KR102428209B1

KR102428209B1 - 가용성 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 제조하는 방법

Info

Publication number: KR102428209B1
Application number: KR1020207002244A
Authority: KR
Inventors: 하이저우 팡; 보 양; 라 마; 페이민 다이; 신지 왕; 말콤 기암; 치 쉐; 용준 양
Original assignee: 주하이 에섹스 바이오-파머슈티컬 코., 엘티디.
Priority date: 2017-06-23
Filing date: 2017-06-23
Publication date: 2022-08-02
Also published as: CN110945123B; SG11201912790WA; EP3643781A4; US11248032B2; WO2018232745A1; JP7098724B2; KR20200020900A; CN110945123A; EP3643781A1; US20200140509A1; JP2020533014A

Abstract

가용성 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 제조하는 방법, 상기 방법에 의해 수득된 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF), 및 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 코딩하는 돌연변이된 핵산 분자를 제공한다.

Description

가용성 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 제조하는 방법

본 발명은 DNA 재조합 및 바이오의약품 분야에 관한 것이다. 보다 구체적으로, 본 발명은 가용성 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (recombinant human-basic fibroblast growth factor: rh-bFGF)를 제조하는 방법, 상기 방법에 의해 수득된 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF), 및 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 코딩하는 돌연변이된 핵산 분자에 관한 것이다.

섬유아세포 성장 인자 (Fibroblast growth factor: FGF)는 유사한 구조 및 유사한 생물학적 기능을 갖는 헤파린-결합 단백질 부류이다. 현재, 23종의 FGF가 발견되었고, 이 중 FGF-1 (aFGF), FGF-2 (bFGF) 및 FGF-7 (KGF)에 대해 심층 연구가 수행되었다. bFGF는 포유동물 및 인간에서 매우 소량의 활성 물질이지만, 그의 광범위한 생리학적 기능 및 중요한 임상적 적용 가치에 대해 높은 평가를 받고 있다. 이는 새로운 혈관 형성을 자극할 뿐만 아니라 상처 치유 및 조직 재생에 관여하고, 배아 조직의 발달 및 분화를 촉진한다. 최근에, 재조합 bFGF는 외상, 궤양 및 신경계 질환과 같은 질환의 임상적 치료에 사용되었다.

현재, 시판되고 있는 대부분의 bFGF는 에스케리치아 콜리 (Escherichia coli: E. coli)에서 유전 공학에 의해 생산되지만, E. 콜리에 의한 가용성 bFGF의 발현 수준은 낮으며, 대부분의 발현된 산물은 생물학적으로 불활성인 봉입체 (inclusion bodies)를 형성하기 쉽다. 상기 봉입체를 정제한 후에, 개질될 (renatured) 필요가 있고, 이는 산물의 회수 및 활성에 영향을 준다. 더욱이, 이러한 처리 과정으로 이량체 및 삼량체와 같은 불순물의 형성을 초래할 수 있다. 또한, bFGF는 2쌍의 시스테인을 가지며, 이는 분자간 디설파이드 결합을 형성하기 쉽다. 이는 잘못 보관하면, 이량체 및 삼량체가 특정 비율을 차지하여, 단백질 순도에 영향을 줄 것이다.

그러므로, 높은 발현 수준을 갖는 가용성 bFGF를 제조하는 안정하고 신규한 방법을 수립할 필요가 있다.

일 양상에서, 본 발명은 하기 단계를 포함하는, 가용성 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 제조하는 방법을 제공한다: 돌연변이된 핵산 분자를 포함하는 숙주 세포를 배양하는 단계; rh-bFGF의 발현에 적절한 조건하에 상기 숙주 세포에서 상기 rh-bFGF를 발현시키는 단계; 및 상기 rh-bFGF를 정제로 회수하는 단계.

일 양상에서, 본 발명은 상기 방법에 의해 수득된 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 제공한다.

일 양상에서, 본 발명은 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 코딩하는 돌연변이된 핵산 분자를 제공한다.

일 양상에서, 본 발명은 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF) 및 적어도 하나의 약학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 약학적 조성물을 제공한다.

일 양상에서, 본 발명은 안구 건조 (dry eye)를 치료하는 방법을 제공하며, 상기 방법은 치료적으로 유효한 양의 약학적 조성물을 이를 필요로 하는 환자에게 투여하는 단계를 포함한다.

도 1은 pET-30a(+) 플라스미드의 구조를 나타내는 다이아그램이다.
도 2는 rh-bFGF의 웨스턴 블롯 (Western Blot)의 결과를 나타낸다.
도 3은 고성능 액체 크로마토그래피로 검출된 rh-bFGF의 순도를 나타낸다.
도 4는 rh-bFGF 온전한 단백질의 분자 질량 스펙트럼을 나타낸다.
도 5는 cDNA 서열 및 네이티브 인간 bFGF의 아미노산 서열 및 돌연변이된 인간 bFGF의 아미노산 서열을 나타낸다.
도 6은 rh-bFGF 인 비트로 활성 분석을 위한 4-파라미터 피팅 곡선 (4-parameter fitting curve)을 나타내며, 여기서 C는 EC50 값이다.
도 7은 고온 스트레스 (hot stress) 조건하에 rh-bFGF의 순도 변화에 대한 히스티딘, 글리신 및 아르기닌을 포함하는 상이한 아미노산, 및 Tween의 효과를 나타내며, 여기서 95% 선은 rh-bFGF 스톡 용액의 순도에 대한 품질 표준을 나타내고; 스톡 용액에 대해 95% 미만의 순도는 순도가 부적격인 것을 의미한다.
도 8은 고온 스트레스 조건하에 rh-bFGF의 순도 변화에 대한 HSA의 효과를 나타낸다.
도 9는 알칼리로 화상을 입은 New Zealand 토끼의 안구 건조 모델에서 눈물 분비에 대한 상이한 농도의 rh-bFGF 점안액의 효과를 나타낸다. 기호 "*" 또는 "**"는 유의한 차이를 나타낸다 (p<0.05 또는 p<0.01).
도 10은 알칼리로 화상을 입은 New Zealand 토끼의 안구 건조 모델에서 눈물막의 파괴 시간 (break-up time)에 대한 상이한 농도의 rh-bFGF 점안액의 효과를 나타낸다. 기호 "*" 또는 "**"는 유의한 차이를 나타낸다 (p<0.05 또는 p<0.01).

