간 악성 중피종 조직의 도너 정보를 개시한다. 좌측으로부터, 샘플 ID, 연령, 성별, 유래 조직(또는 발견 조직), 병리 분류에 의한 병형, TNM(tumor-node-metastasis) 분류, 미니멈 스테이지 그루핑, 정상 조직 %, 병변 부위 %, 종양 조직 %, 종양/다세포 스트로마 %, 종양/저세포 또는 무세포 스트로마 % 및 괴사 %를 나타낸다.
본 발명은, 항강글리오시드 GM2 항체를 유효 성분으로서 포함하는 중피종의 치료제 및 진단제, 항강글리오시드 GM2 항체를 중피종 환자에게 투여하는 것을 포함하는 치료 방법, 및 항강글리오시드 GM2 항체를 이용한 중피종 환자의 진단 방법에 관한 것이다.
본 발명에 있어서 "중피종"은, 피복 세포종 및 장막 세포종(mesothelial tumor)이라고도 불리며, 중배엽을 기원으로 하는 중피(예컨대, 흉막, 복막 및 심막 등)로부터 발생하는 모든 종양을 말한다. 중피종은 조직형에 따라, 국한성의 양성 종양과 미만성 악성 종양으로 분류되지만, 어느 종양이나 본 발명에 따른 중피종의 정의에 포함된다.
중피종 중 흉막 원발의 종양을, 흉막 중피종(pleural mesothelioma)이라고 하며, 악성의 종양을 MPM이라고 한다. 복막 원발의 경우에는, 복막 중피종이라고 한다.
본 발명에 있어서 "강글리오시드 GM2"는, GalNAcβ1-4(SAα2-3)Galβ1-4Glcβ1-1 세라미드의 구조를 갖는 글루코실세라미드를 지칭하고, 간단히 "GM2"라고 기재하는 경우도 있다. GalNAc는 N-아세틸글루코사민, Gal은 갈락토오스, Glc는 글루코오스, SA는 시알산을 나타낸다.
본 발명에 이용되는 항GM2 항체로는, GalNAcβ1-4(SAα2-3)Galβ1-4Glcβ1-1 세라미드 구조의 α2-3 결합된 시알산(SA)을 포함하는 에피토프에 결합하는 항GM2 항체, 상기 에피토프에 결합하여 이펙터 활성을 갖는 항GM2 항체, 및 중피종 환자의 흉수 산생을 억제하는 항체 등을 들 수 있다.
또한, 전술한 항체로부터 선택되는 어느 하나의 항체와 경합하여 GM2에 결합하는 항체, 전술한 항체가 결합하는 에피토프와 동일한 에피토프에 결합하는 항체 및 상기 항체 단편 등을 들 수 있다.
본 발명에 이용되는 항체로서 구체적으로는 하기 항체들 중 임의의 항체일 수 있다:
일본 특허 공개 평4-311385호 공보에 기재된 마우스 모노클로날 항체 KM750 및 마우스 모노클로날 항체 KM796;
Cancer Res., 46,4116(1986)에 기재된 모노클로날 항체 MoAb5-3;
Cancer Res., 48,6154(1988)에 기재된 모노클로날 항체 MK1-16, 및 모노클로날 항체 MK2-34;
J. Biol. Chem., 264,12122(1989)에 기재된 모노클로날 항체 DMAb-1;
국제 공개 제2003/049704호 및 국제 공개 제04/53102호에 기재된 키메라 항체 DMF 10.167.4 항체 및 키메라 항체 ChGM2;
일본 특허 공개 평10-257893호 공보에 기재된, 형질 전환주 KM8966(FERM BP-5105)이 생산하는 KM8966, 형질 전환주 KM8967(FERM BP-5106)이 생산하는 KM8967, 형질 전환주 KM8969(FERM BP-5527)가 생산하는 KM8969 및 형질 전환주 KM8970(FERM BP-5528)이 생산하는 KM8970;
각각 서열 번호 1∼3의 아미노산 서열을 포함하는 H쇄 CDR 1∼3 및 각각 서열 번호 4∼6의 아미노산 서열을 포함하는 L쇄 CDR 1∼3을 포함하는 항체;
서열 번호 7의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 8의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 항체;
서열 번호 7의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 9의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 항체;
서열 번호 10의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 8의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 항체; 및
서열 번호 10의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 11의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 항체.
또한, 전술한 항체와 경합하여 GM2에 결합하는 항체, 및 전술한 항체가 결합하는 에피토프와 동일한 에피토프에 결합하는 항체도 본 발명에 이용할 수 있다.
본 발명에 이용되는 항GM2 항체로는, 모노클로날 항체, 올리고클로날 항체, 폴리클로날 항체의 어느것이든 좋지만, 바람직하게는 단일의 에피토프에 결합하는 모노클로날 항체를 들 수 있다.
본 발명에 이용되는 모노클로날 항체는, 하이브리도마로부터 생산되는 모노클로날 항체여도 좋고, 유전자 재조합 기술에 의해 제작된 유전자 재조합 항체여도 좋다. 인간에 있어서 면역원성을 저하시키기 위해, 인간형 키메라 항체(이하, 간단히 "키메라 항체"라고도 함), 인간화 항체[인간형 상보성 결정 영역 (CDR) 이식 항체라고도 함] 및 유전자 재조합 기술을 이용하여 생산된 인간 항체를 이용하는 것이 바람직하다.
본 발명에 이용되는 항체로는, 앞서 언급한 항체 중, 인간화 항체 및 인간 항체가 적합하게 이용된다.
키메라 항체는, 인간 이외의 동물의 항체의 VH 및 VL과, 인간 항체의 중쇄 불변 영역(이하, "CH"라고 약기함) 및 경쇄 불변 영역(이하, "CL"이라고 약기함)으로 이루어지는 항체이다. 가변 영역에 관한 동물의 종류는, 마우스, 래트, 햄스터 또는 토끼 등의 하이브리도마를 제작할 수 있는 동물이면 특별히 한정되지 않는다.
인간형 키메라 항체는, GM2에 특이적으로 결합하는 인간 이외의 동물의 항체의 VH 및 VL을 코드하는 cDNA를 취득하고, 인간 항체의 CH 및 CL을 코드하는 유전자를 갖는 발현 벡터에 각각 삽입하여 인간형 키메라 항체 발현 벡터를 구축하고, 동물 세포에 도입하여 발현시킴으로써 제작할 수 있다. 인간형 키메라 항체의 CH는, 인간 면역글로불린(이하, "hIg"라고 약기함)이면 특별히 한정되지 않지만, hIgG 클래스의 것이 바람직하다. 인간형 키메라 항체의 CL은, hIgG에 속하면 특별히 한정되지 않는다.
인간화 항체는, 인간 이외의 동물의 항체의 VH 및 VL의 상보성 결정 영역(이하, "CDR"이라고 약기함)을 인간 항체의 VH 및 VL의 적절한 위치에 이식한 항체이다. 인간형 CDR 이식 항체는, GM2에 특이적으로 결합하는 인간 이외의 동물의 항체의 VH 및 VL의 CDR을 임의의 인간 항체의 VH 및 VL의 프레임워크(이하, "FR"이라고 약기함)에 이식한 V 영역을 코드하는 cDNA를 구축하고, 인간 항체의 CH 및 CL을 코드하는 DNA를 갖는 발현 벡터에 각각 삽입하여 인간화 항체 발현 벡터를 구축하고, 동물 세포에 도입하여 발현시킴으로써 제작될 수 있다. 인간 항체의 VH 및 VL의 FR의 아미노산 서열은, 인간 항체 유래의 아미노산 서열이면 특별히 한정되지 않는다.
인간화 항체의 CH는, hIg이면 특별히 한정되지 않지만, hIgG 클래스의 것이 바람직하다. 인간화 항체의 CL은, hIg에 속하면 특별히 한정되지 않는다.
