KR0141651B1 - 금속이온 친화성 크로마토그라피를 이용한 히루딘의 정제방법 - Google Patents

금속이온 친화성 크로마토그라피를 이용한 히루딘의 정제방법

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Abstract

본 발명은 히루딘을 히루딘을 정제하는 방법을 제공한다. 본 발명의 방법은 조(粗) 히루딘액을 금속 이온으로서 구리이온을 사용하고 용리액으로서 인산염 완충액을 사용하는 금속이온 친화성 크로마토그래피를 이용하여 정제함을 특징으로 한다. 본 발명의 방법에 의하면 종래의 히루딘의 정제방법에 비해 저렴하고 간단하게 히루딘을 고순도로 정제할 수 있는 장점이 있다.

Description

금속이온 친화성 크로마토그라피를 이용한 히루딘의 정제방법
본 발명은 히루딘의 정제방법에 관한 것이고, 보다 상세하게는 금속이온 친화성 크로마토그래피를 이용하여 히루딘을 정제하는 방법에 관한 것이다.
히루딘은 흡혈 거머리(Hirudo medicinalis)로 부터 분리되는 65~66개의 아미노산으로 구성되는 트롬빈 저해제로써, 지금까지 약 11종의 히루딘 변조이 분리되어 있으며, 이들은 아미노 말단의 아미노산 서열에 따라 Val-Val으로 시작되는 HVl(Graf 등, Biochim. Biophys. Acta. 310, 416, 1973; Bagdy 등, Meth, Enzymol. 45, 669,1976)과 Ile-Thr로 시작되는 HV2(Walsmann Markwardt, Thromb. Res. 40,563, 1985)로 크게 구분된다. 이들 모든 부류의 히루딘은 혈전치료에 사용되고 있으며, 트롬빈에 대한 히루딘의 저해상수 (KI)10-11M에서 10-14M의 범위에 있어서 매우 낮은 농도에서는 혈액옹고를 저해함을 알 수 있다(Mao 등, Anal, Biochem. 161,514,1987). 특히 환자에 대한 임상실험 결과에 따르면, 히루딘은 항혈전 효과를 나타내면서도 심장 및 호흡계 기능의 이상이나 알레르기, 면역반응 등의 부작용을 나타내지 않는 것으로 보고되어 있다(Markwardt등, Thromb, Haemostas, 52,160.1984)
거머리 개체당 분리할 수 있는 히루딘 양은 20㎍ 정도로 매우 한정되므로(Markwardt, Meth, Enzymol. 19, 924, 1970), 흡혈 거머리의 cDNA로 부터 히루딘의 유전자를 클로닝하여 보다 많은 양으로 히루딘을 얻고자 하는 시도가 있어왔다(Harvey등, Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 83, 1084, 1986:Fortkamp등, DNA 5, 511, 1986; Loison등, 대한민국특허공개 88-7727호 및 88-700234호; Meyhack 등, 대한민국 특허공개 87-6185: Liersch등, 대한민국 특허공개 86-381호 및 87-6185호).
그러나 대장균을 숙주로 이용하여 흡혈 거머리의 cDNA를 클로닝하는 경우, 단백질이 분해되어 발현율이 저조한 문제점이 있었고(Harvey등, Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 83. 1084, 1986), 발현되는 히루딘 중 메티오닌으로 시작되는 아미노 말단을 갖는 것은 트로빈 저해 활성을 감소시키는 문제점도 지적되었다(Loison 등 Bio/Technol. 6, 72, 1989). 그리고 효모인 사카로마이세스 세리비시에(Saccharomyces cerevisieae)를 숙주로 이용하는 경우 히루딘의 발현율이나 배지로 분비하는 효율이 저조하였다(Schekman Novick, The Molecular Biology of the Yeast Saccharomyces, ed. Strathern et al., p. 361,(1982), CSH Laboratory 출판).