본 출원의 발명자는 핵산 분자를 돌연변이화하여 가용성 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 제조하는 신규한 방법을 개발하였다.

본 발명은 예상치 않게 핵산 분자를 돌연변이화하고 원핵생물 발현 시스템을 구축함으로써 가용성 형태 및 높은 발현 수준으로 bFGF를 매우 효율적이고 균일하게 발현하는 것을 달성하였다. 이러한 방법은 인간 bFGF를 높은 효율로 발현시킴으로써 재조합 인간 bFGF 단백질의 회수를 증가시키고, 네이티브 인간 bFGF의 생물학적 활성을 유지하였다.

일 양상에서, 상기 돌연변이된 핵산 분자는 서열 번호: 1, 서열 번호: 2 또는 서열 번호: 3으로 구성된 그룹으로부터 선택된 서열을 포함하거나, 또는 서열 번호: 1, 서열 번호: 2 또는 서열 번호: 3에 대해 적어도 90%, 적어도 95%의 동일성, 예컨대 적어도 96%, 97%, 98% 또는 99%의 동일성을 갖는 서열을 포함한다.

일 양상에서, 상기 돌연변이된 핵산 분자의 서열은 서열 번호: 1, 서열 번호: 2 또는 서열 번호: 3이다.

일 양상에서, 본 발명은 핵산 분자를 포함하는 벡터를 제공한다. 바람직한 벡터는 원핵생물 발현 벡터, 구체적으로 E. 콜리에서 발현을 유도하기에 적합한 발현 벡터이고, 예를 들어 pET-30a(+), pET-28a(+), pET-23c(+), pET-15b를 포함하며, 이에 한정되지 않는다. pET-30a(+)가 특히 바람직하다.

일 양상에서, 본 발명은 발현 벡터를 포함하는 숙주 세포를 제공한다. 바람직한 숙주 세포는 E. 콜리이고, E. 콜리 BL21 (DE3)이 특히 바람직하다.

특정 양상에서, 상기 돌연변이된 핵산 분자를 포함하는 원핵생물 발현 벡터를 E. 콜리 BL21 (DE3)로 형질전환하고, 상기 가용성 인간 bFGF의 발현을 박테리아 배양 온도, 유도 온도, pH 범위, 글루코스 농도 및 유도제 농도를 조정하여 유도하였다. 상기 박테리아는 세척 및 중공 파이버 (hollow fiber)를 통해 여과하여 수집하고; 발효된 박테리아는 고압 균질화를 사용하고 저온에서 유지하여 파괴되며; 적절한 양의 비이온성 계면활성제를 부가한 후에, 상등액을 저온 고속 원심분리에 의해 수집하고, 펠렛 (pellet)은 버렸다.

특정 양상에서, 정제는 약양이온 교환 (weak cation exchange), 헤파린 친화도 크로마토그래피 또는 유사물과 같은 과정을 사용하여 수행하고, 메르캅토에탄올, DTT 또는 유사물과 같은 보호제의 적절한 양을 정제 중에 부가하였다.

특정 양상에서, 상기 가용성 인간 bFGF의 발현을 유도하는데 사용된 특정 파라미터는 하기와 같다:

탱크로 진입하기 전에 OD600: 약 0.5-4.5

박테리아 배양 온도: 약 25-45℃

박테리아 유도 온도: 약 20-50℃

pH 범위: 약 6.8-8.5

글루코스 농도: 약 0.06-0.46%

유도제 농도: 약 0.0125-0.0925g/L

유도 전에 OD600 범위: 약 10 내지 45

유도 시간: 약 2-9시간.

특정 양상에서, 정제는 하기와 같이 수행된다:

발효액을 중공 파이버로 차단하고, 세척 및 여과하고, 세척 버퍼는 pH 약 7.0으로 NaCl을 함유하는 PB 용액이다.

발효된 박테리아는 고압 균질화를 사용하고 저온에서 유지하여 파괴하고; 적절한 양의 트리톤 (Triton)을 부가한 후에, 상등액을 저온 고속 원심분리에 의해 수집하고, 펠렛은 버렸다.

일 양상에서, 본 발명은 상기 방법에 의해 수득되는 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF)를 제공한다. 일 양상에서, 상기 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자의 아미노산 서열은 서열 번호: 5이다.

일 양상에서, 본 발명은 서열 번호: 1, 서열 번호: 2 또는 서열 번호: 3으로 구성된 그룹으로부터 선택된 서열을 포함하거나 또는 서열 번호: 1, 서열 번호: 2 또는 서열 번호: 3에 대해 적어도 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%의 동일성을 갖는 서열을 포함하는, 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자를 코딩하는 돌연변이된 핵산 분자를 제공한다.

일 양상에서, 본 발명은 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF) 및 적어도 하나의 약학적으로 허용가능한 부형제를 포함하는 약학적 조성물을 제공한다. 일 양상에서, 상기 부형제는 버퍼 시스템, 증점제, 안정화제, 중화제, 습윤제 및 유사물을 포함하며, 이에 한정되지 않는다.

일 양상에서, 본 발명은 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (rh-bFGF) 및 글리신, 히스티딘, 아르기닌, 헤파린 소듐 또는 인간 혈청 알부민 (HSA)으로 구성된 그룹으로부터 선택된 적어도 하나의 안정화제를 포함하는 약학적 조성물을 제공한다.

일 양상에서, 상기 조성물은 pH 약 6.0 내지 8.0, 예컨대 pH 6.0, 6.1, 6.2, 6.3, 6.4, 6.5, 6.6, 6.7, 6.8, 6.9, 7.0, 7.1, 7.2, 7.3, 7.4, 7.5, 7.6, 7.7, 7.8, 7.9 또는 8.0 또는 이들 사이의 임의의 범위로 정의된 pH로 완충된다.

일 양상에서, 본 발명은 안구 건조를 치료하는 방법을 제공하며, 상기 방법은 치료적으로 유효한 양의 약학적 조성물을 이를 필요로 하는 환자에게 투여하는 단계를 포함한다.

일 양상에서, 본 발명은 안구 건조 치료에 사용하기 위한 약학적 조성물을 제공한다.

일 양상에서, 본 발명은 또한 안구 건조 치료용 약제 제조에 있어서 조성물의 용도를 제공한다.

일 양상에서, 본 발명의 약학적 조성물은 안과용 약학적 조성물이다. 구체적으로, 본 발명의 약학적 조성물은 점안액 또는 겔의 형태이다.

