JPS63277968A - 異常脂質代謝の標識に対する検定法および診断装置 - Google Patents

Abstract

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め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】

技術分野 本発明は異常脂質代謝の標識に関する検定法に関し、詳
しくは液体血液試料中のアポリポタンパク質Ｂ−１００
とアポリポタンパク質Ａ−１との比を測定する検定法お
よび該方法を実施する診断系に関する。 発明の背景 Ａ、アテローム性動脈硬化およびリポタンパク質アテロ
ーム性動脈硬化は動脈の壁土に蓄積するコレステロール
および他の脂質が大きなプラクを形成し、それが血液の
流れを阻害し、凝塊の形成、動脈の閉塞および閉塞性血
栓症または塞栓症疾患例えば心臓攻撃または発作の原因
を生ずることができる疾患である。米国における全死亡
の５０％までがアテローム性動脈硬化およびその二次合
併症により起される。 ヒトアテローム性動脈硬化は動脈の壁中の、コレステロ
ールを含む選ばれた脂質、および細胞の蓄積と規定され
、時間とともに閉塞性障害を生ずる、アテローム性動脈
硬化の病因は多回性であり、臨床、病理遺伝および実験
的証拠の大部分はりボタンバク質代謝の異常がアテロー
ム性動脈硬化の発生の原因であることができることを示
唆する。 これらの脂質はりボタンバク質と称される脂質−タンパ
ク質複合体として血流中に運搬される。 アテローム性動脈硬化、殊にその冠動脈疾患（ｃＡＤ）
として知られる形態は主要な健康問題である。アテロー
ム性動脈硬化およびその関連脈管疾患は１９８３年に９
８３．０００の死を起し、ＣＡＤ単独が癌のすべての形
態を合せたよりも多い年間死亡数を占める。米国におい
て１．百方以上の心臓発作が毎年起り、５０万Å以上が
この疾患の結果死亡する。直接的健康管理コスト中、Ｃ
ＡＤコストは米国で毎年６千万ドル以上である。この莫
大な代価は疾患を食事、行動改変（運動）、および特定
治療剤で制御できるようにＣＡＤのおそれのある特定集
団を確認する手段に対する配慮に集中した。 コレストロール関連血漿リポタンパク質粒子の４主クラ
スが規定され、腸または肝臓中にその由来を有する。こ
れらの粒子はコレステロールおよびトリグリセリドを含
む中性脂質の運搬体中に含まれる。全クラスの血漿リポ
タンパク質は脂質−タンパク質複合体に関連するアポリ
ポタンパク質を有し、アポリポタンパク質はこれらのり
ボタンバク質の機能に必要な役割を演する。 第１のクラスはキロミクロンである。それらは最大のり
ボタンバク質であり、トリグセリド中に多い。キロミク
ロンの由来の部位は腸である。 アポリポタンパク質はキロミクロン塊の量的に小さい部
位であるが、アポリポタンパク質Ａ−１、Ａ−Ｉｆおよ
びＡ−ＩＶはキロミクロンと有意に関連し、これらのＡ
リポタンパク質の腸合成が認められたと報告された。キ
ロミクロンはまたアポリポタンパク質Ｂ−４８を含有す
る。試験管内でキロミクロンを血漿または高密度リポタ
ンパク質（ＨＤ　Ｌ）に暴露するときにＡタンパク質の
キロミクロン補体の多くが失われ、ＣおよびＥアポタン
パク質が得られる。Ａアポリポタンパク質（アポＡ）の
腸生成は脂肪吸収およびキロミクロン形成以外の因子に
より調節することができる。 次のクラスのりボタンバク質は超低密度リポタンパク質
、ＶＬＤＬである。ＶＬＤＬ粒子は肝臓中で作られ、ト
リグリセリド代謝および肝臓からのこれらの脂質の運搬
体中に含まれる。アポリポタンパク質アポＢ−１００お
よびアポＥはＶＬＤＬ粒子の主成分である。 第３のりボタンバク質は低密度リポタンパク賞（Ｌ　Ｄ
　Ｌ）称され、ＶＬＤＬの異化作用の特定生成物である
。ＬＤＬ粒子中の主アポリポタンパク質はアポリポタン
パク質Ｂ−１００、すなわちアポＢ−１００である。 もう古典的なフラミンガム（Ｆｒａｍｉｎｇｈａａａ　
）の研究（１９７１）の結果はＣＡＤのおそれと血清コ
レステロール濃度との間に明らかな相関を示した。この
研究はまた高密度の低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）コ
レステロールがＣＡＤの高いおそれに関連することを示
した。最近、リピド・リサーチ・クリニックス・コロナ
リ・プライマリ−・プレベンシラン・トライアル（Ｌｉ
ｐｉｄ　Ｒｅ５ｅａｒｃｈＣ１ｉｎｉｃｓ　Ｃｏｒｏｎ
ａｒｙ　Ｐｒｉｍａｒｙ　Ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ　Ｔｒ
ｉａｌ　）（１９８４）により行なわれた研究はコレス
テロールおよびＬＤＬコレステロールの血漿濃度を食事
および薬物を組合せた規制により低下できること、およ
びこの血漿コレステロールの低下がＣＡＤ致死の発生の
低下を生ずることを示した。 ＬＤＬは血漿中の主コレステロール運搬リポタンパク質
である。ＬＤＬは脂質コアがそれぞれエステル結合によ
り長鎖脂肪酸に結合しながら約１５００分子のコレステ
ロールからなる大きい球状粒子である。このコレステリ
ルエステルのコアはリン脂質、非エステル化コレステロ
ール分子およびアポリポタンパク質Ｂ−１００の単分子
の層により包まれている。リン脂質は親水性頭が外側に
あるように配列され、ＬＤＬを血液または細胞外液体中
に水和懸濁状にあらしめる。 コレステロールは特異化ＬＤＬ受容体を通してＬＤＬ上
の細胞に送付され、細胞のコレステロール代謝を制御で
きるリソソーム中のＬＤＬ粒子から遊離される。細胞内
コレステロールの蓄積は３プロセスを修飾する。 第１に、コレステロールの生合成経路中の段階を触媒す
る酵素、ＨＭＧ−ＣｏＡ還元素素、の合成を止めること
により細胞自身のコレステロールを作る細胞の能力を低
下する。酵素の抑制はＬＤＬの受容体仲介吸収から誘導
される外部コレステロールに依存する細胞を残す。 第２に、到来ＬＤＬ誘尋コレステロールはりボタンバク
質アシルトランスフェラーゼと称され多酵素を活性化す
ることにより細胞中のコレステロールの貯蔵を促進する
。その酵素は脂肪酸を過剰のコレステロール分子にエス
テル化し、貯蔵小滴中に析出するコレステリルエステル
を作る。 第３に、最も重要なことに、細胞内のコレステロールの
蓄積が細胞に新ＬＤＬ受容体の合成を停止させるフィー
ドバック機構を誘導する。細胞はそれによりその外部受
容体の補足を調節し、細胞の変動する要求を満たすのに
十分な、しかしそれを過負荷にするには不十分なコレス
テロールを細胞中に運ぶ。例えば、活動的に分裂し、新
しい膜物質を要求する線維芽細胞は約４０．０００のＬ
ＤＬ受容体の最大補足毎細胞を維持する。成長中でない
細胞中に到来コレステロールが蓄積し始め、フィードバ
ック系が受容体製造を低下し、受容体の補足を１０倍程
度低下させる。 一方、他の循環リポタンパク質、高密度リポタンパク質
（Ｌ　Ｄ　Ｌ）粒子はアテローム性動脈硬化の低いおそ
れに関連する高コレステロールの状態に関係があること
が示された。アポリポタンパク質Ａ−Ｉは構造タンパク
質であり、ＨＤＬ粒子の抗原である。ＨＤＬの量はアテ
ローム性動脈硬化の予想発生率と逆相関を与える。 高密度リポタンパク質（ＨＤＬ）は２つの主要アポリポ
タンパク質、アポリポタンパク質Ａ−１（アポＡ−Ｉ）
およびアポリポタンパク質Ａ−ＩＩ（アポＡ−Ｉｆ）を
含む。アポＡ　−■＊全霊長類ＨＤＬの主要タンパク質
である。ＨＤＬ粒子はすべてアポＡ−１を含み、従って
、ＨＤＬの免疫量化には通常アポＡ−Ｉの定量が含まれ
る。ＨＤＬ粒子の約８０％はまたアポＡ−ｎを含むが、
しかしアポＡ−ＩＩのみを含むＨＤＬ粒子は記載されな
かった。 アポＡ−Ｉの１つの機能は血漿酵素、レシチン−コレス
テロールアシルトランスフェラーゼ（ＬＣＡＴ）の活性
化である。この酵素は肝臓へ輸送するためのＨＤＬ上の
遊離コレステロールのエステル化に必要である。アポＡ
−Ｉが存在しないと血液中のコレステロールがエステル
化されず、従ってコレステロールが血液から除去されな
い。 アポＡ−ｎにより作用されるＨＤＬ代謝中の特定役割は
規定されていない。 多くの研究は高ＨＤＬ濃度がＣＡＤの低い発生率に相関
することを示した。若干の著者はＨＤＬがコレステロー
ルを抹梢部位例えば動脈壁から除去し、従ってＨＤＬに
対する抗じゅ（腫形成性に寄与することを推測した。Ｈ
ＤＬコレステローノυの高い濃度は比較的正常な脂質代
謝並びに心血管疾患の低発生ｉよび（または）低い症状
に相関するが、ＬＤＬコレステロールの高い濃度は異常
脂質代謝およびＣＡＤの高いおそれに関連する。脂肪過
剰血（血中の過剰脂質）を有する患者およびＣＡＤに対
する特定おそれのある患者の適当な管理のためにＬＤＬ
およびＨ’ＤＬコレステロールの濃度をしばしば測定す
ることが望ましい。今日までＨＤＬコレステロールの検
定は厄介で、ＨＤＬの血中濃度の測定に正確でなかった
。 Ｂ、リポタンパク質の構造および機能 コレステロールが血漿中に遊離で存在しないが、しかし
リポタンパク質により体中の組織部位に輸送されること
を理解することが重要である。コレステロールは直接細
胞合成から、または食事により得ることがでる。しかし
、コレステロールは肝臓によってのみ宿主から除去され
ることができ、そこで胆汁酸に転化され、排出される。 キロミクロンは食事コレステロールおよびトリグリセリ
ドを次のプロセッシングのために肝臓へ運ぶが、ＬＤＬ
はコレステロールを冠動脈を含む肝外組織に送付する。 従って、リポタンパク質ＬＤＬ／アポＢ−１００は抹梢
組織に対する「悪性」コレステロールの沈着物中に含ま
れる。逆にリポタンパク質、ＨＤＬ／アポＡは組織から
「良性」コレステロールを除き、コレステロールを排出
のために肝臓へ戻す。 歴史的に多くの系かりボタンバク質の分離および確認の
ために開発された。これらの技術は通常リポタンパク質
粒子の物理化学的性質に基く。最もしばしば使用される
２つの技術は超遠心分離および電気泳動である。 分画密度勾配超遠心分離はりボタンバク質が他の血漿タ
ンパク質より軽いかまたは密度の小さい事実を利用し、
比較的容易であるが、しかしキロミクロン（最も軽いり
ボタンバク質）　、ＶＬＤＬ。 ＬＤＬおよびＨＤＬをそれぞれ他から分離するには時間
がかかりかつ厄介である。電気泳動法は高脂肪血症の患
者の分類に有用であった。しかし、これらの方法は普通
の臨床研究所で容易に行なわれない。 血中コレステロールまたはトリグリセリドの単純な定量
は特定リポタンパク質がこれらの脂質を運ぶことに関連
する情報およびそれらの定量を医師に提供しないことも
また知ることができる。 Ｃ０血漿リポタンパク質 ４つの主要クラスの血漿リポタンパク質；すなわちキロ
ミクロン、ＶＬＤＬ、ＬＤＬおよび１１０し、が規定さ
れ、またこれらの中にサブクラスが明らかに存在する。 すべてのりボタンバク質はその由来を腸または肝臓ある
いはその両方に有し、プソイドミセラ構造を有すると思
われる。中性脂質、殊にコレステロールエステルおよび
トリグリセリドはりボタンバク質のコア中に表面極性成
分、アポリポタンパク質およびリイ脂質、との相互作用
により可溶性で安定な形態に維持される。 非エステル化コレステロールもまたこれらの複合体中に
存在する。その極性は中性脂質（コレステロールエステ
ルおよびトリグリセリド）の極性と一層極性のアポリポ
タンパク質およびリン脂質の極性との間にあり、コアお
よび表面の両方中に認めることができる。 アポリポタンパク質、非エステル化コレステロールおよ
びリン脂質からなる外部表面はコレステロールエステル
およびトリグリセリドの水不溶性コアを包囲し、無極性
脂質を水性環境から保護する。この一般的構造概念は小
角Ｘ線散乱研究により、および種々のプローブをリポタ
ンパク質の構造の調査に用いた他の物理的方法により支
持された。従って血漿リポタンパク質の重要な機能は中
性脂質の可溶化および輸送である。 Ｄ、アポリポタンパク質 アポリポタンパク質は、分離した無偏りボタンバク質を
有機溶媒、界面活性剤またはカオトロピック試薬による
処理により得られる血漿リポタンパク質の脂質を含まな
いタンパク質成°分である。 リポタンパク質で捕捉されるすべてのタンパク質がすべ
て脂質輸送における役割を有するとは限らない。適切な
例は血清アミロイドＡタンパク質、鋭敏な相反応動、が
ＨＤＬに結合して血漿中に輸送されるとする最近の認識
である。これらの低分子量タンパク質は炎症状態で３０
％までのアポＨＤＬを含むことができるが、しかしそれ
らが特定の脂質輸送役割を有することは疑わしい。 （１）アポリポタンパク質Ａ−１ （ａ）　　タンパク質 アポリポタンパク１ｊｘＡ−１（アポＡ−１＞は本発明
における関心のタンパク質である。アポＡ−１が次に論
議される。 アポＡ−１はすべての霊長類ＨＤＬの主要タンパク質成
分であり、すべてのＨＤＬ粒子中に存在し、ＨＤ　Ｌ粒
子当り多数、例えば７〜８個、のアポＡ１分子が存在す
る。キロミクロン、ＶＬＤＬおよびＬＤＬ中に比較的少
量存在しまたＨＤＬの全タンパク質質量の約６０〜８０
％を構成することが報告された。 アポＡ−１は２４３〜２５５残基の単鎖からなり、シス
チン、システィン、ロイシン、または炭水化物を含まず
、若干のイソ形態で存在する。アポＡ−１は脂質を含ま
ない状態で約５５％のαらせん含量を有し、それはリン
脂質を結合すると約７５％に増加する。１１個のヘリカ
ル残基の反復サイクルがこのアボリボタンパク質中に確
認された。これらの単位が遺伝子重複により２２残基反
復単位を生じた単先駆鎖を表わすことが示唆された。こ
れらの単位が密配列相同性を有し、タンパク−質の脂質
結合領域を表わすと思われる。 アポＡ−ＩはＬＣＡＴ、コレステロールおよびホスファ
チジルコリンのそれぞれのコレステリルエステルおよび
リゾホスファチジルコリンへの転化を触媒する血漿酵素
、の強力な活性化因子である。アポＡ−１の特定脂質−
結合領域がＬＣＡＴを活性化し、この活性が脂質結合の
性質に関連したことが報告された。既に記載したように
肝臓および腸がアポＡ−Ｉを合成するが、しかし全血漿
含量に対するその相対的寄与およびアポＡ−Ｉの生成を
修飾する因子は十分に規定されていない。 典型的には、血漿アポＡ−１の約９０％以上が）ｌ　Ｄ
　Ｌに関連し、約１％未満がＶＬＤＬおよびＬＤＬに関
連し、約１０％またはそれ未満が血漿のりボタンバク質
を含まない百分に関連する。各粒子型中のアポＡ−Ｉの
量はデータの報告者で異なり、粒子の分離に用いた方法
の関数であると思われる。 （ｂｌ　　アポＡ−１リポタンパク質の臨床的重要性Ｈ
ＤＬ、アポＡ−１の主タンパク質成分の測定は臨床的に
重要である。多くの研究の結果アポＡ−１の濃度がＣＡ
Ｄを有する被験者中に低下することが示された。この観
察はこの患者群中の血漿アポＡ−１の保護役割を強調す
る。 若干の研究の結果は、アポＡＩ？）１度を正確に測定す
ることにより異常脂質代謝、アテローム性動脈硬化に対
する、殊にＣＡＤに対する個体の予後を予期できること
を示唆する。２４１６名の子供の最近の調査に対してフ
リートマン（Ｆｒｅｅｄｍａｎ）ほか、（１９８６）、
ニュー・イングランド・ジャーナル・オブ・メデイシン
（Ｎｅｗ　Ｅｎｇ、　Ｊ、　Ｍｅｄ、）　、３１５　：
　７２１〜？２６が参照される。しかし、アポＡ−１単
独の量は、単にその測定の正確さおよび精度における困
難のためであるとしても、異常脂質代謝に対する標識と
して利用できなかった。従って、比較的高いアポＡ−Ｂ
７４度が正常脂質代謝、および比較的低い濃度で異常脂
質代謝およびＣＡＤと相関する傾向があるけれども、正
常なヒトと既知ＣＡＤを有するヒトとの間の明瞭な境界
線は報告されなかった。 前記のように、アポＡ−１は臨床的に有用な免疫検定系
例えば放射免疫検定（ＲＩ　Ａ）　、酵素結合抗体免疫
検定（ＥＬ　Ｉ　ＳＡ）、電気免疫検定（ＥＩＡ）、放
射免疫拡散（ＲＩ　Ｄ）において、および免疫比濁法（
ＩＮＡ）により正確かつ精密に定量することが非常に困
難であると認められた０例えば、種々の方法を用いて報
告された値の分散に対するスタインバーブ（ＳＬｅｉｎ
ｂｅｒｇ　）ほか、（１９８３）、クリニカル・ケミス
トリー（ｃＩｉｎ、　Ｃｈｅ＋＋＋）　、２９１３　：
４１５〜４２６の表１参照。 これらの分析の困難性に対して主張された理由の１つは
アポリポタンパク質Ａ−１分子が血漿および血清中に大
きい生化学的に不均質な粒子の部分として存在し、その
中に若干の抗原部位（エピトープ）が隠蔽され、マスク
されることである。その結果、若干の研究者は通常隠蔽
されたエピトープをアジマスキングし免疫反応に利用で
きるようにそれらの試料に対するアンマスキング処理を
用いた。 スタインバーブ（Ｓｔｅｉｎｂｅｒｇ　）ほか、（１９
８３）、クリニカル・ケミストリー（ｃＩｉｎ、Ｃｈｅ
ｗ）、２９：４１５〜４２６はまた血液試料例えば血漿
または血清を変性剤例えば尿素、テトラメチル尿素およ
びグアニジン、界面活性剤例えばドデシル硫酸ナトリウ
ムおよびポリオキシエチレン（２０）ソルビタンモノラ
ウラート（ツイーン２０）、加熱例えば５２℃で３時間
および３７℃で２時間、および脱脂質有機溶媒例えばエ
