HU225826B1 - Process for the fermentative production of o-acetyl-serin - Google Patents

Process for the fermentative production of o-acetyl-serin Download PDF

Info

Publication number
HU225826B1
HU225826B1 HU0200567A HUP0200567A HU225826B1 HU 225826 B1 HU225826 B1 HU 225826B1 HU 0200567 A HU0200567 A HU 0200567A HU P0200567 A HUP0200567 A HU P0200567A HU 225826 B1 HU225826 B1 HU 225826B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
process according
serine
acetyl
fermentation
fermentation medium
Prior art date
Application number
HU0200567A
Other languages
English (en)
Inventor
Thomas Dr Maier
Tobias Dassler
August Dr Boeck
Original Assignee
Wacker Chemie Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Wacker Chemie Ag filed Critical Wacker Chemie Ag
Publication of HU0200567D0 publication Critical patent/HU0200567D0/hu
Publication of HUP0200567A2 publication Critical patent/HUP0200567A2/hu
Publication of HUP0200567A3 publication Critical patent/HUP0200567A3/hu
Publication of HU225826B1 publication Critical patent/HU225826B1/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/06Alanine; Leucine; Isoleucine; Serine; Homoserine

Description

A leírás terjedelme 6 oldal (ezen belül 1 lap ábra)
HU 225 826 Β1
A találmány tárgya eljárás O-acetil-L-szerin fermentatív előállítására.
Aminosavak előállítására széles körben alkalmaznak fermentatív folyamatokat. Ezekkel az eljárásokkal elsősorban a húsz proteinogén aminosav gazdaságilag releváns képviselőit, például L-glutaminsavat, L-lizint vagy L-treonint, állítják elő. Évi 1000-10 000 tonna mennyiségben kisebb jelentőségű proteinogén aminosavakat, így L-fenil-alanint és L-ciszteint is előállítanak.
Megfelelő eljárás a húsz proteinogén aminosav bioszintetikus előzményének előállítására azonban alig ismert. Ezek az előzmények pedig értékes termékek lehetnek, mivel gyakran királis centrumot tartalmaznak, és kiindulási anyagként alkalmazhatók gyógyszerhatóanyagok szintéziséhez. A WO 00/44923 számú irat sikimisav előállítását ismerteti, amely aromás aminosavak bioszintézisénél előforduló intermedier. További példaként említhető az EP 994.190 számú irat, amely L-homoszerin fermentatív előállítását ismerteti, ami az L-metionin előzménye.
Az O-acetil-L-szerin az L-cisztein bioszintézisének egyik előzménye. A vegyület önmagában egy aminosav, ami baktériumok és növények anyagcseréjében L-szerinnek a hidroxilcsoporton történő acetilezésével képződik. Ezt a reakciót a szerin-O-acetil-transzferáz enzim (EC 2.3.1.30) katalizálja, amit a cysE-gén kódol. Az O-acetil-L-szerin a sejtben L-ciszteinné alakul. Ennek során az acetátcsoport tiolcsoportra cserélődik.
Az O-acetil-L-szerin fermentatív előállításának nehézsége abból a tényből ered, hogy az anyag nagyon labilis, és pH=4,0 érték felett N-acetil-L-szerinné izomerizálódik. A reakció sebessége pH=7,6 értéken 1%/perc [Tai és munkatársai: Biochemistry, 34, 12 311-12 322 (1995)]. Ez azt jelenti, hogy ilyen körülmények között egy fermentációs folyamat után, ami a szokásos módon legalább másfél napig tart, szignifikáns mennyiségű O-acetil-L-szerin nem mutatható ki. Az izomerizációs reakció irreverzíbilis, és sebessége a pH-érték növekedésével fokozódik. Az O-acetil-L-szerinnel ellentétben az N-acetil-L-szerin az aminocsoport blokkolása miatt peptidszintézisben nem alkalmazható.
