KR101771192B1 - 2β,3α,5α-트리하이드록시-안드로스트-6-원 및 이의 제조 방법 및 이의 용도 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 화학식 I의 구조를 갖는 2β,3α,5α-트리하이드록시-안드로스트-6-원 (2β,3α,5α-trihydroxy-androst-6-one) 화합물을 개시한다. 본 발명은 또한 상기 화합물의 제조를 위한 복수 개의 방법 및 상기 화합물의 용도를 개시한다.
화학식 (I).
Description
본 발명은 폴리하이드릭 스테론에 관한 것이며, 특히 2β,3α,5α-트리하이드록시-안드로스트-6-원, 및 이의 제조 방법 및 의약용도에 관한 것이다.
본 출원 청구항은 2013년 3월 28일자에 제출된 중국 특허 출원번호 201310104162.5에 대하여 우선권을 가지며, 이것의 전체 내용은 참조로서 본원에 포함된다.
폴리하이드릭 스테론은 널리 자연적으로 발생하는 중요한 화합물 군이다. 해양 생물체 및 육생 식물로부터 분리되는 많은 폴리하이드릭 스테론은 중요한 생리학적 기능, 예컨대 항종양 및 면역증진 효과와 같은 기능을 갖는다. 예를 들면, ecdysterone 및 브라시노스테로이드(brassinosteroids)는 식물의 성장-촉진 화합물이다.
그러나, 자연 발생 폴리하이드릭 스테론은 매우 낮은 수준으로 식물에 함유되어 있고, 이것의 정제 공정은 그러므로 복잡하고 시간이 많이 소모된다. 또한, 구조적인 복잡성, 예를 들면 상대적으로 길고 복잡한 측쇄때문에 이들 군의 대부분의 화합물은 합성이 불가능하고, 이들의 적용을 제한한다. 합성을 가능하게 하는 단순화된 구조를 가지면서, 이들이 상당한 내재적 약학적 특성을 유지할 수 있도록 만약 이들 자연 발생 화합물들이 구조적으로 최적화된다면, 적용 범위의 관점에서 매우 큰 중요성이 있을 것이다.
본 발명은 화학식 (I) 의 구조를 갖는 신규한 폴리하이드릭 스테론, 즉, 2β,3α,5α-트리하이드록시-안드로스트-6-원 (이하에서 YC-10, 화합물 (I), 화합물 I로 언급되고, 본원에서 상호교환적으로 사용된다)을 제공한다:
화학식 (I) 의 화합물이 본 발명자들에 의해 합성된다. 상기 화합물은 많은 자연 발생 폴리하이드릭 스테론과 비교하여 상대적으로 단순한 구조를 갖는다. 예를 들면, 이들은 길거나 또는 복잡한 측쇄를 포함하지 않고 단순한 합성을 가능하게 한다. 또한 감소된 분자량 및 상대적으로 단순한 입체화학적 구조는 약물 전달에 있어서 유익하다. 게다가, 측쇄의 제거는 화합물이 다른 물질들과 상호작용할 가능성을 감소시킨다. 또한, 화합물 (I) 의 17 위치에서의 측쇄의 부재는 화합물의 in vivo 생물이용성을 증가시키고 이들의 호르몬-유사 효과를 제거할 수 있다. 게다가 독특한 공간구조특성은 화합물의 입체선택성을 개선할 수 있고, 더 나은 생물학적 활성을 달성할 수 있다.
화학식 (I)의 화합물은 특이적 약리학적 효과를 나타내는 것으로 입증되었다. 일 측면에서, 상기 화합물은 항-종양 활성을 갖는것으로 입증되었다. 또다른 측면에서, 상기 화합물은 신경-보호 효과, 특히 망막 신경절 세포에 대해 효과를 갖는 것으로 입증되었다.
그러므로, 일 측면에서, 본 발명은 화학식 (I) 구조를 갖는 치료학적으로 유효한 양의 화합물, 및 약학적으로 허용가능한 담체를 포함하는 약학적 조성물을 제공한다. "치료적으로 유효한 양"은 질병 치료를 위해 개체에 투여되었을 때 이러한 질병의 치료에 효과적인 충분한 화합물의 양을 의미한다. 상기 "치료적으로 유효한 양"은 화합물, 질병 및 이의 중등도, 및 치료받는 개체의 나이, 무게 등에 의존적으로 달라질 수 있다. "약학적으로 허용가능한 담체"는 본 발명의 화합물과 함께 투여되는 희석제, 어쥬번트, 부형제 또는 담체를 말한다.
또다른 측면에서, 본 발명은 화학식 (I) 의 구조를 갖는 치료적으로 유효한 양의 화합물, 및 제2의 신경 보호제를 포함하는 약학적 조성물을 제공한다. 상기 제2의 신경보호제는 신경보호 목적을 위한 본 발명에 의해 제공되는 화합물과는 다른 것이나 이와 조합하여 사용할 수 있는 것이다. 바람직한 구현예에서, 제2의 신경 보호제는 망막 신경절 세포를 보호하는 제제이다.
또다른 측면에서, 본 발명은 화학식 (I)의 구조를 갖는 치료적으로 유효한 양의 화합물, 및 제2 항-종양 약물을 포함하는 약학적 조성물을 제공한다. 상기 제2의 항-종양 약물은 항-종양 적용을 위하여 본 발명에 의해 제공되는 화합물과는 다른 것이나 이와 조합하여 사용할 수 있는 것이다.
본원에서 사용된 바와 같이, "종양"은 피부 또는 신체 기관, 예를 들면 이에 제한되는 것은 아니나 유방, 전립선, 폐, 신장, 췌장, 위 또는 장 내의 악성 또는 양성 세포의 성장을 의미한다. 악성 종양은 인접한 조직으로 침투하고 떨어진 기관 예컨대 뼈, 간, 폐 또는 뇌와 같은 기관으로 확산(전이)되는 경향이 있다. 본원에서 사용된 용어 "종양"은 전이성 종양 세포 유형, 예컨대 흑생종, 림프종, 백혈병, 섬유육종, 평활근 및 비만세포 종양, 및 조직 암종 유형 예를 들면 이에 제한되는 것은 아니나 대장암, 전립선 암, 소세포 폐암 및 비소세포 폐암, 유방암, 췌장암, 방광암, 신장암, 위암, 교모세포종, 일차 간암종, 난소암, 전립선암 및 자궁평활근육종을 포함한다.
또다른 측면에서, 본 발명은 신경-보호 의약 또는 항-종양 의약의 제조에 있어서 화학식 (I)의 구조를 갖는 화합물의 용도를 제공한다. 본원에서 제공되는 상기 화합물은 용량-의존적 방식으로 종양 세포 성장을 억제하고, 뚜렷하게 신경-보호 효과를 함께 갖는다는 것이 입증되었다.
