KR101466811B1

KR101466811B1 - 줄기세포의 인 비보(ｉｎｖｉｖｏ) 이동 유도방법

Info

Publication number: KR101466811B1
Application number: KR1020120001563A
Authority: KR
Inventors: 이진우; 박민성; 김윤희
Original assignee: 테고사이언스 (주)
Priority date: 2011-03-08
Filing date: 2012-01-05
Publication date: 2014-11-28
Also published as: KR101493252B1; CN103561788A; EP2684575B1; JP5828916B2; EP2684575A4; KR20120102501A; CN103561788B; KR20130124264A; EP2684575A2; US20130344119A1; JP2014508776A; WO2012121451A1; US9220757B2

Abstract

본 발명은 손상된 조직 치료용 이식 조성물 및 손상된 조직 부위로 치료용 세포의 인 비보 이동 유도방법에 관한 것이다.
본 발명에 따르면, 본 발명의 화학주성인자(예컨대, IL-8 또는 MIP-3α)와 반응시킨 생분해성 지지체를 손상된 위치(예컨대, 관절연골 또는 피부)에 이식하여 조직 재생을 위한 세포의 호밍을 유도/촉진함으로써 손상된 조직을 치료할 수 있다.
따라서, 본 발명의 조성물은 그 자체로 종래 기술과 비교하여 보다 간편하고 효율적으로 손상된 골 조직, 관절연골 또는 피부조직의 치료에 적용될 수 있을 뿐 아니라, 타가세포를 이용한 세포치료에 있어서 희소성이 높은 치료용 세포자원을 효율적으로 활용할 수 있게 함으로써 유용한 치료 보조제로 이용될 수 있다.

Description

줄기세포의 인 비보(ｉｎｖｉｖｏ) 이동 유도방법{In vivo Induction Methods for Migrating Stem Cells to a Target Site}

본 발명은 손상된 조직 치료용 이식 조성물 및 손상된 조직 부위로 치료용 세포의 인 비보 이동 유도방법에 관한 것이다.

관절연골은 단백다당과 제2형 교원질로 주로 구성된 무혈성 조직이며, 조직부피의 약 5%의 연골세포를 포함하고 있다[1]. 관절연골 손상시, 결손 부위로의 연골세포의 이동이 거의 일어나지 않으며 손상된 관절연골은 자발적인 치유가 일어나지 않는 단점이 있다[2]. 손상된 관절연골을 치료하기 위한 대표적인 생물학적 방법으로 자가연골세포이식법과 골수천공술 등이 있다. 자가연골세포 이식법은 자가연골세포를 배양하여 결손부위로 이식하는 방법으로써 비교적 좋은 결과를 보이나, 반복된 수술과 공여부의 제한성이 단점이다. 골수천공술은 연골결손부의 연골하골을 천공하여 골수와 함께 결손부위로 유입된 골수유래 중간엽 줄기세포 (bone marrow-derived mesenchymal stem cell)를 이용하여 손상된 연골을 치료하는 방법이다. 이 방법은 비교적 간단하고 경제적이나 결과가 일정하지 못하며 유입되는 중간엽 줄기세포의 수가 충분치 못할 경우 조직재생이 원활하지 못하다는 단점이 있다[3-7].

중간엽 줄기세포는 뼈, 연골, 지방세포로 분화할 수 있으며 연골세포에 비해 빠르게 증식하기 때문에 관절연골재생을 위해 중요한 세포원이며, 또한 기존 관절연골 치료법의 단점을 극복하기 위하여 중간엽 줄기세포를 주목하고 있다. 손상된 관절연골이 중간엽 줄기세포에 의해 재생되기 위해서는 충분한 수의 중간엽 줄기세포가 연골결손부위로 유입되고, 모여든 중간엽줄기세포가 관절연골기질에 부착하여 증식 및 연골세포로 분화하여 연골기질을 생성해야 한다. 자연치유과정에서 중간엽 줄기세포는 관절연골손상부위로 이동하여 연골세포로의 분화과정을 거치게 된다. 중간엽 줄기세포의 연골분화를 위해서는 모여든 중간엽 줄기세포의 응집과 세포-세포 및 세포-연골기질 간의 상호작용이 필수적이다[8]. 중간엽 줄기세포의 연골분화에 있어서 세포주위 미세환경은 중요한 역할을 한다. 중간엽 줄기세포와 세포와 인접한 교원질의 상호작용이 간엽 줄기세포의 연골분화를 촉진시킨다[9, 10].

연골을 포함한 여러가지 손상된 조직의 치료를 위해서는 조직손상부 내로의 골수-유래 중간엽 줄기세포의 충분한 유입이 매우 중요하다[11-13]. 혈액 또는 골수내 순환하던 중간엽 줄기세포가 조직손상부로 모여드는 현상을 호밍(homing)이라고 하며, 간엽 줄기세포의 호밍은 여러 단계에 걸쳐 세포부착단백과 케모카인 (chemokine)에 의해 이루어진다[14-17]. 케모카인(chemokine)는 약 810 kDa의 작은 사이토카인이다. 현재까지, 약 50여 가지의 케모카인이 알려졌으며, 다양한 세포들의 주화성을 유도하는 기능을 한다[18-20]. 케모카인은 G-단백 수용체의 일종인 케모카인 수용체(chemokine receptor)에 부착하여 세포주화성을 유도한다. 현재, 약 19가지의 케모카인 수용체가 보고되었으며, 중간엽 줄기세포에서도 케모카인을 이용한 피부 등의 조직재생이 보고된 바 있다[21-23].

현재 사용되고 있는 관절 손상에 대한 치료법(예를 들어, 약물 치료법, 수술, 유전자 치료법, 등)은 관절연골 손상 부위에서 정상 관절연골로의 회복을 가져오지 못하고 있다. 이 외에도, 이식물의 물리적 특성을 고려하여 자가 또는 동종 간 골-연골조직을 이식하거나 재생에 필요한 충분한 수의 연골세포를 보충해주기 위하여 자가연골세포 이식술이 시행되고 있으며 다른 치료법에 비해 좋은 치료효과를 보이나 공여부 또는 공여자의 제한으로 실제 시행에 어려움이 많으며 환자에게는 치료비용이 많이 들고 2회이상의 수술을 받아야하며 이식되는 세포의 기능이 현저히 떨어지는 단점들이 극복되지 못하는 실정이다.

