WO2017175751A1 - タンパク質産生方法 - Google Patents

タンパク質産生方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2017175751A1
WO2017175751A1 PCT/JP2017/014064 JP2017014064W WO2017175751A1 WO 2017175751 A1 WO2017175751 A1 WO 2017175751A1 JP 2017014064 W JP2017014064 W JP 2017014064W WO 2017175751 A1 WO2017175751 A1 WO 2017175751A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cells
culture
medium
nanofibers
cell
Prior art date
Application number
PCT/JP2017/014064
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
達朗 金木
林　寿人
浩治 川原
Original Assignee
日産化学工業株式会社
独立行政法人国立高等専門学校機構
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 日産化学工業株式会社, 独立行政法人国立高等専門学校機構 filed Critical 日産化学工業株式会社
Priority to KR1020187031135A priority Critical patent/KR20190005844A/ko
Priority to US16/091,335 priority patent/US20190153498A1/en
Priority to EP17779129.0A priority patent/EP3434782B1/en
Priority to JP2018510611A priority patent/JPWO2017175751A1/ja
Priority to CN201780022220.6A priority patent/CN109219661A/zh
Publication of WO2017175751A1 publication Critical patent/WO2017175751A1/ja

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068—General culture methods using substrates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/10—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a carbohydrate
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/10—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a carbohydrate
    • C12N11/12—Cellulose or derivatives thereof
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02—Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2510/00—Genetically modified cells
    • C12N2510/02—Cells for production
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/50—Proteins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2535/00—Supports or coatings for cell culture characterised by topography