본 발명의 방법의 이점은 bFGF의 매우 효과적이고 균일한 발현이 가용성 형태 및 고발현 수준으로 달성된다는데 있다. 이러한 방법은 인간 bFGF를 높은 효율로 발현시킴으로써 재조합 인간 bFGF 단백질의 회수를 증가시키고, 네이티브 인간 bFGF의 생물학적 활성을 유지하였다.

본 발명은 하기 비-제한적인 예를 참고하여 추가적으로 설명된다.

실시예

실시예 1. 핵산 돌연변이

네이티브 인간 bFGF를 코딩하는 cDNA 서열 (서열 번호: 4)을 단백질의 아미노산 서열을 변경하지 않고 돌연변이시켰고, 3개의 돌연변이된 cDNA 서열을 디자인 및 합성하였다 (각각 서열 번호: 1, 서열 번호: 2 및 서열 번호: 3으로 나타낸 돌연변이된 cDNA 서열 1, 서열 2 및 서열 3):

실시예 2. 원핵생물 발현 및 단백질 특성규명

2.1 발현 및 정제

사용된 발현 벡터는 pET-30a(+)이고 (도 1 참조), Merk KgsA co. (Cat. No. 69909-3)로부터 구입하였다. 상기 벡터는 T7 프로모터, T7 전사 개시 부위, His 태그, 코딩 서열, S 태그 코딩 서열, 다중 클로닝 부위 (multiple cloning site: MCS), T7 종결인자, 락토스 코딩 서열, kan 저항 코딩 서열, 및 pBR322 레플리콘 (replicon) 및 f1 레플리콘을 갖는다. 상기 MCS는 제한 부위 Xho I, Not I, Eag I, HindIII, Sal I, Sac I, EcoR I, BamH I, EcoR V, Nco I, Kpn I, Bgl II, Nsp V 및 Nde I을 포함한다.

클로닝을 용이하게 하기 위해, NdeI 제한 부위를 서열 1 (서열 번호: 1)의 개시 코돈의 업스트림에 디자인하고, HindIII 제한 부위를 종결인자 부근에 디자인하였다. 480bp 서열은 화학적 방법을 통한 유전자 합성에 의해 달성되었다. 상기 서열은 NdeI 및 HindIII으로 이중-소화되고 (double-digested), 그 다음에 동일한 이중-소화된 발현 벡터 pET-30a(+)로 삽입하여 5724bp 재조합 플라스미드를 수득하고, 이는 DH5α (TaKaRa, 9057)로 열충격 방법에 의해 형질전환하고, 50 μg/mL 카나마이신을 함유하는 LB 배지에서 배양하였다. 모노클론을 선별하고, 정확한 형질전환체를 NdeI 및 HindIII 이중 소화에 의해 스크리닝하였다. 상기 형질전환체의 정확성 (correctness)은 시퀀싱으로 다시 검증하였다.

다른 실시예에서, pET-28a(+), pET-23c(+) 또는 pET-15b 또는 유사물이 상기 pET-30a(+) 벡터 대신에 사용될 수 있다.

서열 1을 함유하는 원핵생물 발현 벡터를 E. 콜리 BL21 (DE3)로 형질전환하고, 상기 가용성 인간 bFGF를 배양에 의해 발현되도록 유도하고, 특정 파라미터는 하기와 같다:

탱크로 진입하기 전에 OD600: 0.5-4.5

박테리아 배양 온도: 25-45℃

박테리아 유도 온도: 20-50℃

pH 범위: 6.8-8.5

글루코스 농도: 0.06-0.46%

유도제 농도: 0.0125-0.0925g/L

유도 전에 OD600 범위: 10 내지 45

유도 시간: 2-9시간.

박테리아는 세척 및 중공 파이버를 통한 여과로 수집하고: 발효액을 500 KD의 중공 파이버로 차단하고, 세척 및 여과하고; 세척 버퍼는 pH 7.0의 NaCl을 함유하는 25 mM PB 용액이다.

발효된 박테리아는 고압 균질화를 사용하고 저온에서 유지하여 파괴하고; 적절한 양의 트리톤을 부가한 후에, 상등액을 저온 고속 원심분리에 의해 수집하고, 펠렛은 버렸다.

약양이온 교환을 사용하고, 적절한 양의 DTT를 정제 중에 부가하였다. CM-세파로스 패스트 플로우 이온교환 컬럼 (Fast Flow ion exchange column)을 먼저 소듐 클로라이드를 함유하는 25 mM 포스페이트 버퍼 (pH 7.0)로 평형화하고, 그 다음에 상등액을 상기 컬럼을 통과시켰다. 구배 (3 구배) 용출은 0.05 M, 0.12 M, 및 0.4 M 소듐 클로라이드를 함유하는 25 mM 포스페이트 버퍼 (pH 7.0)로 수행하고, 제3 용출 피크 (0.4 M 소듐 클로라이드를 함유하는 25 mM 포스페이트 버퍼로 용출시킴)를 수집하였다.

헤파린 친화도 크로마토그래피를 사용하였으며, 적절한 양의 DTT를 정제 중에 부가하였다. 헤파린-세파로스 CL-6B 친화도 크로마토그래피 컬럼을 소듐 클로라이드를 함유하는 25 mM 포스페이트 버퍼 (pH 7.0)로 사전-평형화하고, 이온 교환 크로마토그래피의 제3 용출 피크의 용액을 상기 컬럼을 통과시켰다. 구배 (3 구배) 용출은 0.4 M, 1.0 M 및 1.8 M 소듐 클로라이드를 함유하는 25 mM 포스페이트 버퍼 (pH 7.0)로 수행하고, 제3 용출 피크 (1.8 M 소듐 클로라이드를 함유하는 25 mM 포스페이트 버퍼로 용출시킴)를 수집하였다.

상기 시료를 상기 절차로 정제한 후에, 그의 순도는 95% 이상이었다. 상기 실험으로부터 약 600 mg의 재조합 인간 bFGF 단백질이 박테리아 100 g에 대해 제조될 수 있고, 현저하게 높은 발현이 달성되었음을 확인하였다.