최근에는 이러한 단점을 극복하고자 생분해성 합성 고분자에 세포를 도포한 복합체로 구성된 인공대체물이 활발히 연구되어 임상적용에 시도되는 단계이나 이 방법 또한 기존의 문제점을 극복하지 못하고 있다. 이처럼 손상된 관절연골조직의 재생을 위해 세포와 생체 재료의 접목 기술등의 다양한 치료방법이 개발되었으나, 세포와 생체재료 복합유도체는 임상적으로 적용하기에 제한적이고 아직 미흡하다.

따라서, 세포를 이용하되 그 성질을 최대한 유지하며 기존의 단점을 극복할 수 있는 치료방법의 개발이 절실한 상황이다.

본 명세서 전체에 걸쳐 다수의 논문 및 특허문헌이 참조되고 그 인용이 표시되어 있다. 인용된 논문 및 특허문헌의 개시 내용은 그 전체로서 본 명세서에 참조로 삽입되어 본 발명이 속하는 기술 분야의 수준 및 본 발명의 내용이 보다 명확하게 설명된다.

본 발명자들은 손상된 조직부위의 치료를 위해 조직 재생에 필요한 세포를 손상된 부위로 효과적으로 유도할 수 있는 방법을 개발하고자 노력하였다. 그 결과, 본 발명자들은 케모카인인 IL(interleukin)-8 및 MIP(Macrophage Inflammatory Protein)-3α가 손상된 부위로 중간엽 줄기세포(바람직하게는, 골수-유래 중간엽 줄기세포) 또는 케라틴 세포(keratinocyte)의 유입을 높은 효율로 촉진시키고 상기 케모카인을 포함하는 생분해성 지지체(biodegradable scaffolds)를 손상된 부위에 이식시켜 간편하고 효과적으로 치료할 수 있다는 것을 발견함으로써, 본 발명을 완성하게 되었다.

따라서, 본 발명의 목적은 손상된 조직 치료용 이식 조성물(implantable compositions)을 제공하는 데 있다.

본 발명의 다른 목적은 손상된 조직 부위로 치료용 세포의 인 비보(in vivo) 이동 유도방법을 제공하는 데 있다.

본 발명의 다른 목적 및 이점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구범위 및 도면에 의해 보다 명확하게 된다.

본 발명의 일 양태에 따르면, 본 발명은 IL(interleukin)-8, MIP(Macrophage Inflammatory Protein)-3α, 이들의 유도체 및 이들의 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 1개 이상의 화학주성인자를 포함하는 생분해성 지지체(biodegradable scaffolds)를 유효성분으로 포함하는 손상된 조직 치료용 이식 조성물(implantable composition)을 제공한다.

본 발명자들은 손상된 조직부위의 치료를 위해 조직 재생에 필요한 세포를 손상된 부위로 효과적으로 유도할 수 있는 방법을 개발하고자 노력하였다. 그 결과, 본 발명자들은 케모카인인 IL(interleukin)-8 및 MIP(Macrophage Inflammatory Protein)-3α가 손상된 부위로 중간엽 줄기세포(바람직하게는, 골수-유래 중간엽 줄기세포) 또는 케라틴 세포(keratinocyte)의 유입을 높은 효율로 촉진시키고 상기 케모카인을 포함하는 생분해성 지지체(biodegradable scaffolds)를 손상된 부위에 이식시켜 간편하고 효과적으로 치료할 수 있다는 것을 발견하게 되었다.

본 발명자들은 사람의 골수-유래 중간엽 줄기세포에서 발현하고 연골 또는 피부 손상 인 비트로 조건(in vitro injury) 하에서 발현이 증가하는 케모카인 수용체를 선별하고, 이의 리간드를 포함하는 생분해성 지지체를 손상된 골 조직, 관절 또는 피부 조직에 이식함으로써 중간엽 줄기세포의 호밍을 유도하여 관절 또는 피부 손상을 효과적으로 치료할 수 있다는 것을 확인하였다.

본 명세서의 용어 “화학주성(chemotaxis)”은 화학적 자극들에 의해 유도되는 이동성 세포의 양성(즉, 자극을 향하는 방향) 또는 음성(즉, 자극으로부터 멀어지는 방향) 이동을 의미하며, 세포막이 상응하는 화학주성인자(chemotactic substances; 케모카인)에 의해 활성화되고, 이는 상응하는 세포 표면 수용체(케모카인 수용체)에 의해 매개된다.

본 명세서의 용어“화학주성인자”는 조직으로부터 확산되어 화학주성을 활성화시키는 세포외 매트릭스 분자들 및 분비된 단백질을 의미하며, 예를 들어 TGF(transforming growth factor) 패밀리, BMP(bone morphogenetic protein) 패밀리, CDMP(cartilage-derived morphogenetic proteins), FGF(fibroblast growth factor) 패밀리, CTGF(connective tissue growth factors), PDGF(platelet-derived growth factor) 패밀리, VEGF(vascular endothelial growth factor) 패밀리, 세포외 매트릭스 분자(예컨대, 오스테오폰틴, 파이브로넥틴, 히알루론산, 헤파린, 트롬보스폰딘, 콜라겐, 비트로넥틴, 등) 및 케모카인을 포함한다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명의 화학주성인자는 케모카인을 포함한다.

케모카인은 혈액 줄기세포의 조혈기능 및 백혈구의 화학주성(chemotaxis) 같은 다양한 과정들에서 중요한 생리학적 기능을 하는 단백질(5-20 kDa)이다.

모든 케모카인의 아미노산 서열은 유사하고 4개의 시스테인의 연속적인 배열에 의해 특징화될 수 있다. 케모카인 패밀리는 4개의 서브패밀리로 구분된다: (a) CCL; (b) CXCL; (c) CX3CL; 및 (d) XCL(Murphy, et al ., International union of pharmacology, XXII, Nomenclature of chemokine receptors, Pharmacol Rev, 52: 145-176(2000)).