본 발명에 이용되는 인간화 항체로서 구체적으로는 하기 항GM2 항체의 CDR의 아미노산 서열, 또는 이들 항체의 VH 및 VL의 아미노산 서열을 갖는 인간화 항체를 포함할 수 있다:
일본 특허 공개 평4-311385호 공보에 기재된 마우스 모노클로날 항체 KM750, 및 마우스 모노클로날 항체 KM796;
Cancer Res., 46,4116(1986)에 기재된 모노클로날 항체 MoAb5-3;
Cancer Res., 48,6154(1988)에 기재된 모노클로날 항체 MK1-16, 및 모노클로날 항체 MK2-34;
J. Biol. Chem., 264,12122(1989)에 기재된 모노클로날 항체 DMAb-1;
국제 공개 제2003/049704호 및 국제 공개 제04/53102호에 기재된 키메라 항체 DMF 10.167.4 항체 및 키메라 항체 ChGM2; 및
일본 특허 공개 평10-257893호 공보에 기재된, 형질 전환주 KM8966(FERM BP-5105)이 생산하는 KM8966, 형질 전환주 KM8967(FERM BP-5106)이 생산하는 KM8967, 형질 전환주 KM8969(FERM BP-5527)가 생산하는 KM8969 및 형질 전환주 KM8970(FERM BP-5528)이 생산하는 KM8970.
더욱 구체적인 예는 하기를 포함할 수 있다:
각각 서열 번호 1∼3의 아미노산 서열을 포함하는 H쇄 CDR 1∼3 및 각각 서열 번호 4∼6의 아미노산 서열을 포함하는 L쇄 CDR 1∼3을 포함하는 인간화 항체;
서열 번호 7의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 8의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 인간화 항체;
서열 번호 7의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 9의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 인간화 항체;
서열 번호 10의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 8의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 인간화 항체; 및
서열 번호 10의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 11의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 포함하는 인간화 항체.
본 발명의 치료제에 포함되는 항GM2 항체 단편으로는, 상기 각 항체의 단편이 포함된다. 항체 단편의 종류는 특별히 한정되지 않고, 예컨대, Fab, Fab', F(ab')2, scFv, 디아바디, dsFv 또는 CDR을 포함하는 펩티드 등을 들 수 있다.
Fab는, IgG 항체를 파파인(단백질 분해 효소)으로 처리하여 얻어지는 단편 중, 분자량 약 5만의 항원 결합 활성을 갖는 항체 단편이다. 항GM2 항체의 Fab는, 항GM2 항체를 파파인으로 처리하거나, 상기 항체의 Fab를 코드하는 DNA를 발현 벡터에 삽입하고, 이 벡터를 원핵 생물 혹은 진핵 생물에 도입하여 발현시킴으로써 제작될 수 있다.
F(ab')2는, IgG 항체를 펩신(단백질 분해 효소)으로 처리하여 얻어지는 단편 중, 분자량 약 10만의 항원 결합 활성을 갖는 항체 단편이다. 항GM2 항체의 F(ab')2는, 항GM2 항체를 펩신으로 처리하거나, Fab'(후술)를 티오에테르 결합 또는 디술피드 결합으로 결합시킴으로써 제작될 수 있다.
F(ab')는, F(ab')2의 힌지 영역의 디술피드 결합을 절단한 분자량 약 5만의 항원 결합 활성을 갖는 항체 단편이다. F(ab')는, 항체의 F(ab')2를 디티오트레이톨로 처리하거나, 상기 항체의 Fab'를 코드하는 DNA를 발현 벡터에 삽입하고, 이 벡터를 원핵 생물 또는 진핵 생물에 도입하여 발현시킴으로써 제작될 수 있다.
scFv는, 1개의 VH와 1개의 VL을 적당한 펩티드 링커를 이용하여 연결한 항원 결합 활성을 갖는 항체 단편이다. scFv는, 항체의 VH 및 VL을 코드하는 cDNA를 취득하고, scFv를 코드하는 DNA를 구축하고, 이 DNA를 발현 벡터에 삽입하고, 이 발현 벡터를 원핵 생물 또는 진핵 생물에 도입하여 발현시킴으로써 제작될 수 있다.
디아바디는, 동일하거나 상이한 항원 결합 특이성을 나타내는 scFv의 2량체화된 항체 단편으로, 동일한 항원에 대해 2가의 항원 결합 활성을 갖거나 2종의 상이한 항원에 대해 2가의 항원 결합 활성을 갖는다. 디아바디는, 항체의 VH 및 VL을 코드하는 cDNA를 취득하고, 디아바디를 코드하는 DNA를 구축하고, 이 DNA를 발현 벡터에 삽입하고, 이 발현 벡터를 원핵 생물 또는 진핵 생물에 도입하여 발현시킴으로써 제작될 수 있다.
dsFv는, VH 및 VL의 각각 1 아미노산 잔기를 시스테인 잔기로 치환한 폴리펩티드를, 시스테인 잔기 사이의 디술피드 결합을 통해 결합시킨 항체 단편이다. dsFv는, 항체의 VH 및 VL을 코드하는 cDNA를 취득하고, dsFv를 코드하는 DNA를 구축하고, 이 DNA를 발현 벡터에 삽입하고, 이 발현 벡터를 원핵 생물 또는 진핵 생물에 도입하여 발현시킴으로써 제작될 수 있다.
CDR을 포함하는 펩티드는, VH 또는 VL의 CDR의 적어도 1 영역 이상을 포함하는 펩티드이다. 항체의 CDR을 포함하는 펩티드는, 항체의 VH 및 VL의 CDR을 코드하는 DNA를 구축하고, 이 DNA를 발현 벡터에 삽입하고, 이 발현 벡터를 원핵 생물 또는 진핵 생물에 도입하여 발현시킴으로써 제작될 수 있다.
또한, CDR을 포함하는 펩티드는, Fmoc법(플루오레닐메틸옥시카르보닐법) 또는 tBoc법(t-부톡시카르보닐법) 등의 화학 합성법에 의해서도 제작할 수 있다.
본 발명에 있어서 이용되는 항GM2 항체는, 이펙터 활성을 갖고 있다. 본 발명에 있어서 "이펙터 활성"이란, 항체의 Fc 영역을 통해 야기되는 활성을 말하며, 항체 의존성 세포 상해 활성(ADCC 활성), 보체 의존성 상해 활성(CDC 활성), 및 대식세포 혹은 수지상 세포 등의 식세포에 의한 항체 의존성 파고사이토시스(Antibody-dependent phagocytosis, ADP 활성) 등이 알려져 있다.
이펙터 활성을 제어하는 방법으로는, 예컨대, 항체의 Fc 영역의 EU 인덱스(Kabat et al, Sequence of Proteins of immunological interests, 5th edition, 1991)에 따라 297번째의 아스파라긴(Asn)에 결합하는 N 결합 복합형 당쇄의 환원 말단에 존재하는 N-아세틸글루코사민(GlcNAc)에 α1-6 결합하는 푸코오스(코어 푸코오스라고도 함)의 양을 제어하는 방법(국제 공개 제2005/035586호, 국제 공개 제2002/31140호, 국제 공개 제00/61739호), 및 항체의 Fc 영역의 아미노산 잔기를 개변함으로써 제어하는 방법 등을 들 수 있다.
항체의 Fc 영역에 결합하고 있는 N 결합 복합형 당쇄의 코어 푸코오스의 함량을 제어함으로써, 항체의 이펙터 활성을 증가 또는 저하시킬 수 있다. 항체의 Fc 영역에 결합하고 있는 N 결합 복합형 당쇄에 결합하는 푸코오스의 함량을 저하시키는 방법으로는, α1,6-푸코오스 전이 효소 유전자(fucosyltransferase-8, FUT8)가 결손한 CHO 세포를 이용하여 항체를 발현시킴으로써, 항체의 Fc 영역에 결합하고 있는 N 결합 복합형 당쇄에 코어 푸코오스가 결합하고 있지 않은 항체(이하, "푸코오스가 결합하고 있지 않은 항체"라고 함)를 취득할 수 있다. 따라서, 본 발명에서 이용되는 항GM2 항체는, 코어 푸코오스가 저하 또는 결합하고 있지 않은 것이 바람직하다.
푸코오스가 결합하고 있지 않은 항체는 높은 ADCC 활성을 갖는다. 한편, 항체의 Fc에 결합하고 있는 N 결합 복합형 당쇄에 결합하는 푸코오스의 함량을 증가시키는 방법으로는, α1,6-푸코오스 전이 효소 유전자를 도입한 숙주 세포를 이용하여 항체를 발현시킴으로써, 푸코오스가 결합하고 있는 항체를 취득할 수 있다. 푸코오스가 결합하고 있는 항체는, 푸코오스가 결합하고 있지 않은 항체보다 낮은 ADCC 활성을 갖는다.