Definitions

  • the present invention relates to a technique for producing a protein by cell culture.
  • the microcarrier method used in vaccine production is a method in which MDCK cells or Vero cells are adhered to the carrier surface and cultured.
  • stirring culture is necessary, but cell damage on the surface due to collision between carriers due to the stirring is a problem. Since this cell damage has an adverse effect on protein production efficiency, it is desired to establish a new suspension culture method instead.
  • the present inventors relate to cell culture, and in particular, a protein production promoter suitable for increasing protein production by animal cells, a medium containing the same, a protein production using the protein production promoter and a medium containing the same.
  • a manufacturing method has been reported (Patent Document 1).
  • An object of the present invention is to provide a technique for more efficiently protein production by adherent cells using suspension culture.
  • the present inventors have carried out suspension culture of protein-producing cells adhered to nanofibers in a liquid medium containing nanofibers composed of polysaccharides such as cellulose and chitin under stirring conditions.
  • the present inventors have found that the amount of protein production is significantly increased and have completed the present invention.
  • the present invention is as follows:
  • a method for producing a protein comprising, in a medium composition containing nanofibers, suspension-culturing cells having protein-producing ability attached to the nanofibers under physical disturbance conditions.
  • the nanofiber is composed of any water-insoluble polysaccharide selected from the group consisting of cellulose, chitin and chitosan.
  • the nanofiber is a chitin nanofiber.
  • the content of chitin nanofibers in the medium composition is 0.003 to 0.1% (weight / volume).
  • [6] A method for growing cells, comprising suspension-culturing cells in a medium composition containing nanofibers while being attached to the nanofibers under physical disturbance conditions.
  • the nanofiber is composed of any water-insoluble polysaccharide selected from the group consisting of cellulose, chitin and chitosan.
  • the nanofiber is a chitin nanofiber.
  • the content of chitin nanofibers in the medium composition is 0.003 to 0.1% (weight / volume).
  • cells can be efficiently proliferated and mass production of proteins such as enzymes, cell growth factors, and antibodies can be performed.
  • the cell in the present invention is the most basic unit constituting an animal or a plant, and has a cytoplasm and various organelles inside the cell membrane as its elements.
  • the nucleus containing DNA may or may not be contained inside the cell.
  • the animal-derived cells in the present invention include germ cells such as sperm and eggs, somatic cells constituting the living body, stem cells, progenitor cells, cancer cells separated from the living body, separated from the living body, and acquired immortalizing ability. And cells that are stably maintained outside the body (cell lines), cells that have been isolated from the living body and have been artificially modified, cells that have been isolated from the living body and have been artificially exchanged nuclei, and the like.
  • somatic cells constituting a living body include, but are not limited to, fibroblasts, bone marrow cells, B lymphocytes, T lymphocytes, neutrophils, erythrocytes, platelets, macrophages, monocytes, bones Cells, bone marrow cells, pericytes, dendritic cells, keratinocytes, adipocytes, mesenchymal cells, epithelial cells, epidermal cells, endothelial cells, vascular endothelial cells, hepatocytes, chondrocytes, cumulus cells, nervous system cells, Glial cells, neurons, oligodendrocytes, microglia, astrocytes, heart cells, esophageal cells, muscle cells (eg, smooth or skeletal muscle cells), pancreatic beta cells, melanocytes, hematopoietic progenitor cells, and single Nuclear cells and the like are included.
  • the somatic cells are, for example, skin, kidney, spleen, adrenal gland, liver, lung, ovary, pancreas, uterus, stomach, colon, small intestine, large intestine, spleen, bladder, prostate, testis, thymus, muscle, connective tissue, bone, cartilage , Cells taken from any tissue such as vascular tissue, blood, heart, eye, brain or nerve tissue.
  • Stem cells are cells that have both the ability to replicate themselves and the ability to differentiate into other types of cells.
  • Examples include, but are not limited to, embryonic stem cells (ES cells) Embryonic tumor cells, embryonic germ stem cells, induced pluripotent stem cells (iPS cells), neural stem cells, hematopoietic stem cells, mesenchymal stem cells, hepatic stem cells, pancreatic stem cells, muscle stem cells, germ stem cells, intestinal stem cells, cancer stem cells, Hair follicle stem cells are included.
  • a progenitor cell is a cell that is in the process of being differentiated from the stem cell into a specific somatic cell or germ cell. Cancer cells are cells that have been derived from somatic cells and have acquired unlimited proliferative capacity.
  • a cell line is a cell that has acquired infinite proliferation ability by artificial manipulation in vitro.
  • Examples thereof include, but are not limited to, CHO (Chinese Hamster Ovary Cell Line), HCT116 , Huh7, HEK293 (human embryonic kidney cells), HeLa (human uterine cancer cell line), HepG2 (human hepatoma cell line), UT7 / TPO (human leukemia cell line), MDCK, MDBK, BHK, C-33A, HT- 29, AE-1, 3D9, Ns0 / 1, Jurkat, NIH3T3, PC12, S2, Sf9, Sf21, High® Five (registered trademark), Vero, and the like.
  • the plant-derived cells in the present invention include cells separated from each tissue of the plant body, and also include protoplasts obtained by artificially removing cell walls from the cells.
  • the tissue in the present invention is a unit of a structure in which cells having several different properties and functions are gathered in a certain manner.
  • animal tissues include epithelial tissue, connective tissue, muscle tissue, nerves. Includes organizations.
  • plant tissues include meristem tissue, epidermal tissue, anabolic tissue, mesophyll tissue, passage tissue, mechanical tissue, soft tissue, dedifferentiated cell mass (callus), and the like.
  • the cells and / or tissues to be cultured can be arbitrarily selected from the cells and / or tissues described above and cultured.
  • Cells and / or tissues can be collected directly from animals or plants.
  • the cells and / or tissues may be collected after being induced from an animal or plant, grown or transformed by a specific treatment. At this time, the processing may be performed in vivo or in vitro. Examples of animals include fish, amphibians, reptiles, birds, pan-crustaceans, hexapods, mammals and the like.
  • mammals include, but are not limited to, rat, mouse, rabbit, guinea pig, squirrel, hamster, vole, platypus, dolphin, whale, dog, cat, goat, cow, horse, sheep, pig, elephant Common marmoset, squirrel monkey, rhesus monkey, chimpanzee and human.
  • the plant is not particularly limited as long as the collected cells and / or tissues can be subjected to liquid culture.
  • plants that produce crude drugs eg, saponins, alkaloids, berberine, scoporin, plant sterols, etc.
  • crude drugs eg, saponins, alkaloids, berberine, scoporin, plant sterols, etc.
  • plants that produce crude drugs eg, saponins, alkaloids, berberine, scoporin, plant sterols, etc.
  • Plant eg, blueberry, safflower, saffron, saffron, etc.
  • that produces the body eg, anthocyanin, safflower pigment, akane pigment, saffron pigment, flavone, etc.
  • a plant that produces the drug substance eg, but not limited to them.
  • cell floating means a state in which cells do not adhere to a culture container (non-adhesion). Furthermore, in the present invention, when the cells are grown, differentiated or maintained, the cells are not subjected to external pressure or vibration on the liquid medium composition, or the liquid medium composition without shaking, rotating operation, etc. in the composition.
  • the state of being uniformly dispersed in the substance and in a floating state is referred to as “floating stationary”, and culturing cells in this state is referred to as “floating stationary culture”.
  • the period during which it is allowed to float in “floating standing” is at least 5 minutes or longer, preferably 1 hour or longer, 24 hours or longer, 48 hours or longer, 6 days or longer, 21 days or longer, but is kept floating. As long as it is not limited to these periods.
  • Nanofiber The nanofiber contained in the medium composition used in the present invention exhibits an effect of suspending cells in a liquid medium.
  • nanofibers obtained by refining a relatively large fiber structure made of a polymer compound by high-pressure treatment or the like can be cited as nanofibers contained in the medium composition used in the method of the present invention.
  • nanofiber means a fiber having an average fiber diameter (D) of 0.001 to 1.00 ⁇ m.
  • the average fiber diameter of the nanofiber used in the present invention is preferably 0.005 to 0.50 ⁇ m, more preferably 0.01 to 0.05 ⁇ m, and still more preferably 0.01 to 0.02 ⁇ m. If the average fiber diameter is less than 0.001 ⁇ m, the floating effect may not be obtained because the nanofiber is too fine, and there is a possibility that the characteristics of the medium composition containing the nanofiber may not be improved.
  • the aspect ratio (L / D) of the nanofiber used in the present invention is obtained from the average fiber length / average fiber diameter, and is usually 2 to 500, preferably 5 to 300, more preferably 10 to 250. .
  • the aspect ratio is less than 2, there is a possibility that the dispersibility in the medium composition is lacking and the floating action cannot be sufficiently obtained. If it exceeds 500, it means that the fiber length becomes extremely large, and there is a possibility that the passage operation such as medium replacement may be hindered by increasing the viscosity of the composition.
  • the medium composition is difficult to transmit visible light, leading to a decrease in transparency, making it difficult to observe cultured cells over time and hindering cell evaluation using absorption, fluorescence, luminescence, etc. there is a possibility.
  • the average fiber diameter (D) of the nanofiber is determined as follows. First, the collodion support membrane manufactured by Oken Shoji Co., Ltd. was hydrophilized with an ion cleaner (JIC-410) manufactured by JEOL Ltd. for 3 minutes, and several nanofiber dispersions to be evaluated (diluted with ultrapure water) were used. Add dropwise and dry at room temperature. This was observed with a transmission electron microscope (TEM, H-8000) (10,000 times) manufactured by Hitachi, Ltd. at an acceleration voltage of 200 kV, and the number of specimens: 200 to 250 nanofibers was obtained using the images obtained. The fiber diameter of each fiber is measured and the number average value is defined as the average fiber diameter (D).
  • TEM transmission electron microscope
  • the average fiber length (L) is obtained as follows.
  • the nanofiber dispersion to be evaluated was diluted with pure water to 100 ppm, and the nanofibers were uniformly dispersed using an ultrasonic cleaner.
  • This nanofiber dispersion is cast onto a silicon wafer whose surface has been hydrophilized with concentrated sulfuric acid in advance, and dried at 110 ° C. for 1 hour to prepare a sample.
  • a scanning electron microscope SEM, JSM-7400F
  • the number of specimens 150-250 nanofibers one by one
  • the fiber length is measured, and the number average value is defined as the average fiber length (L).
  • the nanofibers used in the present invention are mixed with a liquid medium, the nanofibers are uniformly dispersed in the liquid while maintaining the primary fiber diameter, and the cells adhere to the dispersed nanofibers, thereby allowing the cells to settle. prevent.
  • the raw material constituting the nanofiber is a water-insoluble polysaccharide.
  • the water-insoluble polysaccharide include, but are not limited to, celluloses such as cellulose and hemicellulose; chitin such as chitin and chitosan, and the like.
  • Cellulose is a natural polymer compound in which D-glucopyranose, a 6-membered ring of glucose, is linked by ⁇ -1,4 glucoside.
  • raw materials include cellulose derived from plants such as wood, bamboo, hemp, jute, kenaf, cotton, crops and food residues, or microorganisms such as bacterial cellulose, shiogusa (cladophora), gray plant (glaucocystis), valonia, squirt cellulose, etc.
  • Production or animal production cellulose can be used.
  • Plant-derived cellulose is further bundled with very thin fibers called microfibrils, and forms a higher-order structure step by step with fibrils, lamellae, and fiber cells.
  • Bacterial cellulose has a fine network structure in which the microfibrils of cellulose secreted from fungal cells have the same thickness.
  • high-purity cellulose raw materials such as cotton and bacterial cellulose can be used as raw materials, but other plant-derived cellulose and the like are preferably isolated and purified.
  • the cellulose suitably used in the present invention is cotton cellulose, bacterial cellulose, kraft pulp cellulose, microcrystalline cellulose or the like.
  • kraft pulp cellulose is preferably used because it has a high floating action.
  • Chitin is one or more carbohydrates selected from the group consisting of chitin and chitosan.
  • the main sugar units constituting chitin and chitosan are N-acetylglucosamine and glucosamine, respectively.
  • those containing a large amount of N-acetylglucosamine and poorly soluble in acidic aqueous solutions are chitin and glucosamine.
  • a substance having a high content and soluble in an acidic aqueous solution is regarded as chitosan.
  • the N-acetylglucosamine occupying 50% or more of the constituent sugars is referred to as chitin, and less than 50% is referred to as chitosan.
  • the proportion of N-acetylglucosamine in the saccharide units constituting chitin is preferably 80% or more, more preferably 90% or more, still more preferably 98% or more, and most preferably 100%.
  • chitin As a raw material for chitin, for example, many biological resources such as shrimp, crab, insect, shellfish, mushroom can be used.
  • the chitin used in the present invention may be a chitin having an ⁇ -type crystal structure such as chitin derived from crab shell or shrimp shell, or a chitin having a ⁇ -type crystal structure such as chitin derived from squid shell.
  • Crab and shrimp shells are often treated as industrial waste and are preferred as raw materials because they are readily available and effective.
  • deproteinization and decalcification are necessary to remove proteins and ash contained as impurities. A process is required. Therefore, in the present invention, it is preferable to use purified chitin that has already been subjected to dematrixing. Purified chitin is commercially available.
  • the medium composition used in the present invention contains nanofibers prepared from the above-mentioned raw materials.
  • the nanofiber raw material is a water-insoluble polymer compound (for example, a water-insoluble polysaccharide such as cellulose or chitin)
  • the nanofiber is usually obtained by pulverizing the raw material.
  • strong shearing force such as a high-pressure homogenizer, a grinder (stone mill), or a medium agitation mill such as a bead mill can be obtained to reduce the fiber diameter and fiber length to be described later to meet the purpose of the present invention. Is preferred.
  • the raw material is pulverized by injecting and colliding the dispersion liquid in which the raw material is dispersed from a pair of nozzles at a high pressure, for example, Starburst System (manufactured by Sugino Machine Co., Ltd.). It can be carried out by using a high-pressure crusher) or Nano perenniala (a high-pressure crusher from Yoshida Kikai Kogyo Co., Ltd.)
  • the degree of refinement and homogenization depends on the pressure fed to the ultra-high pressure chamber of the high-pressure homogenizer and the number of times it passes through the ultra-high pressure chamber (number of treatments). And the concentration of the raw material in the aqueous dispersion.
  • the pumping pressure is usually 50 to 250 MPa, preferably 150 to 245 MPa. When the pumping pressure is less than 50 MPa, the nanofibers are not sufficiently refined, and the expected effect may not be obtained by the refinement.
  • the concentration of the raw material in the aqueous dispersion during the micronization treatment is 0.1% by mass to 30% by mass, preferably 1% by mass to 10% by mass.
  • concentration of the raw material in the aqueous dispersion is less than 0.1% by mass, the productivity is low, and when the concentration is higher than 30% by mass, the pulverization efficiency is low and desired nanofibers cannot be obtained.
  • the number of treatments for pulverization is not particularly limited and depends on the concentration of the raw material in the aqueous dispersion, but when the concentration of the raw material is 0.1 to 1% by mass, the number of treatments is 10 to 100 times. However, it is necessary to make about 10 to 1000 times at 1 to 10% by mass. In addition, when the concentration is higher than 30% by mass, it is impractical from an industrial point of view because the number of treatments of several thousand times or more is required and the viscosity is increased to the point of hindering handling. .
  • the concentration of nanofibers in the medium composition of the present invention can be appropriately set within a range in which protein production and / or proliferation of cells to be cultured can be promoted.
  • chitin nanofibers it is usually added to the medium at a concentration of 0.003-0.1% (weight / volume), preferably 0.003-0.03% (weight / volume), more preferably 0.01-0.03% (weight / volume). good.
  • cellulose nanofibers usually 0.0001% to 1.0% (weight / volume), for example 0.0005% to 1.0% (weight / volume), preferably 0.001% to 0.5% (weight / volume), more preferably 0.01% to 0.1%. % (Weight / volume), more preferably 0.01% to 0.05% (weight / volume).
  • the lower limit of the concentration in the medium is preferably 0.01% (weight / volume) or more, 0.015% (weight / volume) or more, 0.02% (weight / volume) or more. 0.025% (weight / volume) or more, or 0.03% (weight / volume) or more.
  • the upper limit of the concentration in the medium is preferably 0.1% (weight / volume) or less, or 0.04% (weight / volume) or less.
  • the lower limit of the concentration in the medium is preferably 0.01% (weight / volume) or more, 0.03% (weight / volume) or more, or 0.05% (weight / volume) or more.
  • the upper limit of the concentration in the medium is preferably 0.1% (weight / volume) or less.
  • Water-insoluble nanofibers such as cellulose nanofibers and chitin nanofibers are usually handled at a concentration of 0.1% (weight / volume) or less without substantially increasing the viscosity of the medium composition. Is possible.
  • a medium usually used for culturing animal cells can be used.
  • a medium usually used for culturing animal cells preferably mammalian cells
  • Dulbecco's Modified Eagles Medium DMEM
  • Ham F12 Medium Ham F12 Medium
  • DMEM / F12 Medium McCoy's 5A Medium
  • Eagle MEM Medium Eagles's Minimum Essential Medium
  • EMEM EMEM
  • ⁇ MEM alpha Modified Eagle's Minimum Essential Medium
  • MEM medium Minimum Essential Medium
  • RPMI1640 medium Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM), MCDB131 medium, William medium E, IPL41 medium, Fischer's medium, StemPro34 (Invitrogen), X-VIVO 10 (Cambrex), X-VIVO 15 (Cambrex), HPGM (Cambrex), StemSpan H3000 (Stem Cell Technology
  • Plant growth regulators such as auxins and, if necessary, cytokinins (such as halving ammonia nitrogen concentration) in a basic medium such as A medium to which a plant hormone) is added at an appropriate concentration is mentioned as a medium.
  • cytokinins such as halving ammonia nitrogen concentration
  • a medium to which a plant hormone is added at an appropriate concentration is mentioned as a medium.
  • These media can be further supplemented with a casein degrading enzyme, corn steep liquor, vitamins and the like as necessary.
  • auxins examples include 3-indoleacetic acid (IAA), 3-indolebutyric acid (IBA), 1-naphthaleneacetic acid (NAA), 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), and the like. , But not limited to them.
  • Auxins can be added to the medium, for example, at a concentration of about 0.1 to about 10 ppm.
  • cytokinins include, but are not limited to, kinetin, benzyladenine (BA), and zeatin. Cytokinins can be added to the medium, for example, at a concentration of about 0.1 to about 10 ppm.
  • Components added to the medium of animal-derived cells and / or tissues include fetal bovine serum, human serum, horse serum, insulin, transferrin, lactoferrin, cholesterol, ethanolamine, sodium selenite, monothioglycerol, 2- Examples include mercaptoethanol, bovine serum albumin, sodium pyruvate, polyethylene glycol, various vitamins, various amino acids, agar, agarose, collagen, methylcellulose, various cytokines, various hormones, various growth factors, various extracellular matrices, and various cell adhesion molecules. It is done.
  • cytokines added to the medium include interleukin-1 (IL-1), interleukin-2 (IL-2), interleukin-3 (IL-3), interleukin-4 (IL-4), Interleukin-5 (IL-5), Interleukin-6 (IL-6), Interleukin-7 (IL-7), Interleukin-8 (IL-8), Interleukin-9 (IL-9), Interleukin-10 (IL-10), Interleukin-11 (IL-11), Interleukin-12 (IL-12), Interleukin-13 (IL-13), Interleukin-14 (IL-14), Interleukin-15 (IL-15), Interleukin-18 (IL-18), Interleukin-21 (IL-21), Interferon- ⁇ (IFN- ⁇ ), Interferon- ⁇ (IFN- ⁇ ), Interferon- ⁇ (IFN- ⁇ ), granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF), monocyte colony-stimulating factor (M-CSF), granulocyte-macrophage colon -Stimulating factor (GM-CSF), stem cells
  • Hormones added to the medium include melatonin, serotonin, thyroxine, triiodothyronine, epinephrine, norepinephrine, dopamine, anti-Muellerian hormone, adiponectin, corticotropin, angiotensinogen and angiotensin, antidiuretic hormone, atrium Natriuretic peptide, calcitonin, cholecystokinin, corticotropin releasing hormone, erythropoietin, follicle stimulating hormone, gastrin, ghrelin, glucagon, gonadotropin releasing hormone, growth hormone releasing hormone, human chorionic gonadotropin, human placental lactogen, growth hormone , Inhibin, insulin, insulin-like growth factor, leptin, luteinizing hormone, melanocyte stimulating hormone, oxytocin, parathyroid hormone , Prolactin, secretin, somatostatin,
  • Growth factors added to the medium include transforming growth factor- ⁇ (TGF- ⁇ ), transforming growth factor- ⁇ (TGF- ⁇ ), macrophage inflammatory protein-1 ⁇ (MIP-1 ⁇ ), epidermal growth factor ( EGF), fibroblast growth factor-1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, or 9 (FGF-1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9), nerve Cell growth factor (NGF) hepatocyte growth factor (HGF), leukemia inhibitory factor (LIF), protease nexin I, protease nexin II, platelet-derived growth factor (PDGF), cholinergic differentiation factor (CDF), chemokine, Notch ligand (such as Delta1), Wnt protein, Angiopoietin-like protein 2, 3, 5 or 7 (Angpt2, 3, 5, 7), Insulin-like growth factor (IGF), Insulin-like growth factor binding protein (IGFBP), Pleiotro Examples include, but are not limited to, fins (Pleiotrophin).
  • TGF- ⁇ transforming growth factor- ⁇
  • cytokines and growth factors obtained by artificially modifying the amino acid sequences of these cytokines and growth factors by gene recombination techniques can also be added.
