JPWO2005035573A1 - タンパク質溶液の安定化方法 - Google Patents

Abstract

ＩｇＭの保存に適したｐＨ領域および塩濃度において、ＩｇＭの低温沈殿を抑制する方法として、クエン酸緩衝液を検討した結果、クエン酸緩衝液が低温沈殿を顕著に抑制することを見出した。

Description

本発明は、タンパク質を低温で安定化する方法に関する。

多くの高等動物の免疫グロブリンには、５種類の異なったクラスＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、およびＩｇＥが存在する。各クラスの免疫グロブリンは、大きさ、電荷、アミノ酸組成、糖含量等の性状が異なっている。これらのクラスの中で、ＩｇＭは血漿免疫グロブリン全体の約１０％を占めている。ＩｇＭは、複雑な抗原性を持つ細胞膜抗原、感染性微生物、あるいは溶解性抗原に対して産生される初期抗体の主成分である。

ヒトＩｇＭは、通常、５量体構造を有している。ＩｇＭの５量体構造を構成する５つのサブユニットは、ＩｇＧに類似した４本鎖構造からなっている。ＩｇＭのＨ鎖であるμ鎖はＩｇＧのＨ鎖であるγ鎖とアミノ酸配列が異なる以外にも次のような相違を有する。
μ鎖は、定常領域のドメインを、γ鎖よりも一つ余分に持っている。
μ鎖は、オリゴ糖鎖の数がγ鎖と比較して４箇所多い。
ＩｇＭは、ＩｇＧには見られないＪ鎖と呼ばれるポリペプチド鎖を有する。Ｊ鎖は、ＩｇＭが抗体産生細胞から分泌される前に、μ鎖の会合を補助すると考えられている。

近年、モノクローナル抗体技術および組換えＤＮＡ技術の発展により、純粋な免疫グロブリンを大量に生産することが可能になった。更に遺伝子組み換え技術は、キメラ抗体やヒト化抗体生産を可能にした。キメラ抗体とは、可変領域を異なる種に由来する可変領域に組み換えた構造を有する抗体である。たとえば、ヒト以外の動物種の可変領域とヒト抗体の定常領域を有する「キメラ抗体」（非特許文献１／Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ，（１９８４）８１：６８５１）が公知である。更に、他の動物種の相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎｓ；ＣＤＲ）をヒトイムノグロブリンに移植したヒト化抗体も公知である（非特許文献２／Ｎａｔｕｒｅ（１９８６）３２１：５２１）。

実際に、抗腫瘍抗体に関して列挙すると、抗ＣＤ２０ヒトキメラ抗体であるリツキサン（Ｒｉｔｕｘａｎ：ＩＤＥＣ社）や抗ＨＥＲ２／ｎｅｕヒト化抗体であるハーセプチン（Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ：Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ社）が臨床試験を終了し、既に承認・販売されている。ＩｇＧおよびＩｇＭのエフェクター機能として抗体依存性細胞障害活性（以下、ＡＤＣＣ活性と表記する）や補体依存性細胞障害活性（以下、ＣＤＣ活性と表記する）が知られている。ＩｇＭのＣＤＣ活性はＩｇＧと比較して高いことから、ＣＤＣ活性を主薬効とする抗腫瘍抗体となる可能性が極めて高いと思われる。しかし上述のとおり、ＩｇＭはＩｇＧと異なり多量体を形成する。そのため、組換え体ＩｇＭを工業的規模で生産することは困難であると考えられていた。

また、ＩｇＭは、ＩｇＧに比べて極めて不安定であり、また溶解度が低いことから、ＩｇＭの高濃度且つ安定な溶液を作製することは困難である。例えば、Ｃｙｔｏｔｈｅｒａｐｙ，２００１，３（３），２３３−２４２（非特許文献５）は、ＩｇＭの−２０℃保存においても溶解時にＩｇＭの沈殿および活性低下が起こったことを報告している。また、同文献には、ＩｇＭは保存時に会合化および沈殿を起こしやすいことが記載されている。また、Ａｒｃｈ．Ｐａｔｈｏｌ．Ｌａｂ．Ｍｅｄ．，１９９９，１２３，１１９−１２５（非特許文献６）には、ヒト血清で観察されるｃｒｙｏｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎあるいは低温沈殿と呼称される沈殿のうち、単一の抗体成分からなる沈殿を生じるＴｙｐｅ Ｉ ｃｒｙｏｇｌｏｂｕｌｉｎは、おもにＩｇＭであることが示されており、特にＩｇＭは、低温沈殿が起こりやすく、低温において高濃度溶液を得ることが困難である。バイオ医薬品のほとんどは安定性を確保するために、４℃付近で冷蔵保存・冷蔵流通する。ＩｇＭには、４℃等で低温沈殿するものがあることから、製剤化にあたっては、保存および流通過程において、この低温沈殿を抑制することが望ましい。また、製剤化に至るＩｇＭ原薬製造工程においても、低温での精製・濃縮処理や複数の工程間での低温保存の際に低温沈殿が生じて、工程操作に支障をきたす問題もあり、低温沈殿を抑制することが望ましい。

そこで、低温において、ＩｇＭを安定化させる種々の試みがなされている。例えば、Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９７８，１５，１７１−１８７（非特許文献３）においては、ＩｇＭの低温沈殿は、低温、高濃度ほど生じやすく、また、ｐＨ５〜ｐＨ１０の範囲内で低温沈殿が起こることが開示されている。そして、この低温沈殿は、極端に高いｐＨあるいは低いｐＨにおいて回避することが可能であることも開示されている。しかしながら、一般的に抗体は高いｐＨでは脱アミド反応や会合化、低いｐＨでは変性や会合化が起こり易く、ｐＨ５〜ｐＨ８さらにはｐＨ５〜ｐＨ７付近で化学的・物理的に安定であることが知られている。そのため極端に高いｐＨあるいは低いｐＨは、医薬品としての使用に耐えうる安定性を確保するのは困難である。