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명에서 이용될 수 있는 케모카인은 CCL20(MIP-3α), CCL19, CCL21, CCL27, CCL28, CXCL8(IL-8), CXCL9, CXCL10, CXCL11, CXCL12(SDF-1), CXCL16, CXCL13, CXCL5, CXCL6, CCL2(MCP-1), CCL8, CCL13, CCL25, CCL3, CCL4, CCL5, CCL7, CCL14, CCL15, CCL16, CCL23, CX3CL1, XCL1, XCL2, CCL1, CCL17, CCL22, CCL11, CCL24, CCL26, CXCL1, CXCL2, CXCL3 및 CXCL7을 포함하고, 보다 바람직하게는 CCL20, CCL19, CCL21, CCL27, CCL28, CXCL8, CXCL9, CXCL10, CXCL11, CXCL12, CXCL16, CXCL13, CXCL5, CXCL6, CCL2, CCL8, CCL13 및 CCL25를 포함하며, 보다 더 바람직하게는 CCL20, CXCL8, CCL2 및 CXCL12를 포함하고, 가장 바람직하게는 CCL20 및 CXCL8을 포함한다.

상기 CCL20 및 CXCL8의 아미노산 서열은 각각 서열목록 제1서열 및 서열목록 제2서열에 기재되어 있다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명에서 이용되는 케모카인의 농도는 생분해성 지지체(1 g) 당 10-1,000 ng/ml이며, 보다 바람직하게는 생분해성 지지체(1 g) 당 20-800 ng/ml이고, 보다 더 바람직하게는 생분해성 지지체(1 g) 당 35-700 ng/ml이며, 가장 바람직하게는 생분해성 지지체(1 g) 당 50-500 ng/ml이다.

본 명세서의 용어 “생분해성 지지체(biodegradable scaffolds)”는 상기 화학주성인자를 함유한 생분해성 폴리머로 이루어진 3차원 구조체를 의미하고, 이식을 통해 타겟 위치(예컨대, 손상된 관절연골 또는 피부조직)로 손상 조직의 재생에 필요한 세포의 이동을 유도하는 지지체로서 기능한다. 바람직하게는, 본 발명의 생분해성 지지체는 생체적합성 물질로, 일반적으로 다공성 미세 지지체를 형성하여 이동하는 세포를 위한 물리적 지지체를 제공하며, 이식된 위치로 치료 또는 재생용 세포의 유입을 위해 제공된다.

본 발명의 생분해성 지지체는 화학주성을 가지며, 이로 인해 손상된 조직에 필요한 세포(바람직하게는, 줄기세포 또는 케라틴세포)의 호밍을 촉진시킨다. 유입된 세포는 손상된 타겟 부위에서 재생 효능을 발휘한다.

본 발명에 따르면, 본 발명의 생분해성 지지체의 이식은 이동된 세포수를 현저하게 증가시켰으며(참고: 도 2b 및 도 4d), 이동 거리 및 이동 속도(도 2c)도 뚜렷하게 증가시켰다. 또한, 상기 이식은 세포이동 만을 증가시켰을 뿐 세포분화 상에 어떠한 영향도 주지 않았다(도 3). 이는 본 발명의 생분해성 지지체가 손상된 조직 재생을 위해 필요한 세포의 유입만을 촉진시킨다는 것을 의미한다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명에서 이용될 수 있는 생분해성 지지체는 생체 내에서 분해될 수 있는 조건 하에서 어떠한 크기, 형태 또는 조성물로도 이용될 수 있다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명에서 이용될 수 있는 생분해성 지지체는 PLGA(poly(lactic-co-glycolic acid)), PLA(polylactic acid), PGA(polyglycolic acid), PCL(poly-ε-caprolactone), PAA(poly(amino acid)), 폴리안하이드라이드, 폴리오소에스테르, 이들의 유도체, 공중합체, 및 이들의 혼합물; 콜라겐 젤, 폴리비닐 알코올 스폰지, 폴리사카라이드(예를 들어, 알기네이트), 폴리포스파젠, 폴리아크릴레이트 및 폴리에틸렌 옥사이드-폴리프로필렌 글라콜 블랏 공중합체로 구성된 군으로부터 선택되고, 보다 바람직하게는 PLGA, PLA, PGA, PCL, PAA, 폴리안하이드라이드, 폴리오소에스테르 및 이들의 유도체, 공중합체 및 이들의 혼합물로 구성된 군으로부터 선택되고, 가장 바람직하게는 PLGA이다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명의 조성물로 치료되는 손상 조직은 골조직, 관절조직 또는 피부조직이다.

관절연골 손상(joint or cartilage injury)은 손상 부위로 연골세포의 이동이 거의 일어나지 않아 자발적으로 치유되지 않는다. 관절연골 손상의 치료법으로는 자가연골세포이식법 및 골수천공술 등이 있으나, 다음과 같은 단점이 있다: (a) 반복된 수술; (b) 공여부의 제한성; 및 (c) 충분한 중간엽 줄기세포의 유입의 어려움.

최근에는, 종래의 관절연골 손상 치료법의 단점을 극복하기 위해 중간엽 줄기세포를 연골 손상 치료원으로 주목하고 있다.

중간엽 줄기세포(mesenchymal stem cells, MSCs)는 골, 연골, 근육, 인대, 힘줄 및 지방 같은 중간엽 조직(mesenchymal tissues)으로 분화 및 재생할 수 있는 비조혈 기질세포(nonhematopoietic stromal cells)로, 여러 조직에 존재한다. 예를 들어, MSCs는 골수에 적은 수(예컨대, 10,000개의 단핵세포 당 약 1개)로 존재하는 것으로 알려져 있다. 또한, 비록 불멸화될 수 없을 지라도 MSCs는 성장 및 다계통 분화능을 유지하면서 수십배로 배양되어 증식하는 능력을 가질 수 있다. 또한, 비록 MSC가 손상된 조직으로 이동하는 것처럼 보일 지라도, 이들의 이동(trafficking) 및 조직 호밍은 정확하게 이해되지 않는 과정이다. 예를 들어, 케모카인 및 이의 수용체들 중 CXCR4는 조혈모 줄기세포 및 암세포 전이에 중요한 것으로 알려져 있지만(Zou YR, et al ., Function of the chemokine receptor CXCR4 in haematopoiesis and in cerebellar development, Nature, 393: 595-599(1998)), MSC 인 비트로 이동 및 MSC 인 비보 호밍에서 CXCR4 발현의 필요성은 평가되지 않았다. 또한, 여러 보고에서 손상된 조직으로 운반된 MSCs가 회복을 유도할 수 있다는 것이 알려져 있지만, 제한된 MSCs만이 복구된 조직으로 분화된다는 것이 증명되었다. 이러한 불일치는 다음과 같은 이유로 설명될 수 있다: (a) 복구된 조직에서 MSCs의 분리의 기술적 어려움; (b) 치유 단계에서 에 주안점을 포함된 세포로의 MSC 분화 정도의 동정; (c) MSC 활성 기작으로, 분화가 아닌 MSC의 재생 유도 가능성.