További probléma, hogy az O-acetil-L-szerin szintje a sejtben nagyon alacsony és erős szabályozás alá esik. Egyrészről a szerin-acetil-transzferáz enzimet az L-cisztein alloszterikusan gátolja, és ezért pmol/l koncentrációjú L-cisztein jelenlétében az O-acetil-L-szerin szintézise nem lehetséges. Másrészt az izomerizálással keletkező N-acetil-L-szerin indukálja a kénregulont, melynek hatására az O-acetil-L-szerin szulfiddal reagálva gyorsan L-ciszteinné alakul.
DaBler és munkatársai: Mól. Microbiol., 36, 1101-1112 (2000) szerint az YdeD membránproteint (Orf299) túlzott mértékben termelő sejtek tenyészközegébe L-cisztein, 2-metil-tiazolidin-2,4-dikarbonsav, valamint O-acetil-L-szerin válik le. Ez utóbbi azonban csak nagyon alacsony, 0,12 g/l értéket ér el, és csak rázólombikos kísérlettel mutatható ki. Az olyan fermentációs kísérletekben, ahol jobb tápanyagellátással nagyobb kitermeléseket értek el, csak N-acetil-L-szerin nyerhető. A szerzők szerint az O-acetil-L-szerin csak pH=4-5 értéken mutat kielégítő stabilitást. Ez a pH-tartomány azonban fermentatív előállításhoz a neutrofil baktériumok, például az Escherichia coli rossz növekedése miatt nem megfelelő.
N-Acetil-L-szerin fermentatív előállítását pH=7,0 értéken Orf299 alkalmazásával az EP 0.885.962 számú irat is ismerteti. Ebben az eljárásban az orf299 gént (az irat szerint 3. számú szekvencia) megfelelő cysE-alléllel kombinálják. Ez olyan szerin-acetil-transzferáz enzimet kódol, amely csökkentett visszacsatolásos gátlást mutat az L-cisztein vonatkozásában. Ezzel a sejtben fokozható az O-acetil-L-szerin termelése, ami végül a gyors izomerizálódás következtében N-acetil-L-szerin formájában akkumulálódik.
A WO 97/15673 számú irat szerint önmagában a csökkentett visszacsatolásos gátlással rendelkező cysE-allél alkalmazása nem vezet az O-acetil-L-szerin akkumulálódásához. Intracellulárisan ugyan fokozódik az O-acetil-L-szerin képződése, de extracellulárisan vagyis termékként megfogható formában - ennél az eljárásnál is csak L-cisztein mutatható ki.
Az O-acetil-L-szerin előállításánál jelentős problémát okoz az a DaBler és munkatársai: Mól. Microbiol., 36, 1101-1112 (2000) szerinti tény, hogy a Orf299 túlzott termelése erősen befolyásolja a baktériumok növekedését. Ennek oka a kénregulon indukciójának hiánya, ami az N-acetil-L-szerin-induktor intracelluláris hiányával magyarázható.
A találmány feladata olyan fermentatív eljárás kidolgozása, amely az O-acetil-L-szerin instabilitása ellenére és az O-acetil-L-szerinnek a sejtből történő hatékony kiáramlásából származó negatív fiziológiai következmények ellenére nagy kitermeléssel biztosítja az O-acetil-L-szerin termelését.
A találmány tárgya tehát eljárás O-acetil-L-szerin fermentatív előállítására egy vad típusból levezetett mikroorganizmustörzsnek, amely a vad típushoz viszonyítva fokozott endogén O-acetil-L-szerin-képzéssel és a vad típushoz képest fokozott O-acetil-L-szerin-kiáramlással rendelkezik, egy fermentációs közegben történő tenyésztésével, azzal jellemezve, hogy a fermentációs közeget pH=5,1-6,5 tartományba állítjuk.
Meglepő módon azt találtuk ugyanis, hogy