추가적인 또다른 측면에서, 본 발명은 질병 또는 상태, 예컨대 망막 신경 손상 또는 안과 질환, 예컨대 망막 허혈, 트라우마 및 급성 또는 만성 녹내장, 고혈압 망막병증, 당뇨성 망막 손상, 망막 세포 변성증 및 황반증, 및 중추신경계 질환,예컨대 뇌졸중, 뇌손상, 척수외상, 파킨슨 병(PD), 알츠하이머(AD), 헌팅턴 병(HD), 및 루게릭 병을 포함하는 다양한 인자에 의해 유발되는 중추신경계의 신경 손상과 관련된 질병 또는 상태의 치료 또는 개선 방법을 제공한다. 상기 방법은 개체에 치료적으로 유효한 양의 화학식 (I) 화합물, 이의 전구약물 또는 용매화물 또는 본 발명에서 제공되는 약학적 조성물을 개체에 투여하는 단계를 포함한다.
본원에서 사용된 바와 같이, "전구약물"은 본 발명의 화합물의 유도체를 포함하는 화합물로, 절단가능한 기를 가지고 가용매 분해에 의해서 또는 생리학적 조건 하에서 in vivo 에서 약학적으로 활성인 본 발명의 화합물이 되는 것을 말한다. 이러한 예는 이에 제한되는 것은 아니나 콜린 에스테르 유도체 및 이와 같은 것, N-알킬모폴린 에스테르(N-alkylmorpholine esters) 및 이와 같은 것을 포함한다.
"용매화물"은 용매와 관련된 화합물의 형태를 말하며, 보통 가용매 분해반응에 의한 것이다. 이것은 수소 결합을 포함하는 물리적 결합이다. 상업적인 용매는 물, 에탄올, 아세트산 등을 포함한다. 본 발명의 화합물은 예컨대 결정형태로 제조될 수 있고 용매화 또는 수화 형태로 제조될 수 있다. 적절한 용매화물은 약학적으로 허용가능한 용매화물, 예컨대, 수화물, 및 추가적으로 화학량론적 용매화물 및 비-화학량론적 용매화물 모두를 포함한다.
특정 예에서 용매화물은 단리가능하며, 예를 들면 하나 이상의 용매 분자가 결정형 고체의 결정 격자 내에 포함될 때이다."용매화물"은 용매-상 및 분리가능한 용매화물 모두를 포함한다. 대표적인 용매화물은 수화물, 에탄올레이트(ethanolates) 및 메탄올레이트(methanolates)을 포함한다.
추가적 측면에서, 상기 화학식 (I) 의 화합물 제조방법이 제공된다. 상기 방법은 안드로스트-5-엔-3-올을 화합물 VI, 즉 3β-p-톨루엔술포닐옥시-5α-하이드록시-안드로스트-6-원(3β-p-toluensulfonyloxy-5α-hydroxy-androst-6-one)을 얻기 위한 출발 물질로 사용하고; 화합물 VI은 그 후 화합물 IX, 즉 5α-하이드록시-안드로스트-2-엔-6-원 (5α-hydroxy-androst-2-en-6-one)을 얻기 위한 제거 반응에 사용되며; 화합물 IX는 그 후 화합물 I를 얻기위한 2-위치 이중 결합에서의 산화 및 가수분해에 사용된다.
화합물 VI는 하기 예시와 같은 복수개의 방법에 의해서 제조될 수 있다.
(1) 출발 물질: 안드로스트-5-엔-3-올(androst-5-en-3-ol), 이후 H2O2/포름산 산화, 알칼리 분해, NBS 산화, 및 p-톨루엔술포닐 클로라이드 보호.
구체적으로, 상기 방법은 하기 단계를 포함한다.
(1a) 반응 플라스크에 안드로스트-5-엔-3-올 및 포름산을 첨가하고 그 뒤 H2O2을 낮은 온도에서 적하한다. 반응 혼합물을 1 내지 2시간 동안 반응하도록 하고 가열한다. 반응 혼합물에 물을 첨가하고 분산을 위해 저어준다. 상기 혼합물을 여과하고 화합물 Ⅱ을 백색 고체로 얻기 위해 건조시킨다. 출발 물질: 포름산: H2O2 는 1:10~30:0.5~3 (w : v : v);
(1b) 반응 플라스크에 알칼리성 메탄올 용액 및 화합물 Ⅱ을 첨가한다. 상기 반응 혼합물을 1-2시간 동안 환류에서 가열하고, 분산을 위해 물에 투여한다. 상기 혼합물을 여과하고 화합물 Ⅲ를 백색 고체로 얻기 위해 건조시킨다. 상기 알칼리성 메탄올 용액은 메탄올 내 수산화칼륨, 수산화나트륨 또는 나트륨메톡시드 용액으로부터 선택하였다. 반응 혼합물의 알칼리 농도는 2-10% 이며;
(1c) 반응 플라스크에 화합물 Ⅲ, 디이옥산 (dioxane) 및 물을 첨가한다. NBS를 배치에 첨가하였다. 상기 혼합물을 2-4 시간동안 반응시키고 그 후 아황산나트륨(sodium sulfite)을 첨가하였다. 혼합물을 여과하고 중성으로 물로 세척하였고 백색 고체로 화합물 V을 얻기 위하여 건조시켰으며; 그리고
(1d) 반응 플라스크에 화합물 V, 피리딘, 및 p-톨루엔설포닐 클로라이드를 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 실온에서 24-36 시간 동안 교반하고 그 후 차가운 염산 용액을 첨가하였다. 상기 혼합물을 여과하고 중성으로 물로 세척하였으며 화합물 VI 을 백색 고체로 얻기 위해 건조하였다.
(2) 출발 물질: 안드로스트-5-엔-3-올, 그 후의 m-클로로페록시벤조익산(m-chloroperoxybenzoic acid)을 이용한 산화, 산가수분해, NBS 산화 및 p-톨루엔설포닐 클로라이드 보호.
구체적으로, 상기 방법은 하기 단계를 포함한다.
(2a) 반응플라스크에 안드로스트-5-엔-3-올 및 CH2Cl2 를 첨가한다. m-클로로페록시벤조익산을 배치 내로 교반 중에 첨가한다. 상기 혼합물을 아이스 배치에서 2-5시간 동안 추가적으로 교반한다. 반응이 완료된 후, 상기 혼합물을 Na2CO3, Na2CO3 및 물로 세척하고, 화합물 IV를 얻기 위해 건조시키고 농축시킨다;
(2b) 반응 플라스크에 화합물 IV 및 산성 아세톤 수용액을 첨가하고 실온에서 몇 시간 동안 교반하였다. 반응이 완료된 후, 상기 반응 용액을 Na2CO3 용액을 이용하여 중성으로 조절하였다. 상기 아세톤을 제거하고 잔여물을 에틸아세테이트를 이용하여 추출하였다. 유기 층을 수집하고, 건조시켰으며 화합물 Ⅲ를 얻기 위하여 농축시켰다. 산성 아세톤 수용액 내의 산은 황산 또는 과요오드산(periodic acid)이다. 화합물 IV:아세톤:1N 산은 1:20~30:5~10(w : v : v);
(2c) 반응 플라스크에 화합물 Ⅲ, 디이옥산 및 물을 추가하였다. NBS를 배치에서 추가하였다. 상기 혼합물을 2-4 시간 동안 반응시키고, 아황산나트륨을 첨가하였다.상기 혼합물을 여과하고 중성으로 물을 이용하여 세척하였으며, 화합물 V를 백색 고체로 얻기 위하여 건조시켰고; 그리고
(2d) 반응 플라스크에 화합물 V, 피리딘 및 p-톨루엔설포닐 클로라이드를 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 24-36 시간동안 실온에서 교반하였으며 그 후 차가운 염산 용액을 첨가하였다. 상기 혼합물을 여과하고 중성으로 물을 이용하여 세척하였으며, 화합물 VI를 백색 고체로 얻기 위하여 건조시켰다.