2.2 순도 및 분자량 검출 및 시퀀싱

15% SDS-PAGE 전기영동에 의해 수득된 인간 bFGF 단백질이 대략 18.5 KD의 단일 밴드인 것으로 나타났다 (도 2 참조). C8 역상 컬럼을 갖춘 고성능 액체 크로마토그래피의 검출 결과로부터 본 발명에서 수득된 인간 bFGF의 순도는 95% 이상임을 나타내었다 (도 3 참조).

"초-고해상도, 초-고정확도, 초-고감도" Exactive Plus EMR을 사용하여 정확한 분자량을 결정하고, 6개의 성분 (성분 1, 4, 5 비율은 기본적으로 >10%, 표 1)은 rh-bFGF 스톡 용액의 4개의 배치 (batches)에서 검출되었다. 성분 4는 주요 성분이고, 평균 분자량은 17121.02 Da이며; 배치간 (inter-batch) RSD%는 0.0007이고, 이론값으로부터의 편차는 ≤41 ppm이며, 상대 비율 (피크 세기로 산출)은 70.7%-79.0%이다.

시험 시료의 정확한 분자량을 위한 HPLC-Exactive Plus EMR 질량 분석

성분	배치	실험값 (Da)	이론값 (Da)	편차 (ppm)	상대 비율 (%)	평균	RSD%
1	스톡 배치 II	17049.21	17049.34△	8	5.2	17049.40	0.0019
	스톡 배치 III	17049.77		25	12.6
	물리-화학적 표준	17049.20		8	9.8
4	스톡 배치 I	17120.87	17120.42*	26	79.0	17121.02	0.0007
	스톡 배치 II	17121.13		41	76.6
	스톡 배치 III	17120.98		33	70.7
	물리-화학적 표준	17121.08		39	78.5
5	스톡 배치 I	17137.23	17136.42□	47	13.4	17137.34	0.0009
	스톡 배치 II	17137.27		50	13.4
	스톡 배치 III	17137.51		64	10.6

또한, 재조합으로 제조된 인간 bFGF 단백질의 아미노산 서열을 분석하고, 이는 그의 아미노산 서열이 네이티브 인간 bFGF의 아미노산 서열과 동일함을 확인하였다 (도 5 참조).

2.3 생물학적 활성 분석

balb/c3T3 세포를 사용하여 인 비트로 활성에 대해 시료를 시험하였다. 세포 증식은 MTT 분석에 의해 판단되었다. 상기 결과로부터 수득된 인간 bFGF에 의한 balb/c3T3 세포의 증식을 촉진하는 효과는 bFGF 활성 표준 (NISCB)에 의한 것과 일치함으로 보여주었다 (도 6 참조).

실시예 3. 약학적 조성물의 제조

약학적 조성물 1:

재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 2500-10000 IU;

인간 혈청 알부민 0.025-0.375 mg/mL;

증점제 5.0-15.0 mg/mL;

소듐 클로라이드 5.0-12.5 mg/mL;

헤파린 소듐 0.25-5.0 μg/mL;

소듐 디히드로겐 포스페이트 0.25-1.25 mg/mL;

디소듐 히드로겐 포스페이트 1.25-3.75 mg/mL.

1. 버퍼 시스템은 상기 소듐 디히드로겐 포스페이트 및 디소듐 히드로겐 포스페이트, 또는 붕산-붕사 버퍼 시스템, 시트르산-디소듐 히드로겐 포스페이트 버퍼 시스템 또는 유사물일 수 있다. 바람직하게, 상기 약학적 조성물의 pH는 6.5 내지 7.5이다.

2. 증점제는 폴리비닐 알콜, 소듐 히알루로네이트, 히프로멜로스, 폴록사머, 또는 유사물, 바람직하게는 폴리비닐 알콜이다.

3. 제조 절차:

(1) 폴리비닐 알콜을 적당한 양의 주사용 수 중에 분산 및 용해시키고, 121℃에서 30분 동안 오토클레이브하고, 실온으로 냉각하여, 사용 준비하였다;

(2) 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자, 인간 혈청 알부민, 헤파린 소듐, 소듐 클로라이드, 소듐 디히드로겐 포스페이트 및 디소듐 히드로겐 포스페이트를 적당한 양의 주사용 수 중에 용해시키고, 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통해 멸균 여과하였다;

(3) 상기 단계 (1) 및 단계 (2)에서 수득된 용액들을 멸균 조건하에 균일하게 혼합하고, 멸균된 주사용 수로 고정된 부피까지 만들어서 수득하였다;

(4) 멸균 용액을 블로잉 (blowing), 충전 (filling) 및 밀봉 (sealing)의 3-in-1 충전 기계를 사용하여 충전하고, 충전량이 0.4mL인, 최종 제품을 수득하였다.

약학적 조성물 2:

재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 2500-10000 IU;

인간 혈청 알부민 0.1-0.375 mg/mL;

헤파린 소듐 25.0-75.0 μg/mL;

카르보머 1.25-12.5 mg/mL;

중화제 1.25-12.5 mg/mL;

글리세롤 12.5-50 mg/mL.

1. 카르보머는 일련의 카르보머 940, 카르보머 934, 카르보머 974, 카르보머 980 등, 바람직하게는 카르보머 980 시리즈이다;

2. 중화제는 소듐 히드록시드, 포타슘 히드록시드, 포타슘 히드로겐 카르보네이트, 붕사 및 트리에탄올아민, 바람직하게는 트리에탄올아민이다.

3. 제조 절차:

(1) 카르보머를 적당한 양의 주사용 수 중에 분산하고, 균일하게 교반하고, 그 다음에 밤새 팽윤시켜서, 사용 준비하였다;

(2) 트리에탄올아민을 상기 카르보머 분산액에 부가하고, 투명하고 균일한 겔 베이스로 교반하고, 121℃에서 30분 동안 오토클레이브하고, 멸균이 완료된 후에 실온으로 냉각하여, 사용 준비하였다;

(3) 글리세롤, 인간 혈청 알부민, 헤파린 소듐 및 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자를 적당한 양의 실온의 주사용 수로 부가하고, 균일하게 교반하고, 그 다음에 멸균 조건하에 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통과시키고, 상기 단계 (2)의 겔 베이스와 혼합하고, 그 다음에 정량화하고 균일하게 교반하였다;

(4) 멸균 겔을 블로잉, 충전 및 밀봉의 3-in-1 충전 기계를 사용하여 충전하고, 충전량이 0.4g인, 최종 제품을 수득하였다.