- valamely fent megadott jellemzőkkel rendelkező mikroorganizmustörzs nagy mennyiségben választ ki O-acetil-L-szerint,
- az O-acetil-L-szerin pH=5,1-6,5 értékű fermentációs közegben kielégítően stabil, és
- az O-acetil-L-szerint kiválasztó sejtek fent említett fiziológiai problémái nagy mennyiségű O-acetil-L-szerin jelenlétében is messzemenően kiküszöbölhetők visszacsatolástól független cysE-allél alkalmazásával.
A fermentációs közeg a fermentálás során pH=5,5-6,5, különösen előnyösen pH=5,5-6,0 értéket mutat.
A találmány szerinti eljárásban alkalmazható mikroorganizmustörzsek jellemzője
- a fokozott endogén O-acetil-L-szerin-képzés és
- fokozott O-acetil-L-szerin-kiáramlás.
HU 225 826 Β1
Ilyen törzsek a technika állásából ismertek. A fokozott endogén O-acetil-L-szerin-termelés biztosítható, ha egy mikroorganizmustörzsbe módosított cysE-allélt viszünk be például a WO 97/15673 számú irat, vagy Nakamori S. és munkatársai: Appl. Env. Microbiol., 64, 1607-1611 (1998) vagy Takagi H. és munkatársai: FEBS Lett., 452, 323-327 (1999) szerint (melyekre teljes terjedelmükben hivatkozunk).
Egy cysE-allél olyan szerin-O-acetil-transzferáz enzimet kódol, amely csökkentett visszacsatolásos gátlást mutat a cisztein vonatkozásában. Ezáltal az O-acetil-L-szerin képződése messzemenően független a sejt ciszteinszintjétől.
A fokozott O-acetil-L-szerin-kiáramlás biztosítható egy effluxgén fokozott expresszálásával, melynek génterméke kiváltja az O-acetil-L-szerin sejtből történő kijutását.
Effluxgénként különösen előnyösen alkalmazható a DaBlerés munkatársai: Mól. Microbiol., 36, 1101-1112 (2000) és az EP 0.885.962 számú irat szerinti (melyekre teljes terjedelmükben hivatkozunk) ydeD-gén.
A módosított cysE-allél, illetve az effluxgén az alkalmazott törzsben előfordulhat egy kópia vagy több kópia formájában. Ezek lehetnek kromoszomálisan kódolt formában vagy önmagától replikálódó elemek formájában, például a plazmidban lokalizált állapotban.
A gének fokozott expresszálása elérhető például megfelelő promoterrendszer alkalmazásával, ami szakember számára ismert.
A találmány értelmében előnyösen olyan mikroorganizmust alkalmazunk, amely cysE-allélt, illetve ydeD-gént tartalmaz natív, illetve gapDH-promoterrel egy plazmidban és közepes kópiaszámban. Ilyen például a pACYC184-cysEX-GAPDH-ORF306 szerkezet, amit az EP 0.885.962 számú irat részletesen ismertet.
Az Ilyen törzsek előállítására elvben bármely mikroorganizmustörzs felhasználható, amely genetikai módszerekkel hozzáférhető, és fermentációs folyamatban jól tenyészthető. Előnyösen alkalmazhatók az Enterobacteriaceen családba tartozó baktériumok. Különösen előnyösen alkalmazható az Escherichia coli. Az ilyen törzsek előállítása az idézett iratokból ismert, és nem képezi a találmány szerinti megoldás részét.
A találmány szerinti eljárásban alkalmazható törzsek, mint az EP 0.885.962 számú irat ismerteti, felhasználhatók cisztein és ciszteinszármazékok előállítására is. Ez utóbbihoz azonban megfelelő mennyiségű szervetlen kénforrás, például szulfát vagy tioszulfát adagolása szükséges optimális mennyiségű L-cisztein vagy ciszteinszármazék kinyeréséhez.
