KR100578743B1

KR100578743B1 - 고추 한별 품종 유래의 ｃａｚｆｐ1 유전자와 그의프로모터 염기서열 및 이들 염기서열을 이용한 식물병저항성 및 환경스트레스 탐색방법

Info

Publication number: KR100578743B1
Application number: KR1020040010292A
Authority: KR
Inventors: 황병국; 김상희; 홍점규
Original assignee: 학교법인고려중앙학원
Priority date: 2004-02-17
Filing date: 2004-02-17
Publication date: 2006-05-12
Also published as: KR20050081968A

Abstract

본 발명은 고추 한별 품종의 CAZFP1 유전자와 그의 프로모터 염기서열 및 이들 서열을 이용한 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 고추 세균성 점무늬병에 대해 저항성을 가진 것으로 알려진 고추 한별 품종(Capsicum annuum L. cv. Hanbyul)으로부터 저항성 관련 신규 유전자인 CAZFP1 유전자를 분리하여 해독(Sequencing)함으로써 그 염기서열 및 그 프로모터 서열을 제공하고, 이 유전자를 이용하여 생물적/화학적/물리적 저항성 유도 처리시 유도저항성의 발현 여부를 탐색하는 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법을 제공하는 것에 관한 것이다. 상기한 본 발명에 의하면, 식물체 병원균에 대한 방어반응의 표지 및 식물병 저항성 작물의 분자육종을 위한 유전재료를 제공할 수 있고, 식물병 저항성 등의 탐색을 촉진시킬 수 있는 이점이 있다.

고추, CAZFP1 유전자, 식물병, 저항성, 환경스트레스, 세균성 점무늬병

Description

고추 한별 품종 유래의 ＣＡＺＦＰ1 유전자와 그의 프로모터 염기서열 및 이들 염기서열을 이용한 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법{CAZFP1 gene and promoter sequence from Capsicum annuum L. cv. Hanbyul and probing method of plant disease resistance and environmental stresses using these sequences}

도 1은 본 발명에 의한 고추 한별 품종(Capsicum annuum L. cv. Hanbyul)으로부터 클로닝한 CAZFP1 유전자의 염기서열, 아미노산 서열 및 프로모터 서열을 나타낸 것이다.

도 2는 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자가 삽입된 재조합 벡터 pBS::CAZFP1의 개열지도이다.

도 3은 고추 한별 품종에 병원성 균주 Ds1과 비병원성 균주 Bv5-4a의 고추 세균성 점무늬병균(Xanthomonas campestris pv. vesicatoria)을 접종하였을 때, 건전한 잎과 접종되지 않은 잎에서의 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 4는 고추 한별 품종의 4엽기와 8엽기의 식물에서 각각의 잎에 탄저병을 일으키는 병원균(Colletotrichum coccodes)을 접종하였을 때, 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 5는 고추 한별 품종에 고추 세균성 점무늬병균의 병원성 균주(Ds 1)와 비 병원성 균주(Bv5-4a), 비병원성균인 슈도모나스 플로레슨스, 대장균 균주를 고추식물의 아랫잎에 접종하였을 때, 접종한 1엽과 접종하지 않은 2엽에서의 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 6은 고추 한별 품종에 에틸렌을 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 7은 고추 한별 품종에 메틸 자스모네이트를 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 8은 고추 한별 품종에 엽산을 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 9는 고추 한별 품종에 살리실산을 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 10은 고추 한별 품종에 비티에이치를 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 11은 고추 한별 품종에 β-아미노부티르산을 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 12는 고추 한별 품종에 과산화수소를 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 13은 고추 한별 품종에 상처를 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 14는 고추 한별 품종에 염화나트륨을 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명 에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 15는 고추 한별 품종에 저온을 처리한 후 경과시간에 따른 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자의 발현유도결과를 나타낸다.

도 16은 본 발명에 의해 한별 품종으로부터 클로닝한 CAZFP1 유전자 프로모터의 절단 도막들이 리포터 유전자인 GUS를 포함하는 pBI101 벡터에 결합된 절단 구조와 프로모터의 특이적 부위(cis-element)를 나타낸다.

도 17은 담배 잎에서의 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자 프로모터의 절단 분석으로써, 각각의 절단도막들이 담배 잎에 일시적 형질전환을 이용해 도입된 후, 슈도모나스 쉬링케 패소바 타바시 균주, 메틸 자스모네이트 그리고 에틸렌을 처리한 지 3시간(A) 및 18시간(B) 후 GUS 활성화를 나타낸다.

도 18은 담배 잎에서의 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자 프로모터의 절단 분석으로써, 각각의 절단도막들이 담배 잎에 일시적 형질전환을 이용해 도입된 후, 살리실산, 엽산, 저온 및 상처를 처리한 지 3시간 후 GUS 활성화를 나타낸다.

본 발명은 고추 한별 품종 유래의 CAZFP1 유전자와 그의 프로모터 염기서열 및 이들 염기서열을 이용한 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 고추 세균성 점무늬병에 대해 저항성을 가진 것으로 알려진 고추 한별 품종(Capsicum annuum L. cv. Hanbyul)으로부터 저항성 관련 신규 유전 자인 CAZFP1 유전자를 분리하여 해독(Sequencing)함으로써 그 염기서열, 아미노산 서열 및 상기 유전자의 최적의 프로모터를 제공하고, 이들 염기서열을 이용하여 생물적/화학적/물리적 저항성 유도 처리시 유도저항성의 발현 여부를 탐색하는 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법을 제공하는 것에 관한 것이다.

담배, 토마토와 함께 대표적인 가지과 식물인 고추는 우리 나라에서 오래전부터 향신료 또는 양념으로 사용되어온 대표적인 작물이다. 고추에 대한 병으로는 바이러스병, 세균병, 진균병 등이 고루 다양하게 보고되어 있는데, 그 중 치명적인 것으로는 난균류에 의한 역병, 진균에 의한 탄저병 및 세균에 의한 세균성 점무늬병 등을 들 수 있다.