상술한 바와 같이, 임상적으로 MSCs를 적용하기 위한 수많은 연구들이 있었지만, MSCs이 손상 부위로 회귀(recruit)하여 생존함으로써 인 비보 치료 효능을 발휘하기 위한 효과적인 방법의 개발은 아직까지 불충분한 상태이다.

본 발명의 조성물은 관절조직(joint tissue) 이외의 일반적인 뼈(골 조직) 손상 부위로 MSCs를 호밍하여 조직 재생에 기여함으로써 골 관련 질환을 치료할 수 있다. 본 발명의 조성물이 이식될 수 있는 골 조직은 늑골, 두개골, 장골, 상완골, 척추뼈, 골반뼈, 어깨뼈등의 체내 모든 골격부위를 포함하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명의 조성물이 이식될 수 있는 관절 부위는 고관절, 어깨, 무릎, 발목, 손목, 팔꿈치, 족근골, 척골, 척추골, 손목뼈, 장골 및 턱관절을 포함하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.

본 발명의 손상된 관절연골 부위는 유리질연골(hyaline cartilage; 예를 들어, 관절, 코, 후두 또는 흉골에 있는 유리질 연골), 탄성연골(elastic cartilage; 예를 들어 귀에 있는 탄성연골) 및 섬유연골(fibrocartilage; 예를 들어, 추간판)을 포함하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.

본 발명의 조성물에 의해 치료될 수 있는 골 질환 또는 관절연골 질환은 골관절염 및 류마티스 관절염을 포함하는 관절염, 골다공증, 골연골증, 골연골염, 불완전 골형성증, 골수염, 골증식체, 연골형성부전증, 연골염, 연골종, 연골육종, 추간판 탈출증, 클리펠-파일 증후군, 변형성 골염, 낭성 섬유뼈염, 및 사고, 골절, 상처, 관절 손상, 자가면역질환, 당뇨병 및 암으로 인한 조직 손상과 연관된 관절연골 질환을 포함하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.

본 발명의 조성물은 손상된 피부 조직의 재생 및 치료에도 유용하게 이용될 수 있다. 본 발명에 따르면, 본 발명에서 선별된 화학주성인자인 IL-8 및 MIP-3α는 손상된 피부조직으로 인간 케라틴 세포의 유입을 크게 증가시켜 피부 표피, 진피 및 피하 조직의 재생을 촉진할 수 있다.

본 명세서에서 용어“케라틴 세포(Keratinocyte)”는 당업계에서“피부세포”,“각질세포”또는“케라틴 형성 세포”라고도 불리우며, 표피의 기저층에 존재하여“기저세포(basal cell)”또는“기저 케라틴 세포(basal keratinocyte)”로도 불리우므로, 이들을 모두 포함하는 의미이다.

피부의 재생 또는 상처 치료는 면역반응, 재상피화(reepithelialization), 육아조직 형성(granulation), 섬유조직 형성(fibroplasia), 상처조직의 수축(contraction)등 여러 가지 과정을 통해 이루어지며, 피부 재생의 일련의 과정들에서 케라틴 세포의 이동, 증식, 분화은 중요한 역할을 한다. 케라틴 세포는 피부의 최외각을 구성하는 표피(epidermis)의 95%를 차지하는 세포로서, 일차적인 기능은 병원균(박테리아, 기생충, 바이러스 등), 열, 자외선 및 수분 상실과 같은 외부적인 피해로부터 보호막을 형성하는 것이다. 케라틴 세포는 기저층에서 생성되어 표면의 과립층(granular layer)을 향해 올라오고, 여기서 생성된 케라틴이 기존의 세포 구성 및 피부 조직을 대체하여 궁극적으로 피부의 재생을 돕는다. 따라서, 피부조직의 손상부위로 케라틴 세포가 효율적으로 이동하도록 유도하는 본 발명의 조성물은 유효한 피부질환 치료용 조성물로 응용될 수 있다.

본 발명의 조성물에 의해 치료될 수 있는 피부 질환은 화상, 동상, 창상(wound), 켈로이드, 조직의 물리적/화학적 파괴, 찰과상(abrasion), 골괴저, 열상(laceration), 결출상(avulsion), 관통상(penetrated wound), 절상, 타박상(contusion or bruise), 피부궤양, 피부각화증, 욕창, 와창, 여드름 및 미용적 시술 후 손상을 포함하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명의 조성물이 이식될 수 있는 피부 조직은 표피, 진피 및 피하조직을 포함하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 본 발명에서 유입이 유도된 세포는 줄기세포 또는 케라틴 세포이다. 상기 줄기세포는 자가(autologous) 줄기세포 또는 비자가(non-autologous) 줄기세포를 포함하고, 바람직하게는 자가 줄기세포이고, 보다 바람직하게는 자가 중간엽 줄기세포 또는 자가 외배엽 줄기세포이며, 가장 바람직하게는 골수-유래 중간엽 줄기세포 또는 피부줄기세포(keratinocyte stem cell)이다.

본 발명의 조성물은 (a) 상술한 생분해성 지지체의 약제학적 유효량; 및 (b) 약제학적으로 허용되는 담체를 포함하는 약제학적 조성물로도 제공될 수 있다.

본 명세서에서 용어 “약제학적 유효량”은 상술한 손상 조직의 치료 또는 재생 활성을 달성하는 데 충분한 양을 의미한다.

본 발명의 조성물이 약제학적 조성물로 제조되는 경우, 본 발명의 약제학적 조성물은 약제학적으로 허용되는 담체를 포함한다. 본 발명의 약제학적 조성물에 포함되는 약제학적으로 허용되는 담체는 제제시에 통상적으로 이용되는 것으로서, 락토스, 덱스트로스, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 전분, 아카시아 고무, 인산 칼슘, 알기네이트, 젤라틴, 규산 칼슘, 미세결정성 셀룰로스, 폴리비닐피롤리돈, 셀룰로스, 물, 시럽, 메틸 셀룰로스, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 활석, 스테아르산 마그네슘 및 미네랄 오일 등을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 약제학적 조성물은 상기 성분들 이외에 윤활제, 습윤제, 감미제, 향미제, 유화제, 현탁제, 보존제 등을 추가로 포함할 수 있다. 적합한 약제학적으로 허용되는 담체 및 제제는 Remington's Pharmaceutical Sciences (19th ed., 1995)에 상세히 기재되어 있다.

