KR20020067623A - 발효에 의한 o-아세틸-l-세린의 제조방법 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 발효에 의한 O-아세틸-L-세린의 제조방법에 관한 것으로, 그 제조방법에서는 야생형(wild type)에서 유도되고, 그 야생형과 대비할때 O-아세틸-L-세린의 내생적형성(endogenous formation)이 증가되고, O-아세틸-L-세린의 유출이 증가되는 미생물균주를 PH5.1~6.5로 고정시킨 발효배지에 배양시킴을 특징으로 한다.
Description
본 발명은 발효에 의한 O-아세틸-L세린의 제조방법에 관한 것이다.
발효에 의한 아미노산의 여러가지 제조방법은 통상적이다.
이들의 제조방법에는 특히 L-글루타민산, L-라이신 및 L-트레오닌 등 경제적인 관점에서 비교적 가치가 높은 대표적인 20종의 단백질발생아미노산의 제조방법이 있다.
그러나, 단백질발생아미노산의 제조방법에 대한 다수의 보고서가 증가하는 취세에 있는바, 이들의 단백질발생아미노산은 L-페닐알라닌 및 L-시스테인 등의 아미노산으로 소규모위 시장에서 년간 1000~10,000톤의 범위에 달한다.
위에서 설명한 방법과 대비하여, 그 대응되는 20종의 단백질발생아미노산의 생합성 전구물질의 제조방법은 별로 공지된 바 없다.
그러나, 이들의 전구물질은 정확히 말하면 키랄센터(chiral centers)를 자주 갖고있으므로 관심있는 생성물을 나타낼 수 있고, 약학적으로 활성인 화합물을 합성하는 구성블록으로 사용할 수 있는 전구물질이다.
예로서, 특허문헌 WO 00/44923 명세서에서는 시키미산(shikimic acid)의 제조방법에 대하여 기재되어 있는 바, 시키미산은 방향족 아미노산의 생합성에서 중간체이다.
또 다른 예로는 특허문헌 EP 0994190A2 명세서에서는 L-메티오닌의 전구물질로서 L-호모세린을 제조하기 위한 발효의 사용에 대하여 기재되어있다.
O-아세틸-L-세린은 L-시스테인의 생합성 전구물질이다.
생합성 전구물질은 그 자신의 우측에 아미노산을 가지며, 히드록시 작용에서 아세틸화시키는 L-세린에 의해 세균성 식물대사(bacterial and plant metabolism)에서 생성된다.
이 반응은 효소로서 세린 O-아세틸전이효소[EC 2.3.1.30]에 의해 촉진되며, 그 전이효소는 cysE 유전자에 의해 엔코팅된다.
이 세포에서, O-아세틸-L-세린을 더 반응시켜 L-시스테인을 생성한다.
이 반응에서, 아세테이트 작용은 티올작용으로 대치시킨다.
발효에 의한 O-아세틸-L-세린의 제조방법에서 기술적인 문제가 발생한다.
즉, 기재가 대단히 불안정(labile)하게 되어 PH4.0 이상에서 O-아세틸-L-세린으로 이성화하는 결과를 초래한다.
PH7.6에서 반응속도는 1% × min-1로 된다(타이등, 1995, Biochemistry 34: 12311-12322참조).
이와같은 기술적 구성은 최소한 1일 12시간 동안 통상적으로 실시하는 발효처리후에 이와같은 조건하에서 상당한 량의 O-아세틸세린을 검출할 수 없다는 것을 의미한다.
이성화반응은 비가역적이며 반응속도는 PH값이 증가함에 따라 더 증가한다.
그 아미노작용이 차단(block)되므로 N-아세틸-L-세린은 O-아세틸-L-세린과 대비하여 볼때 펩티드의 합성에 더 이상 사용할 수 없다.
또 다른 기술적 문제점으로는 세포내 O-세틸-L-세린의 레벨이 대단히 저하되어 강력하게 조절시켜야 할 필요성이 있다.
한편으로, 세린아세틸 전이효소는 L-시스테인에 의해 알로스테릭성 (allosteric)을 억제시키며, 그 결과 L-시스테인의 ㎛농도의 존재하에서 O-아세틸-L-세린을 합성할 수 없다.
