JPWO2015064223A1 - ヌクレオシド誘導体又はその塩、ヌクレオシド誘導体の5’−リン酸エステル又はその塩、ヌクレオシド誘導体の3’−ホスホロアミダイト化物又はその塩、並びにポリヌクレオチド - Google Patents
ヌクレオシド誘導体又はその塩、ヌクレオシド誘導体の5’−リン酸エステル又はその塩、ヌクレオシド誘導体の3’−ホスホロアミダイト化物又はその塩、並びにポリヌクレオチド Download PDFInfo
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Abstract
Description
また、特許文献2には、イリノテカンやトポテカン等のカンプトテシン類に対して特異的に結合性する核酸アプタマー(人工核酸分子)の発明が開示されており、チミジン部位(C5位に結合)に炭素鎖を介してプリン構造を連結した修飾ヌクレオシド構造が優れた結合親和性を発揮することも報告されている。
即ち、本発明は結合親和性に優れる修飾ヌクレオシド構造を見出し、優れた核酸アプタマーを提供すること、並びに核酸アプタマーを製造するために有用な新規化合物を提供することを課題とする。
<1> 下記式(I−1)〜(I−6)の何れかの式で表されるヌクレオシド誘導体又はその塩。
(式(II−1)〜(II−4)中、R6はそれぞれ独立に水素原子(−H)、炭素数1〜6の炭化水素基、又はアミノ基の保護基を表す。)
<2> <1>に記載のヌクレオシド誘導体の5’−リン酸エステル又はその塩。
<3> <1>に記載のヌクレオシド誘導体の3’−ホスホロアミダイト化物又はその塩。
<4> <2>に記載の5’−リン酸エステル又はその塩、請求項3に記載の3’−ホスホロアミダイト化物又はその塩、又はこれらに標識物質を導入した標識ヌクレオチド誘導体を含む、ポリヌクレオチド合成用基質溶液。
<5> <4>に記載のポリヌクレオチド合成用基質溶液を含む、ポリヌクレオチド合成用試薬。
<6> <2>に記載の5’−リン酸エステル又はその塩、<3>に記載の3’−ホスホロアミダイト化物又はその塩、又はこれらに標識物質を導入した標識ヌクレオチド誘導体を合成用基質として用いることを特徴とする、ポリヌクレオチドの製造方法。
<7> ホスホロチオエート基を導入する工程を含む、<6>に記載のポリヌクレオチドの製造方法。
<8> <2>に記載のヌクレオシド誘導体の5’−リン酸エステル及び/又はそのホスホロチオエート体を構成単位として含むポリヌクレオチド。
<9> 核酸アプタマーである、<8>に記載のポリヌクレオチド。
<10> <8>又は<9>に記載のポリヌクレオチドを含む、ポリヌクレオチドライブラリー。
<11> <10>に記載のポリヌクレオチドライブラリーを用いて標的物質結合性ポリヌクレオチドを選択する工程を含む、核酸アプタマーの選択方法。
<12>下記(i)の修飾核酸の残基を含む核酸アプタマーを含む血管内皮細胞増殖因子結合剤。
<13>核酸アプタマーが一本鎖DNAである、<12>に記載の血管内皮細胞増殖因子結合剤。
<14>核酸アプタマーの長さが15〜100塩基である、<12>または<13>に記載の血管内皮細胞増殖因子結合剤。
<15>核酸アプタマーの配列が、配列番号6〜31、33〜40のいずれかの塩基番号21〜50の配列、または配列番号32の塩基番号21〜49の配列(これらの配列におけるTは上記(II)で表される化合物の残基を示す)を含む、<12>〜<14>のいずれかに記載の血管内皮細胞増殖因子結合剤。
<16>下記(i)の修飾核酸の残基を含む核酸アプタマーのライブラリーを用意する工程、およびライブラリーを血管内皮細胞増殖因子と反応させる工程、および血管内皮細胞増殖因子と結合した核酸アプタマーを選択して増幅する工程を含む、血管内皮細胞増殖因子結合剤のセレクション方法。
本発明の一態様であるヌクレオシド誘導体は、下記式(I−1)〜(I−6)の何れかの式で表されることを特徴とする。なお、かかるヌクレオシド誘導体から得られる塩も本発明の範囲に含まれるものとし、以下、ヌクレオシド誘導体とその塩を含めて「本発明のヌクレオシド誘導体等」と略す場合がある。
(式(II−1)〜(II−4)中、R6はそれぞれ独立に水素原子を、炭素数1〜6の炭化水素基、又はアミノ基の保護基を表す。)
基である場合の炭素数は、好ましくは2以上であり、好ましくは5以下、より好ましくは4以下である。
(上記式中、R’は水素原子、メチル基、又はエチル基を、R’’はヒドロキシル基(−OH)又はニトロ基(−NO2)を、Zは酸素原子又は硫黄原子を、aは1〜6の整数を表す。)
(2)アンモニウム基等の窒素原子含有官能基を含んだハロゲン化アルキルを準備し、プリン化合物のイミノ基を利用してハロゲン化アルキルの置換反応を進めることにより、窒素含有官能基を含んだもう1つの炭素鎖をプリン化合物に導入することができる。
