JPS63313594A - シチジンジリン酸コリンの製造方法 - Google Patents
シチジンジリン酸コリンの製造方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔発明の属する技術分野〕
本発明は、シチジンシリン酸コリン(以後、“CDP−
コリン”と略称する。)の製造方法に関する。より詳し
くは、本発明は、コリンホスフェートシチジルトランス
フェラーゼ(CholinephosphateCyt
idyl transferase)の遺伝子を含む組
換え体DNAで形質転換されたサツカロミセス・セレビ
シー(Saccharomyces cerevisi
ae)の株(以後、これを“CPCTクローン”と略称
する。)を用いた、高収率で、経済的に有利にCDP−
コリンを製造する方法に関する。
コリン”と略称する。)の製造方法に関する。より詳し
くは、本発明は、コリンホスフェートシチジルトランス
フェラーゼ(CholinephosphateCyt
idyl transferase)の遺伝子を含む組
換え体DNAで形質転換されたサツカロミセス・セレビ
シー(Saccharomyces cerevisi
ae)の株(以後、これを“CPCTクローン”と略称
する。)を用いた、高収率で、経済的に有利にCDP−
コリンを製造する方法に関する。
CDP−コリン(シチジンシリン酸コリン)は、生体内
におけるレシチン合成の前駆物質としてリン脂質の合成
に関与する重要な物質であり、医薬として、頭部外傷や
脳手術に伴う意識障害の回復剤や脂質代謝の異常や障害
の予防及び治療などに有用な物質として知られているも
のである。
におけるレシチン合成の前駆物質としてリン脂質の合成
に関与する重要な物質であり、医薬として、頭部外傷や
脳手術に伴う意識障害の回復剤や脂質代謝の異常や障害
の予防及び治療などに有用な物質として知られているも
のである。
そして、CDP−コリンの取扱いが比較的容易で且つ入
手が容易な酵母を使用しての製造については、下達する
微生物学的手法による製造方法が知られている。
手が容易な酵母を使用しての製造については、下達する
微生物学的手法による製造方法が知られている。
+11 サツカロミセス属の酵母の国体又はその処理
物をシチジン−5′−モノリン酸(以後、“CMP”と
略称する。)とコリン又はホスフォリルコリンを含有す
る反応液中に加えて、CDP−コリンを反応液中に生成
蓄積させる方法(特公昭48−40757)、 (2) ロドトルラ・ムシラギノサに属する酵母の生
菌体又は乾燥菌体を用いて、CMPとホスフォリルコリ
ンを基質とし、CDP−コリンを反応液中に生成蓄積さ
せる方法(特公昭48−2359)、及び、 (3)サツカロミセス・セレビシ−のCPCTクローン
からコリンホスフェート シチジルトランスフェラーゼ
を精製し、この酵素によってシチジン−5′ −トリリ
ン#(以後、”CTPと略称する。)とホスフォリルコ
リンからCDP−コリンを生成する方法(脂質生化学研
究第26巻、第220−223頁)。
物をシチジン−5′−モノリン酸(以後、“CMP”と
略称する。)とコリン又はホスフォリルコリンを含有す
る反応液中に加えて、CDP−コリンを反応液中に生成
蓄積させる方法(特公昭48−40757)、 (2) ロドトルラ・ムシラギノサに属する酵母の生
菌体又は乾燥菌体を用いて、CMPとホスフォリルコリ
ンを基質とし、CDP−コリンを反応液中に生成蓄積さ
せる方法(特公昭48−2359)、及び、 (3)サツカロミセス・セレビシ−のCPCTクローン
からコリンホスフェート シチジルトランスフェラーゼ
を精製し、この酵素によってシチジン−5′ −トリリ
ン#(以後、”CTPと略称する。)とホスフォリルコ
リンからCDP−コリンを生成する方法(脂質生化学研
究第26巻、第220−223頁)。
しかし、上記(11の方法は、CDP−コリンの生成率
が低く、CMPに対し50%以下のモル収率であって、
その上副生物が多いことから、製品のコストを高くして
しまうことの他、工程にも問題を伴うものである。
が低く、CMPに対し50%以下のモル収率であって、
その上副生物が多いことから、製品のコストを高くして
しまうことの他、工程にも問題を伴うものである。