다른 한편으로, 이성화 생성물로서 N-아세틸-L-세린은 황레귤론(sulfur regulon)의 유도물질(inducer)로 작용함으로써 O-아세틸-L-세린과 황의 반응이 신속하게 유도되어 L-세린을 생성한다.
참고문헌(Dassler 등; 2000, Mol.Microbiol. 36: 1101-1112) 에서는 세포막단백질 YdeD(=Orf299)을 과잉생성하는 세포가 그 배양배지에서 L-시스테인, 2-메틸티아졸리딘-2,4-디카르복실산 및 O-아세틸-L-세린을 분비하는 것으로 보고한 바 있다.
그러나, O-아세틸-L-세린은 극미량으로 0.12g/ℓ만을 검출할 수 있었고, 진탕플라스크 실험에만 검출할 수 있었다.
반면에, 영양공급을 높힘으로써 높은 수율을 얻을 수 있는 발효실험에서는 N-아세틸-L-세린만을 얻게되었다.
O-아세틸-L-세린은 PH4-5에서만 안정성이 충분하다는 점을 언급하였다.
그러나, 이와같은 PH의 범위에서는 에쉐리키아콜리(Escherichia coli)등 호중성균(neutrophilic bacteria)의 성장이 빈약하므로 발효에 의한 제조에 적합하지 않다.
Orf299를 사용하여 PH7.0에서 발효에 의한 N-아세틸-L-세린의 제조방법은 특허문헌 EP 0885962 A1 명세서에 기재되어있다.
이 특허문헌의 경우 Orf299 유전자(이특허문헌에서는 SEQ.ID.NO: 3으로 지정되어있음)는 적합한 cysE 대립유전자(alleles)와 조합하였다.
이들의 대립유전자는 세린아세틸전이효소를 엔코팅하며, 세린아세틸전이효소는 L-시스테인에 의해 피드백억제(feedback inhibition)을 저하시켰다.
이 결과, 세포내에서 얻어지닌 O-아세틸-L-세린의 생성을 증가시켰으며, 신속한 이성화반응에 의해 N-아세틸-L-세린의 축적이 최대로 되었다.
특허문헌 WO97/15673 명세서에 기재되어 있는 바와 같이 피드백억제를 저하시키는 cysE 대립유저자의 사용으로는 역시 O-아세틸-L-세린의 축적을 유도할 수없다.
이와같은 방법을 사용할때 세포내에서 O-아세틸-L-세린의 생성을 증가시키나 L-시스테인이 세포밖에서 검출되어 하나의 생성물로서 얻을 수 있는 범위내에 존재할뿐이다.
O-아세틸-L-세린을 제조할때 또 다른 중요한 기술적 문제점은 참고문헌(Dassler 등; 2000, Mol. Microbiol. 36: 1101-1112)에서 보고된 바 있다.
Orf 299의 과잉생성으로 균성장의 장해가 극심하게 되었다.
이것은 세포내에서 유도물질 N-아세틸-L-세린의 결핍으로 인하여 황레귤론(sulfur regulon)의 유도가 없기 때문이다.
본 발명의 목적은 O-아세틸-L-세린의 불안정성과 세포에서 O-아세틸-L-세린을 효과적으로 유출시키는 네가티브 생리결과(negative physiological consequences)에도 불구하고 O-아세틸-L-세린의 고수율을 얻을 수 있는 발효에 의한 제조방법을 제공하는 데 있다.
도 1은 본 발명의 실시예 1에 의해 O-아세틸-L-세린을 이성화시켜 N- 아세틸-L-세린을 얻을때 시간[분]에 따른 함량 [g/ℓ]관계를 나타낸 그라프이다.
본 발명은 야생형(wild type)에서 유도되고 O-아세틸-L-세린의 내생적 형성과 O-아세틸-L-세린의 유출이 야생형과 비교하여 향상되는 미생물균주를 PH5.1~6.5의 범위로 조절시키는 발효배지내에서 배양시켜 달성할 수 있다.
