JPWO2017175751A1 - タンパク質産生方法 - Google Patents
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Abstract
Description
[2]該ナノファイバーが、セルロース、キチン及びキトサンからなる群から選択されるいずれかの非水溶性多糖類から構成される、[1]に記載の方法。
[3]該ナノファイバーが、キチンナノファイバーである、[1]に記載の方法。
[4]培地組成物中のキチンナノファイバーの含有量が、0.003〜0.1%(重量/容量)である、[3]に記載の方法。
[5]該細胞が接着細胞である、[1]〜[4]のいずれかに記載の方法。
[6]ナノファイバーを含有する培地組成物中、細胞を、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養することを含む、細胞の増殖方法。
[7]該ナノファイバーが、セルロース、キチン及びキトサンからなる群から選択されるいずれかの非水溶性多糖類から構成される、[6]に記載の方法。
[8]該ナノファイバーが、キチンナノファイバーである、[6]に記載の方法。
[9]培地組成物中のキチンナノファイバーの含有量が、0.003〜0.1%(重量/容量)である、[8]に記載の方法。
[10]該細胞が接着細胞である、[6]〜[9]のいずれかに記載の方法。
本明細書において用いる用語につき、以下の通り定義する。
本発明に用いる培地組成物中に含まれるナノファイバーは、液体培地中で、細胞を浮遊させる効果を示すものである。例えば、高分子化合物からなる比較的大きな線維構造体を高圧処理などにより微細化することにより得られたナノファイバー等が、本発明の方法に用いる培地組成物中に含まれるナノファイバーとして挙げられる。
本発明に用いる培地組成物は、上述の原料から調製されたナノファイバーを含む。
キチンナノファイバーの場合、通常0.003〜0.1%(重量/容量)、好ましくは0.003〜0.03%(重量/容量)、より好ましくは0.01〜0.03%(重量/容量)の濃度で培地中に添加すれば良い。
セルロースナノファイバーの場合、通常0.0001%乃至1.0%(重量/容量)、例えば0.0005%乃至1.0%(重量/容量)、好ましくは0.001%乃至0.5%(重量/容量)、より好ましくは0.01%乃至0.1%(重量/容量)、更に好ましくは、0.01%乃至0.05%(重量/容量)の濃度で培地中に添加すれば良い。
セルロースナノファイバーのうちパルプセルロースナノファイバーの場合、培地中の濃度の下限値は、好ましくは、0.01%(重量/容量)以上、0.015%(重量/容量)以上、0.02%(重量/容量)以上、0.025%(重量/容量)以上、又は、0.03%(重量/容量)以上である。また、パルプセルロースナノファイバーの場合、培地中の濃度の上限値は、好ましくは0.1%(重量/容量)以下、又は0.04%(重量/容量)以下である。
微結晶セルロースナノファイバーの場合、培地中の濃度の下限値は、好ましくは0.01%(重量/容量)以上、0.03%(重量/容量)以上、又は0.05%(重量/容量)以上である。また、微結晶セルロースナノファイバーの場合、培地中の濃度の上限値は、好ましくは、0.1%(重量/容量)以下である。
セルロースナノファイバー、キチンナノファイバー等の非水溶性のナノファイバーについては、通常、0.1%(重量/容量)以下の濃度であれば、培地組成物の粘度を実質的に高めることはなく、取り扱うことが可能である。
培養対象の細胞が動物(特に哺乳動物)由来である場合、動物細胞(好ましくは、哺乳動物細胞)培養に通常用いられる培地を用いることができる。例えばダルベッコ改変イーグル培地(Dulbecco’s Modified Eagles’s Medium;DMEM)、ハムF12培地(Ham’s Nutrient Mixture F12)、DMEM/F12培地、マッコイ5A培地(McCoy’s 5A medium)、イーグルMEM培地(Eagles’s Minimum Essential Medium;EMEM)、αMEM培地(alpha Modified Eagle’s Minimum Essential Medium;αMEM)、MEM培地(Minimum Essential Medium)、RPMI1640培地、イスコフ改変ダルベッコ培地(Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium;IMDM)、MCDB131培地、ウィリアム培地E、IPL41培地、Fischer’s培地、StemPro34(インビトロジェン社製)、X-VIVO 10(ケンブレックス社製)、X-VIVO 15(ケンブレックス社製)、HPGM(ケンブレックス社製)、StemSpan H3000(ステムセルテクノロジー社製)、StemSpanSFEM(ステムセルテクノロジー社製)、StemlineII(シグマアルドリッチ社製)、QBSF-60(クオリティバイオロジカル社製)、StemProhESCSFM(インビトロジェン社製)、mTeSR1或いは2培地(ステムセルテクノロジー社製)、Sf-900II(インビトロジェン社製)、Opti-Pro(インビトロジェン社製)、などが挙げられる。