A találmány szerinti eljárás során azonban a fermentáció során kénforrást nem adagolunk, mivel az O-acetil-L-szerin utólagos átalakulása ciszteinné nem kívánatos. Csupán annyit kell biztosítani, hogy a közegben kielégítő mennyiségű kénforrás, például szulfát vagy tioszulfát legyen jelen, a sejtek proteinszintéziséhez szükséges mennyiségű cisztein biztosítása érdekében. A tápközeg kéntartalma előnyösen 5-50 mmol/l.
Az O-acetil-L-szerin mikroorganizmustörzsekkel egy fermentorban történő találmány szerinti előállítását önmagában ismert módon, de a fermentálás alatt szokatlanul alacsony pH-érték beállításával végezzük.
A mikroorganizmustörzs tenyésztése a fermentorban megvalósítható folyamatos tenyésztéssel, szakaszos tenyésztéssel, vagy előnyösen adagolásos-szakaszos tenyésztéssel.
Különösen előnyösen úgy járunk el, hogy a szénforrást folyamatosan adagoljuk a fermentálás alatt.
Szénforrásként előnyösen alkalmazhatók a cukrok, cukoralkoholok vagy szerves savak. A találmány szerinti eljárásban különösen előnyösen alkalmazható a glükóz, laktóz vagy glicerin.
A szénforrás adagolását előnyösen úgy végezzük, hogy a koncentrációt a fermentorban a fermentálás alatt 0,1-50 g/l, különösen előnyösen 0,5-10 g/l értékre állítjuk.
A találmány szerinti eljárásban nitrogénforrásként előnyösen alkalmazható az ammónia, ammóniumsó vagy proteinhidrolizátum. Ha a pH-érték beállításához a fermentáció során ammóniát alkalmazunk, akkor ezt a nitrogénforrást rendszeresen adagoljuk.
A közegben további komponensként alkalmazhatók foszfort, klórt, nátriumot, magnéziumot, nitrogént, káliumot, kalciumot és/vagy vasat tartalmazó sók, valamint nyomokban (vagyis pmol/l koncentrációban) molibdént, bőrt, kobaltot, mangánt, cinket és nikkelt tartalmazó sók.
További komponensként a tápközegben alkalmazhatók szervetlen savak, előnyösen acetát és/vagy cifrát, aminosavak, előnyösen izoleucin, valamint vitaminok, előnyösen B1-vitamin és/vagy B6-vitamin.
Komplex tápanyagforrásként alkalmazható például élesztőkivonat, kukoricalikőr, szójaliszt vagy malátaextra ktum.
Az inkubációs hőmérséklet általában 15-45 °C, előnyösen 30-37 °C.
A fermentálást előnyösen aerob növekedési körülmények között végezzük. Az oxigénnek a fermentorba történő bevezetése megvalósítható sűrített levegő vagy tiszta oxigén formájában.
A találmány szerinti eljárással fermentált mikroorganizmusok 1-3 napos fermentációs idő alatt nagy hatékonysággal választanak ki O-acetil-L-szerint a tenyészközegbe.
A találmányt közelebbről az alábbi példákkal mutatjuk be anélkül, hogy az oltalmi kör a példákra korlátozódna. A példákban alkalmazott Escherichia coli W3110/pA-CYC184-cysEX-GAPDH-ORF306 törzs a DSMZ gyűjteményben (Deutsche Sammlung für Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH, Braunschweig, Németország) a DSM 13495 számon került deponálásra a Budapesti Szerződés előírásai szerint.
1. példa
O-Acetil-L-szerin izomerizálódása N-acetil-Lszerinné
A fermentációs körülmények között lejátszódó izomerizálódás közelebbi megismeréséhez 0,9 g O-acetilL-szerint adagolunk 100 ml fermentációs közeghez (lásd a 3. példát). A közeget ezután 25 tömeg% ammó3