이러한 문제점을 개선하기 위하여 본 발명자들은 효모에서 많이 사용되는 코돈을 활용하여 HV2 히루딘 유전자를 합성하고 GAL1~GAL10 프로모터와 교배인자 α를 연결하여 플라스미드 YEGα-HIR525를 개발하였고, 단백질 분해효소가 결손된 효모인 사카로마이세스 세레비시에 2805(Mat a pep4:HIS3 prbl-δ can1 his3 ura3-52)에 형질전환시키므로써 소기의 목적을 달성한 바 있다.(특허출원 제 92-11,007호). 상기 발명에서 사용된 형질전환 미생물은 1992년 6월 9일자로 한국유전자은행에 KCTC 8519P로 기탁되어 있다.
한편, 클로닝에 의해 발현된 히루딘을 정체하기 위하여 나딘 등(Nadineet al, Biochem.,28, 2941, 1989)은 음이온 교환 크로마토그래피와 역상 HPLC를 이용하였고, 미사와 등은 DEAE-셀룰로파인(Cellulofine), 부틸-도요펄(Butyl-Toyopearl), 세파덱스(Sephadex) G-25, Q-세파로스(Q-Sepharose)등 일련의 컬럼 크로마토그라피 방법을 이용하여 대장균으로부터 분비된 HV2를 경제하였다(Misawa, Proceeding of ApBioChEC. p.62, 1992). 그러나 이들 방법은 각각의 숙주세포로부터 히루딘이 발현되었는지의 여부를 확인하고자 하는 목적에서 행해진 것으로서 히루딘을 정량적으로 순도높게 정제할 수 있는 방법은 아니다.
히루딘과 같이 주사제로 사용되는 의약용 재조합 단백질은 고순도로 정제되어야 하므로, 정제공정은 안정성과 경제적인 측면에서 매우 중요하다(Asenjo, Seperation Process in Biotechnology, p.3, Dekker 출판). 그리고 의약용 단백질을 정제함에 있어 항체를 사용하는 면역친화성 크로마토그래피가 널리 사용되고 있지만 불활성화 되기 쉽고, 정제비용의 부담이 증가되므로 최종단계에서만 사용하는 등 그의 사용에 제한이 있었다.
본 발명자들은 상기한 종래 기술의 문제점을 개선하고 저렴한 비용으로 히루딘을 고순도로 정제할 수 있는 방법을 제공하고자 광범위하게 연구한 결과, 조(粗) 히루딘액을 금속 이온으로서 구리이온을 사용하고 용이액으로서 인산염 완충액을 사용하는 금속이온 친화성 크로마토그래피를 이용하여 정제함을 특징으로 하는 히루딘의 정제방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 리간드가 충전된 컬럼에 구리이온 용액을 흘려주어 구리이온을 리간드에 결합시키고; 조 히루딘 용액을 상기 컬럼에 주입하여 히루딘을 구리이온에 결합시키며; 인산 완충액을 이용하여 히루딘을 구리이온으로부터 탈착시킴을 특징으로 하는 히루딘의 정제방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적 및 적용은 하기 발명의 상세한 설명으로부터 당업자에게 명백해질 것이다.
본 발명에서 히루딘을 정제하기 위하여 사용되는 금속이온 친화성 크로마토그래피는 1975년 인체 혈청단백질의 준리에 처음 응용되었는데 (Porath등, Nature, 258, 598, 1975), 상기 문헌에 기재된 방법에서는 이미다졸 구조를 갖는 특정 아미노산과 크로마토그래피 컬럼에 고정된 금속이온 리간드 사이의 친화력에 의해 아미노산을 흡착시킨 뒤 다시 아미노산을 탈착시켜 분리하는 방법을 채택하고 있어 작업이 용이하다. 또한 2가의 Cu, Ni 그리고 Zn과 같은 금속이온으로 리간드를 손쉽게 제조할 수 있고, 리간드의 안정성이 뛰어나며, 그리고 담체를 재사용할 수 있다는 점에서 산업화에 유리하다(정봉현, 생물화공, 6, 35, 1992)
지금가지 히루딘의 정제에 금속이온 친화성 크로마토그래피를 사용한예는 없었으며, 본 발명자들은 히루딘의 정제에 가장 적합한 크로마토그래피 조건을 찾기 위하여 연구한 결과로서 본 발명을 완성하기에 이르른 것이다.
본 발명의 방법에 따르면 구리 이온이 흡착된 리간드가 충전된 컬럼에 조(粗) 히루딘액을 통액시켜 히루딘을 리간드에 결합시키고, 이어 인산 완충액을 이용하여 히루딘을 탈착시키는 과정으로 이루어져 있다.