  • examples thereof include IL-6 / soluble IL-6 receptor complex or Hyper IL-6 (a fusion protein of IL-6 and soluble IL-6 receptor).
  • Examples of various extracellular matrices and various cell adhesion molecules include collagens I to XIX, fibronectin, vitronectin, laminin-1 to 12, nitogen, tenascin, thrombospondin, von Willebrand factor, osteopontin, fibrinogen, Various elastins, various proteoglycans, various cadherins, desmocollins, desmogleins, various integrins, E-selectin, P-selectin, L-selectin, immunoglobulin superfamily, matrigel, poly-D-lysine, poly-L-lysine, chitin, Examples include chitosan, sepharose, hyaluronic acid, alginic acid gel, various hydrogels, and cut fragments thereof.
  • antibiotics added to the medium include sulfa drugs, penicillin, pheneticillin, methicillin, oxacillin, cloxacillin, dicloxacillin, flucloxacillin, nafcillin, ampicillin, penicillin, amoxicillin, cyclacillin, carbenicillin, ticarcillin, piperacillin, piperacillin, Mecuzurocillin, mecillinam, andinocillin, cephalosporin and its derivatives, oxophosphoric acid, amifloxacin, temafloxacin, nalidixic acid, pyromido acid, ciprofloxane, sinoxacin, norfloxacin, perfloxacin, rosoxacin, ofloxacin, enoxacin, pipexamic acid, sulbactam acid, sulbactam acid, sulbactam acid, sulbactam acid , ⁇ -bromopenicill
  • a medium composition used in the present invention can be produced by mixing the nanofibers with a liquid medium for cell culture so as to have a concentration capable of promoting protein production and / or proliferation of cells to be cultured. .
  • the nanofiber shape can be combined with formulated solids such as powders, tablets, pills, capsules, granules, liquids such as dispersions in appropriate physiological aqueous solvents, or substrates or single bodies. It can be in the state of Additives for formulation include preservatives such as p-hydroxybenzoates; excipients such as lactose, glucose, sucrose, and mannitol; lubricants such as magnesium stearate and talc; polyvinyl Examples include binders such as alcohol, hydroxypropyl cellulose, and gelatin; surfactants such as fatty acid esters; and plasticizers such as glycerin.
  • preservatives such as p-hydroxybenzoates
  • excipients such as lactose, glucose, sucrose, and mannitol
  • lubricants such as magnesium stearate and talc
  • polyvinyl Examples include binders such as alcohol, hydroxypropyl cellulose, and gelatin; surfactants
  • the sterilization method is not particularly limited, and examples thereof include radiation sterilization, ethylene oxide gas sterilization, autoclave sterilization, and filter sterilization.
  • the medium composition used in the present invention is prepared by mixing the dispersion of the nanofiber in a physiological aqueous solvent and a liquid medium.
  • the dispersion may be sterilized (autoclave, gamma ray sterilization, etc.).
  • the dispersion and a liquid medium (aqueous medium solution) prepared by dissolving a powder medium in water may be mixed before sterilization. Sterilization of the dispersion and liquid medium may be performed separately before mixing.
  • aqueous solvents include, but are not limited to water, dimethyl sulfoxide (DMSO) and the like.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • An appropriate buffer or salt may be contained in the aqueous solvent.
  • the nanofiber dispersion is useful as a medium additive for preparing a medium composition used in the present invention.
  • the mixing ratio of the nanofiber dispersion liquid medium is usually 1:99 to 99: 1, preferably 10:90 to 90:10, more preferably 20:80 to 80:20. is there.
  • the manufacturing method of the culture medium composition containing nanofiber is illustrated, this invention is not limited by this.
  • sterilization for example, autoclave sterilization at 121 ° C. for 20 minutes
  • the sterilized nanofiber dispersion is added to the medium and mixed to be uniform with the medium.
  • the method for mixing the aqueous solution and the medium is not particularly limited, and examples thereof include manual mixing such as pipetting, and mixing using equipment such as a magnetic stirrer, mechanical stirrer, homomixer, and homogenizer.
  • the above-described medium composition containing nanofibers can allow cells to float and stand in at least one point in the temperature range (eg, 0 to 40 ° C.) in which cells can be maintained and cultured.
  • the medium composition of the present invention is capable of allowing cells to float and float at preferably at least one point in the temperature range of 25 to 37 ° C, most preferably at 37 ° C.
  • the medium composition can be produced, for example, by the method described in WO 2015/111686 A1.
  • the present invention provides a method for carrying out suspension culture of cells in the above medium composition under physical disturbance conditions in a state of being attached to nanofibers.
  • the nanofiber used in the present invention has an effect of suspending the cell and / or tissue in a liquid containing the nanofiber (preferably an effect of suspending and standing) when the cell and / or tissue is cultured in vitro.
  • a liquid containing the nanofiber preferably an effect of suspending and standing
  • the target cells are cultured in the above-mentioned medium composition
  • the cells adhere to the nanofibers dispersed in the medium composition, and even if there is no physical disturbance such as stirring or shaking, the cells Can be cultured while being uniformly dispersed in the liquid medium composition and maintaining a floating state.
  • suspension culture of cells is possible without physical disturbance such as stirring and shaking, thereby promoting cell growth (WO 2015/111686 A1). ).
  • Physiological disturbance conditions include, but are not limited to, stirring, shaking, rotation, and the like. Stirring is performed by mixing the cells and the medium with a stir bar or a screw. Shaking is performed by shaking the culture container at a certain frequency and mixing the cells and the medium.
  • Preferable physical disturbance conditions include, for example, shaking at 20 to 150 rpm, preferably 50 to 130 rpm, more preferably 80 to 120 rpm, and still more preferably 90 to 110 rpm (for example, 100 rpm).
  • the shaking can be performed by, for example, EEYLA Multishaker MMS (Tokyo Rikakikai Co. Ltd.).
  • the culture method of the present invention is excellent as a cell growth method or a cell growth promotion method.
  • the cells do not adhere to the culture container, adhere to the nanofibers dispersed in the medium composition, and are not unevenly distributed only on the bottom surface of the culture container. Proliferation is promoted by dispersion with original spread and further physical disturbance.
  • the cells attach to the chitin nanofibers and use them as a scaffold to proliferate strongly. Become.
  • the medium composition contains a sufficient concentration of nanofibers to float cells and / or tissues (ie, avoid adhesion of cells and tissues to the culture vessel).
  • floating stationary that is, cells and / or tissues are evenly dispersed and floating in the liquid medium composition without external pressure, vibration, shaking, rotating operation, etc.
  • the concentration is 0.0001% (weight / volume) or more, preferably 0.003% (weight / volume) or more, sufficient for expression of floating action, stable floating stationary culture is possible. Even at a concentration of 0.03% (weight / volume) or less (eg, 0.025% (weight / volume) or less, 0.02% (weight / volume) or less), a proliferation promoting effect is exhibited.
  • chitin nanofibers are particularly excellent in promoting cell proliferation.
  • both floating cells and adherent cells can be used.
  • Adherent cells are cells that require a scaffold for growth and proliferation.
  • a floating cell is a cell which does not require a scaffold for growth and proliferation.
  • adherent cells are preferably used.
  • adherent cells when adherent cells are used, the adherent cells do not adhere to the bottom surface of the culture vessel, are not unevenly distributed only on the bottom surface of the culture vessel, and are dispersed with a three-dimensional spread and adhere to the nanofibers. Proliferate in state.
  • the cells attach to the chitin nanofibers and proliferate strongly using them as a scaffold, and as a result, the proliferated cells are connected to the nanofibers in the shape of a bunch of grapes. Become. Therefore, suspension culture of adherent cells becomes possible. As a result, the proliferation of adherent cells is promoted more than in the case where the cells are cultured while being adhered to the bottom surface of the culture container. Moreover, adherent cells can be cultured at a higher density than when cultured in a state of being adhered to the bottom surface of the culture vessel.
  • the adherent cells can be suspended in culture. Therefore, after the adherent cells are suspended by the culture method of the present invention, the fresh culture medium of the present invention is not required without the operation of detaching the cells from the culture vessel.
  • Adherent cells can be passaged by simply adding the composition to the culture after culturing, or by adding all or part of the cultivated culture to a fresh medium composition of the present invention. is there.
  • the present invention also provides a method for subculturing such adherent cells. Therefore, by using the subculture method of the present invention, the adherent cells can be subcultured without performing the detachment operation of the cells from the culture vessel.
  • the culture scale of adherent cells can be expanded without performing the cell peeling operation from the culture vessel.
  • the cell detachment operation from the culture vessel include treatment with a chelating agent (eg, EDTA) and / or a proteolytic enzyme (eg, trypsin, collagenase).
  • a chelating agent eg, EDTA
  • a proteolytic enzyme eg, trypsin, collagenase.
  • the subculture method of the present invention is used for subculture of adherent cells that are highly sensitive to cell detachment from a culture vessel (for example, adherent cells whose viability is reduced by the detachment operation, and adherent cells whose characteristics are easily changed by the detachment operation). It is advantageous for culture.
  • Adherent cells that are highly sensitive to cell detachment from culture vessels include human pluripotent stem cells; human progenitor cells; primary cells prepared from tissues such as hepatocytes, kidney cells, chondrocytes, vascular cells, and adipocytes; Examples include, but are not limited to, biopharmaceutical (protein for pharmaceutical use) producing cells such as MDCK cells, HEK293 cells, and CHO cells.
  • the culture method of the present invention is useful for the production of proteins by in vitro cell culture.
  • the cells having the target protein-producing ability are attached to the nanofibers and subjected to suspension culture under physical disturbance conditions.
  • the protein substance can be obtained by isolating the protein.
  • proteins include antibodies, enzymes (such as urokinase), hormones (such as insulin), cytokines (such as interferon, interleukin, tumor necrosis factor, colony stimulating factor, growth factor), vaccine antigens, and other physiologically active proteins.
  • Cells that produce the target protein are involved in non-transformed cells such as skin cells, chondrocytes, hepatocytes, pancreatic cells, kidney cells, genes encoding the target protein, and biosynthesis of the protein Transformed cells into which a gene has been introduced are included.
  • a gene encoding a target protein or a gene involved in biosynthesis of the protein can be an exogenous gene.
  • the cell having the target protein-producing ability may be an adherent cell or a floating cell, but is preferably an adherent cell.
  • the cell having the target protein-producing ability is preferably a cell that secretes the protein outside the cell.
  • cells having the target protein-producing ability include HEK293, CHO-K1, BHK-21, MDCK into which a gene encoding the target protein or a gene involved in biosynthesis of the protein is introduced. , Vero, HepG2, MCF-7 and the like, but are not limited thereto.
  • Cells used for the production of recombinant proteins are well known to those skilled in the art, and these cells can be appropriately used in the method of the present invention.
  • the cells are suspended in the medium composition with the cells attached to the nanofibers. Therefore, cells can be removed by a simple method such as centrifugation or filtration.
  • nanofibers in the medium composition can also be removed by a simple method such as centrifugation or filtration.
  • Methods for isolating proteins from cultures are well known to those skilled in the art and include, for example, chromatography (eg, chromatography such as ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography, affinity chromatography, reverse phase chromatography, etc.) Biochemical separation and purification methods for physiologically active substances can be applied.
  • petri dishes, flasks, plastic bags, Teflon (registered trademark) bags, dishes, petri dishes, tissue culture dishes, multi-cells generally used for cell culture are used. It is possible to culture using a culture device such as a dish, a microplate, a microwell plate, a multiplate, a multiwell plate, a chamber slide, a tube, a tray, a culture bag, or a roller bottle.
  • a culture device such as a dish, a microplate, a microwell plate, a multiplate, a multiwell plate, a chamber slide, a tube, a tray, a culture bag, or a roller bottle.
  • the material of these culture equipment is not particularly limited, and examples thereof include glass, polyvinyl chloride, cellulosic polymer, polystyrene, polymethyl methacrylate, polycarbonate, polysulfone, polyurethane, polyester, polyamide, polystyrene, polypropylene, and the like.
  • various surface treatments for example, plasma treatment, corona treatment, etc. may be applied to these plastics.
  • these culture devices may be coated with an extracellular matrix or cell adhesion molecule in advance.
  • Cell and / or tissue culture is performed under automatic control of cell seeding, medium exchange, cell image acquisition, and cultured cell collection under mechanical control in a closed environment to control pH, temperature, oxygen concentration, etc.
  • it can also be performed by a bioreactor capable of high-density culture or an automatic culture apparatus.
  • feed-batch culture, continuous culture, and perfusion culture as methods for supplying a new medium in the middle of culture using these devices and supplying the required substances to cells and / or tissues without excess or deficiency. Can also be used in the culture method of the present invention.
  • the temperature for culturing cells and / or tissues is usually 25 to 39 ° C., preferably 33 to 39 ° C. (eg, 37 ° C.) for animal cells.
  • the CO 2 concentration is usually 4 to 10% by volume in the culture atmosphere, and preferably 4 to 6% by volume (eg, 5% by volume).
  • the culture period is usually 3 to 35 days, preferably 7 to 20 days, more preferably 10 to 14 days, but it may be set freely according to the purpose of the culture.
  • Plant cells are usually cultured at a temperature of 20 to 30 ° C. If light is required, they may be cultured under an illuminance condition of an illuminance of 2000 to 8000 lux.
  • the culture period is usually 3 to 70 days, but may be set freely according to the purpose of the culture. In the method of the present invention, it is preferable to carry out suspension culture under physical disturbance conditions throughout the entire culture period.
  • separately prepared cells may be added to the culture composition of the present invention and mixed so as to be uniformly dispersed.
  • the mixing method in that case is not particularly limited, and examples thereof include manual mixing such as pipetting, and mixing using equipment such as a stirrer, a vortex mixer, a microplate mixer, and a shaker. After mixing, suspension culture is performed under physical disturbance conditions.
  • the medium and the medium composition are separated by centrifugation and filtration, and then the medium composition containing fresh nanofibers is added to the cells. do it.
  • a medium composition containing fresh nanofibers may be added to this concentrated solution.
  • the gravitational acceleration (G) at the time of centrifugation is 100 to 400 G
  • the pore size of the filter used for the filtration treatment is 10 ⁇ m to 100 ⁇ m, but is not limited thereto.
  • cells cultured by magnetic force can be separated using magnetic fine particles coated on the surface with an antibody that specifically binds to the target cell. Examples of such magnetic fine particles include Dynabead (manufactured by Veritas), MACS microbead (manufactured by Miltenyi Biotech), BioMag (manufactured by Technochemical). Exchange of these medium compositions can also be performed by a bioreactor or an automatic culture apparatus that can be executed in a closed environment under mechanical control.
  • the cultured human fetal kidney cell line HEK293 manufactured by DS Pharma Biomedical Co., Ltd. was seeded in a medium composition to which the above chitin nanofibers were added so as to be 133333 cells / mL, and then 50 mL mini bioreactor (Corning) Product, 431720).
  • Each reactor was cultured in a CO 2 incubator (37 ° C., 5% CO 2 ) in a stationary state or shaking state (cfg 100 rpm) and continued for 10 days. Suspend the culture solution on days 0 and 10 by pipetting, add 100 ⁇ L of ATP reagent (CellTiter-Glo TM Luminescent Cell Viability Assay, Promega) to 100 ⁇ L of the cell suspension, and let it react for about 10 minutes After standing at room temperature, the luminescence intensity (RLU value) was measured with FlexStation 3 (manufactured by Molecular Devices), and the number of viable cells was measured by subtracting the luminescence value of the medium alone as the average value of 4 points.
  • ATP reagent CellTiter-Glo TM Luminescent Cell Viability Assay, Promega
  • the cultured human embryonic kidney cell line HEK293 (manufactured by DS Pharma Biomedical Co., Ltd.) was seeded in a medium composition to which the above chitin nanofibers were added so as to be 13333 cells / mL or 33333 cells / mL, and then 50 mL It dispensed so that it might become 15 mL to mini bioreactor (Corning company make, 431720). Each reactor was cultured in a CO 2 incubator (37 ° C., 5% CO 2 ) with shaking (cfg100 rpm) and continued for 7 days and 14 days.
  • the IFN- ⁇ gene was obtained from human skin-derived normal diploid fibroblast cell line TIG-108, which is an IFN- ⁇ producing cell. Centrifuge 5 ⁇ 10 6 cells of TIG-108 at 400 ⁇ g for 5 minutes, remove the supernatant, add 1 mL of nucleic acid extraction reagent ISOGEN (NIPPON GENE), 0.2 mL of chloroform (Wako Pure Chemical Industries) and DNA The protein was precipitated in the organic layer.
  • ISOGEN nucleic acid extraction reagent
  • chloroform Wako Pure Chemical Industries
  • RNA layer aqueous phase
  • isopropanol Wako Pure Chemical Industries, Ltd.
  • pd N 6 Randam Hexamer
  • PCR amplification of the IFN- ⁇ gene was attempted.
  • ASTEC Program Temp. Control System
  • the PCR product was confirmed by 1% agarose gel electrophoresis and then purified with a Freeze'N Squeese spin column (BIO RAD). 2 ⁇ L of the purified PCR product and 1 ⁇ L (50 ng) of the pTARGET vector were mixed with 3 ⁇ L of TaKaRa DNA Ligation Kit (Takara Bio), and a ligation reaction was performed at 16 ° C. for 30 minutes. Subsequently, the ligated pTARGET vector was introduced into JM109 cells (Promega) by heat shock reaction, and seeded on an LB medium plate. The grown colonies were obtained, and after shaking culture overnight at 37 ° C.
  • the pTARGET vector was extracted with QIAprep Spin Miniprep Kit (QIAGEN). Subsequently, the pTARGET vector was cleaved with a restriction enzyme PstI (TOYOBO) having a recognition sequence on the IFN- ⁇ gene sequence to confirm that the IFN- ⁇ gene was cloned into the pTARGET vector. Subsequently, the HEK293 cell line was cultured in -E-RDF (10% FBS-E-RDF) medium containing 10% fetal bovine serum FBS (Trace), and then adjusted to 5 ⁇ 10 6 cells / mL. Replaced with PBS. Next, it was confirmed that the IFN- ⁇ gene was cloned into the pTARGET vector.
  • -E-RDF 10% FBS-E-RDF
  • Trace 10% fetal bovine serum FBS
  • Each reactor was cultured in a CO 2 incubator (37 ° C., 5% CO 2 ) with shaking (cfg100 rpm) and continued for 7 days and 14 days. Suspend the culture solution on day 0, 7, and 14 by pipetting, add 100 ⁇ L of ATP reagent (CellTiter-Glo TM Luminescent Cell Viability Assay, Promega) to 100 ⁇ L of the cell suspension, and let it react. After standing at room temperature for 10 minutes, the luminescence intensity (RLU value) was measured with FlexStation 3 (Molecular Devices), and the number of viable cells was measured by subtracting the luminescence value of the medium alone as the average value of 4 points. In addition, the cell culture solution on days 7 and 14 was centrifuged (200 G, 3 minutes), and the culture supernatant was dispensed.
  • ATP reagent CellTiter-Glo TM Luminescent Cell Viability Assay, Promega
  • IFN- ⁇ production by enzyme antibody method The amount of IFN- ⁇ produced in the culture supernatant was measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA).
  • ELISA enzyme-linked immunosorbent assay
  • a goat anti-human IFN- ⁇ antibody R & D System INC. was diluted with phosphate buffered saline (PBS) to 1 ⁇ g / mL, and dispensed at 100 ⁇ L / well into a 96-well immunoplate and coated. After standing at room temperature for 1 hour, in order to prevent non-specific reactions, a solution (1% BSA / PBS) of bovine serum albumin (BSA; ICN) diluted to 1% in PBS was dispensed at 150 ⁇ L / well. , Blocking.
  • PBS phosphate buffered saline
  • the mixture was allowed to stand at room temperature for 1 hour, and the culture supernatant containing the IFN- ⁇ antibody to be quantified was dispensed at 50 ⁇ L / well.
  • 50 ⁇ L / well of a standard solution of 0 ⁇ g / mL to 200 ⁇ g / mL was dispensed and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • mouse anti-human IFN- ⁇ antibody (R & D System INC.) was diluted with 1% BSA / PBS to 1 ⁇ g / mL, dispensed at 100 ⁇ L / well, and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • horseradish-derived peroxidase-labeled rat anti-mouse IgG antibody was diluted approximately 6,000 times with a 1% BSA / PBS solution, dispensed at 100 ⁇ L / well, and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • Dissolve 10% 3,3 ', 5,5'-Tetramethylbenzidine (TMB) coloring solution (manufactured by Funakoshi, # TMBW-100-0) as a coloring solution at 100 ⁇ L / well.
  • stop solution After stopping the reaction with KPL (# 50-85-04), the absorbance was measured at a wavelength of 450 nm. Between each reaction, it wash
  • the cultured canine kidney tubular epithelial cell line MDCK manufactured by DS Pharma Biomedical Co., Ltd.
  • Each reactor was cultured in a CO 2 incubator (37 ° C., 5% CO 2 ) in a stationary state or shaking state (cfg 100 rpm) and continued for 10 days. Suspend the culture solution on day 0 and 10 by pipetting, add 100 ⁇ L of ATP reagent (CellTiter-Glo TM Luminescent Cell Viability Assay, Promega) to 100 ⁇ L of the cell suspension, and react for about 10 minutes. After standing at room temperature, the luminescence intensity (RLU value) was measured with FlexStation 3 (manufactured by Molecular Devices), and the number of viable cells was measured by subtracting the luminescence value of the medium alone as the average value of 4 points.
  • ATP reagent CellTiter-Glo TM Luminescent Cell Viability Assay, Promega
  • cells can be efficiently proliferated and mass production of proteins such as enzymes, cell growth factors, and antibodies can be performed.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