(3) 출발 물질: 안드로스트-5-엔-3-올, 그 후 p-톨루엔설포닐 클로라이드 보호, m-클로로페록시벤조익산을 이용한 산화 및 존슨 시약 산화.
구체적으로, 상기 방법은 하기의 단계를 포함한다.
(3a) 반응 플라스크에 안드로스트-5-엔-3-올, 무수 피리민 및 p-톨루엔설포닐 클로라이드를 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 실온에서 교반하였다. 반응이 완료된 후, 상기 혼합물을 차가운 염색 용액에 투여하고 교반, 여과하고, 중성으로 물을 이용하여 세척하였으며, 화합물 Ⅶ를 백색 고체로 제공하기 위하여 건조하였다;
(3b) 반응 플라스크에 화합물 Ⅶ 및 디클로로메탄을 첨가하였으며, 배치에 m-클로로페록시벤조익산을 교반 중에 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 아이스 배치에서 추가적으로 교반하였다. 반응이 완료된 후, 상기 혼합물을 포화 아황산나트륨 용액, 탄산 나트륨 용액 및 증류된 물로 세척하였다. 유기층을 수집, 건조, 농축시켰으며 화합물 Ⅷ를 백색 고체로 얻기 위하여 실리카-겔 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.
(3c) 반응 플라스크에 화합물 Ⅷ 및 아세톤을 첨가하고 존슨 시약을 교반동안 첨가하였다. 상기 혼합물이 실온에서 여러시간 동안 반응하도록 하였다. 반응이 완료된 후, 상기 혼합물을 이소프로판올로 퀀칭시키고 중성으로 조절하였다. 혼합물에서 아세톤을 제거하기 위하여 감암하에서 농축시키고 에틸아세테이트로 추출하였으며, 세척, 건조하고 연녹색 고체를 얻기 위하여 농축시켰다. 상기 고체를 화합물 VI를 백색 고체로 얻기 위하여 실리카-겔 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.
본 발명의 방법에 있어서, 화합물 IX는 하기 예시와 같이 제조된다. 반응 플라스크에 화합물 VI, DMF, Li2CO3 및 LiBr 를 첨가하였다. 반응 혼합물을 환류를 위해 가열하고 차가운 수용성 염산 용액에 투여하였다. 혼합물을 교반, 여과 및 중성으로 세척하고 화합물 IX를 백색 고체로 얻기 위하여 건조하였다. 바람직하게 화합물 VI: DMF는 1: 3~15(w : v);화합물 VI: Li2CO3 :LiBr은 1 : 4~12 : 4~12(M : M : M)이다.
본 발명의 방법에 있어서, 화합물 I는 또한 하기 예시된 방법에 의하여 화합물 IX 로부터 제조될 수 있다.
(1) 화합물 I는 화합물 IX로부터 H2O2/포름산 산화 및 알칼리 가수분해에 의하여 제조된다.
구체적으로, 상기 방법은 하기의 단계를 포함한다.
(1a) 반응 플라스크에 화합물 IX 및 포름산을 첨가하고 그 후 H2O2를 낮은 온도에서 적하하여 추가한다. 반응 혼합물은 1 내지 2 시간동안 반응하도록 하고, 그 후 가열하였다. 반응 혼합물에 물을 넣고 분산을 위해 교반하였다. 상기 혼합물을 백색 여과 케이크를 얻기 위해 여과하였다. 상기 케이크를 화합물 X를 백색 고체로 얻기 위하여 건조하였다. 상기 화합물 X: 포름산: H2O2은 1:10~30:0.5~3 (w : v : v)이며;
(1b) 반응 플라스크에 알칼리성 메탄올 용액 및 화합물 X를 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 환류를 위하 1-2 시간 동안 가열하였고 분산을 위해 물에 투여하였다. 혼합물을 여과하고 화학식 (I) 의 화합물을 백색 고체로 얻기 위하여 건조시켰다. 알칼리성 메탄올 용액은 메탄올 내 수산화칼륨, 수산화나트륨 또는 나트륨메톡시드 용액으로부터 선택하였다. 상기 반응 혼합물의 알칼리 농도는 2-10%이다.
(2) 화합물 I는 화합물 IX로부터 m-클로로페록시벤조익산 및 산가수분해를 이용한 산화에 의해 제조된다.
구체적으로, 상기 방법은 하기 단계를 포함한다.
(2a) 반응 플라스크에 화합물 IX 및 CH2Cl2를 첨가하였다. m-클로로페록시벤조익산을 교반 중에 배치에 첨가하였다. 상기 혼합물을 추가적으로 아이스 배치에서 2-5 시간동안 교반하였다. 반응이 완료된 후, 상기 혼합물을 Na2CO3, Na2SO3 및 물을 이용하여 세척하였으며, 화합물 XI를 얻기위해 건조 및 농축하였다;
(2b) 반응 플라스크에 화합물 XI 및 산성 아세톤 용액을 첨가하고 몇시간 동안 실온에서 교반하였다. 반응이 완료된 후, 반응 용액을 Na2CO3 용액을 이용하여 중성으로 조절하였다. 상기 아세톤을 제거하고 에틸 아세테이트를 이용하여 잔여물을 추출하였다. 유기층을 수집하고, 건조하고 화합물 I를 얻기 위해 농축하였다. 산성 아세톤 수용액 내 산성은 황산 또는 과요오드산이다. 화합물 XI: 아세톤: 1N 산은 1:20~30:5~10 (w : v : v)이다.
도 1은 본 발명의 화합물 I의 LN18 및 DBTRG-50MG 세포 억제를 보여준다 (n=3 *, p< 0.05).
도 2는 화합물 I가 글루메이트-유도된 손상으로부터 소뇌 과립 뉴런을 보호함을 보여준다.
도 3은 화합물 I가 용량-의존적 방식으로 소뇌 과립 뉴런의 생존을 증진시킬을 보여준다.
도 4는 화합물 I가 낮은 칼륨 유도된 사멸로부터 소뇌 과립 뉴런을 보호함을 보여준다.
도 5는 화합물 I가 RGC 감소를 막는 것으로 나타나는 동안, RGC 가 시신경 클램핑 손상 모델에서 뚜렷하게 감소됨을 보여준다.