즉, 본 발명에 있어서 위에서 설명한 바와 같이 특성이 있는 미생생균주가 O-아세틸-L-세린을 다량으로 분비하며, O-아세틸-L-세린이 PH5.1~6.5의 발효배지에서 안정성이 충분하고, 동시에 O-아세틸-L-세린 분비세포에 대한 위에서 설명한 생리적인 문제점은 피드백 저항성 cysE 대립유전자를 사용하고 O-아세틸-L-세린을 증가량으로 공급함으로써 상당한 범위로 완화시킬 수 있다는 것을 기대이상으로 확인하였다.
발효중에 발효배지의 PH는 5.5~6.5의 범위가 바람직하며, 특히 PH5.5~6.0이 바람직하다.
본 발명에 의한 제조방법에서 사용할 수 있는 미생물균주는 O-아세틸-L-세린의 내생적 형성증가를 나타내며 O-아세틸-L-세린의 유출증가를 나타내는데 그 특성이 있다.
이와같은 특성의 미생물균주는 이 분야기술에서 공지되어있다.
O-아세틸-L-세린의 내생적형성 증가는 예로서 아래의 특허문헌 및 참고문헌에서 기재되어 있는 바와 같이 수식(modified) cysE 대립유전자를 미생물균주에 도입시켜 얻을 수 있다.
특허문헌 WO 97/15673, 또는
참고문헌 Nakamori S. 등, 1998, Appl. Env. Microbiol. 64: 1607-1611, 또는
참고문헌 Takagi H. 등, 1999. FEBS Lett. 452: 323-327
이들의 cysE 대립유전자는 세린 O-아세틸전이효소를 엔코딩하여 세린 O-아세틸전이효소는 시스테인에 의해 피드백억제를 감소시킨다.
따라서, 그 O-아세틸-L-세린의 형성은 세포내 시스테인 레벨에서 상당한 범위로 결합되어 있지 않다.
유전자생성물이 O-아세틸-L-세린의 유출을 발생하는 유출유전자의 표현을 증가시켜 O-아세틸-L-세린의 유출을 증가시킬 수 있다.
참고문헌(Dassler 등, 2000,Mol. Microbiol. 36: 1101-1112)과 특허문헌 EP 0885962 A1(미국특허출원 09/097759에 대응됨) 명세서에 기재되어 있는 ydeD 유전자는 이와같은 특성을 가진 특히 바람직한 유출유전자이다.
수식 cysE 대립유전자 및/또는 유출유전자는 단일복제 또는 그밖에 증가복제수로 사용되는 균주중에 존재한다.
이들의 유전자는 크로모솜에 의해 엔코딩할 수 있거나, 또는 플라스미드 등 자가복제요소(self-replicating elemnets)상에 위치 시킬 수 있다.
유전자의 표현은 예로서 통상의 기술자에게 공지된 적합한 촉진제시스템을 사용하여 증가시킬 수 있다.
본 발명의 바람직한 구성에서 중간범위의 복제수를 가진 플라스미드상에서 자연상태의 촉진제(native promoter) 또는 gapD의 촉진제를 가지며, cysE 대립유전자 및/또는 ydeD 유전가 있는 미생물이 사용된다.
이와같은 구성의 예로는 특허문헌 EP 0885962 A1명세서상에 구체적으로 기재되어 있는 pACYC184-cysEX-GAPDH-ORF306이 있다.
원칙적으로, 일반적인 방법에 사용할 수 있고 발효에 의한 방법에서 용이하게 배양할 수 있는 모든 미생물균주는 이와같은 특성을 가진 균주의 제조에 적합하다.
엔테로박테리아시애족(Enterobacteriaceae family)의 균사용이 바람직하다.
특히, 종에쉐리키아콜리(species Escherichia coli)의 생물체의 사용이 바람직하다.
이들의 균주의 제조는 위에서 설명한 문헌에 기재되어 있으며, 본 발명의 일부가 아니다.
본 발명에 의한 방법에 적합한 균주는 또 특허문헌 EP 0885962 A1명세서(미국특허출원 09/097759에 대응됨)에 기재되어 있는 바와 같이 시스테인 및 시스테인 유도체의 제조에 적합하다.
그러나, 이 경우 L-시스테인 또는 그 유도체중 하나의 최적량을 얻기 위하여 설페이트 또는 티오설페이트등 무기질황의 적합한 공급원을 필요로 한다.