또한, 항체의 Fc 영역의 아미노산 잔기를 개변함으로써 ADCC 활성 또는 CDC 활성을 증가 또는 저하시킬 수 있다. Fc 영역의 아미노산 잔기 개변을 행함으로써, FcγR에 대한 결합 활성을 증가시키거나 또는 저하시킴으로써 ADCC 활성을 제어할 수 있고, Fc 영역의 아미노산 잔기 개변을 행함으로써, 보체의 결합 활성을 증가시키거나 또는 저하시킴으로써 CDC 활성을 제어할 수 있다.
예컨대, 미국 출원 공개 제2007-0148165호 명세서 및 미국 출원 공개 제2012-0010387호 명세서에 기재된 Fc 영역 또는 CH의 아미노산 서열을 이용함으로써, 항체의 CDC 활성을 증가시킬 수 있다. 또한, 미국 특허 제6,737,056호 명세서, 미국 특허 제7,297,775호 명세서, 미국 특허 제7,317,091호 명세서 및 국제 공개 제2005/070963호에 기재된 아미노산 잔기 개변을 행함으로써, ADCC 활성 또는 CDC 활성을 증가시킬 수도 있고 저하시킬 수도 있다.
본 발명의 치료제는, 중피종 환자에게 투여되면, 유효 성분으로서 포함되는 항GM2 항체가 중피종 세포에 발현되는 GM2에 특이적으로 결합한 결과, 중피종 세포의 세포 증식 억제 효과, 흉수 산생의 억제 효과 및 자연 살해 세포(NK 세포)를 비롯한 이펙터 세포에 의한 ADCC 활성을 유도하는 효과 등의 항종양 효과를 발휘함으로써, 중피종 환자를 치료할 수 있다. 따라서, 본 발명의 치료제로는, 항GM2 항체를 유효 성분으로서 포함하는 중피종 치료제를 들 수 있다.
본 발명의 중피종 치료제로는, 항GM2 항체를 유효 성분으로서 포함하는 치료제이면 어떠한 것이어도 좋지만, 통상은 약리학적으로 허용되는 하나 또는 그 이상의 담체와 함께 혼합하고, 약제학 기술 분야에서 잘 알려져 있는 임의의 방법에 의해 제조한 의약 제제로서 제공하는 것이 바람직하다.
바람직하게는 수용액 등의 수성 담체(예를 들면, 물, 또는 식염, 글리신, 글루코오스, 인간 알부민 등)에 항체를 용해한 무균 용액이 이용된다. 또한, 제제 용액을 생리적 조건에 근접시키기 위한 완충화제 또는 등장화제와 같은, 약리학적으로 허용되는 첨가제(예컨대, 아세트산나트륨, 염화나트륨, 젖산나트륨, 염화칼륨, 시트르산나트륨 등)를 첨가할 수도 있다. 또한, 동결 건조시켜 저장할 수 있다. 필요하다면, 사용시에 적당한 용매에 용해시켜 이용할 수도 있다.
본 발명의 치료제의 투여 경로는, 치료시에 가장 효과적인 것을 사용하는 것이 바람직하고, 예컨대, 경구 투여, 및 구강내, 기도내, 직장내, 피하, 근육내, 수강내 및 정맥내 등의 비경구 투여를 들 수 있다. 이들 중에서도, 수강내 투여 또는 정맥내 투여가 바람직하다.
경구 투여에 적당한 제제로는, 예컨대, 유제, 시럽제, 캡슐제, 정제, 산제 및 과립제 등을 들 수 있다. 예컨대, 유제 및 시럽제와 같은 액체 조제물은, 물, 자당, 소르비톨 혹은 과당 등의 당류, 폴리에틸렌글리콜 혹은 프로필렌글리콜 등의 글리콜류, 호마유, 올리브유 혹은 대두유 등의 오일류, p-히드록시벤조산에스테르류 등의 방부제, 또는 스트로베리 플레이버 혹은 페퍼민트 등의 플레이버류 등을 첨가제로서 이용하여 제조할 수 있다. 캡슐제, 정제, 산제 또는 과립제 등은, 젖당, 포도당, 자당 혹은 만니톨 등의 부형제, 전분 혹은 알긴산나트륨 등의 붕괴제, 스테아르산마그네슘 혹은 탈크 등의 활택제, 폴리비닐알콜, 히드록시프로필셀룰로오스 혹은 젤라틴 등의 결합제, 지방산에스테르 등의 계면 활성제, 또는 글리세린 등의 가소제 등을 첨가제로서 이용하여 제조할 수 있다.
비경구 투여에 적당한 제제로는, 예컨대, 주사제, 좌제 및 분무제 등을 들 수 있다. 예컨대, 주사제는, 염 용액 혹은 포도당 용액, 또는 양자의 혼합물로 이루어지는 담체 등을 이용하여 조제한다. 좌제는 카카오 버터, 수소화 지방 또는 카르복실산 등의 담체를 이용하여 조제된다.
또한, 분무제는 상기 항체 자체, 내지는 수용자의 구강 및 기도 점막을 자극하지 않으며, 또한 상기 항체를 미세한 입자로서 분산시켜 흡수를 용이하게 하는 담체 등을 이용하여 조제한다. 담체로서 구체적으로는 젖당, 글리세롤 등이 예시된다. 상기 항체 및 이용하는 담체의 성질에 따라, 에어로졸, 드라이 파우더 등의 제제가 가능하다. 또한, 이들 비경구제에 있어서도 경구제에서 첨가제로서 예시한 성분을 첨가할 수도 있다.
본 발명의 치료제의 투여량 또는 투여 횟수는, 목적으로 하는 치료 효과, 투여 방법, 치료 기간, 연령, 체중 등에 따라 상이하지만, 통상 성인의 경우 1일당 1 ㎍/kg∼10 mg/kg이다.
본 발명의 치료제로는, 본 발명에 사용되는 항GM2 항체와 적어도 하나의 병용제를 포함하는 치료제도 포함된다.
병용제로는, 예컨대, 화학 요법제 및 단백질 의약 등을 들 수 있다.
화학 요법제로는, 예컨대, 독소루비신, 리포소멀 독소루빈, 시스플라틴, 카르보플라틴, 빈크리스틴, 플루다라빈, 젬시타빈, 페메트렉시드, 살리도마이드, 레날리도마이드, 포말리도마이드 등을 들 수 있다. 이들 중에서도, 시스플라틴 또는 페메트렉시드가 바람직하다.
또한, 예컨대, 혈관 신생에 관한 티로신 키나아제를 저해하는 E7080도 병용제로서 사용할 수 있다.
단백질 의약으로는, 예컨대, 시토킨, 항체 등을 들 수 있다.
시토킨으로는, 예컨대, 면역 담당 세포인 NK 세포, 대식세포, 단구 및 과립구 등의 이펙터 세포를 활성화하는 시토킨, 및 상기 시토킨의 유도체 등을 들 수 있다.
구체적인 시토킨으로는, 예컨대, 인터류킨-2(IL-2), 인터페론(IFN)-α, IFN-γ, IL-12, IL-15, IL-18, IL-21, 프랙탈카인(fractalkine), 대식세포-콜로니 자극 인자(M-CSF), GM-CSF, G-CSF, 종양 괴사 인자(TNF)-α, TNF-β, IL-1α 및 IL-1β 등을 들 수 있지만, IFN-γ가 바람직하다.
항체로는, 본 발명에 이용되는 GM2에 특이적으로 결합하는 유전자 재조합 항체가 표적으로 하는 중피종에 대한 치료 항체, 혈관 신생 저해 항체 혹은 면역 활성을 부활시키는 항체, 또는 이들의 항체 단편 혹은 융합 항체 등을 들 수 있다.