도 6은 시신경 클램핑 손상 모델 내 시료의 다른 군에서 RGC의 통계를 보여주는 그래프이다.
도 7은 RGC가 화합물 I가 RGC 감소를 막는 것으로 나타나는 동안, 높은 안압 및 허혈 모델에서 RGC가 뚜렷하게 감소됨을 보여준다.
도 8은 높은 안압 및 허혈 모델에서 시료의 다른 군에서 RGC 통계를 보여주는 그래프이다.
도 2는 화합물 I가 글루메이트-유도된 손상으로부터 소뇌 과립 뉴런을 보호함을 보여준다.
도 3은 화합물 I가 용량-의존적 방식으로 소뇌 과립 뉴런의 생존을 증진시킬을 보여준다.
도 4는 화합물 I가 낮은 칼륨 유도된 사멸로부터 소뇌 과립 뉴런을 보호함을 보여준다.
도 5는 화합물 I가 RGC 감소를 막는 것으로 나타나는 동안, RGC 가 시신경 클램핑 손상 모델에서 뚜렷하게 감소됨을 보여준다.
도 6은 시신경 클램핑 손상 모델 내 시료의 다른 군에서 RGC의 통계를 보여주는 그래프이다.
도 7은 RGC가 화합물 I가 RGC 감소를 막는 것으로 나타나는 동안, 높은 안압 및 허혈 모델에서 RGC가 뚜렷하게 감소됨을 보여준다.
도 8은 높은 안압 및 허혈 모델에서 시료의 다른 군에서 RGC 통계를 보여주는 그래프이다.
하기는 오직 예시적인 목적으로만 제공된다. 본 발명의 범위는 하기에 제공되는 실시예들에 의해서 제한되지 않는 것으로 이해된다. 하기 실시예에서, 화합물 I는 2β,3α,5α-트리하이드록시-안드로스트-6-원 (2β,3α,5α-trihydroxy-androst-6-one); 화합물 Ⅱ은 3β,6β-디프로밀옥시-5α-안드로스트-5-올(3β,6β-diformyloxy-5α-androst-5-ol); 화합물 Ⅲ는 안드로스트-3β,5α,6β-트리올 (androst-3β,5α,6β-triol); 화합물 Ⅳ는 3β-하이드록시-안드로스트-5β,6β-에폭시(3β-hydroxy-androst-5β,6β-epoxy); 화합물 Ⅴ는 3β,5α-디하이드록시-안드로스트-6-원 (3β,5α-dihydroxy-androst-6-one); 화합물 Ⅵ은 3β-p-톨루엔술포닐옥시-5α-하이드록시-안드로스트-6-원(3β-p-toluensulfonyloxy-5α-hydroxy-androst-6-one); 화합물 Ⅶ은 3β-p-툴루엔술포닐옥시-안드로스트-5-엔(3β-p-toluensulfonyloxy-androst-5-en); 화합물 Ⅷ은 3β-p-툴루엔술포닐옥시-안드로스트-5β,6β-에폭시(3β-p-toluensulfonyloxy-androst-5β,6β-epoxy); 화합물 IX는 5α-하이드록시-안드로스트-2-엔-6-원 (5α-hydroxy-androst-2-en-6-one); 화합물 X는 2β,3α-디프로밀옥시-5α-하이드록시-안드로스트-6-원 (2β,3α-diformyloxy-5α-hydroxy-androst-6-one); 및 화합물 XI는 2β,3β-에폭시-5α-하이드록시-안드로스트-6-원 (2β,3β-epoxy-5α-hydroxy-androst-6-one) 에 관한 것이다.
화합물 I의 제조 -
실시예
1
단계 1- 2L의 반응 플라스크에 화합물 안드로스트-5-엔-3-올(androst-5-en-3-ol) (54.5 g) 및 포름산 (1L, 88%)를 추가하였다. 반응 혼합물을 25℃로 냉각시키고, 과산화수소(hydrogen peroxide)(82.5 mL, 30%)를 천천히 추가시킨다. 반응이 TLC에 의해서 입증되는 것과 같이 완전하게 이루어진 후, 상기 혼합물을 초과 과산화수소의 제거를 위해 75℃ 로 가열한다. 분산을 위해 물 (1L)를 추가하고 교반하였다. 혼합물들을 백색 여과 케이크를 얻기 위하여 여과하였다. 상기 케이크를 포화된 NaHCO3 용액에 유입시키고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 하기 위해 세척하였으며 화합물 Ⅱ(62.4 g)를 백색 고체로 공급하기 위하여 건조하였다.
단계 2 - 2L의 반응 플라스크에 수산화 칼륨 (potassium hydroxide) (45 g), 메탄올 (1500ml), 물 (300ml) 및 화합물 Ⅱ (60g) 을 추가하였다. 반응 혼합물을 환류를 위해 가열하였다. TLC 로 잔여 화합물 Ⅱ 가 없음을 확인하였다. 반응 혼합물을 실온으로 냉각시켰으며, 분산을 위해 물 (3L)에 투여하였다. 상기 혼합물을 농축된 염산으로 pH=7로 조정하였고 새틀먼트 라미네이션 (settlement lamination)을 허용하였다. 상기 혼합물을 여과시키고 여과 케이크를 중성으로 하기 위해 세척하였으며, 화합물 Ⅲ (49g)를 백색 고체로 얻기 위해 건조하였다.
단계 3- 1L 의 반응 플라스크에 화합물 Ⅲ (49.6g), 디이옥산 (dioxane) (600ml) 및 물 (200ml)를 추가하였다. 화합물 Ⅲ 를 완전하게 용해시켰으며, N-브로모-숙신이미드 (N-bromo-succinimide)(42.5 g)를 4개의 배치에 추가하였다. 화합물 Ⅲ가 TLC에서 입증된 것과 같이 열화된 후, 상기 반응을 정지시켰다. 아황산나트륨 (11g) 을 초과 산화제의 환원을 위해 첨가하였다. 상기 혼합물을 물 (4L)에서 분산시켰으며 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 세척하고 화합물 V (47.8 g)를 백색 고체로 공급하기 위해 건조하였다.
단계 4- 500ml의 반응 플라스크에 피리딘 (135ml), 화합물 V (44.3g) 및 p-톨루엔설포닐 클로라이드(45g)를 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 교반하였다. 화합물 V가 TLC 에 의해 입증된 것과 같이 열화된 후, 상기 반응을 정지시켰다. 상기 혼합물을 차가운 수용성 염산 용액 (300mL, 1:1 (V:V)) 에 투여하고, 교반하였으며, 여과하였다. 여과 케이크를 pH=7 로 세척하고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 세척하고 화합물 VI (61.7 g) 를 백색 고체로 공급하기 위해 건조하였다.