また、遺伝子組換え技術によりこれらのサイトカインや増殖因子のアミノ酸配列を人為的に改変させたものも添加させることもできる。その例としては、IL-6/可溶性IL-6受容体複合体あるいはHyper IL-6(IL-6と可溶性IL-6受容体との融合タンパク質)などが挙げられる。
上記ナノファイバーを、培養対象の細胞のタンパク質産生及び/又は増殖を促進できる濃度となるように、細胞培養用の液体培地と混合することにより、本発明に用いる培地組成物を製造することができる。
本発明は、上記培地組成物中、細胞を、ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養する方法を提供するものである。
WO 2015/111686 A1に記載の方法に準じて調製したキチンナノファイバー(バイオマスナノファイバー BiNFi-S(ビンフィス) 2質量%、株式会社スギノマシン)を1%(w/v)となるように超純水(Milli-Q水)に懸濁した後、90℃にて加熱しながらの撹拌により溶解し、本水溶液を121℃で20分オートクレーブ滅菌した。無血清培地SFM Transfx293培地(HyClones社製)に終濃度0.01%(w/v)、0.1%のキチンナノファイバーを添加した培地組成物、そして上記基材を含まない未添加培地組成物を調製した。引き続き、培養したヒト胎児腎細胞株HEK293(DSファーマバイオメディカル社製)を、133333細胞/mLとなるように上記のキチンナノファイバーを添加した培地組成物に播種した後、50mL mini bioreactor(コーニング社製、431720)に15mLになるように分注した。各reacterはCO2インキュベーター(37℃、5%CO2)内にて静置状態あるいは振盪状態(cfg100rpm)で培養し、10日間継続した。0、10日目の培養液をピペッティングで懸濁し、その細胞懸濁液100μLに対してATP試薬100μL(CellTiter-GloTMLuminescent Cell Viability Assay, Promega社製)を添加し反応させ、約10分間室温で静置した後、FlexStation3(Molecular Devices社製)にて発光強度(RLU値)を測定し、培地のみの発光値を差し引き4点の平均値として生細胞の数を測定した。
WO 2015/111686 A1に記載の方法に準じて調製したキチンナノファイバー(バイオマスナノファイバー BiNFi-S(ビンフィス) 2質量%、株式会社スギノマシン)を1%(w/v)となるように超純水(Milli-Q水)に懸濁した後、90℃にて加熱しながらの撹拌により溶解し、本水溶液を121℃で20分オートクレーブ滅菌した。無血清培地SFM Transfx293培地(HyClones社製)に終濃度0.01%(w/v)のキチンナノファイバーを添加した培地組成物、そして上記基材を含まない未添加培地組成物を調製した。引き続き、培養したヒト胎児腎細胞株HEK293(DSファーマバイオメディカル社製)を、13333細胞/mLあるいは33333細胞/mLとなるように上記のキチンナノファイバーを添加した培地組成物に播種した後、50mL mini bioreactor(コーニング社製、431720)に15mLになるように分注した。各reacterはCO2インキュベーター(37℃、5%CO2)内にて振盪状態(cfg100rpm)で培養し、7日間および14日間継続した。0、7、14日目の培養液をピペッティングで懸濁し、その細胞懸濁液100μLに対してATP試薬100μL(CellTiter-GloTMLuminescent Cell Viability Assay, Promega社製)を添加し反応させ、約10分間室温で静置した後、FlexStation3 (Molecular Devices社製)にて発光強度(RLU値)を測定し、培地のみの発光値を差し引き4点の平均値として生細胞の数を測定した。
以下のようにしてヒトインターフェロンβ(IFN-β)遺伝子をHEK293に組み込み、培養上清中にIFN-βを産生する細胞株を作製した。
WO 2015/111686 A1に記載の方法に準じて調製したキチンナノファイバー(バイオマスナノファイバー BiNFi-S(ビンフィス) 2質量%、株式会社スギノマシン)を1%(w/v)となるように超純水(Milli-Q水)に懸濁した後、90℃にて加熱しながらの撹拌により溶解し、本水溶液を121℃で20分オートクレーブ滅菌した。無血清で懸濁培養用の培地であるCD293培地(Thermofisher Scientific社製)に終濃度0.003%、0.01%、0.03%(w/v)のキチンナノファイバーを添加した培地組成物、そして上記基材を含まない未添加培地組成物を調製した。引き続き、培養したIFN-β産生HEK293細胞を、133333細胞/mLとなるように上記のキチンナノファイバーを添加した培地組成物に播種した後、50mL mini bioreactor(コーニング社製、431720)に15mLになるように分注した。各reacterはCO2インキュベーター(37℃、5%CO2)内にて振盪状態(cfg100rpm)で培養し、7日間および14日間継続した。0、7、14日目の培養液をピペッティングで懸濁し、その細胞懸濁液100μLに対してATP試薬100μL(CellTiter-GloTM Luminescent Cell Viability Assay, Promega社製)を添加し反応させ、約10分間室温で静置した後、FlexStation3(Molecular Devices社製)にて発光強度(RLU値)を測定し、培地のみの発光値を差し引き4点の平均値として生細胞の数を測定した。また7、14日目の細胞培養液を遠心し(200G、3分間)、培養上清を分注した。