次に上記(2)の方法については、対CMPモル収率8
5〜95%でCDP−コリンが生成されると記載されて
はいるものの、実験室規模でのものに他ならなく、工業
的規模ではかかる収率は到底達成されるものではない、
そして該方法によってCDP−コリンを得たところで、
いずれにしろその製品コストはかなり高いものになって
しまう。
5〜95%でCDP−コリンが生成されると記載されて
はいるものの、実験室規模でのものに他ならなく、工業
的規模ではかかる収率は到底達成されるものではない、
そして該方法によってCDP−コリンを得たところで、
いずれにしろその製品コストはかなり高いものになって
しまう。
上記(3)の方法については、使用する基質のCTPが
不安定で取り扱い上問題のものであることの他、高価で
あることから、工程操作に格別の配慮が必要とされ、こ
の方法によってもやはりCDP−コリンの製品コストは
かなり高いものになってしまう。
不安定で取り扱い上問題のものであることの他、高価で
あることから、工程操作に格別の配慮が必要とされ、こ
の方法によってもやはりCDP−コリンの製品コストは
かなり高いものになってしまう。
一方、CDP−コリンは、上述したように医薬品として
有用なものであることから、その安価な提供が社会的要
求としである。
有用なものであることから、その安価な提供が社会的要
求としである。
本発明の主たる目的は、安価な原料を使用して、高収率
でCDP−コリンを生産し、その製品コストの低減を可
能にし、上記社会的要求に応じることのできるCDP−
コリンの製造方法を提供することにある。
でCDP−コリンを生産し、その製品コストの低減を可
能にし、上記社会的要求に応じることのできるCDP−
コリンの製造方法を提供することにある。
本発明の他の目的は、CMPとコリン又はホスフォリル
コリンを基質に使用しても上述の従来法における副生物
生成等の問題がなく、工業的規模において定常的に高収
率で目的物質たるCDP−コリンを与え且つ工程管理の
容易な、コリンホスフェート シチジルトランスフェラ
ーゼの活性を高めたCPCTクローンを使用するCDP
−コリンの製造法を提供することにある。
コリンを基質に使用しても上述の従来法における副生物
生成等の問題がなく、工業的規模において定常的に高収
率で目的物質たるCDP−コリンを与え且つ工程管理の
容易な、コリンホスフェート シチジルトランスフェラ
ーゼの活性を高めたCPCTクローンを使用するCDP
−コリンの製造法を提供することにある。
本発明は、本発明者らが、CDP−コリン(シチジンシ
リン酸コリン)の従来の製造方法における前述の問題点
を解決して上記本発明の目的を達成すべく鋭意研究を重
ねた結果、上述する知見を得、該知見に基づいて更なる
研究を続は完成するに至ったものである。
リン酸コリン)の従来の製造方法における前述の問題点
を解決して上記本発明の目的を達成すべく鋭意研究を重
ねた結果、上述する知見を得、該知見に基づいて更なる
研究を続は完成するに至ったものである。
即ち本発明者らは、後述するようにして、CPCTクロ
ーン(即ち、コリンホスフェート シチジルトランスフ
ェラーゼの遺伝子を含む組換え体DNAで形質転換され
たサツカロミセス・セレビシー)を調整し、該CPCT
クローンを所定の培地で培養して得た生菌体を解糖系の
エネルギーを利用し、CMP (シチジン−5′−モノ
リン酸とコリンの組合せ及びCMPとホスフォリルコリ
ンの組合せのそれぞれと反応せしめたところ、いずれの
場合にあっても従来の方法において見られる副生物の生
成がほとんどなくしてCDP−コリンが極めて高い収率
で常時安定して得られることがわかった。
ーン(即ち、コリンホスフェート シチジルトランスフ
ェラーゼの遺伝子を含む組換え体DNAで形質転換され
たサツカロミセス・セレビシー)を調整し、該CPCT
クローンを所定の培地で培養して得た生菌体を解糖系の
エネルギーを利用し、CMP (シチジン−5′−モノ
リン酸とコリンの組合せ及びCMPとホスフォリルコリ
ンの組合せのそれぞれと反応せしめたところ、いずれの
場合にあっても従来の方法において見られる副生物の生
成がほとんどなくしてCDP−コリンが極めて高い収率
で常時安定して得られることがわかった。
また、前記CPCTクローンは、その培養液、培養して