(3)例えば、特開2007−056001号公報に記載されている方法によって、塩基部位にアクリル酸構造を導入したヌクレオシド誘導体を合成することができる。このアクリル酸構造と炭素鎖を導入したプリン化合物のアミノ基とのアミド化反応によって、本発明のヌクレオシド誘導体等を合成することができる。
本発明のヌクレオシド誘導体等は、結合親和性や標的多様性に優れる核酸アプタマーを製造するために有用な化合物であるが、本発明のヌクレオシド誘導体をリン酸化して得られるヌクレオチド、即ちヌクレオシド誘導体の5’−リン酸エステルも本発明の一態様である(以下、「本発明の5’−リン酸エステル」と略す場合がある。)。なお、本発明の5’−リン酸エステルから得られる塩も本発明の範囲に含まれるものとする。
本発明の5’−リン酸エステルは、例えば下記式(III−1)〜(III−6)の何れかの式で表すことができる。
本発明のヌクレオシド誘導体等は、結合親和性や標的多様性に優れる核酸アプタマーを製造するために有用な化合物であるが、ホスホロアミダイト法に利用するために、本発明のヌクレオシド誘導体をアミダイト化して得られる3’−ホスホロアミダイト化物も本発明の一態様である(以下、「本発明のホスホロアミダイト化物」と略す場合がある。)。なお、本発明のホスホロアミダイト化物から得られる塩も本発明の範囲に含まれるものとする。
本発明のホスホロアミダイト化物は、例えば下記式(IV−1)〜(IV−6)の何れかの式で表すことができる。
本発明の5’−リン酸エステル及びその塩、ホスホロアミダイト化物及びその塩、又はそれ並びにこれらに標識物質を導入した標識ヌクレオチド誘導体は、ポリヌクレオチドを合成するために有用な合成用基質であるが、これらの少なくとも1種を含むポリヌクレオチド合成用基質溶液、このポリヌクレオチド合成用基質溶液を含むポリヌクレオチド合成用試薬、さらにこれらを合成用基質として用いるポリヌクレオチドの製造方法も本発明の一態様である。
本発明のヌクレオシド誘導体等は、結合親和性や標的多様性に優れる核酸アプタマーを製造するために有用な化合物であるが、本発明のヌクレオシド誘導体等を用いて製造される核酸、即ち本発明の5’−リン酸エステル及び/又はそのホスホロチオエート体を構成単位として含むポリヌクレオチドも本発明の一態様である(以下、「本発明のポリヌクレオチド」と略す場合がある。)。なお、蛍光物質等の標識物質を導入した5’−リン酸エステルを構成単位として含む標識ポリヌクレオチドも本発明の範囲に含まれるものとする。
本発明のポリヌクレオチドは、例えば下記式(V−1)〜(V−6)の何れかの式で表すことができるヌクレオチド構造を少なくとも含むものが挙げられる。
また、本発明のポリヌクレオチドにおけるホスホロチオエート体構造は、公知のホスホロチオエート基の導入方法を適宜採用して形成することができる。
また、本発明のポリヌクレオチドの用途は特に限定されず、触媒、核酸アプタマー等の公知の用途に適宜利用することができるが、核酸アプタマーとして利用することが好ましい。例えば、アンチセンス分子やアンチジーン分子等の遺伝子発現を調節するための核酸医薬として利用することもできる。本発明のポリヌクレオチドは、優れた細胞膜透過性や遺伝子抑制作用、副作用の緩和、ヌクレアーゼ耐性を発揮することができ、有効な核酸医薬として利用できる。
本発明のポリヌクレオチドは、SELEX法等に使用するポリヌクレオチドライブラリーに利用することができるが、本発明のポリヌクレオチドを含むポリヌクレオチドライブラリー(以下、「本発明のポリヌクレオチドライブラリー」と略す場合がある。)、並びにこのポリヌクレオチドライブラリーを用いて標的物質結合性ポリヌクレオチドを選択する工程を含む核酸アプタマーの選択方法(以下、「本発明の選択方法」と略す場合がある。)も本発明の一態様である。
本発明の選択方法によって、種々の生体関連物質等に対する核酸アプタマーや特定反応を触媒するリボザイム等、実用可能性があるさまざまな機能性核酸をスクリーニングすることができる。すなわち、ランダムなポリヌクレオチドを複数合成し、その中から酵素活性などを指標に特定のポリヌクレオチドを選択することにより、生理活性を有するアプタマーやリボザイムを得ることができる。
VEGF結合剤として使用し得る核酸アプタマーは、(i)の修飾核酸残基に加えて、他の修飾核酸残基が含まれてもよい。
なお、VEGFに結合する能力が維持される限り、これらの配列において1〜数個、例えば、1、2または3個の塩基が置換、欠失、挿入等されてよい。また、VEGF結合能が維持される限り、5’側および/または3’側に任意の長さの任意の配列が付加されてよい。
例えば、本発明の核酸アプタマーと特開2013−40118に開示されたカンプトテシン類との結合に関与する核酸アプタマーを連結し、これに、カンプトテシン類を結合させることで、カンプトテシン類を腫瘍組織に到達させるための医薬を作製することができる。