培養上清中のIFN-β産生量を酵素抗体法(ELISA;enzyme-linked immunosorbent assay)を用いて測定した。ヤギ抗ヒトIFN-β抗体(R&D System INC.)をリン酸緩衝食塩水(PBS)で1μg/mLとなるように希釈し96穴イムノプレートに100μL/wellで分注してプレートコートした。室温下で1時間静置した後、非特異的反応を防ぐために、PBSにウシ血清アルブミン(BSA; ICN)を1%に希釈した溶液(1%BSA/PBS)を150μL/wellで分注し、ブロッキングを行った。その後、室温下で1時間静置し、定量するIFN-β抗体を含む培養上清を50μL/wellで分注した。また、同様に0μg/mL〜200μg/mLの標準溶液を50μL/well分注し、室温下で1時間静置した。その後、マウス抗ヒトIFN-β抗体(R&D System INC.)を1% BSA/PBSで1μg/mLとなるように希釈し、100μL/wellで分注した後、室温下で1時間静置した。その後、西洋わさび由来ペルオキシターゼ標識ラット抗マウスIgG抗体を1% BSA/PBS溶液で、約6,000倍に希釈し、100μL/wellで分注して室温下で1時間静置した。発色液として10%3,3',5,5'-Tetramethylbenzidine(TMB)発色液(フナコシ社製、#TMBW-100-0)を100μL/wellで分注し、発色を確認した後にSTOP Solution(KPL社製、#50-85-04)で反応を停止後、450nmの波長により吸光度を測定した。各反応の間ではPBSにポリエチレン(20)ソルビタンモノラウレート(Tween20)(和光純薬)を0.05%濃度に希釈した溶液で3回洗浄した。
WO 2015/111686 A1に記載の方法に準じて調製したキチンナノファイバー(バイオマスナノファイバー BiNFi-S(ビンフィス) 2質量%、株式会社スギノマシン)を1%(w/v)となるように超純水(Milli-Q水)に懸濁した後、90℃にて加熱しながらの撹拌により溶解し、本水溶液を121℃で20分オートクレーブ滅菌した。無血清培地SFM Transfx293培地(HyClones社製)に終濃度0.01%(w/v)、0.1%のキチンナノファイバーを添加した培地組成物、そして上記基材を含まない未添加培地組成物を調製した。引き続き、培養したイヌ腎臓尿細管上皮細胞株MDCK(DSファーマバイオメディカル社製)を、133333細胞/mLとなるように上記のキチンナノファイバーを添加した培地組成物に播種した後、50mL mini bioreactor(コーニング社製、431720)に15mLになるように分注した。各reacterはCO2インキュベーター(37℃、5%CO2)内にて静置状態あるいは振盪状態(cfg100rpm)で培養し、10日間継続した。0、10日目の培養液をピペッティングで懸濁し、その細胞懸濁液100μLに対してATP試薬100μL(CellTiter-GloTMLuminescent Cell Viability Assay、Promega社製)を添加し反応させ、約10分間室温で静置した後、FlexStation3(Molecular Devices社製)にて発光強度(RLU値)を測定し、培地のみの発光値を差し引き4点の平均値として生細胞の数を測定した。
Claims (10)
- ナノファイバーを含有する培地組成物中、タンパク質産生能を有する細胞を、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養することを含む、タンパク質の産生方法。
- 該ナノファイバーが、セルロース、キチン及びキトサンからなる群から選択されるいずれかの非水溶性多糖類から構成される、請求項1に記載の方法。
- 該ナノファイバーが、キチンナノファイバーである、請求項1に記載の方法。
- 培地組成物中のキチンナノファイバーの含有量が、0.003〜0.1%(重量/容量)である、請求項3に記載の方法。
- 該細胞が接着細胞である、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- ナノファイバーを含有する培地組成物中、細胞を、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養することを含む、細胞の増殖方法。
- 該ナノファイバーが、セルロース、キチン及びキトサンからなる群から選択されるいずれかの非水溶性多糖類から構成される、請求項6に記載の方法。
- 該ナノファイバーが、キチンナノファイバーである、請求項6に記載の方法。
- 培地組成物中のキチンナノファイバーの含有量が、0.003〜0.1%(重量/容量)である、請求項8に記載の方法。
- 該細胞が接着細胞である、請求項6〜9のいずれか1項に記載の方法。
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Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP7415928B2 (ja) * | 2018-08-31 | 2024-01-17 | 日産化学株式会社 | 接着性細胞の浮遊培養用培地組成物 |
