JPS639838B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
Description
(産業上の利用分野)
本発明は補酵素Qの製造方法、特に微生物菌体
から高収率で補酵素Qを製造する方法に関するも
のである。 補酵素Qは合成により、あるいはその存在して
いる動植物組織、微生物のミトコンドリア等から
抽出により得られる。補酵素Qは下記の一般式を
有するキノン誘導体である。 (ただし、式中のnは12以下の整数を示す) 補酵素Qは生体内では、呼吸酵素系の末端電子
伝達系に関与し、心蔵病や高血圧、悪性腫瘍など
の各種疾病に対して優れた薬理効果を示す物質で
ある。 本発明の補酵素Qとは特に補酵素Q10を含有す
るものであり、具体的には醗酵法により生産され
た微生物菌体中に含有されるものである。 (従来の技術) 従来、天然物からの補酵素Qの抽出方法は、ピ
ロガロール等の抗酸化剤の存在下、アルコール性
水酸化アルカリ溶液により直接鹸化した後、ヘキ
サン等の疏水性溶媒に転溶し、濃縮乾固後カラム
クロマトグラフイー等を用いて精製する方法と、
炭化水素、アセトン、エチルアルコール/エーテ
ル(3:1)等で抽出する方法と、熱メチルアル
コール→熱エーテル→エーテル/メチルアルコー
ル(3:1)若しくは熱アセトン→エチルアルコ
ール→エーテル等で順次抽出を繰り返す方法とが
ある。 (発明が解決しようとする問題点) 従来、前述の諸方法は薬品が高価であるか、抽
出設備が大型化になる欠点がある上、複雑な工程
を必要とする欠点があり、この為これ等の欠点の
ない工業的抽出方法が要望されていた。 (問題点を解決するための手段) 本発明は前述の欠点のない工業的抽出方法を提
供する。 本発明は補酵素Qを含有する微生物菌体から親
水性溶媒を用いて補酵素Qを抽出するにあたり、
予め補酵素Qの培養液より遠心分離した菌体を乾
燥し、その乾燥菌体より抽出溶媒としてジメチル
スルホキシドを単独で又は他の親水性溶媒と組合
せた混合溶媒を用いて補酵素Qを抽出することを
特徴とする補酵素Qの製造方法である。 ジメチルスルホキシドと組合せる他の親水性溶
媒としては、メチルアルコール、エチルアルコー
ル、イソプロピルアルコール、n−プロピルアル
コール及びアセトンから成る群から選択した親水
性溶媒を用いる。特に、補酵素Qの溶解度が比較
的高いイソプロピルアルコールを混合した場合は
使用量が少なく、抽出率も優れている。ジメチル
スルホキシドは菌に対する滲透性が良く、このよ
うに混合溶媒として用いることにより優れた抽出
率を得ることができる。ジメチルスルホキシドと
他の溶媒との混合割合は、混合溶媒中に占めるジ
メチルスルホキシドの量が約10〜90容積%好まし
くは約40〜60容積%である。抽出温度は約20〜
100℃であり、好ましくは約50〜80℃である。抽
出は30分〜5時間、好ましくは約2〜3時間撹拌
抽出を行なう。 本発明の好適な1実施例においては、混合溶剤
比1:1、温度70℃、2時間撹拌の条件下で抽出
を行なう。 親水性溶媒中に補酵素Qを抽出後は、補酵素Q
が易溶性であるn−ヘキサン等疏水性溶媒に撹拌
により転溶させ、二層分離を行ない、n−ヘキサ
ン等の易溶性溶液層を回収し、水洗、無水硫酸ナ
トリウム等で脱水、濃縮乾固させる。得られた濃
縮残渣をアセトンに溶解し、冷却後、不溶物を濾
過により除去して、充填剤としてシリカゲル、展
開剤としてn−ヘキサンを用いたカラムクロマト
グラフイーで精製し、補酵素Qの分画を濃縮乾固
し、残渣をエチルアルコールに溶解し、冷却下で
結晶化させる。結晶化させた補酵素Qを濾別し、
減圧下で乾燥する。 本発明の補酵素Qの抽出では、酸、アルカリ等
の薬品を使用しない為、装置の材質の選定が容易
であり、廃水処理の設備も不要である。 二層分離で分離した親水性溶媒は、濾過、蒸留