タノールとジエチルエーテル、メタノールとジエチルエ
ーテル、クロロホルムとメタノールなどの混合物で処理
することによるアンマスキングを論議している。他の特
定のアンマスキング処理はマシーコ（Ｍａｃｉｅｊｋｏ
）ほか、（１９８２）、クリニカル・ケミストリー（ｃ
Ｉｉｎ、　Ｃｈｅｗ）、２８：１９９〜２０４（界面活
性剤）　；コレン（Ｋｏｒｅｎ　）ほか、（１９８５）
、クリ二カ・シミ力・アクタ（ｃＩｉｎ、　Ｃｈｉｎ、
　Ａｃｔａ）　、１４７　：８５〜９５（有ｉ溶媒）；
およびバーリ（Ｂｕｒｙ）ほか、（１９８５）、クリニ
カル・ケミストリ（ｃＩｉｎ、　Ｃｈｅｗ）　、３土［
４７〜２５１（３７℃、２時間）により報告された研究
に見出すことができる。 上記研究者などの若干はまた血漿および血清中に存在す
るアポＡ−Ｉの明らかな不均質性の回避を助けるため多
クローン性抗体調製物を用いた。マシーコ（Ｍａｃｉｅ
ｊｋｏ）ほか、（１９Ｂ　２）、クリニカル・ケミスト
リー（ｃＩｉｎ、　Ｃｈｅ慴）、２８．１９９〜２０４
；コレン（Ｋｏｒｅｎ）ほか、（１９８５）、クリニカ
・シミ力・アクタ（ｃＩｉｎ、　ＣｈｉＩｌ、　Ａｃｔ
ａ）　、１４７　：　８５〜９５　；バリー（Ｂｕｒｙ
）ほか、（１９８５）、クリニカル・ケミストリー（ｃ
Ｉｉｎ、　Ｃｈｅａｐ）　、３工：２４７〜２５１、お
よびフェスミール（Ｆｅｓｎ＋１ｒｅ）ほか、（１９８
４）、クリニカル・ケミストリー（ｃＩｉｎ、　Ｃｈｅ
ｅｒ）　、３０　：　７１２〜７１６゜もちろん、臨床
的に有用な定量免疫検定における多クローン性抗体の使
用はそれとともに若干の動物の血清の使用に伴なう抗体
活性の差異および異なるバッチの血清の免疫特異性の差
異の障害を伴なう。 一方、ここに用いる単クローン性パラトープ分子を別に
して、他の研究者はＨＤＬ粒子およびアポＡ−１と実質
的に等しく免疫反応し、並びに試料中のＨＤＬ上に存在
する実質的にすべてのアポＡ−１と免疫反応する単クロ
ーン性抗体を記載しなかった。従って、カーティス（ｃ
ｕｒｔｉｓｓ）ほか、（１９８５）、ジャーナル・オブ
・バイオロジカル・ケミストリー（Ｊ。 Ｂｉｏｌ、　Ｃｈｅｗ、　）　、２００　：　２９８２
〜２９９８はアポＡ−ＩおよびＨＤＬとほぼ等しく免疫
反応したが、しかし検定した試料中に存在することが知
られた放射性標識したアポＡ−１またはＨＤＬの単に約
６０％を免疫沈降できたＡｌ−７と称された１つの単ク
ローン性抗体を報告した。 ２、アポリポタンパク［Ｂ−１００ （ａ）　　タンパク質 アポリポタンパク質Ｂ−１００（アポＢ−１００）と称
された肝臓中で合成されたアポＢの種は細胞ＬＤＬ受容
体により確認され結合される。アポＢ−１００を結合す
ることによりこれらの受容体はＬＤＬ粒子を結合し、そ
れを血漿から抽出する。ＬＤＬはそれにより細胞中に取
込まれて破壊され、そのコレステロールを生じて各細胞
の要求に役立てられる。従ってアポＢ−ＬＤＬ受容体相
互作用が血流からのＬＤＬコレステロールの除去に主要
役割を演じ、ＬＤＬ粒子はすべてアポＢ−１００を含有
する。 伽）　アポＢ−１００リポタンパク質の臨床的重要性ア
ポＡ−１およびＨＤＬとは対照的に、アポＢの高い濃度
は異常脂質代謝およびＣＡＤに関連したが、低い量は常
態および疾患の低いおそれに相関する傾向がある。キロ
ミクロン粒子はアポリポタンパク質Ｂ−４８として示さ
れる主アポＢタンパク質を含み、それはまたアポＢ−１
００遺伝子の生成物であり（ヤング（Ｙｏｕｎｇ）ほか
、＜１９８６）、ジャーナル・オプ・バイオロジカル・
ケミストリー（Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　ＣｈｅＩＩ＋、）、
２６１：ｌ９９５〜２９９８）、アポＢ−１００と少く
とも１つの交差反応性エピトープを共有する。ＶＬＤＬ
およびＬＤＬ粒子はアポＢ−１００を含有する。２つの
タンパク質中、アポリポタンパク質Ｂ−１００（アポＢ
−１００）は異常脂質代謝およびＣＡＤに対し一層重要
であると思われる。 最近若干の研究者はアポＢ−１００の血漿濃度が血５１
ＬＤＬコレステロール濃度よりも一層ＣＡＤのおそれを
示すことができることを示唆した。スナイダーマン（Ｓ
ｎｉｄｅｒｍａｎ）ほか、（１９８０）、プロシーデン
グズ・オブ・ザ・ナショナル・サイエンス（Ｐｒｏｃ、
　Ｎａｔｌ、八ｃａｄ。 Ｓｃｉ、）ＵＳＡ、７エ：６０４〜６０８゜ＨＤＬおよ
びアポＡ−Ｉに対する場合のように、アポＢ−１００ま
たはＬＤＬ単独の濃度から異常脂質代謝を有するかまた
はＣＡＤのおそれの高いヒトを確認できる明らかな境界
線が決定されなかった。 特定の抗体含有抗血清を用いる血漿アポタンパク質Ｂに
対する多くの型の免疫検定法が競合的液相および固相Ｒ
ＩＡ、ＥＬＩＳＡＳＲＩＤなどを含めて報告された。こ
れらのアポＢ免疫検定の広汎な適用を制限する問題は再
現性並びに用いる抗血清の品質および特異性であった。 種々の型のアポＢ検定法それぞれの方・法論的問題の総
説はカーレイ　（ｃｕｒｒｅｙ）ほか、（１９７Ｂ）、
クリニカル・ケミストリー（ｃＩｉｎ、　ＣｈｅＩＩ＋
）、２４：２８０〜２８６およびロセニュー（Ｒｏｓｓ
ｅｎｅｕ）ほか、（１９８３）、クリニカル・ケミスト
リー（ｃＩｉｎ、　Ｃｈｅａｐ）　、２８　：　４２７
〜４３３に見出される。 若干の研究者は抗原構造およびリポタンパク質代謝中の
役割の研究に用いるヒトアポＢに対する単クローン性抗
体のパネルの開発を報告した。さらに、液相ＲＩＡにお
ける血漿アポＢ濃度の測定に対する抗アポＢ単りローン
性抗体の使用が報告された。バトン（Ｐａｔｔｏｎ）ほ
か、（１９８３）、クリニカル・ケミストリー（ｃＩｉ
ｎ、　Ｃｈｅｍ）　、２９　：　１８９８〜１９０３　
；メイナルド（Ｍａｙｎａｒｄ）ほか、（１９８４）、
クリニカル・ケミストリー（ｃ１ｉｎ、　ＣｈｅＩｌｌ
）、３０：１６２０〜１６２４およびヤング（Ｙｏｕｎ
ｇ　）ほか、（１９８６）、クリニカル・ケミストリー
（ｃＩｉｎ、　ＣｈｅＩｌ、）　、３２　：　１４８４
〜１４９０゜さらに１グループは血漿アポＢに対する放
射免疫拡散検定における抗アポＢ単りローン性抗体の混
合物の使用を報告した。マルコンビナ（Ｍａｒｃｏｎｖ
ｉｎａ）ほか、（１９８５）、クリニカ・シミ力・アク
タ（ｃ１ｉｎ、　ＣｈｉＩｌ、　Ａｃｔａ）、１４７：
１１７〜１２５゜しかしこれらの検定法は長時間のイン
キュベーション、反復遠心分離および（または）放射性
物質の使用の必要に悩まされる。 （３）アポＡ−ＩおよびＢ−１００に対する試薬として
の単クローン性パラトープ分子 ヒト血液試料中のアポＡ−１またはＢ−１００の存在を
検定する試薬として単クローン性抗体またはそれらの抗
体結合部位、すなわちパラトープ分子、の使用は、一度
得られるとそのような試薬が不変の品質で比較的多量に
生成でき、従って単クローン性抗体に関連する不一致の
問題が回避されるので魅力的である。しかし、特定の単
クローン性パラトープ分子をそのような検定系における
成分として使用することを妨げる多くの因子が存在する
。 典型的な単クローン性パラトープ分子として単クローン
性抗体を用いると単クローン性抗体がその標的抗原の抗
原不均質性のために有用であるには免疫特異性でありす
ぎることができることが教示されている０例えば、普通
の多クローン性抗体含有抗血清の特異性はアポＡ−１検
定において有用であると認められたように抗原タンパク
質の大部分またはすべてを網羅する抗原決定基に結合す
る何十万もの種々の抗体の共働に存在する。その結果、
遺伝子の多形性、グリコジル化の不均一性あるいは他の
変性または他の反応に基（抗原の構造の小変化が通常多
クローン性抗体の結合に対して有する影響が小さい。同
様に、多クローン性抗血清からの抗体の一層大きいかま
たは小さい亜集団は通常修飾または変性された抗原を結
合する。 対照的に、単クローン性抗体は通常抗原分子上の１抗原
決定基（エピトープ）に結合する。 何かの理由でその決定基が改変されると抗体は結合を続
けることができるかまたは続けることができない。これ
が問題であるかまたは利点であるかは個々の環境による
。この場合のように単クローン性抗体をアポリポタンパ
ク質に対する診断検定に用いるとすれば、そのタンパク
質における小さい抗原変異が大きい誤差を生ずる。 従って、例えばツアオ（Ｔｓａｏ）ほか、（１９８２）
、ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（
Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　Ｃｈｅｓｓ、）　、２５７　：　１
５２２２〜１５２２８およびマオ（Ｍａｏ）ほか、（１
９８３）、２９：１８９０〜１８９７はアポＢ分子に特
異性の若干の単クローン性抗体が全ＬＤＬ粒子上に発現
されないエピトープに結合することを報告した。そのよ
うな抗体は明らかに血漿または血清中の全アポＢ−１０
０の定量に有用ではない。 アポタンパク′ＭＡ−１の抗原不均質性は前に論議した
。アポＢ−１００の不均質性もまた十分に文献に記載さ
れた０例えばアポＢ上のエピトープの発現は（ｉ）関連
脂質の組成、（ｉｉ）免疫反応の温度、（ｉｉｉ　）そ
の自然環境からのＬＤＬの分離程度、および（ｉｖ　）
個体間の遺伝子発現、により修飾されることが認められ
ている。 第２に、それらの特有の特異性のために、単クローン性
抗体（Ｍａｂ）の満足すべき使用はしばしば標的抗原に
対するその親和性に依存する。 例えば、Ｍａｂ自体が液相にある間はＭａｂが液相およ
び固相の抗原の結合に有用な十分な親和性を有するけれ
ども、その同じ抗体が溶液からの抗原に対する結合およ
び保持に有用な固相結合抗体として有用であることがで
きない。 上記問題は単クローン性抗体の使用に一般的である。従
って当業者はそれらを使用する検定系において単クロー
ン性抗体を試験し、確認することが必須であることを認
めた。ボッディング（ＧｏｄｉｎｇＳＪａｍｅｓ　ＩＡ
、　ｒ単りローン性抗体：原理および診療（Ｍｏｎｏｃ
ｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ　　：“Ｐｒ１ｎｃ
ｉｐｌｅｓ　ａｎｄ　Ｐｒａｃｔｉｃｅ　″）」、アカ
デミツク畢プレス（Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ、　
Ｎｅｗ　Ｙｏｒｋ）、（１９８３）、４０〜４６頁。 発明の概要 本発明は異常脂質代謝の標識に対して検定する改良法お
よびその方法を実施するための、典型的にはキット形態
における診断系を指向する。そのような検定において、
ヒト血液試料の単位容積中のアポリポタンパク’ＩＢ−
１００およびアポリポタンパク質Ａ−１の量が測定され
、アポリポタンパク質Ｂ−１００とアポリポタンパク質
Ａ−１との比が無単位数として測定される。 本発明はアポリポタンパク［Ｂ−１００含有ヒト液体血
液試料の第１アリコートを、アポリポタンパク質Ｂ−１
００と免疫反応する、かつ＾ＴＣＣ受託番号ＨＢ８７４
２またはＨＢ８７４６を有するハイブリドーマの１つに
より分泌される固相に結合した第１単クローン性パラト
ープ分子を有する固体マトリックスから実質的になる固
体支持体と混合して固−液相混合物を形成することによ
り第１液体試料アリコートをアポリポタンパク質Ｂ−１
００の量について検定することを含む。固体支持体の表
面は非特異的タンパク質結合部位をブロックされている
。その混合物は生物学的検定条件下に、第１パラトープ
分子が試料アリコート中に存在するアポリポタンパク質
Ｂ−１００と免疫反応し、試料アリコート中に存在する
実質的にすべてのアポリポタンパク質Ｂ−１００を含む
固相結合免疫反応物を形成するのに十分な予定時間保持
する。 前記第１液体試料了りコート中のアポリポタンパク質Ｂ
−１００はまたアポリポタンパク質Ｂ−１００と免疫反
応する、かつＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７４２またはＨＢ
８７４６を有するハイブリドーマの１つにより分泌され
るがしかし前の混合段階に使用されない、すなわち固相
結合パラトープ分子として使用されない前記２つの他の
ハイブリドーマにより分泌された単クローン性パラトー
プ分子であり、酵素指示手段に作用可能に結合された液
相第２単クローン性抗体と混合して第２混合物を形成す
る。その第２混合物は生物学的検定条件下に、第２パラ
トープ分子が試料アリコート中に存在する実質的にすべ
てのアポリポタンパク質Ｂ−１００と免疫反応物を形成
するのに十分な予定時間保持する０両パラトープ分子の
混合および免疫反応物の形成後に生ずる固相と液相を分
離し、分離した固相中に存在する指示手段結合アポリポ
タンパク質Ｂ−１００含有免疫反応物の量およびそれに
より試料の単位容積中のアポリポタンパク質Ｂ−１００
の量を測定する。 好ましい態様において前記２つの混合段階が実施的に同
時に行なわれ、２つの保持段階が一緒に行なわれる。従
って第１パラトープ分子および第２酵素績合パラトープ
分子が実質的に同時に試料と混合され、生ずる固−液相
混合物は、両バラトープ分子が試料中に存在する実質的
にすべてのアポリポタンパク質Ｂと免疫反応するのに十
分な時間保持される。 アポリポタンパク質Ａ−１を含み、アンマスキング処理
のないヒト液体血液試料の第２アリコートを第２の検定
に用いる。これに関し、第２液体試料アリコートを、ア
ポリポタンパク質Ａ−１と免疫反応する、かつＡＴＣＣ
受託番号ＨＢ９２００またはＨＢ９２０１を有するハイ
ブリドーマの１つにより分泌される固相に結合した第３
単クローン性パラトープ分子ををする固体マトリックス
から実質的になる固体支持体と混合して第３固−液相混
合物を形成する。固体支持体の表面はまた非特異的タン
パク質結合部位をブロックされている。 第３固−液相混合物は生物学的検定条件下に、第３パラ
トープ分子が試料アリコート中に存在する実質的にすべ
てのアポリポタンパク質Ａ−１と免疫反応し、試料アリ
コート中に存在する実質的にすべてのアポリポタンパク
質Ａ−１を含む固相結合免疫反応物を形成子るのに十分
な予定時間保持する。 アポリポタンパク質Ａ−１を含む同−第２液体試料アリ
コートを、アポリポタンパク質Ａ−１と免疫反応する、
かつＡＴＣＣ受託番号ＨＢ９２００ま　　、たはＨＢ９
２０１を有するハイブリドーマの１つにより分泌され、
先の混合段階で使用されない、すなわち固体の一部とし
て使用されたちの以外のパラトープ分子であり、酵素指
示手段に使用可能に結合した液相第４単クローン性パラ
トープ分子と混合して第４混合物を形成する。第４混合
物は生物学的検定条件下に、第４指示手段結合バラトー
プ分子が試料アリコート中に存在する実質的にすべての
アポリポタンパク質Ａ−１と免疫反応物を形成するのに
十分な予定時間保持する。前記パラトープ分子の両方の
混合および免疫反応物の形成後生ずる固相と液相を分離
し、分離した固相中に存在する指示手段結合アポリポタ
ンパク質Ａ−■含有免疫反応物の量およびそれにより試
料の単位容積中のアポリポタンパク質Ａ−１の量を測定
する。 また上記２つの混合段階を実質的に同時に行なうことお
よび上記２つの保持段階を一緒に行なうことが好ましい
、従って再び、固相結合パラトープ分子、酵素結合パラ
トープ分子および試料アリコートが実質的に同時に混合
され、固相と液相を分離するまで保持される。 殊に好ましい態様において、アポリポタンパク［Ｂ−１
００およびアポリポタンパク質Ａ−１に対する前記検定
が好ましい態様で行なわれ、各検定において固相結合重
クローン性パラトープ分子、液相酵素指示手段結合重ク
ローン性パラトープ分子および試料アリコートは実質的
に同時に混合され、次いで各混合物中の両パラトープ分
子が各混合物中に存在する実質上すべてのそれぞれのア
ポタンパク質Ｂ−１００およびＡ−Ｉと免疫反応するの
に十分な時間保持される。 前記検定のいずれにおいても、初めに挙げた固相結合重
クローン性バラトープ分子がＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７
４６を有するハイブリドーマにより分泌されるものであ
ること、および第３の固相結合パラトープ分子がＡＴＣ
Ｃ受託番号ＨＢ９２００を有するハイブリドーマにより
分泌されるものであることが好ましい。 本発明の他の観点は、典型的にはキット形態における診
断系を構成する。そのような系は各アポＢ−１００とア
ポＡ−１との比の１測定を行なうのに十分な量存在する
前記単クローン性パラトープ分子の１つを有する少くと
も別のパンケージまたは容器を含む。アポＢ−１００と
免疫反応するパラトープ分子の対の１つおよびアポＡ−
１と免疫反応するパラトープ分子の対の１つは酵素指示
手段に作用可能に結合される。 より好ましくは、それぞれの指示手段に結合されないそ
れぞれの単クローン性パラトープ分子は各別個に固相マ
トリックスに結合させて個々の固相支持体を形成させる
。それらの支持体のそれぞれの表面は非特異的タンパク
質結合部位をブロックされる。それらの固体支持体の固
体マトリックスはそれぞれのパラトープ分子のための容