得た菌体の摩砕物、抽出物、そして溶媒処理物のいずれ
であっても、生菌体を使用する場合と同様に副生物の生
成がほとんどなくしてCDP−コリンが極めて高い収率
で常時安定して得られることがわかった。
得た菌体の摩砕物、抽出物、そして溶媒処理物のいずれ
であっても、生菌体を使用する場合と同様に副生物の生
成がほとんどなくしてCDP−コリンが極めて高い収率
で常時安定して得られることがわかった。
然るに本発明は、CPCTクローンの培養液、菌体もし
くはその処理物を用いてCMPとコリンまたはホスフォ
リルコリンを反応基質として反応液中にCDP−コリン
を生成蓄積せしめ、それを採取することからなるCDP
−コリンの製造方法に関するものである。
くはその処理物を用いてCMPとコリンまたはホスフォ
リルコリンを反応基質として反応液中にCDP−コリン
を生成蓄積せしめ、それを採取することからなるCDP
−コリンの製造方法に関するものである。
本発明のCDP−コリンの製造方法にあって使用するC
PCTクローンは、脂質生化学研究第26第220−2
23頁(1984年)に記載された方法により取得でき
るものである。すなわち、+11 サツカロミセス・
セレビシーX2180−IB(米国カリフォルニア大学
イーストゼネティソクストックセンター(Yeast
Genetic 5tockCen ter)より入手
できる)よりクライヤー(Cryer)らの方法(メソ
フズ・イン・セルバイオロジー(Methods in
Ce1l Biology) 12 @、39−44
゜1975)に従って全DNAを抽出する。このDNA
に制限酵素5auBAIを作用させて、平均約10キロ
ベース(以後′″kb″と略称する。)程度の断片にな
るまで切断する。この反応液をカラムで分画し、5〜1
5kbの長さのDNA断片を集める。
PCTクローンは、脂質生化学研究第26第220−2
23頁(1984年)に記載された方法により取得でき
るものである。すなわち、+11 サツカロミセス・
セレビシーX2180−IB(米国カリフォルニア大学
イーストゼネティソクストックセンター(Yeast
Genetic 5tockCen ter)より入手
できる)よりクライヤー(Cryer)らの方法(メソ
フズ・イン・セルバイオロジー(Methods in
Ce1l Biology) 12 @、39−44
゜1975)に従って全DNAを抽出する。このDNA
に制限酵素5auBAIを作用させて、平均約10キロ
ベース(以後′″kb″と略称する。)程度の断片にな
るまで切断する。この反応液をカラムで分画し、5〜1
5kbの長さのDNA断片を集める。
一方、ベクターYEp13(アメリカン・タイプ・カル
チャー・コレクシラン(AmericanTyp@Cu
1ture Co11ection )よりATCCl
’h37115の寄託番号の下で容易に入手できる。〕
を制限酵素BamHIで開裂させ、これにT4リガーゼ
の作用により上記DNA断片を結合させて組換え体DN
Aを作製する。
チャー・コレクシラン(AmericanTyp@Cu
1ture Co11ection )よりATCCl
’h37115の寄託番号の下で容易に入手できる。〕
を制限酵素BamHIで開裂させ、これにT4リガーゼ
の作用により上記DNA断片を結合させて組換え体DN
Aを作製する。
組換え体DNAでエシェリヒア・コリに12株(なお、
通常の形質転換に用いるに12株ならばいずれでもよい
、)を形質転換し、アンピシリン耐性を示すコロニーを
取得する。得られたコロニーをすべて混合して培養し、
その菌体よりウィルキー(Wilkie)らの方法にニ
ークレイツク・アシズ・リサーチ(Nucleic A
c1dsResearch)第7@、第859−877
頁(1979) )に従ってプラスミドDNAを調整す
る。(これを、1サフカロミセス・セルビシーの遺伝子
ライブラリー”と称する。) (2)す7カロミセス・セレビシーD319−8A株は
ホスファチジルセリン合成能を欠損している上に、37
℃ではコリンホスフェート シチジルトランスフェラー
ゼ活性が欠損するため生育できなくなる変異株である。
通常の形質転換に用いるに12株ならばいずれでもよい
、)を形質転換し、アンピシリン耐性を示すコロニーを
取得する。得られたコロニーをすべて混合して培養し、