本発明は、ナノファイバーを含有する培地組成物中、タンパク質産生能を有する細胞を、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養することを含む、タンパク質の産生方法を提供する。

Description

タンパク質産生方法
　本発明は、細胞培養によりタンパク質を産生する技術に関する。
　近年、生命科学の分野では、目的とする有用タンパク質（抗体やワクチン等）を産生する動物細胞を大量培養することにより、有用タンパク質を工業的規模で産生することが非常に重要になってきている。動物細胞培養を用いた有用タンパク質の生産において、抗体などは浮遊培養が可能なCHO-DG44細胞等を用い、ワクチンなどはMDCK細胞やVero細胞をマイクロキャリア粒子に接着させた状態で培養している。しかしCHO-DG44培養でタンパク質を生産させる場合はすでに確立された多数の権利による制約下で実施しなくてはいけない。さらに最近ヒト細胞を用いるヒト糖鎖修飾型の抗体生産法の開発が進められているが、開発中のPerC6細胞は同様に多数の権利による制約下で実施する必要がある。また同じヒト由来のHEK293細胞は接着性であることから浮遊培養に適していない。さらに自ら浮遊化し増殖する能力を有する細胞は、がん化のリスクがあるため、ポストCHO-DG44細胞に該当する細胞が出てこない状況である。
　一方、ワクチン生産で用いられるマイクロキャリア法は、MDCK細胞やVero細胞をキャリアー表面に接着させて培養する方法である。この方法の場合、攪拌培養が必要であるが、その攪拌によりキャリアー同士の衝突による表面上の細胞障害が問題となっている。この細胞障害はタンパク生産効率に悪影響を及ぼすことから、それに代わる新しい浮遊培養法の確立が望まれている。
　本発明者らは、細胞の培養に関し、特に動物細胞によるタンパク質の高産生化に適したタンパク質産生促進剤及びそれを含有する培地、該タンパク質産生促進剤及びそれを含有する培地を用いたタンパク質の製造方法を報告している（特許文献1）。
　また、セルロースやキチン等の多糖類からなるナノファイバーを液体培地中に混合することにより、該液体培地の粘度を実質的に高めることなく、動植物細胞及び／又は組織を静置した状態で浮遊培養し得ること、この培地組成物を用いて培養することにより細胞の増殖活性が亢進することが報告されている（特許文献2）。
WO 2014/030726 A1 WO 2015/111686 A1
　本発明は、浮遊培養を用いた接着性細胞によるタンパク質生産を、より効率化する技術を提供することを課題とする。
　本発明者らは鋭意検討の結果、セルロースやキチン等の多糖類からなるナノファイバーを含む液体培地中で、該ナノファイバーに接着させたタンパク質産生細胞を、撹拌条件下で、浮遊培養することにより、タンパク質産生量が顕著に増大することを見出し、本発明を完成させるに至った。
　すなわち、本発明は下記のとおりである：
［1］ナノファイバーを含有する培地組成物中、タンパク質産生能を有する細胞を、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養することを含む、タンパク質の産生方法。
［2］該ナノファイバーが、セルロース、キチン及びキトサンからなる群から選択されるいずれかの非水溶性多糖類から構成される、［1］に記載の方法。
［3］該ナノファイバーが、キチンナノファイバーである、［1］に記載の方法。
［4］培地組成物中のキチンナノファイバーの含有量が、0.003～0.1％（重量／容量）である、［3］に記載の方法。
［5］該細胞が接着細胞である、［1］～［4］のいずれかに記載の方法。
［6］ナノファイバーを含有する培地組成物中、細胞を、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養することを含む、細胞の増殖方法。
［7］該ナノファイバーが、セルロース、キチン及びキトサンからなる群から選択されるいずれかの非水溶性多糖類から構成される、［6］に記載の方法。
［8］該ナノファイバーが、キチンナノファイバーである、［6］に記載の方法。
［9］培地組成物中のキチンナノファイバーの含有量が、0.003～0.1％（重量／容量）である、［8］に記載の方法。
［10］該細胞が接着細胞である、［6］～［9］のいずれかに記載の方法。
　本発明によれば、細胞を効率的に増殖させ、酵素、細胞増殖因子、抗体等のタンパク質の大量生産を実施することができる。
　以下、更に詳細に本発明を説明する。
　本明細書において用いる用語につき、以下の通り定義する。
　本発明における細胞とは、動物或いは植物を構成する最も基本的な単位であり、その要素として細胞膜の内部に細胞質と各種の細胞小器官をもつものである。この際、DNAを内包する核は、細胞内部に含まれても含まれなくてもよい。例えば、本発明における動物由来の細胞には、精子や卵子などの生殖細胞、生体を構成する体細胞、幹細胞、前駆細胞、生体から分離された癌細胞、生体から分離され不死化能を獲得して体外で安定して維持される細胞（細胞株）、生体から分離され人為的に遺伝子改変が為された細胞、生体から分離され人為的に核が交換された細胞等が含まれる。生体を構成する体細胞の例としては、以下に限定されるものではないが、線維芽細胞、骨髄細胞、Bリンパ球、Tリンパ球、好中球、赤血球、血小板、マクロファージ、単球、骨細胞、骨髄細胞、周皮細胞、樹枝状細胞、ケラチノサイト、脂肪細胞、間葉細胞、上皮細胞、表皮細胞、内皮細胞、血管内皮細胞、肝実質細胞、軟骨細胞、卵丘細胞、神経系細胞、グリア細胞、ニューロン、オリゴデンドロサイト、マイクログリア、星状膠細胞、心臓細胞、食道細胞、筋肉細胞（たとえば、平滑筋細胞または骨格筋細胞）、膵臓ベータ細胞、メラニン細胞、造血前駆細胞、及び単核細胞等が含まれる。当該体細胞は、例えば皮膚、腎臓、脾臓、副腎、肝臓、肺、卵巣、膵臓、子宮、胃、結腸、小腸、大腸、脾臓、膀胱、前立腺、精巣、胸腺、筋肉、結合組織、骨、軟骨、血管組織、血液、心臓、眼、脳または神経組織などの任意の組織から採取される細胞が含まれる。幹細胞とは、自分自身を複製する能力と他の複数系統の細胞に分化する能力を兼ね備えた細胞であり、その例としては、以下に限定されるものではないが、胚性幹細胞（ES細胞）、胚性腫瘍細胞、胚性生殖幹細胞、人工多能性幹細胞（iPS細胞）、神経幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、肝幹細胞、膵幹細胞、筋幹細胞、生殖幹細胞、腸幹細胞、癌幹細胞、毛包幹細胞などが含まれる。前駆細胞とは、前記幹細胞から特定の体細胞や生殖細胞に分化する途中の段階にある細胞である。癌細胞とは、体細胞から派生して無限の増殖能を獲得した細胞である。細胞株とは、生体外での人為的な操作により無限の増殖能を獲得した細胞であり、その例としては、以下に限定されるものではないが、CHO（チャイニーズハムスター卵巣細胞株）、HCT116、Huh7、HEK293（ヒト胎児腎細胞）、HeLa（ヒト子宮癌細胞株）、HepG2（ヒト肝癌細胞株）、UT7/TPO（ヒト白血病細胞株）、MDCK、MDBK、BHK、C-33A、HT-29、AE-1、3D9、Ns0/1、Jurkat、NIH3T3、PC12、S2、Sf9、Sf21、High Five（登録商標）、Vero等が含まれる。
　本発明における植物由来の細胞には、植物体の各組織から分離した細胞が含まれ、当該細胞から細胞壁を人為的に除いたプロトプラストも含まれる。
　本発明における組織とは、何種類かの異なった性質や機能を有する細胞が一定の様式で集合した構造の単位であり、動物の組織の例としては、上皮組織、結合組織、筋組織、神経組織等が含まれる。植物の組織の例としては、分裂組織、表皮組織、同化組織、葉肉組織、通道組織、機械組織、柔組織、脱分化した細胞塊（カルス）等が含まれる。
　細胞及び／又は組織を培養するに際し、培養する細胞及び／又は組織は、前記に記載した細胞及び／又は組織から任意に選択して培養することができる。細胞及び／又は組織は、動物或いは植物体より直接採取することができる。細胞及び／又は組織は、特定の処理を施すことにより動物或いは植物体から誘導させたり、成長させたり、または形質転換させた後に採取してもよい。この際、当該処理は生体内であっても生体外であってもよい。動物としては、例えば魚類、両生類、爬虫類、鳥類、汎甲殻類、六脚類、哺乳類等が挙げられる。哺乳動物の例としては、限定されるものではないが、ラット、マウス、ウサギ、モルモット、リス、ハムスター、ハタネズミ、カモノハシ、イルカ、クジラ、イヌ、ネコ、ヤギ、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、ゾウ、コモンマーモセット、リスザル、アカゲザル、チンパンジーおよびヒトが挙げられる。植物としては、採取した細胞及び／又は組織が液体培養可能なものであれば、特に限定はない。例えば、生薬類（例えば、サポニン、アルカロイド類、ベルベリン、スコポリン、植物ステロール等）を生産する植物（例えば、薬用人参、ニチニチソウ、ヒヨス、オウレン、ベラドンナ等）や、化粧品・食品原料となる色素や多糖体（例えば、アントシアニン、ベニバナ色素、アカネ色素、サフラン色素、フラボン類等）を生産する植物（例えば、ブルーベリー、紅花、セイヨウアカネ、サフラン等）、或いは医薬品原体を生産する植物などがあげられるが、それらに限定されない。
　本発明において、細胞の浮遊とは、培養容器に対して細胞が接着しない状態（非接着）であることをいう。さらに、本発明において、細胞を増殖、分化或いは維持させる際、液体培地組成物に対する外部からの圧力や振動或いは当該組成物中での振とう、回転操作等を伴わずに細胞が当該液体培地組成物中で均一に分散し尚且つ浮遊状態にある状態を「浮遊静置」といい、当該状態で細胞を培養することを「浮遊静置培養」という。「浮遊静置」において浮遊させることのできる期間としては、少なくとも5分以上、好ましくは、1時間以上、24時間以上、48時間以上、6日以上、21日以上であるが、浮遊状態を保つ限りこれらの期間に限定されない。
［ナノファイバー］
　本発明に用いる培地組成物中に含まれるナノファイバーは、液体培地中で、細胞を浮遊させる効果を示すものである。例えば、高分子化合物からなる比較的大きな線維構造体を高圧処理などにより微細化することにより得られたナノファイバー等が、本発明の方法に用いる培地組成物中に含まれるナノファイバーとして挙げられる。
　本明細書において、ナノファイバーとは、平均線維径（D）が、0.001乃至1.00μmの線維をいう。本発明に用いるナノファイバーの平均線維径は、好ましくは、0.005乃至0.50μm、より好ましくは0.01乃至0.05μm、更に好ましくは0.01乃至0.02μmである。平均線維径が0.001μm未満であると、ナノファイバーが微細すぎることにより浮遊効果が得られない恐れがあり、それを含有する培地組成物の特性の改善につながらない可能性がある。
　本発明に用いるナノファイバーのアスペクト比（L/D）は、平均線維長／平均線維径より得られ、通常2～500であり、好ましくは5～300であり、より好ましくは10～250である。アスペクト比が2未満の場合には、培地組成物中での分散性に欠け、浮遊作用が充分に得られない恐れがある。500を超える場合には、線維長が極めて大きくなることを意味することから、当該組成物の粘度を上昇させることにより培地交換など継代操作に支障をきたす恐れがある。また、培地組成物が可視光を透過しづらくなることから透明性の低下につながり、培養細胞の経時的な観察が困難となることや吸光・蛍光・発光などを用いた細胞評価に支障をきたす可能性がある。
　尚、本明細書中、ナノファイバーの平均線維径（D）は以下のようにして求める。まず応研商事（株）製コロジオン支持膜を日本電子（株）製イオンクリーナ（JIC-410）で3分間親水化処理を施し、評価対象のナノファイバー分散液（超純水にて希釈）を数滴滴下し、室温乾燥する。これを（株）日立製作所製透過型電子顕微鏡（TEM、H-8000）（10,000倍）にて加速電圧200kVで観察し、得られた画像を用いて、標本数：200～250本のナノファイバーについて一本一本の線維径を計測し、その数平均値を平均線維径（D）とする。
　また、平均線維長（L）は、以下のようにして求める。評価対象ナノファイバー分散液を純水により100ppmとなるように希釈し、超音波洗浄機を用いてナノファイバーを均一に分散させた。このナノファイバー分散液を予め濃硫酸を用いて表面を親水化処理したシリコンウェハー上へキャストし、110℃にて1時間乾燥させて試料とする。得られた試料の日本電子（株）製走査型電子顕微鏡（SEM、JSM-7400F）（2,000倍）で観察した画像を用いて、標本数：150～250本のナノファイバーについて一本一本の線維長を計測し、その数平均値を平均線維長（L）とする。
　本発明に用いるナノファイバーは、液体培地と混合した際、一次線維径を保ちながら当該ナノファイバーが当該液体中で均一に分散し、分散したナノファイバーへ細胞が付着することにより、細胞の沈降を防ぐ。
　ナノファイバーを構成する原料は、非水溶性多糖類である。非水溶性多糖類としては、セルロース、ヘミセルロース等のセルロース類；キチン、キトサン等のキチン質等を挙げることができるが、これらに限定されない。
　セルロースとは、ブドウ糖の6員環であるD-グルコピラノースがβ-1,4グルコシド結合した天然高分子化合物である。原料としては、例えば、木材、竹、麻、ジュート、ケナフ、コットン、農作物・食物残渣など植物由来のセルロース、又はバクテリアセルロース、シオグサ（クラドフォラ）、灰色植物（グラウコキスチス）、バロニア、ホヤセルロースなど、微生物産生若しくは動物産生のセルロースを使用することができる。植物由来のセルロースはミクロフィブリルと呼ばれる非常に細い線維がさらに束になりフィブリル、ラメラ、線維細胞と段階的に高次構造を形成している。また、バクテリアセルロースは菌細胞から分泌されたセルロースのミクロフィブリルが、そのままの太さで微細な網目構造を形成している。
　本発明において、コットンやバクテリアセルロースなど高純度のセルロース原料は原料のまま用いる事ができるが、これ以外の植物由来のセルロースなどは、単離・精製したものを用いる事が好ましい。本発明において好適に用いられるセルロースは、コットンセルロース、バクテリアセルロース、クラフトパルプセルロース、微結晶セルロース等である。特に、高い浮遊作用を有することから、クラフトパルプセルロースが好適に用いられる。
　キチン質とは、キチン及びキトサンからなる群より選ばれる1以上の糖質をいう。キチン及びキトサンを構成する主要な糖単位は、それぞれ、N-アセチルグルコサミン及びグルコサミンであり、一般的に、N-アセチルグルコサミンの含有量が多く酸性水溶液に対し難溶性であるものがキチン、グルコサミンの含有量が多く酸性水溶液に対し可溶性であるものがキトサンとされる。本明細書においては、便宜上、構成糖に占めるN-アセチルグルコサミンの割合が50％以上のものをキチン、50％未満のものをキトサンと呼ぶ。高い浮遊作用を達成する観点から、キチンを構成する糖単位に占めるN-アセチルグルコサミンの割合が高いほど好ましい。キチンを構成する糖単位に占めるN-アセチルグルコサミンの割合は、好ましくは80％以上、より好ましくは90％以上、更に好ましくは98％以上、最も好ましくは100％である。
　キチンの原料としては、例えば、エビ、カニ、昆虫、貝、キノコなど、多くの生物資源を用いることができる。本発明に用いるキチンは、カニ殻やエビ殻由来のキチンなどのα型の結晶構造を有するキチンであってもよく、イカの甲由来のキチンなどのβ型の結晶構造を有するキチンであってもよい。カニやエビの外殻は産業廃棄物として扱われることが多く、入手容易でしかも有効利用の観点から原料として好ましいが、不純物として含まれるタンパク質や灰分等の除去のために脱タンパク工程および脱灰工程が必要となる。そこで、本発明においては、既に脱マトリクス処理が施された精製キチンを用いることが好ましい。精製キチンは、市販されている。
［ナノファイバーの調製］
　本発明に用いる培地組成物は、上述の原料から調製されたナノファイバーを含む。
　ナノファイバーの原料が非水溶性の高分子化合物（例えば、セルロース、キチン等の非水溶性多糖類）である場合、通常は、当該原料を粉砕することにより、ナノファイバーを得る。粉砕方法は限定されないが、本発明の目的に合う後述する線維径・線維長にまで微細化するには、高圧ホモジナイザー、グラインダー（石臼）、あるいはビーズミルなどの媒体撹拌ミルといった、強いせん断力が得られる方法が好ましい。
　これらの中でも高圧ホモジナイザーを用いて微細化することが好ましく、例えば特開2005-270891号公報や特許第5232976号に開示されるような湿式粉砕法を用いて微細化（粉砕化）することが望ましい。具体的には、原料を分散させた分散液を、一対のノズルから高圧でそれぞれ噴射して衝突させることにより、原料を粉砕するものであって、例えばスターバーストシステム（（株）スギノマシン製の高圧粉砕装置）やナノヴェイタ（吉田機械興業（株）の高圧粉砕装置）を用いることにより実施できる。
　前述の高圧ホモジナイザーを用いて原料を微細化（粉砕化）する際、微細化や均質化の程度は、高圧ホモジナイザーの超高圧チャンバーへ圧送する圧力と、超高圧チャンバーに通過させる回数（処理回数）、及び水分散液中の原料の濃度に依存することとなる。圧送圧力（処理圧力）は、通常、50～250MPaであり、好ましくは150～245MPaである。圧送圧力が50MPa未満の場合には、ナノファイバーの微細化が不充分となり、微細化により期待される効果が得られない恐れがある。
　また、微細化処理時の水分散液中の原料の濃度は0.1質量％～30質量％、好ましくは1質量％～10質量％である。水分散液中の原料の濃度が0.1質量％未満だと生産性が低く、30質量％より高い濃度だと粉砕効率が低く、所望のナノファイバーが得られない。微細化（粉砕化）の処理回数は、特に限定されず、前記水分散液中の原料の濃度にもよるが、原料の濃度が0.1～1質量％の場合には処理回数は10～100回程度で充分に微細化されるが、1～10質量％では10～1000回程度必要となる。また、30質量％を超える高濃度な場合は、数千回以上の処理回数が必要となることや、取扱いに支障をきたす程度まで高粘度化が進むため、工業的観点から非現実的である。
　本発明の培地組成物中におけるナノファイバーの濃度は、培養する細胞のタンパク質産生及び／又は増殖を促進することが可能な範囲で、適宜設定することができる。
　キチンナノファイバーの場合、通常0.003～0.1％（重量／容量）、好ましくは0.003～0.03％（重量／容量）、より好ましくは0.01～0.03％（重量／容量）の濃度で培地中に添加すれば良い。
　セルロースナノファイバーの場合、通常0.0001％乃至1.0％（重量／容量）、例えば0.0005％乃至1.0％（重量／容量）、好ましくは0.001％乃至0.5％（重量／容量）、より好ましくは0.01％乃至0.1％（重量／容量）、更に好ましくは、0.01％乃至0.05％（重量／容量）の濃度で培地中に添加すれば良い。
　セルロースナノファイバーのうちパルプセルロースナノファイバーの場合、培地中の濃度の下限値は、好ましくは、0.01％（重量／容量）以上、0.015％（重量／容量）以上、0.02％（重量／容量）以上、0.025％（重量／容量）以上、又は、0.03％（重量／容量）以上である。また、パルプセルロースナノファイバーの場合、培地中の濃度の上限値は、好ましくは0.1％（重量／容量）以下、又は0.04％（重量／容量）以下である。
　微結晶セルロースナノファイバーの場合、培地中の濃度の下限値は、好ましくは0.01％（重量／容量）以上、0.03％（重量／容量）以上、又は0.05％（重量／容量）以上である。また、微結晶セルロースナノファイバーの場合、培地中の濃度の上限値は、好ましくは、0.1％（重量／容量）以下である。
　セルロースナノファイバー、キチンナノファイバー等の非水溶性のナノファイバーについては、通常、0.1％（重量／容量）以下の濃度であれば、培地組成物の粘度を実質的に高めることはなく、取り扱うことが可能である。
［培地］