HU 225 826 Β1 niával pH=7,0 értékre állítjuk, és 32 °C hőmérsékleten tartjuk. Különböző időpontokban mintát veszünk, és ezeket reverz fázisú HPLC eljárással LUNA 5 μ C18(2) oszlopon (Phenomenex, Aschaffenburg, Németország) analizáljuk 0,1 ml/l koncentrációjú foszforsaveluenssel 0,5 ml/perc áramlási sebesség mellett. Az eredményeket az 1. ábra mutatja.
2. példa
A termelőtörzs előtenyésztése A fermentáció előtenyészeteként 20 ml LB-közeget (10 g/l tripton, 5 g/l élesztőkivonat, 10 g/l NaCI), amely kiegészítő komponensként 15 mg/l tetraciklint tartalmaz, W3110/pACYC184-cysEX-GAPDH-ORF306 törzzsel (EP 0.885.962 számú irat) ojtunk be, és 30 °C hőmérsékleten és 150 fordulat/perc fordulatszámon egy rázóban inkubáljuk. 7 óra elteltével az egész tételt 100 ml SM1-közegbe [12 g/l K2HPO4, 3 g/l KH2PO4, 5 g/l (NH4)2SO4, 0,3 g/l MgSO4*7 H2O, 0,015 g/l CaCI2x2 H2O, 0,002 g/l FeSO4x7 H2O, 1 g/l Na3citrát*2 H2O, 0,1 g/l NaCI, 1 ml/l nyomelemoldat, melynek összetétele 0,15 g/l Na2MoO4x2 H2O, 2,5 g/l Na3BO3, 0,7 g/l CoCI2x6 H2O, 0,25 g/l CuSO4x5 H2O, 1,6 g/l MnCI2x4 H2O és 0,3 g/l ZnSO4*7 H2O] visszük át, amely kiegészítő komponensként 5 g/l glükózt, 0,5 mg/l B1-vitamint és 15 mg/l tetraciklint tartalmaz. A további inkubálást 37 °C hőmérsékleten végezzük 17 órán keresztül és 150 fordulat/perc fordulatszámon.
3. példa
O-Acetil-L-szerin fermentatív előállítása Fermentorként a Braun Biotech cég (Melsungen,
Németország) Biostat M készülékét alkalmazzuk, melynek maximális tenyésztő térfogata 2 liter. A fermentorba 900 ml fermentációs közeget [15 g/l glükóz, 10 g/l tripton, 5 g/l élesztőkvionat, 5 g/l (NH4)2SO4, 1,5 g/l KH2PO4, 0,5 g/l NaCI, 0,3 g/l MgSO4x7 H2O, 0,015 g/l CaCI2x2 H2O, 0,075 g/l FeSO4x7 H2O, 1 g/l Na3citrát*2 H2O és 1 ml/l nyomelemoldat (lásd fenn), valamint 5 mg/l B1-vitamin és 15 mg/l tetraciklin, 25 tömeg% ammóniával pH=6,0 értékre állítva] töltünk, és 2. példa szerinti előtenyészettel (optikai sűrűség 600 nm hullámhosszon mérve mintegy 3) ojtjuk be. A fermentálás alatt a hőmérsékletet 32 °C értéken tartjuk, és a közeget 25 tömeg% ammónia adagolásával állandóan pH=6,0 értéken tartjuk. A tenyészközeget csíramentesített sűrített levegővel levegőztetjük 1,5 térfogat/térfogat/perc mennyiségben, és a kevertetőt 200 fordulat/perc fordulatszámra állítjuk. Az oxigéntelítettségi érték 50%-os csökkenése után a fordulatszámot 1200 fordulat/perc értékre növeljük az 50%-os oxigéntelítettség eléréséhez (meghatározás pO2-szondával, ami 100% telítettségre van kalibrálva 900 fordulat/perc értéken). Amikor a glükóztartalom a kezdeti 15 g/l értékről mintegy 5-10 g/l értékre csökken, megkezdjük az 56 tömeg% glükózoldat adagolását. Az adagolási sebesség 6-12 ml/óra, amivel a glükózkoncentráció a fermentorban 0,5-10 g/l között állandó értéken tartható. A glükóztartalom meghatározását az YSI cég (Yellow Springs, Ohio, USA) glükózanalizátorával végezzük. A fermentáció időtartama 28 óra. A fenti idő letelte után mintát veszünk, és a sejteket centrifugálással elválasztjuk a tenyésztőközegtől. A kapott felülúszót reverz fázisú HPLC eljárással analizáljuk az 1. példában leírt módon. A felülúszóban kapott fő anyagcseretermékek mennyiségét az 1. táblázatban adjuk meg.
1. táblázat
Metabolit Mennyiség (g/l)
O-Acetil-L-szerin 9,0
N-Acetil-L-szerin 4,2
2-Metil-tiazolidin-2,4-dikarbonsav 1,9
Hasonló értékek érhetők el pH=5,5 értéken végzett kísérlettel.

