JPWO2011016366A1 - コレステロールエステル転送タンパク質阻害剤 - Google Patents
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Abstract
本発明は、一般式（１）で表される化合物を有効成分として含有するコレステロールエステル転送タンパク質（ＣＥＴＰ）阻害剤。【化１】［式中、Ｒ１は、水素原子又は炭素数１〜５のアルキル基を表し、Ｒ２は、ジメチルアリル基又はゲラニル基を表す。］
Description
本発明は、コレステロールエステル転送タンパク質（ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｅｓｔｅｒ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｐｒｏｔｅｉｎ）（ＣＥＴＰ）阻害剤に関する。
近年、スタチン系薬剤の開発により血中ＬＤＬ（低密度リポタンパク質）コレステロールレベルのコントロールが可能となったが、一方で、心血管リスクの抑制にはそれだけでは不十分であり、更にＨＤＬ（高密度リポタンパク質）コレステロール低値の改善が必要であることが明らかになっている。そして、ＣＥＴＰ欠損者において血中ＨＤＬコレステロールが高値を示すとの知見を背景として、ＣＥＴＰ阻害剤が種々開発されている（特許文献１〜４参照）。
ＣＥＴＰ阻害剤はいくつか知られているものの、未だ、多様な需要を満たすのに十分な選択肢が存在するとはいえないのが実情である。そこで、本発明は、新規のＣＥＴＰ阻害剤を提供することを課題とする。
本発明は、下記一般式（１）で表される化合物を有効成分として含有するＣＥＴＰ阻害剤を提供する。
ＣＥＴＰは、ＨＤＬ中のコレステロールエステルをＶＬＤＬ（超低密度リポタンパク質）、ＩＤＬ（中間密度リポタンパク質）又はＬＤＬに転送するタンパク質である。本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、そのようなＣＥＴＰの働きを阻害し、これを介して血中ＨＤＬコレステロール値を上昇させることを可能とする。また、血中ＨＤＬコレステロール値の上昇を通じて、動脈硬化及びこれが関与して生じる疾患（心筋梗塞、脳梗塞等）の発症リスクを低減させることを可能とする。
一般式（１）において、Ｒ１で表される炭素数１〜５のアルキル基は、直鎖状でも分岐鎖状でもよい。炭素数１〜５のアルキル基としては、例えば、メチル基、エチル基、１−メチルエチル基（イソプロピル基）、１，１−ジメチルエチル基（ｔｅｒｔ−ブチル基）、プロピル基、１−メチルプロピル基（ｓｅｃ−ブチル基）、２−メチルプロピル基（イソブチル基）、２，２−ジメチルプロピル基（ネオペンチル基）、ブチル基、３−メチルブチル基、ペンチル基が挙げられる。
一般式（１）の化合物としては、例えば、Ｒ１が水素原子又は炭素数１〜３のアルキル基（メチル基、エチル基、１−メチルエチル基、プロピル基）である化合物が好適であり、Ｒ１が水素原子、メチル基又はエチル基で、Ｒ２がジメチルアリル基である化合物が特に好適である。ホップ特有のフラボノイドであるキサントフモール（下記式（１Ａ）で表される化合物）は、特に好適な化合物の１つである。
本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、血中ＨＤＬコレステロール値の上昇を可能とすることから、血中ＨＤＬコレステロール値を上昇させるために使用することもできる。また、動脈硬化及び動脈硬化性疾患（心筋梗塞、脳梗塞等）の発症リスクの低減を可能とすることから、動脈硬化又は動脈硬化性疾患の発症リスクを低減させるために使用することもできる。
一般式（１）の化合物の１つであるキサントフモールは、古くからビール等の飲食品の原料として使用されてきたホップ中に見出される成分であり、その安全性も確立されている。このことから、本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、生体に対する安全性が高く、医薬品、飲食品、飲食品添加物、飼料、飼料添加物等の成分として使用するのに好適と考えられる。