　培養対象の細胞が動物（特に哺乳動物）由来である場合、動物細胞（好ましくは、哺乳動物細胞）培養に通常用いられる培地を用いることができる。例えばダルベッコ改変イーグル培地（Dulbecco’s Modified Eagles’s Medium；DMEM）、ハムF12培地（Ham’s Nutrient Mixture F12）、DMEM/F12培地、マッコイ5A培地（McCoy’s 5A medium）、イーグルMEM培地（Eagles’s Minimum Essential Medium；EMEM）、αMEM培地（alpha Modified Eagle’s Minimum Essential Medium；αMEM）、MEM培地（Minimum Essential Medium）、RPMI1640培地、イスコフ改変ダルベッコ培地（Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium；IMDM）、MCDB131培地、ウィリアム培地E、IPL41培地、Fischer’s培地、StemPro34（インビトロジェン社製）、X-VIVO 10（ケンブレックス社製）、X-VIVO 15（ケンブレックス社製）、HPGM（ケンブレックス社製）、StemSpan H3000（ステムセルテクノロジー社製）、StemSpanSFEM（ステムセルテクノロジー社製）、StemlineII（シグマアルドリッチ社製）、QBSF-60（クオリティバイオロジカル社製）、StemProhESCSFM（インビトロジェン社製）、mTeSR1或いは2培地（ステムセルテクノロジー社製）、Sf-900II（インビトロジェン社製）、Opti-Pro（インビトロジェン社製）、などが挙げられる。
　培養対象の細胞が植物由来である場合、植物組織培養に通常用いられるムラシゲ・スクーグ（MS）培地、リンズマイヤー・スクーグ（LS）培地、ホワイト培地、ガンボーグB5培地、ニッチェ培地、ヘラー培地、モーレル培地等の基本培地、或いは、これら培地成分を至適濃度に修正した修正培地（例えば、アンモニア態窒素濃度を半分にする等）に、オーキシン類及び必要に応じてサイトカイニン類等の植物生長調節物質（植物ホルモン）を適当な濃度で添加した培地が培地として挙げられる。これらの培地には、必要に応じて、カゼイン分解酵素、コーンスティープリカー、ビタミン類等をさらに補充することができる。オーキシン類としては、例えば、3-インドール酢酸（IAA）、3-インドール酪酸（IBA）、1-ナフタレン酢酸（NAA）、2,4-ジクロロフェノキシ酢酸（2,4-D）等が挙げられるが、それらに限定されない。オーキシン類は、例えば、約0.1～約10ppmの濃度で培地に添加され得る。サイトカイニン類としては、例えば、カイネチン、ベンジルアデニン（BA）、ゼアチン等が挙げられるが、それらに限定されない。サイトカイニン類は、例えば、約0.1～約10ppmの濃度で培地に添加され得る。
　上記の培地には、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、リン、塩素、各種アミノ酸、各種ビタミン、抗生物質、血清、脂肪酸、糖などを当業者は目的に応じて自由に添加してもよい。動物由来の細胞及び／又は組織培養の際には、当業者は目的に応じてその他の化学成分あるいは生体成分を一種類以上組み合わせて添加することもできる。動物由来の細胞及び／又は組織の培地に添加される成分としては、ウシ胎児血清、ヒト血清、ウマ血清、インシュリン、トランスフェリン、ラクトフェリン、コレステロール、エタノールアミン、亜セレン酸ナトリウム、モノチオグリセロール、2-メルカプトエタノール、ウシ血清アルブミン、ピルビン酸ナトリウム、ポリエチレングリコール、各種ビタミン、各種アミノ酸、寒天、アガロース、コラーゲン、メチルセルロース、各種サイトカイン、各種ホルモン、各種増殖因子、各種細胞外マトリックスや各種細胞接着分子などが挙げられる。培地に添加されるサイトカインとしては、例えばインターロイキン-1（IL-1）、インターロイキン-2（IL-2）、インターロイキン-3（IL-3）、インターロイキン-4（IL-4）、インターロイキン-5（IL-5）、インターロイキン-6（IL-6）、インターロイキン-7（IL-7）、インターロイキン-8（IL-8）、インターロイキン-9（IL-9）、インターロイキン-10（IL-10）、インターロイキン-11（IL-11）、インターロイキン-12（IL-12）、インターロイキン-13（IL-13）、インターロイキン-14（IL-14）、インターロイキン-15（IL-15）、インターロイキン-18（IL-18）、インターロイキン-21（IL-21）、インターフェロン-α（IFN-α）、インターフェロン-β（IFN-β）、インターフェロン-γ（IFN-γ）、顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF）、単球コロニー刺激因子（M-CSF）、顆粒球-マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）、幹細胞因子（SCF）、flk2/flt3リガンド（FL）、白血病細胞阻害因子（LIF）、オンコスタチンM（OM）、エリスロポエチン（EPO）、トロンボポエチン（TPO）などが挙げられるが、これらに限られるわけではない。
　培地に添加されるホルモンとしては、メラトニン、セロトニン、チロキシン、トリヨードチロニン、エピネフリン、ノルエピネフリン、ドーパミン、抗ミュラー管ホルモン、アディポネクチン、副腎皮質刺激ホルモン、アンギオテンシノゲン及びアンギオテンシン、抗利尿ホルモン、心房ナトリウム利尿性ペプチド、カルシトニン、コレシストキニン、コルチコトロピン放出ホルモン、エリスロポイエチン、卵胞刺激ホルモン、ガストリン、グレリン、グルカゴン、ゴナドトロピン放出ホルモン、成長ホルモン放出ホルモン、ヒト絨毛性ゴナドトロピン、ヒト胎盤性ラクトーゲン、成長ホルモン、インヒビン、インスリン、インスリン様成長因子、レプチン、黄体形成ホルモン、メラニン細胞刺激ホルモン、オキシトシン、副甲状腺ホルモン、プロラクチン、セクレチン、ソマトスタチン、トロンボポイエチン、甲状腺刺激ホルモン、チロトロピン放出ホルモン、コルチゾール、アルドステロン、テストステロン、デヒドロエピアンドロステロン、アンドロステンジオン、ジヒドロテストステロン、エストラジオール、エストロン、エストリオール、プロゲステロン、カルシトリオール、カルシジオール、プロスタグランジン、ロイコトリエン、プロスタサイクリン、トロンボキサン、プロラクチン放出ホルモン、リポトロピン、脳ナトリウム利尿ペプチド、神経ペプチドY、ヒスタミン、エンドセリン、膵臓ポリペプチド、レニン、及びエンケファリンが挙げられるが、これらに限られるわけではない。
　培地に添加される増殖因子としては、トランスフォーミング成長因子-α（TGF-α）、トランスフォーミング成長因子-β（TGF-β）、マクロファージ炎症蛋白質-1α（MIP-1α）、上皮細胞増殖因子（EGF）、線維芽細胞増殖因子-1、2、3、4、5、6、7、8、又は9（FGF-1、2、3、4、5、6、7、8、9）、神経細胞増殖因子（NGF）肝細胞増殖因子（HGF）、白血病阻止因子（LIF）、プロテアーゼネキシンI、プロテアーゼネキシンII、血小板由来成長因子（PDGF）、コリン作動性分化因子（CDF）、ケモカイン、Notchリガンド（Delta1など）、Wnt蛋白質、アンジオポエチン様蛋白質2、3、5または7（Angpt2、3、5、7）、インスリン様成長因子（IGF）、インスリン様成長因子結合蛋白質（IGFBP）、プレイオトロフィン（Pleiotrophin）などが挙げられるが、これらに限られるわけではない。
　また、遺伝子組換え技術によりこれらのサイトカインや増殖因子のアミノ酸配列を人為的に改変させたものも添加させることもできる。その例としては、IL-6／可溶性IL-6受容体複合体あるいはHyper IL-6（IL-6と可溶性IL-6受容体との融合タンパク質）などが挙げられる。
　各種細胞外マトリックスや各種細胞接着分子の例としては、コラーゲンI乃至XIX、フィブロネクチン、ビトロネクチン、ラミニン-1乃至12、ニトジェン、テネイシン、トロンボスポンジン、フォンビルブランド（von Willebrand）因子、オステオポンチン、フィブリノーゲン、各種エラスチン、各種プロテオグリカン、各種カドヘリン、デスモコリン、デスモグレイン、各種インテグリン、E-セレクチン、P-セレクチン、L-セレクチン、免疫グロブリンスーパーファミリー、マトリゲル、ポリ-D-リジン、ポリ-L-リジン、キチン、キトサン、セファロース、ヒアルロン酸、アルギン酸ゲル、各種ハイドロゲル、さらにこれらの切断断片などが挙げられる。
　培地に添加される抗生物質の例としては、サルファ製剤、ペニシリン、フェネチシリン、メチシリン、オキサシリン、クロキサシリン、ジクロキサシリン、フルクロキサシリン、ナフシリン、アンピシリン、ペニシリン、アモキシシリン、シクラシリン、カルベニシリン、チカルシリン、ピペラシリン、アズロシリン、メクズロシリン、メシリナム、アンジノシリン、セファロスポリン及びその誘導体、オキソリン酸、アミフロキサシン、テマフロキサシン、ナリジクス酸、ピロミド酸、シプロフロキサン、シノキサシン、ノルフロキサシン、パーフロキサシン、ロザキサシン、オフロキサシン、エノキサシン、ピペミド酸、スルバクタム、クラブリン酸、β-ブロモペニシラン酸、β-クロロペニシラン酸、6-アセチルメチレン-ペニシラン酸、セフォキサゾール、スルタンピシリン、アディノシリン及びスルバクタムのホルムアルデヒド・フードラートエステル、タゾバクタム、アズトレオナム、スルファゼチン、イソスルファゼチン、ノルカディシン、m-カルボキシフェニル、フェニルアセトアミドホスホン酸メチル、クロルテトラサイクリン、オキシテトラサイクリン、テトラサイクリン、デメクロサイクリン、ドキシサイクリン、メタサイクリン、並びにミノサイクリンが挙げられる。
［培地組成物の製造方法］
　上記ナノファイバーを、培養対象の細胞のタンパク質産生及び／又は増殖を促進できる濃度となるように、細胞培養用の液体培地と混合することにより、本発明に用いる培地組成物を製造することができる。
　当該ナノファイバーの形状は、粉末、錠剤、丸剤、カプセル剤、顆粒剤のような製剤化された固体、適切な生理的な水性溶媒中の分散液のような液体、又は基板や単体に結合させた状態であり得る。製剤化される際の添加物としては、p-ヒドロキシ安息香酸エステル類等の防腐剤；乳糖、ブドウ糖、ショ糖、マンニット等の賦形剤；ステアリン酸マグネシウム、タルク等の滑沢剤；ポリビニルアルコール、ヒドロキシプロピルセルロース、ゼラチン等の結合剤；脂肪酸エステル等の界面活性剤；グリセリン等の可塑剤等が挙げられる。これらの添加物は上記のものに限定されることはなく、当業者が利用可能であれば自由に選択することができる。滅菌方法は特に制限はなく、例えば、放射線滅菌、エチレンオキサイドガス滅菌、オートクレーブ滅菌、フィルター滅菌等が挙げられる。
　好ましい態様において、上記ナノファイバーの生理的な水性溶媒中の分散液と、液体培地とを混合することにより、本発明に用いる培地組成物を調製する。該分散液は、滅菌（オートクレーブ、ガンマ線滅菌等）されていてもよい。あるいは、該分散液と、粉末培地を水に溶かして調製した液体培地（培地の水溶液）とを混合した後に、滅菌して使用してもよい。該分散液と液体培地の滅菌は、混合する前に、別々に行ってもよい。水性溶媒の例としては、水、ジメチルスルホキシド（DMSO）などが挙げられるが、これらに限られるわけではない。水性溶媒としては、水が好ましい。水性溶媒中には、適切な緩衝剤や塩が含まれていてもよい。上記ナノファイバーの分散液は、本発明に用いる培地組成物を調製するための培地添加剤として有用である。
　混合比率は、ナノファイバーの分散液：液体培地（培地の水溶液）が、通常1：99～99：1、好ましくは10：90～90：10、より好ましくは、20：80～80：20である。
　ナノファイバーを含有する培地組成物の製造方法を例示するが、本発明はこれによって限定されるものではない。ナノファイバーをイオン交換水あるいは超純水に添加する。そして、全体が均一な状態に分散されるまで室温にて撹拌した後、滅菌（例えば、121℃にて20分でのオートクレーブ滅菌）を行う。静置培養に使用する任意の培地を撹拌（例えば、ホモミキサー等）しながら、当該培地に前記滅菌後のナノファイバー分散液を添加し、当該培地と均一になるように混合する。本水溶液と培地の混合方法は特に制限はなく、例えばピペッティング等の手動での混合、マグネチックスターラーやメカニカルスターラー、ホモミキサー、ホモジナイザー等の機器を用いた混合が挙げられる。
　一態様において、上述のナノファイバーを含有する培地組成物は、細胞の維持や培養が可能な温度範囲（例えば、0～40℃）の少なくとも1点において、細胞の浮遊静置が可能である。本発明の培地組成物は、好ましくは25～37℃の温度範囲の少なくとも1点において、最も好ましくは37℃において、細胞の浮遊静置が可能である。当該培地組成物は、例えば、WO 2015/111686 A1に記載された方法により製造することができる。
［培養方法］
　本発明は、上記培地組成物中、細胞を、ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養する方法を提供するものである。
　本発明で用いるナノファイバーは、細胞及び／又は組織を生体外で培養した時に、当該細胞及び／又は組織を、当該ナノファイバーを含有する液体中で浮遊させる効果（好ましくは浮遊静置させる効果）を示すものである（WO 2015/111686 A1）。従って、目的とする細胞を、上記培地組成物中で培養すると、該細胞は培地組成物中に分散されたナノファイバーに付着し、撹拌や振とう操作等の物理的撹乱がなくても、細胞を当該液体培地組成物中で均一に分散し尚且つ浮遊状態を維持しながら、培養することが可能である。このように、上記培地組成物を用いると、撹拌や振とう操作等の物理的撹乱がなくても、細胞の浮遊培養が可能であり、それにより細胞増殖が促進される（WO 2015/111686 A1）。従来の浮遊培養法では、撹拌や振とう操作を伴う場合、細胞に対するせん断力が働くため、細胞の増殖率や回収率が低い、或いは細胞の機能が損なわれてしまうと考えられていたが、上述のナノファイバーを含む培地組成物中での細胞の浮遊培養を、敢えて物理的撹乱条件下で行うと、驚くべきことに、静置浮遊培養と比較して、細胞増殖が顕著に促進し、タンパク質の産生が顕著に亢進する。
　物理的撹乱条件としては、撹拌、振とう、回転等が挙げられるが、これらに限定されない。撹拌は、撹拌子（スターラー）やスクリューによって、細胞と培地とを混ぜ合わせることにより行われる。振とうは、一定の頻度で培養容器を振り動かし、細胞と培地とを混ぜ合わせることにより行われる。好ましい物理的撹乱条件としては、例えば、20～150rpm、好ましくは50～130rpm、より好ましくは80～120rpm、より更に好ましくは90～110rpm（例えば、100rpm）での振とうを挙げることができる。該振とうは、例えば、EYELA Multishaker MMS (Tokyo Rikakikai Co. Ltd.)により行うことができる。
　また、本発明の培養方法を用いると、細胞が効率よく増殖するため、本発明の培養方法は、細胞の増殖方法又は細胞の増殖促進方法として優れている。本発明の方法を用いて、細胞を培養すると、細胞は、培養容器に接着せずに、培地組成物中に分散されたナノファイバーに付着し、培養容器の底面のみに偏在せずに、三次元的な広がりをもって分散し、更に、物理的撹乱が加わることにより、増殖が促進される。特に、ナノファイバーとしてキチンナノファイバーを用いると、細胞がキチンナノファイバーに付着し、そこを足場として強力に増殖し、その結果、増殖した細胞が、ぶどうの房状にナノファイバー上に連なる状態となる。この増殖促進効果には、細胞及び／又は組織を浮遊させる（即ち、細胞や組織の培養容器への接着を回避する）のに十分な濃度のナノファイバーが培地組成物中に含まれていればよく、浮遊静置（即ち、外部からの圧力、振動、振とう、回転操作等を伴わずに細胞及び／又は組織が液体培地組成物中で均一に分散し尚且つ浮遊状態にあること）が可能であることは必須ではない。例えば、キチンナノファイバーの場合、浮遊作用発現に十分な0.0001％（重量／容量）以上、好ましくは、0.003％（重量／容量）以上の濃度であれば、安定した浮遊静置培養を可能にする0.03％（重量／容量）以下の濃度（例、0.025％（重量／容量）以下、0.02％（重量／容量）以下）であっても、増殖促進効果が奏される。
　ナノファイバーの中でも、とりわけキチンナノファイバーは、細胞増殖促進効果に優れている。
　本発明の培養方法においては、浮遊細胞及び接着細胞のいずれの細胞も用いることができる。接着細胞は、生育・増殖に足場を必要とする細胞である。浮遊細胞は、生育・増殖に足場を必要としない細胞である。本発明の培養方法においては、好ましくは接着細胞が用いられる。本発明の方法において、接着細胞を用いると、接着細胞が培養容器の底面に接着せずに、培養容器の底面のみに偏在せずに、三次元的な広がりをもって分散し、ナノファイバーに付着した状態で増殖する。特に、ナノファイバーとしてキチンナノファイバーを用いると、細胞がキチンナノファイバーに付着し、そこを足場として強力に増殖し、その結果、増殖した細胞が、ぶどうの房状にナノファイバー上に連なる状態となる。そのため、接着細胞の浮遊培養が可能となる。また、その結果、培養容器の底面へ接着させた状態で培養した場合よりも、接着細胞の増殖が促進される。また、培養容器の底面へ接着させた状態で培養した場合よりも、高い密度で接着細胞を培養することができる。
　本発明の培養方法においては、接着細胞の浮遊培養が可能なので、本発明の培養方法により接着細胞を浮遊培養した後、培養容器からの細胞の剥離操作を要することなく、新鮮な本発明の培地組成物を培養後の培養物に単に添加するか、新鮮な本発明の培地組成物へ、培養後の培養物の全部又は一部を添加することのみで接着細胞を継代することが可能である。本発明は、このような接着細胞の継代培養方法をも提供する。従って、本発明の継代培養方法を用いることにより、接着細胞を、培養容器からの細胞の剥離操作を行うことなく、継代培養することができる。また、本発明の継代培養方法を用いることにより、培養容器からの細胞の剥離操作を行うことなく、接着細胞の培養スケールを拡大することができる。培養容器からの細胞の剥離操作としては、キレート剤（例、EDTA）及び／又はタンパク質分解酵素（例、トリプシン、コラゲナーゼ）による処理が挙げられる。本発明の継代培養方法は、培養容器からの細胞の剥離操作に感受性が高い接着細胞（例えば、剥離操作により生存性が低下する接着細胞、剥離操作により形質が変わりやすい接着細胞）の継代培養に有利である。培養容器からの細胞の剥離操作に感受性が高い接着細胞としては、ヒト多能性幹細胞；ヒト前駆細胞；肝細胞、腎細胞、軟骨細胞、血管細胞および脂肪細胞などの組織から調製する初代細胞；MDCK細胞、HEK293細胞およびCHO細胞などの生物医薬品（医薬品用タンパク質）の生産細胞等が挙げられるが、これらに限定されない。
　本発明の培養方法を用いると、高い密度で接着細胞を培養することができ、細胞を効率よく増殖することが可能であり、タンパク質産生効率を上昇させることができる。従って、本発明の培養方法は、インビトロ細胞培養によるタンパク質の生産に有用である。目的とするタンパク質産生能を有する細胞を、上述のナノファイバーを含有する培地組成物中で、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養に付し、培養物中から、当該タンパク質を単離することにより、当該タンパク質物質を得ることが出来る。タンパク質としては、抗体、酵素（ウロキナーゼ等）、ホルモン（インシュリン等）、サイトカイン（インターフェロン、インターロイキン、腫瘍壊死因子、コロニー刺激因子、成長因子等）、ワクチンの抗原、その他の生理活性タンパク質を挙げることができるが、これらに限定されない。目的とするタンパク質を産生する細胞には、皮膚細胞、軟骨細胞、肝細胞、膵臓細胞、腎細胞等の非形質転換細胞や、目的とするタンパク質をコードする遺伝子や該タンパク質の生合成に関与する遺伝子を導入した形質転換細胞が含まれる。目的とするタンパク質をコードする遺伝子や該タンパク質の生合成に関与する遺伝子は外因性遺伝子であり得る。目的とするタンパク質産生能を有する細胞は、接着細胞であっても浮遊細胞であってもよいが、好ましくは接着細胞である。目的とするタンパク質産生能を有する細胞は、好適には、該タンパク質を細胞外へ分泌する細胞である。目的とするタンパク質産生能を有する細胞としては、具体的には、目的とするタンパク質をコードする遺伝子や該タンパク質の生合成に関与する遺伝子を導入した、HEK293、CHO-K1、BHK-21、MDCK、Vero、HepG2、MCF-7等を挙げることができるが、これらに限定されない。組み換えタンパク質の生産に使用される細胞は当業者に周知であり、これらの細胞を適宜本発明の方法において用いることが出来る。培養スケールの拡大に際しては、上述のように、培養容器からの細胞の剥離操作を行うことなく、新鮮な上記ナノファイバーを含有する培地組成物を培養後の培養物に添加するか、新鮮なナノファイバーを含有する培地組成物へ、培養後の培養物の全部又は一部を添加してもよい。目的とするタンパク質を培養物から単離するにあたり、培養物から細胞を除く必要があるが、本発明の方法においては、細胞がナノファイバーに付着した状態で本が培地組成物中に浮遊しているので、遠心分離やろ過処理等の簡便な方法で細胞を除去することができる。また、培地組成物中のナノファイバーも、遠心分離やろ過処理等の簡便な方法で除去することができる。タンパク質を培養物から単離する方法は、当業者に周知であり、例えばクロマトグラフィー（例、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー等のクロマトグラフィー）等の、生理活性物質の生化学的な分離精製方法を適用可能である。