단계 5 - 1L의 반응 플라스크에 N,N-디메틸포름아미드(325ml), 화합물 VI(54g), Li2CO3 (52.1 g) 및 LiBr (60.5 g)을 첨가하였다. 혼합물을 환류하기 위해 가열하였다. 화합물 VI가 TLC 에 의해 입증된 것과 같이 열화된 후, 상기 반응을 정지시켰다. 혼합물을 차가운 수용성 염산용액 (2L, 1:1 (V:V))에 투여하고, 교반하였으며, 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 세척하고 화합물 IX(32 g)를 백색 고체로 공급하기 위해 건조하였다.
단계 6- 500mL의 반응 플라스크에 화합물 IX (30g) 및 포름산 (600ml, 88%)를 첨가하였다. 상기 혼합물을 고체 화합물이 용해되도록 가열하였으며, 그 후 25℃ 이하로 냉각하였다. 과산화수소(Hydrogen peroxide) (24ml, 30%)를 천천히 첨가하였다. 화합물 IX가 TLC에 의해 입증된 것과 같이 열화된 후, 상기 혼합물을 75℃ 에서 10분 동안 초과 과산화수소를 제거하기 위해 가열하였다. 물(3L)을 분산을 위해 첨가하고 교반하였다. 상기 혼합물을 백색 여과 케이크를 얻기 위하여 여과하였다. 상기 케이크를 포화된 NaHCO3 용액으로 유입시키고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 세척하고 화합물 X(26g)을 백색 고체로 공급하기 위해 건조하였다.
단계 7- 500mL의 반응 플라스크에 수산화 칼륨 (27 g), 메탄올(600ml), 물 (72ml) 및 화합물 X(23.4g)을 첨가하였다. 반응 혼합물을 환류를 위해 가열하였다. TLC는 잔여 화합물 X 가 없음을 확인하였다. 상기 반응 혼합물을 실온으로 냉각시키고, 분산을 위해 물(3L) 로 투여하였다. 상기 혼합물을 농축된 염산에 의해 pH=7 로 조절하고 새틀먼트 라미네이션을 허용하였다. 혼합물을 여과하고 여과케이크를 중성으로 세척하고 아세톤에서 재결정화하였으며, 화합물 I (16g)을 백색 고체로 얻기위해 건조하였다.
m.p:197~201℃; 비선 광도 (specific rotation):-50°(2mg/mL, 무수에탄올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1)υ:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물 I의 제조 -
실시예
2
단계 1- 2L의 반응 플라스크에 화합물 안드로스트-5-엔-3-올(70g) 및 CH2Cl2 (1200 mL)을 첨가하였다. 상기 혼합물에 m-클로로페록시벤조익산(m-chloroperoxybenzoic acid ) (105g, mCPBA) 을 교반 중에 배치 내에서 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 추가적으로 5시간 동안 아이스 배치에서 교반하였다. 반응이 완결된 후, 상기 혼합물을 포화 아황산나트륨(sodium sulphite) 용액, 탄산나트륨 용액 및 증류수로 세척하였다. 유기 층을 수집하고, 건조시키고, 화합물 IV(62g)을 황색 고체로 공급하기 위해 농축하였다.
단계 2- 화합물 IV(60g) 을 아세톤 (3L)에서 용해하였다. 용액에 1N H2SO4 (400 mL) 용액을 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 3시간동안 교반하였다. 반응이 완료된 후, 상기 혼합물을 Na2CO3 용액으로 중성으로 조절하고, 아세톤을 제거하기 위하여 감압 하에서 농축하였다. 상기 혼합물을 에틸아세테이트로 추출하고, 유기 층을 수집하였으며, 황색 고체(48g) 를 얻기 위하여 무수 황산나트륨 상에서 건조하였다. 상기 고체를 아세톤에서 화합물 Ⅲ (30.5 g)를 얻기 위해서 재결정화하였다.
단계 3 내지 7은 실시예 1의 단계 3 내지 7과 동일하다.
m.p:197~201℃; 비선 광도:-50°(2mg/mL, 무수 알코올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1) υ:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물 I의 제조 -
실시예
3
단계 1 내지 5는 실시예 1의 단계 1 내지 5와 동일하다.
단계 6- 500mL의 반응 플라스크 내에서, 화합물 IX(23g) 을 CH2Cl2 (600 mL) 에서 용해시켰다. 혼합물에 m-클로로페록시벤조익산(34.6 g, mCPBA)를 배치 내에서 교반 동안에 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 5시간 동안 아이스 배치에서 추가적으로 교반하였다. 반응이 완결된 후, 상기 혼합물을 포화 아황산나트륨 용액, 탄산나트륨 용액 및 증류수로 세척하였다. 유기층을 수집하고, 건조하고 화합물 XI (20.7g)을 황색 고체로 공급하기 위하여 농축하였다.
단계 7 - 2L의 반응 플라스크 내에서, 화합물 XI(17.4g)을 아세톤 (900mL)에서 용해하였다. 혼합물에 1N H2SO4 용액(180ml)을 첨가하였다. 혼합물을 실온에서 3시간 동안 교반하였다. 반응이 완결된 후, 상기 혼합물을 Na2CO3 용액으로 중성으로 조절하고 아세톤을 제거하기 위하여 감압하에서 농축하였다. 상기 혼합물을 에틸아세테이트로 추출하고 유기층을 수집하였으며 황색 고체(14.4g) 을 얻기 위하여 무수 황산나트륨 상에서 건조하였다. 상기 고체를 화합물 I을 백색 고체로 공급하기 위해서 아세톤에서 재결정화하였다.
m.p:197~201℃; 비선 광도:-50°(2mg/mL, 무수에탄올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz)δ:0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1) υ:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물 I의 제조 -
실시예
4
단계 1- 250mL 의 반응 플라스크에 안드로스트-5-엔-3-올(14.64g) 및 무수 피리딘(125mL) 를 첨가하였다. 혼합물에 p-톨루엔설포닐 클로라이드(26.05g) 를 배치에서 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 24시간동안 반응되도록 하였다. 시작 물질들이 TLC에서 의해 입증되는 것처럼 열화된 후, 반응을 정지시켰다. 혼합물을 격렬한 교반 하에서 차가운 HCl 용액(2000 mL, 17%)에 투여하고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 세척하고 화합물 Ⅶ(22.48g)을 백색 고체로서 공급하기 위하여 진공하에서 건조하였다.
단계 2- 250mL 의 반응 플라스크에 화합물 Ⅶ (15.00g) 및 CH2Cl2 (200 mL)을 첨가하였다. 혼합물에 m-클로로페록시벤조익산(15.12 g, mCPBA) 을 교반 동안에 배치에서 첨가하였다. 반응 혼합물을 추가적으로 아이스 배치에서 5시간 동안 교반하였다. 반응이 완결된 후, 혼합물을 포화 아황산나트륨 용액, 탄산 나트륨 용액 및 증류된 물로 세척하였다. 유기 층을 수집하였고 무수 황산나트륨 상에서 건조하였다. 유기 용매를 증발시켰다. 조 생성물(crude product)(14.07g) 을 공급하기 위하여 진공하에서 잔여물을 건조시켰다. 상기 조 생성물을 화합물 Ⅷ(12.3g)을 백색 고체로 공급하기 위하여 실리카-겔 컬럼 크로마토그래피를 통해 정제하였다.