その菌体よりウィルキー(Wilkie)らの方法にニ
ークレイツク・アシズ・リサーチ(Nucleic A
c1dsResearch)第7@、第859−877
頁(1979) )に従ってプラスミドDNAを調整す
る。(これを、1サフカロミセス・セルビシーの遺伝子
ライブラリー”と称する。) (2)す7カロミセス・セレビシーD319−8A株は
ホスファチジルセリン合成能を欠損している上に、37
℃ではコリンホスフェート シチジルトランスフェラー
ゼ活性が欠損するため生育できなくなる変異株である。
なお、この株は工業技術院微生物工業技術研究所に徽工
研菌寄第9217号として寄託されていて、容易に入手
することのできるものである。
研菌寄第9217号として寄託されていて、容易に入手
することのできるものである。
該サツカロミセス・セレビシ−0319−8A株を、ペ
ックス(Beggs)の方法(ネイチャー(Natur
e)第275巻第104−109頁(197B) )に
従って、サツカロミセス・セルビシーの遺伝子ライブラ
リーで形質転換し、37℃で培養を行い、生育してくる
コロニーをCPCTクローンとして取得する。
ックス(Beggs)の方法(ネイチャー(Natur
e)第275巻第104−109頁(197B) )に
従って、サツカロミセス・セルビシーの遺伝子ライブラ
リーで形質転換し、37℃で培養を行い、生育してくる
コロニーをCPCTクローンとして取得する。
(3)かくして取得したCPCTクローンの一株を培養
し、得られる菌体よりディベニッシ工(Devenis
h)らの方法〔ジーン(Gene)第18巻第277−
288頁(1982))に従ってプラスミドDNAを調
製する。このプラスミドDNAでエシェリヒア・コリに
12を形質転換し、アンピシリン耐性を示すコロニーを
取得する。
し、得られる菌体よりディベニッシ工(Devenis
h)らの方法〔ジーン(Gene)第18巻第277−
288頁(1982))に従ってプラスミドDNAを調
製する。このプラスミドDNAでエシェリヒア・コリに
12を形質転換し、アンピシリン耐性を示すコロニーを
取得する。
か(して得られるコロニーを培養し、これよりプラスミ
ドDNAを抽出精製し、種々の制限酵素による切断を行
って解析する。
ドDNAを抽出精製し、種々の制限酵素による切断を行
って解析する。
この結果、組換え体DNAの制限酵素地図を第1図のよ
うに特定し、このDNAをpcclと命名した。
うに特定し、このDNAをpcclと命名した。
こうして得られた組換え体DNApCC1で再びD31
9−8A株を形質転換すれば、容易にCPCTクローン
を得ることができる。
9−8A株を形質転換すれば、容易にCPCTクローン
を得ることができる。
また、PCCIで形質転換する株は、上記のD319−
8A株に限定されるものではなく、形質転換体を検出す
るための遺伝的形質、すなわちロイシン要求性をそなえ
ていればいずれのサツカロミセス・セレビシーでもよい
、すなわち、例えば、サツカロミセス・セレビシ−(A
TCClk38626)を上記と全(同様の方法に従っ
てpcclで形質転換し、ロイシン要求性の消失したコ
ロニーを分離することによりCPCTクローンを取得す
ることができる。
8A株に限定されるものではなく、形質転換体を検出す
るための遺伝的形質、すなわちロイシン要求性をそなえ
ていればいずれのサツカロミセス・セレビシーでもよい
、すなわち、例えば、サツカロミセス・セレビシ−(A
TCClk38626)を上記と全(同様の方法に従っ
てpcclで形質転換し、ロイシン要求性の消失したコ
ロニーを分離することによりCPCTクローンを取得す
ることができる。
本発明の方法にあって、CPCTクローンの培養は、グ
ルコース、稠密などの炭素源、硫酸アンモニウム、尿素
などの窒素源、リン酸塩、硫酸マグネシウムなどの無機
塩、ビタミン類、微量金属塩等を適宜選択してなる通常
の酵母用培地を使用して行うことができる。培養は振と
う、通気攪拌等の培養方法により行うことができる。培
養条件は培地の温度を20〜40℃とし、pH値を3〜
8の範囲にして行う0反応に用いる菌体は、菌体それ自
体、または培養液、あるいは菌体摩砕物、菌体抽出物、
溶媒処理物などいずれであってもよい。