等により分離精製して回収できる。従つてこれを
再使用できる。 本発明において使用する乾燥菌体は、例えば次
のようにして調製することができる。小量の場合
は、培養した菌体を遠心分離した後、水洗し、水
洗した菌体を濾別し、低温(20〜40℃)で乾燥途
中のものを乳鉢で粉砕しつつ乾燥する。多量の乾
燥粉体を得るには、培養液菌体を遠心分離し、水
洗分離した後、85%程度の水分に調整したものを
スプレイドライヤーで、入口温度170〜200℃、出
口温度(サイクロン入口温度)70〜90℃で乾燥す
る。この条件下で操業しても補酵素Qの分解は起
こらない。また乾燥菌体中の水分は約3〜10重量
%、例えば5〜7重量%である。 以、本発明を実施例につきさらに詳細に説明す
るが、本発明はこれにのみ限定されるものではな
い。 実施例 1 補酵素Q10を生産するオーレオバシデイウム
(Aureobasidium)sp.14(微生物寄託番号・微工
研菌寄第5912号)を、尿素16.9g、KN2PO460
g、MgSO4・7H2O6g、FeCl3・6H2O0.18g、
ジベンゾイルチアミン塩酸塩12.4mg、p−ヒドロ
キシ安息香酸2250ppm、微量無機塩及び水道水12
からなる培地に、エチルアルコール濃度が
5000ppmになるように、制御しつつ、通気撹拌型
30ジヤー−フアメンターで培養した。培養途中
でKH2PO4、MgSO4・7H2O、FeCl3・6H2O、ジ
ベンゾイルチアミン塩酸塩、微量無機塩類を適時
供給し、30℃、PH5.5で6日間(144時間)培養を
行ない、得たる培養液(菌体を乾燥量で3.42Kgを
含有)を遠心分離し、水洗分離した後、一部を85
%の水分に調整し、スプレイドライヤーで乾燥し
た。乾燥粉体43.6g(絶乾量40g、補酵素Q10含
有量12.7mg)を分取し、ジメチルスルホキシド75
mlとイソプロピルアルコール75mlとの混合溶媒に
投入し、70〜75℃で2時間撹拌抽出を行なつた。
その後n−ヘキサン300mlを入れ、15分間振とう
し、補酵素Q10を転溶させた後静置し、2層分離
を行ない補酵素Q10の存在により橙黄色に着色し
ているn−ヘキサン層を分離した。この操作を3
回行なつた後、全n−ヘキサン抽出層を集め、等
量の水900mlで3回洗浄し、無水硫酸ナトリウム
で脱水した。この段階での抽出液には高速液体ク
ロマトグラフイーでの定量に妨害物質を含むの
で、抽出液の一部10%量を鹸化して抽出率を求め
たところ93、1%であつた。次に、減圧下で濃縮
乾固し、残渣を小量のアセトンに溶かした後、冷
却し、析出物を除去し、減圧下で濃縮乾固した。
その後シリカゲル25gを詰めたカラムクロマトグ
ラフイーにかけ、n−ヘキサンで溶出した。補酵
素Q10の溶出画分を減圧下で濃縮乾固し、小量の
エチルアルコールに溶かして冷却すると、橙黄色
の補酵素Q10の結晶が析出した。エチルアルコー
ルによりさらに2回再晶出を繰り返し、エタノー
ル母液と分け、減圧下で乾燥し、補酵素Q10の結
晶9.965mgを得た。(収率86.5%)。 実施例 2 実施例1と同じ菌を同じ培養法で各々培養して
得た菌体を遠心分離し、水洗後、40℃で乾燥途中
のものを乳鉢で粉砕しながら乾燥させた。これ等
の乾燥菌体を用いて、抽出溶媒であるジメチルス
ルホキシドとイソプロピルアルコールとの混合比
率を変えて、次のように補酵素Q10の抽出を行な
つた。 ジメチルスルホキシドとイソプロピルアルコー
ルとの混合溶液に乾燥菌体を投入し、加熱下で2
時間撹拌した。冷却後n−ヘキサンを300ml加え、
15分振とうし、静置してn−ヘキサン層を分離し
た。この操作を3回行なつた後、全n−ヘキサン
抽出液を集めて等量の水で3回洗浄し、無水硫酸
ナトリウムで脱水後、減圧下で濃縮乾固した。こ
の段階での抽出液は、高速液体クロマトグラフイ
ーでの定量で妨害物質を含むので、鹸化を行なつ