본 발명의 방법을 수행하기 위하여 사용가능한 리간드로는 금속이온 친화성 크로마토그래피에 사용되는 것이면 제한없이 사용할 수 있으며, 예를들면 이미노디아세트산(iminodiacetic acid:이하 IDA로 약함), 트리스-카르복시멜틸-에틸렌디아민(tris(carboxymethyl) ethylene diamine:TED), 또는 니트릴로-트리아세트산(nitrilo-triacetic acid; NTA) 등을 사용할 수 있다. 이들 중에서 이미노디아세트산이 바람직하게 사용된다.
또한 고정화 매트릭스로는 세파로스 외에 세파덱스(파마시아사의 상품명), 셀로파인(Collofine, 미국 아미콘사의 상품명), 또는 도요펄(Toyopearl) 등의 다양한 제품을 제한없이 적의 선정하여 사용할 수 있다.
본 발명의 금속이온 친화성 크로마토그래피에 사용되는 금속 이온은 2가의 이온으로서 구리 이온이다. 구리 이온은 각종 구리화합물의 형태로 컬럼에 주입되어 리간드에 결합하게 된다. 예를 들면 구리 이온은 황산구리의 형태로 사용될 수 있다. 본 발명의 방법에서 아연이나 니켈의 이온을 사용하는 경우에는 히루딘이 결합되지 않았다.
본 발명의 방법에 따라 금속이온-결합 리간드에 결합된 히루딘은 인산염 또는 이미다졸의 농도구배, pH구배, 또는 엘틸렌디아민 테트라아세트산 또는 에틸렌클리콜 테트라아세트산 드의 킬레이트제를 이용하여 탈착시킬 수 있다. 그러나 회수율의 측면에서 볼 때 50~150mM, 바람직하게는 약 100mM 미만의 인산 완충액으 사용하는 것이 유리하다.
본 발명의 방법을 적용하여 정제할 수 있는 히루딘에는 거머리로부터 얻은 천연 히루딘, 상술한 바 있는 재조합 DNA를 함유하는 효모 또는 박테리아를 배양하여 얻은 배양액, 시판되고 있는 미정제 히루딘 제제 등이 포함되며, 재조함 DNA에 의해 얻는 것에는 KCTC 8519P를 배양하여 얻은HV2 히루딘, HV2 히루딘중 47번 아미노산을 라이신으로 변형한 Lys47-HV2 및 HV1 히루딘 모두가 포함된다.
히루딘-코딩 재조합 DNA를 보유하는 효모 또는 박테리아는 당업계에 주지된 통의 배양법에 의해 배양하여 히루딘을 생산할 수 있으며, 배양액으로부터 히루딘을 조추출하는 것은 통상의 방법, 예를 들면 배양액을 원심부리하고 상등액을 한외여과하는 방법에 의해 행할 수 있다. 조 히루딘을 얻는 방법으로는 한외여과외에도, 이온 크로마토그래피, 에탄올이나 아세톤등에 의한 침전법등을 활용할 수 있다. 이러한 일련의 과저에 의해 얻어진 히루딘-함유 여액을 조(粗) 히루딘 액이라 하고 본 발명의 방법을 적용하기 위한 원료물질로 사용할 수 있다.
히루딘은 플링법으로 정량하였고, 순도는 손정훈등의 방법(J. Microbiol. Biotechnol., 1, 266, 1991)에 따라 C-8컬럼(4.6×250㎜. Phenomenex사 제품)으로 아세토니트릴과 물을 15~30%로 구배를 만들어 고속액체크로마토그래피(미국 베크만사 제품, 모델 System Gold)를 이용하여 결정하였다.
히루딘의 항트롬빈 역가는 항트롬빈 활성단위(antithrombin unit; ATU)로 표시된다. 트롬빈 활성은 NIH-U로 표준화되어 있고, 1ATU의 히루딘 활성은 1NIH-U의 트롬빈 활성을 완전히 저해하는 것으로 정의되다. 본 발명에서는 하기의 나딘 등(Nadine et al., Biochem., 28, 2941, 1989)의 방법에 따라 항트롬빈 역가를 결정하였다.
트롬빈 반응 완충용객(0.1M Tris-Cl, pH 8.0, 0.12M NaCl, 0.01% 소디움아지드, 0.1% 소혈청 알부민) 50㎕에 히루딘(Accurate Chem. Scientific사 제품)을 0.005, 0.01 0.015, 0.02, 0.025 또는 0.03 ATU, 또는 본 발명의 실시예에서 얻은 정제 히루딘을 각각 첨가하고, 인체 트롬빈(시그마사 제품) 0.03NIH-U50㎕과 혼합하였다. 그리고 트롬빈의 합성기질인 크로모짐TH(Boehringer Mannheim사 제품) 200㎛를 100㎕ 첨가하고, 37℃에서 5분간 방치한 뒤, 마이크로폴레이트 리더로 405㎚에서 크로모짐 TH의 발색을 측정하였다. 발색도에 따라 표준 활성의 히루딘 역가를 기준으로 하여 본 발명의 실시예에서 얻은 히루딘의 활성을 결정하였다.