ルコース、稠密などの炭素源、硫酸アンモニウム、尿素
などの窒素源、リン酸塩、硫酸マグネシウムなどの無機
塩、ビタミン類、微量金属塩等を適宜選択してなる通常
の酵母用培地を使用して行うことができる。培養は振と
う、通気攪拌等の培養方法により行うことができる。培
養条件は培地の温度を20〜40℃とし、pH値を3〜
8の範囲にして行う0反応に用いる菌体は、菌体それ自
体、または培養液、あるいは菌体摩砕物、菌体抽出物、
溶媒処理物などいずれであってもよい。
本発明の方法におけるCPCTクローンを使用してのC
DP−コリンを生成せしめる反応は、CMPとコリンま
たはホスフォリルコリンを反応基質とし、糖及び無機塩
類を使用し、反応液のpH値を好ましくは、4.5〜9
.0、より好ましくは5.5〜7.5に!IIIL、反
応温度を好ましくは5〜50℃、より好ましくは25〜
35℃にして行われる。
DP−コリンを生成せしめる反応は、CMPとコリンま
たはホスフォリルコリンを反応基質とし、糖及び無機塩
類を使用し、反応液のpH値を好ましくは、4.5〜9
.0、より好ましくは5.5〜7.5に!IIIL、反
応温度を好ましくは5〜50℃、より好ましくは25〜
35℃にして行われる。
反応液中のCPCTクローンの上述の菌体量は、乾燥菌
体として約0.1〜約50%の範囲とすることができる
が、5〜25%の範囲が望ましい。
体として約0.1〜約50%の範囲とすることができる
が、5〜25%の範囲が望ましい。
なお、本発明の方法において使用するCPCTクローン
は、上述の菌体、菌体処理物等を例えばカラギーナン、
アルギン酸カルシウム等を用いる固定化法に従って固定
化して使用することができる。
は、上述の菌体、菌体処理物等を例えばカラギーナン、
アルギン酸カルシウム等を用いる固定化法に従って固定
化して使用することができる。
使用する糖としては、グルコース、フラクトース、マル
トース、シュクロース等の糖類物質が使用できる。そし
てそうしたtUa物質は、好ましくは、0.O1〜5モ
ル濃度、より好ましくは0.15〜0.7モル濃度で反
応液中に存在せしめる。
トース、シュクロース等の糖類物質が使用できる。そし
てそうしたtUa物質は、好ましくは、0.O1〜5モ
ル濃度、より好ましくは0.15〜0.7モル濃度で反
応液中に存在せしめる。
反応基質にはCMPとコリンの組合せ、またはCMPと
ホスフォリルコリンの組合せを使用する。
ホスフォリルコリンの組合せを使用する。
CMPとコリンの組合せの場合、CMPの濃度を好まし
くは0.01−1.0モル濃度、より好ましくは0.0
1〜0.2モル濃度に、又コリンは好ましくは0.O1
〜3.0モル濃度、より好ましくは0.03〜0.6モ
ル濃度にする。
くは0.01−1.0モル濃度、より好ましくは0.0
1〜0.2モル濃度に、又コリンは好ましくは0.O1
〜3.0モル濃度、より好ましくは0.03〜0.6モ
ル濃度にする。
また、CMPとホスフォリルコリンの組合せの場合、C
MPの濃度を好ましくはo、oi〜1.0モル濃度、よ
り好ましくは0.O1〜0.2モル濃度に、また、ホス
フォリルコリンは、好ましくは0.01〜1.0モル濃
度、より好ましくは0.02〜0.4モル濃度にする。
MPの濃度を好ましくはo、oi〜1.0モル濃度、よ
り好ましくは0.O1〜0.2モル濃度に、また、ホス
フォリルコリンは、好ましくは0.01〜1.0モル濃
度、より好ましくは0.02〜0.4モル濃度にする。
また、コリンとホスフォリルコリンをまぜ合わせて使用
してもよ(、その場合上記のCMP濃度に対して、コリ
ンとホスフォリルコリンの混合物を、好ましくはo、
o o i〜3.0モル濃度、より好ましくは0.03
〜0.6モル濃度にする。
してもよ(、その場合上記のCMP濃度に対して、コリ
ンとホスフォリルコリンの混合物を、好ましくはo、
o o i〜3.0モル濃度、より好ましくは0.03
〜0.6モル濃度にする。
また、使用する無機塩類としてはリン酸塩、塩化マグネ
シウム等が使用でき、リン酸塩は好ましくは0.01〜
1.0モル濃度、より好ましくは0.05〜0.5モル
濃度に、塩化マグネシウムは好ましくは0.001〜0
.5モル濃度、より好ましくは0.01〜0.1モル濃
度にする。
シウム等が使用でき、リン酸塩は好ましくは0.01〜