구체적으로는, 예컨대, 항CD40 항체(예컨대 SGN-40, HCD122 등), 항VEGF 항체(베바시주맙(bevacizumab) 등), 항IL-6R 항체(일본 특허 제651541호 명세서), 항IL-6 항체(CNTO328), 항CTLA4 항체(이필리무맙(ipilimumab) 등), 항CCR4 항체(모가무리주맙(mogamulizumab) 등) 등을 들 수 있다.
본 발명의 항체 또는 상기 항체 단편으로는, 전술한 병용 가능한 약제와 콘주게이트한 항체 또는 상기 항체 단편을 들 수 있다.
본 발명의 치료제는, GM2를 발현하고 있는 중피종이면, 중피종이 발현되는 조직, 양성 및 악성을 불문하고 치료에 이용할 수 있다. 본 발명에 있어서, 항GM2 항체를 유효 성분으로서 포함하는 중피종의 치료제와 전술한 병용제를 동시 또는 별도로 투여하는 병용 요법도 본 발명에 포함된다.
또한, 본 발명은, 항GM2 항체를 유효 성분으로서 투여하는 것을 포함하는 중피종 환자의 치료 방법도 포함된다. 본 발명의 중피종 환자의 치료 방법은, 항GM2 항체를 유효 성분으로서 중피종 환자에게 투여함과 동시 또한 별도로, 전술한 적어도 하나의 병용제를 중피종 환자에게 투여하는 것을 포함하는 중피종 환자의 치료를 위한 병용 요법도 포함된다. 병용 요법은, 항GM2 항체와 병용제 중 어느 것을 먼저 또는 나중에 투여해도 좋고, 중피종 환자의 병기, 병상에 맞춰 적절히 결정할 수 있다.
본 발명의 중피종의 치료 방법은, 항GM2 항체가 GM2를 발현하는 중피종 세포에 특이적으로 결합한 결과, 중피종 세포 증식 및 흉수 산생을 억제할 수 있다. 또한, 본 발명의 중피종의 치료 방법은, 항GM2 항체가 GM2를 발현하는 중피종 세포에 특이적으로 결합한 결과, 환자 체내에 존재하는 자연 살해 세포(NK 세포)를 비롯한 이펙터 세포를 통한 ADCC 활성에 의한 중피종 세포의 세포 상해 유도, 중피종 세포의 세포 증식 억제, 및 흉수의 산생 억제를 할 수 있다.
따라서 본 발명에는, 항GM2 항체를 이용한 중피종 세포의 증식 억제 방법, 중피종 세포의 세포 상해 유도 방법 및 흉수 산생의 억제 방법도 포함된다.
본 발명의 치료 방법 및 치료제의 효과는, 동물 모델을 이용한 생체 내 항종양 활성을 측정함으로써 조사할 수 있다.
동물 모델로는, 예컨대, 인간 암조직 유래의 배양 세포주를 마우스에 이식한 이종 이식 모델을 들 수 있다. 이종 이식 모델은 SCID 마우스 등의 면역 부전 마우스의 피하, 피내, 흉강내, 심막내, 복강내 또는 정맥내 등 여러가지 부위에 인간 암세포주를 이식함으로써 제작할 수 있다.
상기 동물 모델을 이용하여 항체의 단독 투여의 효과, 병용제와의 병용 투여의 효과 등, 본 발명의 치료제의 효과를 평가할 수 있다.
본 발명은, 항GM2 항체를 이용한 중피종의 진단 방법도 포함된다. 항GM2 항체 또는 상기 항체 단편을 이용하여, GM2, GM2가 발현된 세포 및/또는 조직을 검출 또는 측정함으로써, GM2가 관여하고 있는 중피종 환자를 진단할 수 있다.
우선, 복수의 정상인의 생체로부터 채취한 생체 샘플에 관해, 항GM2 항체 또는 상기 항체 단편, 또는 이들의 유도체를 이용하고, 하기의 면역학적 수법을 이용하여, GM2의 검출 또는 측정을 행하고, 이들 정상인의 생체 샘플 중의 GM2의 존재량을 조사한다.
다음으로, 피험자의 생체 샘플 중에 관해서도 동일하게 GM2의 존재량을 조사하여, 그 존재량을 정상인의 존재량과 비교한다. 피험자의 GM2 존재량이 정상인과 비교하여 증가되어 있는 경우에는, 중피종인 것으로 진단된다.
면역학적 수법이란, 표지를 실시한 항원 또는 항체를 이용하여, 항체량 또는 항원량을 검출 또는 측정하는 방법이다. 예컨대, 방사 면역 측정법, 효소 면역 측정법, 형광 면역 측정법, 발광 면역 측정법, 웨스턴 블롯법 또는 물리 화학적 수법 등을 이용한다.
방사 면역 측정법은, 예컨대, 항원 또는 항원을 발현하는 세포 등에, 항GM2 항체 또는 상기 항체 단편을 반응시키고, 방사성 표지를 실시한 항면역글로불린 항체 또는 결합 단편을 추가로 반응시킨 후, 신틸레이션 카운터 등으로 측정한다.
효소 면역 측정법은, 예컨대, 항원 또는 항원을 발현하는 세포 등에, 항GM2 항체 또는 상기 항체 단편을 반응시키고, 표지를 실시한 항면역글로불린 항체 또는 결합 단편을 추가로 반응시킨 후, 발색을 흡광 광도계로 측정한다. 예컨대, 샌드위치 ELISA법 등을 이용한다.
효소 면역 측정법에서 이용하는 표지체로는, 공지[효소 면역 측정법, 의학서원(1987)]된 효소 표지를 이용할 수 있다. 예컨대, 알칼리포스파타아제 표지, 페록시다아제 표지, 루시페라아제 표지, 또는 비오틴 표지 등을 이용한다. 샌드위치 ELISA법은, 고상에 항체를 결합시킨 후, 검출 또는 측정 대상인 항원을 트랩시키고, 트랩된 항원에 제2 항체를 반응시키는 방법이다.
상기 ELISA법에서는, 검출 또는 측정하고 싶은 항원을 인식하는 항체 또는 항체 단편으로서, 항원 인식 부위가 상이한 2종류의 항체를 준비하고, 그 중, 제1 항체 또는 항체 단편을 미리 플레이트(예컨대, 96웰 플레이트)에 흡착시키고, 다음으로 제2 항체 또는 항체 단편을 FITC 등의 형광 물질, 페록시다아제 등의 효소, 또는 비오틴 등으로 표지해 둔다.
상기한 항체가 흡착된 플레이트에, 생체 내로부터 분리된, 세포 또는 그 파쇄액, 조직 또는 그 파쇄액, 세포 배양 상청, 혈청, 흉수, 복수, 또는 안액 등을 반응시킨 후, 표지한 모노클로날 항체 또는 항체 단편을 반응시키고, 표지 물질에 따른 검출 반응을 행한다. 농도가 이미 알려진 항원을 단계적으로 희석하여 제작한 검량선으로부터, 시험 샘플 중의 항원 농도를 산출한다.
GM2의 ELISA로는 이하와 같은 방법을 들 수 있다. GM2를 포스파티딜콜린과 콜레스테롤을 포함하는 에탄올 용액에 용해시킨다. 이 용액을 마이크로타이터 플레이트의 각 웰에 각각 나누어 주입하고, 풍건 후 소 혈청 알부민(BSA)을 포함하는 인산염 완충 식염(PBS)(이하, "BSA-PBS"라고 약기함)으로 블로킹한다. 이것에 GM2 항체를 반응시키고, 적당한 효소로 표지된 2차 항체를 추가로 반응시켜, GM2의 존재량을 확인할 수 있다.
샌드위치 ELISA법에 이용하는 항체로는, 폴리클로날 항체 또는 모노클로날 항체의 어느것을 이용해도 좋고, Fab, Fab', 또는 F(ab)2 등의 항체 단편을 이용해도 좋다.
샌드위치 ELISA법에서 이용하는 2종류의 항체의 조합으로는, 상이한 에피토프를 인식하는 모노클로날 항체 또는 항체 단편의 조합이어도 좋고, 폴리클로날 항체와 모노클로날 항체 또는 항체 단편의 조합이어도 좋다.