본 발명의 약제학적 조성물은 손상된 부위에 직접적으로 투여하며, 예를 들어 피하 주입, 근육 주입, 경피 투여, 관절강내 주사, 등으로 투여할 수 있다.

본 발명의 약제학적 조성물의 적합한 투여량은 제제화 방법, 투여 방식, 환자의 연령, 체중, 성, 병적 상태, 음식, 투여 시간, 투여 경로, 배설 속도 및 반응 감응성과 같은 요인들에 의해 다양하게 처방될 수 있다.

본 발명의 약제학적 조성물은 당해 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자가 용이하게 실시할 수 있는 방법에 따라, 약제학적으로 허용되는 담체 및/또는 부형제를 이용하여 제제화함으로써 단위 용량 형태로 제조되거나 또는 다용량 용기 내에 내입시켜 제조될 수 있다. 이때 제형은 오일 또는 수성 매질중의 용액, 현탁액, 시럽제 또는 유화액 형태이거나 엑스제, 산제, 분말제, 과립제, 정제 또는 캅셀제 형태일 수도 있으며, 분산제 또는 안정화제를 추가적으로 포함할 수 있다.

본 발명에 따르면, 본 발명의 조성물은 살아있는 포유동물에 이식될 수 있으며, 보다 바람직하게는 손상된 관절 부위(예컨대, 관절연골) 또는 피부조직에 이식될 수 있다.

본 발명의 바람직한 구현예에 따르면, 상기 포유동물은 특별하게 제한되지 않으며, 바람직하게는 인간, 마우스, 래트, 토끼, 원숭이, 돼지, 말, 소, 양, 영양, 개 및 고양이를 포함하며, 보다 바람직하게는 인간 및 마우스를 포함한다.

본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 다음의 단계를 포함하는 손상된 조직 부위로 치료용 세포의 인 비보(in vivo) 이동 유도방법을 제공한다:

(a) IL(interleukin)-8, MIP(Macrophage Inflammatory Protein)-3α, 이들의 유도체 및 이들의 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 1개 이상의 화학주성인자(chemotactic factors)를 포함하는 용액에 생분해성 지지체(biodegradable scaffolds)를 담그는 단계; 및

(b) 상기 생분해성 지지체를 손상된 관절 부위에 이식시키는 단계.

본 발명의 방법에서 이용되는 화학주성인자 및 생분해성 지지체에 대해서는 이미 상술하였으므로, 과도한 중복을 피하기 위하여 그 기재를 생략한다.

본 발명의 특징 및 이점을 요약하면 다음과 같다:

(a) 본 발명은 손상된 조직 치료용 이식 조성물 및 손상된 조직 부위로 치료용 세포의 인 비보 이동 유도방법을 제공한다.

(b) 본 발명에 따르면, 본 발명의 화학주성인자(예컨대, IL-8 또는 MIP-3α)와 반응시킨 생분해성 지지체를 손상된 위치(예컨대, 골 조직, 관절연골 또는 피부)에 이식하여 조직 재생을 위한 세포의 호밍을 유도/촉진함으로써 손상된 조직을 치료할 수 있다.

(c) 따라서, 본 발명의 조성물은 그 자체로 종래 기술과 비교하여 보다 간편하고 효율적으로 손상된 골 조직, 관절연골 또는 피부조직의 치료에 적용될 수 있을 뿐 아니라, 타가세포를 이용한 세포치료에 있어서 희소성이 높은 치료용 세포자원을 효율적으로 활용할 수 있게 함으로써 유용한 치료 보조제로 이용될 수 있다.

도 1은 친염증성 사이토카인에 의해 자극된 인간 골수-유래 중간엽줄기세포에서 케모카인 수용체들의 변화된 유전자 발현을 나타내는 결과이다. A: RT-PCR; B: 역반점-탁본(reverse dot-blot). 대조군, 정상 중간엽 줄기세포군; IL-4h, 4시간 동안 IL-1β-자극된 군; IL-24h, 24시간 동안 IL-1β-자극된 군; IL-48h, 48시간 동안 IL-1β-자극된 군; TNF-4h, 4시간 동안 TNF-α-자극된 군; TNF-24h, 24시간 동안 TNF-α-자극된 군; 및 TNF-48h, 48시간 동안 TNF-α-자극된 군.
도 2는 세포 증식 및 이동에서 케모카인(chemokines)의 효과를 나타내는 결과이다. 도 2a는 세포 증식(cell proliferation)을 보여주는 결과이며, 도 2b는 상처 치유 효과를 나타내는 결과이고, 도 2c는 이동능(migratory capacity)을 나타내는 결과이다.
도 3은 세포 분화 상에 케모카인의 효과를 나타내는 결과이다. 도 3a의 위쪽 패널은 마슨 트라이콤(Masson trichrome) 염색 결과를 보여주며, 아래쪽 패널은 연골 표지 유전자의 발현을 조사한 결과이다. 도 3b는 폰 코사(Von kossa) 염색 결과를 보여주는 결과이다. 약어: N.C, 음성대조군; 및 P.C., 양성대조군.
도 4는 bMSCs의 및 케라틴 세포의 인 비트로 화학주성을 각각 보여주는 결과이다.
도 5는 bMSCs의 인 비보 화학주성을 보여주는 결과이다. 위쪽 패널은 동물실험 결과를 나타내며(W, 주), 아래쪽 패널은 케모카인을 함유한 PLGA지지체 이식 모식도를 나타낸다.
도 6은 bMSCs의 인 비보 화학주성관찰 후 육안관찰(A) 및 병리학적 소견(B)을 보여주는 결과이다.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.