また、Ｊｏｕｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９７，２５２（２２），８００２−８００６（非特許文献４）においては、様々な化合物の低温沈殿（低温におけるＩｇＭの溶解度）へ及ぼす影響を検討し、糖類を添加することや、塩濃度をあげると低温沈殿が減少することが開示されている。しかし、開示されている文献では、いずれの糖類、塩類の場合でも低温沈殿の効果的な回避には、およそ５００ｍＭ以上の高濃度糖類、塩類の添加が必要であることが示されており、医薬品としての使用に際しては、さらに低い濃度で効果があるものが望ましい。

また、ＷＯ９１／１８１０６（特許文献１）においては、ＩｇＭに結合している糖鎖構造を変えることによって、低温沈殿を防ぐ方法が開示されている。しかしながら、抗体の糖鎖を改変した場合は、抗体の結合活性が変化する場合があり、糖鎖を含む抗体の構造を改変することなく、低温沈殿を抑制する方法の開発が望まれていた。

ＷＯ９１／１８１０６ Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ，（１９８４）８１：６８５１ Ｎａｔｕｒｅ（１９８６）３２１：５２１ Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９７８，１５，１７１−１８７ Ｊｏｕｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９７，２５２（２２），８００２−８００６ Ｃｙｔｏｔｈｅｒａｐｙ，２００１，３（３），２３３−２４２ Ａｒｃｈ．Ｐａｔｈｏｌ．Ｌａｂ．Ｍｅｄ．，１９９９，１２３，１１９−１２５

本発明は、このような状況に鑑みてなされたものであり、その目的は、低温にて溶液中のタンパク質を安定化させることにある。特に本発明は、医薬品としての使用に耐えうる条件（例えば、ｐＨ、塩濃度など）でタンパク質を安定化させることを目的とする。

本発明者は、上記課題を解決すべく、ＩｇＭの保存に適したｐＨ領域および塩濃度において、ＩｇＭの低温沈殿を抑制する方法として、一般的に抗体が安定であると考えられているｐＨ５〜８の範囲で、ｐＨ緩衝剤の１つとして、クエン酸緩衝液の利用につき検討した。その結果、クエン酸緩衝液が低温沈殿を顕著に抑制することを見出した。即ち、クエン酸緩衝液を用いることで、ＩｇＭの低温での溶解度を向上させ、ＩｇＭの高濃度溶液を調製することが可能となった。このＩｇＭに対するクエン酸の効果は、イオン的相互作用、ファンデルワールス相互作用、水素結合に代表されるタンパク質間の相互作用の強さを調節することを原理とするものであるため、低温で水溶液に対する溶解度が低下するＩｇＭ以外の種々のタンパク質に適用しうるものと考えられる。

即ち、本発明は、タンパク質を低温で安定化する方法に関し、より詳しくは、下記発明を提供するものである。
（１）タンパク質を低温で安定化する方法であって、タンパク質を含有する溶液にクエン酸緩衝液を添加する方法。
（２）タンパク質の安定化が低温沈殿の抑制によるものである、（１）に記載の方法。
（３）タンパク質がＩｇＭである、（１）に記載の方法。
（４）タンパク質を含有する溶液のｐＨが５〜８である、（１）に記載の方法。

種々の濃度のＩｇＭの低温（４℃）における安定性に対するクエン酸緩衝液の影響を示す写真である。 １０ｍｇ／ｍＬ ＩｇＭの低温（１，４，７℃）における安定性に対するクエン酸緩衝液の影響を示す図である。 １０ｍｇ／ｍＬ ＩｇＭの低温（４℃）における安定性に対するクエン酸緩衝液の影響を示す写真である。 １０ｍｇ／ｍＬ ＩｇＭの低温（４℃）における安定性に対するクエン酸緩衝液の影響を示す図である。

本発明において「タンパク質」とは、アミノ酸同士がペプチド結合により結合した化合物を意味する。本発明に適用しうるタンパク質としては、低温で水溶液に対する溶解性が低下するものであれば良く、ＩｇＧ、ピーナッツアグルチニン（ＰＮＡ）などが挙げられる。

本発明におけるタンパク質としては、ＩｇＭが特に好ましい。本発明において「ＩｇＭ」とはＨ鎖の定常領域としてμ鎖の定常領域を有し、かつ５量体または６量体の構造を持つイムノグロブリンを言う。一方、本発明におけるＩｇＭを構成する可変領域の由来は限定されない。したがって、μ鎖由来の可変領域に加えて、ＩｇＧ由来の可変領域やその部分構造を含むことができる。可変領域の部分構造としては、フレームワークやＣＤＲを示すことができる。なお本発明におけるＩｇＭは、形質転換細胞に導入された外来性のＩｇＭ遺伝子の発現産物を言う。

さらに、本発明のＩｇＭを構成する定常領域が由来する動物種も限定されない。つまり本発明のＩｇＭは、ＩｇＭタイプのイムノグロブリンを有するあらゆる動物種に由来するＩｇＭ定常領域を含む。ＩｇＭを体内への投与に用いる場合には、少なくともその定常領域は、投与対象となる種と同じ種に由来することが望ましい。したがって、ヒトへの投与を目的とする場合には、少なくとも定常領域がヒト由来であることが望ましい。ヒト由来の定常領域と、他の動物種、あるいはヒト由来であるが他の個体に由来する可変領域とで構成されるＩｇＭは、キメラ抗体と呼ばれる。定常領域に加えて、可変領域のフレームワークもヒト由来としたＩｇＭは、ヒトへの投与用のＩｇＭとして更に好ましいＩｇＭである。可変領域のフレームワークの構造を維持し、ＣＤＲのみを他の動物種の抗体と組み換えられた抗体は、ヒト化抗体と呼ばれている。