형광 면역 측정법은, 문헌[Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press(1996), 모노클로날 항체 실험 매뉴얼, 코단샤 사이언티픽(1987)] 등에 기재된 방법으로 측정한다. 형광 면역 측정법에서 이용하는 표지체로는, 공지[형광 항체법, 소프트 사이언스사(1983)]된 형광 표지를 이용할 수 있다. 예컨대, 형광 이소티오시아네이트(FITC), RITC, Cy3, Cy5 또는 Alexa 등을 이용한다.
발광 면역 측정법은 문헌[생물 발광과 화학 발광 임상 검사 42, 히로가와 서점(1998)] 등에 기재된 방법으로 측정한다. 발광 면역 측정법에서 이용하는 표지체로는, 공지된 발광체 표지를 들 수 있고, 아크리디늄에스테르, 또는 로핀 등을 이용한다.
웨스턴 블롯법은, 항원 또는 항원을 발현하는 세포 등을 SDS(도데실황산나트륨)-PAGE[Antibodies-A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Laboratory(1988)]로 분획한 후, 상기 겔을 폴리불화비닐리덴(PVDF)막 또는 니트로셀룰로오스막에 블로팅하고, 상기 막에 항원을 인식하는 항체 또는 항체 단편을 반응시키고, 또한 FITC 등의 형광 물질, 페록시다아제 등의 효소 표지, 또는 비오틴 표지 등을 실시한 항마우스 IgG 항체 또는 항체 단편을 반응시킨 후, 상기 표지를 가시화함으로써 측정한다. 일례를 이하에 개시한다.
GM2를 발현하는 세포 또는 조직을 용해시키고, 환원 조건하에서 레인 당 단백질 양으로서 0.1∼30 ㎍을 SDS-PAGE법에 의해 전기영동한다. 전기영동된 단백질을 PVDF막에 트랜스퍼하고 1∼10% BSA를 포함하는 PBS(이하, "BSA-PBS"라고 표기함)에 실온에서 30분간 반응시켜 블로킹 조작을 행한다.
여기서 본 발명의 모노클로날 항체를 반응시키고, 0.05∼0.1%의 Tween-20을 포함하는 PBS(이하, "Tween-PBS"라고 표기함)로 세정한 후, 페록시다아제 표지한 염소 항마우스 IgG를 실온에서 2시간 반응시킨다.
Tween-PBS로 세정하고, ECL(등록 상표) 웨스턴 블롯팅 검출 시약(아마샴사 제조) 등을 이용하여 모노클로날 항체가 결합한 밴드를 검출함으로써, GM2를 검출한다. 웨스턴 블롯팅 검출에 이용되는 항체로는, GM2에 결합할 수 있는 항체가 이용된다.
물리 화학적 수법은, 예컨대, 항원인 GM2와 항GM2 항체 또는 그 단편을 결합시킴으로써 응집체를 형성시키고, 이 응집체를 검출함으로써 행한다. 이 밖에 물리 화학적 수법으로서, 모세관법, 1차원 면역 확산법, 면역 비탁법 또는 라텍스 면역 비탁법[임상 검사법 개요, 카네하라 출판(1998)] 등을 이용할 수도 있다.
라텍스 면역 비탁법은, 항체 또는 항원을 감작시킨 입경 0.1∼1 ㎛ 정도의 폴리스티렌 라텍스 등의 담체를 이용하여, 대응하는 항원 혹은 항체에 의해 항원 항체 반응을 일으키면, 반응액 중의 산란광은 증가하고, 투과광은 감소한다. 이 변화를 흡광도 또는 적분구 탁도로서 검출함으로써 시험 샘플 중의 항원 농도 등을 측정한다.
한편, GM2가 발현되어 있는 세포의 검출 또는 측정은, 공지된 면역학적 검출법을 이용할 수 있지만, 바람직하게는 면역 침강법, 면역 세포 염색법, 면역 조직 염색법 또는 형광 항체 염색법 등을 이용한다.
면역 침강법은, GM2를 발현하는 세포 혹은 GM2를 포함하는 조직 추출액 등을 항GM2 항체 또는 그 항체 단편과 반응시킨 후, 프로테인 G-세파로오스 등의 면역글로불린에 특이적인 결합능을 갖는 담체를 첨가하여 항원 항체 복합체를 침강시킨다. 또는 이하와 같은 방법에 의해서도 행할 수 있다.
ELISA용 96웰 플레이트에 전술한 본 발명의 모노클로날 항체 또는 그 항체 단편을 고정화한 후, BSA-PBS에 의해 블로킹한다. 항체가, 예컨대 하이브리도마 배양 상청 등의 정제되지 않은 상태인 경우에는, 항마우스 면역글로불린, 항래트 면역글로불린, 프로테인-A 또는 프로테인-G 등을 미리 ELISA용 96웰 플레이트에 고정화하고, BSA-PBS로 블로킹한 후, 하이브리도마 배양 상청을 나누어 주입하여 결합시킨다.
다음으로, BSA-PBS를 버리고 PBS로 잘 세정한 후, GM2를 발현하고 있는 세포 또는 조직의 용해액을 반응시킨다. 잘 세정한 후의 플레이트로부터 면역 침강물을 SDS-PAGE용 샘플 버퍼로 추출하고, 상기한 웨스턴 블롯팅에 의해 검출한다.
면역 세포 염색법 또는 면역 조직 염색법은, 항원을 발현하는 세포 또는 조직 등을, 경우에 따라서는 항체의 통과성을 좋게 하기 위해 계면 활성제 또는 메탄올 등으로 처리한 후, 항GM2 항체와 반응시키고, 또한 FITC 등의 형광 표지, 페록시다아제 등의 효소 표지 또는 비오틴 표지 등을 실시한 항면역글로불린 항체 또는 그 결합 단편과 반응시킨 후, 상기 표지를 가시화하여, 현미경으로 관찰하는 방법이다.
또한, 형광 표지된 항체와 세포를 반응시키고, 플로우 사이토미터로 해석하는 형광 항체 염색법[Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press(1996), 모노클로날 항체 실험 매뉴얼, 코단샤 사이언티픽(1987)]에 의해 검출을 행할 수 있다. 특히, 본 발명에서 이용되는 항GM2 항체 또는 그 항체 단편은, 형광 항체 염색법에 의해 세포막 상에 발현되어 있는 GM2를 검출할 수 있다.
또한, 형광 항체 염색법 중, FMAT 8100 HTS 시스템(어플라이드 바이오시스템사 제조) 등을 이용하는 경우에는, 형성된 항체-항원 복합체와, 항체-항원 복합체의 형성에 관여하고 있지 않은 유리의 항체 또는 항원을 분리하지 않고, 항원량 또는 항체량을 측정할 수 있다.
실시예
이하에, 실시예에 의해 본 발명을 설명하지만, 이것에 한정되는 것은 아니다.
[실시예 1] 플로우 사이토메트리(FCM)를 이용한 악성 중피종 세포주에서의 GM2 발현의 해석
악성 중피종 세포주 NCI-H226(CRL-5826), MSTO-211H(CRL-2081) 및 NCI-H2452(CRL-5946)을 American Type Culture Collection(ATCC)으로부터, 악성 중피종 세포주 ACC-MESO-1(RCB-2292)를 리켄 셀 뱅크(Riken Cell Bank)로부터 입수하여, 실험에 제공했다(Cancer Sci 2006 ; 97 : 387-394).
이들 4종의 악성 중피종 세포주를 0.02% EDTA 용액에 의해 박리하고, 세포를 인산염 완충 식염(PBS)으로 세정하고, 1% 소 혈청 알부민(BSA)을 포함하는 PBS(이하, "BSA-PBS"라고 약기함)에, 0.05% NaN3 및 0.02% EDTA를 첨가한 버퍼(이하, "FCM 버퍼"라고 약기함)에 현탁했다.
항GM2 항체는, 서열 번호 10의 아미노산 서열을 포함하는 VH 및 서열 번호 11의 아미노산 서열을 포함하는 VL을 갖는 항GM2 인간화 항체(일본 특허 제4550947호 명세서, 미국 특허 제6,872,392호 명세서)를, α1,6-fucosyltrasferase(FUT8)의 게놈 유전자를 녹아웃한 CHO 세포(국제 공개 제2005/035586호)를 이용하여 제작한 것을 사용했다.