CN112996901A (zh) * | 2018-09-11 | 2021-06-18 | 日产化学株式会社 | 分离装置及使用该分离装置对分离对象物进行分离的方法 |
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WO2023063418A1 (ja) * | 2021-10-15 | 2023-04-20 | 日産化学株式会社 | 接着性細胞のスフェアのサイズ及び/又は個数の制御方法 |
WO2023063417A1 (ja) * | 2021-10-15 | 2023-04-20 | 日産化学株式会社 | 撹拌を伴う接着性細胞の浮遊培養方法 |
Citations (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62500001A (ja) * | 1984-05-21 | 1987-01-08 | リトウイン、ジャック | 細胞増殖 |
JP2004141301A (ja) * | 2002-10-23 | 2004-05-20 | Techno Network Shikoku Co Ltd | 生体材料、細胞培養器具、人工組織および人工臓器 |
JP2005501510A (ja) * | 2000-11-01 | 2005-01-20 | メルク エンド カムパニー インコーポレーテッド | 神経型ニコチン性アセチルコリン受容体のヒトアルファおよびベータサブユニットをコードするdna |
JP2011500051A (ja) * | 2007-10-18 | 2011-01-06 | エスエヌユー・アール・アンド・デービー・ファンデーション | カルシウム活性化クロライドチャンネルの活性を調整する作用物質を同定する方法 |
JP2011107722A (ja) * | 2001-03-15 | 2011-06-02 | Innovia Films Ltd | ラベル |
JP2013066745A (ja) * | 2005-10-05 | 2013-04-18 | Loma Linda Univ Medical Center | 血管創の閉鎖装置および方法 |
JP2013067075A (ja) * | 2011-09-22 | 2013-04-18 | Toppan Printing Co Ltd | 水膨潤機能を有するフィルムまたはシートの製造方法 |
JP2013543381A (ja) * | 2010-10-01 | 2013-12-05 | モデルナ セラピューティクス インコーポレイテッド | 工学操作された核酸およびその使用方法 |
WO2014030726A1 (ja) * | 2012-08-23 | 2014-02-27 | 日産化学工業株式会社 | タンパク質産生促進剤 |
WO2015111686A1 (ja) * | 2014-01-23 | 2015-07-30 | 日産化学工業株式会社 | 培地組成物 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1707634A1 (en) * | 2005-03-29 | 2006-10-04 | Octapharma AG | Method for isolation of recombinantly produced proteins |
IL300460A (en) * | 2012-07-24 | 2023-04-01 | Nissan Chemical Corp | A culture medium preparation, and a method for culturing cells or tissues by using the preparation |
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Patent Citations (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62500001A (ja) * | 1984-05-21 | 1987-01-08 | リトウイン、ジャック | 細胞増殖 |
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JP2011107722A (ja) * | 2001-03-15 | 2011-06-02 | Innovia Films Ltd | ラベル |
JP2004141301A (ja) * | 2002-10-23 | 2004-05-20 | Techno Network Shikoku Co Ltd | 生体材料、細胞培養器具、人工組織および人工臓器 |
JP2013066745A (ja) * | 2005-10-05 | 2013-04-18 | Loma Linda Univ Medical Center | 血管創の閉鎖装置および方法 |
JP2011500051A (ja) * | 2007-10-18 | 2011-01-06 | エスエヌユー・アール・アンド・デービー・ファンデーション | カルシウム活性化クロライドチャンネルの活性を調整する作用物質を同定する方法 |
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