本発明によれば、高濃度のタンパク質の低温沈殿を抑制することができる。ここで「高濃度」とは、溶液中の含有量が１ｍｇ／ｍＬより高濃度（例えば、５ｍｇ／ｍＬ以上、１０ｍｇ／ｍＬ以上、２０ｍｇ／ｍＬ以上、２５ｍｇ／ｍＬ以上）を意味する。
本発明において使用できる「クエン酸緩衝液」は、クエン酸のみをｐＨ緩衝剤として使用したものに限らず、リン酸などのクエン酸以外のｐＨ緩衝剤も含むものでも良い。
溶液に添加されるクエン酸緩衝液の濃度は、通常、１〜５００ｍＭであり、好ましくは５〜１００ｍＭであり、さらに好ましくは１０〜５０ｍＭである。本発明における「安定化」とは、溶液中に生じるタンパク質の低温沈殿の増加を抑制することをいう。

タンパク質溶液の安定化は、例えば、つぎの式により求まる低温沈殿増加抑制率により測定することができる。
低温沈殿増加抑制率＝（Ａ−Ｂ）／Ａ×１００
Ａ：クエン酸緩衝液を添加しないＩｇＭ高濃度溶液（コントロール）の低温沈殿の形成率
Ｂ：クエン酸緩衝液を添加したＩｇＭ高濃度溶液（被験試料）の低温沈殿の形成率

本発明の溶液は、タンパク質を含有する溶液にクエン酸緩衝液を添加してから１℃、１週間後の低温沈殿増加抑制率が、好ましくは１０％以上、より好ましくは３０％以上、さらに好ましくは５０％以上、更に好ましくは８０％以上のものである。
本発明のタンパク質を含有する溶液のｐＨは、タンパク質が安定なｐＨとすることが可能であり、具体的にはｐＨ５〜８であることが好ましい。また、本発明のタンパク質を含有する溶液のｐＨは、タンパク質の保存安定性に適したｐＨとすることも可能であり、具体的にはｐＨ５〜７であることが好ましく、さらに好ましくは、ｐＨ５〜６であることが望ましい。

本発明の医薬品製剤の剤形に特に限定はなく、任意の剤形とすることが可能である。剤形としては、例えば、溶液製剤、凍結乾燥製剤を挙げることができる。また、溶液製剤としては、冷所保存製剤、常温保存製剤、凍結製剤などが挙げられる。また、本発明の医薬品製剤の投与ルートにも限定はなく、任意の投与ルートを用いることが可能である。したがって、医薬品製剤の使用目的に応じて、経口、非経口投与のいずれでもありうる。
非経口投与のための具体的な剤型として、注射剤型、経鼻投与剤型、経肺投与剤型、経皮投与型などを示すことができる。注射剤型の例としては、例えば、静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射などにより全身または局部的に投与することができる。

本発明の方法により、安定化したＩｇＭは、それ自体を直接患者に投与する以外に、公知の製剤学的方法により製剤化した薬剤として投与することもできる。例えば、水もしくはそれ以外の薬学的に許容し得る液との無菌性溶液、又は懸濁液剤の注射剤の形で使用できる。また、例えば、薬理学上許容される担体もしくは媒体、具体的には、滅菌水や生理食塩水、乳化剤、懸濁剤、界面活性剤、安定剤、ベヒクル、防腐剤などと適宜組み合わせて、一般に認められた製薬実施に要求される単位用量形態で混和することによって製剤化することが考えられる。これら製剤における有効成分量は、指示された範囲の適当な容量が得られるように調節することができる。

注射のための無菌組成物は注射用蒸留水のようなベヒクルを用いて通常の製剤実施に従って処方することができる。注射用の水溶液としては、例えば生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助剤を含む等張液などが利用される。補助剤には、具体的には、例えばＤ−ソルビトール、Ｄ−マンノース、Ｄ−マンニトール、塩化ナトリウム等を利用することができる。医薬組成物には、適当な溶解補助剤を加えることもできる。例えばアルコールや非イオン性界面活性剤は、溶解補助剤として好ましい。アルコールとしては、具体的にはエタノール、ポリアルコール、例えばプロピレングリコール、ポリエチレングリコール等を示すことができる。また非イオン性界面活性剤としては、例えばポリソルベート８０、あるいはＨＣＯ−５０を用いることができる。また、塩化ベンザルコニウム等の陽イオン性界面活性剤も使用できる。

油性液としてはゴマ油、大豆油があげられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールと併用してもよい。また、緩衝剤、例えばリン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液、無痛化剤、例えば、塩酸プロカイン、安定剤、例えばベンジルアルコール、フェノール、酸化防止剤と配合してもよい。調製された注射液は通常、適当なバイアルあるいはアンプルに充填される。

医薬品製剤は、対象疾患、患者の年齢、症状により適宜投与量を選択することができる。例えば、一回につき体重１ｋｇあたり０．０００１ｍｇから１０００ｍｇの範囲で選ぶことが可能である。あるいは、例えば、患者あたり０．００１〜１０００００ｍｇ／ｂｏｄｙの範囲で投与量を選ぶことができる。しかしながら、本発明の医薬品製剤はこれらの投与量に制限されるものではない。
その他、本発明の溶液製剤等の調製に関しては、ＷＯ２００２／０９６４５７を、参照のこと。
なお本明細書において引用された全ての先行技術文献は、参照として本明細書に組み入れられる。

以下、実施例により、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に制限されるものではない。
［実施例１］
以下の実施例では、ＩｇＭとして、参考例で作製した組換え型抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体（以下、「ＭＡＢＯＮ−０１」という）を使用した。高濃度ＭＡＢＯＮ−０１溶液を室温で作製した。溶液の組成は次の通りである。
クエン酸緩衝液：２０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ｃｉｔｒａｔｅ，３００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ５．５（クエン酸緩衝液）
酢酸緩衝液：２０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ，３００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ５．５（酢酸緩衝液）
また、ＩｇＭを含有するクエン酸緩衝液および酢酸緩衝液を、ＩｇＭの濃度に応じて、便宜上、表１のように命名した。

これらの溶液を４℃で保存したときの、溶液の様子を図１に示す。Ａ４及びＡ５の高濃度のＭＡＢＯＮ−０１の酢酸緩衝液溶液で明らかな低温沈殿（ｃｒｙｏｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ）が見られたのに対して、同濃度のクエン酸緩衝液溶液（Ｃ４及びＣ５）においては、低温沈殿が見られなかった。すなわち、緩衝液として、クエン酸を用いることで、低温沈殿することなく高濃度化できることが分かった。