器またはパフケージを構成する。 パラトープ分子がそれを診断系に含むバ・ンケージを有
するとして番号、すなわち第１、第２、第３および第４
、を与えられたけれども、それらの番号は単に確認のた
めに用いられ、それらのパラトープ分子を試料アリコー
トに混合するかまたはパッケージ内容物を用いる順序を
示していないことを理解すべきである。同様に前記混合
物を混合するパラトープ分子に［（１１する番号を与え
たが、しかしそれらの混合物を記載した順序で形成する
′必要がないことを理解すべきである。従って、例えば
第３および第４の単クローン性パラトープ分子との前記
第２アリコートの混合物は第１および第２バラトープ分
子との前記第１アリコートの混合前の時間に生ずること
ができる。同様に、既に記載したように、第１および第
２バラトープ分子を実質的に同時に混合することができ
る。 本発明は若干の利益および利点を有する。後記検定法の
使用により冠動脈疾患（ｃＡＤ）と相関する異常脂質代
謝に対する標識を得ることができそれが正確かつ信頼性
である事実である。 本発明の他の利益および利点はその検定が所望の正確さ
および精度で比較的短時間に、例えば望むならば約１時
間の時間内に行なうことができることである。 なお他の本発明の利益および利点はその方法がアポＢ−
１００、アポＡ−１および比標識に対する非常に正確か
つ精密な測定を与えるけれども、それらの測定が放射性
元素の使用およびそのような元素の使用が通常与える傷
害を伴なわないで達成されることである。 なお他の本発明の利益および利点は以下の本発明の詳細
な説明から当業者に明らかであろう。

【図面の簡単な説明】

開示の一部を形成する図面において、 第１図は液相放射免疫検定（ＲＩＡ）における単クロー
ン性抗体ＭＢ４７のモル濃度〔横軸：ＡｂｆＱ度（ＭＢ
４７））の増加により結合されたＩｔＪ標ｌｌ１ＬＤＬ
粒子（縦軸）の百分率を示すグラフである。 ＬＤＬは１０被験者のプールした血漿（−・・−・−）
から、または１正常脂肪血被験者（−）から調製した。 血漿は約１２時間の絶食時間後被験者の血漿流出により
得た。 第２図には２つのグラフが含まれる。グラフＡは既知一
定量の西洋ワサビペルオキシダーゼ標識ＭＢ４７　（Ｈ
ＲＰＯ−ＭＢ４７）分子の、増加量のＭ８２４分子の存
在下に固相付着試薬アポＢ−１００と免疫反応する能力
を示す。縦軸は相対光学濃度単位であり、横軸は競合物
として加えた非標識抗体タンパク質のミクロダラム毎ミ
リリットル（μｇ／ｍｊりの単位である。 一定量（２０μｇ）のＨＲＰＯ結合Ｍ８４７分子を非標
識ＭＢ４７（・）または非標識ＭＢ２４（ム）分子の増
加量および固相結合試薬アポＢ−１００（ＬＤＬ）と実
質的に同時に混合した。混合物を３時間２５℃で保持し
、それによりＭＢ２４およびＭＢ４７パラトープ分子を
試薬アポＢ−１００と免疫的に反応させて固相結合免疫
反応物を形成した。次いで固相結合標識ＭＢ４７の量を
物質および方法のセフシロンの競合的ＥＬＩＳＡに記載
したように検定した。 グラフＡは免疫反応混合物中の非標識ＭＢ４７バラトー
プ分子の増加量の存在が相応して固相免疫反応物として
結合した標Ｐ＃１ＭＢ４７分子の量を低下することを示
す、従って非標識ＭＢ４７がＬＤＬに対して標識ＭＢ４
７と競合する。 グラフＡはまた非標識Ｍ８２４分子の増加量が固相免疫
反応物として結合した標１１ｉＭＢ４７の量を実質的に
低下しないことを示す、従って非標識ＭＢ２４はＬＤＬ
に結合する標識ＭＢ４７分子と競合しない。 グラフＢはＨＲＰＯ標１ＭＢ２４分子および非標識ＭＢ
４７分子を用いて得た同様の結果を示す。 従ってＭＢ４７およびＭＢ２４パラト一プ分子はアポＢ
−１００の表面上で十分離れ、他の結合と立体的に競合
してそれを阻害することなく両分子を単個アポＢ−１０
０分子に対して結合させる異なるエピトープに結合する
。 第３図にはＡおよびＢの２つのグラフが含まれる。グラ
フＡは既知一定量（０，３７５μｇ　／　ｍ　ｌ　）の
西洋ワサビペルオキシダーゼ標識Ａｌ−１Ｏ分子の非標
識Ａｌ−１０（ム）およびＡｌ−１１（■）分子の増加
量の存在下に固相付着試薬アポＡ−１と免疫反応する能
力を示す。縦軸は光学濃度単位であり、横軸は添加非標
識競合車クローン性抗体のミクログラム（μｇ）単位で
ある。この研究は第２図に論じたものに類似し、その詳
細は物質および方法のセクション中に与えられる。　７
グラフＡは免疫反応混合物中の非標識Ａｌ−１０分子の
増加量が相応して固相免疫反応として結合した標ＱＡＩ
−１０の量を低下することを示す。 従って、非標識Ａｌ−１０がアポＡ−１に対して標識Ａ
ｌ−１０と競合する。 グラフＡはまた非標＠Ａｌ−１１分子の増加量が固相免
疫反応物として結合した標ｉ＠Ａｔ−１０分子の量を有
意に低下しないことを示す。従って非標識Ａｌ−１０分
子がアポリポタンパク質Ａ−■に結合する標識Ａｌ−１
０分子と競合しない。 グラフＢは類似の結果が一定ｆｆ１（０，３７５μｇ／
ｍＪ）のＨＲＰＯ標識Ａｌ−１０分子並びに非標識Ａｌ
−１１分子（■）およびＡｌ−１０分子（ム）で、抗原
としてＨＤＬを用いて得られることを示す。従ってＡｌ
−１０およびＡｌ−１１分子は、アポＡ−Ｉの表面また
はＨＤＬ上のアポＡ−Ｉ上で十分に離れ、両車クローン
性抗体分子の単個アポＡ−１分子に対し他の結合と立体
的に競合してそれを阻害することなく結合させる異なる
エピトープに結合する。 発明の詳細な説明 ■　一般的論議 Ａ　定義 「抗体」という語は抗原と特異的に結合できる免疫グロ
ブリンと称されるグリコジル化タンパク質の群の一員で
ある。そのような抗体はその抗原と、抗原の抗原決定基
と抗体の抗体結合部位との間の特異的免疫結合相互作用
により結合する。 「抗体結合部位」は抗原を特異的に結合する重および軽
鎖可変および超可庇部からなる抗体分子の構造部分であ
る。ジャーネ（Ｊｅｒｎｅ　）（１９７４）、アナール
ス・ド・イムノロジー（Ａｎｎ、　Ｉｍｍｕｎｏｌ。 （Ｉｎｓｔ、　Ｐａ５ｔｅｕｒ））　、１２５Ｃ：　３
７３〜３８９の命名を用い、抗体結合部位は通常ここに
「パラトープ」として示される。 抗体の抗体結合部位含有（バラトープ分子含有）ポリペ
プチド部分はパラトープを含み、抗原に結合する抗体分
子の部分であり、例えば抗体のＦａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（
ａｂ’）ｔおよびＦ　（ｖ）が含まれる。 抗体のＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２部分はよく知られた
方法による実質的に無傷の抗体上のそれぞれパパインお
よびペプシンのタンパク質分解反応により調製される。 例えばチオフィロポラスはか（Ｔｈｅｏｆｉｌｏｐｏｌ
ｏｕｓ　ａｎｄ　Ｄｉｘｏｎ　）に対する米国特許第４
．３４２．５６６号参照。Ｆａｂ’抗体部分もまたよく
知られ、例えばメルカプトエタノールによる二重鎖部分
を結合するジスルフィド結合の還元、次いで生じたタン
パク質メルカプタンの試薬例えばヨードアセトアミドに
よるアルキル化によりＦ（ａｂ’）ｚ部分から生成され
る。無傷抗体が好ましく、本発明の単クローン性リガン
ド分子の例として使用される。 「抗原」という語は歴史的に抗体により結合されるエン
テイテイーを称するため、また抗体の生成を誘導するエ
ンテイテイーを称するために使用された。より最近の用
法は抗原の意味を抗体により結合されるエンテイテイー
に限定し、「免疫原」という語が抗体生成を誘導するエ
ンテイテイーに対して使用される。ここに論議するエン
テイテイーが免疫原および抗原の両方である場合に、そ
れは一般に抗原と称される。 「抗原決定基」という語は抗体結合部位により免疫的に
結合される抗原の実際の構造部分を示す。 ジャーネ（Ｊｅｒｎｅ　）の命名は抗原決定基を「エピ
トープ」として再規定する。 「生物学的活性」という語は少くとも抗原または特異抗
体結合部位を特異的に結合するタンパク質分子の能力を
示すが、他の一般的またはエフェクター能力もまたその
分子中に存在することができる。 抗体結合部位を含むパラトープ分子の生物学的活性は水
性媒質中で混合するとパラトープ（抗体結合部位）とそ
のエピトープ（抗原決定基）との少くとも生理的ｐＨ値
およびイオン強度において免疫反応物を形成する免疫反
応により証明される。 好ましくは、生物学的活性は生物学的検定条件すなわち
本発明に有用な単クローン性パラトープ分子を約５〜約
９のｐＨ値範囲内で例えば蒸留水ないし約１モルの塩化
ナトリウムのイオン強度で、約４〜約４５℃の温度でエ
ピトープ（抗原決定基）に結合させる条件下に生ずる。 ここに有用な単りローン性パラＬ−プ分子はすべて生物
学的に活性である。 ｒＥＬ　Ｉ　ＳＡＪは固相に結合した抗原または抗体お
よび酵素−抗体または酵素−抗原結合体を用いて試料中
に存在する抗原または抗体の量を検出し、定量する酵素
結合抗体免疫検定を示す。ＥＬＩＳＡ技術の記載は１９
８２年にランデ・メディカル・バプリケーション（Ｌａ
ｎｇｅ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ。 Ｌｏｓ　Ａｌｔｏｓ　、　ＣＡ　）により発行されたサ
イテス（Ｄ、　Ｐ、　５ｉｔｅｓ　）ほかによる「基礎
およびしｎ原色疫学（Ｂａ５ｉｃ　ａｎｄ　Ｃ１１ｎｉ
ｃａｌ　Ｉｖｗｕｎｏｌｏｇｙ）’　Ｊ　、４版、２２
章、並びに米国特許第３．６５４，０９０号、第３．８
５０．７５２号、および第４，０１６，０４３号中に見
出され、それらがここに参照される。 「酵素」はしばしば特異的である基質中で若干の変化を
接触作用により促進または生成できるタンパク質を示す
。 用いた「免疫反応物」いう語は免疫反応の生成物、すな
わち抗原が抗体またはパラトープを含む分子により免疫
的に結合されるときに生ずるエンテイテイーを示す。従
って免疫反応物は分子間に形成される特定の型の複合体
である。 「指示手段」、「酵素指示手段」または「標識」という
語は種々の文法形態で同義に使用され、存在を示す検出
可能なシグナルの生成中に直接食まれる酵素を示す。酵
素標識に結合するとパラトープ分子はまたしばしば酵素
結合パラトープ分子として示される。 「全抗体」という語は細胞により分泌された完全な無傷
分子を、エピトープとの免疫反応における生物学的活性
に必要なパラトープを含む他の小分子と区別するために
用いる。 本発明に有用なパラトープ分子は単クローン性バラトー
プ分子である。「単クローン性抗体」（Ｍａｂ）はただ
１種の抗体分子を分泌するハイブリドーマのクローンに
より生成される抗体であり、単クローン性パラトープ分
子は後記のように単クローン性抗体またはそのパラトー
プ含有ポリペプチド部分である。ハイブリドーマ細胞は
抗体生成細胞および骨髄腫または他の自己永続性細胞系
から融合される。そのような抗体は初めにコーラ−ほか
（Ｋｏｈｌｅｒ　ａｎｄ　Ｍｉｌｓｔｅｉｎ　）、ネー
チャー（Ｎａｔｕｒｅ　）、２５６．４９５〜４９７　
（１９７５）により記載され、その記載がここに参照さ
れる。 「単クローン性パラトープ分子」および単に「パラトー
プ分子」という語はここに同義に、集合的に使用され、
単クローン性抗体の結合部位を含む分子の属を示し、全
単クローン性抗体、実質的に完全な単クローン性抗体お
よび単クローン性抗体の抗体結合部位含有部分が含まれ
る。ＭＢ４７、ＭＢ２４、Ａｌ−１０およびＡｌ−１１
と称される全単クローン性抗体は、パラトープを含む全
抗体の部分であるので本発明のパラトープ分子である。 「単クローン性バラトープ分子」または「パラトープ分
子」という語は、上記単クローン性抗体のパラトープ分
子を含む一般生物学的活性分子を意味するときにのみ使
用される。「パラトープ分子」という語とともに、また
その語のないＭＢ４７、ＭＢ２４、Ａｌ−１０およびＡ
ｌ−１１という語は、ハイブリドーマＡＴＣＣＨＢ８７
４２、ＨＢ８７４６、Ｉ（Ｂ１２Ｏ３またはＨＢ９２０
１により生成された特異全抗体を意味する場合に使用さ
れる。 「分泌」および「生成」という語はしばしば抗体分子が
得られる細胞に関して同義に使用される。 しかし抗体を生成する細胞はそれらの分子をそれらの環
境中へ分泌しないことができる。ここに関心のハイブリ
ドーマ細胞は単クローン性抗体をそれらの環境中へ分泌
する。しかし、そのような細胞はしばしば「抗体生成」
細胞、とじて示され、それらの抗体はしばしば技術的に
用いられる語に合せて「生成」されるとして示される。 上記抗体のパラトープ含有ポリペプチド部分は同様に「
生成」または「分泌」されるとして示されるが、しかし
そのような分子がそれ自体「生成」または「分泌」され
る抗体から調製されることを理解すべきである。 「上澄み」および「上澄み液」という語はここに同義に
使用され、細胞を培養する試験管内液体培地を示す。関
心のハイブリドーマの培養により生成された単クローン
性抗体はそれらの培地環境中へ分泌される。従ってそれ
らの細胞に対する培地上澄みは単クローン性パラトープ
分子の好ましい源の１つであり、よく知られた方法によ
りハイブリドーマ細胞から分離して容易に得られる。典
型的なそのような技術は液体培地からｍ胞を沈降させる
低速遠心分離である。単クローン性パラトープ分子はま
たハイブリドーマ組織を導入した実験動物の腹水腫瘍液
（腹水）から得ることができる。両方法が後記される。 免疫反応混合物を形成するための３つまたはそれ以上の
抗原およびパラトープ分子成分の混合に関連して使用し
た「実質的に同時」という語は、相互の約１５分以内、
好ましくは成分の任意の２つの混合の約５分以内にすべ
ての成分が単一混合物中に存在し混合されることを意味
する。 免疫反応物を形成するパラトープ分子とそのＬＤＬとし
てのアポリポタンパク’ＪｆＢ−１００またはＨＤＬと
してのアポリポタンパク質Ａ−１の抗原との免疫反応に
関連して用いた「実質的にすべて」という語はパラトー
プ分子が過剰に存在するときにパラドープ分子が溶液中
に存在する抗原の少くとも約９０％と免疫反応して免疫
反応物を形成することを意味する。好ましい実施におい
て、パラトープ分子がまた過剰に存在するときにパラト
ープ分子が存在する抗原分子の９５％以上と免疫反応物
を形成する。 Ｂ、ハイブリドーマおよび単クローン性パラトープ分子 本発明は４ハイブリドーマにより分泌される２対の２パ
ラト一プ分子を用いる。１対のパラトープ分子はアポリ
ポタンパク質Ｂ−１００と免疫反応する。他の対はアポ
リポタンパク質Ａ−Ｉと免疫反応する。 アポＢ−１００と免疫反応するパラトープ分子を分泌す
るハイブリドーマは研究室呼称）ｔ　Ｌ　１３０ｃ２、
３　Ｃ５およびＶ　８２　Ａ　６．１　Ｇ　４をもち、
それらのハイブリドーマにより分泌された全車クローン
性パラトープ分子は通常ここにそれぞれＭＢ４７および
ＭＢ２４として示される。それらのハイブリドーマによ
り分泌されたパラトープ分子のそれぞれが約９０％以上
の”’Ｉ−ＬＤＬと、およびアポＢ−１００上の異なる
別の保存抗原決定基と免疫反応する。第２図のグラフＡ
およびＢの試験により知見されるように、ＭＢ４７およ
びＭＢ２４パラト一プ分子はともにアポＢ−１００に結
合し、それぞれ他の免疫反応を実質的に阻害しないよう
に結合する。ヤング（Ｙｏｕｎｇ）ほか、（１９８６）
、クリニカル・ケミストリー（ｃＩｉｎ、　Ｃｈｅｗ、
）　、３２１８：１４８４〜１４９０に指摘されたよう
に、ＭＢ４７はアポＢ−１００とのみ反応し、ＭＢ２４
はアポＢ−１００並びにアポＢ−４８とまた後記のよう
にアポＢ−２６、アポＢ−１００のフラグメント、と交
差反応する。 第２の対のハイブリドーマは研究室呼称Ｈ９１Ｈ４，２
Ｈ８およびＨＩＱ３Ｄ８．ＩＤ１１をもち、それぞれＡ
ｌ−１０およびＡｌ−１１と称されるパラトープ分子を
分泌する。これらのパラトープ分子Ａｌ−１０およびＡ
ｌ−１１はそれぞれＡ−１上の保存抗原決定基と免疫反
応し、また固相ＥＬＩＳＡにおいて約９０％以上の”’
Ｉ−ＨＤＬ粒子と免疫反応する。第３図のグラフＡおよ
びＢの試験から知見されるように、両パラトープ分子Ａ
ｌ−１０およびＡｌ−１１はアポＡ−１およびＨＤＬと
結合するが、しかし相互の結合を実質的に妨害しない。 前記４ハイブリドーマはそれぞれアメリカン・タイプ・
カルチャー・コレクション〔＾ｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅ
　Ｃｕ１ｔｕｒｅ　Ｃｏ１１ｅｃｔｉｏｎ　（ＡＴＣＣ
）、　Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ。 ＭＯ）に特許手続上の微生物の寄託の国際的承認に関す
るブタペスト条約に従って寄託された。 ＶＢ２Ａ６．１Ｇ４　　　　　Ｍ２４　　　　　　ＨＢ
８７４２　　３／６／８５ＨＬ１３０Ｃ２，３Ｃ５ＭＢ
４７　　　　　ＨＢＢ７４６　　３／６／８５１１９１
１１４．２１１８　　　　　＾１−１０　　　　　ＨＢ
９２００　　９／１６／８６Ｈ１０３ＤＢ、ＩＤ１１　
　　　Ａｔ−１１１１８９２０１９／１６／８６上記寄
託は、寄託の持続期間が寄託の日から３０年または寄託
に対する最新の請求後５年あるいはこの出願から生ずる