그러나, 본 발명에 의한 방법에서 O-아세틸-L-세린을 시스테인으로의 전환을 더 필요로 하지 않기 때문에 발효중에 황공급원(sulfur source)을 혼합시키지 않는다.
시스테인의 세포단백질 합성의 필요요건을 충족하도록 배지중에 적합한 량의 황공급원(즉, 설페이트 또는 티오설페이트)의 존재가 필요할 뿐이다.
영양배지중의 적합한 양은 5~50mM의 황이 바람직하다.
미생물균주를 사용하여 O-아세틸-L-세린을 제조하는 본 발명에 의한 방법은 발효조내에서 공지의 방법으로 실시하나 발효중에 PH값을 기대이상으로 낮게 고정시켜 실시한다.
미생물균주는 연속식배양으로, 배치(batch)배양으로 또는 바람직하게는 피드-배치배양(fed-batch culture)으로하여 발효조내에서 성장시킨다.
탄소원(C source)으로 당(sugar), 당알코올 또는 유기산을 사용하는 것이 바람직하다.
본 발명에 의한 방법에서 특히 바람직하게 사용되는 탄소원으로는 글루코오스, 락토오스 또는 글리세롤이 있다.
탄소원은 발효중에 발효조내에서 탄소원의 함량은 0.1~50g/ℓ의 범위로 유지하도록 혼합하는 것이 바람직하다.
0.5~10g/ℓ의 범위가 특히 바람직하다.
본 발명에 의한 방법에서 바람직하게 사용되는 질소원으로는 암모니아, 암모늄염 또는 단백질 가수분해물이 있다.
암모니아를 일정한 PH로 유지하기 위한 교정제(correcting agents)로 사용할 경우 발효중에 이와같은 질소원을 규칙적으로 공급한다.
첨가시킬 수 있는 다른 배지 첨가제에는 원소 인, 클로린, 소듐, 마그네슘, 질소, 포타슘, 칼슘 및 철의 염과, 미량(즉, ㎛농도)으로 원소몰리브덴, 보론, 코발트, 망간, 아연 및 니켈의 염이 있다.
또, 유기산(즉, 아세테이트 또는 시트레이트), 아미노산(즉, 이소류신) 및 비타민(즉, B1,B6)을 배지에 첨가할 수도 있다.
사용할 수 있는 복합영양원의 예로는 이스트엑스(yeast extract), 콘스팁리커 (corn steep liquor), 콩가루(soybean meal) 및 맥아엑스(malt extract)가 있다.
배양온도는 15~45℃이며, 30~37℃의 온도가 바람직하다.
발효는 호기성성장조건하에서 실시하는 것이 바람직하다.
산소는 압축공기 또는 순수산소를 사용하여 발효조내에 공급한다.
위에서 설명한 방법에 따라 발효시킨 미생물은 발효기간 1~3일간에 걸처 배양배지내에 효율높게 0-아세틸-L-세린을 분비한다.
본 발명을 더 명백하게 하기 위하여 다음 실시예를 들어 구체적으로 설명한다.
다음 실시예를 실시하는 데 사용되는 균주 에쉐리키아콜리(Escherichia coli) W3110/pACYC184-cysEX-GAPDH-ORF306은 부다베스트조약에 따라 DSMZ에 기탁번호 DSM 13495로 기탁되었다.
실시예 1: O-아세틸-L-세린을 이성화시켜 N-아세틸-L-세린을 얻음
발효조건에 근접한 조건하에서 이성화반응의 더 정확한 압흔(impression)을 얻기위하여, O-아세틸-L-세린 0.9g을 발효배지(실시예 3) 100㎖에 도입하였다.
그 다음으로, 28%의 암모니아를 사용하여 PH7.0으로 조정하였다.
얻어진 샘플은 반응온도 32℃로 유지시키면서 여러가지의 시간에서 채취하였다.
이들의 샘플은 LUNA 5μC18(2)컬럼(Phenomenex, 독일) 상에서 실시한 역상(reversed phase) HPLC에 의해 분석하였다.
용리제로서 희석인산(진한인산 0.1㎖/ℓ)을 유량 0.5㎖/min로 사용하였다.
그 결과를 도 1에 나타내었다.