［実施例２］
約２０ｍｇ／ｍＬのＭＡＢＯＮ−０１の２０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ，３００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ６．０溶液を室温で調製し、透析膜ＥａｓｙＳｅｐ（ＴＯＭＹ）を用いて２０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ｃｉｔｒａｔｅ，３００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ５．５（クエン酸緩衝液）、または２０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ，３００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ６．０（酢酸緩衝液）に対して４℃で透析し、緩衝液置換を行った。室温に戻した後、それぞれのｂｕｆｆｅｒで希釈し１０ｍｇ／ｍＬ溶液を調製した。これらの溶液を、０．５ｍＬのＰＣＲチューブに充填し、７℃、４℃、１℃で２６日間保存して低温沈殿の生成を目視により確認した。遠心分離を行い得られた上清中のＭＡＢＯＮ−０１濃度をゲルろ過クロマトグラフィーにより測定した。ゲルろ過クロマトグラフィーはカラムとして、Ｇ４０００ＳＷｘｌ（ＴＯＳＯＨ）を用い、５０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ，５００ｍＭ ＫＣｌ，ｐＨ７．４の溶液を移動相として行った。ゲルろ過クロマトグラフィーの会合体ピーク面積と単量体ピーク面積の合計値を低温沈殿前後で比較し、ＭＡＢＯＮ−０１の低温沈殿の形成率を算出した。

目視では、ＭＡＢＯＮ−０１の酢酸緩衝液溶液を４℃、および１℃で保存した場合に低温沈殿が観察されたが、それ以外の溶液では沈殿は認められなかった。
図２に、各試料における低温沈殿の形成率を示した。いずれの緩衝液系においても温度が低い程、沈殿量が増加する傾向が認められたが、どの温度においてもクエン酸緩衝液系では酢酸緩衝液系に比べて沈殿量が少なく、クエン酸緩衝液を用いることによる明らかな低温沈殿抑制効果が認められた。２０ｍＭの酢酸緩衝液から２０ｍＭのクエン酸緩衝液に変更することにより、高濃度の塩などを加えることなく、より低温での保存が可能であることが確認された。

［実施例３］
約２０ｍｇ／ｍＬのＭＡＢＯＮ−０１の２０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ，３００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ６．０溶液を室温で調製し、透析膜ＥａｓｙＳｅｐ（ＴＯＭＹ）を用いて２０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ｃｉｔｒａｔｅ，３００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ５．０，ｐＨ５．５，またはｐＨ６．０（クエン酸緩衝液）、および２０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ａｃｅｔａｔｅ，３００ｍＭ ＮａＣｌ，ｐＨ５．０，ｐＨ５．５，またはｐＨ６．０（酢酸緩衝液）に対して４℃で透析し、緩衝液置換を行った。室温に戻した後、それぞれのｂｕｆｆｅｒで希釈し１０ｍｇ／ｍＬ溶液を調製した。これらの溶液を、０．５ｍＬのＰＣＲチューブに充填し、４℃で２９日間保存して低温沈殿の生成を目視により確認した。遠心分離を行い得られた上清中のＭＡＢＯＮ−０１濃度をゲルろ過クロマトグラフィーにより測定した。ゲルろ過クロマトグラフィーはカラムとして、Ｇ４０００ＳＷｘｌ（ＴＯＳＯＨ）を用い、５０ｍＭ ｓｏｄｉｕｍ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ，５００ｍＭ ＫＣｌ，ｐＨ７．４の溶液を移動相として行った。ゲルろ過クロマトグラフィーの会合体ピーク面積と単量体ピーク面積の合計値を低温沈殿前後で比較し、ＭＡＢＯＮ−０１の低温沈殿の形成率を算出した。

目視による溶液の様子を図３に示す。酢酸緩衝液のｐＨ５．５、ｐＨ６．０で低温沈殿が観察されたが、それ以外の溶液では沈殿は認められなかった。
低温沈殿の形成率を図４に示す。酢酸緩衝液系ではｐＨ５．５で最大となるカーブを示したのに対し、クエン酸緩衝液系では沈殿量が少なく、一定の傾向は観察されなかった。製剤に最適なｐＨ５．５〜６．０の範囲で比較した場合、２０ｍＭの酢酸緩衝液から２０ｍＭのクエン酸緩衝液系に変更することにより、同一のｐＨであっても低温沈殿が抑制されることが確認された。

［参考例１］ガングリオシドＧＭ３に対する組換え型ヒト抗体の作製
１．１ 抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｈ鎖遺伝子の構築
ガングリオシドＧＭ３に結合するヒト抗体のＨ鎖をコードする遺伝子は、Ｅｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒウイルスで形質転換されたヒトＢ細胞（以下、抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現Ｂ細胞と表記する）より抽出したＴｏｔａｌ ＲＮＡを用いて、ＲＴ−ＰＣＲ法によって増幅した。
Ｔｏｔａｌ ＲＮＡは、ＲＮｅａｓｙ Ｐｌａｎｔ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔｓ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて１×１０^７細胞の抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現Ｂ細胞より抽出した。Ｈｏｏｎらが報告している抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体遺伝子の塩基配列（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ １９９３；５３：５２４４−５２５０）に基づいて、２本のオリゴヌクレオチド（ＬＭＨ−ｆ３、ＬＭＨ−ｒ３）を設計した。ＬＭＨ−ｆ３（配列番号：７）はセンス方向で、ＬＭＨ−ｒ３（配列番号：８）はアンチセンス方向でそれぞれ合成した。１μｇのＴｏｔａｌ ＲＮＡを使用して、ＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＣＬＯＮＴＥＣＨ社製）を用い５’末端側と３’末端側に分割して遺伝子断片を増幅した。５’末端側遺伝子の増幅は合成オリゴヌクレオチドＬＭＨ−ｒ３を用い、３’末端側遺伝子の増幅は合成オリゴヌクレオチドＬＭＨ−ｆ３を用いた。逆転写反応は４２℃で１時間３０分間反応させた。
ＰＣＲ反応溶液（５０μＬ）の組成を次に示す。
５μＬの１０×Ａｄｖａｎｔａｇｅ ２ ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、
５μＬの１０×Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ Ｍｉｘ、
０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ（ｄＡＴＰ，ｄＧＴＰ，ｄＣＴＰ，ｄＴＴＰ）、
１μＬのＡｄｖａｎｔａｇｅ ２ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｍｉｘ、
（以上の成分はいずれもＣＬＯＮＴＥＣＨ社製）
２．５μＬの逆転写反応産物、
１０ｐｍｏｌｅの合成オリゴヌクレオチドＬＭＨ−ｆ３またはＬＭＨ−ｒ３
また反応温度条件は次のとおりである。
９４℃の初期温度にて３０秒間、
９４℃／５秒間、７２℃／３分間のサイクルを５回
９４℃／５秒間、７０℃／１０秒間、７２℃／３分間のサイクルを５回反復
９４℃／５秒間、６８℃／１０秒間、７２℃／３分間のサイクルを２５回反復
最後に反応産物を７２℃で７分間加熱した。