Claims (17)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Eljárás O-acetil-L-szerin fermentatív előállítására egy mikroorganizmustörzsnek, amely ciszteinen keresztül csökkentett visszacsatolásos gátlás alá vetett szerin-acetil-transzferáz enzimet kódoló cysE-alléllal és a vad típushoz képest fokozott O-acetil-L-szerin-kiáramlással rendelkezik, egy fermentációs közegben történő tenyésztésével, azzal jellemezve, hogy a fermentációs közeget pH=5,5-6,0 tartományba állítjuk.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a vad típushoz képest fokozott O-acetil-L-szerinkiáramlást egy ydeD-génnel érjük el.
  3. 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a mikroorganizmustörzs Escherichia coli.
  4. 4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a mikroorganizmustörzset egy fermentorban folyamatos tenyésztés, szakaszos tenyésztés vagy előnyösen adagolásos-szakaszos tenyésztés formájában növesztjük.
  5. 5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a tápközeg 5-50 mmol/l kén koncentrációban egy kénforrást tartalmaz.
  6. 6. Az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a fermentatív előállítás során folyamatosan egy szénforrást adagolunk.
  7. 7. A 6. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy cukor, cukoralkoholok vagy szerves savak közül megválasztott szénforrást alkalmazunk.
  8. 8. A 6. vagy 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy glükóz, laktóz vagy glicerin közül megválasztott szénforrást alkalmazunk.
  9. 9. A 6-8. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a szénforrás adagolásával a fermentáció alatt 0,1-50 g/l koncentrációt állítunk be.
  10. 10. Az 1-9. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy nitrogénforrásként ammóniát, ammóniumsót vagy proteinhidrolizátumot adagolunk.
  11. 11. Az 1-10. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a fermentációs közeghez foszfort, klórt, nátriumot, magnéziumot, nitrogént, káliumot,
    HU 225 826 Β1 kalciumot és vasat tartalmazó sót, és nyomokban (vagyis pmol/l koncentrációban) molibdént, bort, kobaltot, mangánt, cinket és nikkelt tartalmazó sót adagolunk.
  12. 12. Az 1-11. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a fermentációs közeghez 5 szerves savakat, előnyösen acetátot és/vagy citrátot, aminosavakat, előnyösen izoleucint, és vitaminokat, előnyösen B1-vitamint és/vagy B6-vitamint adagolunk.
  13. 13. Az 1-12. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a fermentációs közeghez 10 élesztőkivonatot, kukoricalikőrt, szójalisztet vagy malátaextraktumot adagolunk.
  14. 14. Az 1-13. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy 15-45 °C, előnyösen 30-37 °C inkubációs hőmérsékletet alkalmazunk.
  15. 15. Az 1-14. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy aerob növekedési körülmények között dolgozunk.
  16. 16. A 15. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az aerob növekedési körülményeket oxigénnek nagynyomású levegő vagy tiszta oxigén formájában történő bevezetésével biztosítjuk.
  17. 17. Az 1-16. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a fermentációs idő 1-3 nap.
HU0200567A 2001-02-15 2002-02-14 Process for the fermentative production of o-acetyl-serin HU225826B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10107002A DE10107002A1 (de) 2001-02-15 2001-02-15 Verfahren zur fermentativen Herstellung von O-Acetyl-L-Serin