た後定量した。鹸化は濃縮物にピロガロール1
g、水酸化ナトリウム4g、メチルアルコール30
ml、水10mlを加え、90℃で1時間還流することに
より行なつた。急冷後n−ヘキサン100mlを加え、
15分振とうし、静置してn−ヘキサン層を分離し
た。この操作を3回行なつた。全n−ヘキサン層
を集め、300mlの水で3回洗浄し、無水硫酸ナト
リウムで脱水後、減圧下で濃縮乾固した。濃縮物
を小量のアセトンに溶解して、高速液体のクロマ
トグラフイーで定量した。これ等の結果を第1表
に示す。 実施例 3 実施例1と同じ菌を用いて同様にして各々培養
した。但し、補酵素Q10の抽出をジメチルスルホ
キシドとエチルアルコールとの混合溶媒を使用
し、2時間撹拌抽出を行なつた。以下は実施例2
と同様の手順で行なつた。これ等の結果を第1表
に示す。 実施例 4 実施例1と同じ菌を用いて同様にして各々培養
した。但し、補酵素Q10の抽出をジメチルスルホ
キシドとエチルアルコールとの混合溶媒を使用
し、2時間撹拌抽出を行なつた。以下は実施例2
と同様の方法で行なつた。これ等の結果を第1表
に示す。 実施例 5 実施例1と同じ菌を用い培養した。但し、乾燥
菌体20.6g(補酵素Q10含有量14.1mg)をジメチ
ルスルホキシド45mlとアセトン45mlとの混合溶媒
に投入して、50℃にて2時間撹拌抽出を行なつ
た。以下は実施例2と同様の方法で行なつた。こ
の際の抽出率は87.4%であつた。 実施例 6 実施例1と同じ菌を用い、同様にして培養し
た。乾燥菌体42g(補酵素Q10含有量29.4mg)を
ジメチルスルホキシド単独150mlに投入して、70
℃にて2時間撹拌抽出を行なつた。その後は実施
例2と同様の方法で処理した。抽出率は33.2%で
あつた。 比較例 1 実施例1と同じ菌を用い、実施例1と同様にし
て培養した。但し、抽出溶媒としてメチルアルコ
ール、エチルアルコール、イソプロピルアルコー
ル、n−プロピルアルコール、アセトン又はアセ
トニトリルを同量用いた。n−ヘキサンに補酵素
Q10を転溶させ静置後に層分離したヘキサン層
は、補酵素Q10の存在を示す橙黄色の着色を示さ
なかつたので、抽出率を測定することなく廃棄し
た。
から高収率で補酵素Qを製造する方法に関するも
のである。 補酵素Qは合成により、あるいはその存在して
いる動植物組織、微生物のミトコンドリア等から
抽出により得られる。補酵素Qは下記の一般式を
有するキノン誘導体である。 (ただし、式中のnは12以下の整数を示す) 補酵素Qは生体内では、呼吸酵素系の末端電子
伝達系に関与し、心蔵病や高血圧、悪性腫瘍など
の各種疾病に対して優れた薬理効果を示す物質で
ある。 本発明の補酵素Qとは特に補酵素Q10を含有す
るものであり、具体的には醗酵法により生産され
た微生物菌体中に含有されるものである。 (従来の技術) 従来、天然物からの補酵素Qの抽出方法は、ピ
ロガロール等の抗酸化剤の存在下、アルコール性
水酸化アルカリ溶液により直接鹸化した後、ヘキ
サン等の疏水性溶媒に転溶し、濃縮乾固後カラム
クロマトグラフイー等を用いて精製する方法と、
炭化水素、アセトン、エチルアルコール/エーテ
ル(3:1)等で抽出する方法と、熱メチルアル
コール→熱エーテル→エーテル/メチルアルコー
ル(3:1)若しくは熱アセトン→エチルアルコ
ール→エーテル等で順次抽出を繰り返す方法とが
ある。 (発明が解決しようとする問題点) 従来、前述の諸方法は薬品が高価であるか、抽
出設備が大型化になる欠点がある上、複雑な工程
を必要とする欠点があり、この為これ等の欠点の
ない工業的抽出方法が要望されていた。 (問題点を解決するための手段) 本発明は前述の欠点のない工業的抽出方法を提
供する。 本発明は補酵素Qを含有する微生物菌体から親
水性溶媒を用いて補酵素Qを抽出するにあたり、
予め補酵素Qの培養液より遠心分離した菌体を乾