약학적 조성물 3:

재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 1000-9000IU

인간 혈청 알부민 0.01-5.0 mg/mL;

증점제 0.1-20.0 mg/mL;

소듐 디히드로겐 포스페이트 0.2-2.5 mg/mL;

디소듐 히드로겐 포스페이트 0.5-5.0 mg/mL;

소듐 클로라이드 1.0-5.0 mg/mL;

습윤제 0.1-50.0 mg/mL.

1. 버퍼 염 시스템은 상기 소듐 디히드로겐 포스페이트 및 디소듐 히드로겐 포스페이트, 또는 붕산-붕사 버퍼 시스템, 시트르산-디소듐 히드로겐 포스페이트 버퍼 시스템 또는 유사물일 수 있고; 바람직하게, 상기 pH는 6.5 내지 7.5이다.

2. 증점제는 폴리비닐 알콜, 소듐 히알루로네이트, 히프로멜로스, 폴록사머, 또는 유사물, 바람직하게는 폴리비닐 알콜이다. 습윤제는 글리세린, 프로필렌 글리콜 또는 그의 혼합물이다.

3. 제조 절차:

(1) 증점제 및 소듐 클로라이드를 적당한 양의 주사용 수 중에 분산 및 용해시키고, 121℃에서 30분 동안 오토클레이브하였다;

(2) 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자, 인간 혈청 알부민, 습윤제, 소듐 디히드로겐 포스페이트, 및 디소듐 히드로겐 포스페이트를 적당한 양의 주사용 수 중에 용해시켰다;

(3) 상기 단계 (2)의 활성제 용액을 0.22 μm의 미세다공성 필터 멤브레인을 통해 여과하고, 그 다음에 상기 단계 (1)에서 수득된 활성제 용액과 혼합하고, 주사용 수로 최대 1 mL로 만들었다;

(4) 상기 단계 (3)에서 수득된 활성제 용액을 정균제 (bacteriostatic agent)를 함유하지 않는 패키징 용기로 충전하고, 상기 용기의 부피가 0.4 g/조각의 범위인, 최종 제품을 수득하였다.

또한, 하기 약학적 조성물 (표 2 참조)을 또한 제조하였다. 이들 중에, 점안액은 100 ml로 제조하고, 외용 겔은 100 g으로 제조하였다.

제조예 1:

(1) 1.0 g의 폴리비닐 알콜을 적당한 양의 주사용 수 중에 분산 및 용해하고, 오토클레이브하고, 실온으로 냉각하여, 사용 준비하였다;

(2) 500000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자, 25mg의 인간 혈청 알부민, 2.5mg의 헤파린 소듐, 800mg의 소듐 클로라이드, 42.5mg의 소듐 디히드로겐 포스페이트, 및 250mg의 디소듐 히드로겐 포스페이트를 적당한 양의 주사용 수 중에 용해시키고, 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통해 멸균 여과하였다;

(3) 상기 단계 (1) 및 단계 (2)에서 수득된 용액을 멸균 조건하에 균일하게 혼합하고, 멸균된 주사용 수로 100 mL로 만들어서 수득하였다;

(4) 멸균 용액을 블로잉, 충전 및 밀봉의 3-in-1 충전 기계를 사용하여 충전하고, 충전량이 0.4mL인, 최종 제품을 수득하였다.

제조예 2:

(1) 0.5 g의 폴리비닐 알콜을 적당한 양의 주사용 수 중에 분산 및 용해하고, 오토클레이브하고, 실온으로 냉각하여, 사용 준비하였다;

(2) 500000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자, 20mg의 인간 혈청 알부민, 2.0mg의 헤파린 소듐, 800mg의 소듐 클로라이드, 42.5mg의 소듐 디히드로겐 포스페이트, 및 250mg의 디소듐 히드로겐 포스페이트를 적당한 양의 주사용 수 중에 용해하고, 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통해 멸균 여과하였다;

제조예 3:

(2) 420000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자, 20mg의 인간 혈청 알부민, 2.0mg의 헤파린 소듐, 800mg의 소듐 클로라이드, 42.5mg의 소듐 디히드로겐 포스페이트, 및 250mg의 디소듐 히드로겐 포스페이트를 적당한 양의 주사용 수 중에 용해하고, 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통해 멸균 여과하였다;

제조예 4:

(1) 1.5 g의 폴리비닐 알콜을 적당한 양의 주사용 수 중에 분산 및 용해하고, 오토클레이브하고, 실온으로 냉각하여, 사용 준비하였다;

(2) 420000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자, 10mg의 인간 혈청 알부민, 1.0mg의 헤파린 소듐, 800mg의 소듐 클로라이드, 42.5mg의 소듐 디히드로겐 포스페이트, 및 250mg의 디소듐 히드로겐 포스페이트를 적당한 양의 주사용 수 중에 용해하고, 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통해 멸균 여과하였다;

제조예 5:

(2) 420000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자, 20mg의 인간 혈청 알부민, 2.0mg의 헤파린 소듐, 800mg의 소듐 클로라이드, 370.6mg의 시트르산, 및 5.9g의 디소듐 히드로겐 포스페이트를 적당한 양의 주사용 수 중에 용해하고, 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통해 멸균 여과하였다;

제조예 6:

(2) 500000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자, 25mg의 인간 혈청 알부민, 2.5mg의 헤파린 소듐, 800mg의 소듐 클로라이드, 370.6mg의 시트르산, 및 5.9g의 디소듐 히드로겐 포스페이트를 적당한 양의 주사용 수 중에 용해하고, 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통해 멸균 여과하였다;

제조예 7:

(1) 0.80g의 카르보머 940을 칭량하고, 실온의 적당한 양의 주사용 수 중에 분산시키고, 60-120분 동안 교반하고, 밤새 팽윤시켜서, 사용 준비하였다;

(2) 0.60g의 트리에탄올아민을 카르보머 940 분산액에 부가하고, 투명하고 균일한 겔 베이스로 교반하고, 그 다음에 습윤 가열 멸균화 처리하고 (121℃, 30분), 멸균이 완료된 후에 실온으로 냉각하여, 사용 준비하였다;

(3) 2.50g의 글리세롤, 30.0mg의 인간 혈청 알부민, 7.0mg의 헤파린 소듐, 및 450000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자를 실온의 적당한 양의 주사용 수로 부가하고, 균일하게 교반하고, 그 다음에 멸균 조건하에 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통과시키고, 상기 단계 (2)의 겔 베이스와 혼합하고, 그 다음에 정량화하고 균일하게 교반하였다;