실시예

대상 및 방법

세포배양

사람의 골수유래 중간엽 줄기세포는 자가장골 이식술이 필요한 환자의 동의 하에 IRB 심의를 거쳐 후 장골능(posterior iliac crest)에서 골수를 흡인하고 원심 분리를 하여 골수 내 세포를 침전시켜 펠렛을 만들고, 상층액을 제거한 후 DMEM-LG(Dulbecco's modified eagle's medium-low glucose; GIBCO-BRL, Grand Island, NY, USA) 배양액에 10%(v/v) 우태아혈청(FBS, fetal bovine serum; GIBCO BRL, Grand Island, NY, USA), 100 units/ml의 페니실린 G(GIBCO) 및 0.1 mg/ml 스트렙토마이신(GIBCO)이 첨가된 기본 배양액으로 세척한 후 T-75 cm² 세포 배양 플라스크(Falcon, Germany)에 분주시켰으며, 4일 동안 배양하였다. 이후, 플라스크 바닥에 부착되지 않은 세포들은 제거하였고, 바닥에 부착된 중간엽 줄기세포는 3일 간격으로 배양액을 교환하여 플라스크에 약 90% 정도 차게 되면 계대 배양을 시행하였다. 분리된 골수 유래 중간엽 줄기세포는 2 또는 3계대 배양까지 세포를 증식시켰으며, 모든 실험은 2 또는 3 계대의 세포를 사용하였다.

체외 연골손상 조건 형성

체외 연골손상 조건은 전염증성사이토카인인 IL-1β(R&D Systems Inc., Minneapolis, MN, USA) 또는 TNF-α(R&D Systems Inc.)를 처리함으로써 조성하였다. 중간엽 줄기세포를 12시간 동안 우태아혈청이 포함되지 않은 DMEM-LG 배양액에서 배양한 후, 10 ng/ml의 농도로 IL-1β 또는 TNF-α를 배양액에 첨가하여 4, 24, 48 시간동안 세포를 배양한 후 실험에 사용하였다.

역전사-중합효소 연쇄반응기법(Reverse Transcriptase-Polymerase Chain Reaction)

정상 중간엽 줄기세포에서 발현하는 케모카인 수용체를 선별하기 위해 RNeasy kit(Qiagen, Valencia, CA, USA)를 이용하여 중간엽 줄기세포의 총RNA를 추출하여, 역전사-중합효소 연쇄반응기법을 통해 케모카인 수용체의 유전자 발현을 분석하였다. 분석한 케모카인 수용체는 CCR1-10, CXCR1-7, CX3CR, XCR1로써 총 19개이다(표 1). 증폭된 케모카인 수용체의 DNA는 3100 Genetic Analyser (Applied BiosystemsInc., Foster City, CA, USA)를 이용한 DNA 염기서열분석법기법을 이용하여 서로 중복된 서열이 없음을 확인하였다.

RT-PCR에 이용된 프라이머 서열.

유전자	크기(BPs)	서열(5’-> 3’)
CCR1	560	정방향	AGGTTCTGACTCTTGGCACA
		역방향	TCTCGTTAGGTCTCAACTCT
CCR2	580	정방향	CCAAACTACCTTCCAGTTCC
		역방향	AGCTTCTCCACCTTCCATTC
CCR3	699	정방향	CCTAGTGAGAAGCTGGAAAG
		역방향	CCTCTGCAATGTCAGATTGG
CCR4	501	정방향	CTTGCACCAAAGAAGGCATC
		역방향	GGAGTTGAGAGAGTACTTGG
CCR5	550	정방향	TTCTATGAGGCAACCACAGG
		역방향	TTCCCTCACCTTACCTGTAC
CCR6	540	정방향	CTCCGATCCAGAACACTACC
		역방향	CCACAGGTCCTTCAAGATCT
CCR7	548	정방향	CAAGAGGCTCAAGACCATGA
		역방향	ACCACAGCGATGATCACCTT
CCR8	560	정방향	AGTTCAGCATGAAGGATGCC
		역방향	TGAGGCATTGTGTTTGATGG
CCR9	580	정방향	TGACATCTGCTTCCAGGTCA
		역방향	CTGAAGCCACAGAAGTTCAC
CCR10	489	정방향	TCTTCCTGGCCTGTATCAGC
		역방향	AGTGCGACATCCTTGCGTTT
CXCR1	520	정방향	GACCAACATCGCAGACACAT
		역방향	GTGAGCTCACATAGCTTGAG
CXCR2	520	정방향	GTTCCTCCCTTCTCTTCACA
		역방향	CTGAGACAGAGTCTCACTGT
CXCR3	528	정방향	CCAGACTTCATCTTCCTGTC
		역방향	AGGTCTCAGACCAGGATGAA
CXCR4	517	정방향	ACACAGTCAACCTCTACAGC
		역방향	CTCGGTGATGGAAATCCACT
CXCR5	490	정방향	GAAACGCATGCCTGGTTCAC
		역방향	ACCTAGAACGTGGTGAGAGA
CXCR6	518	정방향	TTCTTCTTGCCACTGCTCAC
		역방향	AAACAAAGCCTGCCTCACCA
CXCR7	516	정방향	AACTTCTCGGACATCAGCTG
		역방향	GGTCTTCAGGTAGTAGGTGT
CX3CR	539	정방향	GATCTGCTGTTTGTAGCCAC
		역방향	CATAGAGCTTAAGCGTCTCC
XCR	550	정방향	GAGTCCCTCACCAACATCTT
		역방향	ACAGGGTGAAGTTGTAGGGA
GAPDH	444	정방향	ATCACTGCCACCCAGAAGAC
		역방향	ATGAGTCCACCACCCTGTT

역반점 -탁본 부합법( Reverse Dot - Blot Hybridization )

IL-1β 또는 TNF-α에 의해 발현이 증가하는 케모카인 수용체를 선별하기 위해 역전사-중합효소 연쇄반응기법을 이용하여 19개의 케모카인 수용체의 DNA를 합성하여 시료 DNA로 사용하였고, 4, 24 또는 48시간 동안 IL-1β 또는 TNF-α의 자극을 받은 중간엽 줄기세포의 cDNA를 Omniscript RT Kit(Qiagen)를 이용하여 합성하여 프로브 cDNA로 사용하였다. 케모카인 수용체의 DNA를 나일론 막(Amersham, GE healthcare, UK)에 돗팅(dotting)하여 자외선(1200×100 μjules)을 조사하여 고정하였고, 전염증성사이토카인의 자극을 받은 중간엽 줄기세포의 cDNA를 Rediprime II random prime labeling system(GE Healthcare UK Limited. Amersham Place, Little Chalfont, Buckinghamshire, UK)과 γ³²P-dCTP(NEN Life Sciences, Boston, USA)를 이용하여 표지하였다. 막에 고정된 케모카인 수용체의 DNA와 표지된 중간엽 줄기세포의 cDNA는 42℃에서 15시간 동안 혼성화하였다. 막을 세척한 후, 형광 이미지 분석기(FLA-7000, Fujifilm, Japan)로 시그널을 검출하여 밀도계측기(TINA pixel analyzer version 2.10, Raytest Isotopen megerate GmbH, Straubenhardt, Germany)를 이용하여 정량화하였다. 정량화된 결과값은 쌍 t-검정(paired t-tests)을 이용하여 통계학적 유의성을 검증하였다(P-값 < 0.05).