　本発明の培養方法を用いて細胞を培養する際には、細胞の培養に一般的に用いられるシャーレ、フラスコ、プラスチックバック、テフロン（登録商標）バック、ディッシュ、ペトリデッシュ、組織培養用ディッシュ、マルチディッシュ、マイクロプレート、マイクロウエルプレート、マルチプレート、マルチウエルプレート、チャンバースライド、チューブ、トレイ、培養バック、ローラーボトル等の培養器材を用いて培養することが可能である。これらの培養器材の材質は特に制限されないが、例えば、ガラス、ポリ塩化ビニル、セルロース系ポリマー、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート、ポリカーボネート、ポリスルホン、ポリウレタン、ポリエステル、ポリアミド、ポリスチレン、ポリプロピレン等のプラスチック等が挙げられる。また、これらのプラスチックに対して種々の表面処理（例えば、プラズマ処理、コロナ処理等）を施してもよい。更に、これらの培養器材に対しては、予め細胞外マトリックスや細胞接着分子などをコーティングしてもよい。
　細胞及び／又は組織の培養は、機械的な制御下のもと閉鎖環境下で細胞播種、培地交換、細胞画像取得、培養細胞回収を自動で実行し、pH、温度、酸素濃度などを制御しながら、高密度での培養が可能なバイオリアクターや自動培養装置によって行うこともできる。これらの装置を用いて培養の途中に新しい培地を補給し、要求する物質を過不足なく細胞及び／又は組織に供給する手法として、流加培養、連続培養及び灌流培養があるが、いずれの手法も本発明の培養方法に用いることができる。
　細胞及び／又は組織を培養する際の温度は、動物細胞であれば通常25乃至39℃、好ましくは33乃至39℃（例、37℃）である。CO2濃度は、通常、培養の雰囲気中、4乃至10体積％であり、4乃至6体積％（例、5体積％）が好ましい。培養期間は通常3乃至35日間、好ましくは7乃至20日間、より好ましくは10乃至14日であるが、培養の目的に合わせて自由に設定すればよい。植物細胞の培養温度は、通常20乃至30℃であり、光が必要であれば照度2000～8000ルクスの照度条件下にて培養すればよい。培養期間は通常3乃至70日間であるが、培養の目的に合わせて自由に設定すればよい。本発明の方法においては、全培養期間を通じて、物理的撹乱条件下、浮遊培養を実施することが好ましい。
　本発明の方法で細胞を培養する際には、本発明の培養組成物に対して別途調製した細胞を添加し、均一に分散される様に混合すればよい。その際の混合方法は特に制限はなく、例えばピペッティング等の手動での混合、スターラー、ヴォルテックスミキサー、マイクロプレートミキサー、振とう機等の機器を用いた混合が挙げられる。混合後、物理的撹乱条件下で、浮遊培養を実施する。また、培養期間において培地組成物の交換が必要となった際には、遠心やろ過処理を行うことにより細胞と培地組成物を分離した後、新鮮なナノファイバーを含む培地組成物を細胞に添加すればよい。或いは、遠心やろ過処理を行うことにより細胞を適宜濃縮した後、新鮮なナノファイバーを含む培地組成物をこの濃縮液に添加すればよい。例えば、遠心する際の重力加速度（G）は100乃至400Gであり、ろ過処理をする際に用いるフィルターの細孔の大きさは10μm乃至100μmであるが、これらに制限されることは無い。また、目的とする細胞に特異的に結合する抗体を表面上にコーティングした磁性微粒子を用いて、磁力により培養した細胞を分離することができる。この様な磁性微粒子の例としては、ダイナビーズ（ヴェリタス社製）、MACSマイクロビーズ（ミルテニーバイオテク社製）、BioMag（テクノケミカル社製）等が挙げられる。これらの培地組成物の交換は、機械的な制御下のもと閉鎖環境下で実行が可能なバイオリアクターや自動培養装置によって行うこともできる。
　以下に本発明の培地組成物の実施例を具体的に述べることで、本発明をさらに詳しく説明する。以下の実施例に示す材料、使用量、割合、処理内容及び処理手順は、本発明の趣旨を逸脱しない限り適宜変更することができる。したがって、本発明の範囲は以下に示す具体例に解釈されるべきものではない。
（試験例1：キチンナノファイバーを用いた3D培養におけるHEK293細胞増殖および振盪効果）
　WO 2015/111686 A1に記載の方法に準じて調製したキチンナノファイバー（バイオマスナノファイバー BiNFi-S（ビンフィス） 2質量％、株式会社スギノマシン）を1％（w/v）となるように超純水（Milli-Q水）に懸濁した後、90℃にて加熱しながらの撹拌により溶解し、本水溶液を121℃で20分オートクレーブ滅菌した。無血清培地SFM Transfx293培地（HyClones社製）に終濃度0.01％（w/v）、0.1％のキチンナノファイバーを添加した培地組成物、そして上記基材を含まない未添加培地組成物を調製した。引き続き、培養したヒト胎児腎細胞株HEK293（DSファーマバイオメディカル社製）を、133333細胞/mLとなるように上記のキチンナノファイバーを添加した培地組成物に播種した後、50mL mini bioreactor（コーニング社製、431720）に15mLになるように分注した。各reacterはCO2インキュベーター（37℃、5％CO2）内にて静置状態あるいは振盪状態（cfg100rpm）で培養し、10日間継続した。0、10日目の培養液をピペッティングで懸濁し、その細胞懸濁液100μLに対してATP試薬100μL（CellTiter-GloTMLuminescent Cell Viability Assay, Promega社製）を添加し反応させ、約10分間室温で静置した後、FlexStation3（Molecular Devices社製）にて発光強度（RLU値）を測定し、培地のみの発光値を差し引き4点の平均値として生細胞の数を測定した。
　その結果、キチンナノファイバーを添加した培地組成物中でHEK293細胞を50mL mini bioreactor中で培養すると、キチンナノファイバー添加による細胞増殖促進作用が認められた。さらに振盪とともに培養するとキチンナノファイバーの増殖促進効果はさらに向上した。各培養でのRLU値（ATP測定、発光強度）を表1に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（試験例2：キチンナノファイバーを用いた3D培養におけるHEK293細胞増殖作用）
　WO 2015/111686 A1に記載の方法に準じて調製したキチンナノファイバー（バイオマスナノファイバー BiNFi-S（ビンフィス） 2質量％、株式会社スギノマシン）を1％（w/v）となるように超純水（Milli-Q水）に懸濁した後、90℃にて加熱しながらの撹拌により溶解し、本水溶液を121℃で20分オートクレーブ滅菌した。無血清培地SFM Transfx293培地（HyClones社製）に終濃度0.01％（w/v）のキチンナノファイバーを添加した培地組成物、そして上記基材を含まない未添加培地組成物を調製した。引き続き、培養したヒト胎児腎細胞株HEK293（DSファーマバイオメディカル社製）を、13333細胞/mLあるいは33333細胞/mLとなるように上記のキチンナノファイバーを添加した培地組成物に播種した後、50mL mini bioreactor（コーニング社製、431720）に15mLになるように分注した。各reacterはCO2インキュベーター（37℃、5％CO2）内にて振盪状態（cfg100rpm）で培養し、7日間および14日間継続した。0、7、14日目の培養液をピペッティングで懸濁し、その細胞懸濁液100μLに対してATP試薬100μL（CellTiter-GloTMLuminescent Cell Viability Assay, Promega社製）を添加し反応させ、約10分間室温で静置した後、FlexStation3 （Molecular Devices社製）にて発光強度（RLU値）を測定し、培地のみの発光値を差し引き4点の平均値として生細胞の数を測定した。
　その結果、キチンナノファイバーを添加した培地組成物中でHEK293細胞を50mL mini bioreactor中で培養すると、播集数が少ない低密度培養においても、キチンナノファイバー添加による細胞増殖促進作用が認められた。7日目における培養でのRLU値（ATP測定、発光強度）を表2に、14日目における培養でのRLU値（ATP測定、発光強度）を表3に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
（参考例1：IFN-β産生HEK293細胞の調製）
　以下のようにしてヒトインターフェロンβ（IFN-β）遺伝子をHEK293に組み込み、培養上清中にIFN-βを産生する細胞株を作製した。
　まず、IFN-β生産細胞であるヒト皮膚由来正常二倍体線維芽細胞株TIG-108からの、IFN-β遺伝子の取得を行った。細胞数5×106 cellsのTIG-108を400×gで5分間遠心し、上清を除いた後、核酸抽出試薬ISOGEN（NIPPON GENE社）1mL、クロロホルム（和光純薬）0.2mLを加えDNA、タンパク質を有機層に沈殿させた。12000×gで15分遠心を行った後、水相（RNA層）を取得し、これにイソプロパノール（和光純薬）0.5mLを加え、12000×gで15分遠心後、RNAを沈殿させた。沈殿させたRNAを滅菌水に溶解した後、First-Stand Reaction Mix Beads（Amersham Bioscience社）とpd(N)6 Randam Hexamer（Amersham Bioscience社）1μLを加え、室温で1分間静置後、37℃で60分間の逆転写反応を行い、cDNAを合成した。
　続いて、IFN-β遺伝子のPCR増幅を試みた。まず、滅菌水 35.5μL、Blend Taq buffer 5μL、dNTP mix 4μL、Primer F(5’-ATGACCAACAAGTGTCTCCT-3’；配列番号1）1μL（10 pmoles）、Primer R（5’-TCAGTTTCGGAGGTAACCTG-3’；配列番号2）1μL（10 pmoles）、Taq DNA polymerase 0.25μL（Takara Bio社）、cDNA 3μL（50ng）を0.2mLチューブに混合した。このチューブをProgram Temp. Control System（ASTEC社）に入れ、PCRを行った。PCR産物を1％アガロースゲル電気泳動で確認した後、Freeze’N Squeese スピンカラム（BIO RAD社）で精製した。精製されたPCR産物2μLと、pTARGETベクター1μL（50ng）を、TaKaRa DNA Ligation Kit（Takara Bio社）3μLと混合し、16℃、30分間のライゲーション反応を行った。続いて、ライゲーション後のpTARGETベクターをヒートショック反応によりJM109細胞（Promega社）に導入し、LB培地プレートに播種した。生育したコロニーを取得し、LB培地1mL、37℃で一晩、振盪培養を行った後、QIAprep Spin Miniprep Kit（QIAGEN社）により、pTARGETベクターを抽出した。続いて、IFN-β遺伝子配列上に認識配列が存在する制限酵素PstI（TOYOBO社）でpTARGETベクターを切断することで、IFN-β遺伝子がpTARGETベクターにクローニングされたことを確認した。続いて、HEK293細胞株を10％ウシ胎児血清（Fetal bovine serum FBS、トレース社）含有-E-RDF（10％ FBS-E-RDF）培地で培養後、5×106 cells/mLに調製し、PBSに置き換えた。次に、IFN-β遺伝子がpTARGETベクターにクローニングされたことを確認した。
　IFN-β遺伝子が組み込まれたpTARGETベクターを3μg添加し、0.75kV/cm、350μFの条件で電圧を印可した。10％ FBS-E-RDF培地にて回復培養を行い、96穴培養プレート（Becton＆Dickinson社）に100μL/well分注した。24時間インキュベートした後、G-418（Geneticin, Invitrogen社）を終濃度500μg/mL添加した10％FBS-E-RDF培地で遺伝子導入した細胞を選択培養した。その後、増殖が確認できた細胞については、IFN-β遺伝子の発現確認を行うことにより、IFN-β産生HEK293細胞を作製した。
（試験例3：キチンナノファイバーを用いた3D培養におけるIFN-β産生HEK293細胞の増殖とIFN-βの分泌）
　WO 2015/111686 A1に記載の方法に準じて調製したキチンナノファイバー（バイオマスナノファイバー BiNFi-S（ビンフィス） 2質量％、株式会社スギノマシン）を1％（w/v）となるように超純水（Milli-Q水）に懸濁した後、90℃にて加熱しながらの撹拌により溶解し、本水溶液を121℃で20分オートクレーブ滅菌した。無血清で懸濁培養用の培地であるCD293培地（Thermofisher Scientific社製）に終濃度0.003％、0.01％、0.03％（w/v）のキチンナノファイバーを添加した培地組成物、そして上記基材を含まない未添加培地組成物を調製した。引き続き、培養したIFN-β産生HEK293細胞を、133333細胞/mLとなるように上記のキチンナノファイバーを添加した培地組成物に播種した後、50mL mini bioreactor（コーニング社製、431720）に15mLになるように分注した。各reacterはCO2インキュベーター（37℃、5％CO2）内にて振盪状態（cfg100rpm）で培養し、7日間および14日間継続した。0、7、14日目の培養液をピペッティングで懸濁し、その細胞懸濁液100μLに対してATP試薬100μL（CellTiter-GloTM Luminescent Cell Viability Assay, Promega社製）を添加し反応させ、約10分間室温で静置した後、FlexStation3（Molecular Devices社製）にて発光強度（RLU値）を測定し、培地のみの発光値を差し引き4点の平均値として生細胞の数を測定した。また7、14日目の細胞培養液を遠心し（200G、3分間）、培養上清を分注した。
［酵素抗体法によるIFN-β産生量の測定］
　培養上清中のIFN-β産生量を酵素抗体法（ELISA；enzyme-linked immunosorbent assay）を用いて測定した。ヤギ抗ヒトIFN-β抗体（R＆D System INC.）をリン酸緩衝食塩水（PBS）で1μg/mLとなるように希釈し96穴イムノプレートに100μL/wellで分注してプレートコートした。室温下で1時間静置した後、非特異的反応を防ぐために、PBSにウシ血清アルブミン（BSA； ICN）を1％に希釈した溶液（1％BSA/PBS）を150μL/wellで分注し、ブロッキングを行った。その後、室温下で1時間静置し、定量するIFN-β抗体を含む培養上清を50μL/wellで分注した。また、同様に0μg/mL～200μg/mLの標準溶液を50μL/well分注し、室温下で1時間静置した。その後、マウス抗ヒトIFN-β抗体（R＆D System INC.）を1％ BSA/PBSで1μg/mLとなるように希釈し、100μL/wellで分注した後、室温下で1時間静置した。その後、西洋わさび由来ペルオキシターゼ標識ラット抗マウスIgG抗体を1％ BSA/PBS溶液で、約6，000倍に希釈し、100μL/wellで分注して室温下で1時間静置した。発色液として10％3,3',5,5'-Tetramethylbenzidine（TMB）発色液（フナコシ社製、＃TMBW-100-0）を100μL/wellで分注し、発色を確認した後にSTOP Solution（KPL社製、＃50-85-04）で反応を停止後、450nmの波長により吸光度を測定した。各反応の間ではPBSにポリエチレン（20）ソルビタンモノラウレート（Tween20）（和光純薬）を0.05％濃度に希釈した溶液で3回洗浄した。
　その結果、キチンナノファイバーを含む培地組成物を用いてIFN-β産生HEK293細胞を50mL mini bioreactor中で培養すると、キチンナノファイバー添加による細胞増殖促進作用が認められた。また培養上清中にヒトIFN-β量が増加していた。本結果より、キチンナノファイバーを含む培地組成物中で振盪培養を行うことにより、細胞増殖とIFN-β生産が共に亢進することが明らかとなった。7日目における培養でのRLU値（ATP測定、発光強度）を表4に、14日目における培養でのRLU値（ATP測定、発光強度）を表5に、ヒトIFN-β分泌量（ng/mL）を表6に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
（試験例4：キチンナノファイバーを用いた3D培養におけるMDCK細胞増殖および振盪効果）
　WO 2015/111686 A1に記載の方法に準じて調製したキチンナノファイバー（バイオマスナノファイバー BiNFi-S（ビンフィス） 2質量％、株式会社スギノマシン）を1％（w/v）となるように超純水（Milli-Q水）に懸濁した後、90℃にて加熱しながらの撹拌により溶解し、本水溶液を121℃で20分オートクレーブ滅菌した。無血清培地SFM Transfx293培地（HyClones社製）に終濃度0.01％（w/v）、0.1％のキチンナノファイバーを添加した培地組成物、そして上記基材を含まない未添加培地組成物を調製した。引き続き、培養したイヌ腎臓尿細管上皮細胞株MDCK（DSファーマバイオメディカル社製）を、133333細胞/mLとなるように上記のキチンナノファイバーを添加した培地組成物に播種した後、50mL mini bioreactor（コーニング社製、431720）に15mLになるように分注した。各reacterはCO2インキュベーター（37℃、5％CO2）内にて静置状態あるいは振盪状態（cfg100rpm）で培養し、10日間継続した。0、10日目の培養液をピペッティングで懸濁し、その細胞懸濁液100μLに対してATP試薬100μL（CellTiter-GloTMLuminescent Cell Viability Assay、Promega社製）を添加し反応させ、約10分間室温で静置した後、FlexStation3（Molecular Devices社製）にて発光強度（RLU値）を測定し、培地のみの発光値を差し引き4点の平均値として生細胞の数を測定した。
　その結果、キチンナノファイバーを含む培地組成物を用いてMDCK細胞を50mL mini bioreactor中で培養すると、キチンナノファイバー添加による細胞増殖促進作用が認められた。さらに振盪とともに培養するとキチンナノファイバーの細胞増殖促進効果はさらに向上した。各培養でのRLU値（ATP測定、発光強度）を表7に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　本発明によれば、細胞を効率的に増殖させ、酵素、細胞増殖因子、抗体等のタンパク質の大量生産を実施することができる。
　ここで述べられた特許および特許出願明細書を含む全ての刊行物に記載された内容は、ここに引用されたことによって、その全てが明示されたと同程度に本明細書に組み込まれるものである。
　本出願は、日本で出願された特願2016-075251（出願日：2016年4月4日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (10)