단계 3- 1000mL 의 반응 플라스크에 화합물 Ⅷ(14.07g) 및 아세톤 (750ml) 를 첨가하였다. 혼합물에 Jones 시약 (30 mL)을 교반중에 첨가하였다. 혼합물을 실온에서 2 시간동안 반응하도록 하였다. 반응이 TLC에 의해 입증되는 것처럼 완결된 후, 상기 혼합물을 이소프로판올로 퀀칭시키고 Na2CO3 용액으로 중성으로 조절하였다. 상기 혼합물에서 아세톤을 제거하기 위하여 감압하에서 농축시키고, 에틸 아세테이트로 추출하였다. 유기 층을 수집하고 증류수로 여러 회 세척하였으며, 무수 황산 나트륨 상에서 건조하고, 연녹색 고체를 얻기위해 농축하였다. 상기 고체를 화합물 VI(12.89g) 을 백색 고체로 얻기 위해 실리카-겔 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다.
단계 4 내지 6은 실시예 1의 5 내지 7과 동일하다.
m.p:197~201℃; 비선 광도:-50°(2mg/mL, 무수 알코올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1) υ:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물 I의
제조예
-
실시예
5
단계 1 내지 4는 실시예 1의 단계 1 내지 4와 동일하다.
단계 5- 1L의 반응 플라스크에 무수 N,N-디메틸포름아미드(325mL), 화합물 VI(54g), 건조 Li2CO3 (69.5g) 및 LiBr(80.6g) 을 첨가하였다. 혼합물을 환류를 위해 가열하였다. 화합물 VI 를 TLC 에 의해 입증되는 것과 같이 소비하고, 반응을 종결하였다. 상기 혼합물에 차가운 HCl 수용액 (2L, 1:1(V:V))를 첨가하고, 교반하고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 물로 세척하고 화합물 IX(32.5g)을 백색 고체로 공급하기 위하여 건조하였다.
단계 6 내지 7은 실시예 1의 단계 6 내지 7과 동일하다.
m.p:197~201℃; 비선 광도:-50°(2mg/mL, 무수에탄올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz) δ: 0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1) υ:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물 I의 제조 -
실시예
6
단계 1 내지 4는 실시예 1의 단계 1 내지 4와 동일하다.
단계 5- 1L의 반응 플라스크에 무수 N,N-디메틸포름아미드(325mL), 화합물 VI(54g), 건조 Li2CO3 (34.7 g) 및 LiBr (40.3g)을 첨가하였다. 상기 혼합물을 환류를 위해 가열하였다. 화합물 VI가 TLC에 의해 입증되는 바와 같이 소비된 후, 반응을 종결시켰다. 상기 혼합물에 차가운 HCl 수용액 (2L, 1:1(V:V))를 첨가하였으며, 교반하고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 물로 세척하고 화합물 IX (30.2g)을 백색 고체로 공급하기 위하여 건조하였다.
단계 6 내지 7은 실시예 1의 단계 6 내지 7과 동일하다.
m.p:197~201℃, 비선 광도:-50°(2mg/mL, 무수 에탄올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1) υ:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물 I의 제조-
실시예
7
단계 1 내지 4는 실시예 1의 단계 1 내지 4와 동일하다.
단계 5- 1L의 반응 플라스크에 무수 N,N-디메틸포름아미드(432mL), 화합물 VI(54g), 건조 Li2CO3 (52.1 g) 및 LiBr (60.5g)을 첨가하였다. 상기 혼합물을 환류를 위해 가열하였다. 화합물 VI가 TLC에 의해 입증되는 바와 같이 소비된 후, 반응을 종결시켰다. 상기 혼합물에 차가운 HCl 수용액 (2L, 1:1(V:V))를 첨가하였으며, 교반하고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 물로 세척하고 화합물 IX (30.5g)을 백색 고체로 공급하기 위하여 건조하였다.
단계 6 - 500mL의 반응 플라스크에 화합물 IX(30g) 및 포름산(600ml, 88%)를 첨가하였다. 상기 혼합물을 고체 화합물로 용해시키기 위해 가열하였고 그 후 25℃ 이하에서 냉각시켰다. 과산화수소(20mL, 30%) 를 천천히 첨가하였다. 화합물 IX가 TLC에 의해 입증된 바와 같이 열화된 후, 상기 혼합물을 75℃에서 10분 동안 초과 과산화수소를 제거하기 위하여 가열하였다. 물 (3L)를 첨가하고 분산을 위해 교반하였다. 상기 혼합물을 백색 여과 케이크를 얻기위하여 여과하였다. 상기 케이크를 포화 NaHCO3 용액으로 유입시키고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 세척하고 화합물 X (28g) 을 백색 고체로 공급하기 위하여 건조하였다.
단계 7- 500mL의 반응 플라스크에 수산화 칼륨 (18g), 메탄올(600mL), 물 (72mL) 및 화합물 X(25g)을 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 환류를 위해 가열하였다. TLC로 잔여 화합물 X가 없음을 확인하였다. 상기 반응 혼합물을 실온에서 냉각시키고, 분산을 위하여 물 (3L)에 투여하였다. 혼합물을 농축된 염산으로 pH=7 이되도록 조절하고 세틀먼트 라미네이션을 하도록 하였다. 상기 혼합물을 여과시키고 여과 케이크를 중성으로 세척하였으며 아세톤에서 재결정화시키고 화합물 I (8.8g) 을 백색 고체로 얻을 수 있도록 건조하였다.
m.p:197~201℃; 비선광도:-50°(2mg/mL, 무수 에탄올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1) v:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물 I의 제조 -
실시예
8
단계 1 내지 5는 실시예 7의 단계 1 내지 5와 동일하다.
단계 6- 500mL의 반응 플라스크에 화합물 IX(30g) 및 포름산(600ml, 88%)를 첨가하였다. 상기 혼합물을 고체 화합물로 용해시키기 위해 가열하였고 그 후 25℃ 이하로 냉각시켰다. 과산화수소(36mL, 30%) 를 천천히 첨가하였다. 화합물 IX가 TLC에 의해 입증된 바와 같이 열화된 후, 상기 혼합물을 75℃로 10분 동안 초과 과산화수소를 제거하기 위하여 가열하였다. 물 (3L)를 첨가하고 분산을 위해 교반하였다. 상기 혼합물을 백색 여과 케이크를 얻기 위하여 여과하였다. 상기 케이크를 버블이 없을 때까지 포화 NaHCO3 용액으로 유입시키고 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 세척하고 화합물 X (24g) 을 백색 고체로 공급하기 위하여 건조하였다.
단계 7은 실시예 7의 단계 7 과 동일하다.
m.p:197~201℃; 비선 광도:-50°(2mg/mL, 무수 에탄올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ:15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1) v:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물
I 의
제조 -
실시예
9
단계 1 내지 5는 실시예 7의 단계 1 내지 5와 동일하다.