燥し、その乾燥菌体より抽出溶媒としてジメチル
スルホキシドを単独で又は他の親水性溶媒と組合
せた混合溶媒を用いて補酵素Qを抽出することを
特徴とする補酵素Qの製造方法である。 ジメチルスルホキシドと組合せる他の親水性溶
媒としては、メチルアルコール、エチルアルコー
ル、イソプロピルアルコール、n−プロピルアル
コール及びアセトンから成る群から選択した親水
性溶媒を用いる。特に、補酵素Qの溶解度が比較
的高いイソプロピルアルコールを混合した場合は
使用量が少なく、抽出率も優れている。ジメチル
スルホキシドは菌に対する滲透性が良く、このよ
うに混合溶媒として用いることにより優れた抽出
率を得ることができる。ジメチルスルホキシドと
他の溶媒との混合割合は、混合溶媒中に占めるジ
メチルスルホキシドの量が約10〜90容積%好まし
くは約40〜60容積%である。抽出温度は約20〜
100℃であり、好ましくは約50〜80℃である。抽
出は30分〜5時間、好ましくは約2〜3時間撹拌
抽出を行なう。 本発明の好適な1実施例においては、混合溶剤
比1:1、温度70℃、2時間撹拌の条件下で抽出
を行なう。 親水性溶媒中に補酵素Qを抽出後は、補酵素Q
が易溶性であるn−ヘキサン等疏水性溶媒に撹拌
により転溶させ、二層分離を行ない、n−ヘキサ
ン等の易溶性溶液層を回収し、水洗、無水硫酸ナ
トリウム等で脱水、濃縮乾固させる。得られた濃
縮残渣をアセトンに溶解し、冷却後、不溶物を濾
過により除去して、充填剤としてシリカゲル、展
開剤としてn−ヘキサンを用いたカラムクロマト
グラフイーで精製し、補酵素Qの分画を濃縮乾固
し、残渣をエチルアルコールに溶解し、冷却下で
結晶化させる。結晶化させた補酵素Qを濾別し、
減圧下で乾燥する。 本発明の補酵素Qの抽出では、酸、アルカリ等
の薬品を使用しない為、装置の材質の選定が容易
であり、廃水処理の設備も不要である。 二層分離で分離した親水性溶媒は、濾過、蒸留
等により分離精製して回収できる。従つてこれを
再使用できる。 本発明において使用する乾燥菌体は、例えば次
のようにして調製することができる。小量の場合
は、培養した菌体を遠心分離した後、水洗し、水
洗した菌体を濾別し、低温(20〜40℃)で乾燥途
中のものを乳鉢で粉砕しつつ乾燥する。多量の乾
燥粉体を得るには、培養液菌体を遠心分離し、水
洗分離した後、85%程度の水分に調整したものを
スプレイドライヤーで、入口温度170〜200℃、出
口温度(サイクロン入口温度)70〜90℃で乾燥す
る。この条件下で操業しても補酵素Qの分解は起
こらない。また乾燥菌体中の水分は約3〜10重量
%、例えば5〜7重量%である。 以、本発明を実施例につきさらに詳細に説明す
るが、本発明はこれにのみ限定されるものではな
い。 実施例 1 補酵素Q10を生産するオーレオバシデイウム
(Aureobasidium)sp.14(微生物寄託番号・微工
研菌寄第5912号)を、尿素16.9g、KN2PO460
g、MgSO4・7H2O6g、FeCl3・6H2O0.18g、
ジベンゾイルチアミン塩酸塩12.4mg、p−ヒドロ
キシ安息香酸2250ppm、微量無機塩及び水道水12
からなる培地に、エチルアルコール濃度が
5000ppmになるように、制御しつつ、通気撹拌型
30ジヤー−フアメンターで培養した。培養途中
でKH2PO4、MgSO4・7H2O、FeCl3・6H2O、ジ
ベンゾイルチアミン塩酸塩、微量無機塩類を適時
供給し、30℃、PH5.5で6日間(144時間)培養を
行ない、得たる培養液(菌体を乾燥量で3.42Kgを
含有)を遠心分離し、水洗分離した後、一部を85
%の水分に調整し、スプレイドライヤーで乾燥し
た。乾燥粉体43.6g(絶乾量40g、補酵素Q10含
有量12.7mg)を分取し、ジメチルスルホキシド75
mlとイソプロピルアルコール75mlとの混合溶媒に