ＰＣＲ産物はＱＩＡｑｕｉｃｋ Ｇｅｌ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて、アガロースゲルから精製した後、ｐＧＥＭ−Ｔ Ｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）へクローニングした。塩基配列決定の後、５’末端側遺伝子を含むベクターを制限酵素ＡｐａＩ（宝酒造社製）及びＳａｃＩＩ（宝酒造社製）で消化して得られる約１．１ｋｂｐの断片、および３’末端側遺伝子を含むベクターを制限酵素ＡｐａＩ（宝酒造社製）及びＮｏｔＩ（宝酒造社製）で消化して得られる約１．１ｋｂｐの断片を混合し、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＫＳ＋ベクター（東洋紡社製）へクローニングし、完全長抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｈ鎖遺伝子を得た。

動物細胞発現用ベクターへクローニングするために、合成オリゴヌクレオチドＬＭＨ−ｆｘｈｏ、ＬＭＨ−ｒｓａｌを用いて完全長の遺伝子断片を増幅した。ＬＭＨ−ｆｘｈｏ（配列番号：１１）は前方プライマーで抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｈ鎖遺伝子の５’末端にハイブリダイズし、かつＸｈｏＩ制限酵素認識配列ならびにコザック配列を持つように、またＬＭＨ−ｒｓａｌ（配列番号：１２）は後方プライマーで抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｈ鎖遺伝子の３’末端にハイブリダイズし、ＳａｌＩ制限酵素認識配列を持つようにそれぞれ設計した。
ＰＣＲ反応溶液（５０μＬ）の組成を次に示す。
５μＬの１０×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、
１ｍＭ ＭｇＳＯ_４、
０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ（ｄＡＴＰ，ｄＧＴＰ，ｄＣＴＰ，ｄＴＴＰ）、
１ユニットのＤＮＡポリメラーゼＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−
（以上の成分はいずれも東洋紡社製）、
１０ｎｇの完全長抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｈ鎖遺伝子を含むｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＫＳ＋ベクター、
１０ｐｍｏｌｅの合成オリゴヌクレオチドＬＭＨ−ｆｘｈｏ、ＬＭＨ−ｒｓａｌ
また反応温度条件は次のとおりである。
９４℃の初期温度にて２分間、
９４℃／１５秒間、６０℃／３０秒間、６８℃／２分間のサイクルを３０回反復
最後に反応産物を７２℃で５分間加熱した。

増幅した遺伝子断片は、制限酵素ＸｈｏＩ（宝酒造社製）および制限酵素ＳａｌＩ（宝酒造社製）で消化した後に、ＱＩＡｑｕｉｃｋ ＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて精製し、ｐＵＣＡＧの制限酵素ＸｈｏＩ部位に連結し、クローニングした。本ベクターｐＵＣＡＧは、ｐＣＸＮ（Ｎｉｗａら、Ｇｅｎｅ １９９１；１０８：１９３−２００）を制限酵素ＢａｍＨＩで消化して得られる２．６ｋｂｐの断片をｐＵＣ１９ベクター（東洋紡社製）の制限酵素ＢａｍＨＩ部位に連結し、クローニングしたベクターである。完成したプラスミドをｐＵＣＡＧ／Ｌ６１２Ｈと命名した。本プラスミドに含まれる抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｈ鎖の塩基配列およびアミノ酸配列を配列番号：１及び配列番号：２に示す。

１．２ 抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｌ鎖遺伝子の構築
抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体のＬ鎖をコードする遺伝子は抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現Ｂ細胞より抽出したＴｏｔａｌ ＲＮＡを用いて、ＲＴ−ＰＣＲ法によって増幅した。Ｔｏｔａｌ ＲＮＡは、上記と同様にして抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現Ｂ細胞より抽出した。Ｈｏｏｎらが報告している抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体遺伝子の塩基配列（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ １９９３；５３：５２４４−５２５０）に基づいて、２本のオリゴヌクレオチド（ＬＭＬ−ｆ１、ＬＭＬ−ｒ１）を設計した。ＬＭＬ−ｆ１（配列番号：９）はセンス方向で、ＬＭＬ−ｒ１（配列番号：１０）はアンチセンス方向でそれぞれ合成した。
１μｇのＴｏｔａｌ ＲＮＡを使用して、ＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＣＬＯＮＴＥＣＨ社製）を用い５’末端側と３’末端側に分割して遺伝子断片を増幅した。５’末端側遺伝子の増幅は合成オリゴヌクレオチドＬＭＬ−ｒ１を用い、３’末端側遺伝子の増幅は合成オリゴヌクレオチドＬＭＬ−ｆ１を用いた。逆転写反応は４２℃で１時間３０分間反応させた。
ＰＣＲ反応溶液（５０μＬ）の組成を次に示す。
５μＬの１０×Ａｄｖａｎｔａｇｅ ２ ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、
５μＬの１０×Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ Ｍｉｘ、
０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ（ｄＡＴＰ，ｄＧＴＰ，ｄＣＴＰ，ｄＴＴＰ）、
１μＬのＡｄｖａｎｔａｇｅ ２ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｍｉｘ
（以上の成分はいずれもＣＬＯＮＴＥＣＨ社製）
２．５μＬの逆転写反応産物、
１０ｐｍｏｌｅの合成オリゴヌクレオチドＬＭＬ−ｆ１またはＬＭＬ−ｒ１
また反応温度条件は次のとおりである。
９４℃の初期温度にて３０秒間、
９４℃／５秒間、７２℃／３分間のサイクルを５回反復
９４℃／５秒間、７０℃／１０秒間、７２℃／３分間のサイクルを５回反復、
９４℃／５秒間、６８℃／１０秒間、７２℃／３分間のサイクルを２５回反復
最後に反応産物を７２℃で７分間加熱した。