1HNMR(400 MHz, CDCl3) δ3.18 (2H,q) 2.80 (2H,t) 1.45 (9H,s)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 161.4, calculated for [(M+H)+]= 161.1
1HNMR(400 MHz, CD3OD)δ3.81 (2H,t) 3.53 (2H,t) 3.49 (9H,s) 2.01 (4H,m)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 194.0, calculated for [(M)+]= 194.1
1HNMR(400 MHz, CD3OD)δ 8.23 (1H,s) 8.06(1H,s) 3.70 (2H,m) 3.42 (2H,t) 1.39 (9H,s)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 279.5, calculated for [(M+H)+]= 279.2
1HNMR(400 MHz, CD3OD)δ 8.27 (1H,s) 8.12(1H,s) 4.32 (2H,t) 3.69 (2H,m) 3.41 (2H,t) 3.12 (11H,s) 1.95 (2H,m)1.84 (2H,m) 1.40 (9H,s)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 392.3, calculated for [(M)+]= 392.3
1HNMR(400 MHz, CD3OD)δ 8.37 (1H,s) 8.22(1H,s) 4.34 (2H,t) 3.95 (2H,m) 3.42 (2H,t) 3.12 (11H,s) 1.96 (2H,m)1.85 (2H,m)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 292.4, calculated for [(M)+]= 292.2
[化合物6の合成]
1HNMR(400 MHz, D2O)δ 8.01 (1H,s)8.27 (1H,s) 7.93(1H,s) 7.90 (1H,s) 6.78 (1H,d) 6.54 (1H,d) 6.06 (1H,t) 4.28 (1H,q) 4.05 (2H,t) 3.88 (1H,q)3.69 (1H,q) 3.59 (1H,q)3.41 (2H,q) 3.13 (2H,t) 2.88 (11H,s) 2.30-2.14 (2H,m) 1.69 (2H,m)1.60 (2H,m)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 572.5, calculated for [(M)+]= 572.3
[化合物7の合成]
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 652.3, calculated for [(M)+]= 652.3
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 649.7, calculated for [(M-2H)-]= 650.3
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 702.1, calculated for [(M)+]= 702.3
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 699.5, calculated for [(M-2H)-]= 700.3
[化合物9(dUtaTP)の合成]
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 809.5, calculated for [(M-3H)-]= 809.6
1HNMR(400 MHz, CDCl3)δ 8.34 (1H,s)7.84 (2H,m) 7.76 (1H,s)7.72(2H,m) 4.25 (2H,t) 3.83−3.71(4H,m) 3.43 (2H,q) 1.94 (2H,m) 1.73 (2H,m) 1.41 (9H,s)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 480.2, calculated for [(M+H)+]=480.2
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 350.3, calculated for [(M+H)+]=350.2
1HNMR(400 MHz, CDCl3)δ 8.35 (1H,s)7.75 (1H,s) 4.25 (2H,t) 3.81 (2H,m) 3.52-3.41 (4H,m) 1.98 (2H,m) 1.64 (2H,m) 1.42 (9H,s)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 446.1, calculated for [(M+H)+]=446.2