投入し、70〜75℃で2時間撹拌抽出を行なつた。
その後n−ヘキサン300mlを入れ、15分間振とう
し、補酵素Q10を転溶させた後静置し、2層分離
を行ない補酵素Q10の存在により橙黄色に着色し
ているn−ヘキサン層を分離した。この操作を3
回行なつた後、全n−ヘキサン抽出層を集め、等
量の水900mlで3回洗浄し、無水硫酸ナトリウム
で脱水した。この段階での抽出液には高速液体ク
ロマトグラフイーでの定量に妨害物質を含むの
で、抽出液の一部10%量を鹸化して抽出率を求め
たところ93、1%であつた。次に、減圧下で濃縮
乾固し、残渣を小量のアセトンに溶かした後、冷
却し、析出物を除去し、減圧下で濃縮乾固した。
その後シリカゲル25gを詰めたカラムクロマトグ
ラフイーにかけ、n−ヘキサンで溶出した。補酵
素Q10の溶出画分を減圧下で濃縮乾固し、小量の
エチルアルコールに溶かして冷却すると、橙黄色
の補酵素Q10の結晶が析出した。エチルアルコー
ルによりさらに2回再晶出を繰り返し、エタノー
ル母液と分け、減圧下で乾燥し、補酵素Q10の結
晶9.965mgを得た。(収率86.5%)。 実施例 2 実施例1と同じ菌を同じ培養法で各々培養して
得た菌体を遠心分離し、水洗後、40℃で乾燥途中
のものを乳鉢で粉砕しながら乾燥させた。これ等
の乾燥菌体を用いて、抽出溶媒であるジメチルス
ルホキシドとイソプロピルアルコールとの混合比
率を変えて、次のように補酵素Q10の抽出を行な
つた。 ジメチルスルホキシドとイソプロピルアルコー
ルとの混合溶液に乾燥菌体を投入し、加熱下で2
時間撹拌した。冷却後n−ヘキサンを300ml加え、
15分振とうし、静置してn−ヘキサン層を分離し
た。この操作を3回行なつた後、全n−ヘキサン
抽出液を集めて等量の水で3回洗浄し、無水硫酸
ナトリウムで脱水後、減圧下で濃縮乾固した。こ
の段階での抽出液は、高速液体クロマトグラフイ
ーでの定量で妨害物質を含むので、鹸化を行なつ
た後定量した。鹸化は濃縮物にピロガロール1
g、水酸化ナトリウム4g、メチルアルコール30
ml、水10mlを加え、90℃で1時間還流することに
より行なつた。急冷後n−ヘキサン100mlを加え、
15分振とうし、静置してn−ヘキサン層を分離し
た。この操作を3回行なつた。全n−ヘキサン層
を集め、300mlの水で3回洗浄し、無水硫酸ナト
リウムで脱水後、減圧下で濃縮乾固した。濃縮物
を小量のアセトンに溶解して、高速液体のクロマ
トグラフイーで定量した。これ等の結果を第1表
に示す。 実施例 3 実施例1と同じ菌を用いて同様にして各々培養
した。但し、補酵素Q10の抽出をジメチルスルホ
キシドとエチルアルコールとの混合溶媒を使用
し、2時間撹拌抽出を行なつた。以下は実施例2
と同様の手順で行なつた。これ等の結果を第1表
に示す。 実施例 4 実施例1と同じ菌を用いて同様にして各々培養
した。但し、補酵素Q10の抽出をジメチルスルホ
キシドとエチルアルコールとの混合溶媒を使用
し、2時間撹拌抽出を行なつた。以下は実施例2
と同様の方法で行なつた。これ等の結果を第1表
に示す。 実施例 5 実施例1と同じ菌を用い培養した。但し、乾燥
菌体20.6g(補酵素Q10含有量14.1mg)をジメチ
ルスルホキシド45mlとアセトン45mlとの混合溶媒
に投入して、50℃にて2時間撹拌抽出を行なつ
た。以下は実施例2と同様の方法で行なつた。こ
の際の抽出率は87.4%であつた。 実施例 6 実施例1と同じ菌を用い、同様にして培養し
た。乾燥菌体42g(補酵素Q10含有量29.4mg)を
ジメチルスルホキシド単独150mlに投入して、70
℃にて2時間撹拌抽出を行なつた。その後は実施
例2と同様の方法で処理した。抽出率は33.2%で
あつた。 比較例 1 実施例1と同じ菌を用い、実施例1と同様にし
て培養した。但し、抽出溶媒としてメチルアルコ
