JPWO2020090734A1 - マルトトリオース生成アミラーゼ - Google Patents
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Abstract
Description
(1−1)配列番号1で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(1−2)配列番号1で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(1−3)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(2−1)配列番号2で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(2−2)配列番号2で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(2−3)配列番号2で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(3−1)配列番号3で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(3−2)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(3−3)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド。
項2. 項1に記載のマルトトリオース生成アミラーゼをコードしているDNA。
項3. 項2に記載のDNAを含む組換えベクター。
項4. 項2に記載のDNA又は項3に記載の組換えベクターを用いて宿主を形質転換して得られる形質転換体。
項5. 項4に記載の形質転換体を培養する工程を含む、項1に記載のマルトトリオース生成アミラーゼの製造方法。
項6. 項1に記載のマルトトリオース生成アミラーゼを含む酵素製剤。
項7. 項1に記載のマルトトリオース生成アミラーゼを用いて、澱粉質からマルトトリオースを生成する工程を含む、マルトトリオースの製造方法。
本発明のマルトトリオース生成アミラーゼはCellulosimicrobium属細菌由来である。
(1−2)配列番号1で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド。
(1−3)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド。
(2−2)配列番号2で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド。
(2−3)配列番号2で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド。
(3−2)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド。
(3−3)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド。
<マルトトリオース生成アミラーゼの活性測定法>
基質液(1%(w/v)可溶性澱粉溶液)200μLと酵素液50μLとを混合した反応用液を、50℃、48時間、1000rpmで振盪して反応後、100℃、5分間煮沸して反応を停止する。反応停止した反応用液を精製水で30倍に希釈して0.45μmフィルターで濾過して分析用サンプルを得る。分析用サンプルをHLPC分析してマルトトリオースのピークを検出することでマルトトリオース生成アミラーゼ活性を測定する。
本発明のDNAは、上記のマルトトリオース生成アミラーゼをコードしているDNAである。本発明のDNAは、例えば、Cellulosimicrobium属細菌由来の前記(3−1)〜(3−3)のいずれかのポリペプチドをコードしているDNAを鋳型として、少なくとも前記(1−1)〜(1−3)のいずれかのポリペプチドをコードしている領域をPCR等によって取得することにより得ることができる。また、本発明のマルトトリオース生成アミラーゼをコードしているDNAは、遺伝子の合成法によって人工合成することもできる。
本発明の組換えベクターは、本発明のマルトトリオース生成アミラーゼをコードするDNAを含む。本発明の組換えベクターは、発現ベクターに本発明のDNAを挿入することにより得ることができる。
本発明の形質転換体は、上記の本発明のDNA又は上記の本発明の組換えベクターを用いて宿主を形質転換することによって得られる。