本発明によれば、新規のＣＥＴＰ阻害剤並びにこれを含有する医薬品、飲食品、飲食品添加物、飼料、飼料添加物等が提供される。
以下、本発明の実施形態について説明する。
本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、下記一般式（１）で表される化合物を有効成分として含有する。
一般式（１）において、Ｒ１で表される炭素数１〜５のアルキル基は、直鎖状でも分岐鎖状でもよい。炭素数１〜５のアルキル基としては、例えば、メチル基、エチル基、１−メチルエチル基（イソプロピル基）、１，１−ジメチルエチル基（ｔｅｒｔ−ブチル基）、プロピル基、１−メチルプロピル基（ｓｅｃ−ブチル基）、２−メチルプロピル基（イソブチル基）、２，２−ジメチルプロピル基（ネオペンチル基）、ブチル基、３−メチルブチル基、ペンチル基が挙げられる。
一般式（１）の化合物としては、例えば、Ｒ１が水素原子又は炭素数１〜３のアルキル基（メチル基、エチル基、１−メチルエチル基、プロピル基）である化合物が好適であり、Ｒ１が水素原子、メチル基又はエチル基で、Ｒ２がジメチルアリル基である化合物が特に好適である。キサントフモール（下記式（１Ａ）で表される化合物）は、特に好適な化合物の１つである。
本発明のＣＥＴＰ阻害剤において、一般式（１）の化合物としては、天然物（植物、微生物等）に由来するものであっても、人為的に合成したものであってもよい。また、市販のものがあれば、それを使用してもよい。
例えば、キサントフモールは、ホップ抽出物を分画、精製することによって得ることができる。ホップ抽出物としては、例えば、市販のホップエキスを使用してもよい。
ホップからの抽出を行う場合、抽出に供するホップ組織としては、毬花が好ましい。ホップは、乾燥、凍結、加工、粉砕、選別等の処理が施されたものであってもよく、例えば、ホップペレットを使用してもよい。
ホップの品種は特に制限されず、既存の品種（例えば、チェコ産ザーツ種、ドイツ産ハラタウ・マグナム種、ドイツ産ハラタウ・トラディション種、ドイツ産ペルレ種）のいずれでもよい。１種を単独で使用しても、２種以上を組み合わせて使用してもよい。
ホップからの抽出は、例えば、ホップを溶媒に浸漬し、これを濾過することによって行うことができる。溶媒としては、例えば、水、エタノール、メタノールが好適である。溶媒は、１種を単独で使用しても、２種以上を組み合わせて使用してもよい。浸漬の際には超音波処理を行ってもよい。得られた抽出物に対しては、公知の方法（例えば、減圧濃縮、凍結乾燥）により濃縮又は乾燥を行ってもよく、更に粉砕等の処理を行ってもよい。
ホップ抽出物からのキサントフモールの分画、精製は、例えば次のようにして行うことができる。すなわち、まず、ホップ抽出物の水溶液又は水懸濁液をヘキサンで分配し、得られた水層を酢酸エチル（ｐＨ３）で分配する。そして、得られた有機層を、更に飽和炭酸水素ナトリウム水溶液（ｐＨ８〜９）で分配し、新たに生じた有機層を回収する。次に、この有機層に対して、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［ジエチルエーテル／ヘキサン（３：７）→ 酢酸エチル／ヘキサン（４：６）→ 酢酸エチル／ヘキサン（６：４）→ クロロホルム／メタノール（５：５）］を行って、キサントフモール溶出画分を分取する。最後に、これを、ＯＤＳカラムを用いて、又は再結晶により更に精製する。
以上の抽出、分画、精製の際の温度は、キサントフモールのイソ化防止の観点から、５〜６５℃が好ましく、５〜５０℃がより好ましい。
得られた化合物がキサントフモールかどうかは、公知の方法（例えば、質量分析、元素分析、核磁気共鳴分光法、紫外分光法、赤外分光法）により確認することができる。
本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、一般式（１）の化合物のうちの１種のみを含有しても、２種以上を含有してもよい。また、ＣＥＴＰ阻害作用を有する他の化合物を更に含有してもよい。