Publications (4)

Publication Number Publication Date
HU0200567D0 HU0200567D0 (en) 2002-04-29
HUP0200567A2 HUP0200567A2 (hu) 2003-08-28
HUP0200567A3 HUP0200567A3 (en) 2006-11-28
HU225826B1 true HU225826B1 (en) 2007-10-29

Family

ID=7674115

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU0200567A HU225826B1 (en) 2001-02-15 2002-02-14 Process for the fermentative production of o-acetyl-serin

Country Status (14)

Country Link
US (1) US6620598B2 (hu)
EP (1) EP1233067B1 (hu)
JP (1) JP3721136B2 (hu)
KR (1) KR100464906B1 (hu)
CN (1) CN1304585C (hu)
AT (1) ATE267873T1 (hu)
CA (1) CA2372133A1 (hu)
DE (2) DE10107002A1 (hu)
DK (1) DK1233067T3 (hu)
ES (1) ES2222407T3 (hu)
HU (1) HU225826B1 (hu)
MX (1) MXPA02001721A (hu)
SK (1) SK286164B6 (hu)
TW (1) TWI255855B (hu)

Families Citing this family (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7055721B2 (en) 2001-03-23 2006-06-06 Chong Woo Co., Ltd. Finger-operated spray pump ejaculating fluid in fixed quantity
KR100995652B1 (ko) 2003-08-28 2010-11-22 주식회사 종우실업 예압식 저형상 미세 수동 분사펌프
AU2006315638B2 (en) * 2005-11-11 2013-02-21 V. Ravi Chandran Acetylated amino acids as anti-platelet agents, nutritional and vitamin supplements
KR100905381B1 (ko) 2006-07-28 2009-06-30 씨제이제일제당 (주) L-메치오닌 전구체 생산 균주 및 상기 l-메치오닌전구체로부터의 l-메치오닌 및 유기산의 생산방법
WO2009104731A1 (ja) 2008-02-21 2009-08-27 味の素株式会社 L-システイン生産菌及びl-システインの製造法
JP2014131487A (ja) 2011-04-18 2014-07-17 Ajinomoto Co Inc L−システインの製造法
DE102012216527A1 (de) 2012-09-17 2014-03-20 Wacker Chemie Ag Verfahren zur fermentativen Produktion von L-Cystein und Derivaten dieser Aminosäure
DE102013209274A1 (de) 2013-05-17 2014-11-20 Wacker Chemie Ag Mikroorganismus und Verfahren zur fermentativen Überproduktion von Gamma-Glutamylcystein und Derivaten dieses Dipeptids
CN113316581A (zh) * 2019-01-11 2021-08-27 Cj第一制糖株式会社 L-草铵膦中间体及l-草铵膦的制备方法
CN114075523A (zh) * 2020-07-27 2022-02-22 宁波鲲鹏生物科技有限公司 一种产甘精胰岛素融合蛋白的重组大肠杆菌发酵培养方法
FR3114740B1 (fr) * 2020-10-07 2022-11-04 Institut National De Rech Pour Lagriculture Lalimentation Et Lenvironnement O-acétylsérine pour son utilisation dans la prévention et le traitement de l’intolérance au glucose et les maladies associées
WO2023094010A1 (de) 2021-11-29 2023-06-01 Wacker Chemie Ag Verfahren zur herstellung von taurin
WO2023094011A1 (de) * 2021-11-29 2023-06-01 Wacker Chemie Ag Verfahren zur herstellung von l-cysteinsäure