米国特許の主張期間のいずれか長い期間であるブタペス
ト条約の要件に従って行なわれた。ハイブリドーマは寄
託当局において生存していなくなれば再寄託され、この
出願の特許が発行されるとＡＴＣＣにより公衆に利用可
能になされる。 先にカーティス（ｃｕｒｔｉｓｓ）ほか、（１９８２）
、ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（
Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　Ｃｈｅａｐ、）、２５７：１５２１
３〜１５２２１はハイブリドーマＨＢ８７４２により生
成されたＭＢ２４と称されるものを含めて１１のアポＢ
特異性バラトープ分子の生成および確認を報告した。ハ
イブリドーマＨＢ　８７４２はヒトＶＬＤＬで免疫処置
したマウスの牌細胞と骨髄腫細胞との融合により得られ
た。 ＭＢ２４はＶＬＤＬおよびＬＤＬ中に存在する変性アポ
Ｂ−１００並びにＬＤＬの変性アポリポタンパク質Ｂ−
２６およびその論文中の未確認高分子ＩＬＤＬタンパク
質と免疫反応することが示された。より最近の研究はそ
れがアポＢ−４８を結合することを示した。ＭＢ２４は
ツアオ（Ｔｓａｏ）ほか、（１９８２）、ジャーナル・
オブ・バイオロジカル・ケミストリー（Ｊ、　Ｂｉｏｌ
、　Ｃｈｅｍ、）、’２５７　二１５２２２〜１５２２
Ｂ中に液相ＲＩＡで存在した自然ＬＤＬ抗原１００％と
免疫反応することが示された。 ＨＢ　８７４２の腹腔内成長から生成したＭＢ２４含有
腹水のＩｇＧ画分は等電点電気泳動（ＩＥＦ）により確
認した。カーテイス（ｃｕｒｔｉｓｓ）ほか、（１９８
２）、ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリ
ー（Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　Ｃｈｅｗ、）、２５７：１５２
１３〜１５２２１に記載されたように、融合はＩ　ｇ　
Ｇ　＋　ｋ免疫グロブリン（骨髄腫タンパク質）を分泌
するＰ３Ｘ６３Ａｇ８骨ｆＪｉ　ＩＩ細胞を用いて行な
った。従って、ＩＥＦでＨＢ８７４２腹水はＰ３Ｘ６３
Ａｇ８骨髄腫１ｇＧ、に抗体およびバラトープ分子ＭＢ
２４に加えて無秩序混合型および軽鎖含有免疫グロブリ
ン分子を表わす多重タンパク質バンドの特有のバンドを
示した。 ハイブリドーマＨＢ８７４６はＭＢ４７パラトーブ分子
を生成し、ＬＤＬで免疫処置したマウスの牌細胞とＰ３
Ｘ６３Ａｇ８．６５３．１骨髄腫細胞との融合により形
成された。その単クローン性抗体およびハイブリドーマ
はヤング（Ｙｏｕｎｇ）ほか、（１９８６）、アルテリ
オスクレロシス（八ｒ　ｔｅｒ　１ｏｓｃ　１ｅｒｏｓ
　ｉｓ）、６！１７８〜１８Ｂにより報告された。ハイ
ブリドーマの調製に使用されたその種の親骨髄腫細胞系
は骨髄腫タンパク質を分泌しない。ＨＢ８７４６腹水の
ＩＥＦはＭＢ４７のＩ　ｇＧ　２　ａ　ｍｗｉおよびカ
ッパ軽鎖を表わすタンパク質バンドの特有パターンを示
す。 従って、上記ハイブリドーマはそれらが分泌するバラト
ープ分子のＩＥＦパターンにより部分的に確認すること
ができる。ハイブリドーマＨＢ８７４２が１つ以上の型
のバラトープ分子を生成するけれども、本発明に有用な
パラトープ分子はアポＢ−１００上のエピトープ（抗原
決定基）と免疫反応するそれらの個々の能力により容易
に容に確認し、分離することができる。 ＭＢ２４およびＭＢ４７の抗原特異性は種々の検定でキ
ロミクロン、ＶＬＤＬ、ＬＤＬおよびＨＤＬから得られ
たアポタンパク質と免疫反応するそれら個々の能力を検
定することにより試験した。得られたデータはＭＢ４７
およびＭＢ２４がＬＤＬ、ＶＬＤＬおよびＩＤＬから得
られたアポＢ−１００と免疫反応するが、ＶＬＤＬまた
はキロミクロンからのアポＢ−４８と免疫反応せず、ま
たＨＤＬと免疫反応しないことを示した。ＭＢ４７およ
びＭＢ２４のＦａｂのフラグメントもまた固相ＲＩＡに
おいてＬＤＬに結合する。 先の研究はアポＢ−１００中の抗原不均質性を示した。 すなわち、若干のアポＢ−１００エピトープはすべての
ＬＤＬにより発現されるわけではない。従って、液相Ｒ
ＩＡにおける過剰の一定単クローン性抗体との混合物は
すべての放射性標識ＬＤＬ　（”’Ｉ−ＬＤＬ）粒子の
免疫結合を生ずるわけではない。 ＭＢ４７分子により認識されたエピトープすべてのＬＤ
Ｌにより均一に発現されたかどうかを測定するために、
液相ＲＩＡにおける”５Ｉ−ＬＤＬに免疫結合するＭＢ
４７の能力を調べた。１０名の正常被験者のプールした
血柴およびｌ正常被験者から分離したＬＤＬを後記のよ
うに放射性標識し、生物学的に活性なＭ８４７分子と混
合して免疫反応混合物を形成した。混合物を生物学的検
定条件下に、ＭＢ４７分子が各試料中のアポＢ−１００
に免疫的に結合し、免疫反応生成物（免疫反応物）を形
成するのに十分な予定時間保持した。 過剰のＭＢ４７バラトープ分子により結合された最大量
の”Ｊ−ＬＤＬを全受容体分子のＩｇＳＯＲＢ　［ジ・
エンザイム社（Ｔｈｅ　Ｅｎｚｙｍｅ　Ｃｏ、。 Ｂｏｓｔｏｎ、　ＭＡ）製］により沈殿させ、沈殿中の
”’　Ｉ　−Ｌ　Ｄ　Ｌ関連カウントをガンマカウンタ
ー中で定量することにより検定した。トリクロロ酢酸（
ＴＣＡ）　によＪｌ：殿ＬＪ、：”’Ｉ　−ＬＤＬノ百
分率として示して第１図に示した結果は実質的にスヘて
の”Ｉ−ＬＤＬが抗体により結合されたことを示し、Ｍ
Ｂ４７により認識され、結合したエピトープがすべての
ＬＤＬ粒により発現されることを示す。 本発明の検定法に対し、第１および第２単クローン性パ
ラトープ分子はアポＢ−１００′分子の異なるエピトー
プに結合しなければならず、それらのエピトープは１バ
ラト一プ分子の結合が他のパラトープ分子の一結合を立
体的に阻害しないように十分離れていなければならない
。従って、固相付着試薬アポＢ−１００対する相互の結
合を競合的に阻害するＭＢ４７およびＭＢ２４の能力を
試験した。 第２図に示したその研究の結果は７０倍過剰の非標識Ｍ
Ｂ２４がペルオキシダーゼ標識ＭＢ４７の試薬アポＢ−
１００に対する結合を有意に阻害しなかったことを示す
、同様に、７０倍過剰の非標！ｋＭＢ４７がペルオキシ
ダーゼ標１１１ＭＢ２４の試薬アポＢ−１００に対する
結合を有意に阻害しなかった。従って、ＭＢ２４とＭＢ
４７はアポＢ−１００上の異なるエピトープに結合し、
それらのエピトープが十分に離れ、ＭＢ２４およびＭＢ
４７が無傷抗体として単個アポＢ−１００分子に対する
相互の結合を阻害しない。 単クローン性パラトープ分子Ａｌ−１０およびＡｌ−１
１を生成するハイブリドーマはマウス牌細胞とマウス骨
髄腫系Ｐ３ｘ６３Ａｇ８．６５３の細胞との２つの別の
融合から調製された。ヒトＨＤＬを免疫原として用いた
。Ａｌ−１０分子はＩｇＧ２ａクラスのものであり、Ａ
ｌ−１１分子はＩｇＧ１クラスのものである。 第３図の試験から知見できるように、Ａｌ−１０および
Ａｌ−１１がともにアポＡ−１と反応する。第３図のデ
ータはさらに、Ａｌ−１０またはＡｌ−１１のアポＡ−
ＩまたはＨＤＬとの免疫反応がその抗原との他の免疫反
応を妨害しないことを示す。 ＋２％１−ＨＤＬおよび”！−７ボＡ−１を用いいる結
合研究はカーティス（ｃｕｒｔｉｓｓ）ほか、（１９８
５）、ジャーナル・オプ・バイオロジカル・ケミストリ
ー（Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　Ｃｈｅｗ、）、２６０：２９８
２〜２９９３に一般的に記載されたようにＲＩＡ法を用
いて行なった。これらの研究の結果は表１に、全トリク
ロロ酢酸（Ｔ　ＣＡ）沈降性放射能の百分率として示さ
れる。 表　　　１ ＡＩ−１０： 上澄み　　　　　　２９．２　　　　　９０．３腹水　
　　９２．６− ＦＰＬ　　腹水　　　　　　　　　８６．０　　　　　
　　　　７０．２ＡＩ−１１： 上澄み　　　　　　８Ｂ、６　　　　　４２．０腹水　
　１００．０　　４９．０ −〃匹腹水−二−９３，０６０，４ １、液相パラトープ分子はハイブリドーマ細胞培養上澄
み（上澄み）、マウス腹水（腹水）、および高速タンパ
ク質液体クロマトグラフ精製腹水（ＦＰＬＣ腹水）から
用いた。 ２、ＴＣＡ沈降性放射能の百分率。 表１のデータは用いた液相検定における放射性標識ＨＤ
　Ｌに対する全Ａｌ−１０およびＡｌ−１１の比較的高
い結合を示す。それらのデータはまたアポＡ−１自体の
相対的不安定性および生ずるそれに対する低い結合を反
映する。アポリポタンパク［Ａ−１のその相対的な不安
定性は、さらに後記するようにアポＡ−１検定における
第２標準としてのＨＤＬの使用を必要とした。上記デー
タはまたＨＤＬ粒子に対するよりもアポＡ−［に対する
比較的低いＡｌ−１１の結合を示す。しかしアポＡ−Ｉ
に対してＥＬ　Ｉ　ＳＡ法を用いて得られたデータと他
の一層困難な方法により得られたデータとを比較すると
ＥＬ　Ｉ　ＳＡ法が検定した試料中に存在する実質的に
すべてのアポリポタンパク質Ａ−１（ＨＤＬ）を定量的
に検出することを示す。 Ｃ０異常脂質代謝標識 先に記載したように、若干の研究が比較的低濃度のＨＤ
Ｌを有する高濃度のＣＤＬとＣＡＤを生ずる異常脂質代
謝従ってＣＡＤの高いおそれとの間の相関を示した。異
常脂質代謝はまた臨床的にＣＡＤを有すると診断された
ヒトにおける疾患原因の追跡に重要である。しかし、そ
れらの研究は正常であるヒトと異常脂質代謝を示すヒト
との間の標識およびそれを明らかに分割する線を提出し
なかった。 従って例えばコツケ（Ｋｏ　ｔ　ｔｋｅ）ほか、（１９
８６）メイコ・クリニック・プロシーディンゲス（１’
ｌａｙ。 Ｃ１１ｎ、　Ｐｒｏｃ、）、６１：３１３〜３２０はア
ポリポタンパク質Ａ−ＩＳＡ−ｎおよびＢＳＨＤＬコレ
ステロール、トリグリセリド並びに年令を男性における
変数として測定し、それらの６変数すべての使用が、無
症候対照からＣＡＤ患者を正確に区別するために必要で
あることを認めた。それらの研究者はアポリポタンパク
質の測定に放射免疫検定を用いた。 多クローン性抗体、１６時間の抗体−試料保持時間、お
よびアンマスキング界面活性剤処理がコツケ（ＫＯｔｔ
ｋｅ）ほかによるアポＡ−１値のＲＩＡ測定に利用され
たことが報告された。単クローン性抗体がアポＢのＲＩ
Ａ測定に用いられたことが報告された。コツケ（Ｋｏｔ
ｔｋｅ）ほかは正常およびＣＡＤ患者に対する平均血清
アポＡ−Ｉ値が１標準偏差内で重ならなかったことを報
告した。それらの２群間の平均血清アポＢ値に対する彼
らの値は１標準偏差内で重なった。それらの研究者はア
ポＢおよびアポＡ−Ｉに対する値の比を報告しなかった
。 さらにベンツエン（Ｂｅｎｔｚｅｎ）ほか、（１９８２
）、クリニカル・ケミストリー（ｃＩｉｎ、　ＣｈｅＩ
ｌｌ、）、２８：１９５１〜１９５６はβ−リポタンパ
ク質コレステロール（ＬＤＬコレステロール）とα−リ
ポタンパク質コレステロール（ＨＤＬコレステロール）
との比を患者の発作または冠心臓疾患のおそれを示す標
識として用い、ＨＤＬコレステロール単独の値の使用と
比較して報告した。もちろん、リポタンパク質コレステ
ロール値はＬＤＬおよびアポＢ−１００またはＨＤＬお
よびアポＡ−１と異なり、またそれらの研究者により用
いられた方法はヘパリン−アガロース上のアフィニティ
ークロマトグラフィーに基き、ここに用いる方法とは非
常に異なる。 ■改良法 本発明によれば、液体血液試料中のアポリポタンパク質
Ｂ−１００とアポリポタンパク質Ａ−１との比を、疾患
を有すると確認されなかったヒト並びに診断されたＣＡ
Ｄ患者における異常脂質代謝に対する標識として用いる
。ＣＡＤまたは異常脂質代謝が検定法により確認されれ
ば、そのヒトは典型的には普通の療法、例えば運動、食
事または特定薬物により、よく知られているように治療
される。 液体血液試料がこの方法に使用される。試料は血清また
は血漿を用いて得た結果を統計的に区別できないことが
認められたので、そのいずれであることもできる。実際
に、この方法を用いて後に報告する若干の結果は血清お
よび血漿の両方の検定から得た平均値を用いて得られた
。血清または血漿を用いるかに関係なく、液体血液試料
は、好ましくは技術的に知られるように少くとも約１２
時間絶食したヒトから得る。そのような血液試料は「空
腹時」試料として示される。 正確かつ精密な結果を、このＥＬ　Ｉ　ＳＡ法を用いて
液体血液試料例えば血、漿または血清から得ることがで
きたことは、これらの試料が検定を妨害すると予想でき
たタンパク質、脂質および他の化合物を含むので意外で
あった。例えばマギオ（Ｍｇｇｉｏ）、「酵素−免疫検
定（Ｅｎｚｙｎ＋ｅ−１ｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）　Ｊ、
ＣＲＣプレス社（ｃＲＣＰｒｅｓｓ　Ｉｎｃ、＋Ｂｏｃ
ａ　Ｒａｔｏｎ、ＰＬ）、１９８０．６５頁参照。 本発明の改良法において、血液試料を少くとも２つのア
リコートに分ける。ｌ試料アリコートはアポＢ−１００
の測定に、他はアポＡ−１の測定に使用される。 アポリポタンパク質Ｂ−１００に対する分析から説明す
ると、予定量の第１液体血液試料アリコートを、アポＢ
−１００と免疫反応する固相結合第１単クローン性バラ
トープ分子を有する固体マトリックスから実質的になる
固体支持体と混合することにより第１固−液相混合物を
形成する。それらの固相結合第１単クローン性パラトニ
プ分子は試料中に予想されるアポＢ−１００の量より過
剰に存在し、ＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７４２またはＨＢ
８７４６を有するハイブリドーマの１つにより分泌され
る。固体支持体の表面上の非特異的タンパク質結合部位
は混合の前にブロックされる。 その第１固−液相混合物を生物学的検定条件下に、第１
パラトープ分子が試料アリコート中に存在するアポリポ
タンパク質Ｂ−１００と免疫反応し、試料アリコート中
に存在する実質的にすべてのアポリポタンパク質Ｂ−１
００を含む固相結合免疫反応物を形成するのに十分な予
定時間保持する。 第１試料アリコートのアポＢ−１００はまたアポリポタ
ンパク質Ｂ−１００と免疫反応する液相第２単クローン
性パラトープ分子と混合して第２混合物を形成する。そ
れらの第２単クローン性パラトープ分子はＡＴＣＣ受託
番号ＨＢ８７４２またはＨＢ８７４６を有するハイブリ
ドーマの１つにより分泌されるが、しかし初めに挙げた
混合物に使用されないものである。その第２パラトープ
分子はまた酵素指示手段に使用可能に連結される。 第２混合物は生物学的検定条件下に、第２の酵素結合パ
ラトープ分子が試料アリコート中の実質的にすべてのア
ポリポタンパク質Ｂ−１００を含む免疫反応物を形成す
るのに十分な予定時間保持する。 両パラトープ分子の混合、および両パラトープ分子とア
ポＢ−１００との間の免疫反応物の形成すら生ずる固相
および液相は例えば洗浄により分離し、分離した面相中
に存在する指示手段結合アポリポタンパク質Ｂ−１００
含有免疫反応物の蛍を測定する。２つの単クローン性パ
ラトープ分子が試料アリコート中に存在する実質上すべ
てのアポＢ−ＩＱＱと免疫反応するので、またパラトー
プ分子の少くとも１つがアポＢ−１００上の非交差反応
性の保存エピトープと免疫反応するので、免疫反応物中
の酵素結合アポＢ−１００の量の測定は試料アリコート
中に存在するアポＢ−１００の測定を与える。試料単位
容積当りのアポリポタンパク質Ｂ−１００の量は初めに
用いた予定量の液体血液試料アリコートの容積の知識に
より容易に計算することができる。 アポリポタンパク質Ａ−１の量は第２の予定量の液体血
液試料アリコートを用いて測定される。 他の人により用いられた操作とは対照的に、第２液体血
液試料アリコートはアポＡ−Ｉの測定に普通であるよう
なアンマスキング処理を含まない。 アポリポタンパク質Ｂ−１００について前に記載したと
類似の段階に従うが、しかしＡＴＣＣ受託番号ＨＢ　９
２００またはＨＢ９２０１を有するハイブリドーマの１
つにより分泌された第３および第４の単クローン性パラ
トープ分子が第２血液試料アリコートに対して使用され
る。前記段階に類似して、固相結合第３単クローン性パ
ラトープ分子を第２血液試料と混合して第３固−液相混
合物を形成し、その第３固−液相混合物を前記のように
保持して試料アリコート中に存在する実質的にすべての
アポリポタンパク質Ａ−１を含む固相結合免疫反応物を
形成させる。 第２試料アリコート中のアポリポタンパク１（Ａ−■は
また、固体マトリックスに結合したものでなくて酵素指
示手段に作用可能に結合した前記液相第４ｊｔｌクロー
ン性パラトープ分子と混合して第４混合物を形成する。 その第４混合物は前記のように第４酵素結合単クローン
性パラトープ分子が試料アリコート中に存在する実質的
にすべてのアポリポタンパク質Ａ−Ｉと免疫反応物を形
成するのに十分な時間保持する。 混合および保持段階から生ずる固相および液相を分離し
、分離した固相中に存在する酵素指示手段結合アポリポ
タンパク質Ａ−１含有免疫反応物の量を測定し、それに
より前記のように試料アリコート中および単位容積当り