단계 6- 500mL의 반응 플라스크에 화합물 IX(30g) 및 포름산(600ml, 88%)를 첨가하였다. 상기 혼합물을 고체 화합물로 용해시키기 위해 가열하였고 그 후 25℃ 이하로 냉각시켰다. 과산화수소(45mL, 30%) 를 천천히 첨가하였다. 화합물 IX가 TLC에 의해 입증된 바와 같이 열화된 후, 상기 혼합물을 75℃에서 10분 동안 초과 과산화수소를 제거하기 위하여 가열하였다. 물 (3L)를 첨가하고 분산을 위해 교반하였다. 상기 혼합물을 백색 여과 케이크를 얻기 위하여 여과하였다. 상기 케이크를 버블이 없을 때까지 포화 NaHCO3 용액으로 유입시키고 그 후 여과하였다. 여과 케이크를 중성으로 세척하고 화합물 X (23g) 을 백색 고체로 공급하기 위하여 건조하였다.
단계 7- 500mL의 반응 플라스크에 수산화 칼륨 (27g), 메탄올(300mL), 물 (36mL) 및 화합물 X(12.5g)을 첨가하였다. 상기 반응 혼합물을 환류를 위해 가열하였다. TLC로 잔여 화합물 X가 없음을 확인하였다. 상기 반응 혼합물을 실온에서 냉각시키고, 분산을 위하여 물 (3L)에 넣어주었다. 혼합물을 HCl로 pH=7 이 되도록 조절하고 세틀먼트 라미네이션을 하도록 하였다. 상기 혼합물을 여과시키고 여과 케이크를 중성으로 세척하였으며 아세톤에서 재결정화시키고 화합물 I (8.0g) 을 백색 고체로 얻을 수 있도록 건조하였다.
m.p:197~201℃; 비선 광도:-50°(2mg/mL, 무수 에탄올); 1H NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 0.65(s, 3H, 18-CH3), 0.87(s, 3H, 19-CH3), 3.76~3.83(d, J=28Hz, 2H, 2-CH 및 3-CH);13C NMR(CDCl3, 400MHz)δ: 15.52 (CH3), 17.27(CH3), 19.94(CH2), 20.53(CH2), 24.68(CH2), 26.90(CH2), 33.02(CH2), 36.45(CH), 39.72(CH2), 40.92(C), 41.26(CH2), 42.54(C), 44.99(CH), 54.04(CH), 68.94(CH), 70.19(CH), 79.71(C), 210.65(C); IR(KBr, cm-1) v:3296, 2937, 1726, 1064; MS(APCI)m/z: 319(M-3).
화합물 I의 항-종양 활성
세포 분주 및 처리: LN18 및 DBTRG-50MG 세포의 대수 상을 완전 배지를 갖는 세포 상청액에 대하여 제조하였다. 세포들을 100 ㎕/well 밀도, 3x104/ml로 96-웰 플레이트에 분주하였다. 분주 12시간 후, 전체 세포 부착이 관찰되었다. 웰에 YC-10이 250, 500, 및 1000μM 최종 농도가 되도록 YC-10을 첨가하였으며, 각각의 농도군을 5 반복으로 하였다.
숙신산탈수소 효소를 이용한 MTT 반응: 배양 24 시간 째에, 각각 웰에 MTT 10μl(5mg/ml) 를 첨가하고, 이 후 4시간 동안 배양하였다. 이 시점에, 현미경을 통해 살아 있는 세포 내 과립형 바이올렛 포르마잔 결정이 관찰되었다.
포르마잔 입자 용해: 상청액을 조심스럽게 방출하였다. 웰에 결정을 용해시키기 위해 100 μl/웰의 DMSO 를 첨가하였다. 미니 발진기 상에서 5분동안 혼합물에 진동을 주고 광학 밀도 (OD 값)을 각각의 웰에 대하여 570nm에서 효소-결합 면역 분석법 (enzyme-linked immunometric assay)으로 측정하였다.
각 군의 실험을 3회 반복하였다.
생존률(%) = 처리군의 OD 값/ 대조군의 OD 값* 100%.
모든 데이터는 평균 ± SD 로 나타내었다. SPSS 13.0 통계 패키지 소프트웨어를 사용하였다. One-Way ANOVA 및 t-test 를 데이터 분석에 사용하였다. Sigmaplot software를 도 1을 도출하는데 사용하였다. 도 1에서 확인할 수 있는 바와 같이, YC-10 250, 500, 1000 μM 처리 24시간 후, 처리군의 세포 생존율은 대조군과 비교하여 통계적으로 유의하였다(P<0.05). YC-10은 용량-의존적으로 종양 세포를 사멸시켰다.
화합물 I의 신경 보호 활성
YC-10의 in vivo 및 in vitro 독성 및 약학적 기능을 그것의 신경 보호 활성 및 잠재적인 임상 약물이 되기 위한 가능성을 평가하기 위해서 연구하였다. 요약하면, 결과는 많은 용량인 YC-10(250mg/kg) 이 투여된 마우스에서 이상징후가 뚜렷하게 관찰되지 않는 것을 나타내었다. 연구는 YC-10이 글루타메이트-유도된 그리고 낮은 칼륨으로 유도된 손상 모델 모두에서 소뇌 과립 뉴런의 생존율을 개선시키는 뚜렷한 효과를 나타낸다는 것을 나타내었다. YC-10은 또한 시신경 손상 및 망막 허혈을 갖는 동물 모델에서 망막 신경절 세포의 생존율을 뚜렷하게 개선하는 것으로 나타났다.
1. 독성 연구
최대허용용량(Maximal tolerance dose) 시험
25 mg/mL 농도 YC-10 주입물을 40% 하이드록시프로필 사이클로덱스트린과 함께 제조하고, 30KM 마우스(수컷 반, 암컷 반, 18-22g의 무게)에 꼬리 정맥을 통해 0.1mL/10 g 으로 주입하였다.
마우스들을 지속적으로 관찰하였다. 모든 마우스들은 밝은 털색과 고운 털결을 가지고, 정상적으로 행동하고 식이하였다. 입, 눈, 코, 또는 귀에서 비정상적인 분비가 관찰되지 않았다. 마우스들은 정상적으로 배변하였다. 마우스들의 무게는 약간씩 증가하였다. 사망한 마우스는 없었다. 마우스들은 14일 이후 희생되었고, 중요 기관, 예컨대 심장, 간, 비장, 신장, 및 위장을 절개하고 시각적으로 관찰하였다. 비정상적인 변화는 관찰되지 않았다. 이들 결과들은 YC-10이 250mg/kg에서 독성을 나타내지 않음을 보여준다.