세포 현탁액을, 2×105 세포/50 μL/웰이 되도록 96웰 U-바닥 플레이트에 나누어 주입했다. 시험 샘플로서 FCM 버퍼로 희석한 10 ㎍/mL의 항GM2 인간화 항체 또는 항디니트로페닐히드라진(DNP) 항체(네거티브 컨트롤)(Motoki et al, Clin. Cancer Res., 11,3126-3135,2005)를 50 μL/웰로 플레이트에 첨가하고, 얼음 중에서 1시간 반응시켰다.
세포를 PBS로 3회 세정한 후, 2차 항체로서 300배 희석한 Alexa Fluor488 염소 항인간 IgG(H+L)(Molecular probes사)을 50 μL/웰 첨가하고, 얼음 중, 차광하에서 30분간 반응시켰다. 다시 PBS를 이용하여 세포를 3회 세정한 후, 세포를 PBS에 현탁했다. 488 nm 아르곤-이온 레이저로 여기되는 510∼530 nm의 형광 강도를 플로우 사이토미터(Cytomics Fc500 MPL/Beckman Coulter사)로 측정했다. 결과를 도 1에 도시한다.
그 결과, 항GM2 항체는 어느 악성 중피종 세포주에나 반응하는 것으로 나타났다. 항GM2 항체 및 항DNP 항체가 각 세포에 반응했을 때의, 평균 형광 강도(mean fluorescence intensity ; MFI)값은, 각각 NCI-H226(33, 1.5), MSTO-211H(18.8, 1.03), ACC-MESO-1(298, 1.17), NCI-H2452(57.9, 1.24)였다. 따라서 악성 중피종 4종은 전부 GM2를 발현하고 있는 것이 분명해졌다.
이상의 결과로부터, 임상상의 악성 중피종에 있어서도 GM2가 발현되어 있는 것이 시사되고, 항GM2 항체가 악성 중피종에 대한 치료 또는 진단에 사용할 수 있는 것이 분명해졌다.
[실시예 2] 항체 의존성 세포 상해 활성(ADCC 활성)의 측정
2.1 표적 세포 현탁액의 조제
악성 중피종 세포주 MSTO-211H를 회수하고, 5% 우태 혈청(FBS)을 포함하는 페놀 레드 불포함 RPMI-1640 배지(WAKO사 제조)(이하, "ADCC 측정용 배지"라고 약기함)로 세정하고, 동배지로 1×104 세포/50 μL가 되도록 세포 현탁액을 조제했다.
2.2 이펙터 세포 현탁액의 조제
이펙터 세포로서 AllCells사로부터 구입한 동결 인간 말초혈 단핵구(mononuclear cell ; MNC)를 이용했다. 동결 MNC는 해동 후, 10% 우태 혈청(FCS), 페니실린, 스트렙토마이신, 글루타민, 비필수 아미노산(NEAA), 피루브산 및 Hepes를 포함하는 RPMI1640 배지(전부 invitrogen사)(이하, "복귀 배지"라고 약기함), 20 mL에, 50 μL의 DNase I(DNase I recombinant, RNase 무함유, 로슈사)을 첨가한 배지에 현탁했다.
원심 분리(450×g, 10분간) 후, 재차 20 mL의 복귀 배지에 현탁하고, 5% CO2 조건하에, 37℃, 2시간 정치했다. 얻어진 말초혈 단핵구(PBMC)를 ADCC 측정용 배지로 2회 세정하고, 동배지로 1×106 세포/50 μL가 되도록 조제하여, 이펙터 세포 현탁액을 제작했다.
2.3 ADCC 활성의 측정
96웰 U-바닥 플레이트의 각 웰에, 목적 농도로 조제한 항GM2 항체, 또는 항DNP 항체(네거티브 컨트롤) 용액을 50 μL/웰로 나누어 주입하고, 전술한 2.1에서 조제한 표적 세포 현탁액을 50 μL, 전술한 2.2에서 조제한 이펙터 세포 현탁액을 50 μL 첨가하고, 이펙터 세포(E)와 표적 세포(T)의 비(E/T 비)를 100으로 하고, ADCC 측정용 배지를 첨가하여 전량을 150 μL로 했다.
원심 분리(50×g, 3분간)를 행하고, 37℃에서 4시간 반응시켰다. 반응 후, 재차 원심 분리(50×g, 5분간)하고, 상청 중의 젖산데히드로게나아제(LDH) 활성을 CytoTox 96 Non-Radioactive Cytotoxicity Assay(Promega사)를 이용하여, 첨부의 설명서에 따라 측정했다.
ADCC 활성은 다음 식에 의해 구했다.
세포 상해 활성(%)=([검체의 흡광도]-([이펙터 세포 자연 유리의 흡광도]+[표적 세포 자연 유리의 흡광도]))/([전표적 세포 유리의 흡광도]-[표적 세포 자연 유리의 흡광도])×100
여기서 표적 세포 자연 유리의 값은, 표적 세포 용액 50 μL 및 배지 100 μL를 첨가한 웰을 조제하고, 또한 표적 세포 및 이펙터 세포 자연 유리의 값은, 표적 세포 용액, 이펙터 세포 용액, 배지를 각각 50 μL 첨가한 웰을 조제하고, 각 웰의 흡광도를 측정하여 얻었다.
전표적 세포 유리의 값은, 표적 세포 용액 50 μL, 배지 85 μL를 첨가하고, 반응 종료 45분 전에 키트에 부속된 용해 용액(Lysis Solution)을 15 μL 첨가한 웰을 조정하고, 동일한 방식으로 얻었다. 결과를 도 2의 (a) 및 (b)에 도시한다.
그 결과, 악성 중피종 세포주 MSTO-211H는, 항GM2 항체의 항체 농도 의존적으로 상해되었다. 따라서, 항GM2 항체가 악성 중피종 세포에 대하여, ADCC 활성을 야기하는 것이 확인되었다.
이상의 결과로부터, 악성 중피종 환자에게 투여된 항GM2 항체는, 환자 체내에 존재하는 이펙터 세포를 통해 암세포를 상해할 수 있는 것이 시사되었다.
[실시예 3] SCID 마우스의 악성 중피종 세포주 MSTO-211H 동소 이식 모델을 이용한 항GM2 항체의 약효 평가
암세포 이식의 2일 전에 각 SCID 마우스(니혼 쿠레아사)에 300 ㎍의 항TM-β1 항체(항마우스 IL-2 수용체 β쇄 항체)[J. Immunol., 147,2222(1991)]를 투여했다. 암세포 이식 당일, 마우스에게 에테르 마취를 행하고, 우측 흉벽의 털을 제거했다. 피부, 피하 조직을 절개하여, 벽측 흉막을 노출시켰다. 27G 시린지를 사용하여, 벽측 흉막을 통해 1×106 세포/100 μL의 MSTO-211H 세포 현탁액을 흉강 내에 투여하고, 절개부를 봉합했다.
항GM2 항체의 중피종 치료 효과를 평가하기 위해, 암세포 이식 후 7, 14일 후에 10 ㎍의 항GM2 인간 항체를 정맥내 투여했다.
또한, 인간 면역 세포의 기여에 관해서도 평가하기 위해, 정상인 말초 혈액으로부터 림프구 분리 배지(LSM)를 이용하여 분리한, 1×106 세포의 인간 단핵구(MNC)를, 암세포 이식 후 7, 14일 후에 정맥내 투여했다. 이식 후 21일째에 마우스를 도살하고, 흉부 종양의 유무, 사이즈, 흉수의 유무 및 흉수량을 조사했다. 또한, 통계적 유의차에 관해서는, 더넷의 다중 비교 검정에 의해 구했다. 결과를 도 3 및 표 1에 나타낸다.
Figure pct00001
그 결과, 항GM2 항체를 투여한 마우스에서는, 항체를 투여하지 않은 마우스 및 인간 MNC를 투여한 마우스와 비교하여, 흉부 종양의 발생률 및 평균 종양 질량의 유의적인 감소가 확인되었다. 또한, 흉수 저장의 발생률의 저하도 확인되었다.