  1. 　ナノファイバーを含有する培地組成物中、タンパク質産生能を有する細胞を、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養することを含む、タンパク質の産生方法。
  2. 　該ナノファイバーが、セルロース、キチン及びキトサンからなる群から選択されるいずれかの非水溶性多糖類から構成される、請求項1に記載の方法。
  3. 　該ナノファイバーが、キチンナノファイバーである、請求項1に記載の方法。
  4. 　培地組成物中のキチンナノファイバーの含有量が、0.003～0.1％（重量／容量）である、請求項3に記載の方法。
  5. 　該細胞が接着細胞である、請求項1～4のいずれか1項に記載の方法。
  6. 　ナノファイバーを含有する培地組成物中、細胞を、該ナノファイバーに付着した状態で、物理的撹乱条件下、浮遊培養することを含む、細胞の増殖方法。
  7. 　該ナノファイバーが、セルロース、キチン及びキトサンからなる群から選択されるいずれかの非水溶性多糖類から構成される、請求項6に記載の方法。
  8. 　該ナノファイバーが、キチンナノファイバーである、請求項6に記載の方法。
  9. 　培地組成物中のキチンナノファイバーの含有量が、0.003～0.1％（重量／容量）である、請求項8に記載の方法。
  10. 　該細胞が接着細胞である、請求項6～9のいずれか1項に記載の方法。
PCT/JP2017/014064 2016-04-04 2017-04-04 タンパク質産生方法 WO2017175751A1 (ja)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020187031135A KR20190005844A (ko) 2016-04-04 2017-04-04 단백질 생산 방법
US16/091,335 US20190153498A1 (en) 2016-04-04 2017-04-04 Protein production method
EP17779129.0A EP3434782B1 (en) 2016-04-04 2017-04-04 Protein production method
JP2018510611A JPWO2017175751A1 (ja) 2016-04-04 2017-04-04 タンパク質産生方法
CN201780022220.6A CN109219661A (zh) 2016-04-04 2017-04-04 蛋白质生产方法