のアポリポタンパク質Ａ−１の量を決定する。 前記アポＢ−１００およびアポＡ−１に対する検定はそ
れぞれ、連続的に行なわれる各検定における混合および
保持段階のそれぞれで行なうことができ、または各検定
における２つの混合段階を実質的に同時に行なって各検
定における２つの保持段階を一緒に行なうことができる
。 段階を連続的に行なうときに酵素指示手段結合パラトー
プ分子の混合および生ずる混合物の保持の前に固相結合
単クローン性パラトープ分子を混合し、形成された混合
物を保持することが好ましい。好ましい連続段階に従う
とき、さらに形成された固相と液相を分離し、固相を洗
浄して分離を保証に役立たせた後液体酵素指示手段結合
パラトープ分子を分離した固相に混合し、その混合物を
保持することが好ましい。 酵素指示手段結合パラトープ分子を初めに適当な試料ア
リコートと混合できることもまた認められる。方法を実
施するこの方式を用いるときには固相結合重クローン性
パラトープ分子の混合前の相の分離は存在しない。 アポリポタンパク質Ｂ−１００およびアポリポタンパク
質Ａ−１の両方の検定に対して最も好ましくは、固相結
合重クローン性バラトープ分子、血液試料アリコートお
よび酵素指示手段結合パラトープ分子を別個に実質的に
同時に混合し、生ずる固−液相混合物をそれぞれ一緒に
保持する。従って、各混合物は２つの別の固相結合重ク
ローン性バラトープ分子がそれぞれ実質的にすべてのア
ポＢ−１００およびアポＡ−１と固相結合免疫反応物を
形成し、また２相の液体酵素指示手段結合パラトープ分
子もまたそれぞれの試料アリコート中の実質上すべての
アポＢ−１００およびアポＡ−■とそれぞれ免疫反応す
るのに十分な時間保持される。形成された免疫反応物は
固相結合サンドイッチ免疫反応物として示される。液相
もまた存在する。 同様の結果が２組のパラトープ分子の単クローン性パラ
トープ分子のいずれかをそれぞれの検定における固相結
合パラトープ分子として用いて得られる。しかし、ここ
に論議した研究の大部分は、アポリポタンパク質Ｂ−１
００を検定したときに固体マトリックスに結合したＡＴ
ＣＣ受託番号ＨＢ８７４６を有するハイブリドーマによ
り分泌された分子（ＭＢ４７）を、およびアポリポタン
パク質Ａ−１を検定したときに固相マトリックスに結合
したＡＴＣＣ受託番号ＨＢ９２００を有するハイブリド
ーマにより分泌された分子（Ａ　Ｉ　−１０）を用いて
行なった。さらに、ＭＢ４７の分子が、非空腹時血液試
料のキロミクロン中または異常に高いキロミクロン濃度
を有するヒト中に存在することができるアポＢ−４８と
免疫反応しないのでＭＢ４４を固相結合パラトープ分子
として用いることが殊に好ましい。従って、固体支持体
に対するキロミクロンの結合は、それらの大きな大きさ
のために固相結合パラトープ分子の量が検定試料中のア
ポＢ−１００より過剰である場合でも、実質的にすべて
のアポＢ−１００（ＬＤＬ）の追加結合を妨害すること
ができる。 上記方法に有用な典型的な固体マトリックスはよく知ら
れ、固体マトリックス例えば呼称ファルコン（Ｆａｌｃ
ｏｎ）　　ミクロテスト■フレキシブル・アッセイ・プ
レートのもとで販売される９６ウエルミクロタイタープ
レート〔ファルコン・プラスチックス（Ｆａｌｃｏｎ　
Ｐｌａｓｔｉｃｓ　０ｘｎａｒｄ、　Ｃ＾）製〕、また
は−列に１２ウエルを含むミクロタイターストリップ例
えば呼称イムロン（Ｉａｍｕｌｏｎ）　Ｉおよび■のも
とで販売されるストリップ〔ダイナチク（Ｄｙｎａｔｅ
ｃｈ、＾Ｉｅｘａｎｄｒｉａ、　ＶＡ））が含まれる。 ミクロタイターストリップまたはプレートは透明プラス
チック材料、好ましくはポリ塩化ビニルまたはポリスチ
レンで作られる。本発明の前記方法に用いる他の固体マ
トリックスはアボット・ラボラトリーズ（Ａｂｂｏｔｔ
　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、　Ｎｏｒｔｈ　Ｃｈｉｃ
ａｇｏ。 ＩＬ）から入手できる直径約１ミクロン〜約５ミリメー
トルのポリスチレンビーズ；任意の普通の大きさのポリ
スチレン管、棒またはパドル；およびポリスチレン粒子
が約１ミクロンの大きさであり、ラテックスの残余から
遠心分離的に分離できるポリスチレンラテックスが含ま
れる。 固体マトリックスはまた種々の材料例えば交差結合デキ
ストラン例えばファルマシア・ファイン・ケミカルズ（
Ｐｈａｒｍａｃｉａ　Ｆｉｎｅ　Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ、
　Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ。 ＮＪ）から入手できるセファデックス（Ｓｅｐｈａｄｅ
ｘ）Ｇ−２５、−５０，−１００、−２００など、アガ
ロースおよび交差結合アガロース例えば、またファルマ
シア・ファイン・ケミカルズ（ＰｈａｒｍａｃｉａＦｉ
ｎｅ　Ｃｈｅ＋ｗｉｃａｌｓ）から入手できるセファロ
ース（Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ）６Ｂ、　ＣＬ６Ｂ、　４Ｂ
、　Ｃｕ２６などで作ることができる。 酵素指示手段は本発明に有用なパラトープ分子に直接結
合させて結合体を形成させる。パラ）−プ分子に結合し
た有用な酵素分子が作用可能に結合することを理解すべ
きである。従って、酵素の機能は結合またはパラトープ
分子により実質的に損なわれずまた酵素が結合する単ク
ローン性パラトープ分子の機能が結合または酵素の存在
により実質的に損なわれない。 酵素指示手段は生物学的に活性な酵素例えば西洋ワサビ
ペルオキシダーゼ（ＨＲＰ　Ｏ）またはグルコースオキ
シダーゼなどである。よく知られているように、指示手
段がＨＲＰＯまたはグルコースオキシダーゼのような酵
素である場合に、抗体−抗原複合体が形成された事実を
可視化するために他の試薬が必要である。ＨＲＰＯに対
するそのような追加の試薬には過酸化水素および酸化染
料前駆物質例えばジアミノベンジジンが含まれる。 グルコースオキシダーゼで有用な追加の試薬にはグルコ
ースおよび２，２′−アジノージ（３−エチルベンゾチ
アゾリジン−６−スルホン酸）（Ａ　Ｂ　Ｔ　Ｓ）が含
まれる。 酵素をパラトープ分子に作用可能に結合して結合体を形
成する方法はよく知られている。典型的な方法はマギオ
（Ｍａｇｇｉｏ）　、［酵素−免疫検定（Ｅｎｚｙｍｓ
−１ｍ＊ｕｎｏａｓｓａｙ）Ｊ　、カバコツ（Ｋａｂａ
ｋｏｆｆ）による第４章、ＣＲＣプレス（ｃＲＣＰｒｅ
ｓｓ、ＢｏｃａＲａｔｏｎ、ＰＬ）　　（１９８０）　
、７１〜１０４頁に論じられている。 単クローン性バラトープ分子はハイブリドーマ上澄みま
たは腹水から得られたまま用いることができる。しかし
、精製パラトープ分子を用いることが好ましい。 パラトープ分子を精製する若干の方法がよく知られ、典
型的にはクロマトグラフィー技術を用いる。高速タンパ
ク質液体クロマトグラフィー（ＦＰＬＣ）はここに選ば
れた精製法である。 酵素結合パラトープ分子結合体は液相で混合物に与えら
れる。それらの分子は、典型的には水性！ｌＪＩ晟物に
溶解される。典型的な組成物には、リン酸塩緩衝食塩水
（ＰＢＳ）を希釈剤として含むここに用いた典型的な精
製単クローン性抗体含有組成物の場合のように緩衝塩が
含まれる。希釈腹水もまた有用である。 前に記載したように、固相支持体の表面上の非特異的タ
ンパク質結合部位はブロックされる。従って固相結合パ
ラトープ分子は例えば吸着または固体マトリックスに付
着させる他のよく知られた手段により結合される。その
後検定を妨害しないタンパク質例えばヒトアポＢ−１０
０またアポＡ−１による汚染のないウシ、ウマまたは他
の血清アルブミンの水溶液を固相と混合して混合したタ
ンパク質をパラトープ分子含有固体支持体の表面上、単
クローン性バラトープ分子により占有されない表面上の
タンパク質結合部位に吸着させる。 典型的なタンパク質水溶液は７．１〜７．５のｐＨ値で
ＰＢＳ中に約３〜約１０重量％のウシ血清アルブミンを
含む。タンパク質水溶液−固体支持体混合物は典型的に
は３７℃で少くとも１時間保持し、その後生じた固相を
洗浄して非結合タンパク質を含まなくする。 液体血液試料は既に記載したように血漿または血清であ
ることができる。アポＡ−Ｉのための試料は特定的に後
記する検定で線状結果を得るために使用の前に、好まし
くは約１：２．５００〜約１：２０，０００、より好ま
しくは約１：５．ＯＯＯに希釈する。アポＢ−１００の
ための試料は好ましくは約１７５００〜約１：５．０Ｏ
Ｏ１より好ましくは約１、：ｌ、０００に希釈する。低
い希釈度の使用は混合物に多量のアポリポタンパク質抗
原を与えて検定結果の直線性を損ない、また混合した抗
原を越える固相結合パラトープ分子の過剰を低下または
破壊することができる。約１：２０，０００以上の希釈
の使用は精度を低下する傾向がある。 用いる保持時間は広範に変えることがき、周囲室温（約
２０〜２５℃）で約３０分の最小時間を使用すれば変動
が小さい。最小３０分の保持時間を用いることを望む場
合に保持混合物をその時間中かくはんし、アポリポタン
パク質抗原と単クローン性パラトープ分子との間の実質
的に完全な免疫反応を保証することが好ましい。より長
い保持時間例えば室温で１時間以上を用いる場合にはか
くはんは必要でない、所望のかくはんは約１０゜ｒｐｍ
で操作するジャイロシェーカーにより容易に供給できる
。この方法に用いるそれぞれの検定は周囲室温で約３０
〜約６０分のパラトープ分子−試料混合物保持時間を用
いて行なうことができる。 検定した免疫反応物中に存在するアポリポタンパク質抗
原の量は分離した酵素結合アポリポタンパク質含有固相
と予定量の可視化試薬または試薬類との混合により測定
する。ＨＲＰＯを酵素指示手段として用いる場合には水
性媒質中に存在する可視化試薬例えば過酸化水素および
酸化性染料前駆物質例えばＯ−フェニレンジアミン（Ｏ
Ｐ　Ｄ）を、分離した固相結合免疫反応物と混合する。 そのように形成された混合物を生物学的検定条件下に予
定時間例えば室温で少くとも約３０分間発色のために保
持する。その後停止剤例えば硫酸の混合により発色を停
止させる。その後組成物の光学濃度を読み、標準曲線値
と比較し、よく知られるようにアポリポタンパク質の量
を決定する。 従って、固体支持体および液体血液試料が調製されれば
各検定は周囲室温で約１時間の時間、すなわち両パラト
ープ分子および試料アリコートから形成した混合物に対
する３０分のかくはん保持時間および発色に対するさら
に３０分の保持時間、で行なうことができる。実際に固
体支持体を各使用の直前に調製する必要がなく、むしろ
ここに記載したような支持体を調製し、湿潤かつふたを
して通常の冷凍条件下に使用の前身くとも１ケ月間貯蔵
することができる。 アポＢ−１００およびアポＡ−１検定はそれぞれＥＬ　
Ｉ　ＳＡで得られた光学濃度値を比較してそれらの２つ
のアポタンパク質の濃度を計算する標準を用いる。再検
定は二次基準を用いる。すなわち検定はアポＢ−１００
およびアポＡ−１を標準として用いるよりはむしろそれ
ぞれヒトＬＤＬおよびＨＤＬを標準として使用する。−
次アポリボタンパク質が貯蔵において比較的不安定なた
めに二次標準が使用される。コツケ（Ｋｏｔｔｋｅ）お
よび共同研究者もまた一次標準として用いた精製アポＡ
−１の劣化を記載し、アポＡ−１に対する多クローン性
血清による彼らのＲＩＡに二次標準を用いた。オウ（Ａ
ｕＨｆｆｉか、（１９８６）、クリニカル・ケミストリ
ー（ｃＩｉｎ、　Ｃｈｅｗ、）、３２：１３９４〜１３
９７゜ 二次標準は、典型的にはプールしたヒト空腹時血漿の凍
結乾燥したＬＤＬおよびＨＤＬとして提供され、使用前
に液状に戻される。それぞれの標準はそれ自体ＬＤＬと
してアポＢ−１００およびＨＤ　ＬとしてアポＡ−１の
一次標準に対して標定される。典型的な操作は物質およ
び方法のセクション中にアポリポタンパク質Ｂ−１００
（ＬＤＬ）およびアポリポタンパク￥１Ａ−１（ＨＤＬ
）に対して例示される。 ■６診断系 本発明はまた前記方法の実施に使用できる診断系を、典
型的にはキット形態で意図する。系には個々の容器中に
少くとも前記単クローン性パラトープ分子、アポＢ−１
００と免疫反応するＭＢ４７およびＭＢ２４、並びにア
ポＡ−１と免疫反応するＡｌ−１０およびＡｌ−１１が
含まれる。各対のパラトープ分子の１つ；すなわちＭＢ
４７およびＭＢ２４の１つ、並びにＡｌ−１０およびＡ
ｌ−１１の１つ、は結合体として酵素指示手段に結合さ
れる。パンケージは異常脂質代謝の標識として少くとも
１検定を行なうのに十分なそれぞれの量のそれらのパラ
トープ分子を含む。 より好ましくは、それぞれがそれぞれアポＢ−１００ま
たはアポＡ−１と免疫反応する単クローン性パラトープ
分子を結合した固体マトリックスから実質的になり、表
面非特異的タンパク質結合部位をブロックされる２つの
固体支持体、並びにそれぞれアポＢ−１００およびアポ
Ａ−１と免疫反応する２つの個々に包装された酵素結合
重クローン性パラトープ分子結合体を含む。その４つの
パラトープ分子は前記のように使用される。 上記診断系の固相マトリックスは前記固相マトリックス
のいずれかであることができるけれども、両マトリック
スは好ましくは同型のものである。 ミクロタイターウェル例えば前記１２ウエルストリツプ
および９６ウエルプレートが殊に好ましい。 固体支持体上の非特異的結合部位は前記のようにブロッ
クされる。 固体マトリックスはこの態様の結合した単クローン性パ
ラトープ分子のための容器を構成する。 酵素結合重クローン性パラトープ分子に対する典型的な
容器はガラスまたはプラスチック例えばポリエチレンま
たはポリプロピレンで作ったバイアルまたはびんである
。 ミクロタイタープレートを典型的な固体マトリックスと
して、また全車クローン性抗体ＭＢ４７およびＡｌ−１
０を固相結合重クローン性パラトープ分子として、血清
を液体血液試料として、並びにＨＲＰＯに結合した単ク
ローン性抗体ＭＢ２４およびＡｌ−１１を用いるとき、
キット形態の典型的な一層好ましい診断系は次の： ａ）　血清試料アリコートの検定をその中に存在するア
ポリボクンバク質Ｂ−１００の量について行なうのに十
分な量結合した単クローン性抗体ＭＢ４７を有するミク
ロタイタープレートから実質的になり、表面非特異的タ
ンパク質結合部位をブロックされた固体支持体、 ｂ）血清試料アリコートの検定をその中に存在するアポ
リポタンパク質Ａ−１の量について行なうのに十分な量
結合した単クローン性抗体Ａｌ−１０を有するミクロタ
イタープレートから実質的になり、表面非特異的結合タ
ンパク質結合部位をブロックされた固体支持体、 Ｃ）　血液試料アリコートの検定をその中に存在するア
ポＢ−１００の量について行なうのに十分な量存在する
ＨＲＰＯに結合した単クローン性抗体ＭＢ２４を含む水
溶液を入−れた別のパッケージ、 ｄ）　血液試料アリコートの検定をその中に存在するア
ポＡ−１の量について行なうのに十分な僅存在するＨＲ
ＰＯに結合した単クローン性抗体Ａｌ−１１を含む水溶
液を入れた別のパフケージ、 を含む。 最も好ましくは、診断系は上記４成分（ａ〜ｄ）および
次の＝（ｉ）既知濃度の過酸化水素の供給、（ｉｉ）可
視化酸化性染料前駆物質例えばＯＰＤ、（ｉｉｉ　）発
色反応をクエンチするための停止剤の溶液例えば４Ｎ硫
酸、（ｉｖ　）検定に用いる乾燥または液体形態の１種
またはそれ以上の緩衝剤、（ｖ）標準照合曲線調製用物
質（ｖｉ　）検定を行なうための使用説明書、の１つま
たはそれ以上を含む。 すぐ前に列挙した成分はそれぞれ少くとも１検定の実施
に十分を量で診断系中に存在し、それらの成分は適切で
あるように個々にパッケージされる。 ■、結果 前に記載され、後に物質および方法のセクション中に詳
細に記載される検定法を用いて得られた結果が次に論議
される。ポリエチレン９６ウエルミクロタイタープレー
トのウェルを固体マトリックスとして用いた。全車クロ
ーン性抗体ＭＢ４７およびＡｌ−１０をそれぞれアポリ
ポタンパク質Ｂ−１００およびＡ−１の検定における固
相結合第１および第３単クローン性パラトープ分子とし
て用いた。固体支持体表面上の非特異的タンパク　−質
結合部位はＢＳＡでブロックした。ＨＲＰＯ結合単結合
−クローン性抗体ＭＢ２４／１−１１をそれぞれアポリ
ポタンパクＩＢ−１００およびＡ−Ｉの検定における第
２および第４単クローン性パラトープ分子として、可視
化酸化性染料前駆物質としてのＯＰＤとともに用いた。 アポＢ−１００およびアポＡ−１に対する検定はＣＡＤ
の病歴のない３７人について行なった。 これらのヒトは「正常」として示される。 値は希釈した血漿および血清を液体血液試料として用い
て得た。それらの値は２試料源間に統計的に有意差を示
さないことが認められ、使用のために平均した。 「正常」についての結果は合せて表２に２３名の男性お
よび１４名の女性について別個に、および「総合」値と
して示される。 表　　　　２ ｎ＝２３　　ｎ−１４ｎ＝３７ 平均＝１４３　　　　平均＝１５２　　　　平均＝１４
７Ｓ、Ｄ、＝２６．５　Ｓ、Ｄ、＝１０．７　Ｓ、Ｄ、