또한, 항GM2 항체와 인간 MNC의 양쪽을 투여한 마우스에서는, 인간 MNC를 투여한 마우스 및 항GM2 항체를 투여한 마우스의 어느것보다, 흉부 종양의 발생률 및 평균 종양 질량의 감소가 확인되었다. 따라서, 인간 MNC의 단독 투여에서는, 항종양 효과가 확인되지 않은 점에서, 인간 MNC는 항GM2 항체의 항종양 효과를 증강시키고, 그 결과 높은 약효가 얻어진 것으로 생각되었다.
본 결과로부터, 악성 중피종 환자에 대하여 항GM2 항체가 유효할 가능성이 시사되었다.
[실시예 4] SCID 마우스 악성 중피종 세포주 MSTO-211H의 동소 이식 모델에서의 GM2 발현
인간 악성 중피종 세포주 MSTO-211H를 이식한 마우스 흉부로부터 종양 블록을 적출하고, OCT 화합물에 포매했다. 포매한 블록을 약 6 ㎛로 얇게 잘라, 각 동결 조직 절편을 제작하고, 면역 조직 염색을 이하의 방법으로 실시했다.
(1) 조직 절편을 무수 아세톤 중에서, 실온에서 5분간 고정 후, 30분간 풍건시켰다.
(2) 조직 절편을 유수 중에서 5분간 세정했다.
(3) 조직 절편을 10배 희석 농도의 MORPHOSAVE 중에서, 실온에서 15분간 고정한 후, PBS로 5분간, 2회 세정했다.
(4) 조직 절편을 내재성 퍼옥시다제 블로킹 용액(2 U/mL 글루코오스 옥시다제, 10 mmol/L 글루코스, 1 mmol/L 소듐 아지드) 중에서 37℃에서, 60분간 반응 후, PBS로 5분간, 2회 세정했다.
(5) 조직 절편을 BSA-PBS(PBS 중 1 w/v% BSA) 중에서, 실온에서 10분간 반응시켰다.
(6) 항GM2 항체(1차 항체)와, 1차 항체의 1.5배 농도의 2차 항체[(Peroxidase-conjugated affinipure donkey anti-human IgG(H+L)](Jackson Immuno Research Laboratories)를 등량 혼합하고, 조직 절편과 4℃에서 하룻밤 반응시켰다.
다음으로, 2차 항체의 100배 농도의 인간 혈청의 IgG(Sigma-Aldrich사 제조)을 첨가하고, 또한 4℃에서, 2시간 반응시킨 용액을 조제하고, 프리컴플렉스 혼합물(precomplex mixture)을 제작했다. 이 프리컴플렉스 혼합물 중에서 조직 절편을, 실온에서 2시간 반응시킨 후, PBS로 5분간, 3회 세정했다.
(7) 조직 절편을, 15 mg의 DAB 타블렛을 100 mL의 PBS에 용해시키고, 33.3 μL의 30% 과산화수소 용액을 첨가한 용액(DAB 기질 크로모겐) 중에서, 실온에서 2분간, 반응시킨 후, PBS로 5분간, 3회 세정했다.
(8) 조직 절편을 헤마톡실린 중에서 반응시키고, 그 후 유수 중에서 10분간 세정했다.
(9) 조직 절편을 에탄올 용액으로 탈수 후, 크실렌으로 봉입했다.
염색 후의 절편은 현미경으로 관찰하여, 이하의 기준을 이용하여 분류하고, 또한, 염색 부위(세포질, 세포막)를 확인했다. 결과를 표 2에 나타낸다.
Figure pct00002
그 결과, 마우스 흉강 내에 동소 이식한 인간 악성 중피종 세포주 MSTO-211H의 종양에 있어서, 세포막 및 세포질이 염색되었다. 따라서, 동소 이식된 중피종 세포의 세포막 및 세포질에 GM2가 발현되어 있는 것이 분명해졌다.
[실시예 5] 인간 악성 중피종 동결 조직을 이용한 형광 면역 조직 화학 염색에 의한 GM2 발현 해석
OCT 화합물에 포매된 인간 악성 중피종 동결 절편, 혹은 인간 악성 중피종 동결 블록을 Origene사로부터 입수하여, 형광 면역 조직 염색을 실시했다. 도너 정보를 도 4에 도시한다.
또한, 비교 대상으로서, 인간 악성 중피종 세포주 MSTO-211H를 동소 이식한 SCID 마우스 흉부로부터 종양 블록을 적출하고, OCT 화합물에 포매한 동결 조직 블록을 이용했다. 동결 블록을 얇게 잘라 제작한 절편을 이용했다. 이하의 순서로 염색을 행했다.
(1) 동결 절편을 무수 아세톤 중에서, 실온에서 5분간 고정 후, 30분간 풍건시켰다.
(2) 동결 절편을 PBS로 5분간 세정했다.
(3) 동결 절편을, ddH2O로 1 ㎍/mL로 조제한 DAPI 중에서 실온에서 20분간 반응시켰다.
(4) 동결 절편을 PBS로 5분간 세정했다.
(5) 동결 절편을 5% FBS-PBS 중에서, 실온에서 10분간 반응시켰다.
(6) 동결 절편을 PBS로 30 ㎍/mL로 조제한 1차 항체(Alexa 488 표지 BIW-8962 또는 Alexa 488 표지 항DNP 항체) 중에서, 4℃에서, 6시간 반응시켰다.
(7) 동결 절편을 H2O로 1분간 3회 세정했다.
(8) 동결 절편에 커버 유리를 올려 놓고, 형광 현미경으로 관찰하여, 이하의 기준을 이용하여 분류했다. 결과를 표 3에 나타낸다.
표 3에 있어서, 염색 강도는 0~3으로 분류한다:
0 : 염색 없음
1 : 극히 약한 염색
2 : 분명한 염색
3 : 강한 염색.
Figure pct00003
이 결과, 26 샘플 중 15 샘플에서 종양 세포에 있어서 강도 1∼3의 GM2 발현이 확인되었다. 또한, 양성 대조로서 이용한 인간 악성 중피종 세포주 MSTO-211H의 동소 이식 마우스 유래의 종양 조직 절편과 비교하여, 7 샘플(27%)에서 동등 이상의 강한 반응성이 확인되었다.
따라서, 인간 임상의 악성 중피종에 있어서 강글리오시드 GM2가 고발현되어 있는 것이 분명해졌다.
본 발명을 특정 양태를 이용하여 상세히 설명했지만, 본 발명의 의도와 범위를 벗어나지 않고 여러가지 변경 및 변형이 가능한 것은 당업자에게 있어 분명하다. 또 본 출원은, 2012년 12월 6일자로 출원된 미국 가출원 제61/734087호에 기초하고 있으며, 그 전체가 인용에 의해 원용된다.