1HNMR(400 MHz, CD3OD)δ 8.34 (1H,s)8.30 (1H,s) 4.34 (2H,t) 4.03 (2H,m) 3.25-3.18 (4H,m) 1.93 (2H,m) 1.58 (2H,m)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 346.2, calculated for [(M+H)+]= 346.2
[化合物14の合成]
1HNMR(400 MHz, CD3OD)δ 8.38 (1H,s)8.27 (1H,s) 8.08 (1H,s) 7.20 (1H,d) 7.04 (1H,d) 6.27 (1H,t) 4.42 (1H,q) 4.26 (2H,t) 3.95 (1H,q)3.85 (1H,q) 3.76 (1H,q)3.57 (2H,t) 3.52 (2H,t) 3.38 (2H,t)2.29 (2H,m) 1.86 (2H,m)1.67 (2H,m)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 624.1, calculated for [(M+H)+]= 624.2
[化合物15の合成]
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 706.0, calculated for [(M+H)+]= 706.1
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 704.0, calculated for [(M-H)-]= 704.1
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 754.2, calculated for [(M-H)-]= 754.2
[化合物17(dUtfTP)の合成]
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 864.1, calculated for [(M-H)-]= 864.1
[化合物18(dUamTP)の合成]
凍結乾燥した化合物17(81μmol)に28%Aqueous ammonia (4mL)を加えて攪拌した。2時間後、ダイヤフラムポンプでAmmoniaを抜いて凍結乾燥し、逆相HPLCにより精製し、凍結乾燥することで化合物18(dUamTP)を定量的に得た。
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 768.1, calculated for [(M-H)-]= 768.1
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 105.2, calculated for [(M+H)+]= 105.0
[化合物20(dUguTP)の合成]
2時間後、減圧留去して凍結乾燥させ、逆相HPLCによって精製し、凍結乾燥することで化合物20(dUguTP)を定量的に得た。
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 810.1, calculated for [(M-H)-]= 810.2
[化合物21(dUdnTP)の合成]
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 934.0, calculated for [(M-H)-]= 934.1
1HNMR(400 MHz, DMSO-D6) δ8.19(1H,d) 8.13(1H,d) 7.94(1H,d) 7.35(1H,t) 7.28(1H,t) 6.57(1H,d) 3.42 (2H,t) 3.15 (2H,t)
ESI-MS (positive ion mode) m/z, found= 289.1, calculated for [(M+Na)+]= 289.1
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 265.0, calculated for [(M−H)-]= 265.1
1HNMR(400 MHz, D2O) δ8.67(1H,d) 8.20(2H,m) 7.76(1H,t) 7.65(2H,q) 4.06(2H,t) 3.76(2H,t)
ESI-MS (negative ion mode) m/z, found= 291.0, calculated for [(M−H)-]= 291.1
[4種類の三リン酸体の酵素的導入]