제조예 8:

(1) 0.60g의 카르보머 940을 칭량하고, 실온의 적당한 양의 주사용 수 중에 분산시키고, 60-120분 동안 교반하고, 밤새 팽윤시켜서, 사용 준비하였다;

(2) 0.50g의 트리에탄올아민을 카르보머 940 분산액에 부가하고, 투명하고 균일한 겔 베이스로 교반하고, 그 다음에 습윤 가열 멸균화 처리하고 (121℃, 30분), 멸균이 완료된 후에 실온으로 냉각하여, 사용 준비하였다;

(3) 2.50g의 글리세롤, 30.0mg의 인간 혈청 알부민, 7.0mg의 헤파린 소듐, 및 420000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자를 실온의 적당한 양의 주사용 수로 부가하고, 균일하게 교반하고, 그 다음에 멸균 조건하에 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통과시키고, 상기 단계 (2)의 겔 베이스와 혼합하고, 그 다음에 정량화하고 균일하게 교반하였다;

제조예 9:

(1) 0.60g의 카르보머 974를 칭량하고, 실온의 적당한 양의 주사용 수 중에 분산시키고, 60-120분 동안 교반하고, 밤새 팽윤시켜서, 사용 준비하였다;

(2) 0.50g의 트리에탄올아민을 카르보머 974 분산액에 부가하고, 투명하고 균일한 겔 베이스로 교반하고, 그 다음에 습윤 가열 멸균화 처리하고 (121℃, 30분), 멸균이 완료된 후에 실온으로 냉각하여, 사용 준비하였다;

제조예 10:

(1) 0.50g의 카르보머 974를 칭량하고, 실온의 적당한 양의 주사용 수 중에 분산시키고, 60-120분 동안 교반하고, 밤새 팽윤시켜서, 사용 준비하였다;

(3) 2.50g의 글리세롤, 20.0mg의 인간 혈청 알부민, 5.0mg의 헤파린 소듐, 및 420000 IU의 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자를 실온의 적당한 양의 주사용 수로 부가하고, 균일하게 교반하고, 그 다음에 멸균 조건하에 0.22 μm의 필터 멤브레인을 통과시키고, 상기 단계 (2)의 겔 베이스와 혼합하고, 그 다음에 정량화하고 균일하게 교반하였다;

실시예 4. 안정성 연구

1) rh- bFGF 스톡 용액의 안정성에 대한 아미노산의 효과 연구

rh-bFGF 스톡 용액 자체는 본질적으로 불안정하고, 중합하여 실온에서 침전되는 경향이 있다. 따라서, 상이한 안정화제를 선택하여 사용하고, 주로 스톡 용액의 안정성에 대해 스크리닝하였다. 5% 및 2% 만니톨, 5% 및 2% 글리신, 및 2% 덱스트란을 선택하여 사용하고, 25℃ 환경에서 17일 동안 정치하였다. 단백질 농도를 0일, 7일 및 17일차에 각각 측정하고, 결과는 하기 표 3에 개시하였다.

안정화제의 스크리닝 시험에서 rh-bFGF 스톡 용액의 단백질 농도의 변화율

시료	0일차	7일차	17일차
안정화제 없음	100.00%	29.96%	13.63%
5% 만니톨	100.00%	49.80%	17.31%
2% 만니톨	100.00%	53.29%	15.66%
5% 글리신	100.00%	95.67%	86.26%
2% 글리신	100.00%	94.74%	82.73%
2% 덱스트란	100.00%	51.65%	16.20%

상기 결과로부터 5% 글리신은 단백질이 침전되는 것을 방지하는데 효과적임을 보여주었다. 17일 동안 열 파괴 조건 (thermal destructive condition) 하에 정치시킨 후에 86.26%의 단백질이 남아 있었다. 17일 후에, 글리신의 효과는 만니톨 및 덱스트란의 효과보다 유의하게 우수했고, 안정화제를 부가하지 않은 것은 단백질 13.6% 만이 남아 있었다.

2) rh- bFGF 스톡 용액의 안정성에 대한 히스티딘의 효과 연구

상이한 아미노산 (글리신, 히스티딘, 아르기닌) 및 Tween 20을 선택하여 사용하고, 스톡 용액의 안정성에 대해 추가적으로 스크리닝하고, 25℃ 환경에서 18시간 동안 정치하였다. 결과는 도 7에 도시되어 있다.

상기 결과로부터 3% 히스티딘 및 0.03% Tween 20이 5% 글리신보다 rh-bFGF 스톡 용액의 안정성에 대해 보다 효과적이라는 것을 보여주었다. 단백질의 순도는 열 파괴 조건하에 18시간 동안 정치시킨 후에 여전히 85% 이상으로 유지될 수 있다. 히스티딘 및 Tween 20은 rh-bFGF를 보호하는데 글리신보다 우수하였다.

3) rh- bFGF 스톡 용액의 안정성에 대한 HSA의 효과 연구

HSA가 단백질 함량 측정을 방해할 수 있기 때문에, HSA를 갖거나 또는 갖지 않는 스톡 용액을 25℃ 환경에서 18시간 동안 정치시키고, 열-손상 처리 후에 단백질의 순도 변화를 고-해상도 크로마토그래피로 검출하였다. 결과는 도 8에 도시되어 있다.

상기 결과로부터 HSA는 rh-bFGF의 안정성을 유의하게 향상시킬 수 있다는 것을 보여주었다. 지표로서 95% 순도의 변화율로, HSA를 함유하지 않는 시료는 스트레스 조건하에 4시간 동안만 유지될 수 있고, HSA를 부가한 후에 15시간까지 연장될 수 있다. HSA는 bFGF에 대해 우수한 단백질 보호제인 것으로 밝혀졌다.