서열표 프리텍스트
서열 번호 1 : HCDR1의 아미노산 서열
서열 번호 2 : HCDR2의 아미노산 서열
서열 번호 3 : HCDR3의 아미노산 서열
서열 번호 4 : LCDR1의 아미노산 서열
서열 번호 5 : LCDR2의 아미노산 서열
서열 번호 6 : LCDR3의 아미노산 서열
서열 번호 7 : 인간화 VH의 아미노산 서열
서열 번호 8 : 인간화 VL의 아미노산 서열
서열 번호 9 : 인간화 VL의 아미노산 서열
서열 번호 10 : 인간화 VH의 아미노산 서열
서열 번호 11 : 인간화 VL의 아미노산 서열
SEQUENCE LISTING <110> National University Corporation Kanazawa University Kyowa Hakko Kirin Co., Ltd. <120> Therapeutic method for mesothelioma <130> W514793 <150> US61/734087 <151> 2012-12-06 <160> 11 <170> PatentIn version 3.3 <210> 1 <211> 5 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: HCDR1 <400> 1 Asp Tyr Asn Met Asp 1 5 <210> 2 <211> 17 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: HCDR2 <400> 2 Tyr Ile Tyr Pro Asn Asn Gly Gly Thr Gly Tyr Asn Gln Lys Phe Lys 1 5 10 15 Ser <210> 3 <211> 11 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: HCDR3 <400> 3 Tyr Gly His Tyr Tyr Gly Tyr Met Phe Ala Tyr 1 5 10 <210> 4 <211> 10 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: LCDR1 <400> 4 Ser Ala Ser Ser Ser Val Ser Tyr Met His 1 5 10 <210> 5 <211> 7 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: LCDR2 <400> 5 Ser Thr Ser Asn Leu Ala Ser 1 5 <210> 6 <211> 9 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: LCDR3 <400> 6 Gln Gln Arg Ser Ser Tyr Pro Tyr Thr 1 5 <210> 7 <211> 120 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: humanized VH <400> 7 Glu Val Gln Leu Val Gln Ser Gly Ala Glu Val Lys Lys Pro Gly Ala 1 5 10 15 Ser Val Lys Val Ser Cys Lys Ala Ser Gly Tyr Thr Phe Thr Asp Tyr 20 25 30 Asn Met Asp Trp Val Arg Gln Ala Pro Gly Gln Gly Leu Glu Trp Met 35 40 45 Gly Tyr Ile Tyr Pro Asn Asn Gly Gly Thr Gly Tyr Asn Gln Lys Phe 50 55 60 Lys Ser Lys Val Thr Ile Thr Val Asp Thr Ser Thr Ser Thr Ala Tyr 65 70 75 80 Met Glu Leu His Ser Leu Arg Ser Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys 85 90 95 Ala Thr Tyr Gly His Tyr Tyr Gly Tyr Met Phe Ala Tyr Trp Gly Gln 100 105 110 Gly Thr Leu Val Thr Val Ser Ser 115 120 <210> 8 <211> 108 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: humanized VL <400> 8 Asp Ile Gln Leu Thr Gln Ser Pro Ser Ser Leu Ser Ala Ser Pro Gly 1 5 10 15 Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Ser Ala Ser Ser Ser Val Ser Tyr Met 20 25 30 His Trp Phe Gln Gln Lys Pro Gly Lys Ala Pro Lys Leu Trp Ile Tyr 35 40 45 Ser Thr Ser Asn Leu Ala Ser Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser 50 55 60 Gly Ser Gly Thr Ser Tyr Ser Leu Thr Ile Ser Arg Leu Gln Pro Glu 65 70 75 80 Asp Ile Ala Thr Tyr Tyr Cys Gln Gln Arg Ser Ser Tyr Pro Tyr Thr 85 90 95 Phe Gly Gly Gly Thr Lys Val Glu Ile Lys Arg Thr 100 105 <210> 9 <211> 108 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: humanized VL <400> 9 Asp Ile Gln Leu Thr Gln Ser Pro Ser Ser Met Ser Ala Ser Pro Gly 1 5 10 15 Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Ser Ala Ser Ser Ser Val Ser Tyr Met 20 25 30 His Trp Phe Gln Gln Lys Pro Gly Lys Ser Pro Lys Leu Trp Ile Tyr 35 40 45 Ser Thr Ser Asn Leu Ala Ser Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser 50 55 60 Gly Ser Gly Thr Ser Tyr Ser Leu Thr Ile Ser Ser Met Gln Pro Glu 65 70 75 80 Asp Phe Ala Thr Tyr Tyr Cys Gln Gln Arg Ser Ser Tyr Pro Tyr Thr 85 90 95 Phe Gly Gln Gly Thr Lys Leu Glu Ile Lys Arg Thr 100 105 <210> 10 <211> 120 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: humanized VH <400> 10 Glu Val Gln Leu Val Gln Ser Gly Ala Glu Val Lys Lys Pro Gly Ala 1 5 10 15 Ser Val Lys Val Ser Cys Lys Ala Ser Gly Tyr Thr Phe Thr Asp Tyr 20 25 30 Asn Met Asp Trp Val Lys Gln Ser Pro Gly Gln Gly Leu Glu Trp Met 35 40 45 Gly Tyr Ile Tyr Pro Asn Asn Gly Gly Thr Gly Tyr Asn Gln Lys Phe 50 55 60 Lys Ser Lys Val Thr Ile Thr Val Asp Thr Ser Thr Ser Thr Ala Tyr 65 70 75 80 Met Glu Leu His Ser Leu Arg Ser Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys 85 90 95 Ala Thr Tyr Gly His Tyr Tyr Gly Tyr Met Phe Ala Tyr Trp Gly Gln 100 105 110 Gly Thr Leu Val Thr Val Ser Ser 115 120 <210> 11 <211> 108 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> Description of the artificial sequence: humanized VL <400> 11 Asp Ile Gln Leu Thr Gln Ser Pro Ser Ser Leu Ser Ala Ser Pro Gly 1 5 10 15 Asp Arg Val Thr Ile Thr Cys Ser Ala Ser Ser Ser Val Ser Tyr Met 20 25 30 His Trp Phe Gln Gln Lys Pro Gly Lys Ala Pro Lys Leu Trp Ile Tyr 35 40 45 Ser Thr Ser Asn Leu Ala Ser Gly Val Pro Ala Arg Phe Ser Gly Ser 50 55 60 Gly Ser Gly Thr Ser Tyr Ser Leu Thr Ile Ser Arg Leu Gln Pro Glu 65 70 75 80 Asp Ile Ala Thr Tyr Tyr Cys Gln Gln Arg Ser Ser Tyr Pro Tyr Thr 85 90 95 Phe Gly Gly Gly Thr Lys Val Glu Ile Lys Arg Thr 100 105

Claims (13)

  1. 강글리오시드 GM2에 결합하는 항체 또는 이의 단편을 유효 성분으로서 포함하는, 중피종의 치료제 또는 진단제.
  2. 제1항에 있어서, 중피종은 흉막 중피종, 복막 중피종 및 심막 중피종으로부터 선택되는 어느 하나의 중피종인 치료제 또는 진단제.
  3. 제2항에 있어서, 흉막 중피종 또는 복막 중피종은 악성 흉막 중피종 또는 악성 복막 중피종인 치료제 또는 진단제.
  4. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 있어서, 항체는 GM2의 α2-3 결합된 시알산(SA)에 결합하는 항체인 치료제 또는 진단제.
  5. 제1항 내지 제4항 중 어느 한 항에 있어서, 항체는 모노클로날 항체인 치료제 또는 진단제.
  6. 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 있어서, 항체는 유전자 재조합 항체인 치료제 또는 진단제.
  7. 제6항에 있어서, 유전자 재조합 항체는 키메라 항체, 인간화 항체 및 인간 항체로부터 선택되는 어느 하나의 항체인 치료제 또는 진단제.
  8. 제1항 내지 제7항 중 어느 한 항에 있어서, 항체는 각각 서열 번호 1∼3의 아미노산 서열을 갖는 중쇄(이하, "H쇄")의 상보성 결정 영역(CDR; 이하 "CDR"이라고 약기함) 1∼3 및 각각 서열 번호 4∼6의 아미노산 서열을 갖는 경쇄(이하, "L쇄") CDR 1∼3을 포함하는 항체인 치료제 또는 진단제.
  9. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항에 있어서, 항체는
    서열 번호 7의 아미노산 서열을 갖는 H쇄 가변 영역(이하, "VH"라고 기재함) 및 서열 번호 8의 아미노산 서열을 갖는 L쇄 가변 영역(이하, "VL"이라고 기재함)을 포함하는 항체;
    서열 번호 7의 아미노산 서열을 갖는 VH 및 서열 번호 9의 아미노산 서열을 갖는 VL을 포함하는 항체;
    서열 번호 10의 아미노산 서열을 갖는 VH 및 서열 번호 8의 아미노산 서열을 갖는 VL을 포함하는 항체; 및
    서열 번호 10의 아미노산 서열을 갖는 VH 및 서열 번호 11의 아미노산 서열을 갖는 VL을 포함하는 항체
    로부터 선택되는 어느 하나의 항체인 치료제 또는 진단제.
  10. 제1항 내지 제9항 중 어느 한 항에 있어서, 하나 이상의 병용제(combination drug)를 포함하는 치료제 또는 진단제.
  11. 제10항에 있어서, 병용제는 화학 요법제 및 단백질 의약(protein drug)으로부터 선택되는 하나 이상인 치료제 또는 진단제.
  12. 강글리오시드 GM2에 결합하는 항체 또는 이의 단편을 유효 성분으로서 이용하는, 중피종의 치료 방법 또는 진단 방법.
  13. 중피종의 치료제를 제조하기 위한, 강글리오시드 GM2에 결합하는 항체 또는 이의 단편의 용도.
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