本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、固体（例えば、粉末）、液体（水溶性又は脂溶性の溶液又は懸濁液）、ペースト等のいずれの形状でもよく、また、散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、液剤、懸濁剤、乳剤、軟膏剤、硬膏剤等のいずれの剤形をとってもよい。また、放出制御製剤の形態をとることもできる。本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、一般式（１）の化合物からなるものであってもよい。
上述の各種製剤は、一般式（１）の化合物と、薬学的に許容される添加剤（賦形剤、結合剤、滑沢剤、崩壊剤、乳化剤、界面活性剤、基剤、溶解補助剤、懸濁化剤等）と、を混和することによって調製することができる。
例えば、賦形剤としては、ラクトース、スクロース、デンプン、デキストリン等が挙げられる。結合剤としては、ポリビニルアルコール、アラビアゴム、トラガント、ゼラチン、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリビニルピロリドン等が挙げられる。滑沢剤としては、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、タルク等が挙げられる。崩壊剤としては、結晶セルロース、寒天、ゼラチン、炭酸カルシウム、炭酸水素ナトリウム、デキストリン等が挙げられる。乳化剤又は界面活性剤としては、Ｔｗｅｅｎ６０、Ｔｗｅｅｎ８０、Ｓｐａｎ８０、モノステアリン酸グリセリン等が挙げられる。基剤としては、セトステアリルアルコール、ラノリン、ポリエチレングリコール、米糠油、魚油（ＤＨＡ、ＥＰＡ等）、オリーブ油等が挙げられる。溶解補助剤としては、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール、炭酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム、Ｔｗｅｅｎ８０等が挙げられる。懸濁化剤としては、Ｔｗｅｅｎ６０、Ｔｗｅｅｎ８０、Ｓｐａｎ８０、モノステアリン酸グリセリン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、メチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、アルギン酸ナトリウム等が挙げられる。
本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、医薬品、飲食品（飲料、食品）、飲食品添加物、飼料、飼料添加物等の成分として使用することができる。例えば、飲料としては、水、清涼飲料水、果汁飲料、乳飲料、アルコール飲料、スポーツドリンク、栄養ドリンク等が挙げられる。食品としては、パン類、麺類、米類、豆腐、乳製品、醤油、味噌、菓子類等が挙げられる。本発明のＣＥＴＰ阻害剤はまた、特定保健用食品、特別用途食品、栄養補助食品、健康食品、機能性食品、病者用食品等の成分として使用することもできる。
飲料、食品、飼料等は、当該分野で通常使用される添加物を更に含有してもよい。そのような添加物としては、例えば、苦味料、香料、リンゴファイバー、大豆ファイバー、肉エキス、黒酢エキス、ゼラチン、コーンスターチ、蜂蜜、動植物油脂；グルテン等のタンパク質；大豆、エンドウ等の豆類；グルコース、フルクトース等の単糖類；スクロース等の二糖類；デキストロース、デンプン等の多糖類；エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール等の糖アルコール類；ビタミンＣ等のビタミン類；亜鉛、銅、マグネシウム等のミネラル類；ＣｏＱ１０、α−リポ酸、カルニチン、カプサイシン等の機能性素材、が挙げられる。これらの添加物は、１種を単独で使用しても、２種以上を組み合わせて使用してもよい。
本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、ヒトに摂取されても、非ヒト哺乳動物に摂取されてもよい。摂取量及び摂取方法は、個体の状態、年齢等に応じて適宜決定することができる。好適な摂取方法としては、例えば、経口摂取が挙げられる。