ＰＣＲ産物はＱＩＡｑｕｉｃｋ Ｇｅｌ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて、アガロースゲルから精製した後、ｐＧＥＭ−Ｔ Ｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）へクローニングした。塩基配列決定の後、５’末端側遺伝子を含むベクターを制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）で消化して得られる約０．７ｋｂｐの断片、および３’末端側遺伝子を含むベクターを制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）で消化して得られる約０．９ｋｂｐの断片を混合し、合成オリゴヌクレオチドＬＭＬ−ｆｅｃｏ、ＬＭＬ−ｒｎｏｔを用いて完全長の遺伝子断片を増幅した。ＬＭＬ−ｆｅｃｏ（配列番号：１３）は前方プライマーで抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｌ鎖遺伝子の５’末端にハイブリダイズし、かつＥｃｏＲＩ制限酵素認識配列ならびにコザック配列を持つように、またＬＭＬ−ｒｎｏｔ（配列番号：１４）は後方プライマーで抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｌ鎖遺伝子の３’末端にハイブリダイズし、ＮｏｔＩ制限酵素認識配列を持つようにそれぞれ設計した。
ＰＣＲ反応溶液（５０μＬ）の組成を次に示す。
５μＬの１０×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、
１ｍＭ ＭｇＳＯ_４、
０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ（ｄＡＴＰ，ｄＧＴＰ，ｄＣＴＰ，ｄＴＴＰ）、
１ユニットのＤＮＡポリメラーゼＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−
（以上の成分はいずれも東洋紡社製）
５’末端側遺伝子断片、
３’末端側遺伝子断片、
１０ｐｍｏｌｅの合成オリゴヌクレオチドＬＭＬ−ｆｅｃｏ、ＬＭＬ−ｒｎｏｔ
また反応温度条件は次のとおりである。
９４℃の初期温度にて２分間
９４℃／１５秒間、６０℃／３０秒間、６８℃／２分間のサイクルを３０回反復
最後に反応産物を７２℃で５分間加熱した。

増幅した遺伝子断片は、制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）および制限酵素ＮｏｔＩ（宝酒造社製）で消化した後に、ＱＩＡｑｕｉｃｋ ＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて精製し、ｐＣＸＮＤ３の制限酵素ＥｃｏＲＩおよびＮｏｔＩ切断部位に連結し、クローニングした。
本ベクターｐＣＸＮＤ３の構築の流れについて、以下に述べる。ＤＨＦＲ−ΔＥ−ｒｖＨ−ＰＭ１−ｆ（ＷＯ９２／１９７５９参照）の抗体Ｈ鎖遺伝子とベクターを分割するために、制限酵素ＥｃｏＲＩ／ＳｍａＩ部位で消化し、ベクター側のみ回収した後に、ＥｃｏＲＩ−ＮｏｔＩ−ＢａｍＨＩ ａｄａｐｔｏｒ（宝酒造社製）をクローニングした。このベクターをｐＣＨＯＩと命名した。
ｐＣＨＯＩのＤＨＦＲ遺伝子発現部位をｐＣＸＮ（Ｎｉｗａら、Ｇｅｎｅ １９９１；１０８：１９３−２００）の制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩ部位にクローニングしたベクターをｐＣＸＮＤ３と命名した。また、Ｌ鎖遺伝子断片をｐＣＸＮＤ３にクローニングし、完成したプラスミドをｐＣＸＮＤ３／Ｌ６１２Ｌと命名した。本プラスミドに含まれる抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｌ鎖の塩基配列及びアミノ酸配列を配列番号：３および配列番号：４に示す。

１．３ 抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体の発現ベクターの構築
抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現ベクターを作製するために、ｐＵＣＡＧ／Ｌ６１２Ｈを制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩ（宝酒造社製）で消化して得られる約４．０ｋｂｐの断片をｐＣＸＮＤ３／Ｌ６１２Ｌの制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩ切断部位に連結し、クローニングした。完成したプラスミドをｐＣＸＮＤ３／Ｌ６１２ＩｇＭと命名した。本プラスミドは動物細胞内でネオマイシン耐性遺伝子、ＤＨＦＲ遺伝子、抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体遺伝子を発現する。

１．４ 抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｊ鎖遺伝子および発現ベクターの構築
抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体のＪ鎖をコードする遺伝子は抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現Ｂ細胞より抽出したＴｏｔａｌ ＲＮＡを用いて、ＲＴ−ＰＣＲ法によって増幅した。Ｔｏｔａｌ ＲＮＡは、上記と同様にして抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現Ｂ細胞より抽出した。ＧｅｎＢａｎｋに登録されているヒト抗体Ｊ鎖遺伝子の塩基配列（ＧｅｎＢａｎｋ番号：Ｍ１２７５９）に基づいて、２本のオリゴヌクレオチド（Ｊ−ｆ１、Ｊ−ｒ１）を設計し、合成した。Ｊ−ｆ１（配列番号：１５）はセンス方向でヒト抗体Ｊ鎖遺伝子Ｅｘｏｎ３にハイブリダイズし、Ｊ−ｒ１（配列番号：１６）はアンチセンス方向でヒト抗体Ｊ鎖遺伝子Ｅｘｏｎ４にハイブリダイズする。
１μｇのＴｏｔａｌ ＲＮＡを使用して、ＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＣＬＯＮＴＥＣＨ社製）を用い５’末端側と３’末端側に分割して遺伝子断片を増幅した。５’末端側遺伝子の増幅は合成オリゴヌクレオチドＪ−ｒ１を用い、３’末端側遺伝子の増幅は合成オリゴヌクレオチドＪ−ｆ１を用いた。逆転写反応は４２℃で１時間３０分間反応させた。