1.0モル濃度、より好ましくは0.05〜0.5モル
濃度に、塩化マグネシウムは好ましくは0.001〜0
.5モル濃度、より好ましくは0.01〜0.1モル濃
度にする。
反応液中に生成したCDP−コリンの分離、精製は、公
知のイオン交換樹脂法、活性炭吸着法、溶媒抽出沈澱法
等を任意に選択し、組合せるなどして行うことができる
。
知のイオン交換樹脂法、活性炭吸着法、溶媒抽出沈澱法
等を任意に選択し、組合せるなどして行うことができる
。
以上説明の本発明の方法によると、後述の実施例の結果
からしても明らかなように、常時安定してCMPに対し
90%以上のモル収率でCDP−コリンが得られる。そ
して後述の参考例や比較例に示される、もとのサツカロ
ミセス・モルビシーによる反応の収率と比較すると、本
発明の効果はきわめて顕著なものであることが理解され
る。
からしても明らかなように、常時安定してCMPに対し
90%以上のモル収率でCDP−コリンが得られる。そ
して後述の参考例や比較例に示される、もとのサツカロ
ミセス・モルビシーによる反応の収率と比較すると、本
発明の効果はきわめて顕著なものであることが理解され
る。
また、本発明は、使用するCPCTクローンの菌体の活
性が高いため、反応を短時間で完了させる利点をもち、
さらにCTPやホスフォリルコリンが反応液中に蓄積す
ることなく CDP−コリンに極めて効率的に変換され
るので、従来法の下で、ホスファターゼやデアミネース
活性によって生じるシチジンやシトシン、ウリジン、ウ
ラシル等がほとんど生成されない。
性が高いため、反応を短時間で完了させる利点をもち、
さらにCTPやホスフォリルコリンが反応液中に蓄積す
ることなく CDP−コリンに極めて効率的に変換され
るので、従来法の下で、ホスファターゼやデアミネース
活性によって生じるシチジンやシトシン、ウリジン、ウ
ラシル等がほとんど生成されない。
(実施例〕
以下、実施例を挙げて本発明の方法を更に詳細に説明す
るが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるもの
ではない。
るが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるもの
ではない。
入車史上
サツカロミセス・モルビシー(徽工研菌寄第9217号
)を組換え体DNApCC1で形質転換して得られたC
PCTクローンをw密3.9%、グルコース7%、尿素
0.5%、硫酸アンモニウム0.25%、リン酸1カリ
ウム0.5%、硫酸マグネシウム0.09%からなる境
地で、20時間通気攪拌しながら培養して得られた乾燥
菌体20g相当の生菌体に蒸留水23m1とトルエンl
Qmlを加え、攪拌したものと、CMP2.4g、グ
ルコース15g、ホスフォリルコリン1.6g、塩化マ
グネシウム0.38gを0.15モル濃度リン酸緩衝液
(pH7,5)に溶かして24 Qmlとし、30℃で
5時間反応させたところ、反応液中にCDP−コリンが
3.35g生成した。
)を組換え体DNApCC1で形質転換して得られたC
PCTクローンをw密3.9%、グルコース7%、尿素
0.5%、硫酸アンモニウム0.25%、リン酸1カリ
ウム0.5%、硫酸マグネシウム0.09%からなる境
地で、20時間通気攪拌しながら培養して得られた乾燥
菌体20g相当の生菌体に蒸留水23m1とトルエンl
Qmlを加え、攪拌したものと、CMP2.4g、グ
ルコース15g、ホスフォリルコリン1.6g、塩化マ
グネシウム0.38gを0.15モル濃度リン酸緩衝液
(pH7,5)に溶かして24 Qmlとし、30℃で
5時間反応させたところ、反応液中にCDP−コリンが
3.35g生成した。
これは、対CMPモル収率92.3%である。また、こ
の時シチジン、シトシン、ウリジン、ウラシルなどの副
生成物は、1%以上の生成はみとめられなかった。
の時シチジン、シトシン、ウリジン、ウラシルなどの副
生成物は、1%以上の生成はみとめられなかった。
す、カロミセス・モルビシ−(徽工研菌寄第9217号
)を実施例1と同じ条件で培養し、同じ反応条件で20
0時間反応せたところ、CMPに対し、0.4%のモル
収率でCDP−コリンが生成した。
)を実施例1と同じ条件で培養し、同じ反応条件で20
0時間反応せたところ、CMPに対し、0.4%のモル
収率でCDP−コリンが生成した。
また、この時副生成物としてシチジン6.8%、ウリジ
ン13.1%、ウラシル40.3%が生成した。
ン13.1%、ウラシル40.3%が生成した。
叉1史l
サツカロミセス・モルビシ−(A T CC38626
)を組換え体りCCIで、上記に説明した方法で形質転
損し、CPCTクローンを得た。
)を組換え体りCCIで、上記に説明した方法で形質転
損し、CPCTクローンを得た。
このCPCTクローンを、実施例1と同じ条件で培養し
、反応を行ったところ、反応液中にCDP−コリンが3
.3g生成した。これは対CMPモル収率90.8%で
ある。
、反応を行ったところ、反応液中にCDP−コリンが3
.3g生成した。これは対CMPモル収率90.8%で
ある。
また、この時シチジン、シトシン、ウリジン、ウラシル
などの副生成物は、1%以上の生成は認められなかった
。
などの副生成物は、1%以上の生成は認められなかった
。
(比較例〕
サツカロミセス・モルビシ−(A T CC38626
)を、実施例2と同じ条件で培養し、同じ反応条件で2
00時間反応行ったところ、CMPに対し、21.6%
のモル収率でCDP−コリンが生成した。
)を、実施例2と同じ条件で培養し、同じ反応条件で2
00時間反応行ったところ、CMPに対し、21.6%
のモル収率でCDP−コリンが生成した。
また、この時副生成物としてシチジン4.0%、ウリジ
ン6、1%、ウラシル20.6%が生成した。
ン6、1%、ウラシル20.6%が生成した。
大泉史主
実施例1において、CMPを7.2g、ホスフォリルコ
リンを4.8g用いる他は、実施例1と同様にして12
時間反応を行ったところ、反応液中にCDP−コリンが
9.81g生成した。これは対CMPモル収率90.2
%である。
リンを4.8g用いる他は、実施例1と同様にして12
時間反応を行ったところ、反応液中にCDP−コリンが
9.81g生成した。これは対CMPモル収率90.2
%である。
叉旌舅生
実施例1において、CMPを0.88、グルコースの代
わりにフラクトースを15g、ホスフォリルコリンを0
.6g用いる他は、実施例1と同様に実施したところ、
反応液中にCDP−コリンが1.1g生成した。これは
対CMPモル収率90.8%である。
わりにフラクトースを15g、ホスフォリルコリンを0
.6g用いる他は、実施例1と同様に実施したところ、
反応液中にCDP−コリンが1.1g生成した。これは
対CMPモル収率90.8%である。
第1図は組換え体DNApCC1の制限酵素開裂地図を
示す。 第1図
示す。 第1図
Claims (2)
- (1)コリンホスフェート シチジルトランスフェラー
ゼの遺伝子を含む組換え体DNAで形質転換されたサッ
カロミセス・セレビシーの培養液、菌体もしくはその処
理物を用いて、シチジン−5′−モノリン酸とコリンま
たは/及びホスフォリルコリンを反応基質として反応液
中にシチジンジリン酸コリンを生成蓄積させ、それを採
取することを特徴とするシチジンジリン酸コリンの製造
方法。 - (2)前記反応液に糖類物質を存在せしめる特許請求の
範囲第1項に記載のシチジンジリン酸コリンの製造方法
。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP14715087A JP2724825B2 (ja) | 1987-06-15 | 1987-06-15 | シチジンジリン酸コリンの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP14715087A JP2724825B2 (ja) | 1987-06-15 | 1987-06-15 | シチジンジリン酸コリンの製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63313594A true JPS63313594A (ja) | 1988-12-21 |
JP2724825B2 JP2724825B2 (ja) | 1998-03-09 |
Family
ID=15423716