이하 본 발명을 실시예를 통해 상세히 설명하지만, 본 발명의 개념이 이들 실시예에만 극한되는 것은 아니다.
[실시예 1]
효모추출물 4%, 카사미노산 0.5%, 숙신산 1%, 수산화나트륨 0.4%, 탄소원으로서 갈락토스 4%를 포함하는 혼합배지에 효모 KCTC 8519P를 30℃에서 52시간 배양하였다. 배양액을 원심분리하고, 상등액을 한외여과막(아미콘사 제품, 모델 YM3)으로 여과하였다. 이를 조 히루딘이라 명명하였다.
[실시예 2]
이미노디아세트산(IDA)이 결합된 IDA-세파로스 6B Fast Flow(시그마사 제품)를 1.5×30㎝컬럼에 충진하고, 20mM 황산구리 용액을 흘려주었다.
[실시예 3]
실시예 1에서 준비한 조 히루딘 1㎖을 실시예 2에서 준비한 IDA-세파로스 6B컬럼에 주입하고, 1mM 인산환추액(pH 6.2)으로 다른 단백질을 세척하였다. 100mM 인산 완충액(pH 6.2)으로 세척하여 히루딘을 탈착시켰다. 38~54번 분획을 모아 한외여과막(MWCO 3000)으로 농축하였다. 조 히루딘을 포함하는 단백질의 양과 활성은 각각 120.8㎎ 및 68.6ATU/㎎이며, 컬럼을 통과한 후에는 각각 1.75㎎, 4000 ATU/㎎ 이었다. 수율은 85.6%, 순도는 90%이상이었다.
[비교예 1-2]
실시예 1-3과 동일하게 실시하되, 황산구리 대신에 각각 니켈이온 용액 또는 아연이온 용액을 사용하여 실시하였다. 그 결과 조 히루딘 액인 경우와 컬럼을 통과한 후의 단백질 양 및 히루딘 활성은 거의 변화가 없었다.
[실시예 4]
천연형 히루딘(시그마사 제품 H7016)를 실시예 3의 방법으로 정제하였다. 조히루딘의 단백질양과 활성은 각각 0.08㎎ 및 1720 ATU/㎎이며, 컬럼을 통과한 후에는 각각 0.01179㎎ 및 10500 ATU/㎎이었다. 수율은 90%, 순도는 97% 이상이었다.
[실시예 5]
히루딘 HV1(캘바이오켐사 제품 377855)를 실시예 3의 방법으로 정제하였다. 탈착시 100mM 인산완충액(pH 6.2)에 이미다졸을 20mM 첨가하였다. 조 히루딘의 단백질 양과 활성은 각각 0.93㎎ 및 215 ATU/㎎이며, 컬럼을 통과한 후에는 각각 0.215㎎ 및 890 ATU/㎎이었다. 수율은 95%, 순도는 90%이상이었다.
[실시예 6]
제조합 히루딘 Lys47-HV2(시그마사 제품HO393)를 실시예 3의 방법으로 정제하였다. 조 히루딘의 단백질양과 활성은 각각 0.01㎎ 및 9900 ATU/㎎이며, 컬럼을 통과한 후에는 각각 0.0095㎎ 및 12000 ATU/㎎이었다. 수율은 90%, 순도는 99% 이상이었다.
[비교예 3]
실시예 1-3과 동일한 방법을 사용하여 실시하되, 인산염 완충액 대신에 pH를 6으로부터 4에 걸쳐 형성시켜 히루딘의 탈착을 행하였다. 그 결과 히루딘이 충분히 탈착되지 않아 수율은 60%에 불과하였다.
[실시예 7]
실시예 1-3과 동일한 방법을 사용하여 실시하되, 리간드로서 이미노디 아세트산 대신에 트리스 카르복시메틸 에틸렌디아민을 사용하였다. 그 결과 히루딘의 수율은 86.3%, 순도는 90% 이상이었다.

Claims (5)

  1. 조(粗) 하루딘액을 금속 이온으로서 구리이온을 사용하고 용리액으로서 인산염 완충액을 사용하는 금속이온 친화성 크로마토그래피를 이용하여 정제함을 특징으로 하는 히루딘의 정제방법.
  2. 제1항에 있어서, 히루딘은 천연형, HV1,HV2 또는 Lys47-HV2히루딘임을 특징으로 하는 정제방법.
  3. 제1항에 있어서, 인산염 완충액은 농도가 100mM 미만인 인산염 완충액임을 특징으로 하는 정제방법.
  4. 리간드가 충전된 컬럼에 구리이온 용액을 흘려주어 구리이온을 리간드에 결합시키고; 조 히루딘 용액을 상기 컬럼에 주입하여 히루딘을 구리이온에 결합시키며; 인산염 완충액을 이용하여 히루딘을 구리이온으로부터 탈착시킴을 특징으로 하는 히루딘의 정제방법.
  5. 제4항에 있어서, 리간드는 이미노디아세트산임을 특징으로 하는 정제방법.
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