이 중 고추 세균성 점무늬병은 고추의 잎, 줄기, 과실에 반점을 형성하여 낙엽을 유발하고 수확량을 감소시키는 병으로서, 통상 더뎅이병, 반점세균병 등으로 불리우며, 고추가 우리나라의 재배작물에서 차지하는 비중을 고려해 볼 때 그 피해는 심각한 수준이라고 할 수 있다.

이러한 고추 세균성 점무늬병을 방제하기 위해 지금까지는 농약을 이용한 화학적 방제법이 주로 사용되어 왔는데, 그 독성으로 인하여 병원균뿐만 아니라 주변 생태계의 생물까지도 대량 살상하여 생태계를 파괴시키고 토양과 수질을 오염시키는 폐해가 있어 왔다.

따라서, 앞으로는 식물이 처해 있는 환경 및 조건을 고려하여 물리적/생물학적 방제수단을 적절히 혼용함으로써 농약의 사용을 가능한 줄이는 방법을 사용하는 것이 바람직하다고 할 수 있으며, 더 바람직한 것은 병에 대해 저항성을 가지고 있 는 저항성 품종의 개량 및 육종 등을 통해 병 발생 자체를 억제하는 방법을 찾는 것이라 할 수 있다.

사실, 그 동안 농약을 사용하지 않고 병충해에 의한 피해를 감소시키기 위한 노력의 일환으로 고추를 비롯한 다양한 작물 및 병원균을 대상으로 병 저항성 작물의 육성 프로그램들이 꾸준히 진행되어 왔으며, 병 저항성에 대한 이해 및 이의 실제적 응용을 위해 병 저항성 식물에서의 저항성 기작에 대한 연구가 역시 고추를 비롯한 여러 가지 작물 및 모델식물을 대상으로 실시되어 왔다.

일단 식물이 병에 감염되면, 기주식물은 여러 가지 세포내 대사 시스템을 작동시켜 방어기작을 시작하는데, 이러한 방어기작에 의해 병원균 감염 초기에 기주식물과 식물병원균간의 반응이 친화적 반응과 불친화적 반응으로 나뉘어 결정되고, 이에 따라 병의 진전을 제한시킬 수 있는지의 여부가 결정되는 것이다.

불친화적 반응에서, 감염된 식물은 자체의 인식작용에 의해 병원균의 침입을 인지하고, 이에 대하여 감염부위의 세포에 국부적 세포 죽음과 같은 과민성 반응(hypersensitive reaction), 캘러스(callose)의 축적, 리그닌(lignin)화에 의한 세포벽의 비후화 등의 반응을 나타내며, 피토알렉신(phytoalexin) 등 여러 종류의 항균성 물질을 생성하고, 소위 병 생성 관련 단백질(pathogenesis related(PR) protein)이라 불리우는 방어단백질을 생성하는 것으로 알려져 있다.

이러한 방어 기작들은 병원균이 침입하는 경우뿐만 아니라, 에틸렌이나 메틸 자스모네이트 등 인위적인 화학적 자극에 의해서도 나타나며, 물리적 상처나 염도, 온도 등의 환경적 스트레스에 의해서도 나타난다고 보고되고 있다.

이렇게 인위적인 생물학적/물리적/환경적 스트레스를 줌으로써 유도되는 저항성을 일반적으로 유도저항성이라고 하는데, 이러한 저항성 유도 반응은 식물이 병원체에 대해 방어할 수 있는 능력에 있어서 중요한 역할을 하는 신호전달경로로써 평가된다.

이것은, 이와 같은 유도저항성이 신호전달에 대한 모형으로서 흥미가 있으며 실용적인 가치가 있을 뿐만 아니라, 저항성을 일으키는 생화학적 변화를 이해함으로써, 병 저항성이 증진되는 유전공학적 식물을 개발하거나 식물의 저항성 유전기작을 촉진하도록 작동하는 식물보호 화학물질을 개발하는 데에 이용될 수 있기 때문이다.

근래, 이러한 유도저항성 연구는 유전공학적 기술의 개입에 의해 훨씬 더 그 발전 속도가 빨려졌는데, 종래에는 저항성 유도 처리를 한 후 저항성 발현 여부를 확인하기 위해 식물을 재배하고 병을 접종한 후 저항성이 나타나는지의 여부를 확인해야 했던 반면, 지금은 유도하고자 하는 저항성 관련 단백질을 코딩하는 유전자를 밝혀내고 이를 이용하여 실험실 수준에서 저항성 발현 여부를 확인할 수 있게됨으로써, 포장(Field)에서의 작물재배, 병 접종, 병반 출현 여부 확인 등의 절차를 생략할 수 있게 되었기 때문이다.

이것은 전체적인 저항성 유도 시험의 주기를 단축함으로써 종래에 비해 더 짧은 시간 내에 더 많은 시험을 할 수 있게 되었음을 의미하며, 결국 더 우수한 저항성 품종을 개발할 수 있게 되었음을 의미한다.

그러나, 이것은 유도하고자 하는 유전자 서열이 밝혀지고 이에 따라 해당 유 전자 클론이 확보되어 있다는 전제하에 가능한 것이다. 이러한 의미에서, 식물병에 저항성을 나타내는 다양한 병 생성 관련 단백질(PR protein)의 유전자 정보를 축적함으로써, 이를 이용한 식물병 저항성 탐색을 촉진하고 나아가 식물병 저항성 품종의 개발을 촉진시키는 것이 시급한 당면 과제라고 할 수 있다.

본 발명은 상기와 같은 종래 기술상의 과제를 해결하기 위해 안출된 것으로, 본 발명의 목적은 고추 세균성 점무늬병(Xanthomonas campestris pv. vesicatoria)에 대한 방어반응에 관여하는 것으로 식물병 저항성 관련 유전자 중 하나인 CAZFP1 단백질을 코딩하는 CAZFP1 유전자를 분리하여 해독함으로써 그 염기서열, 그에 의해 코딩되는 아미노산 서열 및 상기 유전자의 프로모터 염기서열을 제공하는 것이다.

본 발명의 다른 목적은 상기 CAZFP1 유전자를 이용하여 고추 세균성 점무늬병 등 병원균, 화학물질 및 환경스트레스에 대해 저항성 유도 여부를 탐색하는 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법을 제공하는 것이다.