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19539952A1 (de) * 1995-10-26 1997-04-30 Consortium Elektrochem Ind Verfahren zur Herstellung von O-Acetylserin, L-Cystein und L-Cystein-verwandten Produkten
DE19726083A1 (de) * 1997-06-19 1998-12-24 Consortium Elektrochem Ind Mikroorganismen und Verfahren zur fermentativen Herstellung von L-Cystein, L-Cystin, N-Acetyl-Serin oder Thiazolidinderivaten
RU2144564C1 (ru) 1998-10-13 2000-01-20 Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" ФРАГМЕНТ ДНК rhtB, КОДИРУЮЩИЙ СИНТЕЗ БЕЛКА RhtB, ПРИДАЮЩЕГО УСТОЙЧИВОСТЬ К L-ГОМОСЕРИНУ БАКТЕРИЯМ ESCHERICHIA COLI, И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АМИНОКИСЛОТ
US6613552B1 (en) 1999-01-29 2003-09-02 Board Of Trustees Operating Michigan State University Biocatalytic synthesis of shikimic acid

Also Published As

Publication number Publication date
CN1370836A (zh) 2002-09-25
DE10107002A1 (de) 2002-08-29
EP1233067B1 (de) 2004-05-26
TWI255855B (en) 2006-06-01
ATE267873T1 (de) 2004-06-15
KR20020067623A (ko) 2002-08-23
CN1304585C (zh) 2007-03-14
DK1233067T3 (da) 2004-08-16
HUP0200567A3 (en) 2006-11-28
DE50200471D1 (de) 2004-07-01
US20020146783A1 (en) 2002-10-10
HU0200567D0 (en) 2002-04-29
MXPA02001721A (es) 2003-08-20
CA2372133A1 (en) 2002-08-15
US6620598B2 (en) 2003-09-16
JP3721136B2 (ja) 2005-11-30
ES2222407T3 (es) 2005-02-01
HUP0200567A2 (hu) 2003-08-28
EP1233067A1 (de) 2002-08-21
KR100464906B1 (ko) 2005-01-06
JP2002262896A (ja) 2002-09-17
SK2042002A3 (en) 2002-09-10
SK286164B6 (sk) 2008-04-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN1330750C (zh) 磷酸甘油酸族氨基酸及氨基酸衍生物的发酵制造方法
US5972663A (en) Microorganisms and processes for the fermentative preparation of L-cysteine, L-cystine, N-acetylserine or thiazolidine derivatives
AU656416B2 (en) A process for the fermentative preparation of amino acids
KR100505336B1 (ko) 발효에 의한 l-시스테인의 생산방법
JPH05304969A (ja) 発酵法によるアミノ酸の製造法
KR101589361B1 (ko) 발효에 의한 천연 l-시스테인의 생성 방법
HU225826B1 (en) Process for the fermentative production of o-acetyl-serin
US20090298135A1 (en) Method for fermentative production of L-methionine
US6579705B2 (en) Process for preparing non-proteinogenic L-amino acids
KR20130138848A (ko) 조절된 산소 포화도 하의 발효에 의한 l-시스틴의 제조 방법
KR100463738B1 (ko) 아카르보스제조를위한삼투조절된발효방법
US6599732B1 (en) Regulation of carbon assimilation
HU202590B (en) Process for producing l-treonine
KR101825310B1 (ko) O-포스포세린을 생산하는 에스케리키아 속 미생물 및 이를 이용한 o-포스포세린 또는 l-시스테인을 생산하는 방법
JP6258329B2 (ja) L−システインおよび該アミノ酸の誘導体の発酵生産方法

Legal Events

Date Code Title Description
GB9A Succession in title

Owner name: WACKER CHEMIE AG, DE

Free format text: FORMER OWNER(S): CONSORTIUM FUER ELEKTROCHEMISCHE INDUSTRIE GMBH, DE

MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees