KR20060133949A - 단백질 기능을 조절하기 위한 공간 배열의 용도 - Google Patents

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KR20060133949A
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구앙웬 웨이
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휴이양테크 (유에스에이), 인크.
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Abstract

본 발명은 단백질의 공간 배열을 조절하기 위한 방법을 제공한다. 첫째로, 숙주 코돈 용법에 따른 표적 단백질을 암호화하는 아미노산 코돈을 선별한다. 두번째로, 공간 배열을 조절할 수 있는 조합을 선별하여 숙주를 형질전환할 수 있는 상이한 벡터내로 작제한다. 세번째로, 프로모터의 암호 서열 및 표적 단백질을 조합한 다음 염기쌍의 조합을 모니터링함으로써 벡터 프로모터를 선별한다. 마지막으로, 표적 단백질의 발현, 리폴드(refold) 및 정제하기 위해 적절한 발현 숙주를 선별하여 활성도 및 공간 배열을 측정한다.
단백질, 코돈 용법, 벡터, 발현, 변성, 복원, 담체

Description

단백질 기능을 조절하기 위한 공간 배열의 용도{USES OF SPATIAL CONFIGURATION TO MODULATE PROTEIN FUNCTION}
본 발명은 단백질 기능을 조절하기 위한 공간 배열에 관한 것이다.
사람 게놈 프로젝트의 완성은 많은 유전자의 치료 효과를 입증하였으며 이들 유전자의 일부는 치료 단백질로 개발되었지만, 이들 유전자의 대부분은 당해 기술분야의 유전자 또는 단백질 기법에 의해 조절될 수 없다. 이들 유전자는 이들 유전자가 갖는 완전한 치료 효과를 유지하는 단백질로 정확하게 번역될 수 없다. 성공적인 단백질 번역을 위한 가장 큰 장애는 정확한 단백질-폴딩이다. 효과적인 공간 배열을 갖는 단백질을 어떻게 수득하는지에 대한 연구가 활발하게 진행되고 있다.
아미노산 서열의 변동 없이 단백질의 공간 배열을 바꾸는 것은 특정 단백질의 기능을 바꿀 수 있을 것이다. 예를들면, 비정상적인 3차 구조를 갖는 일부 단백질은 광우병(BSE), 알츠하이머 질환, 낭포성 섬유증, 가족에 유전하는 아밀로이드 질환, 특정 암종 또는 백내장과 같은 질환을 사람 및 동물에서 유발할 수 있다. 이들 질환은 폴딩-질환으로 또한 불린다.“프리온”단백질은 BSE를 유발하며 정상 단백질을 감염시킬 수 있다.
단백질 구조의 연구 과정에서 단백질의 정확한 공간 구조를 회수하는 데 가 장 중요한 부분은, 변성 및 리폴딩(refolding) 기술이라고 대부분의 연구가들은 생각한다. 수많은 문헌들은 다양한 샤프롱(chaperon) 또는 역미셀 등과 관련된 리폴딩에 대한 개선을 보고하였다. 더욱 천연의 환경에서 그러한 단백질이 발현되도록 많은 분비 발현 벡터가 개발되었지만, 이러한 모든 노력들은 질적 변화가 아닌 단백질의 수율의 증가만을 초래하였다.
본 발명은 단백질의 공간 배열을 조절하기 위한 방법을 제공한다. 첫째로, 숙주 코돈 용법에 따른 표적 단백질을 암호화하는 아미노산 코돈을 선별한다. 두번째로, 공간 배열을 조절할 수 있는 조합을 선별하여 숙주를 형질전환할 수 있는 상이한 벡터내로 작제한다. 그러므로, 적절한 숙주를 갖는 적합한 벡터가 선택될 것이다. 세번째로, 프로모터의 암호 서열 및 표적 단백질을 조합한 다음 염기쌍의 조합을 모니터링함으로써 벡터 프로모터를 선별한다. 마지막으로, 표적 단백질의 발현, 리폴드(refold) 및 정제하기 위해 적절한 발현 숙주를 선별하여 활성도 및 공간 배열을 측정한다.
본 발명은 단백질-작제 과정중에 표적 단백질의 아미노산을 암호화하는 코돈의 변화, 선택 벡터의 차이, 프로모터의 조절 및 숙주 발현 벡터의 선별, 심지어는 변성 및 복원의 조건, 병원체 등은 표적 단백질의 공간 배열을 조절하기 위해 조절할 수 있는 인자들임을 발견하였다. 따라서, 새로운 기능을 얻기 위해 그리고 활성도를 향상시키기 위해 단백질의 공간 배열의 조절은 체계적인 분석의 결과이다.
본 발명은 a) 상기 단백질의 코돈 용법을 변경하는 단계; b) 정제된 단백질을 수득하기 위해 상기 변경된 코돈을 사용하여 단백질을 발현시키는 단계; 및 c) 변경된 코돈 용법을 갖는 발현된 단백질을 변경된 코돈 용법을 갖지 않는 단백질과 비교하는 단계를 포함하는 상기 단백질의 1차 아미노산 서열을 바꾸지 않고 단백질의 기능을 조절하기 위한 방법을 제공하며, 여기에서 기능의 증가 또는 새로운 기능의 확인은 단백질 기능이 조절되었음을 나타낸다.
한 구체예로서, 상기 변경된 코돈 용법은 상기 단백질의 높은 발현을 초래한다.
본 발명은 a) 상기 단백질의 코돈 용법을 변경하는 단계; b) 정제된 단백질을 수득하기 위해 상기 변경된 코돈을 사용하여 단백질을 발현시키는 단계; 및 c) 변경된 코돈 용법을 갖는 발현된 단백질을 변경된 코돈 용법을 갖지 않는 단백질과 비교하는 단계를 포함하는 상기 단백질의 1차 아미노산 서열을 바꾸지 않고 향상된 또는 새로운 기능을 갖는 단백질을 제조하는 방법을 또한 제공하며, 여기에서 기능의 증가 또는 새로운 기능의 확인은 향상된 또는 새로운 기능을 갖는 단백질이 제조되었음을 나타낸다.
한 구체예로서, 상기 변경된 코돈 용법은 상기 단백질의 높은 발현을 초래한다. 본 발명은 상기 방법에 의해 제조된 단백질을 또한 제공한다. 한 구체예로서, 상기 단백질은 독특한 2차 또는 3차 구조를 갖는다.
본 발명은 발현될 때 향상되거나 또는 새로운 기능을 생성하는 변경된 코돈을 갖는 합성 유전자를 또한 제공한다. 한 구체예로서, 본 발명은 상기 유전자를 포함하는 발현 시스템을 제공한다. 또 다른 구체예로서, 본 발명은 상기 유전자를 포함하는 숙주세포를 제공한다.
본 발명은 선택된 코돈 선호(codon preference)를 갖는 인공 유전자를 적절한 숙주내로 도입, 상기 단백질의 발현을 위한 적절한 조건하에서 상기 도입된 숙주를 배양 및 상기 발현된 단백질을 채취하는 것을 포함하는 향상된 기능 또는 새로운 기능의 단백질을 생성하는 방법을 또한 제공한다.
본 발명은 상기 방법을 제공하는 바, 상기에서 인공 유전자는 효과적으로 벡터에 결합된다. 한 구체예로서, 상기 방법은 발효 배양액(broth)으로부터 상기 단백질의 추출 또는 봉입체의 수집 및 채취된 단백질의 변성 및 복원을 포함한다.
본 발명은 상기 임의의 방법에 위해 생성된 단백질을 또한 제공한다.
본 발명은 상기 임의의 단백질 및 적절한 담체를 포함하는 조성물을 제공한다. 본 발명은 상기 생성된 임의의 단백질 및 약제학적으로 허용가능한 담체를 포함하는 약제학적 조성물을 또한 제공한다.
본 발명의 한가지 중요한 점은, 상기 유전자로부터 유래된 기능 또는 통상적인 기술을 사용하여 생성되는 단백질에서 나타나지 않는 기능을 갖거나 또는 현존하는 단백질과 비교할 때 향상된 활성도를 갖는 단백질내로 치료 효과를 갖는 유전자의 번역 과정중에 단백질의 공간 배열을 조절한다는 것이다.
인터페론의 경우, 사람 INF-α의 유전자를 역전사 발현 벡터내로 작제하여 PDOR-INF-α의 발현 벡터를 생성하고, 이어 2.2.15 세포를 형질감염시킨다. 세포의 배양 상청액에서 HBsAg 및 HBeAg를 측정한다. 상기 결과는 HBsAg 및 HBeAg에 대한 rSINF-co의 억제율이 62% 및 67.7%이었지만, 유전자 재조합 기법에 의해 생성된 재조합 인터페론 단백질은 시험관내에서 상기 효과를 갖지 않음을 나타낸다. 또한, 역전사 바이러스 벡터를 사용하여 사람 INF-α2 발현 벡터의 작제 및 발현 벡터를 HIV 세포 균주-A3.01내로의 형질감염 시험은 HIV-DNA의 복제 및 전사를 완전히 억제할 수 있음을 입증하였다. 그러나, 인터페론의 효과는 HIV 질환의 치료에 제한된다.
도 1은 Infergen®의 원편광 이색성 스펙트럼을 나타낸다.
스펙트럼 범위: 250-190nm
민감도: 2m0/cm
광 경로: 0.20cm
장치: 원편광 이색성 J-500C
샘플: 30㎍/ml IFN-con1, 5.9mg/ml NaCl 및 3.8mg/ml의 Na2PO4(pH 7.0)를 함유.
도 2는 rSIFN-co의 원편광 이색성 스펙트럼을 나타낸다.
스펙트럼 범위: 250-190nm
민감도: 2m0/cm
광 경로: 0.20cm
장치: 원편광 이색성 J-500C
샘플: 30㎍/ml rSIFN-co, 5.9mg/ml NaCl 및 3.8mg/ml의 Na2PO4(pH 7.0)를 함유.
도 3은 HBV 유전자 발현에 대한 상이한 인터페론의 억제효과에 대한 비교를 나타낸다.
도 4a-1은 그룹 A(5명 환자)에서 체온 변화의 곡선을 나타낸다. 이 도면은 그룹 A의 5명 환자들의 체온 변화를 기록한 것이다.
도 4a-2는 그룹 A(6명 환자)에서 체온 변화의 곡선을 나타낸다. 이 도면은 그룹 A의 다른 6명 환자들의 체온 변화를 기록한 것이다.
도 4b-1은 그룹 B(5명 환자)에서 체온 변화의 곡선을 나타낸다. 이 도면은 그룹 B의 5명 환자들의 체온 변화를 기록한 것이다.
도 4b-2는 그룹 B(5명 환자)에서 체온 변화의 곡선을 나타낸다. 이 도면은 그룹 B의 다른 5명 환자들의 체온 변화를 기록한 것이다.
도 5는 rsIFN-co 결정 I이다.
도 6은 rsIFN-co 결정 II이다.
도 7은 rsIFN-co 결정의 X-레이 회절을 나타낸다.
실시예 1: INF - CONL 의 입체배치 재구성
rSIFN-co는 유전공학 방법에 의해 사람 IFN-α 서브타입의 보존성 아미노산에 따라 작제된 새로운 인터페론 분자이다. 상기 인터페론은 미국특허 번호 제 4,695,263호 및 제4,897,471호에 개시되어 있으며, 강한 항바이러스 효과, 항-종양 및 천연 세포 치사 효과를 갖는 광범위-스펙트럼 인터페론 활성을 갖는 것으로 문헌 및 특허에서 입증되었다.
상기 DNA 코딩 서열은 먼저, pHY-4 벡터내로 삽입의 작제, PBAD 프로모터에 의한 다운-스트림 발현의 매개, 이어 숙주로 E. Coli를 선택함으로써 E. Coli 코돈 용법에 따라 재고안하였다. 상기 높은 순도의 생성물은 POROS HS/M 양이온 교환 크로마토그래피 후, 6mol/L 구아니딘 히드로클로리드에 의한 변성 → 4mol/L 아르기닌에 의한 복원 → Cu2 +-킬레이트 친화도 크로마토그래피에 의한 정제에 의해 수득하였다.
rSIFN-co 및 IFN-con1간의 B형 간염 바이러스 DNA의 복제 및 HBsAg 및 HBeAg 억제의 분비에 대한 비교 시험에서 rSIFN-co는 IFN-con1이 갖지 않는 HBsAg 및 HBeAg의 분비억제 효과를 가지는 것으로 입증되었다. 다른 시험에서, 상기 HBV 코어/예비게놈(C/P) 프로모터 및 연합 시스-작용 요소를 루시페라아제-암호화 플라스미드의 업스트림에 두었다. 이 리포터 작제물을 HpeG2 세포내로 형질감염시켰다. 상기 세포를 상이한 인터페론으로 처리하였으며 루시페라아제 리포터 유전자 발현을 측정하였다. rSIFN-co는 루시페라아제 리포터 유전자 발현의 68%를 억제할 수 있는 반면, IFN-con1 및 IFN-α2b는 각각 35% 및 27%만을 억제하는 것으로 결과가 나타났다. 그러므로, HBcAg에 대한 rSIFN-co의 억제효과는 명백히 향상되었다.
한편, 원편광 이색성 스펙트럼은 IFN-con1과 비교함으로써 rSIFN-co의 2차 구조에 차이가 있음을 또한 입증하였다.
이들 비교 시험은 하기에 상세하게 설명된다.
1) 원편광 이색성 스펙트럼의 비교
주소: 시추안(Sichuan) 대학의 분석 및 시험 센터
장치: J-500C 원편광 이색성 장치(스펙트럼 범위: 250-190nm / 민감도: 2m0/cm / 광 경로: 0.2cm. (도 1 및 도 2 참조).
2) rSIFN - co HBV - DNA 복제 및 HBsAg HBeAg 의 분비를 억제한다.
시료
용매 및 조제 방법: 1 ml의 식염수를 각각의 바이엘에 넣어 용해시키고 상이한 농도에서 MEM 배양 배지와 즉시 혼합한다.
대조용 약물: 동결건조 분말로서 Schering Plough로부터 구입한 IFN-α2b(인트론 A). 3x106U 각각을 배양 배지와 혼합하여 3x106IU/ml을 만듬; Amgen로부터 구입한 0.9㎍ INFERGEN(액체 용액), 9x106IU와 동일한 0.3ml 각각을 9x106IU/ml 배양 배지와 혼합하여 4℃에서 보관; 2.2.15 세포: 간종양(Hep G2)의 2.2.15 세포주는 클론을 만들어 HBV DNA에 의해 형질감염시키고, Mount Sinai Medical Center에 의해 작제하였다.
시약: MEM 분말(Gibco American Ltd), 송아지 혈청(HycloneLab American Ltd), G-418(게네티신), MEM 디스펜싱(Gibco American Ltd), L-글루타밀(JING KE Chemical Ltd), HBsAg 및 HBeAg 고체-상 방사면역에세이 박스(Northward Reagent Institute of Chinese Isotope Ltd), 바이오그란세티나(Northern China Medicine) 및 리포펙틴(Gibco American Ltd).
시험 장치: 배양용기(Denmark TunclonTM), 24-웰 및 96-웰 배양판(Corning American Ltd), 이산화탄소 해칭 박스(Shel-Lab American Ltd), MEM 배양 배지 100ml, 10% 송아지 혈청, 0.03% 글루타민, G418 380㎍/ml, 바이오그란세티나 50U/ml.
방법:
2.2.15 세포 배양: 0.25% 췌장 효소를 배양 박스에 부가하여 2.2.15 세포로 가득채웠다. 37℃에서 3분동안 분해시키고, 배양 배지를 부가하여 분해를 중단하였으며 상기 세포를 분산시켰다. 1:13의 비율로 번식시켜 10일 후에 최대 성장에 도달하였다.
독성 시험: 상이한 농도 그룹 및 세포가 약물과 작용하지 않는 대조용 그룹을 설정하였다. 세포를 분해시켜 100,000세포/ml 용액으로 조제하였다. 96-웰 배양 판에 접종시켜 웰당 200μl이 되게 하였다. 5% CO2를 사용하여 37℃에서 24시간동안 배양시켰다. 단일 세포 층이 성장할 때 시험하였다.
rSIFN-co를 1.8 x 107IU/ml 용액으로 분배하고 이어, 이중 구배에서 희석된 용액을 제조하였다. 96-웰 배양 판에 부가하여 농도당 3개 웰을 만들었다. 4일마다 상기 용액을 바꾸었다. 8일 후 현미경으로 세포변성 효과를 시험하였다. 완전한 파괴는 4로, 75%는 3으로, 50%는 2로, 25%는 1로, 0%는 0으로 나타냈다. 상이한 농도 에서 평균 세포 병변 및 억제율을 계산하였다. Reed Muench 방법에 따라 TC50 및 TC0을 계산하였다.