실시예 2: 생성균주의 예비배양물
발효에 사용하는 예비배양물로, 테트라사이클린 15㎖/ℓ룰 추가로 포함하는 LB배지(트립톤 10g/ℓ, 이스트엑스 5g/ℓ, NaCl 10g/ℓ)20㎖를 균주 W3110/pACYC184-cysEX-GAPDH-ORF306(특허문헌 EP 0885962A1 명세서에 기재되어 있으며 미국특허출원 09/097759에 대응됨)와 함께 진탕기 인큐베이터(shaker incubator)내에서 온도 30℃와 150rpm에서 배양하였다.
7시간후, 그 얻어진 전체혼합액을 옮겨 글루코오스 5g/ℓ, 비타민 B10.5mg/ℓ 및 테트라사이클린 15mg/ℓ을 보충시키고, 100㎖ SM1 배지로 이입(移入)하였다.
SM1 배지는 다음과 같은 화합물로 조성된 것이다.
K2HPO412g/ℓ, KH2PO43g/ℓ, (NH4)2SO45g/ℓ, MgSO4×7H2O 0.3g/ℓ, Cacl2×2H2O 0.015g/ℓ, FeSO4×7H2O 0.002g/ℓ, 소듐시트레이트 × 2H2O 1g/ℓ, NaCl 0.1g/ℓ, 미량원소용액 1㎖/ℓ 이미량원소용액은 Na2MoO4× 2H2O 0.15g/ℓ, Na3BO32.5g/ℓ, CoCl2× 6H2O 0.7g/ℓ, CuSO4× 5H2O 0.25g/ℓ, MnCl2× 4H2O 1.6g/ℓ, ZnSO4× 7H2O 0.3g/ℓ로 이루어짐.
그 다음 배양은 17시간동안 150rpm으로 온도 30℃에서 실시하였다.
실시예 3: 발효에 의한 O-아세틸- L-세린의 제조
발효조는 상품(Biostat M장치, 독일연방공화국 Melsungen 에 있는 Braun Biotech 회사에서 공급)을 사용하였으며, 최대 배양용량은 2ℓ이다.
발효배지 900㎖를 포함한 발효조에서는 실시예 2의 예비배양물과 함께 600nm의 흡광도(광학밀도) 약 3에서 배양하였다.
그 발효배지는 다음과 같은 성분으로 이루어진 것을 사용하였다.
글루코오스 15g/ℓ, 트립톤 10g/ℓ, 이스트엑스 5g/ℓ, (NH4)2SO45g/ℓ, KH2PO41.5g/ℓ, NaCl 0.5g/ℓ, MgSO4× 7H2O 0.3g/ℓ, CaCl2×2H2O 0.015g/ℓ, FeSO4× 7H2O 0.075g/ℓ, 소듐시트레이트 × 2H2O 1g/ℓ 및 미량원소용액 1㎖/ℓ(위에서 설명한 것과 같음), 비타민 B1 5mg/ℓ 및 테트라사이클린 15mg/ℓ, 25% 암모니아로 PH6.0으로 조정함.
발효중에 온도는 32℃로 설정하였고, PH는 25% 암모니아를 혼합시켜 PH6.0으로 일정하게 유지하였다.
그 배양물에 대하여 살균압축공기를 1.5vol/vol/min의 양으로 처리하고 교반속도 200rpm으로 교반하였다.
산소포화도가 50%로 되었을때 50%의 산소포화도(900rpm에서 100%포화도까지 눈금을 가진 pO2프로브를 사용하여 측정함)를 유지하기 위하여 교반기의 회전속도를 제어장치에 의해 1200rpm으로 증가시켰다.
발효조의 글루코오스함량 (최초에 15g/ℓ이었음)이 약 5~10g/ℓ로 되었을때 즉시 글루코오스 56%용액을 혼합하였다.
공급은 유량 6-12㎖/h로 실사하여 발효조내의 글루코오스농도를 글루코오스분석기(YSI, Yellow Springs, Ohio, USA)에 의해 측정하였다.
발효는 28시간동안 계속하였다.
그 다음으로, 샘플을 제거시켜 배양배지에서 원심분리하였다.
그 결과 얻어진 배양여액을 실시예 1에서와 같이 역상(reversed phase)HPLC에 의해 분석하였다.
다음의 표 1에서는 배양여액에서 얻어진 주요한 대사생성물(metabolic products)의 함량을 나타낸다.