실시예 5. 동물 안구 건조 모델에서 효능 연구

본 연구에서, New Zealand 토끼 안구 건조 모델을 선택하여 사용하고, 상기 모델의 임상 지표 (눈물 분비 및 눈물막 파괴 시간)를 관찰하고, 안구 건조용 약제의 임상적 치료 효과를 평가하였다. New Zealand 토끼를 네가티브 대조 그룹 (네가티브 대조군, 치료되지 않음), 모델 대조 그룹 (모델, 알칼리로 화상 처리하였지만 어떤 점안액도 부가되지 않음), 소듐 히알루로네이트 점안액에 의한 치료 그룹 (HA 그룹), 및 사용되는 제조예 3의 rh-bFGF 점안액의 농도에 따라 나눈 그룹 D (4.0 μg/mL), E (8.0 μg/mL), F (16.0 μg/mL) 및 G (32.0 μg/mL)로 나누었다. 상기 네가티브 대조 그룹은 그룹당 72마리의 토끼를 가지며, 나머지 그룹은 그룹당 8마리의 토끼를 가졌다. 투여량은 300 μl/eye/day이었다.

(1) 눈물 분비량 (양안)을 측정하는 방법 (페놀 레드 면사의 젖은 길이)

New Zealand 토끼의 눈물 분비는 Schirmer I 시험을 사용하여 측정하였다. 즉, 페놀 레드 면사를 안과용 집게로 고정하고, New Zealand 토끼의 외안각 (outer canthus)에 배치하였다. 60초 후에, 상기 페놀 레드 면사를 꺼내고, 젖은 길이를 측정하였다. 상기 페놀 레드 면사는 젖은 후에 빨갛게 되었고, 젖은 길이에 따라 안구 습윤도를 결정하였다. 실험 결과는 도 9에 도시되어 있다.

도 9에 도시된 바와 같이, 모델 대조 그룹에서 페놀 레드 면사의 젖은 길이는 모두 네가티브 대조군 안구에서의 것과 비교하여 유의하게 감소되었다. 투여 10일 차에, rh-bFGF 점안액들 D, E, F 및 G 그룹에서 페놀 레드 면사의 젖은 길이는 모두 모델 대조 그룹과 비교하여, 통계적으로 유의한 차이로 유의하게 더 길었다.

(2) 눈물막 파괴 시간 (양안)을 측정하는 방법:

2μl의 0.5% 소듐 플루오레세인 용액을 조정가능한 피펫을 사용하여 New Zealand 토끼 안구의 하부 안검 결막낭 (conjunctival sac)에 주입하였다. 일정한 힘으로 수동으로 몇 번 깜박인 후에, 토끼 안구를 일정한 힘으로 벌리고, 각막을 슬릿 램프 현미경 및 코발트 블루광으로 관찰하였다. 각막 그린 막 (corneal green film)에 흑색 영역이 나타나면, 눈물막은 파괴된 것으로 나타낸다. 3회의 측정치를 연속적으로 얻고, 평균값을 얻었다. 10초 미만의 눈물막 파괴 시간은 눈물막이 불안정하다는 것을 나타내고, 이는 눈물 중에 뮤신 (mucin) 부족에 의해 발생하는 KCS의 중요한 마커이며, 이는 결막의 술잔 세포 (goblet cells)가 심각하게 손상 또는 상실되어, 안구 건조가 발생하기 쉽다는 것을 시사한다. 실험 결과는 도 10에 도시되어 있다.

도 10에 도시된 바와 같이, 모델 대조 그룹의 눈물막 파괴 시간은 모두 네가티브 대조군 안구와 비교하여, 투여 10일차에 네가티브 대조군 안구의 것보다 유의하게 짧았다. 투여 10일차에, rh-bFGF 점안액들 D, E, F 및 G 그룹의 눈물막 파괴 시간은 모두 모델 대조 그룹과 비교하여, 통계적으로 유의한 차이로 유의하게 연장되었다.

요약하면, 눈물 분비의 페놀 레드 면사의 결과로부터 본 발명의 점안액은 모델 동물의 눈물 분비량을 향상시킬 수 있음을 나타내고 (도 9 참조); 눈물막 파괴 시간 시험으로 안구 건조 모델에서 눈물막 파괴 시간이 유의하게 향상되었음을 나타내었다 (도 10 참조). 투여량의 증가로, rh-bFGF 점안액은 알칼리로 화상을 입은 New Zealand 토끼의 안구 건조 모델에서 유의하게 향상되었다.

본 발명의 일부 특징이 본원에 개시되고 예시되었지만, 다양한 수정, 대체, 변경 및 등가물이 당업자에 의해 나타날 것이다. 그러므로, 첨부된 청구범위는 본 발명의 진정한 정신 및 범위에 속하는 이러한 모든 수정 및 변경을 포함하는 것으로 의도된 것으로 이해되어야 한다.