Figure 112006013245577-PCT00001
A= 로그〉50% 약물 농도; B= 로그〈50% 약물 농도; C= 로그 희석 분말.
HBeAg 및 HBsAg에 대한 억제시험: 양성 및 음성 HBeAg 및 HBsAg 대조군 그룹, 세포 대조군 그룹 및 약물 농도 그룹으로 분리하였다.
700,000 세포/ml의 2.2.15 세포를 6-웰 배양 판내로 접종시키고, 웰당 3ml가 되게 하였으며, 5% CO2를 사용하여 37℃에서 24시간 동안 배양시키고, 이어 삼중 구배에서 5개 희석된 용액을 제조하였으며(5개 용액의 제조에서, 각각은 상이한 단백질 농도로 제조하였다. 용액 2의 농도는 용액 1의 농도보다 3배가 낮으며, 용액 3의 농도는 용액 2의 농도보다 3배가 낮다 등), 5개 용액의 농도는 4.5x106IU/ml, 1.5x106IU/ml, 0.5x106IU/ml, 0.17x106IU/ml 및 0.056x106lU/ml이며, 농도당 1개 웰을 만들었으며, 5% CO2를 사용하여 37℃에서 24시간동안 배양시켰다. 동일한 용액을 사용하여 4일마다 용액을 바꾸었다. 8일째에 모든 배양 배지를 수집하였다. -20□에서 보관하였다. 고체-상 방사면역에세이 박스를 사용하여 HBeAg 및 HBsAg를 측정하기 위해 시험을 3회 반복하였다(Northward Reagent Institute of Chinese Isotope Ltd.). γ-어카운팅 기계를 사용하여 각 웰의 cpm 값을 측정하였다.
효과 측정: 대조군 그룹 및 상이한 농도 그룹의 cpm 평균 값 및 이들의 표준 편차, 억제율과 같은 P/N 값, IC50 및 SI를 측정하였다.
1) 항원 억제율(%)=
Figure 112006013245577-PCT00002
A= 대조군의 cpm; B= 시험 군의 cpm.
2) 약물 반-효능(half-efficiency) 농도를 계산하였다.
항원 억제 IC50=
Figure 112006013245577-PCT00003
A= 로그〉50% 약물 농도; B= 로그〈 50□ 약물 농도; C= 로그 희석 분말.
3) 인터스페이스-입체배치의 SI는 2.2.15 세포 배양액에서 HBsAg 및 HBeAg에 대한 rSIFN-co 효과를 바꾸었다.
Figure 112006013245577-PCT00004
4) 학생 t 시험을 사용한 대조군 그룹으로부터 각 희석 정도의 cpm 차이를 측정하였다.
서던 블롯: (1) 2.2.15 세포에서 HBV-DNA를 추출하고 세포를 8일동안 배양하였다. 배양 배지를 외흡입(exsuction)하였다(상기 배양 배지를 배출(draining)시킴으로써 배양 배지로부터 세포를 분리함). 용해 완충액을 부가하여 세포를 파괴시키고 이어, 페놀, 클로로포름 및 이소아밀 알코올의 혼합물(1:1:1)로 2회 추출하여 10,000g 원심분리하였다. 침전된 핵산에 무수 알코올을 부가함으로써 상청액을 수집하였다. 진공으로 흡입하여 20μlTE 완충액에서 다시 용해시켰다. (2)전기영동: 6XDNA 로딩 완충액을 부가하고, 고정 압력에서 14-18시간 동안 1.5% 아가로스 겔, 상에서 전기영동하였다(IV/cm). (3) 변성 및 잡종교배: 겔을 HCl, 변성 완충액 및 중화된 완충액에 각각 담그었다. (4) 막 횡단: 하이본드(Hybond)-N 막으로 DNA를 순서대로 운반하였다. 점 블롯 잡종교배를 사용하여 베이크(bake), 잡종교배 및 노출시켰다. 겔-프로 소프트웨어를 사용하여 스캔 및 상대밀도 분석하였다. 억제율 및 IC50 계산하였다.