本発明のマルトトリオース生成アミラーゼは、前記本発明の形質転換体を培養することによって製造することができる。また、本発明のマルトトリオース生成アミラーゼは、生産菌であるCellulosimicrobacterium sp.(形質転換されていないもの)を培養することによって製造することもできる。生産菌であるCellulosimicrobacterium sp.(形質転換されていないもの)を培養した場合、本発明のマルトトリオース生成アミラーゼはプロセシングを受けることで(1−1)〜(1〜3)のいずれかのポリペプチド(第1実施形態のポリペプチド)と、(2−1)〜(2〜3)のいずれかのポリペプチド(第2実施形態のポリペプチド)と、(3−1)〜(3〜3)のいずれかのポリペプチド(第3実施形態のポリペプチド)とが混在した状態で製造される。一方、前記本発明の形質転換体を用いた場合、導入するDNAによって、第1実施形態のポリペプチド、第2実施形態のポリペプチド、第3実施形態のポリペプチドのいずれかのポリペプチドをコードする遺伝子のみを宿主に発現させることが可能となるため、第1実施形態のポリペプチド、第2実施形態のポリペプチド、第3実施形態のポリペプチドのいずれか1つのポリペプチドからなるマルトトリオース生成アミラーゼを単独で製造すること、及び第1実施形態のポリペプチドと第2実施形態のポリペプチドと第3実施形態のポリペプチドとが混在した状態で製造することのいずれもが可能となる。
本発明の酵素製剤は、上記の本発明のマルトトリオース生成アミラーゼを有効成分として含む。酵素製剤に含まれるマルトトリオース生成アミラーゼとしては、(1−1)〜(1〜3)のいずれかのポリペプチドからなるマルトトリオース生成アミラーゼのみが含まれていてもよく、(2−1)〜(2−3)のいずれかのポリペプチドからなるマルトトリオース生成アミラーゼのみが含まれていてもよく、(3−1)〜(3−3)のポリペプチドからなるマルトトリオース生成アミラーゼのいずれかのポリペプチドからなるマルトトリオース生成アミラーゼのみが含まれていてもよい。上記のマルトトリオース生成アミラーゼが複数含まれていてもよい。含まれるマルトトリオース生成アミラーゼの種類と含有比率は、基質によって適宜選択することが可能である。
本発明のマルトトリオースの製造方法においては、上記の本発明のマルトトリオース生成アミラーゼを用いて、澱粉質からマルトトリオースを生成する工程を含む。
[1]生産菌候補の培養
以下の組成を有する液体培地を三角フラスコに入れ、オートクレーブを用い121℃、20分で殺菌した。液体培地に生産菌候補を接種し、30℃で3日間培養した。
菌体分離、限外ろ過、硫安分画、透析、1回目DEAE−Sepharose処理、2回目DEAE−Sepharose処理、1回目SephadexG−150処理、及び2回目SephadexG−150処理によって、生産菌候補が生産した酵素を精製した。
図1における55kDaの精製画分について、さらに以下のようにしてマルトトリオース生成活性を確認した。
可溶性澱粉1gを約60mLの精製水に懸濁し、100℃で5分間加熱し、溶解した。冷却後、精製水を用いて100mLにメスアップし、1%(w/v)可溶性澱粉を含む基質液を得た。
基質液200μLと分析対象の酵素液50μLとを混合し、250μLの反応用液を調製した。
反応用液を、50℃、48時間、1000rpmで振盪して反応後、100℃、5分間煮沸して反応を停止した。反応停止した反応用液を精製水で30倍に希釈して0.45μmフィルターで濾過し、濾液を分析用サンプルとして得た。
マルトトリオース生成活性が確認されたαアミラーゼの生産菌候補を、16SrRNA解析に供した。その結果、当該生産菌候補がCellulosimicrobacterium sp.と同定された。
[1]N末端アミノ酸配列及び内部アミノ酸配列の解析
試験例1の項目[2]で得られた3種類のバンド(55kDa、70kDa、77kDa)を切り出し、プロテインシーケンサーで解析した。その結果、それぞれのバンドのN末端アミノ酸配列が特定できた。さらに各バンドをトリプシン処理後、LC−MSMSにて解析することで内部アミノ酸配列を特定した。
[2−1]PCR
特定したN末端アミノ酸配列及び内部アミノ酸配列を元にプライマーを設計した。PCR反応液20μL/tubeを用いてPCR増幅を行った。PCR反応液の組成及びPCRの条件は以下の通りである。1%アガロースゲルにて泳動し、単一増幅を確認した。
PCR産物2μLとT−Vecor pMD20 1μL、Ligation Mix 3μLを混合したライゲーション反応液を用いて、16℃、30分でライゲーション反応を行い、その後、E.coli BL21(DE3)25μLに形質転換した。得られた形質転換溶液約30μLを、LB(Thermo Fisher Scientific社)及びAmp(最終濃度100μg/mL)を含む液体培地(以下において、「LB+Amp液体培地」と記載する。)プレートに塗布して、37℃、O/Nで培養した。
形質転換体をLB+Amp液体培地(2mL)で37℃、O/Nで培養した。培養完了後、集菌し、Miniprep法にてプラスミドを抽出した。
サンガー法にてシークエンス解析を行い、部分塩基配列を決定した。
得られた部分塩基配列を基に作成したプローブを用いてコロニーハイブリダイゼーションを実施し、得られた陽性クローンの遺伝子配列を解析して、目的の塩基配列を決定した。その結果、55kDaのバンドからは配列番号4の塩基配列が得られた。70kDaのバンドからは配列番号5の塩基配列が得られた。77kDaのバンドからは配列番号6の塩基配列が得られた。