以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明する。但し、本発明は、以下の実施例により限定されるものではない。
［実施例１］
（試験サンプルの調製）
市販のキサントフモール（Ｓｔｅｉｎｅｒ社、ＸＮ Ｅｘｔｒａｃｔ（７５％））をＨＰＬＣで精製し、キサントフモール標準品を調製した。これを５％ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）水溶液に段階希釈して、所定濃度の試験サンプルを得た。ＨＰＬＣは下記条件で行った。
ＨＰＬＣ条件：
カラム：ＣＡＰＣＥＬＬ ＰＡＫ Ｃ１８（φ１ｃｍ）（資生堂）
移動相：７７．５％ＣＨ３ＯＨ／５％ＣＨ３ＣＯＯＨ
流速：３ｍＬ／分
（試験サンプルの調製）
市販のキサントフモール（Ｓｔｅｉｎｅｒ社、ＸＮ Ｅｘｔｒａｃｔ（７５％））をＨＰＬＣで精製し、キサントフモール標準品を調製した。これを５％ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）水溶液に段階希釈して、所定濃度の試験サンプルを得た。ＨＰＬＣは下記条件で行った。
ＨＰＬＣ条件：
カラム：ＣＡＰＣＥＬＬ ＰＡＫ Ｃ１８（φ１ｃｍ）（資生堂）
移動相：７７．５％ＣＨ３ＯＨ／５％ＣＨ３ＣＯＯＨ
流速：３ｍＬ／分
（ＣＥＴＰアッセイ）
キサントフモールのＣＥＴＰ阻害活性を、ＣＥＴＰ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ Ｄｒｕｇ Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ Ｋｉｔ（Ｂｉｏ Ｖｉｓｉｏｎ社）を用いて測定した。具体的には、下記組成の反応液を３８４ウェルプレートに２０μＬ／ウェル分注して、３７℃で４５０秒間インキュベートし、その後、プレートリーダーで蛍光強度を測定した。測定された蛍光強度は、別途作成した検量線に基づいて中性脂質量に変換した。
反応液組成：
試験サンプル：８０μＬ
ウサギ血清：３μＬ
供与分子溶液：５μＬ
受容分子溶液：５μＬ
１０×ＣＥＴＰバッファー：１０μＬ
キサントフモールのＣＥＴＰ阻害活性を、ＣＥＴＰ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ Ｄｒｕｇ Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ Ｋｉｔ（Ｂｉｏ Ｖｉｓｉｏｎ社）を用いて測定した。具体的には、下記組成の反応液を３８４ウェルプレートに２０μＬ／ウェル分注して、３７℃で４５０秒間インキュベートし、その後、プレートリーダーで蛍光強度を測定した。測定された蛍光強度は、別途作成した検量線に基づいて中性脂質量に変換した。
反応液組成：
試験サンプル：８０μＬ
ウサギ血清：３μＬ
供与分子溶液：５μＬ
受容分子溶液：５μＬ
１０×ＣＥＴＰバッファー：１０μＬ
なお、供与分子溶液は、所定濃度の中性脂質を含有する。中性脂質は、ウサギ血清中のＣＥＴＰにより受容分子に転送されて蛍光（Ｅｘ ４６５ｎｍ、Ｅｍ ５３５ｎｍ）を発する。ＣＥＴＰが阻害されると、その程度に応じて、中性脂質の転送が抑制され、蛍光強度が減少する。
（結果）
反応液中の全中性脂質量（［Ｓ］（ｐｍｏｌ））と転送された中性脂質量（Ｖ（ｐｍｏｌ））との関係は、表１及び図１に示す通りであった。また、［Ｓ］（ｐｍｏｌ）と［Ｓ］／Ｖとの関係は、図２に示す通りであった。表１及び図１、２において、“ＸＮ”はキサントフモールを表し、キサントフモール濃度（ｐｐｍ）は反応液中の濃度である。
反応液中の全中性脂質量（［Ｓ］（ｐｍｏｌ））と転送された中性脂質量（Ｖ（ｐｍｏｌ））との関係は、表１及び図１に示す通りであった。また、［Ｓ］（ｐｍｏｌ）と［Ｓ］／Ｖとの関係は、図２に示す通りであった。表１及び図１、２において、“ＸＮ”はキサントフモールを表し、キサントフモール濃度（ｐｐｍ）は反応液中の濃度である。
図２に示される４本の直線の式は下記の通りである（［Ｓ］、［Ｓ］／Ｖを、それぞれｘ、ｙとおく）。