본 발명의 상기 목적은, 고추 한별 품종(Capsicum annuum L. cv. Hanbyul)에 고추 세균성 점무늬병(Xanthomonas campestris pv. vesicatoria)을 접종하여 감염시킨 고추잎으로부터 mRNA를 분리한 다음 cDNA 라이브러리를 제조한 후 이를 스크리닝하여 CAZFP1를 선발한 후 그 염기서열을 결정하고, 고추에 병원균, 화학물질 및 환경스트레스 중 어느 하나를 접종 또는 처리하여 상기 CAZFP1 유전자의 발현 여부를 조사함으로써 달성하였다.

본 발명은 또한 상기 CAZFP1 유전자에 의해 코딩되는 아미노산 서열 및 상기 CAZFP1 유전자의 프로모터 염기서열을 제공한다.

이하, 첨부된 도면들을 참조하면서 본 발명의 구성을 상세히 설명한다.

먼저, 본 발명은 고추 세균성 점무늬병균(Xanthomonas campestris pv. vesicatoria)의 비병원성균주 접종에 대해 저항성 반응인 과민성 반응을 나타내는 한별 고추 품종으로부터 mRNA를 분리하여 cDNA 라이브러리를 제작하고, 비병원성 균주를 접종한 고추식물의 잎과 접종하지 않은 건전한 고추식물에서 얻은 총 mRNA를 디옥시제닌(digoxygenin)으로 표지하여 프로브(Probe)를 만들고, 이 cDNA와 프로브를 이용하여 디퍼런셜 하이브리다이제이션(differential hybridization)을 수행하여 병저항성에 관련될 것으로 추정되는 유전자를 선발하여 클론을 수득하고, 이 클론 중 CAZFP1 유전자를 선발하고 그 염기서열을 해독(Sequencing)함으로써, CAZFP1으로 명명된 고추 한별 품종에서 유래된 신규한 식물병 저항성 유전자 염기서열(서열번호 1), 그에 의해 코딩되는 아미노산 서열(서열번호 2) 및 CAZFP1 유전자의 프로모터(서열번호 3)를 제공한다(도 1 참조).

다음으로, 본 발명은, 병원성 균주 또는 비병원성 균주를 접종한 고추 개체에서 선정된 기관에 대해 상기 CAZFP1 단백질 유전자를 프로브로 이용하여 CAZFP1 단백질 발현 여부를 확인하는 것으로 이루어지는, 식물병 저항성 탐색방법을 제공한다.

또한, 본 발명은, 화학물질, 물리적 상처, 환경적 스트레스 등 병원성 세균 이 아닌 비생물적 유도방법을 식물체에 적용하고, 이에 대하여 상기 저항성 탐색방법을 이용하여 CAZFP1 단백질 발현 여부를 확인함으로써, 더 용이하고 시간을 절약할 수 있는 새로운 저항성 유도 탐색방법을 제공한다.

이하, 실시예들을 통해 본 발명을 더 구체적으로 설명하고자 한다. 단, 하기 실시예들은 본 발명을 예시하기 위한 것으로, 본 발명의 권리범위가 하기 실시예들에 의하여 한정되는 것은 아니다.

실시예 1 : CAZFP1 유전자의 염기서열 및 아미노산 서열 결정

고추 세균성 점무늬병에 대한 저항성에 관여하는 단백질 중 하나인 CAZFP1 단백질 코딩 유전자 염기서열 및 그에 의해 코딩되는 아미노산 서열을 제공하기 위하여 하기와 같은 시험을 수행하였다.

고추 한별 품종(Capsicum annuum cv. Hanbyul)에 고추 세균성 점무늬병의 비병원성균인 BV5-4a(Xanthomonas campestris pv. vesicatoria strain BV5-4a)를 접종하고 18시간 동안 습실처리한 후 저항성 병반인 과민성반응이 나타난 식물체를 습실에서 꺼내어 잎을 수거하였다.

그 다음, 수거된 잎 표본으로부터 mRNA를 추출하여 역전사한 후 이를 PCR (Polymerase Chain Reaction)증폭함으로써 cDNA 라이브러리를 제작하였다. 그리고, 이렇게 제작된 cDNA 라이브러리로부터 개개의 cDNA 클론을 제조하여 나이트란막(Hybond N+)에 일정하게 흡착시킨 후, 각각 고추 세균성 점무늬병균의 비병원성 균주를 접종한 고추식물의 잎과 접종하지 않은 건전한 고추식물의 잎에서 추출한 총 mRNA를 디옥시제닌(digoxygenin)으로 표지하여 프로브를 만든 다음, 디퍼런셜 하이브리다이제이션(differential hybridization)을 수행하였다.

하이브리다이제이션 결과 비병원성 균주 접종된 식물체의 mRNA 프로브에 대해서만 집중적으로 증폭되어 나타난 유전자를 병저항성에 관련된 유전자로 추정하고 클론을 수득하였다.

수득된 클론들을 해독(Sequencing)한 후, 블라스트 프로그램을 이용하여 그 5'-말단 서열을 GenBank에 등록된 유전자 데이터베이스와 비교함으로써 CAZFP1 단백질 코딩 유전자를 확인하고 CAZFP1 유전자로 명명하였다. CAZFP1 단백질은 고추세균성 점무늬병 이외에도 여러 가지 병원균에 대하여 저항성을 지니게 하는 작용을 하며, 분자량이 28kD이고, Cys2/His2 유형의 zinc-finger 단백질이다.

이 유전자에서 유추한 아미노산 서열을 피추니아, 녹두, 알팔파, 담배에서 발견된 CAZFP1 단백질의 아미노산 서열과 비교한 결과, 각각 77%, 55%, 52%, 50%의 상동성을 나타냄으로써 신규한 것임을 알 수 있었다. 확인된 CAZFP1 유전자의 염기서열과 상기 염기서열에 의해 코딩되는 아미노산 서열을 도 1에 나타내고 서열번호 1 및 서열번호 2로 정리하였다.

CAZFP1 유전자의 프로모터는 Clontech에서 제공하는 Universal Genome Walker Kit를 이용하여 분리하였다. 고추로부터 총 지노믹 유전자를 분리된 후 이 지노믹 유전자를 여러 가지 제한 효소로 절단하고, Universal Genome Walker Kit에서 제공하는 어댑터(adaptor)를 절단 유전자 끝에 붙였다. 어댑터 특이적 프라이머와 CAZFP1 특이적 프라이머를 사용해 PCR을 수행하여 CAZFP1 유전자의 프로모터를 분리하였다(서열번호 3 및 도 1 참조).

실시예 2 : CAZFP1 유전자가 삽입된 재조합 벡터 제작

상기 본 발명에 의한 CAZFP1 유전자를 시약회사 Stratagene에서 제조된pBluescript SK(-) phagemid vector에 도입시켜 재조합 벡터 pBS::CAZFP1(pCAZFP1)을 구축하고 그 개열지도를 도 2에 나타내었다.

실시예 3 : 세균성 병원균 및 진균성 병원균에 의한 고추식물에서의 CAZFP1 유전자의 유도 발현

실험예 1.

고추 세균성 점무늬병균 중 식물체와 친화적 반응을 나타내는 병원성 균주 Ds1과 불친화적 반응을 나타내는 비병원성 균주 Bv5-4a를 배양한 후, 5 108 cfu/㎖의 농도로 4엽기 고추식물체 1, 2엽의 뒷면에 주사기를 이용하여 인필트레이션(Infiltration)하여 접종하고, 28 , 100% 상대습도 조건에서 18시간 동안 습실처리하였다.

접종 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 각각 1, 2엽을 샘플링하여 RNA를 분리하고, 분리한 RNA를 포름알데히드를 함유하는 겔 상에서 전기영동한 후 나이트란막(Hybond N+)으로 전이시켰다.

다음에, 실시예 1에서 수득된 CAZFP1 유전자를 제한효소 EcoRI 및 XhoI으로 각각 절단하고 삽입 DNA만을 회수하여 ³²P로 표지한 후, 이를 반응액[0.25M 인산완충액, 7% SDS, 1mM EDTA, 5% 덱스트란 황산염(Dextran Sulfate)]에서 65 로 16-24시간 동안 배양하여 하이브리다이제이션(hybridization)을 실시하였다.

이렇게 ³²P로 표지된 상기 DNA 프로브는 나이트란막에 붙어있는 mRNA에 붙게 되며 이 나이트란막 위에 X-ray 필름을 얹게 되면 ³²P로 표지된 DNA가 X-ray 필름을 감광시키므로, 이것으로 발현 여부를 알아볼 수 있게 하였다.

상기 노던블러팅 수행시 리보솜 RNA의 양을 모니터링 함으로써 동일량의 RNA 시료가 로딩되었음을 확인하였다.

이와 같이 고추 세균성 점무늬병균의 병원성 균주 접종 후 나타나는 친화적 반응과 비병원성 균주 접종 후 나타나는 불친화적 반응에서 CAZFP1 유전자의 발현 양상을 도 3에 나타내었다.

이상과 같은 시험 결과, 약간의 발현양상의 차이는 있었지만 CAZPF1 유전자의 발현이 병원성 균주와 비병원성 균주 모두에서 나타났다. 병원성 균주와 고추 식물체의 친화적 반응에서는, CAZFP1 유전자는 균 접종 후 30분부터 발현하여 2시간 후에 그 양이 가장 많이 관찰되었으며 그 이후로는 감소하였고, 비병원성 균주와의 불친화적 반응에서는, 30분 후부터 발현하여 1시간 후까지 그 양이 증가되고 그 이후 감소하는 경향을 나타내었다.

실험예 2.

고추 잎에 탄저병을 일으키는 병균(Colletotrichum coccodes)을 고추 잎에 접종하여 식물체내에서 CAZFP1 유전자의 발현을 알아보았다. 즉, 4엽기 고추와 8엽기 고추의 잎에 병원균을 접종하고 시간대별로 샘플링하여 RNA를 분리하였다. 분리한 RNA를 포름알데히드를 함유하는 겔상에서 전기영동한 후, 나이트란막 (Hybond N+)으로 옮겨준 후 ³²P로 표지된 CAZFP1 유전자와 상기 실험예 1과 같은 방법을 사용하여 12, 24, 36, 48, 72시간 동안 배양했다. 그 결과 4엽기 식물과 8엽기 식물에서 모두 다 이 유전자가 발현되었는데, 4엽기 식물에서보다 8엽기 식물에서 보다 강하게 유도되는 것으로 나타났다.

이와 같이, 고추 4엽과 8엽에 고추 탄저병균을 접종한 후 나타나는 CAZFP1 유전자의 발현 양상을 도 4에 나타내었다.

실시예 4 : 고추 세균성 점무늬병균, 슈도모나스 플로레슨스, 대장균에 의한 고추식물에서의 CAZFP1 유전자의 국부적, 전신적 유도 발현

고추 세균성 점무늬병을 일으키는 잔토모나스 캄페스트리스 패소바 베지카토리아의 병원성 균주 Ds1과 비병성원 균주 Bv5-4a, 슈도모나스 플로레슨스, 대장균을 5 108 cfu/ml의 농도로 바늘 없는 주사기를 이용하여 2엽기의 고추식물의 아랫잎에 접종하였다.

접종 3, 18, 30 시간 후에 접종한 아랫잎과 접종하지 않은 건전한 윗잎을 시료로 하여 RNA를 분리하고, 분리한 RNA를 포름알데히드를 함유하는 겔 상에서 전기영동한 후 나이트란막(Hybond N+)으로 전이시켰다.

이와 같이 고추 세균성 점무늬병을 일으키는 잔토모나스 캄페스트리스 패소바 베지카토리아의 병원성 균주 Ds1과 비병원성 균주 Bv5-4a, 슈도모나스 플로레슨스, 대장균의 접종 후 나타나는 CAZFP1 유전자의 발현 양상을 도 5에 나타내었다.

이상과 같은 시험 결과, 고추 세균성 점무늬병균, 슈도모나스 플로레슨스, 대장균에 대해 감염된 잎뿐만 아니라 감염된 식물의 감염되지 않은 잎에서도 CAZFP1 유전자가 유도 발현됨을 알 수 있었다. 보다 구체적으로는 국부반응과 전신반응 모두에서 접종 3시간 후에 가장 강하게 발현되고 그 후 점차 감소하는 경향을 나타내었으며, 전신반응보다는 국부반응에서 더욱 강한 발현 양상을 보였다.