上記塩基配列から、アミノ酸配列を決定した。配列番号4の塩基配列がコードするアミノ酸配列が配列番号1、配列番号5の塩基配列がコードするアミノ酸配列が配列番号2、配列番号6の塩基配列がコードするアミノ酸配列が配列番号3であった。つまり、試験例1によって、配列番号1、配列番号2、及び配列番号3のマルトトリオース生成アミラーゼが得られたことが分かった。
[1]発現ベクターの構築
[1−1]PCR
アミラーゼ遺伝子を増幅するため、フォワードプライマーとして配列番号7に示すプライマー、リバースプライマーとして配列番号8に示すプライマーを設計した。PCR反応液50μL/tubeを用いてPCR増幅を行った。PCR反応液の組成及びPCRの条件は以下の通りである。1%アガロースゲルにて泳動し、単一増幅を確認した。
PCR産物とpUBCM21(pUC19及びpUB110のシャトルベクター)とを混合したライゲーション液(5μL)を用いて、16℃、30分でライゲーション反応を行い、その後、E.coli DH5α 50μLに形質転換した。得られた形質転換溶液約55μLを、LB+Amp(100μg/mL)プレートに塗布して、37℃、O/Nで培養した。ライゲーション反応液の組成は以下の通りである。
試験例4の2−3と同様の方法によってプラスミド抽出を行い、プラスミドpUBCM21−amyを取得した。
得られたベクターpUBCM21−amyを用いて、Bacillus subtilis 168株由来amyE欠損株の形質転換を行った。形質転換の方法については、B. subtilis Secretory Protein Expression System(TaKaRa社製)のプロトコルに従った。
[3−1]形質転換株の培養
LB(Thermo Fisher Scientific社)及びカナマイシン(20μg/mL)を含む液体培地に形質転換株を接種し、37℃、4日間振とう培養した。培養開始後1日毎に0.5mLずつサンプリングを行い、4℃、15,000rpmで5分遠心することで上清を回収し、マルトトリオース生成アミラーゼを得た。
回収した上清(マルトトリオース生成アミラーゼ画分)について、活性測定及びSDS−PAGEによってαアミラーゼ生産性の確認を行った。活性測定は、αアミラーゼ測定キット(キッコーマンバイオケミファ社)を用い、当該キットのプロトコルに従って測定した。また、SDS−PAGEは、試験例1におけるSDS−PAGEと同様に行った。
Claims (7)
- 下記(1−1)〜(1−3)、(2−1)〜(2−3)、及び(3−1)〜(3−3)のいずれかに示すポリペプチドからなる、マルトトリオース生成アミラーゼ:
(1−1)配列番号1で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(1−2)配列番号1で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(1−3)配列番号1で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(2−1)配列番号2で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(2−2)配列番号2で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(2−3)配列番号2で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(3−1)配列番号3で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
(3−2)配列番号3で示されるアミノ酸配列において、1個又は複数個のアミノ酸が置換、付加、挿入又は欠失されてなり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド、
(3−3)配列番号3で示されるアミノ酸配列に対する配列同一性が70%以上であり、且つ、マルトトリオース生成能を有するポリペプチド。 - 請求項1に記載のマルトトリオース生成アミラーゼをコードしているDNA。
- 請求項2に記載のDNAを含む組換えベクター。
- 請求項2に記載のDNA又は請求項3に記載の組換えベクターを用いて宿主を形質転換して得られる形質転換体。
- 請求項4に記載の形質転換体を培養する工程を含む、請求項1に記載のマルトトリオース生成アミラーゼの製造方法。
- 請求項1に記載のマルトトリオース生成アミラーゼを含む酵素製剤。
- 請求項1に記載のマルトトリオース生成アミラーゼを用いて、澱粉質からマルトトリオースを生成する工程を含む、マルトトリオースの製造方法。
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