ＸＮ ０ｐｐｍ： ｙ＝０．１５３４ｘ＋１１．６４１
ＸＮ１０ｐｐｍ： ｙ＝０．１３１７ｘ＋１９．６７９
ＸＮ２０ｐｐｍ： ｙ＝０．１７７３ｘ＋２１．３６８
ＸＮ４０ｐｐｍ： ｙ＝０．１９０７ｘ＋３５．４２２
ＸＮ ０ｐｐｍ： ｙ＝０．１５３４ｘ＋１１．６４１
ＸＮ１０ｐｐｍ： ｙ＝０．１３１７ｘ＋１９．６７９
ＸＮ２０ｐｐｍ： ｙ＝０．１７７３ｘ＋２１．３６８
ＸＮ４０ｐｐｍ： ｙ＝０．１９０７ｘ＋３５．４２２
ＣＥＴＰに関するキサントフモールのＩＣ５０（５０％阻害濃度）は、３８．８ｐｐｍであった。
これらの結果から明らかなように、ＣＥＴＰにより転送された中性脂質の量は、キサントフモール存在下で顕著に減少した。
実施例１により、本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、ＣＥＴＰによるＨＤＬ中のコレステロールエステルの転送を顕著に抑制し、これを介して血中ＨＤＬコレステロール値を上昇させることが可能であることが確認された。
［実施例２］
（試験動物の群分け）
ハムスター（５週齢、雄、ＳＰＦシリアンハムスター、日本ＳＬＣ）１２匹を、試験開始時の体重が群間でバラつかないように各群６匹の２群（対照群（ＣＮＴ群）、キサントフモール投与群（ＸＮ群））に分けた。なお、ハムスターは、１週間の馴化飼育を経た後、６週齢の時点で試験に使用した。
（試験動物の群分け）
ハムスター（５週齢、雄、ＳＰＦシリアンハムスター、日本ＳＬＣ）１２匹を、試験開始時の体重が群間でバラつかないように各群６匹の２群（対照群（ＣＮＴ群）、キサントフモール投与群（ＸＮ群））に分けた。なお、ハムスターは、１週間の馴化飼育を経た後、６週齢の時点で試験に使用した。
（試験飼料の調製）
試験飼料（食餌）は、表２の組成となるように調製した。表２中、各成分量の単位はｇ／ｋｇ飼料である。また、馴化飼育期間中は、飼料としてＣＲＦ−１（オリエンタル酵母工業）を用いた。
試験飼料（食餌）は、表２の組成となるように調製した。表２中、各成分量の単位はｇ／ｋｇ飼料である。また、馴化飼育期間中は、飼料としてＣＲＦ−１（オリエンタル酵母工業）を用いた。
（飼育条件）
１週間の馴化飼育後、各群のハムスターに試験飼料及び水道水を２８日間自由に摂餌・摂水させた。馴化飼育期間及びその後の試験飼料投与期間を通じて、ハムスターは、飼育装置（温度２３±５℃、相対湿度５５±１０％、イノケージ、オリエンタル技研）中で個別飼育（１匹／ケージ）した。
１週間の馴化飼育後、各群のハムスターに試験飼料及び水道水を２８日間自由に摂餌・摂水させた。馴化飼育期間及びその後の試験飼料投与期間を通じて、ハムスターは、飼育装置（温度２３±５℃、相対湿度５５±１０％、イノケージ、オリエンタル技研）中で個別飼育（１匹／ケージ）した。
（キサントフモールの投与）
キサントフモール（８５％純度キサントフモールパウダー、ホップシュタイナー社）を投与量が５ｍｇ／ｋｇ−体重／ｄａｙとなるように、２％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＤＭＳＯに溶解させ、浸透圧ポンプ（ＡＬＺＥＴ（登録商標） ｍｏｄｅｌ ２００６）に充填し、試験開始前に外科手術によりハムスター背面皮下に埋没させた。
キサントフモール（８５％純度キサントフモールパウダー、ホップシュタイナー社）を投与量が５ｍｇ／ｋｇ−体重／ｄａｙとなるように、２％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＤＭＳＯに溶解させ、浸透圧ポンプ（ＡＬＺＥＴ（登録商標） ｍｏｄｅｌ ２００６）に充填し、試験開始前に外科手術によりハムスター背面皮下に埋没させた。
（血漿中コレステロールの測定）