＝２２．０ｎ＝２３　　ｎ＝１４　　゛ｎ＝３７ 平均＝７８．０　　　　平均＝７７．５　　　　平均＝
７７．８Ｓ、Ｄ、＝１７．６　　　　　３．Ｄ、＝２０
．６　　　　　　Ｓ、口、＝１８．８ｎ＝２３　　　　
　　　　ｎ＝１４　　　　　　　　ｎ＝３７平均＝０．
５６　　　　平均＝０．５１　　　　平均＝０．５４Ｓ
、Ｄ、＝０．１６　　　　　Ｓ、Ｄ、＝０．１４　　　
　　Ｓ、Ｄ、＝０．１５１、　　ｒｎＪは各試験におけ
るヒトの数である。 「平均」アポＡ−１およびアポＢ−１００に対してミリ
グラム毎デシリットルで、また比に対しては無単位パラ
メーターとして表わして得られた平均値である。ｒＳ、
Ｄ、Ｊは平均値からの１標準偏差の値である。ｒｓ、Ｄ
、範囲」は平均の各側上の１標準偏差の幅である。検定
は物質および方法のセクションに記載のように行なった
。 ＣＡＤを有すると臨床的に確認された４２名の男性の血
清および血漿を用いて同様に値を得た。 これらの値を合せて表３に示される。 表　　　３ ｎ；４２ 平均　　　　＝１１Ｏ ３，Ｄ、　＝２８．８ Ｓ、Ｄ、範囲＝８１．２〜１３９ アポリボ　ンパク　Ｂ−１００ 、ｎ　　　　　　＝４２ 平均　　　　＝１１２ Ｓ、Ｄ、　　　＝２７．８ Ｓ、’Ｄ、範囲＝８４．２〜１４０ ｎ　　　　　≠４２ 平均　　　　＝１．０８ Ｓ、Ｄ、　　　＝０．３８ １、表２脚註参照 上記データを考察し、それらのデータをコツケ（Ｋｏｔ
ｔｋｅ）ほか、（１９８６）、メイヨ・クリニック・プ
ロシーディングズ（Ｍａｙｏ　Ｃ１１ｎ、　Ｐｒｏｃ、
）、６土：３１３〜３２０に与えられたデータと比較す
ると若干の特徴が認められる。 １特徴は上記検定におけるアポＡ−１についての正常お
よびＣＡＤ患者に対する平均値がコツケ（Ｋｏ　ｔ　ｔ
ｋｅ）ほかにより報告されたものに類似することである
。再検定型に対してｉ（Ｉの標準偏差が得られた。 この結果の類似性は若干の理由のために意外であった。 第１にコツケ（ＫＯｔｔｋｅ）ほかの研究者は彼らの検
定に対し界面活性剤（ツイーン２０）アンマスキング処
理を用いたが、本血液試料はそのような処がなかった。 第２にコツケ（ＫＯｔｔｋｅ）ほかのグループは、一般
にここに用いたＥＬＳＩＡよりも正確かつ精密であると
考えられる放射免疫検定を用いた。フォラ−（ｖｏｌｌ
ｅｒ）ほか、（１９７６）、ビュレテイン・オブ・ザ・
ワールド・ヘルス・オルガニゼーション（Ｂｕｌｌ、　
Ｗｏｒｌ、ｄＨｅａｌｔｈ　Ｏｒｇａｎ、）、５１５５
〜６５参照。第３に通常比較的不均質なアポＡ−Ｉとの
改良された免疫反応が可能であると考えられる多クロー
ン性抗体がコツケ（Ｋｏｔｔｋｅ）ほかにより用いられ
たが、ここでは単クローン性抗体が使用された。第４に
コツケ（Ｋｏｔｔｋｅ）ほかのグループは彼らの多クロ
ーン性抗体とアポＡ−■との免疫反応に室温で１６時間
の保持時間を用いたが、ここでは室温で３０分の時間が
用いられた。 他の特徴は正常およびＣＡＤ患者に対するアポＢ−１０
０の平均値がコツケ（Ｋｏｔｔｋｅ）ほかのそれぞれの
平均値と比べてこの検定で多少低く、この検定で認めら
れた標準偏差がコツケ（Ｋｏｔｔｋｅ）ほかにより報告
された値よりかなり小さいことである。コツケ（にｏｔ
ｔｋｅ）ほかおよび本発明者はともにその検定に単クロ
ーン性抗体を用いたが、コツケ（Ｋｏｔｔｋｅ）ほかは
再びこのＥＬ　Ｉ　ＳＡとは対照的にＲＩＡを用いた。 アポＢ−１００とアポＢ−１との比を得るためにアポＢ
−１００に対する市販ＲＩＤ検定法並びにここに記載し
たアポＡ−Ｉ検定を用いて比較を行なった。正常および
ＣＡＤ患者における比に対するこれらの結果の要約が表
４に示される。２０名の正常および４０名のＣＡＤ患者
のそれぞれからの１血液のアリコートをこの研究に用い
て内部制御を与えた。 表　　　４ ｎ−２Ｏｎ＝２０　　ｎ＝２０ 平均＝０．５３　　　　平均＝０．７４　　　　平均＝
０．５８３、Ｄ、＝０．１２　　　　　５．Ｄ、＝０．
２３　　　　　３．Ｄ、＝０．１７Ｓ、Ｏ，範囲　　　
　Ｓ、Ｄ、範囲　　　　Ｓ、Ｄ、範囲＝０．４１〜０．
６５　＝０．５１〜０．９７　＝０．４１〜０．７５Ｃ
ＡＤ患者５ ｎ＝４ｏ　　　　　　　　ｎ＝４０　　　　　　　　ｎ
＝４０平均＝１．０７　　　　平均−１，２６平均＝　
１．０１５、Ｄ、＝０．３９　　　　　Ｓ、Ｄ、＝０．
４０　　　　　Ｓ、Ｄ、＝０．４３１、男性および女性
の血液試料から得た値。 ２、表２脚註参照 ３、　カルビオケムーベーリング（ｃａｌｂｉｏｃｈｅ
ｍ−Ｂｅｈｒｆｎｇ、　Ｓａｎ　Ｄｉｅｇｏ　ＣＡ）に
より販売されたＪ？Ｉ［＋キッドを血漿でパッケージ使
用説明書に従って用いた。 ４、タボ（Ｔａｇｏ、　Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ、　ＣＡ
）により販売されたＲＩＤキッドを血漿でパッケージ使
用説明書に従って用いた。 ５、臨床ＣＡＤ発現男性から得た値。 上表中のデータを調べると、正常なヒトおよびＣＡＤ患
者に対する標識値を、このアポＡ−１検定とともにアポ
Ｂ−１００について２市販ＲＩＤキツドのいずれかを用
いて得たときに、このアポＢ−１００検定の使用に比べ
て容認できない大きな重なりが比、標準偏差範囲に得ら
れたことが示される。 ■、動物質よび方法 Ａ、パラトープ分子の調製および精製 （１）　　抗アポＡ−１免疫グロブリンの分離鉱油０．
３Ｉｌｌｌで感作し、３〜５０Ｘ１０’ハイブリドーマ
細胞を腹腔内注射した１０週令Ｂａｊ！ｂ／ｃマウスか
ら腹水を得た。腹水の発生の平均時間は９日であった。 遠心分離により２３℃で１５時間、１５．０００ｘｇで
清澄化した後腹水をプールし、−２０℃で凍結貯蔵した
。 分離したＡｌ−１０およびＡｌ−１１抗体は１０ｍＭ）
リス、ｐＨ８，０中００〜０．５Ｍ−ＮａＣｊ！勾配を
使用し、ファルマシア（Ｐｈａｒ＋ｍａｃｉａ）モノＱ
　　ＨＲ５１５陰イオン交換カラム〔ファルマシア・フ
ァイン・ケミカルズ（ＰｈａｒｓａｃｉａＦｉｎｅ　Ｃ
ｈｅｍｉｃａｌｓ＋　Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ＋ＮＪ）製
〕を用いて高速タンパク質液体クロマトグラフィー（Ｆ
ＰＬＣ）により調製した。精製Ｍａｂをアミコン（八ｍ
１ｃｏｎ）かくはん限外濾過セル（Ｄａｎｖｅｒｓ、　
Ｍ＾　、ＰＭ３０膜）を用いて１ミリグラム毎ミリリツ
トル（ｍｇ／ｍｊｌ）の濃度に濃縮し、ＰＢＳ　（リン
酸塩緩衝食塩水、ｐＨ７，２）中へ透析し、−７０℃で
貯蔵した。 （２）　　抗アポＢ−１００免疫グロブリンの分離有用
な抗アポＢ−１００パラトープ分子を含む腹水を鉱油０
．３　ｙｌＩＩで感作し、３〜５０　ＸＩＯ’ハイブリ
ドーマ細胞を腹腔内注射した１０週令Ｂａ１ｂ／ｃマウ
スから得た。腹水の発生の平均時間は１２日であった。 遠心分離により４℃で１時間、１５．０００ｘｇで清澄
化した後、腹水をプールし、−２０℃で凍結貯蔵した。 分離した抗体ＭＢ４７は単クローン性ハイブリドーマ腹
水のプロティンＡ−セファロース４Ｂカラム（ファルマ
シア・ファイン・ケミカルズ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ　Ｆ
ｉｎｅ　Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ、　Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ
。 ＮＪ）製〕上のクロマトグラフィーにより調製した。抗
体はカラムから０．１モル（Ｍ）酢酸で溶離した。 分離したパラトープ分子はまた１０ｍＭｌ−リス、ｐＨ
８，０中のＯ〜０．５Ｍ−ＮａＣＩｌ勾配をカラム供給
方向に従って用いてファルマシアＦＰＬＣ系中のファル
マシア・モノＱ　　ＦＩＲ５１５Ｍイオン交換カラム上
の単クローン性ハイブリドーマ腹水の高速タンパク賞液
体クロマトグラフィー（ＦＰＬＣ）により調製した。 Ｂ、ハイブリドーマ抗体の確認 各プールの腹水の全ガンマグロブリン（Ｉ　ｇ）含量は
８．６のｐＨ値における７５ｍＭベロ、ナール緩衝液中
の酢酸セルロースストリップの１〜３請Ｅ試料の２００
ミリボルト（ｍＶ）における４５分間の電気泳動により
得た。１ｇであった全タンパク質のパーセントはボンソ
ーＳ−染色ゲルのデンシトメータースキャンにより定量
し、全タンパク質は前記変形ローリ−（Ｌｏｓｖｒｙ）
法により測定した。 ＭＢ４７およびＭＢ２４に対するマウスＩｇ重鎖および
軽鎖は０．９％アガロースニ元拡散により確認した。適
切な希釈度の腹水１０ミクロリツトルを等容積の適切に
希釈したウサギ抗マウス重鎮および軽鎖特異性抗体〔リ
ットン・パイオネテソクス社（Ｌｉｔｔｏｎ　Ｂｉｏｎ
ｅｔｉｃｓ、　Ｉｎｃ、＋　Ｃｈａｒｌｅｓｔｏｎ。 ＳＣ）製〕と反応させた。２０℃で約１５時間の拡散お
よび洗浄後、沈降線を０．５％クーマシーブリリアント
ブルーＲ２５０による染色により確認した。 サブクラスの単クローン性抗体Ａｌ−１０およびＡｌ−
１１はメロイ・ラボラトリーズ社（ＭｅｌｏｙＬａｂｏ
ｒａｔｏｒｉｅｓ、　Ｉｎｃ、、　Ｓｐｒｉｎｇｆｉｅ
ｌｄ、　Ｖ＾）またはタボ社（Ｔａｇｏ、　Ｉｎｃ、、
　Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ、　Ｃ＾）から入手できる市販
放射免疫拡散キットを用いて確認した。 腹水を抗ＩｇＧ１、抗Ｉｇ　Ｇ２ａ、抗１ｇＧ２ｂまた
は抗１５Ｍを含むアガロースゲル中に切ったウェルに供
給した。可視沈降素環が確認クラスの抗体で制御条件下
予定特定時間後に形成された。 環の直径は腹水中に存在する特定免疫グロブリンの濃度
に比例する。Ａｌ−１０はクラスＩｇＧ２ａと認められ
、Ａｌ−１１はクラスＩｇＧ１と認められた。 単クローン性抗体の等電点プロフィルは５〜８のｐＨ値
範囲内の１０％ソルビトールおよび２％アンホリンを含
む０．８％アガロース（ＥＦ８０２−３００、ＬＫＢプ
ログクターＡ　Ｂ　（ＬＫＢ−ＰｒｏｄｕｋｔｅｒＡＢ
、　Ｂｒｏａ＋＋＊ａ、　Ｓｗｅｄｅｎ）製〕中の腹水
０．０１ａ＋ｊ！試料の、３ワツト定出力における１５
０分間の等電点電気泳動により得た。固定し、乾燥した
後ゲルをクーマシーブリリアントプルーで染色して写真
に撮った。 Ｃ，サンドイッチ検定 （１）　　アポＡ−１（ＨＤＬ）サンドイッチＥＬＩＳ
Ａａ、アポＡ−！−次積標準：ＨＤＬおよび分離したア
ポリポタンパク質Ａ−１の定量 ＨＤＬ画分（１，０６３〜１．２１ｇ／ｍ１）をプール
したヒト血漿から標準超遠心分離法により得てＰＢＳ中
へ透析した０次いで０．４５ミクロンアクロディスク濾
過装置を通して無菌濾過し、４℃で貯蔵した。ＨＤＬ画
分のタンパク質含量を変形ローリ−（Ｌｏｗｒｙ）タシ
パク質検定法によりＢＳＡを標準として測定した。ＨＤ
Ｌ画分の３希釈を二重に行ない、標準曲線の直接部分内
の読みを確認した。例えばＨＤＬ画分を１：５．１：１
０および１：２０の希釈で試験した。タンパク質濃度は
通常５〜１０ａ＋ｇ／ｍＪであった。長時間貯蔵のため
にＨＤＬ画分をＰＢＳで１〜２ｗ＋ｇ／ｓ１のタンパク
質濃度に希釈した。 希釈後、タンパク質濃度を再びローリ−（Ｌｏｗｒｙ）
検定法により１：２．１：５．１：ｌＯの希釈で確認し
た０次いで希釈したＨＤＬ画分をアリコートになし、４
℃で貯蔵した。 分離したアポリポタンパク質Ａ−１は多くの市販源から
得ることができる。製造者が典型的にはタンパク質含量
および純度の記述を含ませているけれども、タンパク質
濃度を常にローリ−（Ｌｏｗｒｙ）検定法により確認し
、必要であればこれらの結果に基いて調製した。アポＡ
−１調製物の希釈は前のセクションに記載したように行
なった。調製物をアリコートになし、製造者により示唆
されたように貯蔵した。 ＨＤＬおよび（または）アポＡ−Ｉ調製物を次に未知試
料（１：５．０００希釈）としてアポＡ−Ｉ　　ＥＬＩ
ＳＡ（後記）で検定した。標準、品質対照、並びにＨＤ
Ｌおよび（または）アポＡ−Ｉ調製物の希釈物の完全セ
ットを含む最低２つの検定プレートを毎日５日間にわた
って行なった。ＨＤＬおよび（または）アポＡ−Ｉに対
してＥＬＩＳＡ値はローリ−（Ｌｏｗｒｙ）　　タンパ
ク質検定値の２０％内で一致した。値が決定した限界内
で一致しなければロー！ｊ−（Ｌｏｗｒｙ）検定を繰返
して帰属タンパク質濃度を確認した。 値がなお矛盾すれば、通常調製物の経時変化または汚染
を示し、それは−次標準としての使用に適しないと考え
た。 一次標準の純度はまた分析用ドデシル硫酸ナトリウム−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動：５ＤＳ−ＰＡＧＥに
より測定した。 ｂ、アポΔ−Ｉ　　ＥＬＩＳＡ二次標準調製物および値
の帰属 ｉ　凍結乾燥標準プール化血漿 新鮮な血漿または血清は一夜絶食した少くとも１０名の
正常脂肪血被験者から採取した。 瀉血は非外傷性静豚穿刺によりニナトリウムＥＤＴＡを
含む無菌管を用いて行なった。試料は４℃で３０分間、
１．５００ｘｇで遠心分離し、血漿を清浄密閉管に移し
、４”ｃでわずかに２４時間貯蔵した。等量の試料を合
わせ、０．５ｍ１ｆｉｌを酸洗浄ホイートン（Ｗｈｅａ
ｔｏｎ）５ａｌｌ血清バイアル中へアリコートになし、
−夜（約１６〜１８時間）凍結乾燥した。バイアルを密
閉し、４℃で貯蔵した。 ｉｉ　　凍結乾燥したプールした血漿標準の戻し液に戻
す前にバイアルを室温にさせた。アルミニウム環および
栓を除き、バイアル中の真空を徐々に解放する。精密ピ
ペットを用い、再蒸留水０．５ｍｊ！で、水をバイアル
の壁面にゆっくり分配することにより乾燥したプール標
準を戻した。再び栓をしてバイアルを３〜４回速やかに
渦流させ、室温で少くとも３０分間保持した。標準は強
い巻込みまたはかくはんをしないで穏やかに渦流させて
完全な可溶化を保証した。 ｉｉｉ　　アポＡ−に二次標準の値帰属凍結乾燥した二
次標準のアポＡ−１値は、アポＡ−Ｉ　　ＥＬＩＳＡに
おいて一次標準（ＨＤＬまたはアポＡ−１）をキャリブ
レータ−として用いて測定した。ＥＬｒＳＡ検定操作が
ここに記載される。 凍結乾燥二次標準を未知試料として三重に、毎日最小２
つの検定プレート上で最低２０の値（三重の平均）の生
成に少くともｌＯ日間検定した。二次標準に得られたす
べての値を平均し、アポＡ−１値をミリグラム毎デシリ
フドル（ｓｇ／ｄＩｌ）で帰属させた。 値の帰属を行なった後、二次標準を用いて標準曲線を構
成し、それを対照の完全なセットで、−次標準曲線とと
もに同じＥＬ　Ｉ　ＳＡプレート上で検定した。−次お
よび二次標準曲線は毎日最低２つの検定９６ウエルプレ
ートで５日間にわたって検定した。 二次標準の値帰属が容認された後標準曲線を構成し、凍
結乾燥標準の現在受入れられたロフトで、同−ＥＬＩＳ
Ａプレート上で５日間にわたって検定した（毎日２検定
プレート）。 Ｃ０検定、一般 分離したＡｌ−１０分子を、ポリスチレンミクロタイタ
ープレートウェル〔ナンクーイムノ・プレート（Ｎｕｎ
ｃ−１＋＋ｎｕｎｏ　Ｐｌａｔｅ）　１　；アービング
・サイエンテイフ４ｙり（Ｉｒｖｉｎｇ　５ｃｉｅｎｔ
ｉｆｉｃ、　５ａｎｔａ＾ｎａ　ＣＡ）製〕のウェルに
５ミクロダラム毎ミリリフ　）７１／　（＃　ｇ／ｓ＋
Ｉｌ）　（７）Ａ　Ｉ　−１０を含むｐＨ９，０の炭酸
水素ナトリウム緩衝液０．１５ｓｊ！を各ウェル中に混
合することにより付着させた。プレートを４℃で１８時
間保持し、次いで０．１％ＢＳＡおよび０．０５％ポリ
オキシエチレン（２０）ソルビタンモノラウラート（ツ
イーン２０）を含むＰＢＳで３回洗浄した。次いでｌＯ
％ＢＳＡを含むＰＢＳＯ，２ｔａｌを各ウェル中に混合
し、混合物を３７℃で１時間保持し、次いで洗浄するこ
とにより残留非特異的結合部位をブロックした。そのよ
うに調製したウェルは、調製後増温室中に貯蔵すると約
１ケ月ま°での間使用できる。 ヒ）ＨＤＬをＰＢＳ中に標準対照溶液として使用する１
、０〜０．０３１μｇ／ｒｌの範囲の濃度に希釈した。 前記のように、アポＡ−■が貯蔵すると比較的不安定で
あると認められたが）（ＤＬは比　　・較的貯藏安定で
あると思われるので、ヒトアポＡ−■よりはむしろヒト
ＨＤＬをこれらの検定における標準として用いる。血５
！ｔ（または血清）試料はＰＢＳ中に１：５．ＯＯＯに
希釈した。 標準または試料５０ミクロリツトル（μりを三重にウェ
ル中に混合した。この後約５分以内にＨＲＰＯ標１１ｉ
ＡＩ−１１バラト一プ分子を含むＰＢＳ５０μｌを各ウ
ェル中に混合した。免疫反応混合物を２５℃で３０分間
保持した０次いで非結合物質を上記のように洗浄するこ
とによりウェルから分離した。 ＨＲＰＯ標識を含む固相付着サンドイッチ免疫反応物の
量を、新たに調製した基質溶液（３％Ｈ２０，および０
．６７ａ＋ｇ／ｍＪ！を含む蒸留水）０．１ａｌｌを混
合することにより検定した。 ｄ０段階的アアポ−Ｉ　　）ＩＤＬサンドイッチＬＩＳ
Ａ アポタンパ多質Ａ−１サンドイッチＥＬ　Ｉ　ＳＡの達
成に次の段階を行なった。市販対照をパッケージ挿入に
より脱イオン水で戻した。対照を穏やかに渦流し、室温
で２０〜３０分間保持して完全溶液を保証した。 （ｉ）試料および対照 試料および対照をＰＢＳ中にｔ’ｓ、ｏｏ。 に希釈する。系列希釈は次のように行なうことができる