ール、エチルアルコール、イソプロピルアルコー
ル、n−プロピルアルコール、アセトン又はアセ
トニトリルを同量用いた。n−ヘキサンに補酵素
Q10を転溶させ静置後に層分離したヘキサン層
は、補酵素Q10の存在を示す橙黄色の着色を示さ
なかつたので、抽出率を測定することなく廃棄し
た。
【表】
【表】
(発明の効果)
実施例1と第1表から明らかな通り、本発明は
安価な薬品と小型の抽出設備を用いて簡単な工程
で、極めて効率高く補酵素Qを抽出することがで
きる。従つて、本発明は産業上極めて有用であ
る。
安価な薬品と小型の抽出設備を用いて簡単な工程
で、極めて効率高く補酵素Qを抽出することがで
きる。従つて、本発明は産業上極めて有用であ
る。
Claims (1)
- 1 補酵素Qを含有する微生物菌体から親水性溶
媒を用いて補酵素Qを抽出するにあたり、予め補
酵素Qの培養液より遠心分離した菌体を乾燥し、
その乾燥菌体より抽出溶媒としてジメチルスルホ
キシドを単独で又はメチルアルコール、エチルア
ルコール、イソプロピルアルコール、n−プロピ
ルアルコール及びアセトンから成る群から選択し
た親水性溶媒と組合せた混合溶媒を用いて補酵素
Qを抽出することを特徴とする補酸素Qの製造方
法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13303185A JPS61293391A (ja) | 1985-06-20 | 1985-06-20 | 補酵素qの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13303185A JPS61293391A (ja) | 1985-06-20 | 1985-06-20 | 補酵素qの製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61293391A JPS61293391A (ja) | 1986-12-24 |
JPS639838B2 true JPS639838B2 (ja) | 1988-03-02 |
Family
ID=15095186
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP13303185A Granted JPS61293391A (ja) | 1985-06-20 | 1985-06-20 | 補酵素qの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61293391A (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU2003255161A1 (en) * | 2002-07-25 | 2004-02-16 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | Process for producing solution containing ubiquinone-10 |
JP4426832B2 (ja) | 2002-12-03 | 2010-03-03 | 株式会社分子生理化学研究所 | コエンザイムq−10及びその2電子還元体の分析方法 |
CN101307338B (zh) * | 2008-07-17 | 2012-04-25 | 任雷 | 还原型辅酶q10的制备方法 |
-
1985
- 1985-06-20 JP JP13303185A patent/JPS61293391A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS61293391A (ja) | 1986-12-24 |
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