試験開始時及び試験飼料投与開始から１４日後、各群のハムスターについて、ヘパリン処理した毛細管を用いて眼窩から採血した。また、試験飼料投与開始から２８日後、各群のハムスターについて、ジエチルエーテル麻酔下で心採血した。採血した血液は、遠心分離（５，０００×ｇ、５分間、室温）して血球と分離した後、コレステロールの測定に供した。総コレステロール値、ＨＤＬコレステロール値は、コレステロールＥ−テストワコー（和光純薬工業株式会社、Ｃｏｄｅ４３９−１７５０１）、ＨＤＬ−コレステロールＥ−テストワコー（和光純薬工業株式会社、Ｃｏｄｅ４３１−５２５０１）を用いて測定した。なお、ＨＤＬコレステロール値測定時のＨＤＬ以外のリポ蛋白の沈殿操作は、キット添付の沈殿試薬を用いず、ポリエチレングリコール沈殿法により行った。また、非ＨＤＬコレステロール中の成分の分析は、スカイライトバイオテック社に委託した。
試験開始時及び試験飼料投与開始から１４日後、各群のハムスターについて、ヘパリン処理した毛細管を用いて眼窩から採血した。また、試験飼料投与開始から２８日後、各群のハムスターについて、ジエチルエーテル麻酔下で心採血した。採血した血液は、遠心分離（５，０００×ｇ、５分間、室温）して血球と分離した後、コレステロールの測定に供した。総コレステロール値、ＨＤＬコレステロール値は、コレステロールＥ−テストワコー（和光純薬工業株式会社、Ｃｏｄｅ４３９−１７５０１）、ＨＤＬ−コレステロールＥ−テストワコー（和光純薬工業株式会社、Ｃｏｄｅ４３１−５２５０１）を用いて測定した。なお、ＨＤＬコレステロール値測定時のＨＤＬ以外のリポ蛋白の沈殿操作は、キット添付の沈殿試薬を用いず、ポリエチレングリコール沈殿法により行った。また、非ＨＤＬコレステロール中の成分の分析は、スカイライトバイオテック社に委託した。
（統計解析）
各測定項目について、統計解析ソフトＳＰＳＳ（ｖｅｒ．１３．０Ｊ）を用いてスチューデントのｔ−検定を行った。
各測定項目について、統計解析ソフトＳＰＳＳ（ｖｅｒ．１３．０Ｊ）を用いてスチューデントのｔ−検定を行った。
（結果）
結果（平均±標準偏差）を表３〜５に示す。表３及び表４は、試験飼料投与開始から１４日後及び２８日後における血漿中コレステロール（総コレステロール、ＨＤＬコレステロール、非ＨＤＬコレステロール）の値を示すものである。表３及び表４中の数値は、試験開始時における各血漿中コレステロールの値を１としたときの相対値を示す。表５は、試験飼料投与開始から２８日後における血漿中非ＨＤＬコレステロールに含まれるＣＭ（カイロミクロン）、ＶＬＤＬ（超低密度リポタンパク質）、ＬＤＬの含有量を示す。表５中の値の単位は、ｍｇ／ｄｌである。
結果（平均±標準偏差）を表３〜５に示す。表３及び表４は、試験飼料投与開始から１４日後及び２８日後における血漿中コレステロール（総コレステロール、ＨＤＬコレステロール、非ＨＤＬコレステロール）の値を示すものである。表３及び表４中の数値は、試験開始時における各血漿中コレステロールの値を１としたときの相対値を示す。表５は、試験飼料投与開始から２８日後における血漿中非ＨＤＬコレステロールに含まれるＣＭ（カイロミクロン）、ＶＬＤＬ（超低密度リポタンパク質）、ＬＤＬの含有量を示す。表５中の値の単位は、ｍｇ／ｄｌである。
ＸＮ群は、試験飼料投与開始から１４日後の時点において、ＣＮＴ群と比較して有意に（Ｐ＜０．０５）非ＨＤＬコレステロール値が減少した（表３）。また、ＣＮＴ群と比較してＨＤＬコレステロール値の上昇も観察された（表３）。ＸＮ群では、ＣＮＴ群と比較して、非ＨＤＬコレステロール中に含まれるＣＭ、ＶＬＤＬ、ＬＤＬの絶対値の減少も観察された（表５）。
［実施例３］
（試験動物の群分け）
ハムスター４０匹を、対照群（ＣＮＴ群）、１ｍｇ／ｋｇ−体重／ｄａｙキサントフモール投与群（ＸＮ １ｍｇ群）、５ｍｇ／ｋｇ−体重／ｄａｙキサントフモール投与群（ＸＮ ５ｍｇ群）、及びネガティブコントロール群（ＮＣ群）の４群に各群１０匹づつ分けた以外は実施例２と同様にして行った。
（試験動物の群分け）
ハムスター４０匹を、対照群（ＣＮＴ群）、１ｍｇ／ｋｇ−体重／ｄａｙキサントフモール投与群（ＸＮ １ｍｇ群）、５ｍｇ／ｋｇ−体重／ｄａｙキサントフモール投与群（ＸＮ ５ｍｇ群）、及びネガティブコントロール群（ＮＣ群）の４群に各群１０匹づつ分けた以外は実施例２と同様にして行った。
（試験飼料の調製）
実施例２と同様に調製した。なお、ネガティブコントロール群（ＮＣ群）には、馴化飼育期間及び試験期間を通して、飼料としてＣＲＦ−１を使用した。