ＰＣＲ反応溶液（５０μＬ）の組成を次に示す。
５μＬの１０×Ａｄｖａｎｔａｇｅ ２ ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、
５μＬの１０×Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ Ｍｉｘ、
０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ（ｄＡＴＰ，ｄＧＴＰ，ｄＣＴＰ，ｄＴＴＰ）、
１μＬのＡｄｖａｎｔａｇｅ ２ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｍｉｘ
（以上の成分はいずれもＣＬＯＮＴＥＣＨ社製）
２．５μＬの逆転写反応産物、
１０ｐｍｏｌｅの合成オリゴヌクレオチドＪ−ｆ１またはＪ−ｒ１
また反応温度条件は次のとおりである。
９４℃の初期温度にて３０秒間
９４℃／５秒間、７２℃／３分間のサイクルを５回反復
９４℃／５秒間、７０℃／１０秒間、７２℃／３分間のサイクルを５回反復
９４℃／５秒間、６８℃／１０秒間、７２℃／３分間のサイクルを２５回反復
最後に反応産物を７２℃で７分間加熱した。

ＰＣＲ産物はＱＩＡｑｕｉｃｋ Ｇｅｌ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて、アガロースゲルから精製した後、ｐＧＥＭ−Ｔ Ｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）へクローニングした。
塩基配列決定の後、５’末端側遺伝子を含むベクターを制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）で消化して得られる約０．５ｋｂｐの断片、および３’末端側遺伝子を含むベクターを制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）で消化して得られる約１．０ｋｂｐの断片を混合し合成オリゴヌクレオチドＪ−ｆｅｃｏ、Ｊ−ｒｘｂａを用いて完全長の遺伝子断片を増幅した。
Ｊ−ｆｅｃｏ（配列番号：１７）は前方プライマーで抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｊ鎖遺伝子の５’末端にハイブリダイズし、かつＥｃｏＲＩ制限酵素認識配列ならびにコザック配列を持つように、またＪ−ｒｘｂａ（配列番号：１８）は後方プライマーで抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｊ鎖遺伝子の３’末端にハイブリダイズし、ＸｂａＩ制限酵素認識配列を持つようにそれぞれ設計した。

ＰＣＲ反応溶液（５０μＬ）の組成を次に示す。
５μＬの１０×ＰＣＲ Ｂｕｆｆｅｒ、
１ｍＭ ＭｇＳＯ_４、
０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ（ｄＡＴＰ，ｄＧＴＰ，ｄＣＴＰ，ｄＴＴＰ）、
１ユニットのＤＮＡポリメラーゼＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−
（以上の成分はいずれも東洋紡社製）
５’末端側遺伝子断片、
３’末端側遺伝子断片、
１０ｐｍｏｌｅの合成オリゴヌクレオチドＪ−ｆｅｃｏ、Ｊ−ｒｘｂａ
また反応温度条件は次のとおりである。
９４℃の初期温度にて２分間
９４℃／１５秒間、６０℃／３０秒間、６８℃／２分間のサイクルを３０回反復
最後に反応産物を７２℃で５分間加熱した。
増幅した遺伝子断片は、制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）および制限酵素ＸｂａＩ（宝酒造社製）で消化した後に、ＱＩＡｑｕｉｃｋ ＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて精製し、ｐＣＯＳＩＩ−Ｚｅｏの制限酵素ＥｃｏＲＩおよびＸｂａＩ切断部位に連結し、クローニングした。

本ベクターｐＣＯＳＩＩ−Ｚｅｏは、上述のｐＣＨＯＩのＤＨＦＲ遺伝子発現部位を除去し、Ｚｅｏｃｉｎ耐性遺伝子発現部位をクローニングしたベクターである。完成したプラスミドをｐＣＯＳＩＩ−Ｚｅｏ／Ｊ ｃｈａｉｎと命名した。本プラスミドに含まれる抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体Ｊ鎖の塩基配列及びアミノ酸配列を配列番号：５および配列番号：６に示す。

１．５ 動物細胞を用いた抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体の発現
ＣＨＯ細胞（ＤＧ４４株）を用いた安定発現細胞株の作製は次のようにして行った。Ｇｅｎｅ ＰｕｌｓｅｒＩＩ（ＢｉｏＲａｄ社製）を用いたエレクトロポレーション法により遺伝子導入した。
Ｊ鎖を発現しない細胞株の遺伝子導入について以下に述べる。抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現ベクターｐＣＸＮＤ３／Ｌ６１２ＩｇＭ（２５μｇ）とＰＢＳに懸濁したＣＨＯ細胞（１×１０^７細胞／ｍｌ）の０．７５ｍｌを混合したものを氷上で１０分間冷却し、キュベットに移した後に１．５ｋＶ、２５μＦＤの容量にてパルスを与えた。

室温にて１０分間の回復期間の後、エレクトロポレーション処理された細胞を、ＨＴ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を１倍濃度で含むＣＨＯ−Ｓ−ＳＦＭＩＩ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）４０ｍＬに懸濁した。同様の培地で５０倍希釈溶液を作製し、９６ウェル培養用プレートに１００μｌ／ウェルで分注した。ＣＯ_２インキュベーター（５％ＣＯ_２）で２４時間培養後、Ｇｅｎｅｔｉｃｉｎ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を０．５ｍｇ／ｍＬになるように添加して２週間培養した。
Ｇｅｎｅｔｉｃｉｎ耐性を示す形質転換細胞のコロニーが観察されたウェルの培養上清中のＩｇＭ量について参考例１．６に示す濃度定量法で測定した。抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体高発現細胞株を順次拡大培養し、抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体安定発現細胞株ＣＡ０２、ＣＡ１５、ＣＡ１９、ＣＡ２０、およびＣＡ２４を得た。
また、Ｊ鎖を発現する細胞株の遺伝子導入について以下に述べる。抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体発現ベクターｐＣＸＮＤ３／Ｌ６１２ＩｇＭ（２５μｇ）およびＪ鎖発現ベクターｐＣＯＳＩＩ−Ｚｅｏ／Ｊ ｃｈａｉｎ（２０μｇ）とＰＢＳに懸濁したＣＨＯ細胞（１×１０^７細胞／ｍｌ）の０．７５ｍｌを混合したものを氷上で１０分間冷却し、キュベットに移した後に１．５ｋＶ、２５μＦＤの容量にてパルスを与えた。