： ２０　μ　ｌ　試寧４＋　　１．９　８　＋　ｌ　Ｐ　
　Ｂ　　Ｓ　　　（１：１００）；上記希釈４０μｍ＋
１．９６ｗ＋ＩＰＢＳ（１：５．０００）。 （ｉｉ　）標準希釈物 分離したアポＡ−１（ＨＤＬ）標準をＰＢＳ中に４μｇ
／１ｓｌｌに希釈する。次に０．０３１μｇ／ｌａ１ま
で２倍系列希釈を行なう。例えば８６８μｇ／１ｓｌｌ
を含む８６０５２７と称されるＨＤＬ。 の調製物を用いると、 ４ｔ１ｇ／ｃａｌ＝４６μｆ＋９．９５４ｍＪＰＢｓ（
１：２１７）； ２μｇ／ｌ１ｌＩ！＝上記１ｍｌ＋１ｍｊ！ＰＢＳｉお
よび ０、０３１１１　ｇ／ｍｌｌまで２倍希釈を続ける。 （ｉｉｉ）ＨＲＰＯ標識Ａｌ−１１希釈物ＰＢＳ中（７
）Ａｒ−１１ＨＲＰＯ結合抗体（７）１：５，０００希
釈物を用いる。次の希釈を行なうことができる： ２０μｚ＋１．９８ｍＩＰＢＳ　（１：　１００）；お
よび 上記の２４０＃１＋１１．７６ｍ１ＰＢＳ＝　（１：　
５．０００）。 箔で覆って光から保護する。この量は２プレートに十分
である。 （ｉｖ）３％過酸化水素 ３０％過酸化水素（Ｈｏｏｔ）を蒸留水中に１：１０に
希釈する。 （ｖ）　　Ｏ−フ二二レンジアミン基質０−フェニレン
ジアミン（ＯＰＤ）１錠〔シグマ・ケミカルズ社（Ｓｉ
ｇｍａ　Ｃｈｅｓ＋１ｃａｌｓ　Ｃｏ、、Ｓｔ。 Ｌｏｕｉｓ、　ＭＯ）製〕を蒸留水１５ｔａｌに溶解す
る。 ３％Ｈ＊０ｚ６２．５μｌを加える。箔で覆って光から
保護する。使用直前に毎回基質を新たに作る。 ｅ、検定操作 ｉ　抗体結合ＥＬＩＳＡプレートを周囲室温（２０〜２
２℃）で少くとも２０分間平衡させる。プレートを袋か
ら取出し、プレートを逆にしてウェル中の残留緩衝液を
除く。ウェルに洗浄緩衝液（０，１％ＢＳＡおよび０．
０５％ツイーン２０を含むＰＢＳ、ｐＨ７，２）３００
μｌを満たして１０分間保持する。プレートを逆にして
緩衝液を除き、プロットプレートを祇タオル上で乾燥す
る。ウェルは検定中に１０分間以上からにしない。 ｉｉ　　標準液または試料５０μｉを三重に、ウェルに
加える。 θμｇ／ｌ１ｌｌ標準液はＰＢＳ５０μｌである。 希釈したＨＤＬ標準液５０μ！を標準ウェルに加える（
０．０３１．０．０６２．０．１２５．０．２５．０．
５０．１．０μｇ／１０゜希釈した対照および患者試料
５０μｌをそれぞれのウェルに加える。 ｉｉｉ　　ＨＲＰ　Ｏ結合抗体５０μｌ／ウェルを全ウ
ェルに加える。 ｉｖ　　プレートをアルミニウム箔で包み、ジャイロシ
ェーカー（約１０１００ＲＰ上に周囲室温（約２０〜２
５℃）で３０分間置く。 Ｖ　ウェルに洗浄緩衝液３００μｍ／ウェルを満たし、
次いでプレートを逆にして緩衝液を除くことによりプレ
ートを洗浄する。合計３洗浄のためさらに２回繰返す。 プロットプレートを第３洗浄後紙タオル上で乾燥する。 プレートは完全に乾燥させない。 ｖｉ　　新たに調製したＯＰＤ基質１００μｌ／ウェル
を加える。室温で３０分間発色させる。 ｖｉ　　全ウェルに対し４Ｎ硫酸５０μｌで反応を停止
させる。４９２ｎｓ＋でＯ，Ｄ、を読む。 ２、アポＢ−１００サンドイッチＥＬＩＳＡａ、二次標
準液のための血漿プール 採取および凍結乾燥調製 一夜絶食した１０名の正常被験者から新血漿を採取する
。（被験者はブラ・ツクコーヒーまたは茶を飲むことを
許される）。 非外傷性静脈穿刺法によりニナトリウムＥＤＴＡを含む
無菌バキュテーナー管を用いて瀉血を行なう。試料を４
℃で３分間１，５００Ｋｇで遠心分離する。血漿を清浄
な堅くふたをした管に移し、わずかに２４時間貯蔵する
。 血漿試料等容積を合わせる。アリコー）　０．５ｖａｌ
量をクロム酸洗浄ホイートン（Ｗｈｅａｔｏｎ）　５Ｉ
１１１アンバー血清びん（ｖＷＲサイエンテイフ４７り
（ｖＷＲ５ｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、　Ｄｉｖｉｓｉｏｎ　
１ｌｎｉｖａｒ。 Ｓａｎ　Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ、　ＣＡ）　；　ＶＷＲ＃
　２２３７７　Ｂ）中ヘアリコートにする。びん上にゴ
ム栓を、栓上単に１／４＃がびんに挿入されるように置
く。 次いでびんを凍結乾燥の棚装置（Ｓｈｅｌｆ　Ｕｎｉｔ
）から取出したトレイ上に置（。 ｂ、標準液のための血漿プールの凍結乾燥凍結乾燥に用
いた系はＦＴＳシステムズ・デュラーストップ・棚装置
（ＦＴＳ　５ｙｓｔｅ＋ｍｓ　Ｄｕｒａ−Ｓｔｏｐ　５
ｈｅｌｆ　Ｕｎｉｔ）並びにデュラードライ・コンデン
サー装置（Ｄｕｒａ−Ｄｒｙ　Ｃｏｎｄｅｎｓｅｒ　Ｕ
ｎｉｔ）（ＦＴＳシステムズ社（ＰＴＳ　Ｓｙｓｔｅｍ
ｓ、　Ｉｎｃ、。 ５ｔｏｎｅ　’Ｒｉｄｇｅ、　ＮＹ）製〕であった。 ｉ　デュラーストップ棚装置を一５０℃に冷却する。 ｉｉ　　予め冷却した棚装置中に試料とともにトレイを
置くことにより血漿試料を凍結する゛。熱電対リード検
出器を若干のバイアル試料の内側に配置して温度変化を
モニターする。 ｉｉｉ　　熱電対リード検出器が、試料が一５０℃に凍
結したことを示すと（約３０分、時間は試料の数により
異なる）、デュラードライ・コンデンサー装置中の冷凍
を作動させる。 ｉｖ　　最大低温度に達すると真空ポンプを作動させる
。 Ｖ　真空圧が２００ミクロンまたはそれ以下に達すると
棚装置中の温度を一２０℃に上げる。 ｖｉ　　試料をこの温度で約２０分間置き、その時点で
温度は一１０℃に上げる。 ｖｉ３０分で温度を一５０℃に上げる。４℃までの最後
の温度上昇は３０分後に行なう。 ｖＩｉ　　次いで棚装置中の棚を上げゴム栓をびん中へ
押込む。次いで真空を室中で破壊し、試料を取出す。 ｉｘ　　ホイートン・ハンドクリンパ−〔ホイートン（
Ｗｈｅａｔｏｎ）＃　２２４３０３　：　ＶＷＲサイエ
ンティフ４ｙり（ｖＷＲ５ｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、　Ｄｉ
ｖｉｓｉｏｎｏｆ　Ｕｎｉｖａｒ＋　Ｓａｎ　Ｐｒａｎ
ｃｉｓｃｏ、　Ｃ＾）製〕を用い、ホイートン・アルミ
ニウムシール（ｖＷＲサイエンティフィック（ｖＷＲ５
ｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）、ＶＷＲ＃２２６−３５５）を試
料バイアル上に締める。次いで試料を使用まで４℃で貯
蔵する。 Ｃ０戻しおよび安定性 ｉ　戻し 凍結乾燥血漿標準液は戻す前に室温でなければならない
。室温で最低３０分が示唆される。 アルミニウム環および栓の除去は注意深（バイアル中の
真空をゆっくり解放する。精密ピペットを用い脱イオン
ＨｇＯＯ，５ｔｌｌで液状に戻す。水をバイアルの壁面
にゆっくり分配する。再び栓をし、速やかにバイアルを
３〜４回渦流させ、室温で少くとも３０分間放置する。 この標準はまた強く巻込みまたはかくはんさせないで渦
流させて溶液を得る。 ３０分後、使用前にバイアルを穏やかに渦流させる。 ｉｉ　　安定性 標準液は戻す前および後、２〜８時間貯蔵する。戻した
標準液はそのように貯蔵すると４時間安定である。 ｄ、値の帰属 （ｉ）競合的ＥＬ　Ｉ　ＳＡ 凍結乾燥標準液に対する値の帰属は競合的照合ＥＬ　Ｉ
　ＳＡにおいて一次ＬＤＬを用いて決定する。軟質ポリ
塩化ビニルミクロタイタープレート（フアシヨン（Ｆａ
ｌｃｏｎ　）、ミクロテスト（Ｍｉｃｒｏｔｅｓｔ　）
　ｍ　）を４℃で１６時間ＬＤＬ５μｇ／ｍｌｌを含む
ＰＢＳ２００μｌでコートした０次いでウェルを１％Ｂ
ＳＡおよび０．５％ツイーンを含むＰＢＳ　２００μｌ
で３回洗浄した。残留結合部位をＰＢＳ中の３％Ｂ５Ａ
２００７Ｍで２５℃で１時間ブロックした。次いでウェ
ルを再び同一洗浄緩衝液を用いて３回洗浄した。各プレ
ートに含まれた標準曲線に対してＬＤＬ−アポＢ−１０
０標準を０．５％リポタンパク質除去血５１（ＬＰＤＰ
　）を含むＰ　Ｂ　Ｓ、中に希釈し、３２〜０．２５μ
ｇノｌ＋１の範囲のＬＤＬ濃度を与えた。各検定におい
て、３つの異なる対照＝（ｌ）イソラブ（ｌ５ｏｌａｂ
　）リボ型対照（Ａｌｔｒｏｎ、　０ｈｉｏ　）、（２
）タボ社（Ｔａｇｏ　ｓ　Ｉｎｃ、　）アポリポタンパ
ク質Ｂ照合血清対照（Ｂｕｒｌｌｎｇａｍｅ　％　ＣＡ
）、および（３）オメガ（Ｏｍｅｇａ　）脂質画分対照
血清〔クーパー・バイオメディカル（ｃｏｏｐｅｒＢｉ
ｏｍｅｄｉｃａｌＳＭａｌｖｅｒｎ　ＳＰ　Ａ）　）　
、を用いた。 各対照は製造者の使用説明書に従って調製した。 血清試料および対照はＬＰＤＰ／ＰＢＳ希釈緩衝液中に
２００倍に希釈した。標準、対照、および未知の５０μ
ｌをピペットでウェルに入れ、直ちに一定濃度のＭＢ２
４腹水（３％Ｂ　Ｓ　Ａ／Ｐ　Ｂ　Ｓ中に２．０００倍
希釈）５０μｌを入れた。次いでプレートを４℃で１８
時間インキュベートした。測定はすべて三重に行なった
。再びウェルを洗浄した後、１％ＢＳＡ／ＰＢＳ中に４
．０００倍希釈したＨＲＰＯ結合ヤギ抗マウスＩｇＧ１
００μｌをウェルに加え、２５℃で正確に１時間インキ
ヱベートし、次に再び洗浄した。３％１ｈＯｚおよび０
．６７■／＠ｌｏ−フェニレンジエチレン（ＯＰＤ）　
　（ｃａｔ＃２７８１、シグマ（Ｓｉｇ＋＋＋ａ　）　
）を含む基質溶液を蒸留水中に希釈した。３％ＨｚＯｚ
＃よび０．６７ｗ／ｌｌｌ１の０−フェニレンジアミン
（ＯＰ　Ｄ）を蒸留水中に含む新たに調製した基質溶液
を全ウェルに加え、２５℃で３０分間発色させた。４Ｎ
−ＨｔＳＯａ　５０μｌの添加により反応を停止させ、
次いで溶液の光学密度（０，Ｄ、）を９６ウエルミクロ
タイタープートリーダー〔ダイナチク（Ｄｙｎａｔｅｃ
ｈ　）　Ｍ　Ｒ６００：ＡｌａｘａｎｄｒｉａＳＶ　Ａ
　）を用いて４９０ｎｍで測定した。 （ｉｉ　）アポＢ−１００サンドイッチ検定次の段階は
凍結乾燥標準を直接サンドイッチ検定に用いることであ
る。ポリスチレンミクロタイタープレート〔ナンクーイ
ムノ（Ｎｕｎｃ−Ｉｍｍｕｎｏ　）プレートＩ）を、１
Ｎｇ／ｍｌの精製ＭＢ４７を含む炭酸水素ナトリウム緩
衝液、ｐ）１９．０．１５０μｌで、４℃で１６時間コ
ートシた。プレートを０．１％ＢＳＡ、０．０５％ツイ
ーンを含むＰＢＳで３回洗浄し、次いで正確に競合的検
定に記載するように３％ＢＳＡでブロックした。ＬＤＬ
−アポＢ凍結乾燥標準を１：２００の：　　ＬＰＤＰ／
ＰＢＳ　（希釈緩衝液）中に０．１２５〜４．０Ｎｇ／
ｒａ１の範囲の濃度に希釈した。競合的ＥＬＩＳＡにつ
いて記載したと同じ対照をこの検定に用いた。血漿試料
および対照を希釈緩衝液中にｉ、ｏｏ。 倍希釈した。標準、対照、および未知の５０μｌをウェ
ルに三重に加えた。次いで一定濃度のＨＲＰＯ結合ＭＢ
２４を含む　ＰＢ３５０μｌを直ちにピペットで全ウェ
ルに入れた。プレートを２５℃で正確に３０分間インキ
ュベートし、洗浄し、ＯＰＤ基質溶液１００μｌを加え
て２５℃で３０分間インキュベートした。４Ｎ　　Ｈｇ
ＳＯ４５０μｌの添加により発色を停止し、プレートを
競合的ＥＬＩＳＡにおけるようにミクロタイターリーダ
ーで読む。 Ｄ、競合的ＥＬＩＳＡ ＬＤＬの形態における試薬アポＢ−１００を固体マトリ
ックスとしての軟質ポリ塩化ビニルミクロタイタープレ
ートウェル〔ミクロテスト（Ｍｉｃｒｏ−ｔｅｓｔ）　
ｍ、フアシヨン・ラブウェア・ベクトン・デイッキンソ
ン社（Ｆａｌｃｏｎ　Ｌａｂｗａｒｅ、　Ｂｅｃｔｏｎ
、　ｎ１ｃｋｉｎｓｏｎ　＆　Ｃｏ、、　０ｘｎａｒｄ
＋　（Ａ）製〕の壁に、分離したヒトＬＤＬ５μｇ／＋
＋ｉを含むＰ　Ｂ　Ｓ　０．２　ｍ　１２を各ウェル中
に混合することにより付着させた。 ウェルは４℃で１６時間保持し、次いで１％ＢＳＡ。 ０．５％ツイーンおよび０．０２％アプロチニン〔シグ
マ・ケミカル社（Ｓｉｇｎ＋ａ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃ
ｏ、、　Ｓｔ、　ＬｏｕｉｓＭＯ）製〕を含むＰ　Ｂ　
Ｓ　Ｏ，２ｍ　Ａ！で３回洗浄した。 残留非特異的結合部位は非競合的ＥＬ　Ｉ　ＳＡに記載
したようにブロックした。 非特異的結合部位はＰＢＳ中の３％ＢＳＡで室温で３０
分間コートすることによりブロックした。 次いでプレートを０．１％ＢＳＡ、０．０１％アジ化ナ
トリウムおよび０８０５％ツイーン２０をさらに含むＰ
ＢＳ洗浄緩衝液で洗浄した。 各プレートに関して含まれた標準曲線のために、試薬Ｌ
ＤＬを０．５％リポタンパク質除去血漿（Ｌ　Ｐ　Ｄ　
Ｐ）を含むＰＢＳに希釈して３２〜０．２５μｇ／ｒａ
１の範囲の濃度を与えた。 血漿試料を０．５％ＬＰＤＰを含むＰＢＳ中に１：２０
０に希釈した。標準液または試料の５０ミクロリンドル
を三重にウェル中に混合した。その後約５分以内に３％
ＢＳＡおよびＭＢ２４バラト一プ分子約４μｇ／１ａｌ
ｌを含むＰＢＳ５０μｌを各ウェル中へ混合した。形成
された混合物を４℃で約１８時間保持した。次いで非結
合物質を固相付着ＭＢ２４−試薬アボＢ−１００免疫反
応生成物から前記のように洗浄することにより分離した
。 検定のために１％ＢＳＡおよび有効量のＨＲＰＯ標識標
標識標識ヤギ抗マウス１含ＧＰ　Ｂ　Ｓ　０．１ｍｌを
各ウェル中に混合することにより固相免疫反応物を調製
した。この第２免疫反応混合物を２４℃で約１時間保持
し、次いで上記のように洗浄してサンドイッチ免疫反応
物を形成した。 ＨＲＰＯ標識を含む固相付着サンドイッチ免疫反応物の
量を競合的ＥＬＩＳＡに記載したように検定した。 Ｅ、血漿試料およびリポタンパク賞 定量化 血漿試料はサン・ジェゴＶＡ病院（Ｓａｎ　Ｄｉａｇ。 Ｖ＾ｌ１ｏｓｐｉｔａｌ　）で心臓カテーテル法研究所
から冠動脈疾患を有する２０名の患者から得た。さらに
血漿を３７名の正常被験者から得た。 血液を、１．５■７’ａｌのエチレンジアミン四酢酸塩
（ＥＤＴＡ）を含む管に採取し、血漿を直ちに４℃で遠
心分離により分離した。 全血漿コレステロールおよびトリグリセリドは規格化臨
床研究所において新血漿試料で、アボット（＾ｂｂｏｔ
ｔ　）　ＡＢＡ−２’ＯＯ二色アナライザー並びにベー
リンガー・マンハイム（８ｏｅｈｒｉｎｇｅｒ　−Ｍａ
ｎｎｈｅｉｎ＋　）高速コレステロール試薬２３６６９
１およびアボット・ラボラトリーズ（Ａｂｂｏｔｔ　Ｌ
ａｂｏｒａ−ｔｏｒｉｅｓ　）　）リグリセリド試薬を
用いて測定した。 ＬＤＬ−およびＨＤＬ−コレステロールは「脂質研究臨
床手順＜Ｌｉｐｉｄ　Ｒｅ５ｅａｒｃｈ　Ｃ１１ｎｉｃ
　Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ）Ｊ保健教育福祉省発行陽７５
−６２８　　（ＮＩＨ）、２版Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ　
Ｄ、Ｃ，、政府印刷所（１９７４）に記載された方法を
用いて測定した。アポタンパク質ＢＯＷ度は２市販放射
免疫拡散キソト：ディフーゲン（Ｄｉｆｆｕ−ｇｅｎ　
）　ＲＩ　Ｄ　（タボ社（Ｔａｇｏ＋Ｉｎｃ、、　Ｂｕ
ｒｌｉｎｇａｍｅｌＣＡ）製〕、ここにＲＩＤ　　１と
称す、およびＭ−パーティゲン（Ｐａｒｔｉｇｅｎ　）
ＲＩＤ　（カルビオケムーベーリング（ｃａ１ｂｉｏｃ
ｈｅ＠−Ｂｅｈｒｉｎｇ　％　Ｌａ　Ｊｏｌｌａ、　Ｃ
Ａ）製〕、ここにＲＩＤ「と称す、を用いて測定した。 Ｆ、液相Ｉｔ％（標識抗原ＲＩＡ ＭＢ４７およびＭＢ２４により結合された”’Ｉ−ＬＤ
Ｌ粒子の百分を測定するために液相ＲＩＡをツアオ（Ｔ
ｓａｏ　）ほか、（１９８２）、ジャーナル・オブ・バ
イオロジカル・ケミストリー　（Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　Ｃ
ｈｅｗ、）　、２５７　：　１５２２２〜１５２２８の
一般操作に従うて用いた。２つの異なるＬＤＬ　（ｄ＝
１．０１９〜１．０６３　ｇ／　ｍｊり調製物：１０名
の正常被験者のプールした血漿から分離したものおよび
１正常被験者の血漿から分離したもの、を調べた。 ヨードゲン（ピアス・ケミカル社（ＰｉｅｒｃｅＣｈｅ
ｍｉｃａｌ　Ｃｏ、、　Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、　Ｉ　Ｌ）
法を用いて調製した”’Ｉ−ＬＤＬ　（２，０００ｃｐ
ｓ／ｎｇ　）は９０％トリクロロ酢酸（Ｔ　ＣＡ）沈澱
性であった。その組成物を９％ウシ血清アルブミン（Ｂ
　Ｓ　Ａ）〔シグマ（ＳｉｇｍａＳＳｔ、　Ｌｏｕｉｓ
　、、ＭＯ）製〕中に希釈し、各検定の前に１５分間３
０．０００Ｘｇで遠心分離して複合体物質を除いた。 検定は三重に、１２　Ｘ　７５　ｍｍガラス管中で１５
０ｍＭ　−Ｎａ　Ｃ１ｌ、　０．０２％アジ化ナトリウ
ム、３％ＢＳＡおよび１．５ｍＭナトリウム−ＥＤＴＡ
を含む８のｐＨ値における５５■■ナトリウムバルビタ
ール緩衝液中で行なった。”’Ｉ−ＬＤＬ〔２０ナノグ
ラム（ｎｇ）ＬＤＬタンパク質を含む）０．１＋＋ｌｌ
に、緩衝液または競合的抗原０．１１１ｉｌおよびＢＳ
Ａ−バルビタール緩衝液中に希釈した増加濃度の分離Ｍ
Ｂ４７受容体０．１＋＋＋ｊ！を加えた。４℃で１８時
間後、Ｉ　ｇ　５ｏｒｂ　（ジ・エンザイム社（Ｔｈｅ
　Ｅｎｚｙｗ＋ｅ　Ｃｏ、、　Ｂｏｓｔｏｎ　ＳＭＡ）
製〕０．１ａｉを混合した。保持２時間後、ＢＳＡを含