실시예 5 : 화학적 유도체에 의한 CAZFP1 유전자의 유도 발현

본 발명에 의한 CAZFP1 유전자가 통상 저항성 유도에 사용되는 화학적 유도체에 의해 유도될 수 있는지를 알아보고 그 구체적 유도방법을 제공하기 위하여 하기와 같은 시험을 수행하였다.

실험예 1.

먼저, CAZFP1 유전자의 발현 유도에 유용한 유도체를 탐색하기 위하여, 식물 병 저항성 발현의 유도에 관여한다고 알려진 화학물질들 중 에틸렌, 메틸 자스모네이트, 엽산, 살리실산, 비티에이치, β-아미노부티르산 및 과산화수소를 사용하여 저항성 유도 시험을 실시하였다.

6엽기 고추식물 잎에 농도 100μM의 메틸 자스모네이트, 5mM의 살리실산, 20μM의 비티에이치 CGA245704, 20mM의 β-아미노부티르산을 분무기로 고추잎의 앞뒷면에 뿌려 처리하였고, 이중 메틸 자스모네이트를 처리한 식물체는 비닐백으로 밀봉하였다. 엽산은 100μM의 엽산 수용액에 식물체의 뿌리를 담그고 같은 수용액을 고추 잎에 스프레이하는 방법으로 처리하였으며, 과산화수소는 10mM의 과산화수소를 고추 잎에 배큠인필트레이션(vacuum-infiltration)하는 방법으로 처리하였고, 에틸렌은 농도 5μl/L로 하여 기체상태로 식물체가 있는 밀폐된 유리 용기에 주입하는 방법으로 처리하였다.

처리 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후 각각의 식물체에서 잎을 수거하였고, 대조구로 무처리한 식물체의 잎을 0.5, 6, 24 시간 후에 함께 수거한 후, 각각의 샘플에서 RNA를 추출하였고 추출된 RNA를 이용하여 다음과 같이 노던블러팅을 수행하였다.

먼저, 추출된 RNA를 포름알데히드를 함유하는 겔 상에서 전기영동한 후 나이트란막(Hybond N+)으로 전이시켰다.

다음에, 실시예 1에서 수득된 CAZFP1 유전자를 제한효소 EcoRI 및 XhoI으로 각각 절단하고 삽입 DNA만을 회수하여 ³²P로 표지한 후, 이를 반응액[0.25M 인산완 충액, 7% SDS, 1mM EDTA, 5% 덱스트란 황산염 (Dextran Sulfate)]에 첨가하고 65 에서 16-24시간 동안 배양하여 하이브리다이제이션 (hybridization)을 실시하였다.

이때 ³²P로 표지된 상기 DNA 프로브는 나이트란막에 붙어있는 상보적 mRNA에 붙게 되며 이 나이트란막 위에 X-ray 필름을 얹게 되면 ³²P로 표지된 DNA가 X-ray 필름을 감광시키므로 이것으로 발현 여부를 알아볼 수 있다.

시험 결과, 모든 물질의 경우에서 CAZFP1 유전자가 강하게 유도 발현되었다. 이러한 결과를 바탕으로, CAZFP1 유전자의 발현을 강하게 유도했던 에틸렌, 메틸 자스모네이트, 엽산, 살리실산, 비티에이치, β-아미노부티르산, 과산화수소에 대해서, CAZFP1 유전자의 더 상세한 발현 양상을 알아보기 위해 각각의 유도물질을 처리하고 시간별로 유전자 발현 양상을 관찰하는 다음의 시험을 실시하였다.

각각의 시험에서 노던블러팅 수행시 리보솜 RNA의 양을 모니터링 함으로써 동일량의 RNA 시료가 로딩되었음을 확인하였으며, 대조구로서 어떤 물질도 처리하지 않은 건전잎을 사용하였다.

실험예 2.

에틸렌 처리 후 시간별 CAZFP1 저항성 유도효과를 알아보기 위하여, 농도 10μl/L로 하여 기체상태로 식물체가 있는 밀폐된 유리 용기에 주입하는 방법으로 에틸렌을 처리하고, 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노던블러팅을 수행함으로써, 에틸렌 처리 후 CAZFP1 유전자의 시간별 발현양상을 알 아보았으며, 그 결과를 도 6에 나타내었다.

시험 결과, 도 6에 나타낸 바와 같이, CAZFP1 유전자는 처리 1 시간 후부터 축적되기 시작하여 지속적으로 높은 발현양상을 나타내었다.

실험예 3.

메틸 자스모네이트의 처리 후 시간별 CAZFP1 저항성 유도효과를 알아보기 위하여, 고추식물의 잎의 앞뒷면에 100μM 농도의 메틸 자스모네이트를 분무기로 골고루 분무 처리하고 비닐백으로 밀봉한 다음, 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노던블러팅을 수행함으로써, 메틸 자스모네이트 처리 후 CAZFP1 유전자의 시간별 발현양상을 알아보았으며, 그 결과를 도 7에 나타내었다.

시험 결과, 도 7에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자는 처리 0.5 시간 후부터 축적되기 시작하여 2 시간 후에 가장 강하게 발현되어 점차 감소하는 경향을 나타내었다.

실험예 4.

엽산의 처리 후 시간별 CAZFP1 저항성 유도효과를 알아보기 위하여, 100 μM의 엽산 수용액에 고추 식물의 뿌리를 담그고 같은 수용액을 고추 잎에 스프레이하는 방법으로 처리한 후, 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노 던블러팅을 수행함으로써, 엽산 처리 후 CAZFP1의 시간별 발현양상을 알아보았으며, 그 결과를 도 8에 나타내었다.

시험 결과, 도 8에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자는 처리 1 시간 후부터 축적되기 시작하여 점차 증가하다가 18 시간 후에 가장 강하게 발현되어 점차 감소하는 경향을 나타내었다.

실험예 5.