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP14715087A Expired - Lifetime JP2724825B2 (ja) | 1987-06-15 | 1987-06-15 | シチジンジリン酸コリンの製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2724825B2 (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0553821A1 (en) | 1992-01-30 | 1993-08-04 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | Process for producing cytidine diphosphate choline |
WO2001068064A3 (en) * | 2000-03-14 | 2002-01-17 | Ferrer Int | Use of cdp-choline for the prophylactic treatment of cerebral ischemia |
JP2019524050A (ja) * | 2017-07-07 | 2019-09-05 | スーヂョウ バイオシンセティカ カンパニー リミテッドSuzhou Biosynthetica Co., Ltd | シチコリンを生産するための組換え微生物及びシチコリンの生産方法 |
-
1987
- 1987-06-15 JP JP14715087A patent/JP2724825B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0553821A1 (en) | 1992-01-30 | 1993-08-04 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | Process for producing cytidine diphosphate choline |
CN1060215C (zh) * | 1992-01-30 | 2001-01-03 | 协和发酵工业株式会社 | 胞苷二磷酸胆碱的制造方法 |
US6387667B1 (en) | 1992-01-30 | 2002-05-14 | Kyowa Hakko Kogyo, Co., Ltd. | Process for producing cytidine diphosphate choline |
WO2001068064A3 (en) * | 2000-03-14 | 2002-01-17 | Ferrer Int | Use of cdp-choline for the prophylactic treatment of cerebral ischemia |
US6930096B2 (en) | 2000-03-14 | 2005-08-16 | Ferrer Internacional, S.A. | Use of CDP-choline for the prophylactic treatment of cerebral ischemia |
CZ300616B6 (cs) * | 2000-03-14 | 2009-07-01 | Ferrer Internacional, S. A. | Farmaceutický prostredek |
US7635691B2 (en) | 2000-03-14 | 2009-12-22 | Ferrer Internacional, S.A. | Use of CDP-choline for the prophylactic treatment of cerebral ischemia |
JP2019524050A (ja) * | 2017-07-07 | 2019-09-05 | スーヂョウ バイオシンセティカ カンパニー リミテッドSuzhou Biosynthetica Co., Ltd | シチコリンを生産するための組換え微生物及びシチコリンの生産方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2724825B2 (ja) | 1998-03-09 |
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