室温にて１０分間の回復期間の後、エレクトロポレーション処理された細胞を、ＨＴ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を１倍濃度で含むＣＨＯ−Ｓ−ＳＦＭＩＩ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）４０ｍＬに懸濁した。
同様の培地で５０倍希釈溶液を作製し、９６ウェル培養用プレートに１００μｌ／ウェルで分注した。ＣＯ_２インキュベーター（５％ＣＯ_２）で２４時間培養後、０．５ｍｇ／ｍＬ濃度のＧｅｎｅｔｉｃｉｎ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）および０．６ｍｇ／ｍＬ濃度のＺｅｏｃｉｎ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を添加して２週間培養した。Ｇｅｎｅｔｉｃｉｎ、Ｚｅｏｃｉｎ耐性を示す形質転換細胞のコロニーが観察されたウェルの培養上清中のＩｇＭ量について参考例１．６に示す濃度定量法で測定した。抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体高発現細胞株を順次拡大培養し、抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体安定発現細胞株（ＣＪ１５、ＣＪ２５、ＣＪ３８、ＣＪ４５、ＣＪ６７）を得た。

１．６ 培養上清中のＩｇＭ濃度の測定
培養上清中のＩｇＭ濃度の測定は以下のように行った。Ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ ＩｇＭ（ＢＩＯＳＯＲＣＥ社製）を１μｇ／ｍｌになるようにＣｏａｔｉｎｇ Ｂｕｆｆｅｒ（０．１Ｍ ＮａＨＣＯ_３、０．０２％ＮａＮ_３）で希釈し、９６ウェルＥＬＩＳＡ用プレートに１００μｌ／ウェルで加え、４℃で２４時間以上反応させ、コーティングを行った。
さらに、Ｒｉｎｓｅ Ｂｕｆｆｅｒで洗浄した後に、２００μＬ／ウェルのＤｉｌｕｅｎｔ Ｂｕｆｆｅｒを加え、室温で１時間以上反応させ、ブロッキングした。Ｒｉｎｓｅ ＢｕｆｆｅｒおよびＤｉｌｕｅｎｔ Ｂｕｆｆｅｒの組成はそれぞれ次のとおりである。

Ｒｉｎｓｅ Ｂｕｆｆｅｒ：
ＰＢＳ（−）、
０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０
Ｄｉｌｕｅｎｔ Ｂｕｆｆｅｒ：
５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、
１ｍＭ ＭｇＣｌ_２、
０．１５Ｍ ＮａＣｌ、
０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０、
０．０２％ ＮａＮ_３、
１％ ＢＳＡ

その後、Ｄｉｌｕｅｎｔ Ｂｕｆｆｅｒで適当に希釈した培養上清を１００μＬ／ウェルで加え、室温で１時間反応させた。Ｒｉｎｓｅ Ｂｕｆｆｅｒで洗浄した後に、Ｇｏａｔ Ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ ＩｇＭ、Ａｌｋａｌｉｎｅ Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ（ＢＩＯＳＯＲＣＥ社製）をＤｉｌｕｅｎｔ Ｂｕｆｆｅｒで４０００倍に希釈し、１００μＬ／ウェルで加え、室温で１時間反応させた。最後にＲｉｎｓｅ Ｂｕｆｆｅｒで洗浄した後にアルカリフォスファターゼ基質（ＳＩＧＭＡ社製）を加え、吸光光度計Ｂｅｎｃｈｍａｒｋ Ｐｌｕｓ（ＢｉｏＲａｄ社製）を用いて、測定波長４０５ｎｍ、対照波長６５５ｎｍの吸光度を測定した。ＩｇＭ濃度は抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体精製品（Ｈｏｏｎら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ １９９３；５３：５２４４−５２５０）との比較で算出した。
各種抗ガングリオシドＧＭ３ヒト抗体安定発現細胞株を７５ｃｍ^２培養フフスコ内で初発細胞密度２ｘ１０^５ｃｅｌｌｓ／ｍＬで培養し、培養上清中のＩｇＭ濃度を上記の方法で測定した。結果を表２に示す。ＩｇＭ産生量は培養３日目で約２０ｍｇ／Ｌ、培養７日目で約５０ｍｇ／Ｌであり、単一細胞が産生する能力を示す産生能は５〜１９ｐｇ／ｃｅｌｌ／ｄａｙであった。ＩｇＭはイムノグロブリンの中でも多量体を形成するために、組換え体は発現量が低く、大量に調製することが困難であるとされていたが、今回の結果より、ＣＨＯ細胞において高い産生量の組換え型ＩｇＭ発現細胞が作製できることが明らかになった。

本発明により、低温下で高濃度のタンパク質を溶液中にて安定化することが可能となった。本発明によれば、ＩｇＭなどのタンパク質を有効成分とする医薬製剤を低温にて長期間安定に保存することが可能であるため、本発明は特にタンパク質製剤の調製に大きく貢献しうるものである。

Claims (4)

1. タンパク質を低温で安定化する方法であって、タンパク質を含有する溶液にクエン酸緩衝液を添加する方法。
2. タンパク質の安定化が低温沈殿の抑制によるものである、請求項１に記載の方法。
3. タンパク質がＩｇＭである、請求項１に記載の方法。
4. タンパク質を含有する溶液のｐＨが５〜８である、請求項１に記載の方法。

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