살리실산의 처리 후 시간별 CAZFP1 저항성 유도효과를 알아보기 위하여, 고추식물의 잎의 앞뒷면에 5mM 농도의 살리실산을 분무기로 골고루 분무 처리하고, 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노던블러팅을 수행함으로써, 살리실산 처리 후 CAZFP1의 시간별 발현양상을 알아보았으며, 그 결과를 도 9에 나타내었다.

시험 결과, 도 9에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자는 처리 0.5 시간 후부터 축적되기 시작하여 2 시간 후에 가장 강하게 발현되어 점차 감소하는 경향을 나타내었다.

실험예 6.

비티에이치의 처리 후 시간별 CAZFP1 저항성 유도효과를 알아보기 위하여, 고추식물의 잎의 앞뒷면에 10μM 농도의 비티에이치를 분무기로 골고루 분무 처리하고, 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노 던블러팅을 수행함으로써, 비티에이치 처리 후 CAZFP1의 시간별 발현양상을 알아보았으며, 그 결과를 도 10에 나타내었다.

시험 결과, 도 10에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자는 처리 0.5 시간 후부터 축적되기 시작하여 24시간 후까지 유지되었다.

실험예 7.

β-아미노부티르산의 처리 후 시간별 CAZFP1 저항성 유도효과를 알아보기 위하여, 고추식물의 잎의 앞뒷면에 20mM 농도의 β-아미노부티르산을 분무기로 골고루 분무 처리하고, 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노던블러팅을 수행함으로써, 비티에이치 처리 후 CAZFP1의 시간별 발현양상을 알아보았으며, 그 결과를 도 11에 나타내었다.

시험 결과, 도 11에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자는 처리 0.5 시간 후부터 축적되기 시작하여 2 시간 후에 가장 강하게 발현되어 점차 감소하는 경향을 나타내었다.

실험예 8.

과산화수소의 처리 후 시간별 CAZFP1 저항성 유도효과를 알아보기 위하여, 고추식물체의 잎에 10mM의 과산화수소를 배큠인필트레이션 방법으로 처리하고, 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노던블러팅을 수행함으로써, 과산화수소를 처리한 후 CAZFP1의 시간별 발현양상을 알 아보았으며, 그 결과를 도 12에 나타내었다.

시험 결과, 도 12에 나타낸 바와 같이, CAZFP1 유전자는 처리 0.5 시간 후부터 축적되기 1 시간 후에 가장 강하게 발현되어 2 시간 이후 사라졌다.

실시예 6. 환경적 스트레스에 의한 CAZFP1 유전자의 유도 발현

본 발명에 의한 CAZFP1 유전자가 환경적 스트레스에 의해 유도될 수 있는지를 알아보고 그 구체적 유도방법을 제공하기 위하여 하기와 같은 시험을 수행하였다.

각각의 시험에서 노던블러팅 수행시 리보솜 RNA의 양을 모니터링 함으로써 동일량의 RNA 시료가 로딩되었음을 확인하였으며, 대조구로서 어떤 스트레스도 처리하지 않은 건전잎을 사용하였다.

실험예 1.

본 발명의 CAZFP1 유전자가 상처 스트레스에 의해 유도될 수 있는지를 알아보고 그 구체적 유도방법을 제공하기 위하여 하기와 같은 시험을 수행하였다.

고추식물에 상처 스트레스를 처리하기 위해 식물체의 잎을 바늘로 찔러 잎 전체에 걸쳐 상처를 낸 후 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간이 지나 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실시예 5의 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노던블러팅을 수행함으로써, 상처 스트레스 처리 후 시간경과에 따른 CAZFP1의 발현양상을 알아보았으며, 그 결과를 도 13에 나타내었다.

시험 결과, 도 13에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자는 처리 0.5시간 후에 가장 강하게 발현되고 그 이후 점차 감소하는 경향을 보였다.

실험예 2.

본 발명의 CAZFP1 유전자가 염 스트레스에 의해 유도될 수 있는지를 알아보고 그 구체적 유도방법을 제공하기 위하여 하기와 같은 시험을 수행하였다.

염화나트륨 처리 후 시간별 CAZFP1 저항성 유도효과를 알아보기 위하여, 200mM의 염화나트륨 수용액에 고추식물체의 뿌리를 담구어 흡수시키는 방법으로 염을 처리하고, 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실시예 5의 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노던블러팅을 수행함으로써, 염스트레스 처리 후 CAZFP1의 시간별 발현양상을 알아보았으며, 그 결과를 도 14에 나타내었다.

시험 결과, 도 14에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자는 잎에서 처리 0.5 시간 후에 가장 강하게 발현하여 6 시간까지 그 발현량이 점차 감소되다가 그 이후로는 사라졌다.

실험예 3.

본 발명의 CAZFP1 유전자가 저온 스트레스에 의해 유도될 수 있는지를 알아보고 그 구체적 유도방법을 제공하기 위하여 하기와 같은 시험을 수행하였다.

저온처리를 위해 고추 식물체를 5 로 유지되는 냉장실에 보관하면서 각각 0.5, 1, 2, 6, 12, 18, 24 시간 후에 잎을 수거하였다.

각각의 샘플에서 RNA를 추출한 후, 상기 실시예 5의 실험예 1에서와 동일한 방법으로 노던블러팅을 수행함으로써, 저온 스트레스 처리 후 시간경과에 따른 CAZFP1 발현양상을 알아보았으며, 그 결과를 도 15에 나타내었다.

시험 결과, 도 15에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자는 잎에서 처리 1 시간 후에 처음으로 발현하여 점차 증가하다가 18 시간 후에 가장 강하게 발현되고, 그 이후 감소되었다.

실시예 7 : 병원균, 화학적 유도체 및 환경스트레스에 의한 CAZFP1 유전자 프로모터의 절단 분석

식물체에서 병원균, 화학적 유도체 및 환경스트레스에 반응해 CAZFP1 유전자 프로모터의 기능을 분석하기 위하여, 실시예 1에서 수득한 CAZFP1 유전자 프로모터와 프로모터의 절단 도막들을 pBI101 벡터에 도입시켜 재조합 벡터를 제조하고 그 개열지도를 도 16에 나타내었다.

이렇게 제조한 재조합벡터를 아그로박테리움을 이용해 담배에 도입함으로써 CAZFP1 유전자를 일시적으로 발현시키고 하기와 같은 시험을 수행하였다.