実施例２と同様に調製した。なお、ネガティブコントロール群（ＮＣ群）には、馴化飼育期間及び試験期間を通して、飼料としてＣＲＦ−１を使用した。
（飼育条件）
飼育期間を１４日間とした以外は、実施例２と同様にして行った。
飼育期間を１４日間とした以外は、実施例２と同様にして行った。
（キサントフモールの投与）
ＸＮ １ｍｇ群について、キサントフモールが１ｍｇ／ｋｇ−体重／ｄａｙとなるようにした他は、実施例２と同様にして行った。
ＸＮ １ｍｇ群について、キサントフモールが１ｍｇ／ｋｇ−体重／ｄａｙとなるようにした他は、実施例２と同様にして行った。
（糞中総コレステロール量の測定）
試験飼料投与開始から１４日後、糞中総コレステロール量を測定した。凍結乾燥した糞を粉砕し、秤量した後、飽和水酸化カリウム水溶液でアルカリ処理し、エタノールを添加した後、更にヘキサンを加え、総コレステロールをヘキサン層に分配した。ヘキサン層の容量を定量した後、コール酸に抱合させたうえで乾固し、コレステロールＥ−テストワコーで糞中総コレステロール量を測定した。
試験飼料投与開始から１４日後、糞中総コレステロール量を測定した。凍結乾燥した糞を粉砕し、秤量した後、飽和水酸化カリウム水溶液でアルカリ処理し、エタノールを添加した後、更にヘキサンを加え、総コレステロールをヘキサン層に分配した。ヘキサン層の容量を定量した後、コール酸に抱合させたうえで乾固し、コレステロールＥ−テストワコーで糞中総コレステロール量を測定した。
（糞中胆汁酸量の測定）
試験飼料投与開始から１４日後、糞中胆汁酸量を測定した。凍結乾燥した糞を粉砕し、秤量した後、９０％エタノール中６５℃でインキュベートした。これを遠心分離した後、上清を新しい容器に回収した。この操作を３回繰り返し行って胆汁酸を抽出した。得られた上清を乾固し、総胆汁酸−テストワコー（和光純薬工業、Ｃｏｄｅ４３１−１５００１）で測定した。
試験飼料投与開始から１４日後、糞中胆汁酸量を測定した。凍結乾燥した糞を粉砕し、秤量した後、９０％エタノール中６５℃でインキュベートした。これを遠心分離した後、上清を新しい容器に回収した。この操作を３回繰り返し行って胆汁酸を抽出した。得られた上清を乾固し、総胆汁酸−テストワコー（和光純薬工業、Ｃｏｄｅ４３１−１５００１）で測定した。
（結果）
結果（平均±標準偏差）を表６に示す。
結果（平均±標準偏差）を表６に示す。
キサントフモールを投与したハムスター群（ＸＮ １ｍｇ群、ＸＮ ５ｍｇ群）は、キサントフモールを投与しなかったＣＮＴ群、高脂質食である試験飼料を与えなかったＮＣ群と比べて、糞中総コレステロール量及び糞中総胆汁酸量が上昇した。また、キサントフモールを投与したハムスター群（ＸＮ １ｍｇ群、ＸＮ ５ｍｇ群）の糞中総胆汁酸量は、ＣＮＴ群と比較して有意に（Ｐ＜０．０５）上昇した。
実施例２及び３により、本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、血中ＨＤＬコレステロール値を上昇させ、血中ＬＤＬコレステロール値を低下させることが可能であることが確認された。
本発明のＣＥＴＰ阻害剤は、動脈硬化及び動脈硬化性疾患の予防に利用可能である。
Claims (7)
- 下記一般式（１）で表される化合物を有効成分として含有するコレステロールエステル転送タンパク質阻害剤。
- 一般式（１）で表される化合物が、下記式（１Ａ）で表される化合物である、請求項１に記載のコレステロールエステル転送タンパク質阻害剤。
- 血中ＨＤＬコレステロール値上昇用である、請求項１又は２に記載のコレステロールエステル転送タンパク質阻害剤。
- 請求項１〜３のいずれか一項に記載のコレステロールエステル転送タンパク質阻害剤を含有する医薬品。
- 請求項１〜３のいずれか一項に記載のコレステロールエステル転送タンパク質阻害剤を含有する飲食品。
- 請求項１〜３のいずれか一項に記載のコレステロールエステル転送タンパク質阻害剤を含有する飲食品添加物。
- 請求項１〜３のいずれか一項に記載のコレステロールエステル転送タンパク質阻害剤を含有する飼料。
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