まないバルビタール緩衝液２　ａｌｌを加え、管を直ち
に１．５００ｘｇで６０分間遠心分離した。生じた沈殿
をバルビタール緩衝液で２回洗浄した。 Ａｌ−１０およびＡｌ−１１を用いる検定は前記ツアオ
（Ｔｓａｏ　）ほかおよびカーディスほか（ｃｕｒｔｉ
ｓｓ　ａｎｄ　Ｅｄｇｉｎｇｔｏｎ　）、（１９８５）
、ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（
Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　Ｃｈｅ＋ｓ、）、２６０．２９８２
〜２９９３に論議されたと同様に行なった。従って、放
射性ヨウ素化抗原（ＨＤＬまたはアポリポタンパク質Ａ
−１）０．１ｍＪにリン酸塩緩衝食塩水、ｐＨ７，２，
０；１ｎ＋Ｊ！および１：５０の正常マウス血清中に希
釈した種々の希釈度のマウスハイブリドーマ培養液また
は腹水０．１ｍｊ！を加えた。全緩衝液はまた５％デキ
ストラン（ｍｗ４０．０００）を含有した。４℃で１８
時間後、沈降性第２抗体（ヤギ抗マウスＩｇＧ血清＞０
．１ａｉを加えた。４℃で４時間インキュベートした後
、冷ＰＢ３２　ｍｌを加え、管を４℃で３０分間、２．
０００ｘｇで遠心分離した。上澄みをデカントし、ペレ
ットの７１１１活性をガンマカウンター中で測定した。 最大沈降性放射能はＩ　ｇ　５ＯＲＢ　（ＭＢ　４７に
対し）または第２抗体（ＡＩ−１０およびＡｌ−１１に
対し）を１００％ＴＣＡに代えて測定した。 最小沈殿性放射能または非特異性結合（ＮＳＢ）は特異
性ハイブリドーマ抗体を同様の重鎮クラスの無関係なハ
イブリドーマに代えることにより測定した。 データは次のように計算した： ただし、ＭＥＡＮは所与量の特異性抗体の存在下に沈殿
した平均放射能であり、ＴＣＡは最大ＴＣＡ沈殿性放射
能である。 Ｇ、Ａｌ−１０およびＡｌ−１１に対する競合的免疫酵
素性検定 軟質ポリ塩化ビニルミクロタイタープレートをＨＤＬま
たは精製アポＡ−Ｔ５μｇ／ｍｌを含むリン酸塩緩衝食
塩水（ＰＢＳ）　０．２　ｔｅｌｌで、４℃で約１８時
間（−夜）コートした。１．０　ｇ　Ｂ　Ｓ　Ａおよび
０．５ｍｊ！ツイーン２０毎リットルを含むＰＢＳｏ、
３ｅＩＩｌでウェルを３回洗浄した。ウェル上の残留結
合部位を、３０ＢＳＡ毎リツトルを含むＰＢＳｏ、２ｍ
ｊ！をウェル中で室温（２０〜２５℃）で１時間インキ
ュベートすることによりブロックした。次いでウェルを
洗浄緩衝液で３回洗浄した。プレートを直ちに用いた。 西洋ワサビペルオキシダーゼと結合したＡｌ−１Ｏ１０
，３７５μｇ／＋ｓｌｌを含むＰＢＳ（０，０５Ｉ１１
）を、非結合Ａｌ−１０または非結合Ａｒ−１１単クロ
一ン性抗体０〜８．０μｇ／ｌａｌ！を含むＰＢＳｏ、
０５ｍｆとともに前コートしたウェル中でインキエベー
トした。インキエベーション時間は周囲温度（２０〜２
５℃）で３時間であった。 次いでウェルを洗浄緩衝溶液で３回洗浄し、ｏ　−フェ
ニレンジアミン基質を含むＰＢＳ０．１ａｉを全ウェル
に加え、周囲温度で３０分間インキュベートした。４Ｎ
−ＨｔＳｏ、０．０５　ｗＪを各ウェルに加えることに
より呈色反応を停止し、各ウェルの光学濃度（０，Ｄ、
）をダイナチク（Ｄｙｎａｔｅｃｈ　）９６ウエルプレ
ートリーダーを用いて４９０ナノメートル（ｎｍ）で測
定した。 アポＡ−１コートしたプレートの結果は第３図Ａに示さ
れ、ＨＤ　Ｌコートしたプレートの結果は第３図Ｂに示
される。２１倍増加の非標識Ａｌ−１１がＨＤＬまたは
アポＡｌに結合する標識Ａｌ−１０分子と有意に競合し
なかった。その研究はペルオキシダーゼ標識Ａｌ−１１
を非標識Ａｌ−１０およびＡｌ−１１とともに同じ濃度
で用いて繰返し、実質的に同じ結果を与えた。 本発明は好ましい態様に関して記載された。開示主題の
変更および（または）変形をここに示した本発明の範囲
から逸脱することなく行なうことができることは当業者
に明らかであろう。

【図面の簡単な説明】

第１図は液相免疫検定（ＲＩ　Ａ）における単クローン
性抗体ＭＢ４７のモル濃度と結合された１２５■標ｖａ
ＬＤＬ粒子との関係を示すグラフであり、 第２図は固相検定においてＬＤＬに結合するペルオキシ
ダーゼ標識ＭＢ２４およびＭＢ４７と競合する非標識Ｍ
Ｂ２４およびＭＢ４７の能力を示すグラフであり、 第３図はＡｌ−１０およびＡｌ−１１に対する競合的免
疫酵素性検定を示すグラフであり、第３Ａ図はアポＡ−
１コートプレート、第３Ｂ図は’　　ＩＩＤＬコートプ
レートのそれぞれに対するＡｌ−１０−ＨＲＰＯ”（０
，３７５μｇ／請１）と非標識Ａｌ−１０および非標識
Ａｌ−１１との競合との競合を示すグラフである・ 結合１２５Ｉ−ＬＤＬ　　％ 光学濃度（０，Ｄ、） 光学濃度　（０，Ｄ、）

Claims (13)

【特許請求の範囲】
1. （１）血液試料の単位容積当りのヒトのアポリポタンパ
   ク質Ｂ−１００およびアポリポタンパク質Ａ−Ｉの量を
   検定して試料中のアポリポタンパク質Ｂ−１００とアポ
   リポタンパク質Ａ−Ｉとの比を決定する段階を含む異常
   脂質代謝の標識を検定する方法であって、 （ａ）ヒトのアポタンパク質Ｂ−１００含有液体血液試
   料の第１アリコートを、 （ｉ）前記第１液体試料アリコートを、アポリポタンパ
   ク質Ｂ−１００と免疫反応する、かつＡＴＣＣ受託番号
   ＨＢ８７４２またはＨＢ８７４６を有するハイブリドー
   マの１つにより分泌される固相に結合した第１単クロー
   ン性パラトープ分子を有する固体マトリックスから実質
   的になり、支持体の表面が非特異性結合部位をブロック
   された固体支持体と混合して第１固−液相混合物を形成
   し、 （ｉｉ）前記第１固−液相混合物を生物学的検定条件下
   に、前記第１パラトープ分子が試料アリコート中に存在
   するアポリポタンパク質Ｂ−１００と免疫反応して前記
   試料アリコート中に存在する実質的にすべてのアポリポ
   タンパク質Ｂ−１００を含む固相結合免疫反応物を形成
   するのに十分な予定時間保持し、 （ｉｉｉ）前記第１液体試料アリコート中のアポリポタ
   ンパク質Ｂ−１００を、アポリポタンパク質Ｂ−１００
   と免疫反応する、かつＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７４２ま
   たはＨＢ８７４６を有するハイブリドーマの１つにより
   分泌されるがしかし段階（ａ）（ｉ）において使用され
   ず、酵素指示手段に作用可能に結合された液相第２単ク
   ローン性パラトープ分子と混合して第２混合物を形成し
   、 （ｉｖ）前記第２混合物を生物学的検定条件下に、前記
   第２指示手段結合パラトープ分子が試料アリコート中の
   実質的にすべてのアポリポタンパク質Ｂ−１００を含む
   免疫反応物を形成するのに十分な時間保持し、 （ｖ）上記段階（ａ）（ｉ〜ｉｖ）から生ずる固相と液
   相を分離し、 （ｖｉ）分離した固相中に存在する指示手段結合アポリ
   ポタンパク質Ｂ−１００含有免疫反応物の量、およびそ
   れにより試料の単位容積中のアポリポタンパク質Ｂ−１
   ００の量を測定する、 ことにより存在するアポリポタンパク質Ｂ−１００の量
   について検定し、 （ｂ）アポリポタンパク質Ａ−Ｉを含み、アンマスキン
   グ処理のない前記液体血液試料の第２アリコートを、 （ｉ）前記第２液体試料アリコートを、アポリポタンパ
   ク質Ａ−Ｉと免疫反応する、かつＡＴＣＣ受託番号ＨＢ
   ９２００またはＨＢ９２０１を有するハイブリドーマの
   １つにより分泌される固相に結合した第３単クローン性
   パラトープ分子を有する固体マトリックスから実質的に
   なり、固体支持体の表面が非特異的結合をブロックされ
   た固体支持体と混合して第３固−液相混合物を形成し、 （ｉｉ）前記第３固−液相混合物を生物学的検定条件下
   に、前記第３パラトープ分子がアリコート試料中に存在
   するアポリポタンパク質Ａ−Ｉと免疫反応して試料アリ
   コート中の実質的にすべてのアポリポタンパク質Ａ−Ｉ
   を含む固相結合免疫反応物を形成するのに十分な予定時
   間保持し、 （ｉｉｉ）前記第２液体試料アリコート中のアポリポタ
   ンパク質Ａ−Ｉを、アポリポタンパク質Ａと免疫反応す
   る、かつＡＴＣＣ受託番号ＨＢ９２００またはＨＢ９２
   ０１を有するハイブリドーマの１つにより分泌されるが
   しかし段階（ｂ）（ｉ）において使用されず、酵素指示
   手段に作用可能に結合された液相第４単クローン性パラ
   トープ分子と混合して第４混合物を形成し、 （ｉｖ）前記第４混合物を生物学的検定条件下に、前記
   第４指示手段結合パラトープ分子が試料アリコート中に
   存在する実質的にすべてのアポリポタンパク質Ａ−Ｉと
   免疫反応物を形成するのに十分な予定時間保持し、 （ｖ）段階（ｂ）（ｉ〜ｉｖ）から生ずる固相と液相を
   分離し、 （ｖｉ）分離した固相中に存在する指示手段結合アポリ
   ポタンパク質Ａ−Ｉ含有免疫反応物の量、およびそれに
   より試料の単位容積中のアポリポタンパク質Ａ−Ｉの量
   を測定する、 ことにより存在するアポリポタンパク質Ａ−Ｉの量につ
   いて検定する、 ことを含む方法。
2. （２）段階（ａ）（ｉ）および（ａ）（ｉｉｉ）の混合
   が実質的に同時に行なわれ、前記保持段階（ａ）（ｉｉ
   ）および（ａ）（ｉｖ）が一緒に行なわれる、特許請求
   の範囲第（１）項記載の方法。
3. （３）段階（ａ）（ｉｉ）後に存在する固相および液相
   が段階（ａ）（ｉｉｉ）の前に分離され、段階（ａ）（
   ｉｉｉ）において混合される第１液体アリコート中のア
   ポリポタンパク質Ｂ−１００が段階（ａ）（ｉｉ）にお
   いて形成された固相結合免疫反応物中に存在する、特許
   請求の範囲第（１）項記載の方法。
4. （４）段階（ｂ）（ｉｉ）後に存在する固相および液相
   が段階（ｂ）（ｉｉｉ）の前に分離され、段階（ｂ）（
   ｉｉｉ）において混合される第２液体アリコート中のア
   ポリポタンパク質Ａ−Ｉが段階（ｂ）（ｉｉ）において
   形成された固相結合免疫反応物中に存在する、特許請求
   の範囲第（１）項記載の方法。
5. （５）段階（ｂ）（ｉ）および（ｂ）（ｉｉｉ）の混合
   が実質的に同時に行なわれ、前記保持段階（ｂ）（ｉｉ
   ）および（ｂ）（ｉｖ）が一緒に行なわれる、特許請求
   の範囲第（１）項記載の方法。
6. （６）血液試料の単位容積当りのヒトアポリポタンパク
   質Ｂ−１００およびアポリポタンパク質Ａ−Ｉの量を検
   定し、試料中のアポリポタンパク質Ｂ−１００とアポリ
   ポタンパク質Ａ−Ｉとの比を決定する段階を含む異常脂
   質代謝の標識を検定する方法であって、 （ａ）ヒトのアポリポタンパク質Ｂ−１００含有液体血
   液試料の第１アリコートを、 （ｉ）前記第１液体試料アリコートを、アポリポタンパ
   ク質Ｂ−１００と免疫反応する、かつＡＴＣＣ受託番号
   ＨＢ８７４２またはＨＢ８７４６を有するハイブリドー
   マの１つにより分泌される固相に結合した第１単クロー
   ン性パラトープ分子を有する固体マトリックスから実質
   的になり、支持体の表面が非特異的結合部位をブロック
   された固体支持体およびＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７４２
   またはＨＢ８７４６を有するハイブリドーマのいずれか
   により分泌され、固体マトリックスに結合した第１パラ
   トープ分子でない酵素指示手段に作用可能に結合した第
   ２単クローン性パラトープ分子と実質的に同時に混合す
   ることにより第１固−液相混合物を形成し、 （ｉｉ）前記第１固−液相混合物を生物学的検定条件下
   に、前記第１パラトープ分子および前記指示手段結合第
   ２パラトープ分子が試料アリコート中に存在する実質的
   にすべてのアポリポタンパク質Ｂ−１００と免疫反応し
   て固相結合サンドイッチ免疫反応物および液相を形成す
   るのに十分な予定時間保持し、 （ｉｉｉ）固相と液相を分離し、 （ｉｖ）分離した固相中に存在する指示手段結合アポリ
   ポタンパク質Ｂ−１００含有サンドイッチ免疫反応物の
   量、およびそれにより試料の単位容積中のアポリポタン
   パク質Ｂ−１００の量を測定する、 ことにより存在するアポリポタンパク質Ｂ−１００の量
   について検定し、 （ｂ）アポリポタンパク質Ａ−Ｉを含み、アンマスキン
   グ処理のない前記液体血液試料の第２アリコートを、 （ｉ）前記第２液体試料アリコートを、アポリポタンパ
   ク質Ａ−Ｉと免疫反応する、かつＡＴＣＣ受託番号ＨＢ
   ９２００またはＨＢ９２０１を有するハイブリドーマの
   １つに、より分泌される固相に結合した第３単クローン
   性パラトープ分子から実質的になり、 支持体の表面が非特異的結合部位をブロックされた固体
   支持体およびＡＴＣＣ受託番号ＨＢ９２００またはＨＢ
   ９２０１を有するハイブリドーマのいずれかにより分泌
   され、固体マトリックスに結合した第３パラトープ分子
   でない酵素指示手段に作用可能に結合した第４単クロー
   ン性パラトープ分子と実質的に同時に混合することによ
   り第２固−液相混合物を形成し、 （ｉｉ）前記第２固−液相混合物を生物学的検定条件下
   に、前記第３パラトープ分子および前記指示手段結合第
   ４パラトープ分子が試料アリコート中に存在する実質的
   にすべてのアポリポタンパク質Ａ−Ｉと免疫反応して固
   相結合サンドイッチ免疫反応物および 液相を形成するのに十分な予定時間保持し、 （ｉｉｉ）固相と液相を分離し、 （ｉｖ）分離した固相中に存在する指示手段結合アポリ
   ポタンパク質Ａ−Ｉ含有サンドイッチ免疫反応物の量、
   およびそれにより試料の単位容積中のアポリポタンパク
   質Ａ−Ｉの量を測定する、 ことにより存在するアポリポタンパク質Ａ−Ｉの量につ
   いて検定する、 ことを含む方法。
7. （７）第１パラトープ分子がＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７
   ４６を有するハイブリドーマにより分泌される、特許請
   求の範囲第（６）項記載の方法。
8. （８）第３パラトープ分子がＡＴＣＣ受託番号ＨＢ９２
   ００を有するハイブリドーマにより分泌される、特許請
   求の範囲第（６）項記載の方法。
9. （９）段階（ａ）（ｉｉ）および（ｂ）（ｉｉ）の生物
   学的検定条件下の保持が周囲室温で約３０〜約６０分の
   時間である、特許請求の範囲第（６）項記載の方法。
10. （１０）保持が約３０分の時間であり、かくはん下に行
    なわれる、特許請求の範囲第（９）項記載の方法。
11. （１１）液体、血液試料中のアポリポタンパク質Ｂ−１
    ００とアポリポタンパク質Ａ−Ｉとの比の測定における
    使用に適する診断系であって、 （ａ）アポリポタンパク質Ｂ−１００と免疫反応する、
    かつＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７４２またはＨＢ８７４６
    を有するハイブリドーマの１つにより分泌されるパラト
    ープ分子を有する第１容器、 （ｂ）アポリポタンパク質Ｂ−１００と免疫反応する、
    かつＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７４２またはＨＢ８７４６
    を有するハイブリドーマの１つにより分泌されるがしか
    し第１容器中になく、酵素指示手段に作用可能に結合さ
    れたパラトープ分子を有する第２容器、 （ｃ）アポリポタンパク質Ａ−Ｉと免疫反応する、かつ
    ＡＴＣＣ受託番号ＨＢ９２００または ＨＢ９２０１を有するハイブリドーマの１つにより分泌
    されるパラトープ分子を有する第３容器、 （ｄ）アポリポタンパク質Ａ−Ｉと免疫反応する、かつ
    ＡＴＣＣ受託番号ＨＢ９２００または ＨＢ９２０１を有するハイブリドーマの１つにより分泌
    されるがしかし第３容器中になく、酵素指示手段に作用
    可能に結合されるパラトープ分子を有する第４容器、 を含み、前記各パラトープ分子が前記比の１測定の実施
    に十分な量存在する診断系。
12. （１２）アポリポタンパク質Ｂ−１００およびアポリポ
    タンパク質Ａ−Ｉと免疫反応し、前記それぞれの指示手
    段に結合されないそれぞれの単クローン性パラトープ分
    子がそれぞれ別個に固相マトリックスに結合して別の固
    体支持体を形成し、前記支持体の表面非特異的結合部位
    がブロックされている、特許請求の範囲第（１１）項記
    載の診断系。
13. （１３）ＡＴＣＣ受託番号ＨＢ８７４６およびＨＢ９２
    ００を有するハイブリドーマにより分泌された単クロー
    ン性パラトープ分子が個々の固体マトリックスに結合さ
    れる、特許請求の範囲第（１２）項記載の診断系。