실험예 1.

CAZFP1 유전자가 일시적으로 발현된 식물체에서 병원균, 화학적 유도체 및 환경스트레스에 반응해 CAZFP1 유전자 프로모터의 기능을 분석하기 위하여, 상기 CAZFP1 유전자 프로모터 (-999) 및 프로모터 절단 도막들 (-685, -485, -249)을 GUS가 달려있는 pBI101 벡터에 결합시켜 재조합 벡터를 제조한다.

실험예 2.

CAZFP1 유전자의 프로모터가 일시적으로 발현된 식물체에서 슈도모나스 쉬링게 패소바 타바시 균주, 메틸 자스모네이트 그리고 에틸렌 처리한지 3시간과 18시 간 후, CAZFP1 유전자 프로모터의 기능을 분석하기 위하여, 상기 CAZFP1 재조합 벡터들을 아그로박테리움을 이용해 담배 잎에 도입하였다. 각각의 담배 잎을 수거하여 GUS 추출 버퍼를 이용하여 단백질을 추출한 후, 형광측도계(fluorometry)를 사용해 GUS 활성을 측정하였다.

시험 결과, 도 17에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자 프로모터는 슈도모나스 쉬링케 패소바 타바시 균주, 메틸 자스모네이트 그리고 에틸렌을 처리한지 3 시간(A)과 18 시간(B) 모두에서, -485 그리고 -249 절단 조각보다 -999 그리고 -685 절단 조각에서 높은 GUS 활성도와 유도성이 나타났다.

실험예 3.

CAZFP1 유전자의 프로모터가 일시적으로 발현된 식물체에서 살리실산, 엽산, 저온 그리고 상처를 처리한지 3 시간 후, CAZFP1 유전자 프로모터의 기능을 분석하기 위하여, 상기 CAZFP1 재조합 벡터들을 아그로박테리움을 이용해 담배 잎에 도입하였다. 각각의 담배 잎을 수거하여 GUS 추출 버퍼를 이용하여 단백질을 추출한 후, 형광측도계(fluorometry)를 사용해 GUS 활성을 측정하였다.

시험 결과, 도 18에 나타난 바와 같이, CAZFP1 유전자 프로모터는 살리실산, 엽산, 저온 그리고 상처를 처리한지 3시간 후, -485 그리고 -249 절단 조각보다 -999 그리고 -685 절단 조각에서 높은 GUS 활성도와 유도성이 나타났다.

상술한 바와 같이, 본 발명은 고추 세균성 점무늬병(Xanthomonas campestris pv. vesicatoria)에 대해 저항성을 보이는 고추 한별 품종으로부터 식물병 저항성 관련 유전자의 하나인 CAZPF1 유전자를 분리하여 그 염기서열을 결정하고 그에 의해 코딩되는 아미노산 서열 및 관련 프로모터를 제공함으로써, 식물체 병원균에 대한 방어반응의 표지 및 식물병 저항성 작물의 분자육종을 위한 유전재료로 이용될 수 있는 효과를 도모할 수 있다.

또한, 본 발명은 CAZFP1 유전자의 차별적 발현을 확인하는 것으로 구성되는 식물 병원균, 화학물질 및 환경스트레스에 의한 식물체의 방어반응 여부 판별방법을 제공함으로써 저항성 품종 개발을 촉진시킬 수 있는 효과가 있으므로 식물육종산업상 매우 유용한 발명인 것이다.