2. 약리학적 연구
2.1
YC
-10은 소뇌 과립
뉴럽을
글루타메이트
-유도된 손상으로부터 보호한다.
in vitro 에서 8시간 동안 배양된 소뇌 과립 뉴런을 그룹화하였다. 처리군들은 다양한 농도의 MK801 또는 YC-10 을 투여받았고 이 후 30분 동안 배양하였다. 하기와 같이, 모델 군 및 모든 처리군들을 Mg2 +-free Locke 완충액으로 교체하고 글루타메이트(100μM 최종 농도), 글리신(10μM 최종 농도) 및 각각 농도의 약물을 추가하였다. 세포들을 37℃에서 30분 동안 배양하였고, 원래의 배지로 교환하고, 추가적으로 24시간 동안 배양하였으며, 그 뒤 FDA 염색을 수행하였다. 결과를 도 2에 나타내었다.
상기 결과는 글루타메이트가 소뇌 과립 뉴런에서 손상 및 사멸을 유도할 수 있음을 보여준다. MK801은 소뇌 과립 뉴런을 글루타메이트-유도된 손상으로부터 보호할 수 잇다. YC-10 또한 소뇌 과립 뉴런의 글루타메이트-유도된 흥분독소 손상을 용량의존적 방식으로 효과적으로 예방할 수 있다. YC-10은 글루타메이트-유도된 손상으로부터 소뇌 과립 뉴런을 보호한다 (도 3).
2.2
YC
-10은 저 칼륨-유도된 사멸로부터 소뇌 과립 뉴런을 보호한다.
소뇌 과립 뉴런을 8일 동안 in vitro에서 배양하였다. 처리군은 다양한 농도의 YC-10을 처리받았으며 30분동안 배양하였다. 그 후 모델 군 및 모든 처리군을 5K(즉, 5mM KCl) BME 배지(대조군에 대하여 25K BME) 로 교체하였으며, 각각 농도의 YC-10 을 첨가하였다. 세포들은 37℃에서 24시간동안 배양하였으며, 그 후 FDA 염색을 수행하였다. 결과를 도 4에 나타내었다.
도 4에 나타낸 바와 같이, 낮은 칼륨 배지는 소뇌 과립 뉴런의 사멸을 감소시킬 수 있다. YC-10(50μM) 은 낮은 칼륨-유도된 사멸로부터 뉴런을 보호할 수 있다. YC-10은 낮은 칼륨-유도된 사멸로부터 소뇌 과립 뉴럽을 보호한다.
2.3
YC
-10 은 시신경
클램핑
(optic nerve clamping) 손상-유도된 사멸로부터 망막 신경절을 보호한다.
10% 클로랄 하이드레이트(chloral hydrate) 를 랫트 마취에 사용하였다. YC-10(20mg/kg) 또는 용매를 수술 20분 전 꼬리 정맥을 통해 투여하였다. 안구를 국소 마취되도록 하였다. 결막을 각막윤부(limbus cornea) 와 함께 각막 가위(corneal scissors) 및 안구내 마이크로겸자(intraocular microforceps)를 이용하여 절단하였다. 외직근(Lateral rectus)을 전체 시신경이 노출되도록 하게 위하여 뭉똑하게 절단하였다. 크로스액션 겸자를 5초동안 안구 뒤 2mm에서 5초 동안 시신경을 고정시키기 위하여 사용하였으며, 그 후 놓아주었다. 항생 안연고를 감염을 막기위하여 수술 후 적용하였다. 약물을 수술 2 시간 후, 2일, 및 3일째에 투여하였다. 안구를 7일째에 병리학적 검사를 위해 얻었다.
도 5에 나타낸 바와 같이, 병리학적 검사는 시신경 글램핑 손상이 망막 신경절(RGC) 의 사멸을 유도할 수 있음을 보여준다. YC-10 은 글램핑 손상-유도된 사멸을 늦추거나 막을 수 있고, 즉 YC-10은 시신경 글램핑 손상-유도된 사멸로부터 망막 신경절을 보호할 수 있다. 각 군에서 계수된 RGC를 기록하고 도 6에 보고하였다.
2.4 YC-10은 높은 안압 및 및 허혈성 손상-유도된 사멸로부터 망막 신경절을 보호한다.
10% 클로랄 하이드레이트를 랫트 마취에 사용하였다. 안구를 국소마취되도록 하였다. 관류 기구를 랫트의 안구 176cm 상단에 위치시켰다(결과적으로 130mmHg 안압). 30G 1/2 시린지 바늘을 조심스럽게 앞의 챔버에 삽입하였다. 안구를 점차적으로 백색화되었으며 허혈 시작시간을 기록하였다. 허혈 1시간 후, 시린지 니들을 빠르게 제거하고 안구를 항생 점안제로 관리하였다. 랫트를 케이지로 돌려보내 사육하였다. 약물을 용매군 및 YC-10 군(20mg/kg) 의 모델링 전 20 투여하였다. 모델링 2시간, 2일 및 3일 후 랫트에 꼬리 정맥을 통해 YC-10을 처리하였다. 모델링 7일 후, 안구를 병리학적 검사를 위해 얻었다.
도 7에 나타낸 바와 같이, 병리학적 검사는 높은 안압 및 허혈이 망막 신경정(RGC)의 사멸을 유도할 수 있음을 보여준다. YC-10은 허혈-유도된 사멸을 감소 또는 예방할 수 있음을 나타내며, 즉, YC-10은 높은 안압 및 허혈-유도된 사멸로부터 망막신경절을 보호할 수 있다. 각 군에서 계수된 RGC를 기록하고 도 8에 보고하였다.
Claims (8)
- 화학식 I의 구조를 갖는 2β,3α,5α-트리하이드록시-안드로스트-6-원 (2β,3α,5α-trihydroxy-androst-6-one) 화합물, 또는 이의 용매화물:
(화학식 I).
- 치료학적으로 유효한 양의 제1항의 화합물, 또는 이의 용매화물, 및 약학적으로 허용가능한 담체를 포함하는 종양 또는 신경세포 손상 치료용 약학적 조성물.
- 제2항에 있어서, 제2의 신경 보호제를 더 포함하는 약학적 조성물.
- 제3항에 있어서, 상기 제2의 신경 보호제는 망막 신경절 세포 보호제인 약학적 조성물.
- 제2항에 있어서, 제2의 항-종양 약물을 더 포함하는 약학적 조성물.
- 제1항의 화합물 제조 방법으로, 상기 방법은
(a) 화합물 VI, 즉 3β-p-톨루엔술포닐옥시-5α-하이드록시-안드로스트-6-원(3β-p-toluensulfonyloxy-5α-hydroxy-androst-6-one)을 얻기 위하여 안드로스트-5-엔-3-올(androst-5-en-3-ol) 을 출발물질로 사용하는 단계;
(b) 화합물 IX, 즉 5α-하이드록시-안드로스트-2-엔-6-원 (5α-hydroxy-androst-2-en-6-one)을 얻기 위하여 대상 화합물 VI에 제거반응(elimination reaction) 을 하는 단계; 및
(c) 화합물 I을 얻기 위하여 대상 화합물 IX를 2-위치 이중 결합에서 산화시키고 가수분해시키는 단계; 를 포함하는 방법.
- 삭제
- 삭제
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