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2016-075251 2016-04-04
JP2016075251 2016-04-04

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2017175751A1 true WO2017175751A1 (ja) 2017-10-12

Family

ID=60001370

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2017/014064 WO2017175751A1 (ja) 2016-04-04 2017-04-04 タンパク質産生方法

Country Status (7)

Country Link
US (1) US20190153498A1 (ja)
EP (1) EP3434782B1 (ja)
JP (1) JPWO2017175751A1 (ja)
KR (1) KR20190005844A (ja)
CN (1) CN109219661A (ja)
TW (1) TW201738256A (ja)
WO (1) WO2017175751A1 (ja)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020045620A1 (ja) * 2018-08-31 2020-03-05 日産化学株式会社 接着性細胞の浮遊培養用培地組成物
WO2020054755A1 (ja) * 2018-09-11 2020-03-19 日産化学株式会社 分離デバイスおよびそれを用いて分離対象物を分離する方法
WO2021002448A1 (ja) 2019-07-04 2021-01-07 日産化学株式会社 接着性細胞を浮遊培養するための培地組成物の製造方法
WO2023063417A1 (ja) * 2021-10-15 2023-04-20 日産化学株式会社 撹拌を伴う接着性細胞の浮遊培養方法
WO2023063418A1 (ja) * 2021-10-15 2023-04-20 日産化学株式会社 接着性細胞のスフェアのサイズ及び／又は個数の制御方法

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62500001A (ja) * 1984-05-21 1987-01-08 リトウイン、ジャック 細胞増殖
JP2004141301A (ja) * 2002-10-23 2004-05-20 Techno Network Shikoku Co Ltd 生体材料、細胞培養器具、人工組織および人工臓器
JP2011107722A (ja) * 2001-03-15 2011-06-02 Innovia Films Ltd ラベル
JP2013067075A (ja) * 2011-09-22 2013-04-18 Toppan Printing Co Ltd 水膨潤機能を有するフィルムまたはシートの製造方法
JP2013066745A (ja) * 2005-10-05 2013-04-18 Loma Linda Univ Medical Center 血管創の閉鎖装置および方法
WO2015111686A1 (ja) * 2014-01-23 2015-07-30 日産化学工業株式会社 培地組成物

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6936457B1 (en) * 1990-04-03 2005-08-30 Merck & Co., Inc. DNA ENCODING HUMAN α AND β SUBUNITS OF NEURONAL NICOTINIC ACETYLCHOLINE RECEPTOR, CELLS TRANSFORMED THEREWITH, AND RECOMBINANT CELL LINE EXPRESSING A HUMAN α AND β SUBUNIT OF NEURONAL NICOTINIC ACETYLCHOLINE RECEPTOR
EP1707634A1 (en) * 2005-03-29 2006-10-04 Octapharma AG Method for isolation of recombinantly produced proteins
WO2009051439A2 (en) * 2007-10-18 2009-04-23 Amorepacific Corporation Method of identifying agents which modulate the activity of calcium-activated chloride channel
HRP20220796T1 (hr) * 2010-10-01 2022-10-14 ModernaTX, Inc. Ribonukleinske kiseline koje sadrže n1-metil-pseudouracil i njihove uporabe
WO2014017513A1 (ja) * 2012-07-24 2014-01-30 日産化学工業株式会社 培地組成物及び当該組成物を用いた細胞又は組織の培養方法
EP2889368B1 (en) * 2012-08-23 2019-12-18 Nissan Chemical Corporation Protein production accelerator

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62500001A (ja) * 1984-05-21 1987-01-08 リトウイン、ジャック 細胞増殖
JP2011107722A (ja) * 2001-03-15 2011-06-02 Innovia Films Ltd ラベル
JP2004141301A (ja) * 2002-10-23 2004-05-20 Techno Network Shikoku Co Ltd 生体材料、細胞培養器具、人工組織および人工臓器
JP2013066745A (ja) * 2005-10-05 2013-04-18 Loma Linda Univ Medical Center 血管創の閉鎖装置および方法
JP2013067075A (ja) * 2011-09-22 2013-04-18 Toppan Printing Co Ltd 水膨潤機能を有するフィルムまたはシートの製造方法
WO2015111686A1 (ja) * 2014-01-23 2015-07-30 日産化学工業株式会社 培地組成物

Cited By (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3845636A4 (en) * 2018-08-31 2022-02-23 Nissan Chemical Corporation MEDIUM COMPOSITION FOR SUSPENSION CULTURE OF ADHESIVE CELLS
KR20210053931A (ko) * 2018-08-31 2021-05-12 닛산 가가쿠 가부시키가이샤 접착성 세포의 부유 배양용 배지 조성물
CN112867788A (zh) * 2018-08-31 2021-05-28 日产化学株式会社 粘附性细胞的悬浮培养用培养基组合物
WO2020045620A1 (ja) * 2018-08-31 2020-03-05 日産化学株式会社 接着性細胞の浮遊培養用培地組成物
KR102661739B1 (ko) * 2018-08-31 2024-04-29 닛산 가가쿠 가부시키가이샤 접착성 세포의 부유 배양용 배지 조성물
WO2020054755A1 (ja) * 2018-09-11 2020-03-19 日産化学株式会社 分離デバイスおよびそれを用いて分離対象物を分離する方法
JPWO2020054755A1 (ja) * 2018-09-11 2021-08-30 日産化学株式会社 分離デバイスおよびそれを用いて分離対象物を分離する方法
JP7501365B2 (ja) 2018-09-11 2024-06-18 日産化学株式会社 分離デバイスおよびそれを用いて分離対象物を分離する方法
WO2021002448A1 (ja) 2019-07-04 2021-01-07 日産化学株式会社 接着性細胞を浮遊培養するための培地組成物の製造方法
KR20220038364A (ko) 2019-07-04 2022-03-28 닛산 가가쿠 가부시키가이샤 접착성 세포를 부유 배양하기 위한 배지 조성물의 제조 방법
WO2023063417A1 (ja) * 2021-10-15 2023-04-20 日産化学株式会社 撹拌を伴う接着性細胞の浮遊培養方法
WO2023063418A1 (ja) * 2021-10-15 2023-04-20 日産化学株式会社 接着性細胞のスフェアのサイズ及び／又は個数の制御方法
KR20240110803A (ko) 2021-10-15 2024-07-16 닛산 가가쿠 가부시키가이샤 교반을 수반하는 접착성 세포의 부유 배양 방법

Also Published As

Publication number Publication date
EP3434782A4 (en) 2019-03-20
US20190153498A1 (en) 2019-05-23
CN109219661A (zh) 2019-01-15
EP3434782A1 (en) 2019-01-30
KR20190005844A (ko) 2019-01-16
EP3434782B1 (en) 2020-03-25
TW201738256A (zh) 2017-11-01
JPWO2017175751A1 (ja) 2019-02-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7248166B2 (ja) 培地組成物
WO2017175751A1 (ja) タンパク質産生方法
WO2018182016A1 (ja) ナノファイバーを用いた細胞培養
JP7283621B2 (ja) 接着性細胞の浮遊培養用培地組成物
WO2021002448A1 (ja) 接着性細胞を浮遊培養するための培地組成物の製造方法
WO2023063418A1 (ja) 接着性細胞のスフェアのサイズ及び／又は個数の制御方法
KR20240110803A (ko) 교반을 수반하는 접착성 세포의 부유 배양 방법

Legal Events

Date Code Title Description
ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2018510611

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2017779129

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 20187031135

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2017779129

Country of ref document: EP

Effective date: 20181025

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 17779129

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1