결과
결과는 표 1, 2 및 3에 나타내었다. 2.2.15 세포를 사용하여 8일동안 최대 무해 농도지수에서 배양한 후, 상기 최대값은 9.0±0x106IU/ml이었으며, HBeAg에 대한 최대 무해 농도 rSIFN-co의 평균 억제율은 46.0±5.25%(P〈0□001)이었으며, IC50은 4.54±1.32x106IU/ml이었으며, SI는 3.96이었으며; HBsAg에 대한 비율은 44.8±6.6%이었으며, IC50은 6.49±0.42x106IU/ml이었으며, SI는 2.77이었다. 이는 rSIFN-co 가 HBeAg 및 HBsAg의 활성도를 상당히 억제할 수 있지만, 대조군의 IFN 및 INFERGEN은 억제할 수 없음을 나타낸다. rSIFN-co은 HBeAg 및 HBsAg를 감소시킬 수 있거나 또는 이들을 정상 수준으로 회복시킬 수 있다.
(표 1)
HBsAg 및 HBeAg에 대한 rSIFN-co의 억제율 결과
첫번째 배치(batch):(rSIFN-co)
Figure 112006013245577-PCT00005
두번째 배치(batch):(rSIFN-co)
Figure 112006013245577-PCT00006
세번째 배치(batch):(rSIFN-co)
Figure 112006013245577-PCT00007
(표 2)
HBsAg 및 HBeAg에 대한 인트론 A(IFN-α2b)의 억제율 결과
Figure 112006013245577-PCT00008
(표 3)
HBsAg 및 HBeAg에 대한 인페르겐의 억제율 결과
첫번째 배치(batch):(인페르겐)
Figure 112006013245577-PCT00009
두번째 배치(batch):(인페르겐)
Figure 112006013245577-PCT00010
세번째 배치(batch):(인페르겐)
Figure 112006013245577-PCT00011
실시예 2: HBV 유전자 발현에 대한 상이한 인터페론의 억제효과 비교
B형 간염 바이러스(HBV) DNA는 결합 활성도가 인터페론에 의해 조절되는 단백질의 트랜스액티베이트를 위한 컨센서스 요소를 함유한다. 인터페론에 의한 HBV-감염 간세포의 치료는 HBV 유전자 발현의 억제를 초래하였다. 이 연구의 목적은 HBV 조절 전사에 대한 상이한 인터페론의 효과가 특징이다. HBV-인핸서(EnH) I, Enh II 및 코어 프로모터의 조절하에서 반딧불 루시페라아제 유전자를 함유하는 리포터 플라스미드에 의한 사람 간종양 세포의 일시적인 형질감염을 사용하여, 출원인은 전사에 대한 세가지 상이한 인터페론의 생물학적 활성도를 연구하였다.
시료 및 방법
1. 인터페론: IFN-con1(Infergen®), IFN-Hui-Yang(γSIFN-co) 및 IFN-베타1b
2. 리포터 플라스미드: HBV-인핸서(EnH) I, Enh II 및 코어 프로모터를 함유하는 상기 DNA 단편은 PCR를 사용하여 제조하였으며, 무딘-말단(blunt-end)은 상기 프로모터- 및 인핸서-없는 반딧불 루시페라아제 리포터 플라스미드 pGL3-베이직(미국 위스콘신주 Promega)의 Smal I 부위내로 클론화하였다. 생성된 리포터 플라스미드는 pGL3-HBV-Luc로 명명하였다.
3. 세포 배양 및 DNA 형질감염: HepG2 세포는 10% FBS 및 100U/ml 페니실린 및 100ug/ml 스트렙토마이신이 부가된 DMEM 배지에서 배양하였다. 상기 세포를 30℃, 5% CO2 인큐베이터에 두었다. Boehringer 리포펙틴 형질감염 키트를 사용하여 pGL3-HBV-Luc 리포터 플라스미드로 상기 세포를 형질감염시켰다. 18시간 후, 형질감염 시약을 함유한 상기 배지를 제거하고 인터페론이 있는 또는 인터페론이 없는 새로운 배지를 부가하였다. 상기 세포를 다른 48시간 동안 배양액에 두었다.
4. 루시페라아제 에세이: 인터페론을 부가한 지 48시간 후, 상기 세포를 채 취하고 세포 용해를 제조하였다. 바이오-라드(Bio-Rad) 단백질 에세이 키트를 사용하여 세포 용해물의 단백질 농도를 측정하였다. 상기 루시페라아제 활성도는, 제조자의 지시에 따라 Promega 루시페라아제 리포터 에세이 시스템을 사용하여 측정하였다.