500μLのマイクロチューブに、下記表1に示す組成(酵素は除く)で各基質を含む反応液をそれぞれ調製し、サーマルサイクラーを用いてdenature(95℃,1min)させ、Annealing(95℃→25℃,0.5℃/ min)した。続いてKOD Dashを加えてExtension(74℃,0.5 or 5min)した。伸長反応の確認は20%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(300V,100mM,140min,45℃)の後、レーザー照射(488nm)によってイメージング(FAM)を行った。イメージングを図1に、対応表を表2に示す。
500μLのマイクロチューブに、下記表3に示す組成(酵素は除く)で反応液をそれぞれ調製し、1時間Annealing (95℃→25℃,0.5℃/ min)した。続いてKOD Dashを加えてExtension(74℃,0.5 or 5min)した。反応液の量×1.4倍の色素液でクエンチし、Denature (95℃,5min) した。伸長反応の確認は20%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(300V,100mM,140min,45℃)の後、レーザー照射(488nm)によってイメージング(FAM)を行った。イメージングを図2に、対応表を表4に示す。
1.5mLマイクロチューブに反応液を以下のように調製した。これを500μLマイクロチューブに100μLずつ8本に小分けし、遺伝子増幅装置にセットして以下の温度条件でPCRを行った。PCR産物の確認は10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TBE Buffer、200V、45℃、35分)の後、外部レーザー(488nm)照射によって行った。確認後、反応液を10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TB Buffer、200 or 300V、45 or 4℃、150~250分)により目的の70merのDNAバンドを外部レーザー(488nm)照射で検出し、ゲルから切り出した。切り出したゲルを、透析チューブを用いて透析(TB Buffer、100V、4℃、80分)を行った。抽出したDNA溶出液を遠心フィルターユニットにより脱塩し、凍結乾燥後、適量の滅菌水で溶解させて濃度を測定することでライブラリーを得た。
[NECEEMによるライブラリーのセレクション]
500μLマイクロチューブにイニシャルライブラリーを緩衝液中で1μMになるように調製した。緩衝液にはTris-HCl buffer(20mM Tris-HCl(pH 7.4)、1mM MgCl2、10mM NaCl)を用いた。これを遺伝子増幅装置にセットして、94℃で0.5分熱変性し0.5℃/分の降温速度で25℃まで下げてアニーリングを行った。その後、ポジティブコントロールには標的分子であるタンパク質がファイナル0.2μMになるように加えて37℃で30分インキュベートした。ネガティブコントロールにはバッファーを加えた。この際、ポジティブコントロールとネガティブコントロールともに、DNAの濃度は0.5μMとなるようにした。インキュベート後、NECEEMによって測定した。測定条件には下記の条件を用いた。ネガティブコントロールと比べて蛍光強度の増加がみられる部分を分取した。また、キャピラリー内壁へのDNAの吸着を確認するために、反応液をインジェクトする前にも分取している。
Capillary length: 80cm
Running buffer: 100mM Boric acid buffer(pH 8.4)
TemperatureCartridge : 25℃
Sample storage : 15℃
Dynamic range: 1000RFU
Excitation wavelength: 488nm
Emission wavelength: 520nm
1.5mLマイクロチューブに反応液を以下のように調製した。これを500μLマイクロチューブに100μLずつ8本に小分けし、遺伝子増幅装置にセットして以下の温度条件でPCRを行った。PCR産物の確認は10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TBE Buffer、200V、45℃、35分)の後、外部レーザー(488nm)照射によって行った。確認後、反応液を10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TB Buffer、200 or 300V、45 or 4℃、150~250分)により目的の70merのDNAバンドを外部レーザー(488nm)照射で検出し、ゲルから切り出した。切り出したゲルを、透析チューブを用いて透析(TB Buffer、100V、4℃、80分)を行った。抽出したDNA溶出液を遠心フィルターユニットにより脱塩し、凍結乾燥後、適量の滅菌水で溶解させて濃度を測定することでライブラリーを得た。