세포증식에 대한 영향

세포증식에 대한 영향을 확인하기 위해 MSC에 50-500 ng/ml의 케모카인이 처리되어 1일부터 4일 동안 배양하였다. 케모카인 자극 후 각 날짜별로 MTT법을 이용하여 세포증식률을 측정하였다.

세포분화에 대한 영향

연골아세포로의 분화 유도를 위해 10 ng/ml TGF-β3(R & D system Inc, Minneapolis, MN, USA) 및 30 ㎍/ml 아스코르빈산(Sigma Co., St. Louis, MO, USA)이 첨가된 기본 배양액[10% 우태아 혈청(GIBCO), 1% 항생제(antibiotic-antimycotic) 용액(GIBCO)이 함유된 DMEM-LG(GIBCO)]에서 14일 동안 연골 분화를 유도하였으며, TGF-β3를 처리 하지 않은 중간엽 줄기 세포와 비교하여 연골 분화 상태를 검사하였다. 골아세포로의 분화 유도를 위해 골아세포 분화 배양액[10 mM β-glycerophosphate(Sigma), 100 μM dexamethasone(Sigma), 50 μg/ml ascorbic acid-2-phosphate(Sigma)가 첨가된 기본배양액]에서 14일 동안 분화유도 후 기본배양액에서 배양한 중간엽줄기세포와 비교하였다.

상처 치유 및 실시간 세포이동 속도의 측정

상처 형성을 위해 실리콘 배양 삽입(silicon culture insert; IBIDI, Germany)를 이용하여 MSC를 배양한 후, 세포에 500 ng/mL의 케모카인 자극을 가하여 상처 치유 정도를 이동한 세포수를 세어 분석하였고, 이동하는 세포를 실시간 추적하여 이동거리 및 속도를 측정하였다.

세포 화학주성 확인

인 비트로 세포 화학주성은 8 ㎛-구멍 크기의 트랜스웰 인서트(Falcon, Germany)를 이용하여 세포를 배양한 후, 마이크로포어를 통과하여 케모카인을 향해 이동한 세포를 카운팅하여 평가하였다. 인 비트로 세포 화학주성은 형광표지된 1.5×10⁶개의 MSC가 꼬리 혈관에 주입되어 누드마우스 피하에 이식된 케모카인 (IL-8, MIP-3a)을 함유한 PLGA 지지체(한국과학기술연구원 바이오소재센터 김수현박사로부터 제공받음)를 향해 이동함을 실시간 촬영장비(Optix, ART사, USA)로 관찰하였다.

실험결과

중간엽 줄기세포에서 발현하는 케모카인 수용체

역전사-중합효소 연쇄반응기법을 수행하기 위해 제작한 사람의 케모카인 수용체에 대한 프라이머 서열은 다음과 같다(표 1). 표 1의 프라이머에 의해 증폭된 유전자의 염기서열은 DNA 염기서열분석법을 통해 다른 케모카인 수용체의 서열과 서로 중복되지 않음을 확인하였다(결과를 보이지 않음). RT-PCR을 통해 사람의 골수 유래 정상 중간엽 줄기세포에서 19개의 케모카인 수용체의 발현을 분석하였다(도 1). 세 명 이상의 공여자(donor)로부터 얻은 중간엽 줄기세포에서 케모카인 수용체의 발현을 분석한 결과, CCR2, CCR6, CCR7, CCR8, CCR9, CCR10, CXCR1, CXCR5 및 CXCR7이 세 명 이상의 중간엽 줄기세포에서 공통적으로 발현하였다.

관절연골 손상시 골수 유래 중간엽 줄기세포에서 발현이 증가하는 케모카인 수용체

관절연골이 손상되면 전염증성사이토카인들(IL-1β 또는 TNF-α)이 분비되고 이에 자극받은 연골세포 등에 의해 다양한 화학주성인자의 분비가 증가한다[23]. 따라서, 관절연골 손상모델에서 중간엽 줄기세포에서 발현하는 케모카인 수용체 중에서 어떤 수용체가 증가하는지 알아보기 위하여 역반점-탁본 부합법을 이용하여 세 명의 공여자로부터 얻은 중간엽 줄기세포에서 4, 24 및 48 시간째에 IL-1β 또는 TNF-α의 자극에 의해 증가하는 케모카인 수용체를 분석하였다. 본 논문에서는 대표 공여자 1인에 대한 결과만을 보였으나 반복실험을 통해 세 명의 공여자로부터 유래한 중간엽 줄기세포에서 케모카인 수용체의 발현 양상이 모두 유사함을 확인하였다(도 2). 역반점-탁본 부합법의 결과를 각 공여자의 중간엽 줄기세포에 대한 결과를 밀도계측기(densitometry)(TINA Pixel Analyzer version 2.10 (Raytest Isotopenmegerate GmbH, Straubenhardt, Germany)를 이용하여 정량하여 2배 이상(fold change ≥ 2) 증가한 수용체를 자극시간에 따라 정리한 결과, 각 공여자의 중간엽 줄기세포에서 세 명의 공여자의 중간엽 줄기세포에서 공통으로 전염증성사이토카인에 의해 2배 이상 증가하는 케모카인 수용체를 정리하면, CCR2, CCR4, CCR6, CXCR1, CXCR2, CXCR3 등이 세 명의 공여자의 중간엽 줄기세포에서 공통으로 발현이 증가하였으며 이 외의 수용체들은 발현 증가율이 통계적으로 유의하지 않았다.

상술한 결과들을 종합하면, CCR2, CCR4, CCR6, CXCR1 등의 수용체들이 정상 중간엽 줄기세포에서 유의하게 발현하고, 전염증성사이토카인에 의해 그 발현이 세 공여자의 중간엽 줄기세포에서 유의하게 증가하였다(2배 이상).