결과
상이한 인터페론-처리된 세포 용해물에서 루시페라아제 활성도의 발현
미처리 IFN - con1 IFN - Hui - Yang IFN - 베타1 b
100 48+8 29+6 64+10
상기 결과는 γSIFN-co가 HBV 유전자 발현에 대한 발현을 가장 효과적으로 억제함을 나타냈다.
실시예 3: γ SIFN - co 를 사용할 때 부작용 및 체온의 변화
인터페론 사용과 관련하여 더 많은 부작용이 있다. 이러한 부작용으로는 오심, 근육통, 식욕감소, 탈모, 저백혈구증가증 및 혈소판 감소 등을 포함한다.
방법
환자를 두 그룹으로 분류하였다. A 그룹의 11명 환자에게 9㎍ Infergen®을 주입시키고, B 그룹의 10명 환자에게 9㎍ γSIFN-co를 주입하였다. 주입 후, 상기 두 그룹을 48시간 동안 모니터하였다. 주입한 지 한 시간 후, 첫번째 모니터링을 기록하였으며, 그 후에 매 2시간 마다 기록하였다.
표 4는 9㎍ Infergen® 및 9㎍ γSIFN-co가 주입된 환자들의 부작용을 비교한 것이다.
(표 4)
부작용
9㎍ γSIFN-co 9㎍ Infergen®
환자수 = 10명 환자수 = 11명
신체 시스템 반 응 인원수 인원수
일반적 무력함 3 3
솔히트(sole heat) 1
프리고라빌리티 (frigolability) 3 4
다리 힘 감소 3
약한 요통 2 1
신체 통증 4 5
중추신경계/ 말초신경계 두통 3 6
어지럼증 2 11
졸림 3
위장절개술 아포클레시스 (apoclesis) 1
복통 1
설사 1
근골격계 근육통 1 2
관절통 2
호흡기계 코막힘 1
가시 눈 부음 1
결과
γSIFN-co를 주입한 환자들의 경우, 부작용은 많지 않았다. 이들은 인플루엔자와 유사한 공통된 증상, 예를 들면 두통, 무력함, 프리고라빌리티(frigolability), 근육통, 발한증 및 관절통을 나타냈다. Infergen®을 주입한 환자들의 부작용은 γSIFN-co를 주입한 환자들의 부작용보다 더 심각했다.
도 4a-1, 4a-2, 4b-1 및 4b-2에서 알 수 있는 바와 같이, 그룹 A 환자의 체 온은 그룹 B 환자의 체온보다 높다. γSIFN-co의 내구성(endurance)은 Infergen®보다 훨씬 낫다는 것을 또한 나타냈다.
실시예 4: γ SIFN - co 의 결정 성장 및 결정학 파라미터의 시험
γSIFN-co의 결정. 전체적인 시도 및 시험 후, 두가지 유형의 결정을 발견하였다(도 5-7 참조).
1. 결정 성장
깨끗한 물로 γSIFN-co 단백질을 용해시켜 밀도를 3mg/ml로 만들었다. Hampton 회사가 제조한 Hampton Research Crystal Screen I 및 II를 사용함으로써 결정화를 조사하였다. Drop Suspension diffusion Method를 사용하여 293K 온도에서 500μl 액체, 1μl 단백질 + 1μl 액체를 적가하였다. 표 5에 열거된 바와 같이, 먼저 2개의 상이한 유형의 작은 결정을 발견하였다.
(표 5)
γSIFN-co 결정체의 스크린
Figure 112006013245577-PCT00012
2. 데이터 수집 및 프로세싱
X-레이 회절 데이터의 수집 및 결정학의 예비분석에 결정 I를 사용하였다. 파라미터의 시험 또한 완성하였다. 상기 회절 데이터는 실온하에서 수집하였다. 결 정 I(조건 I)을 얇은 실리콘 처리된 월(wall) 튜브내로 삽입하였다. BrukerAXS Smart CCD 검출기를 사용함으로써, Nonius FR591 X-레이 발생기에 의해 광원 CuKα(λ=1.5418Å)을 생성하였다. 광력 2000KW(40kv x 50mA), 파장 1.00Å, 폭팔 60초하에서
Figure 112006013245577-PCT00013
, 결정 및 검출기간의 거리는 50mm이었다. 데이터는 Bruker 회사가 제조한 Proteum Procedure Package를 사용하여 프로세스하였다. 결정 회절 패턴(부분적으로)에 있어서는 도 7을 참조하기 바람. 프로세스 결과는 표 6을 참조하기 바람.