<110> KOREA CHUNGANG EDUCATIONAL FOUNDATION <120> CAZFP1 gene and promoter sequence from Capsicum annuum L. cv. Hanbyul and probing method of plant disease resistance and environmental stresses using these sequences <130> P11-040211 <160> 3 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 953 <212> DNA <213> Capsicum annuum L. cv. Hanbyul <400> 1 atggcacttg aagctttgaa ttctccaact ggtacaccaa ctccgccacc gtttcaattt 60 gagagcgacg gccaacagct tcgatatatc gaaaactgga ggaagggaaa gagatctaaa 120 aggtcacgca gcatggagca ccagcctact gaggaagaat acttagcgct ttgtttgatc 180 atgcttgcac gtagcggtgg ctccgttaat catcaacgat ctctaccacc gccggctccg 240 gtgatgaaac tgcacgcgcc gtcgtcatca tcggcggcgg aggaggagaa ggagaagatg 300 gtgtataagt gttcggtttg tggtaaggga tttgggtctt atcaagcttt aggtggacac 360 aaagctagtc accggaaact cgtacccggc ggagatgatc agtcaactac ctccacaacc 420 actaacgcaa ccggaacaac aacctccgtt aacggcaacg gcaacagaag tggaaggact 480 cacgagtgtt cgatttgtca caagtgtttt cccactggac aagctttagg tggacacaaa 540 aggtgtcact acgacggcgg tatcggtaac ggaaacgcta acagtggcgt tagtgctagc 600 gttggagtga cgtcatcgga gggtgtgggg tccacagtca gtcaccggga tttcgacttg 660 aacattccgg cgttgccgga attctggctg ggatttggtt ccggcgaaga tgaggtggag 720 agtccacatc cggcgaagaa atcgcggtta tgtttgcctc caaaatatga attatttcaa 780 cattaatggg aatttgattg ttaggattta ctattttggt agacaaaatt atactatgta 840 agttttaatt ttcattgtgg gtgggagcaa aatttttaat tttttgtcta tagacctagc 900 tagttactaa tagcaaaaat tcaattgatt gatttaaaaa aaaaaaaaaa aaa 953 <210> 2 <211> 261 <212> PRT <213> Capsicum annuum <400> 2 Met Ala Leu Glu Ala Leu Asn Ser Pro Thr Gly Thr Pro Thr Pro Pro 1 5 10 15 Pro Phe Gln Phe Glu Ser Asp Gly Gln Gln Leu Arg Tyr Ile Glu Asn 20 25 30 Trp Arg Lys Gly Lys Arg Ser Lys Arg Ser Arg Ser Met Glu His Gln 35 40 45 Pro Thr Glu Glu Glu Tyr Leu Ala Leu Cys Leu Ile Met Leu Ala Arg 50 55 60 Ser Gly Gly Ser Val Asn His Gln Arg Ser Leu Pro Pro Pro Ala Pro 65 70 75 80 Val Met Lys Leu His Ala Pro Ser Ser Ser Ser Ala Ala Glu Glu Glu 85 90 95 Lys Glu Lys Met Val Tyr Lys Cys Ser Val Cys Gly Lys Gly Phe Gly 100 105 110 Ser Tyr Gln Ala Leu Gly Gly His Lys Ala Ser His Arg Lys Leu Val 115 120 125 Pro Gly Gly Asp Asp Gln Ser Thr Thr Ser Thr Thr Thr Asn Ala Thr 130 135 140 Gly Thr Thr Thr Ser Val Asn Gly Asn Gly Asn Arg Ser Gly Arg Thr 145 150 155 160 His Glu Cys Ser Ile Cys His Lys Cys Phe Pro Thr Gly Gln Ala Leu 165 170 175 Gly Gly His Lys Arg Cys His Tyr Asp Gly Gly Ile Gly Asn Gly Asn 180 185 190 Ala Asn Ser Gly Val Ser Ala Ser Val Gly Val Thr Ser Ser Glu Gly 195 200 205 Val Gly Ser Thr Val Ser His Arg Asp Phe Asp Leu Asn Ile Pro Ala 210 215 220 Leu Pro Glu Phe Trp Leu Gly Phe Gly Ser Gly Glu Asp Glu Val Glu 225 230 235 240 Ser Pro His Pro Ala Lys Lys Ser Arg Leu Cys Leu Pro Pro Lys Tyr 245 250 255 Glu Leu Phe Gln His 260 <210> 3 <211> 999 <212> DNA <213> Capsicum annuum L. cv. Hanbyul <400> 3 atttttttgg ctttctcaaa catcatacaa aaataaaaaa gagtttaaaa atcaaaacac 60 ctaaaagtaa gttaattcaa acacccactt attcttacaa tgtattttgt aaaaggagga 120 aaataacttt tatgaataat gtgttttaga aaaacttgct caaatggaga actatataca 180 atcgatattg ttagaaatat gaatgtgggg ttgtgggtgt gagtggagaa ggcacaatca 240 atataaaata aaatttgtgt agcttaattt tcttattttc actagataaa ccaagttgtt 300 tcttataatt taaaaaattt aacccataat tatgaaacat tattttcctt tgtaccaaat 360 acacctttaa gcgagaaatc ttttttctcc cctattttgt caactaagca ataaaagaga 420 tttttccctt ttccccatta caaaataaat gaaaacaccg cgtggggctt gttgtgtttc 480 tttccgagta cgtctttgag atttgaattt tgacagagtc catggtctta ctagtctact 540 gtcttacctc actcaaaata actcccccct ttttggttgc ttcctttgca aagcccacaa 600 caaaatttag tcatttacac ttcacttcca agtggcactc caacgactat ttctttttcc 660 aacgtgctcc actctccctt tccctcttta ttttaattat taataattta taattttcaa 720 ttcaataact tgagtaacct atactatcct acttcttact ctttcccacg caacttccga 780 tttttccccc ctttatatat cccacaaact cccttcttca ctcattcact actcaaaaac 840 ttctctatac tcatcaatcc aataaacctt atacagcctg ctttcatctt ctggacactc 900 attaaactaa caacttcaca caactcaaaa tcttcgctac ttacttacat cttctagaat 960 agtcactaga accagtaact ttatacaacg gatatcgat 999

Claims

고추 한별 품종(Capsicum annuum L. cv. Hanbyul)으로부터 분리된 서열번호 1의 식물병 저항성 관련 CAZFP1 유전자.
제1항에 기재된 CAZFP1 유전자에 의해 코딩되는 서열번호 2의 아미노산 서열을 갖는 펩티드.
제1항 기재의 CAZFP1 유전자를 pBluescript　SK(-)　phagemid　벡터에　도입시켜 제조된 재조합 벡터 pCAZFP1.
서열번호 3으로 나타내지는 제1항 기재의 CAZFP1 유전자의 프로모터.
삭제
식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법에 있어서,

고추 세균성 점무늬병의 병원성균 및 비병원성균 그리고 고추 탄저병균 중 어느 하나를 접종한 고추 식물체로부터 RNA를 분리하여 전기영동시키고 나이론막(Hybond N+)으로 전이시킨 후, ³²P를 처리한 제1항 기재의 CAZFP1 유전자 프로브와 반응시켜 CAZFP1 유전자의 차별적 발현을 확인함을 포함하여 구성되는 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법.
식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법에 있어서,

에틸렌, 메틸 자스모네이트, 엽산, 살리실산, 비티에이치, β-아미노부티르산 및 과산화수소 중 어느 하나를 처리한 고추 식물체로부터 RNA를 분리하여 전기영동시키고 나이론막(Hybond N+)으로 전이시킨 후, ³²P를 처리한 제1항 기재의 CAZFP1 유전자 프로브와 반응시켜 CAZFP1 유전자의 차별적 발현을 확인함을 포함하여 구성되는 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법.
식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법에 있어서,

상처스트레스, 염스트레스 및 저온스트레스 중 어느 하나를 처리한 고추 식물체로부터 RNA를 분리하여 전기영동시키고 나이론막(Hybond N+)으로 전이시킨 후, ³²P를 처리한 제1항 기재의 CAZFP1 유전자 프로브와 반응시켜 CAZFP1 유전자의 차별적 발현을 확인함을 포함하여 구성되는 식물병 저항성 및 환경스트레스 탐색방법.
CAZFP1 유전자의 프로모터(서열번호 3) 또는 상기 프로모터 일부 절단 도막이 일시적으로 발현된 담배에서 슈도모나스 쉬링게 패소바 타바시 균주, 메틸 자스모네이트, 에틸렌, 살리실산, 엽산, 저온 및 상처 중 하나를 접종 또는 처리한 후, 서열번호 1의 CAZFP1 유전자를 담배에 도입하여 발현정도에 따라 CAZFP1 유전자 프로모터의 기능을 분석하는 것을 포함하여 구성되는 CAZFP1 유전자 프로모터의 기능 분석방법.