SEQUENCE LISTING <110> ZHUHAI ESSEX BIO-PHARMACEUTICAL CO., LTD. <120> Method for Producing Soluble Recombinant Human-Basic Fibroblast Growth Factor (rh-bFGF) <130> FPCH17160101P <160> 6 <170> PatentIn version 3.3 <210> 1 <211> 468 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 1 atggctgctg gttcgattac gacgctgccg gctctgccgg aagatggtgg ttcaggtgca 60 tttccgccgg gtcactttaa ggatccgaaa cgtctgtatt gcaagaacgg cggctttttc 120 ctgcgcattc atccggatgg ccgtgtcgac ggtgtgcgcg aaaaaagcga tccgcacatt 180 aagctgcagc tgcaagcaga agaacgtggc gtggttagca tcaaaggtgt ttgtgcgaac 240 cgttacctgg ccatgaaaga agatggccgc ctgctggcta gtaagtgcgt caccgacgaa 300 tgctttttct ttgaacgtct ggaatccaac aattataata cctaccgtag ccgcaaatat 360 acgtcttggt atgtggccct gaaacgcacg ggccagtata agctgggttc caaaacgggt 420 ccgggtcaaa aagccattct gttcctgccg atgtccgcaa aatcataa 468 <210> 2 <211> 468 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 2 atggctgctg gttctatcac caccctgccg gctctgccgg aagacggtgg ttctggtgct 60 ttcccgccgg gtcacttcaa agacccgaaa cgtctgtact gcaaaaacgg tggtttcttc 120 ctgcgtatcc acccggacgg tcgtgttgac ggtgttcgtg aaaaatctga cccgcacatc 180 aaactgcagc tgcaggctga agaacgtggt gttgtttcta tcaaaggtgt ttgcgctaac 240 cgttacctgg ctatgaaaga agacggtcgt ctgctggctt ctaaatgcgt taccgacgaa 300 tgcttcttct tcgaacgtct ggaatctaac aactacaaca cctaccgttc tcgtaaatac 360 acctcttggt acgttgctct gaaacgtacc ggtcagtaca aactgggttc taaaaccggt 420 ccgggtcaga aagctatcct gttcctgccg atgtctgcta aatcttaa 468 <210> 3 <211> 468 <212> DNA <213> Artificial Sequence <400> 3 atggcagccg gtagcatcac caccctgccg gccctgccgg aggatggcgg cagcggcgcc 60 ttcccgccgg gccacttcaa ggacccgaag cgtctgtact gcaaaaacgg tggcttcttc 120 ctgcgcatcc acccggacgg ccgtgttgac ggtgtccgtg agaagagcga ccctcacatc 180 aagctgcaac tgcaagcaga agagcgtggt gttgtgtcta tcaaaggtgt gtgtgctaac 240 cgttacctgg ctatgaagga agatggtcgt ctgctggctt ctaaatgtgt taccgatgag 300 tgtttctttt ttgaacgtct ggaatctaac aactacaaca cttaccgttc tcgtaaatac 360 acctcttggt atgtggcact gaaacgtact ggtcagtata aactgggttc caaaaccggt 420 cctggtcaga aagctatcct gtttctgcca atgtctgcta agagctaa 468 <210> 4 <211> 468 <212> DNA <213> Homo Sapien <400> 4 atggcagccg ggagcatcac cacgctgccc gccttgcccg aggatggcgg cagcggcgcc 60 ttcccgcccg gccacttcaa ggaccccaag cggctgtact gcaaaaacgg gggcttcttc 120 ctgcgcatcc accccgacgg ccgagttgac ggggtccggg agaagagcga ccctcacatc 180 aagctacaac ttcaagcaga agagagagga gttgtgtcta tcaaaggagt gtgtgctaac 240 cgttacctgg ctatgaagga agatggaaga ttactggctt ctaaatgtgt tacggatgag 300 tgtttctttt ttgaacgatt ggaatctaat aactacaata cttaccggtc aaggaaatac 360 accagttggt atgtggcact gaaacgaact gggcagtata aacttggatc caaaacagga 420 cctgggcaga aagctatact ttttcttcca atgtctgcta agagctga 468 <210> 5 <211> 155 <212> PRT <213> Homo Sapien <400> 5 Met Ala Ala Gly Ser Ile Thr Thr Leu Pro Ala Leu Pro Glu Asp Gly 1 5 10 15 Gly Ser Gly Ala Phe Pro Pro Gly His Phe Lys Asp Pro Lys Arg Leu 20 25 30 Tyr Cys Lys Asn Gly Gly Phe Phe Leu Arg Ile His Pro Asp Gly Arg 35 40 45 Val Asp Gly Val Arg Glu Lys Ser Asp Pro His Ile Lys Leu Gln Leu 50 55 60 Gln Ala Glu Glu Arg Gly Val Val Ser Ile Lys Gly Val Cys Ala Asn 65 70 75 80 Arg Tyr Leu Ala Met Lys Glu Asp Gly Arg Leu Leu Ala Ser Lys Cys 85 90 95 Val Thr Asp Glu Cys Phe Phe Phe Glu Arg Leu Glu Ser Asn Asn Tyr 100 105 110 Asn Thr Tyr Arg Ser Arg Lys Tyr Thr Ser Trp Tyr Val Ala Leu Lys 115 120 125 Arg Thr Gly Gln Tyr Lys Leu Gly Ser Lys Thr Gly Pro Gly Gln Lys 130 135 140 Ala Ile Leu Phe Leu Pro Met Ser Ala Lys Ser 145 150 155 <210> 6 <211> 155 <212> PRT <213> Artificial Sequence <400> 6 Met Ala Ala Gly Ser Ile Thr Thr Leu Pro Ala Leu Pro Glu Asp Gly 1 5 10 15 Gly Ser Gly Ala Phe Pro Pro Gly His Phe Lys Asp Pro Lys Arg Leu 20 25 30 Tyr Cys Lys Asn Gly Gly Phe Phe Leu Arg Ile His Pro Asp Gly Arg 35 40 45 Val Asp Gly Val Arg Glu Lys Ser Asp Pro His Ile Lys Leu Gln Leu 50 55 60 Gln Ala Glu Glu Arg Gly Val Val Ser Ile Lys Gly Val Cys Ala Asn 65 70 75 80 Arg Tyr Leu Ala Met Lys Glu Asp Gly Arg Leu Leu Ala Ser Lys Cys 85 90 95 Val Thr Asp Glu Cys Phe Phe Phe Glu Arg Leu Glu Ser Asn Asn Tyr 100 105 110 Asn Thr Tyr Arg Ser Arg Lys Tyr Thr Ser Trp Tyr Val Ala Leu Lys 115 120 125 Arg Thr Gly Gln Tyr Lys Leu Gly Ser Lys Thr Gly Pro Gly Gln Lys 130 135 140 Ala Ile Leu Phe Leu Pro Met Ser Ala Lys Ser 145 150 155

Claims

가용성 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자 (recombinant human-basic fibroblast growth factor: rh-bFGF)를 제조하는 방법으로서,
재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자를 코딩하는 돌연변이된 핵산 분자를 포함하는 숙주 세포를 배양하는 단계;
rh-bFGF의 발현에 적절한 조건하에 상기 숙주 세포에서 상기 rh-bFGF를 발현시키는 단계; 및
상기 rh-bFGF를 정제로 회수하는 단계를 포함하고,
상기 돌연변이된 핵산 분자는 서열 번호: 1, 서열 번호: 2 또는 서열 번호: 3 으로 구성된 군에서 선택된 서열을 포함하는 것인 방법.
청구항 1에 있어서, 상기 돌연변이된 핵산 분자의 상기 서열은 서열 번호: 1 인 것인 방법.
청구항 1 또는 2에 있어서, 상기 숙주 세포는 에스케리치아 콜리 (Escherichia coli)인 것인 방법.
서열 번호: 1, 서열 번호: 2 또는 서열 번호: 3으로 구성된 그룹으로부터 선택된 서열을 포함하는, 재조합 인간-염기성 섬유아세포 성장 인자를 코딩하는 돌연변이된 핵산 분자.
청구항 4에 있어서, 서열 번호: 1의 서열을 갖는 것인 돌연변이된 핵산 분자.
청구항 4 또는 5의 돌연변이된 핵산 분자를 포함하는 벡터.
청구항 6에 있어서, 상기 벡터는 pET-30a(+)인 것인 벡터.
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