1.5mLマイクロチューブに反応液を以下のように調製した。これを500μLマイクロチューブに100μLずつ8本に小分けし、遺伝子増幅装置にセットして以下の温度条件で対称PCRを行った。PCR産物の確認は10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TBE Buffer、200V、45℃、35分)の後、外部レーザー(488nm)照射によって行った。反応液を酢酸ナトリウムでエタノール沈殿し、凍結乾燥した後、残渣を80μLの滅菌水に溶解した。
1.5mLマイクロチューブに酵素を除く反応液を以下のように調製した。500μLマイクロチューブに90μLずつ8本に小分けし、遺伝子増幅装置にセットしてアニーリング(降温速度1.2℃/min, 95→25℃)を行った。その後、λ-exonucleaseを10μL加えて、37℃で30分反応させた。相補鎖の分解の確認は10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TBE Buffer、200V、45℃、35分)の後、SYBR Goldで染色し、外部レーザー(488nm)照射によって行った。反応液をスピンカラム(10k)により脱塩し、凍結乾燥した残渣を滅菌水400μLで溶解した。
dUadTP-Library(標的分子(トロンビン)なし)の1Round目のNECEEMの測定結果を図7に、dUadTP-Library(標的分子(トロンビン)あり)の1Round目のNECEEMの測定結果を図8に、dUadTP-Library(標的分子(トロンビン)なし)の2Round目NECEEMのの測定結果を図9に、dUadTP-Library(標的分子(トロンビン)あり)の2Round目のNECEEMの測定結果を図10に示す。1Round目における標的分子ありと標的分子なしの面積の差は0.06%、2Round目における標的分子ありと標的分子なしの面積の差は0.28%となり、濃縮割合は4.7倍となった。また、1Round目と2Round目のcomplex peakの面積差は0.23%となり、濃縮割合は4.3倍(0.07%→0.30%)となった。
上記化合物20を化合物(i)(KK10)として、以下の実験に使用した。
CE-SELEXの実験方法
・用いたDNA
GOL#P1P:5’-TCG CTC GGC AGG ATC GCA AG-3’(5’リン酸化)(配列番号3)
GOL#P1F:5’-TCG CTC GGC AGG ATC GCA AG-3’(5’FITC化(6-FAM)) (配列番号3)
GOL#P2P:5’-TGC TGC CAC TGC TCC GTC CA-3’(5’リン酸化) (配列番号5)
GOL#P2H:5’-TGC TGC CAC TGC TCC GTC CA-3’(配列番号5)
GOL#T2H:5’-TGC TGC CAC TGC TCC GTC CAN NNN NNN NNN NNN NNN NNN NNN NNN NNN NNC TTG CGA TCC TGC CGA GCG A-3’(配列番号4)
1.5mLマイクロチューブに反応液を以下のように調製した。これを500μLマイクロチューブに100μLずつ8本に小分けし、遺伝子増幅装置にセットして以下の温度条件でPCRを行った。PCR産物の確認は10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TBE Buffer、200V、45℃、35分)の後、外部レーザー(488nm)照射によって行った。確認後、反応液を10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TB Buffer、300V、4℃、200-240分)により目的の70merのDNAバンドを外部レーザー(488nm)照射で検出し、ゲルから切り出した。切り出したゲルを、透析チューブを用いて透析(TB Buffer、100V、4℃、80分)を行った。抽出したDNA溶出液を遠心フィルターユニットにより脱塩し、凍結乾燥後、適量の蒸留水で溶解させて濃度を測定することでライブラリーを得た。
500μLマイクロチューブに上記で合成したライブラリーを緩衝液中で1μMになるように調製した。緩衝液にはTris-HCl buffer(20mM Tris-HCl(pH 7.4)、1mM MgCl2、10mM NaCl)を用いた。これを遺伝子増幅装置にセットして、94℃で0.5分熱変性し2.5hかけて25℃まで下げてアニーリングを行った。その後、標的分子であるヒトVEGFタンパク質がファイナル0.5μM(1ラウンド目のみ)もしくは0.2μM(2ラウンド目以降)になるように加えて37℃で30分インキュベートした。ネガティブコントロールにはバッファーを加えた。この際、DNAの濃度は0.5μMとなるようにした。インキュベート後、非平衡キャピラリー電気泳動法(NECEEM)によって測定した。測定条件には下記の条件を用いた。ネガティブコントロールと比べて蛍光強度の増加がみられる部分を分取した。また、キャピラリー内壁へのDNAの吸着を確認するために、反応液をインジェクトする前にも分取している。