세포이동에 대한 영향

선별된 후보물질들의 세포이동에 대한 영향을 평가하기 위해 상처 치유 기법을 실시하였다. 기존 보고된 바에 의하면, SDF1은 CXCR4와 CXCR7을 통하여 중간엽 줄기세포의 화학주성을 유도하는 것으로 알려져 있다[17]. 따라서, 본 연구에서 선별된 후보인자와 SDF1을 함께 비교하였다. 먼저, 상처 치유 효과가 세포증식이 아님을 확인하기 위해 세포증식에 대한 영향을 살펴본 결과, 50, 100 또는 500 ng/ml의 농도에서 세포 독성 및 세포증식에 대해 아무런 영향을 주지 않았다(도 2a). 네 가지 후보물질들 중 IL-8과 MIP-3α가 가장 빠른 상처 치유 결과를 보였으며 다양한 농도 중에서 500 ng/ml의 농도에서 가장 좋은 결과를 확인하였다(도 2b). 다음으로, 움직이는 세포를 실시간으로 추적하여 세포의 이동거리 및 속도를 측정하였다. MIP-3a가 가장 빠른 속도로 가장 많은 거리를 세포를 움직이는 것으로 확인되었다(도 2c).

세포분화에 대한 영향

14일 동안의 중간엽 줄기세포의 골, 연골 분화유도 동안 후보인자에 의한 영향을 살펴본 결과 분화에 대해 영향을 주지 않는 것으로 확인되었다(도 3). 따라서, 본 연구에서 발굴된 케모카인은 손상된 관절연골 재생을 위해 필요한 자가 중간엽 줄기세포의 유입을 촉진하는 것으로 사료된다.

화학주성 평가

인 비트로 및 인 비보에서 선별된 후보물질들의 중간엽 줄기세포에 대한 화학주성을 평가하였다. 먼저, 트랜스웰 인서트를 이용한 인 비트로 실험에서 TNFα를 향한 세포화학주성이 관찰되었다(도 4a). 한편, 선별된 네 가지 후보물질들 중 IL-8과 MIP-3α가 인 비트로에서 세포화학주성을 가장 많이 유도하였으며(도 4b), 이 두가지 물질을 병용하여 사용했을 때 화학주성은 더욱 크게 증가함을 확인하였다(도 4c). 또한 IL-8 및 MIP-3α에 의해 피부조직재생에 필수적인 케라틴 세포가 유입될 수 있는 지 인 비트로 실험으로 확인한 결과, IL-8과 MIP-3α가 케라틴세포의 세포화학주성을 유도하였다(도 4d). 이러한 결과를 토대로, IL-8과 MIP-3α에 의해 유도된 세포화학주성을 인 비보에서도 확인하고자 하였다. PLGA 지지체를 PBS 또는 IL-8 및 MIP-3α에 각각 24시간 동안 담근 후 누드마우스 등의 피하에 이식한 후, 꼬리 혈관을 통해 주입된 중간엽 줄기세포의 이동을 세포에 표지된 형광을 이용하여 확인하였다. 약 2주째 주입된 중간엽 줄기세포가 IL-8 및 MIP-3α에서 확인되었으며 6주째까지 세포의 이동이 증가하여 관찰되었다(도 5).

육안 관찰 및 병리학적 소견

지지체와 함께 이식된 화학주성인자에 의한 염증세포의 유입 정도를 살피고 염증반응을 확인하기 위해 6주 째에 이식된 지지체를 회수하여 육안 관찰 및 H&E 염색법을 실시하였다. 육안 관찰 결과, PBS군에 비해 IL8 및 MIP3α군의 지지체는 이식된 부위의 주변조직과 융합이 잘 되어있고 혈관형성이 많았다(도 6a). H&E 염색결과, PBS군은 이식된 지지체의 가장자리 부위에만 일부 혈관형성이 되었고 그 주변에 동공(pore)를 따라었고 그 세포들이 침투하였으나, IL8 또는 MIP3α군에서 혈관이 지지체의 중앙 부위까지 많이 형성되어 있었고 주입된 사람의 중간엽 줄기세포가 지지체 중앙부위까지 침투하여 세포외 기질을 형성하였다. PBS, IL8, MIP3α군 모두 대식세포 등을 비롯한 염증성 세포가 혈관주변에서 일부 관찰은 되었으나 군간의 차이가 없었으며 세 군 모두 염증반응소견을 확인할 수 없었다(도 6b).

이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 구현 예일 뿐이며, 이에 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다. 따라서, 본 발명 의 실질적인 범위는 첨부된 청구항과 그의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

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Claims

IL(interleukin)-8 및 MIP(Macrophage Inflammatory Protein)-3α 또는 MIP-3α를 유효성분으로 포함하는 손상된 피부 조직 치료용 조성물(implantable composition).
삭제
제 1 항에 있어서, 상기 조성물은 PLGA(poly(lactic-co-glycolic acid)), PLA(polylactic acid), PGA(polyglycolic acid), PCL(poly-ε-caprolactone), PAA(poly(amino acid)), 폴리안하이드라이드, 폴리오소에스테르, 콜라겐 젤, 하이드로 젤, 폴리비닐 알코올 스폰지, 젤라틴, 폴리사카라이드, 폴리포스파젠, 폴리아크릴레이트 및 폴리에틸렌 옥사이드-폴리프로필렌 글라콜 블랏 공중합체 및 이들의 혼합물로 구성된 군으로부터 선택되는 생분해성 지지체(biodegradable scaffolds)를 추가적으로 포함하며, 상기 IL(interleukin)-8 및 MIP(Macrophage Inflammatory Protein)-3α 또는 MIP-3α는 상기 생분해성 지지체에 포함되는 것을 특징으로 하는 조성물.
삭제
삭제
제 1 항에 있어서, 상기 피부 조직은 표피, 진피 또는 피하 조직인 것을 특징으로 하는 조성물.
제 1 항에 있어서, 상기 조성물은 손상된 피부 조직 부위로 줄기세포 또는 케라틴 세포(keratinocyte)의 세포 이동능을 증대시키는 것을 특징으로 하는 조성물.
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제 1 항에 있어서, 상기 조성물은 포유동물에 적용될 수 있는 것을 특징으로 하는 조성물.
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