대사생성물 | 함량 [g/ℓ] |
O-아세틸-L-세린 | 9.0 |
N-아세틸-L-세린 | 4.2 |
2-메틸티아졸리딘-2,4-디카르복실산 | 1.9 |
PH 5.5이내의 범위에서 동일한 값을 얻었다.
본 발명에 의해, 발효배지의 pH를 5.1~6.5의 범위로 고정시킴으로써 발효배지에서 발효에 의해 O-아세틸-L-세린을 효과적으로 제조할 수 있다.
본 발명에 의해 발효에 의해 제조할때 발효배지의 pH는 5.5~6.5의 범위를 얻을 수 있고, 피드백억제를 감소시키는 세린아세틸 전이효소를 엔코딩하는 cysE 대립유전자를 사용하여 야생형과 대비할때 O-아세틸-L-세린의 내재적 형성을 증가시킬 수 있으며, ydeD 유전자를 사용하여 야생형과 대비할때 O-아세틸-L-세린의 유출을 증가시킬 수 있다.
본 발명에 의해 미생물균주는 에쉐리키아콜리가 가장 바람직하며, 발효조내에서 연속배양, 배치배양 또는 피드배치(fed-batch)배양으로 성장시킬 수 있다.
Claims (19)
- 야생형(wild type)에서 유도되고, 그 야생형과 대비할때 O-아세틸-L-세린의 내생적형성(endogenous formation)의 증가와 O-아세틸-L-세린의 유출(efflux)의 증가를 나타내는 미생물균주를 발효배지에서 배양하는 O-아세틸-L-세린의 발효에 의한 제조방법에 있어서, 발효배지의 pH를 5.1~6.5의 범위로 고정시킴을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 발효에 의한 제조를 할때 발효배지의 pH는 5.5~6.5의 범위를 가짐을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 야생형과 대비할때 O-아세틸-L-세린의 내재적 형성증가는 피드백억제 (feedback inhibition)을 감소시키는 세린아세틸전이효소를 엔코팅하는 cysE 대립유전자를 사용하여 얻어짐을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 야생형과 대비할때 O-아세틸-L-세린의 유출증가는 ydeD 유전자를 사용하여 얻어짐을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 미생물균주는 에쉐리키아콜리(Escherichia coli)임을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 미생물균주는 발효조내에서 연속배양, 배치(batch)배양, 또는 피드배치(fed-batch)배양으로 성장시킴을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 발효배지에는 5~50mM황의 농도에서 황원(S source)을 포함함을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 발효에 의한 제조를 할때에는 탄소원(C source)을 연속적으로 혼합시킴을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 8항에 있어서, 탄소원은 당(sugar), 당알코올 및 유기산의 그룹에서 선택함을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 8항 또는 제 9항에 있어서, 탄소원은 글루코오스, 락토오스 및 글리세롤의 그룹에서 선택함을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 8항에 있어서, 탄소원은 발효중에 0.1~50g/ℓ의 범위에 있도록 혼합시킴을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 암모니아, 암모늄염 또는 단백질 가수분해물을 질소원(N source)으로하여 첨가시킴을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 발효배지에는 원소인, 클로린, 소듐, 마그네슘, 질소, 포타슘, 칼슘 또는 철의 염과, 미량(㎛농도)으로 원소 몰리브덴, 보론, 코발트, 만강, 아연 및 니켈의 염을 첨가시킴을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 13항에 있어서, 발효배지에는 유기산(아세테이트, 시트레이트), 아미노산(이소류신) 및 비타민(B1, B6)을 첨가함을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 14항에 있어서, 발효배지에는 이스트엑스(yeast extract),콘스팁리커 (corn steep liquor), 콩가루(soybean meal) 또는 맥아엑스(malt extract)를 첨가시킴을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 배양온도는 15~45℃의 범위를 가짐을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 제조는 호기성성장상태하에서 실시함을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 17항에 있어서, 호기성성장상태는 압축공기 또는 순수산소에 의해 발효조내에서 산소를 도입시켜 발생시킴을 특징으로 하는 제조방법.
- 제 1항에 있어서, 1일 내지 3일간의 발효시간을 선택함을 특징으로 하는 제조방법.
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