Capillary length: 80cm
Running buffer: 100mM Boric acid buffer (pH 8.4)
Temperature
Cartridge : 25℃
Sample storage : 15℃
Dynamic range: 1000RFU
Excitation wavelength: 488nm
Emission wavelength: 520nm
500μLマイクロチューブに反応液を以下のように調製した。これを遺伝子増幅装置にセットし、上記セレクションで濃縮された画分を鋳型にし、以下の温度条件で1st PCRを行った。PCR産物の確認は10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TBE Buffer、200V、45℃、35分)の後、外部レーザー(488nm)照射によって行った。反応液を酢酸ナトリウムでエタノール沈殿し、凍結乾燥した後、残渣を200μLの蒸留水に溶解した。この溶液を2nd PCRの鋳型とした。
1.5mLマイクロチューブに反応液を以下のように調製した。これを500μLマイクロチューブに100μLずつ8本に小分けし、遺伝子増幅装置にセットして、上記で得られた1stPCR産物を鋳型とし、以下の温度条件で対称PCRを行った。PCR産物の確認は10%変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動(TBE Buffer、200V、45℃、35分)の後、外部レーザー(488nm)照射によって行った。反応液を酢酸ナトリウムでエタノール沈殿し、凍結乾燥した後、残渣を80μLの蒸留水に溶解した。定法に従って、GOL#P1P伸長鎖を、λ-exonucleaseを用いて選択的に分解し、次のラウンドの修飾DNAライブラリー調製のための鋳型鎖を得た。
上記で得られたVEGF結合アプタマーのうち、一部のアプタマーの活性評価をCE(キャピラリー電気泳動)により行った。また、キャピラリーの長さは30.2cmのものを使用し、injection時間は12secとった。他の条件は同じである。複合体平均と標準偏差は3回測定により算出してある。結果を図12〜図13に示した。
いずれのアプタマーもVEGFと高親和性を示すことが分かった。
Claims (16)
- 下記式(I−1)〜(I−6)の何れかの式で表されるヌクレオシド誘導体又はその塩。
- 請求項1に記載のヌクレオシド誘導体の5’−リン酸エステル又はその塩。
- 請求項1に記載のヌクレオシド誘導体の3’−ホスホロアミダイト化物又はその塩。
- 請求項2に記載の5’−リン酸エステル又はその塩、請求項3に記載の3’−ホスホロアミダイト化物又はその塩、又はこれらに標識物質を導入した標識ヌクレオチド誘導体を含む、ポリヌクレオチド合成用基質溶液。
- 請求項4に記載のポリヌクレオチド合成用基質溶液を含む、ポリヌクレオチド合成用試薬。
- 請求項2に記載の5’−リン酸エステル又はその塩、請求項3に記載の3’−ホスホロアミダイト化物又はその塩、又はこれらに標識物質を導入した標識ヌクレオチド誘導体を合成用基質として用いることを特徴とする、ポリヌクレオチドの製造方法。
- ホスホロチオエート基を導入する工程を含む、請求項6に記載のポリヌクレオチドの製造方法。
- 請求項2に記載のヌクレオシド誘導体の5’−リン酸エステル及び/又はそのホスホロチオエート体を構成単位として含むポリヌクレオチド。
- 核酸アプタマーである、請求項8に記載のポリヌクレオチド。
- 請求項8又は9に記載のポリヌクレオチドを含む、ポリヌクレオチドライブラリー。
- 請求項10に記載のポリヌクレオチドライブラリーを用いて標的物質結合性ポリヌクレオチドを選択する工程を含む、核酸アプタマーの選択方法。
- 下記(i)の修飾核酸の残基を含む核酸アプタマーを含む血管内皮細胞増殖因子結合剤。
- 核酸アプタマーが一本鎖DNAである、請求項12に記載の血管内皮細胞増殖因子結合剤。
- 核酸アプタマーの長さが15〜100塩基である、請求項12または13に記載の血管内皮細胞増殖因子結合剤。
- 核酸アプタマーの配列が、配列番号6〜31、33〜40のいずれかの塩基番号21〜50の配列、または配列番号32の塩基番号21〜49の配列(これらの配列におけるTは上記(II)で表される化合物の残基を示す)を含む、請求項12〜14いずれか一項に記載の血管内皮細胞増殖因子結合剤。
- 下記(i)の修飾核酸の残基を含む核酸アプタマーのライブラリーを用意する工程、およびライブラリーを血管内皮細胞増殖因子と反応させる工程、および血管内皮細胞増殖因子と結合した核酸アプタマーを選択して増幅する工程を含む、血管内皮細胞増殖因子結合剤のセレクション方法。
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