(표 6)
결정학 파라미터의 결과
파라미터
a(Å) 82.67
b(Å) 108.04
c(Å) 135.01
α(°) 90.00
β(°) 90.00
γ(°) 98.35
스페이스 그룹 P2 또는 P21
분리의 선명도 5Å
비대칭 분자 # 10
용해 57.6%
또한, 이전 간행물을 토대로 한 γSIFN-co에 대한 결정 성장은 없었다. γSIFN-co에 대해 가장 유사한 결과는 사람 huIFN-a2b이었으나 상기 스크린은 매우 복잡하였다. 3회 살포한 후, 결정은 0.5x0.5x0.3mm로 성장하였으며, 분리의 선명도는 2.9Å이었으며, 스페이스 그룹은 P21이었다. 상기 결정은 또한 크고, 비대칭 분자 수가 6개이었으며 용해는 약 60%이었다.

Claims (16)

  1. a) 단백질의 코돈 용법을 변경하는 단계;
    b) 정제된 단백질을 수득하기 위해 상기 변경된 코돈을 사용하여 단백질을 발현시키는 단계; 및
    c) 변경된 코돈 용법을 갖는 발현된 단백질을 변경된 코돈 용법을 갖지 않는 단백질과 비교하는 단계를 포함하는 상기 단백질의 1차 아미노산 서열을 바꾸지 않고 단백질의 기능을 조절하기 위한 방법에 있어서, 기능의 증가 또는 새로운 기능의 확인은 상기 단백질의 기능이 조절되었음을 나타내는 방법.
  2. 제 1항에 있어서, 상기 변경된 코돈 용법은 상기 단백질의 높은 발현을 초래하는 방법.
  3. a) 단백질의 코돈 용법을 변경하는 단계;
    b) 정제된 단백질을 수득하기 위해 상기 변경된 코돈을 사용하여 단백질을 발현시키는 단계; 및
    c) 변경된 코돈 용법을 갖는 발현된 단백질을 변경된 코돈 용법을 갖지 않는 단백질과 비교하는 단계를 포함하는 상기 단백질의 1차 아미노산 서열을 바꾸지 않고 향상되거나 또는 새로운 기능을 갖는 단백질의 제조 방법에 있어서, 기능의 증가 또는 새로운 기능의 확인은 향상 및 새로운 기능을 갖는 단백질이 제조되었음을 나타내는 방법.
  4. 제 1항에 있어서, 상기 변경된 코돈 용법은 상기 단백질의 높은 발현을 초래하는 방법.
  5. 제 3항 또는 제 4항의 방법에 의해 제조되는 단백질.
  6. 독특한 2차 또는 3차 구조를 갖는 제 5항의 단백질.
  7. 발현될 때 향상된 또는 새로운 기능을 나타내는 변경된 코돈을 갖는 합성 유전자.
  8. 제 7항의 유전자를 포함하는 벡터.
  9. 제 7항의 유전자를 포함하는 발현 시스템.
  10. 제 7항의 유전자를 포함하는 숙주 세포.
  11. 선택된 코돈 선호(codon preference)를 갖는 인공 유전자를 적절한 숙주내로 도입, 상기 단백질의 발현을 위한 적절한 조건하에서 상기 도입된 숙주를 배양 및 상기 발현된 단백질을 채취하는 것을 포함하는 향상된 기능 또는 새로운 기능의 단백질을 생성하는 방법.
  12. 제 11항에 있어서, 상기 인공 유전자는 효과적으로 벡터에 결합되는 방법.
  13. 제 11항에 있어서, 발효 배양액(broth)으로부터 상기 단백질의 추출 또는 봉입체의 수집 및 채취된 단백질의 변성 및 복원을 포함하는 방법.
  14. 제 11항 내지 제 13항 중 어느 한 항의 방법에 의해 제조된 단백질.
  15. 제 5항, 제 6항 또는 제 14항의 단백질을 포함하는 조성물 및 적절한 담체.
  16. 제 5항, 제 6항 또는 제 14항의 생성된 단백질을 포함하는 약제학적 조성물 및 약제학적으로 허용가능한 담체.
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